KR100587868B1

KR100587868B1 - 생물학적 물질의 화학적 세정 방법

Info

Publication number: KR100587868B1
Application number: KR1019997010239A
Authority: KR
Inventors: 에이브러햄진저에이; 카로버트엠주니어; 켐프폴디; 머서라이언; 베이커린다
Original assignee: 오가노제네시스, 인코오포레이티드
Priority date: 1997-05-08
Filing date: 1998-05-08
Publication date: 2006-06-13
Also published as: WO1998049969A1; BR9809216A; EP1018979A1; ES2231984T3; JP2002510995A; US6599690B1; CA2288823A1; AU736312B2; EP1018979B1; KR20010012287A; US5993844A; CA2288823C; EP1452150B1; IL132517A0; US20040005703A1; DK1018979T3; DE69827402D1; NO995372D0; EP1018979A4; ES2404033T3

Abstract

본 발명은 천연 조직에서 통상적으로 발견되는 비-콜라겐성 성분, 예컨대 세포, 세포성 부스러기 및 기타의 세포외 기질 성분, 예를 들면 프로테오글리칸 및 글리코스아미노글리칸을 제거하도록 처리한 콜라겐성 조직에 관한 것이다. 조직을 알칼리, 킬레이트화제, 산 및 염으로 처리하여 용해 및 팽윤량을 조절하면서 콜라겐성 조직 기질로부터의 비-콜라겐성 성분을 제거하므로써 생성된 콜라겐 기질은 구조적 체제, 보전성 및 생체리모델링 특성을 보유하게 된다. 본 발명의 방법은 콜라겐 기질의 세포 적합성, 강도 및 생체리모델링성에 치명적인 영향을 미치는 세제 및 효소를 사용할 필요가 없다. 콜라겐성 조직 기질은 포유류 숙주에 이식, 회복 또는 사용하기 위한 것이다.

Description

생물학적 물질의 화학적 세정 방법{CHEMICAL CLEANING OF BIOLOGICAL MATERIAL}

본 발명은 조직 공학 분야에 관한 것이다. 본 발명은 통상적으로 천연 조직에서 발견되는 비-콜라겐성 성분, 예를 들면 세포, 세포성 부스러기, 및 기타의 세포외 기질 성분, 예를 들면 프로테오글리칸 및 글리코스아미노글리칸을 제거하기 위해 처리한 콜라겐성 조직에 관한 것이다. 알칼리, 킬레이트화제, 산 및 염을 사용한 조직 처리는 용해 및 팽윤량을 조절하면서 비콜라겐성 성분을 콜라겐성 조직 기질로부터 제거하여 생성된 콜라겐 기질이 이의 구조적 체제, 보전성 및 생체리모델링(bioremodelable) 성능을 보유하도록 한다. 본 발명은 콜라겐 기질의 생체리모델링성, 강도 및 세포 적합성에 치명적인 영향을 미칠 수 있는 효소 및 세제를 사용할 필요가 없다. 콜라겐성 조직 기질은 포유류 숙주에서의 사용, 회복 또는 이식에 사용한다.

조직 공학 분야는 정상 및 병리학적 포유동물 조직에서의 구조 및 기능 관계를 이해하는 생명 과학의 원리와 공학적인 방법을 접목시킨 분야이다. 조직 공학은 조직 기능을 복구, 유지 또는 개선하는 생물학적 대체물의 개발 및 최종적인 응용을 목표로 한다. 참조 문헌[Skalak, R. 및 Fox, C.F., "Tissue Engineering", 알란 알. 리스 인코오포레이티드, 뉴욕 (1988)].

콜라겐은 신체의 주요 구조 단백질을 이루며, 신체의 총 단백질의 약 1/3을 구성하고 있다. 이는 피부, 건, 뼈 및 치아의 대부분의 유기 물질을 포함하며, 대부분 기타 신체의 구조에서 섬유상 봉입물로서 존재한다. 몇몇의 콜라겐 특성은 인장 강도가 높으며, 전해질, 대사물 및 약물의 결합에 부분적으로 기여하는 이의 이온 교환 능력, 나선형 구조 및 이의 낮은 신장율, 반투과도 및 용해도에 의한 잠재적 항원 결정요인의 차폐로 인한 낮은 항원성 등이 있다. 또한, 콜라겐은 세포 유착용 천연 물질이다. 이러한 특징 및 기타의 특징은 콜라겐이 조직 공학 및 이식 가능한 생물학적 대체물 및 생체리모델링성 인공삽입물의 제조에 대해 적절한 물질이 되도록 한다.

콜라겐은 이러한 생물학적 대체물의 한 주성분이 되므로, 특성이 일치하는 충분량의 콜라겐을 얻는 방법이 요구되고 있다. 실질적으로 순수한 천연 콜라겐 기질을 생성하는 천연 조직에서 통상적으로 발견되는 비-콜라겐성 성분, 예를 들면 세포, 세포성 부스러기, 및 기타의 세포외 기질 성분, 예컨대 프로테오글리칸 및 글리코스아미노글리칸을 제거하는 개선된 방법이 통상 요구되고 있다. 천연 조직에 존재하는 이러한 몇몇의 비-콜라겐성 구조는 항원성을 갖는 것으로 밝혀졌으며, 숙주에 이식되었을 경우의 만성 염증 반응을 유도하게 된다. 그러나, 당분야에는 여러가지 특성을 갖는 콜라겐성 조성물을 생성하는 콜라겐성 조직을 세정하는 다양한 방법이 존재하고 있다. 사용된 방법은 조직 공학에 사용하기에 적절한 콜라겐 및 콜라겐성 조직의 생물학적 및 물리적 특성을 유지하여야만 한다.

콜라겐성 기질을 생성하기 위하여 콜라겐성 조직을 처리하는 종래의 기술에서, 세제 및 계면활성제가 조직으로부터의 지질 및 세포의 추출에 통상적으로 사용되어 왔다. 도데실 황산나트륨(SDS)과 같은 세제는 양쪽성 분자로서, 이때, 소수성 부위는 단백질에 결합되어서 단백질의 음전하를 증가시키는 것으로 알려졌다. 이식시, 전하의 증가는 분자의 친수성 부위에 의해 결합되는 물이 증가하고, 수소 결합의 파괴로 인한 콜라겐내의 열 안정도가 감소되는 것으로 인해 조직의 팽윤이 발생한다. 이러한 2 가지의 팽윤은 콜라게나제와 같은 세포성 효소가 감수성을 갖게 하는 콜라겐 분자의 구조를 개방시키며, 콜라겐 기질을 불안정하게 하여 약화된 구조물을 생성하게 된다. 참고 문헌 [Courtman et al., Journal of Biomedical Materials Research, 28:655-666, 1994]. 또한, SDS 잔류물이 콜라겐에 결합된 상태를 유지하게 되며, 세포가 이식물로 이동하는 것을 방해하게 된다. 참고 문헌 [Wilson, GJ et al., Ann Thorac Surg, 60:S353-8, 1995; Bodnar E. et al., "Damage of aortic valve tissue caused by the surfactant sodium dodecyl sulfate," Thorac Cardiovasc Surg, 34:82-85, 1986]. 화학적 세정법에 사용된 세제가 결합되어 처리한 조직내의 콜라겐의 생체리모델링 성능을 변경시키는 것이 바람직하지 않을 수 있기 때문에, 본 발명자들은 세제를 사용하지 않는 방법을 개발하였다.

트립신, 펩신 및 콜라게나제와 같은 효소를 사용하여 조직을 화학적으로 세정하는 방법이 당분야에 이미 공지되어 있지만, 이 방법을 사용하므로써 천연 콜라겐 분자의 화학적 변형이 형성되어 구조물의 구조 보전성에 불리한 영향을 미치게 된다. 세포외 기질 결합 단백질의 제거 및/또는 변형에 콜라겐성 조직의 효소 처리를 이용하는 것은 당분야에서 공지되어 있다. 콜라겐 텔로펩티드를 제거하여 아텔로펩티드 콜라겐을 생성하는데 펩신, 트립신, 디스파제 또는 써모리신과 같은 프로테아제가 사용된다. 콜라겐 텔로펩티드는 콜라겐 분자의 비-3중 나선형 부분에 해당하며, 몇몇의 연구진에 의하면 이로 인해서 약한 항원성을 갖게 된다고 하기도 하고, 또한 또다른 연구진에 의하면 이에 의해 콜라겐이 강한 기계적 특성을 나타낸다고 주장되기도 한다. 콜라겐성 조직의 제한된 소화가 조직의 콜라겐 기질을 해리시키지 않으면서 텔로펩티드를 제거하지만, 장시간의 소화는 콜라겐 피브릴을 아텔로펩티드 콜라겐 단량체로 해리시키게 된다. 또한, 당분야에는 RNAse 및 DNAse 각각을 사용하여 내인성 RNA 및 DNA를 소화시키는 효소를 사용하여 기질로부터 핵산을 개질 및 제거하는 것이 공지되어 있다. 효소를 사용한 처리는 콜라겐의 구조 보전성에 영향을 미칠 수 있으므로, 본 발명의 방법은 이러한 사용을 배제하고 있다.

외이식한 포유류 조직으로부터의 조직 구조물 및 콜라겐성 조직을 얻는 방법 및, 조직으로부터 인공삽입물을 구조화하는 방법은 수술 회복 또는 조직 및 기관 대체에 대하여 광범위하게 연구되어 왔다. 통상적으로 조직을 처리하여 잠재적인 세포독성 세포성 및 비-콜라겐성 성분을 제거하므로써 천연의 조직 기질을 얻는다. 추가로 가교, 소독 또는 일정 형태로 성형시키는 처리 또한 연구되어 왔다. 기관형성된 조직 기질로부터 조직 성분을 제거하기 위해 콜라겐성 조직을 처리하는 종래의 방법은 세제, 효소를 사용하였으며, 기질의 조절되지 않는 팽윤을 조장하게 된다. Jaffe et al.의 WO95/28183에는 생물성 인공삽입 심장 판막 무기질침착 후이식을 감소 또는 예방하는 방법이 개시되어 있다. 이 문헌에 개시되어 있는 방법은 조절되는 자가융해에 의해 무세포성이 된 생물학적 물질을 제공한다. 자가융해는 조직내에 존재하는 자가융해 효소가 세포성 구조 성분을 분해하도록 하는 소정의 pH에서 1 종 이상의 완충액을 사용하여 조절 실시된다. Stone의 미국 특허 제5,007,934호 및 유사하게 Li et al.의 미국 특허 출원 제5,263,984호 모두는 인대 조직의 화학적 세정의 다단계 방법이 개시되어 있다. 이 방법은 세제를 사용하여 세포막 또는 콜라겐 조직이 결합된 지질을 제거한다. Janzen et al.의 미국 특허 출원 제5,523,291호에는 항인대로부터 유래된 연조직 증강에 대한 분쇄 주사가능한 이식 조성물이 개시되어 있다. 인대를 수산화나트륨 강알칼리성 용액으로 침지시킨 후, 염산 용액, 중탄산나트륨의 순서로 침지시킨다. Eckmayer et al.의 미국 특허 제5,028,695호에는 콜라겐 막의 제조 방법이 개시되어 있는데, 이 방법에서는 콜라겐 조직을 강알칼리로 반복해서 처리한 후, 수회 강산으로 처리하고, 추가로 무기 염수 처리로 처리하여 막을 수축시킨 후, 용매로 처리하고, 이를 건조시키는 것을 포함한다.

발명의 개요

본 발명은 생체리모델링성 콜라겐성 조직 기질 및 이러한 조직 기질을 생성하는 천연 조직의 화학적 세정 방법에 관한 것이다.

본 발명은 실질적으로 콜라겐인 생체리모델링성 조직 기질을 얻는 경우의 난점을 해소하였다. 본 발명은 손상되고 병에 걸린 조직 및 기관의 회복, 증강, 또는 대체에 사용하기 위한 인공삽입 장치 또는 물질로서 사용할 수 있는 조직 기질을 제공한다.

본 발명의 화학적 세정 방법은 콜라겐성 조직 기질의 구조 보전성을 유지하면서 천연 조직 및 조직 구조물과 같은 생물학적 물질이 거의 무세포성으로 그리고 비-콜라겐성 성분을 포함하지 않게 한다. 화학적 세정 방법에 세제를 사용하지 않기 때문에, 통상적으로 조직 기질에 결합된 채 잔류하게 되는 세제 잔류물이 존재하지 않게 된다. 효소를 사용하지 않으므로, 콜라겐 텔로펩티드가 콜라겐 분자상에 보유된다. 이러한 방법은 정상 세포성 천연 조직을 염기성 pH에서 킬레이트화제와 접촉시키는 단계, 이 조직을 산성 pH에서 염 용액과 접촉시키는 단계, 이 조직을 생리적 pH에서 염 용액과 접촉시키는 단계, 화학적으로 세정된 조직 기질을 최종 헹구는 단계를 포함한다.

본 발명은 천연의 정상 세포성 조직으로부터 유래된 화학적 세정된 조직 기질에 관한 것이다. 세정된 조직 기질은 당단백질, 글리코스아미노글리칸, 프로테오글리칸, 지질, 비-콜라겐성 단백질 및 핵산, 예컨대 DNA 및 RNA를 거의 포함하지 않는 자연 그대로의 콜라겐이다. 조직 기질이 콜라겐의 생체리모델링 성능에 해로운 영향을 미칠 수 있는 결합된 세제 잔류물을 포함하지 않기 때문에 조직 기질의 생체리모델링 성능이 보존될 수 있다는 점이 중요하다. 추가로, 콜라겐 분자의 텔로펩티드 부위가 세정 공정 동안 효소를 사용한 처리 또는 변형을 거치지 않으므로 인해서 자연 그대로 유지되기 때문에 콜라겐은 텔로펩티드 콜라겐이 된다.

콜라겐성 물질은 일반적으로 콜라겐이 유래되는 조직의 전체적인 형태를 유지하나, 서로 중첩되거나 또는 결합되어 다층의 시이트, 튜브 또는 복합 형태의 인공삽입물을 형성할 수 있다. 본 발명의 결합된 콜라겐층은 구조적으로 안정하며, 유연하고, 반투과성이며, 봉합가능하다. 기질 물질을 포유류 숙주에게 이식하는 경우, 적절한 생세포 대체 또는 신생 조직 형성에 의해 수반되는 생분해를 겪으며, 그리하여 본래의 이식된 물질이 궁극적으로는 숙주 유래된 조직 및 세포에 의해 리모델링 및 대체된다.

그러므로, 본 발명의 제1의 목적은 종래에 개발된 많은 방법과 관련한 많은 단점을 지니지 않는 조직 기질을 생성하는 천연 조직의 세정 방법을 제공하고자 하는 것이다. 이러한 방법은 세제 또는 효소를 사용하지 않고 천연 조직의 비-콜라겐성 성분을 효과적으로 제거하여 거의 콜라겐을 포함하는 조직 기질을 생성하게 된다.

본 발명의 제2의 목적은 이식 부위에서 조직의 내방성장 및/또는 기관의 재생을 가능케 하며 이를 촉진하는 생체리모델링 조직 기질 물질을 제공하고자 하는 것이다. 이러한 물질로부터 생성된 인공삽입물은 수용체 숙주 또는 환자에게 이식할 경우 조절된 생체리모델링 및 적절한 생세포 대체가 동시에 발생하여 본래의 이식된 인공삽입물은 환자의 생세포에 의해 제모델링되어 재생된 기관 또는 조직을 형성하게 된다.

본 발명의 제3의 목적은 자가이식, 동종이식 및 이종이식 적응에 있어서 신규한 다목적 생체리모델링성 기질 물질을 사용하는 방법을 제공하고자 하는 것이다.

본 발명의 제4의 목적은 통상의 수술법을 사용하여 이식할 수 있는 신규한 조직 기질 물질을 제공하고자 하는 것이다.

본 발명은 이식을 위한 천연 콜라겐성 조직을 처리하는 방법을 제공한다. 이러한 처리 방법은 생체내 숙주에 의해 또는 시험관내 배양액중의 생세포에 의해 생체리모델링성 골격 (scaffold)으로서 작용하는 콜라겐을 포함하는 세포외 기질, 이식가능성 이식편성 콜라겐성 생물학적 조직 물질을 생성하고자 하는 것이다.

본 발명은 포유류 숙주에게 이식될 경우 신체 일부의 기능 회복, 증강 또는 대체로서 작용할 수 있는 처리된 천연 콜라겐성 조직 또는 조직 구조물로부터 형성된 조직 공학적 인공삽입물에 관한 것으로, 이는 숙주의 세포에 의한 리모델링과 동시에 조절된 생분해 반응이 발생하게 된다. 조직 기질은 자가 이식, 동종 이식 및 이종 이식 적응에 대한 인공삽입 물질로서 사용될 수 있다. 본 발명의 이와 같은 인공삽입물은 다양한 구체예에서 2 가지의 특성을 갖는다. 그 첫번째 특성으로는 이것이 신체 일부의 대체물로서 기능을 한다는 점이고, 두번째의 특성으로는 신체 일부의 대체물로서 기능을 수행하면서 숙주 세포의 내방성장에 대한 리모델링 주형으로서 작용한다는 점이다. 그렇지만, 이러한 인공삽입물이 다양한 장치 및 구조물의 구성을 통해 예시되기도 하지만, 본 발명이 이에 의해 제한되지는 않는다. 소재, 형태 및 두께면에서의 장치 디자인이 구조물에 대한 최종 적응에 따라 선택되는 된다는 점은 명백하다.

본 발명의 화학적 세정 방법은 콜라겐성 조직 기질의 구조적 보전성은 유지한채, 천연 조직 및 조직 구조와 같은 생물학적 물질이 거의 무세포성이고 실질적으로 비-콜라겐성 성분을 포함하지 않도록 하는 방법이다. 종종 엘라스틴이 소량으로 천연 조직에 존재하는 경우가 있으며, 이는 화학적 세정 방법에 의해 제거되지 않는다. 엘라스틴의 존재는 특정의 용도에 대해서는 바람직할 수 있다. 본 명세서에서 사용된 바와 같이, 용어 "거의 무세포성"이라는 것은 천연 세포 및 세포 구조물을 생물학적 물질의 천연 상태보다 95% 이상 적게 함유하는 것을 의미한다. 용어 "세포 및 세포성 구조물"이라는 것은 생세포 또는 비-생세포, 세포 잔존조직, 세포 막 및 막 구조물을 의미한다. 용어 "비-콜라겐성 성분을 거의 포함하지 않는"이라는 것은 당단백질, 글리코스아미노글리칸, 프로테오글리칸, 지질, 비-콜라겐성 단백질 및 핵산, 예컨대 DNA 및 RNA가 생성된 조직 기질 건조 중량의 5% 미만을 포함한다는 것을 의미한다. 세제를 화학적 세정 방법에 사용하지 않으므로, 통상적으로 조직 기질에 결합된채 보유되는 세제 잔류물이 존재하지 않게 된다. 효소를 사용하지 않으므로, 콜라겐 텔로펩티드가 콜라겐 분자상에 보유된다. 추가로, 화학적 세정 방법은 무균 장치, 용액 및 방부 처리 기법을 사용하여 처리하는 경우 생물학적 물질이 무균 생태가 되며 동시에 내독소를 함유하지 않게 된다.

용어 "구조적 보전성"이라는 것은 화학적으로 세정 처리한 콜라겐성 조직 기질이 장력, 압축력 및 지지력과 같은 힘을 견디어내는 능력을 의미한다. 생물학적 물질의 구조적 보전성은 처리중에 약간의 팽윤이 발생할지라도 화학적 처리 단계 중에 팽윤이 최소화된 상태로 보존된다. 조절되지 않거나 또는 과도한 팽윤은 모두 콜라겐 분자 구조를 개방시키므로써 콜라게나제와 같은 세포성 효소에 대해 민감성을 지니게 되며, 콜라겐을 불안정하게 하여 약화된 구조물을 얻게 한다. 팽윤이 콜라겐 분자의 분자내 구조에 영향을 미치기 때문에, 이 물질의 전체적인 구조는 콜라겐 분자 사이의 본래의 가교를 붕괴시키므로써 분자간 레벨에 영향을 미치게 된다. 또한, 콜라겐 분자의 구조 및, 콜라겐 분자 사이의 가교 결합은 이 물질에 구조적 보전성을 제공하게 된다.

천연 구조적 보전성을 많이 유지하는 조직 기질 물질은 예를 들면 인공삽입 장치로서 또는 다층 또는 복합물 장치를 구성하는 물질로서 사용되는 경우 유용하다. 이러한 물질의 보전성은 이것이 체벽 지지물, 혈관 장치 또는 기형교정 장치와 같은 기능을 갖는 부하를 수행하는 경우에 있어서 중요하게 된다. 구조적 보전성과 관련하여 용어 "봉합 가능한"이라는 것은 문합술로 알려진 방법에 의해 봉합 소재로 천연 조직의 부위에 인공삽입물을 봉합시킬때 인공삽입물 소재를 통해 봉합침과 봉합 소재가 관통되도록 하는 봉합 유지력을 포함한 소재의 기계적 특성을 의미한다. 봉합시, 봉합에 의한 이러한 인공삽입물에 가해지는 장력에 의해 인공삽입물이 찢어지지 않아야 하며, 봉합사로 묶을 경우에도 찢어지지 않아야만 한다. 인공삽입물의 봉합성, 즉 봉합시 찢어짐을 견디는 인공삽입물의 성능은 인공삽입물 소재의 고유한 기계적 강도, 이식편의 두께, 봉합에 가해진 장력, 및 매듭을 잡아당겨 마무리를 지을 때의 속도와 관련이 있다.

본 발명에서 정의된 바와 같은 생물학적 물질의 비제한적인 예로는 포유류 조직 및, 사람, 소, 돼지, 개, 양, 염소 및 말의 유기체로부터 유래되는 구조물 등이 있다. 진피, 동맥, 정맥, 심막, 심장 판막, 경막, 인대, 장 및 근막과 같은 조직 구조물이 바람직한 조직 구조물이 되며, 이는 본 발명의 방법에 의해 세정되어 거의 무세포성이고 비-콜라겐성 성분을 거의 포함하지 않는 조직 기질을 생성할 수 있게 된다.

포유류 조직의 공급원은 바람직하게는 소장, 가장 바람직하게는 돼지 소장으로부터의 점막하층이 있다. 천연의 소장에서, 점막하층은 기관의 결합 조직층으로서, 이는 림프 및 혈관 세포를 포함하고 있다. 점막하층을 얻는 방법은 본 명세서에서 참고로 인용하는 WO96/31157에 개시되어 있다. 또한, "점막하조직"으로 칭한 돼지의 점막하층을 얻기 위해서는 돼지의 소장을 수집하고, 바람직하게는 장 세정기 (비터링, 영국 노팅엄에 소재)를 사용하여 이를 기계적으로 박리시켰다. 장 세정기는 기계적 작용의 조합을 사용하여 점막하층으로부터의 지방층, 근육층 및 점막층을 강제로 제거한 후, 물로 세정하였다. 기계 작동은 무상해 장이 롤러의 사이를 주행시, 점막하층으로부터의 연속적인 층을 압착시키고 이를 제거하는 일련의 롤러로 나타날 수 있다. 소장의 점막하층이 주변 조직보다 상대적으로 딱딱하고 뻣뻣하기 때문에, 점막하조직으로부터의 더 부드러운 성분이 점막하층으로부터 제거된다. 기계 세정에 의해서, 점막하층의 내강으로부터의 점막층 뿐 아니라, 점막하층의 관강에서 떨어진 부분으로부터의 근육층, 장막, 장간막 조직을 점막하층으로부터 제거하여 장의 점막하층만이 남게 된다. 또한, 점막하층을 화학적으로 세정한 조직 기질을 "장 콜라겐층" 또는 "ICL"로 칭한다. 육식 동물 및 잡식성 동물과 같은 동물 공급원에서, 소장은 기계적 세정 단계에 의해 대부분 제거되는 치밀층을 포함하고 있다.

소장의 층을 기계적으로 박리시키는 기타의 방법은 본 명세서에서 참고로 인용하는 Badylak의 미국 특허 제4,902,508호에 기재되어 있는 바와 같이 종래 기술에서 알려져 있는 것이다. 이 특허 문헌에 의해 개시되어 있는 방법은 장 조직을 약하게 마모시켜 장막, 근육층 및, 적어도 점막의 내강 부분으로 구성된 내층을 비롯한 관강에서 떨어진 부분을 제거하는 것을 포함한다. 남아있는 층은 점막근판으로 구성된 결합된 기저층이 있는 점막하층 및, 수거된 포유류의 조직에 초기에 존재하는 경우 치밀층이다. 이러한 방법에 의해 얻은 장 물질은 봉합, 스테이플링, 접착제 조성물, 화학적 접합 또는 열 접합을 비롯한 다양한 기법에 의해 체벽 또는 혈관 장치에 이식되거나 또는 우선 성형될 수 있다.

특정의 작동 변수와 관련된 것으로는 본 발명의 정신 및 범주를 벗어나지 않은채 변형될 수 있는 함량, 시간 및 온도에 대해 전체 명세서 및 실시예에서 정의되어 있다. 본 명세서에서 사용된 것으로서, "유효량"이라 함은 소정의 효능을 얻는데 필요한 조성물의 부피 및 농도를 의미한다. 조직의 화학적 세정에 바람직한 유효량은 용액 대 조직의 비가 100:1 v/v이지만, 세정하고자 하는 조직의 형태, 용적, 두께, 밀도 및 세포충실도(cellularity) 등을 고려하여 당업자에 의해 일부 결정될 수 있다. 화학적 단계에 필요한 유효 시간은 세정하고자 하는 물질의 세포충실도, 기질 밀도 및 두께 등을 고려하여 당업자에 의해 숙지될 수 있을 것이다. 더 크고, 더 두껍거나 또는 더 밀도가 높은 물질은 용액이 조직을 침투하여 평형을 이루는 시간이 더 많이 소요된다. 본 발명에 사용된 용액 및 주위의 온도는 실온, 약 25℃가 바람직하나, 사용된 용액의 동결점 이상 내지 처리하고자 하는 조직 물질의 변성 온도보다 낮은 온도 범위내의 임의의 온도를 사용하여도 된다. 약 42℃∼약 45℃ 범위내의 온도가 세정 처리를 효율적으로 실시하는데 충분하다. "진탕"이라는 것은 기계적인 교반 또는 혼합을 의미하는 것으로서, 조직으로의 화학적 조성물의 침투를 증가시키고, 화학 처리에 소요되는 시간을 효과적으로 단축시키고자 할 경우에 사용한다. 용어 "완충액"이라는 것은 수소 이온 농도 또는 용액의 pH를 유지하는 1 종 이상의 제제를 함유하는 수용액을 의미한다.

바람직한 방법에 있어서, 수거된 조직은 지방 및 맥관계와 같은 과량의 조직을 기계적으로 세정하거나 및/또는 완전 해부에 의해서와 같이 수동으로 세정할 필요가 있다. 처리 동안의 취급 용이성을 위해 또는 대부분의 효율적인 화학 처리를 위해 약간의 조직에 수동 세정이 필요할 수 있다.

조직을 유효량의 킬레이트화제, 바람직하게는 알칼리와 접촉시켜 조직 기질의 팽윤을 조절가능한 정도로 제한하도록 처리한다. 킬레이트화제는 2가 양이온 농도를 감소시키므로써 기질로부터의 기저 막 구조물, 세포 및 세포성 부스러기의 제거를 향상시킨다. 알칼리 처리는 콜라겐성 조직으로부터의 당단백질 및 글리코스아미노글리칸을 해리시켜 지질을 비누화시킨다. 당분야에서 공지되어 있는 사용가능한 킬레이트화제의 비제한적인 예로는 에틸렌디아민테트라아세트산 (EDTA) 및 에틸렌비스(옥시에틸렌니트릴로)테트라아세트산 (EGTA) 등이 있다. EDTA가 바람직한 킬레이트화제이며, 이는 수산화나트륨 (NaOH), 수산화칼슘 [Ca(OH)₂], 탄산나트륨 또는 과산화나트륨을 첨가하여 더 강한 알칼리로 만들 수 있다. EDTA 또는 EGTA의 농도는 바람직하게는 약 1∼약 200 mM, 더욱 바람직하게는 약 50∼약 150 mM, 가장 바람직하게는 약 100 mM 정도가 된다. NaOH의 농도는 바람직하게는 약 0.001∼약 1 M, 더욱 바람직하게는 약 0.001∼약 0.10 M, 가장 바람직하게는 약 0.01 M이 된다. 기타의 알칼리성 또는 염기성 제제는 킬레이트화 용액의 pH가 유효한 염기성 pH 범위내가 되도록 당업자에 의해 결정될 수 있다. 염기성 킬레이트화 용액의 최종 pH는 바람직하게는 약 8∼약 12, 더욱 바람직하게는 약 11.1∼약 11.8이 된다. 가장 바람직한 실시태양에 있어서는, 조직을 100 mM EDTA/10 mM NaOH 수용액으로 접촉시키는 것이다. 조직은 알칼리성 킬레이트화제에 침지시키므로써 접촉되는 것이 바람직하며, 더 효율적인 처리로는 처리 단계가 효율적으로 실시되는 시간 동안 조직과 용액을 함께 진탕시키므로써 얻게 된다.

그후, 조직을 산성 용액, 바람직하게는 염을 함유하는 유효량의 산성 용액과 접촉시킨다. 또한, 산 처리는 당단백질 및 글리코스아미노글리칸을 제거하는 역할을 할뿐 아니라, DNA 및 RNA와 같은 핵산 및 비-콜라겐성 단백질을 제거하는데도 작용한다. 염 처리는 산 처리 동안 콜라겐성 조직 기질의 팽윤을 조절하며, 콜라겐성 기질로부터 약간의 당단백질 및 프로테오글리칸을 제거하게 된다. 당분야에서 공지된 산 용액의 비제한적인 예로는 염산 (HCl), 아세트산 (CH₃COOH) 및 황산 (H₂SO₄) 등이 있다. 산은 농도가 바람직하게는 약 0.5∼약 2 M, 더욱 바람직하게는 약 0.75∼약 1.25 M, 가장 바람직하게는 약 1 M 정도인 염산(HCl)이 바람직하다. 산/염 용액의 최종 pH는 바람직하게는 약 0∼약 1, 더욱 바람직하게는 약 0∼0.75, 가장 바람직하게는 약 0.1∼약 0.5이다. 염산 및 기타의 강산은 핵산 분자를 분해시키는데 가장 효율적이며, 약산은 이 경우 덜 효율적이다. 사용 가능한 염은 바람직하게는 무기 염이 있으며, 염화나트륨 (NaCl), 염화칼슘 (CaCl₂) 및 염화칼륨 (KCl)과 같은 염화물 염이 있으나, 이에 제한되는 것은 아니며, 기타의 효과적인 염은 당업자에 의해 선택될 것이다. 염화물 염은 바람직하게는 약 0.1∼약 2 M, 더욱 바람직하게는 약 0.75∼약 1.25 M, 가장 바람직하게는 약 1 M의 농도로 사용된다. 본 방법에 사용하기 위한 바람직한 염화물 염은 염화나트륨 (NaCl)이 있다. 가장 바람직한 실시태양에 있어서는 조직을 1 M HCl/1 M NaCl의 수용액과 접촉시키는 것이다. 조직을 산/염 용액으로 침지시키므로써 접촉시키는 것이 바람직하며, 효과적인 처리는 처리 단계가 효과적이게 되는 시간 동안 조직과 용액을 함께 진탕시키므로써 얻는다.

그후, 조직을 거의 생리적 pH로 완충되는 것이 바람직한 유효량의 염 용액과 접촉시킨다. 완충된 염 용액은 물질을 중화시키면서 팽윤을 감소시키게 된다. 사용할 수 있는 염은 무기 염이 바람직하며, 염화물, 예를 들면 염화나트륨 (NaCl), 염화칼슘 (CaCl₂) 및 염화칼륨 (KCl); 질소 함유 염, 예컨대, 황산암모늄 (NH₃SO₄)이 있으나, 이에 제한되는 것은 아니며, 기타의 효과적인 염은 당업자에 의해 선택될 것이다. 염화물 염은 바람직하게는 약 0.1∼약 2 M, 더욱 바람직하게는 약 0.75∼약 1.25 M, 가장 바람직하게는 약 1 M의 농도로 사용된다. 본 방법에서 사용되는 바람직한 염화물 염은 염화나트륨 (NaCl)이다. 완충제는 당업계에 공지되어 있으나, 이의 비제한적인 예로는 인산염 및 붕산염 용액 등이 있으나, 이는 본 방법에 사용하기 위해 당업자에 의해 선택될 수 있다. 염 용액을 완충시키는 바람직한 방법은 인산염 완충 염수 (PBS)를 첨가하는 것이 바람직한데, 이때 인산염은 농도가 약 0.001∼약 0.02 M이고, 염 농도는 염 용액에 대해서 약 0.07∼약 0.3 M이 된다. 용액의 바람직한 pH는 약 5∼약 9, 더욱 바람직하게는 약 7∼약 8, 가장 바람직하게는 약 7.4∼약 7.6이다. 가장 바람직한 실시태양에서는, 조직을 약 7.0∼약 7.6의 pH에서 1 M 염화나트륨 (NaCl)/10 mM 인산염 완충 염수 (PBS)와 접촉시킨다. 조직을 완충 염 용액 중에 침지시켜 접촉시키는 것이 바람직하나, 효과적인 처리는 처리 단계가 효과적이게 되는 시간 동안 조직과 용액을 함께 진탕시키므로써 실시된다.

화학적 세정 처리 단계 이후, 조직을 유효량의 헹굼제와 접촉시키므로써 화학적 세정제를 포함하지 않도록 헹구는 것이 바람직하다. 물, 등장성 염수 용액 및 생리적 pH 완충액과 같은 제제를 사용할 수 있으며, 세정제를 제거하는데 충분한 시간 동안 조직과 접촉시킨다. 바람직한 헹굼액으로는 인산염 완충 염수 (PBS)와 같은 생리적 pH 완충 염수가 있다. 화학적 세정제로 조직을 헹구는 기타의 방법은 당업자에 의해 선택될 수 있을 것이다. 조직을 알칼리성 킬레이트화제와 접촉시키고, 조직을 염 함유 산 용액과 접촉시키는 세정 단계는 실질적으로 동일한 세정 효과를 얻도록 실시될 수 있다. 그러나, 용액을 단일의 단계로서 조합하고 실시하지 않을 수도 있다.

본 발명의 바람직한 조성물은 천연의 정상 세포성 조직으로부터 유래된 화학적으로 세정된 조직 기질이다. 세정된 조직 기질은 건조 중량의 약 93%가 거의 무세포성인 텔로펩티드 콜라겐이며, 건조 중량의 약 5% 미만이 당단백질, 글리코스아미노글리칸, 프로테오글리칸, 지질, 비-콜라겐성 단백질 및 핵산 예컨대, DNA 및 RNA이다. 콜라겐의 생체리모델링 성능에 유해한 영향을 미칠 수 있는 결합된 세제 잔류물을 함유하지 않을 경우 조직 기질의 생체리모델 성능이 보존된다. 또한, 세정 단계 동안 조직을 효소 처리하지 않기 때문에 콜라겐 분자는 이의 텔로펩티드 부위를 보유하게 된다.

조직 기질은 진피, 동맥, 정맥, 심막, 심장 판막, 경막, 인대, 장 및 근막으로부터 얻어진다. 가장 바람직한 조성물은 소장으로부터 얻은 화학적으로 세정된 장 콜라겐층이다. 소장의 공급원은 포유류 개체, 예를 들면 사람, 소, 돼지, 양, 개, 염소 또는 말이 적절하지만, 돼지의 소장이 가장 바람직한 공급원이다. 한 바람직한 실시태양에 있어서는, 콜라겐층은 돼지의 소장으로부터 얻은 점막하층을 포함한다. 또다른 실시태양에서는 콜라겐층은 소장의 점막하층 및 기저층을 포함한다. 기저층은 점막근판 및, 천연 조직에 존재할 경우 치밀층으로 구성된다.

본 발명의 가장 바람직한 조성물은 본 발명의 화학적 세정 방법에 의해 세정된 장 콜라겐층으로서, 이는 거의 콜라겐, 주로 I형 콜라겐이며, 이는 건조 중량의 약 5 % 미만의 당단백질, 글리코스아미노글리칸, 프로테오글리칸, 지질, 비-콜라겐성 단백질 및 핵산, 예컨대 DNA 및 RNA를 포함한다. 콜라겐층은 콜라겐의 생체리모델링 성능에 유해한 효과를 미치는 결합된 세제 잔류물을 포함하지 않는다. 콜라겐층은 내인성 핵산, 예를 들면 DNA 및 RNA 및 지질을 비롯한 세포 및 세포성 부스러기를 거의 포함하지 않는다. 또한, 장 콜라겐층은 살균 장치, 용액 및 방부 기법을 사용하여 처리할 경우 무균 상태가 되며 내독소를 포함하지 않게 된다.

콜라겐성 조직 기질이 거의 무세포성이고 실질적으로 비-콜라겐성 세포외 기질 성분을 포함하지 않게 될 경우, 이식 또는 이식편을 위한 인공삽입물이 이로부터 제조될 수 있다. 콜라겐층은 당업계에 공지된 임의의 다양한 기법을 사용하여 봉합되거나 또는 접합될 수 있다. 이러한 층을 접합시키는 기법은 트롬빈, 피브린 또는 합성 소재, 예를 들면 시아노메타크릴레이트 또는 화학적 가교제를 사용할 수 있다. 기타의 기법으로는 레이저, 광 또는 극초단파에 의해 생성되는 열을 이용할 수 있다. 대류 오븐 및 가열된 액체조를 또한 사용할 수도 있다.

본 발명의 콜라겐층을 함께 접합시키는 바람직한 방법으로는 콜라겐층의 열 용접이 있다. 콜라겐의 열 용접 기법은 본 명세서에서 참고로 인용하는 WO95/22301, WO96/31157 및 미국 특허 제5,571,216호에 기재되어 있다. ICL을 우선 종방향으로 절단하고, 이를 딱딱하고 평편한 판에 펼쳐 놓았다. 1 이상의 연속층을 바람직하게는 교대하는 수직 배향으로 서로 중첩시켰다. 제2의 딱딱하고 평편한 판을 상층에 놓고, 두개의 판을 단단하게 조였다. 완전 장치, 판과 콜라겐층을 조이는 장치를, 콜라겐층끼리 접합을 이루는데 충분한 시간 및 조건하에서 가열하였다. 가한 열량은 콜라겐을 접합시키기에는 충분히 높지만, 콜라겐의 비가역적 변성을 일으킬 정도로 높아서는 안된다. 가열 및 접합 시간은 사용한 콜라겐 물질 층의 유형, 수분 함량 및 물질의 두께 및 가한 열에 따라 다르게 결정된다. 통상의 가열 범위는 약 50℃∼약 75℃, 더욱 통상적으로는 60℃∼65℃, 가장 통상적으로는 62℃가 된다. 통상의 시간 범위는 약 7 분∼약 24 시간이 되나, 통상적으로는 약 1 시간이 된다. 열이 가해지는 열의 정도 및 시간의 양은 열 및 시간 변수를 변화시키므로써 통상의 실험으로 용이하게 확인할 수 있을 것이다. 접합 단계는 통상의 오븐 중에서 실시될 수 있으나, 수조, 레이저 에너지 또는 전열 전도를 비롯한 기타의 장치 또는 가열을 사용할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다. 가열 및 접합 단계 직후, 콜라겐층을 공기 중에서 또는 수조 중에서 실온 20℃∼1℃ 범위내의 온도에서 냉각시킨다. 이른바 급냉으로 불리우는 급속 냉각을 사용하여 가열 조작을 중지시키고, 콜라겐층 사이의 효과적인 결합이 생성되도록 하여야 한다. 이 단계를 수행하기 위해서는 콜라겐층을 통상적으로는 수조 중에서, 바람직하게는 약 1℃∼약 10℃, 가장 바람직하게는 약 4℃의 온도로 냉각시킬 수 있다. 냉각 온도 1℃ 미만을 사용할 수 있을지라도, 콜라겐층을 냉각시키지 않도록 주의를 기울여야만 하며, 이러한 콜라겐층의 냉각은 구조적 손상을 일으킬 수 있다. 또한, 10℃ 이상의 온도를 급냉에 사용할 수도 있으나, 이러한 급냉 온도가 너무 높을 경우에는 콜라겐층을 서로 고정시키는데 있어서 냉각 속도가 충분하지 않을 수도 있다.

바람직한 실시태양에 있어서는 콜라겐성 물질을 가교시킨다. 가교는 형성된 인공삽입물 구조에 증가된 강도 및 구조적 보전성을 부여하면서, 이 구조물을 환자에게 이식할 경우 세포에 의한 콜라겐의 생체리모델링을 조절할 수 있다. 콜라겐 가교제의 예로는 글루타르알데히드, 포름알데히드, 카르보디이미드, 헥사메틸렌 디이소시아네이트, 비스이미데이트, 글리옥살, 아디필 클로라이드, 디알데히드 전분 및 특정의 폴리에폭시 화합물, 예컨대 글리콜 디글리시딜 에테르, 폴리올 폴리글리시딜 에테르 및 디카르복실산 디글리시딜에스테르 등이 있다. 탈수소 가열, UV 조사 및/또는 당 (sugar) 매개 기법 등을 사용할 수도 있다. 또한, 콜라겐은 실온에서 숙성 방치시키므로써 자연 가교될 수 있다. 그러나, 이들 예로서 한정될 필요는 없으며, 당업자에게 공지된 기타의 가교제 및 방법을 사용할 수도 있다. 가교제는 숙주 세포에 의해 리모델링될 수 있는 생체적합성을 지닌 물질을 생성하도록 선택되어야만 한다. 가교제는 1-에틸-3-(3-디메틸아미노프로필)카르보디이미드 염산염 (EDC)이 바람직하다. EDC 함유 가교 용액 및 물은 또한 아세톤을 함유한다. EDC를 사용한 가교는 국제 PCT 공보 WO95/22301 및 WO96/31157에 기재되어 있다.

몇몇의 실시태양에 있어서, 추가의 콜라겐층을 가교 전후에, 접합된 콜라겐층의 내부면 또는 외부면에 첨가할 수 있다. 관형 구조물의 경우, 본 명세서에서 참고로 인용한 국제 PCT 공보 WO95/22301에 기재되어 있는 바와 같이, 맥관계 구조물에서와 같이 밀도가 높은 원섬유 콜라겐을 내강면에 첨가하여 최종 사용을 위한 평활한 유동성 표면을 형성하게 된다. 이러한 평활한 콜라겐층은 신생 맥관내막의 형성에서와 같이 숙주 세포의 부착을 촉진시키며, 이는 구조물의 내방성장 및 생체리모델링을 촉진하게 된다. PCT 공보 WO95/22301에 기재되어 있는 바와 같이, 이와 같은 평활한 콜라겐층은 산 추출된 원섬유성 또는 비-원섬유성 콜라겐으로 제조될 수 있으며, 이는 주로 I형 콜라겐이 되나, 또한 기타 유형의 콜라겐을 포함할 수도 있다. 사용한 콜라겐은 다수의 포유류 공급원으로부터 얻을 수 있으며, 통상적으로는 소, 돼지 또는 양의 피부 또는 건이 될 수 있다. 콜라겐은 산 추출법으로 처리하여 순도가 높은 피브릴 분산물 또는 겔을 얻게 된다. 콜라겐은 아세트산, 시트르산 또는 포름산과 같은 약산을 사용하여 콜라겐 공급원으로부터 산 추출할 수 있다. 일단 용액으로 추출되면 NaCl을 사용하여 콜라겐을 염 침전시키고, 원심분리 또는 여과와 같은 표준의 기법을 사용하여 회수할 수 있다. 소의 건에서 얻은 콜라겐을 산 추출하는 기법의 세부사항은 본 명세서에서 참고로 인용하는 미국 특허 출원 제5,106,949호에 기재되어 있다.

헤파린을 공지된 기술을 사용하여 인공삽입물에 가할 수 있다. 예로서 헤파린은 하기와 같은 3 가지의 방법으로 인공삽입물에 가할 수 있다. 우선, 벤즈알코늄 헤파린 (BA-Hep) 용액에 인공삽입물을 침지시키고, 공기 건조시키므로써 인공삽입물에 이 용액을 가할 수 있다. 이러한 절차는 이온 결합된 BA-Hep 착체로 콜라겐을 처리하게 된다. 두번째로 EDC를 사용하여 헤파린을 활성화시킨 후, 헤파린을 콜라겐 섬유에 공유 결합시키는 것이 있다. 세번째로, EDC를 사용하여 콜라겐을 활성화시키고, 콜라겐에 프로타민을 공유 결합시킨 후, 헤파린을 포로타민에 이온 결합시킨다. 당분야에는 많은 기타의 피복, 접합 및 부착 기법이 알려져 있으며, 이러한 방법들을 사용할 수도 있을 것이다.

헤파린 이외에 또는 헤파린 대신에 성장 인자 또는 약학적 제제와 같은 제제를 사용하여 조직 기질 물질을 처리할 수도 있다. 이러한 제제의 예로는 혈관형성 및 상피형성을 촉진하는 성장 인자, 예컨대 대식세포 유래된 성장인자 (MDGF), 혈소판 유래된 성장 인자 (PDGF), 맥관 내피 세포 유래된 성장 인자 (VEGF); 이식 수술로부터의 임의의 잠재적인 감염에 대항하는 항생제; 또는 인공삽입물이 신경 재생을 위한 도관으로서 사용되는 경우 내부 콜라겐층으로 혼입되는 신경 성장 인자 등이 있다. 이러한 약물 이외에 또는 이를 대신하여, 프로테오글리칸 또는 당단백질 또는 글리코스아미노글리칸과 같은 기질 성분이 이 구조물내에 포함될 수 있다.

또한, 형성된 콜라겐성 인공삽입물은 중성의 pH에서 묽은 과아세트산 용액 중에서 살균시킬 수 있다. 콜라겐을 살균시키는 기법은 본 명세서에 참고로 인용하는 미국 특허 제5,460,962호에 기재되어 있다. 바람직한 방법으로는 콜라겐을 중성의 pH에서 묽은 과아세트산 용액으로 소독하는 것이다. 과아세트산의 농도는 약 pH 6∼ pH 8 사이의 중성 pH에서 수중에서 약 0.01∼0.3% v/v가 바람직하다. 또한, 통상적으로 2.5 M㎭의 감마 조사 또는 가스 플라즈마를 이용한 살균을 사용하여 콜라겐을 살균시킬 수 있다. 당분야에서 공지된 콜라겐을 살균시키기 위한 기타의 방법을 또한 사용할 수도 있다.

하기의 실시예는 본 발명의 실시를 보다 잘 예시하기 위해 제공하는 것으로서, 이는 어떠한 방법으로도 본 발명의 범주를 제한하고자 하는 의도는 아니다. 당업자는 본 발명의 정신 및 범주를 벗어나지 않으면서 본 명세서에 기재된 방법을 다양하게 변형시킬 수 있을 것이다.

실시예 1

기계적으로 박리시킨 돼지 소장의 화학적 세정

돼지 소장을 수집하고, 비터링 (Bitterling) 장 세정기 (영국 노팅엄 소재)를 사용하여 기계적으로 박리시키며, 이 기기는 기계적 작용을 조합 사용하여 점막하층으로부터 지방층, 근육층 및 점막층을 강제로 제거하고, 물로 세정한다. 기계적 작용은 본래의 장을 일련의 롤러 사이에 통과시킬때 점막하층으로부터 연속층을 압착 및 박리시키게 되는 일련의 롤러로서 기술될 수 있다. 소장의 점막하층은 주변의 조직에 비해서 상대적으로 딱딱하고 뻣뻣하며, 롤러는 점막하조직으로부터 더 부드러운 성분을 짜내게 된다. 기계 세정에 의해, 장의 점막하조직층만이 잔류하게 된다. 나머지의 절차는 무균 상태에서 실온에서 실시하였다. 화학적 용액은 모두 실온의 것을 사용하였다. 장을 종방향으로 관강 아래로 절단하고, 이를 15 ㎝ 길이로 절단하였다. 물질을 평량하고, 이를 약 100:1 v/v의 용액:장 물질 비로 용기에 넣었다.

A. 장을 함유하는 각각의 용기에 0.22 ㎜ (미크론) 필터 살균된 100 mM 에틸렌디아민테트라아세트산 테트라나트륨염 (EDTA)/10 mM 수산화나트륨 (NaOH) 용액 약 1 ℓ를 첨가하였다. 그후, 용기를 약 18 시간 동안 약 200 rpm으로 교반기 테이블에서 교반하였다. EDTA/NaOH 용액을 교반한 후, 이를 각각의 병으로부터 꺼내었다.

B. 각각의 용기에 0.22 ㎜ 필터 살균된 1 M 염산 (HCl)/1 M 염화나트륨 (NaCl) 용액 약 1 ℓ를 첨가하였다. 그후, 용기를 약 6∼8 시간 동안 약 200 rpm으로 교반기 테이블에서 교반하였다. HCl/NaCl 용액을 교반한 후, 이를 각각의 용기로부터 꺼내었다.

C. 각각의 용기에 0.22 ㎜ 필터 살균된 1 M 염화나트륨 (NaCl)/10 mM 인산염 완충 염수 (PBS) 용액 약 1 ℓ를 첨가하였다. 그후, 용기를 약 18 시간 동안 약 200 rpm으로 교반기 테이블에서 교반하였다. NaCl/PBS 용액을 교반한 후, 이를 각각의 용기로부터 꺼내었다.

D. 각각의 용기에 0.22 ㎜ 필터 살균된 10 mM PBS 용액 약 1 ℓ를 첨가하였다. 그후, 용기를 약 2 시간 동안 약 200 rpm으로 교반기 테이블에서 교반하였다. 인산염 완충 염수를 교반한 후, 이를 각각의 용기로부터 꺼내었다.

E. 각각의 용기에 0.22 ㎜ 필터 살균된 물 약 1 ℓ를 첨가하였다. 그후, 용기를 약 1 시간 동안 약 200 rpm으로 교반기 테이블에서 교반하였다. 물을 교반한 후, 이를 각각의 용기로부터 꺼내었다.

조직학적 분석을 위해 처리군의 시료를 절단 및 고정시켰다. 헤모톡실린 및 에오신 (H&E) 및 메이슨 (Masson) 트리크롬 염색을 대조군의 조직 및 처리군의 조직의 횡단면 및 종단면에 실시하였다. 처리군의 조직 시료에서는 세포 및 세포성 부스러기를 포함하지 않는 것으로 나타났으며, 대조군의 시료에서는 통상적으로 그리고 예상했던 바와 같이 세포성 물질을 함유하는 것으로 나타났다.

실시예 2

돼지 심장 판막의 화학적 세정

체중이 1 파운드인 새끼 돼지로부터 돼지 심장을 입수하고, 얼음상의 생리적 pH 염수에 적재하였다. 4 시간 이내에, 작은 칼 및 겸자를 사용하여 심장 판막을 심장으로부터 떼어내었다. 몇몇의 추가의 해부를 실시하여 심장 판막 주위로부터의 불필요한 조직을 떼어내었다. 다양한 조직학적 분석을 위해 시료 조각을 절단 및 고정시킨 대조군은 심장 판막 1 개를 보유하며, 나머지 심장 판막은 화학적 세정 공정을 수행하였다. 나머지의 절차는 무균 조건하에서 실온하에서 수행하였다. 화학적 용액은 모두 실온에서 사용하였다.

심장 판막을 약 18 시간 동안 교반기 플랫포옴상에서 진탕하면서 100 mM EDTA/10 mM NaOH 용액 1 ℓ에 넣었다. 그후, 1 M HCl/1 M NaCl 1 ℓ에 심장 판막을 넣고, 이를 8 시간 동안 진탕시켰다. 1 M HCl/10 mM 인산염 완충 염수 (PBS) 용액 1 ℓ에 심장 판막을 넣고, 이를 약 18 시간 동안 진탕시켰다. 그후, PBS 중에서 약 2∼4 시간 동안 심장 판막을 헹구고, 이를 진탕하면서 약 1 시간 동안 살균수 중에서 최종적으로 헹구었다. 처리군의 시료 조각을 다양한 조직학적 분석을 위해 절단 및 고정시켰다.

헤모톡실린 및 에오신 (H&E) 및 메이슨 트리크롬 염색을 대조군의 심장 판막 및 처리군의 심장 판막의 횡단면 및 종단면에 실시하였다. 처리군의 심장 판막 시료에서는 세포 및 세포성 부스러기를 포함하지 않는 것으로 나타났으며, 대조군의 시료에서는 통상적으로 그리고 예상했던 바와 같이 세포성 물질을 함유하는 것으로 나타났다.

실시예 3

돼지 동맥, 심막 및 근막의 화학적 세정

체중이 450 파운드인 암퇘지로부터 대퇴골 동맥, 전 심막 및 근막 분절을 입수하였다. 조직을 얼음상의 생리적 pH 염수에 적재하였다. 조직을 더 해부하여 불필요한 조직을 제거하였다. 각각의 조직 시료를 대조용 시료의 경우에는 세정하지 않은채 조직학적 분석을 위해 고정시키고, 나머지의 조직은 화학적 세정 방법을 수행하였다. 나머지의 절차는 무균 상태에서 실온에서 수행하였다. 화학적 용액은 모두 실온의 것을 사용하였다.

조직을 각각 100 mM EDTA/10 mM의 용액 1 ℓ에 넣고, 약 18 시간 동안 교반기 플랫포옴상에서 진탕시켰다. 1 M HCl/1 M NaCl 용액 1 ℓ에 조직을 각각 넣고, 8 시간 동안 진탕시켰다. 그후, 1 M HCl/10 mM 인산염 완충 염수 (PBS) 용액 1 ℓ에 조직을 각각 넣고, 이를 약 18 시간 동안 진탕시켰다. 조직을 PBS중에서 약 2∼4 시간 동안 따로 헹군 후, 이를 최종적으로 살균수 중에서 진탕하면서 약 1 시간 동안 헹구었다. 조직학적 분석을 위해 처리군의 시료를 절단 및 고정시켰다.

헤모톡실린 및 에오신 (H&E) 및 메이슨 트리크롬 염색을 대조군의 조직 및 처리군의 조직의 횡단면 및 종단면에 실시하였다. 처리군의 조직 시료에서는 세포 및 세포성 부스러기를 포함하지 않는 것으로 나타났으며, 대조군의 시료에서는 통상적으로 그리고 예상했던 바와 같이 세포성 물질을 함유하는 것으로 나타났다.

실시예 4

상이한 순서로 수행된 화학적 세정

본 실시예의 절차는 무균 조건하에서 실온에서 수행하였으며, 모든 화학적 용액은 실온의 것을 사용하였다.

기계적으로 박리시킨 돼지 장을 실시예 1에 기재한 바와 같이 5 개의 15 ㎝ 조각으로 절단하였다.

각각의 용기에 0.22 ㎜ 필터 살균된 1 M 염산 (HCl)/1 M 염화나트륨 (NaCl) 용액 약 1 ℓ를 첨가하였다. 그후, 용기를 약 6∼8 시간 동안 약 200 rpm으로 교반기 테이블에서 교반하였다. HCl/NaCl 용액을 교반한 후, 이를 각각의 용기로부터 꺼내었다.

장을 함유하는 각각의 용기에 0.22 ㎜ (미크론) 필터 살균된 100 mM 에틸렌디아민테트라아세트산 (EDTA)/10 mM 수산화나트륨 (NaOH) 용액 약 1 ℓ를 첨가하였다. 그후, 용기를 약 18 시간 동안 약 200 rpm으로 교반기 테이블에서 교반하였다. EDTA/NaOH 용액을 교반한 후, 이를 각각의 병으로부터 꺼내었다.

각각의 용기에 0.22 ㎜ 필터 살균된 1 M 염화나트륨 (NaCl)/10 mM 인산염 완충 염수 (PBS) 용액 약 1 ℓ를 첨가하였다. 그후, 용기를 약 18 시간 동안 약 200 rpm으로 교반기 테이블에서 교반하였다. NaCl/PBS 용액을 교반한 후, 이를 각각의 용기로부터 꺼내었다.

각각의 용기에 0.22 ㎜ 필터 살균된 10 mM (PBS) 용액 약 1 ℓ를 첨가하였다. 그후, 용기를 약 1 시간 동안 약 200 rpm으로 교반기 테이블에서 교반하였다. 인산염 완충 염수를 교반한 후, 이를 각각의 용기로부터 꺼내었다.

마지막으로 각각의 용기에 0.22 ㎜ 필터 살균된 물 약 1 ℓ를 첨가하였다. 그후, 용기를 약 1 시간 동안 약 200 rpm으로 교반기 테이블에서 교반하였다. 물을 교반한 후, 이를 각각의 용기로부터 꺼내었다.

다양한 조직학적 분석을 위해 처리군의 시료를 절단 및 고정시켰다. 헤모톡실린 및 에오신 (H&E) 및 메이슨 트리크롬 염색을 대조군의 조직 및 처리군의 조직의 횡단면 및 종단면에 실시하였다. 처리군의 조직 시료에서는 세포 및 세포성 부스러기를 포함하지 않는 것으로 나타났으며, 대조군의 시료에서는 통상적으로 그리고 예상했던 바와 같이 세포성 물질을 함유하는 것으로 나타났다.

실시예 5

다양한 알칼리 및 킬레이트화제

기계적으로 박리시킨 돼지 장의 점막하조직의 세정은 실시예 1에 의해 수행하였다. 이 절차는 무균 조건 및 실온에서 수행하였으며, 모든 화학적 용액은 실온 의 것을 사용하였다. 실시예 1의 화학적 세정 방법은 단계 A의 알칼리성 킬레이트화제 대신에 유사한 특성을 갖는 기타의 알칼리성 킬레이트화제를 사용한 것을 제외하고 수행하였다.

A. 장을 함유하는 각각의 용기에 0.22 ㎜ (미크론) 필터 살균된 100 mM 에틸렌비스(옥시에틸렌니트릴로)테트라아세트산 (EGTA)/10 mM NaOH; 100 mM EDTA/10 mM 수산화칼슘 [Ca(OH)₂]; 또는 100 mM EDTA/10 mM 탄산칼륨 (K₂CO₃) 용액 약 1 ℓ를 첨가하였다. 그후, 용기를 약 18 시간 동안 약 200 rpm으로 교반기 테이블에서 교반하였다. 알칼리성 킬레이트화제 용액을 교반한 후, 이를 각각의 병으로부터 꺼내었다.

D. 각각의 용기에 0.22 ㎜ 필터 살균된 10 mM PBS 용액 약 1 ℓ를 첨가하였다. 그후, 용기를 약 1 시간 동안 약 200 rpm으로 교반기 테이블에서 교반하였다. 인산염 완충 염수를 교반한 후, 이를 각각의 용기로부터 꺼내었다.

E. 마지막으로, 각각의 용기에 0.22 ㎜ 필터 살균수 약 1 ℓ를 첨가하였다. 그후, 용기를 약 1 시간 동안 약 200 rpm으로 교반기 테이블에서 교반하였다. 물을 교반한 후, 이를 각각의 용기로부터 꺼내었다. 조직학적 분석을 위해 시료를 고정시켰다.

실시예 6

다양한 산 및 염 제제

실시예 1의 기계적으로 박리시킨 돼지 장의 점막하조직은 단계 B에서 대체 염 제제 또는 대체 산 제제를 사용하여 화학적으로 세정시켰다. 이 절차는 무균 조건 및 실온에서 수행하였으며, 모든 화학적 용액은 실온의 것을 사용하였다.

B. 각각의 용기에 0.22 ㎜ 필터 살균된 1 M 아세트산 (CH₃COOH)/1 M 염화나트륨 (NaCl) 또는 1 M 황산 (H₂SO₄)/1 M NaCl 용액 약 1 ℓ를 첨가하였다. 그후, 용기를 약 6∼8 시간 동안 약 200 rpm으로 교반기 테이블에서 교반하였다. 용액을 교반한 후, 이를 각각의 용기로부터 꺼내었다.

C. 각각의 용기에 0.22 ㎜ 필터 살균된 1 M 염화나트륨 (NaCl)/10 mM 인산염 완충 염수 (PBS) 용액 약 1 ℓ를 첨가하였다. 그후, 용기를 약 18 시간 동안 200 rpm으로 교반기 테이블에서 교반하였다. NaCl/PBS 용액을 교반한 후, 이를 각각의 용기로부터 꺼내었다.

D. 각각의 용기에 0.22 ㎜ 필터 살균된 10 mM PBS 용액 약 1 ℓ를 첨가하였다. 그후, 용기를 약 1 시간 동안 200 rpm으로 교반기 테이블에서 교반하였다. 인산염 완충 염수를 교반한 후, 이를 각각의 용기로부터 꺼내었다.

E. 마지막으로, 각각의 용기에 0.22 ㎜ 필터 살균수 약 1 ℓ를 첨가하였다. 그후, 용기를 약 1 시간 동안 200 rpm으로 교반기 테이블에서 교반하였다. 물을 교반한 후, 이를 각각의 용기로부터 꺼내었다.

실시예 7

셀룰로즈 아세테이트 겔 전기영동 및 알시안 블루 분석에 의해 측정한 ICL의 글리코스아미노글리칸 (GAG) 성분

ICL의 GAG 성분을 측정하기 위해, 셀룰로스 아세테이트 겔 전기 영동에 이어서 알리시안 블루 염색을 화학적으로 세정한 ICL 추출물에 수행하였다.

ICL 시료를 실시예 1에 개략적으로 기재된 화학적 세정 방법으로 수행하고, 0.125 ㎠의 조각으로 절단, 에펜도프관에 넣었다. 시료를 소화시키기 위해, 파파인 (0.1 M의 인산나트륨, 0.1 M의 염화나트륨, 0.005 M의 EDTA, 0.9 ㎎/㎖ 시스테인 중의 0.1 ㎎/㎖의 파파인, pH 5.8)을 각 에펜도프관에 첨가하고, 이를 약 18 시간 동안 60℃에서 배양하였다. 또한, 함량을 알고 있는 GAG (헤파린)를 함유하는 표준물을 동시에 제조하였다. Dowex (0.4 g, HCl형) 및 3 ㎖의 물을 첨가하였다. Dowex 수지를 제거하기 위해 회전시킨 후, 1 ㎖를 제거하고, 이를 동결건조시켰다. 그후, 시료를 100 ㎕의 정제수 중에서 재수화시키고, 이를 약 5 분 동안 원심분리시켰다.

Newton et al. (1974)의 기법을 사용하여 셀룰로즈-아세테이트 시이트상에서 시료를 분리하였다. 셀룰로즈-아세테이트를 0.1 M의 염화리튬/EDTA 완충액 (pH 5.8)에 침지하고, 이를 약하게 블롯팅시켰다. 시료 (각각 5 ㎕)를 캐쏘드 단부에서 시이트에 가하고, 이를 5 ㎃에서 30 분 동안 전기영동 처리하였다.

전기영동에 이어서, 알시안 블루 염색 용액 [50% 에틸렌 알콜 중의 0.2% 알시안 블루 8GX, 0.05 M의 염화마그네슘, 0.025 M의 아세트산나트륨 완충액 (pH 5.8)]에 시이트를 즉시 침지시키고, 이를 약 30 분 동안 실온에서 교반기 플랫포옴에서 교반하였다. 탈색 용액 [50% 에틸렌 알콜 중의 0.05 M 염화마그네슘, 0.025 M 아세트산나트륨 완충액 (pH 5.8)]의 3 회 이상의 세정물로 총 약 30 분 동안 교반기 플랫포옴상에서 시이트를 탈색시켰다. 파파인 소화된 ICL의 경우에는 검출 가능한 GAG 염색이 관찰되지 않았으나, 헤파린 표준물에서는 0.005 ㎍ 정도가 검출되었다.

이러한 결과에 의하면, 화학적으로 세정된 ICL을 보유하는 GAG의 총량은 1 % 미만 (건조 중량)이 된다는 것을 알 수 있다.

실시예 8

염화메틸렌 추출에 의해 측정한 ICL의 지질 함량

ICL을 플라스틱 판에 평편하게 놓고, 2 시간 동안 공기 건조시켰다. 건조시킨 후, ICL을 약 1 ㎠의 작은 조각으로 절단하고, 1.100 g을 속슬레 원통여지(thimble)에 옮겼다.

상표명 Kontes의 둥근 바닥 플라스크 24/40에 염화메틸렌 90 ㎖를 첨가하였다. 속슬레를 가스 후드내에서 플라스크의 바닥이 가열 수조 중에 장치하고 증류기를 통해 얼음 냉각수가 흐르게 하였다.

속슬레를 분해한 후 4 시간 동안 추출을 실시하였다. 용매 및 추출된 물질을 함유하는 둥근 바닥 플라스크를 염화메틸렌이 증발되어 5 ㎖만이 남게 될 때까지 가열된 수조에 방치하였다. 염화메틸렌을 11×13 유리 배양관으로 옮기고, 나머지 용매를 증발로 제거하였다. 이 관에 염화메틸렌 2 ㎖를 첨가하고, 관에 뚜껑을 씌운 직후, 이 관을 -20℃의 냉각기에 넣었다.

추출된 물질의 중량을 측정하였다. 유리관을 얼음조에 넣었다. Ludiag 1.12 ㎖ 알루미늄 칭량(weigh) 보트의 중량을 미량천칭 (Spectrum Supermicro)으로 평량하였다. 재현탁된 추출액 10 ㎕를 칭량 보트에 첨가하고, 칭량 보트를 45 초 동안 핫 플레이트상에 두어 용매를 증발로 제거하였다. 칭량 보트를 약 190 초 동안 냉각시키고, 이를 미량천칭에 넣었다. 그후, 추출물 부피 20 ㎕ 및 30 ㎕에 대해서도 이와 같은 절차를 반복하였다.

결과는, 지질 비율이 건식 화학적으로 세정한 ICL에서 약 0.7 중량% 미만이라는 것을 알 수 있다. 반대로, 화학적으로 세정하지 않은 ICL은 높은 비율의 지질을 함유하고 있으며, 본 발명의 방법에 의해 화학적으로 세정되지 않은 건조 ICL에서는 약 1.5 중량% 이상의 지질을 함유하고 있다는 것을 알 수 있다.

실시예 9

ICL의 아미노산 분석

콜라겐은 아미노산 글리신-X-Y(이때, X는 프롤린이고, Y는 히드록시프롤린임)의 반복 삼연부를 지니는 3중 나선형 부위를 특징으로 하는 단백질이다. 히드록시프롤린은 종종 콜라겐을 인식하고 이를 정량화하는 아미노산으로서 사용된다. 참고 문헌 [Udenfriend, Science, 152:1335-1340, 1966].

ICL의 완전 아미노산 분석을 측정하기 위해서, PICO-TAG HPLC를 기계적으로 세정한 (화학적으로 세정하지 않은) 돼지의 ICL 및 화학적으로 세정한 ICL에 수행하였다. 히드록시프롤린 함량을 두 물질에 대해 측정하여 비교하였다.

0.31∼약 0.36 g으로 평량된 각각의 조건으로부터의 ICL 시료 조각을 CEM AVC80 오븐 (CEM 코포레이션; 미국 노쓰 캐롤라이나주 매튜 소재)을 사용하여 추가로 건조시켰다. 중량이 약 9.5∼약 13.1 ㎎인 건조된 ICL 조각으로부터 더 작은 시료로 절단하였다. 시료를 스크류 캡 배양관에 넣고, 시료를 6 M HCl 중의 1% 페놀 중에서 110℃에서 약 16 시간 동안 가수분해시켰다 (각각의 조건에 대해 n=3). ICL 가수분해물을 0.1 M HCl로 희석하여 물질의 농도를 1 ㎎/㎖로 정규화시켰다. 표시한 유리관 (6×55)에 20 ㎖의 가수분해물 및 8 ㎖의 1.25 mmol/㎖의 L-노르류신을 내부 표준물로서 첨가하였다. 시료를 냉각시키고, 동결건조시켰다. 2:2:1의 에탄올:물:트리에틸아민 20 ㎖를 시험관에 첨가하고, 냉각, 동결건조시켜 시료를 다시 건조시켰다. 그후, 제제 (7:1:1:1의 에탄올:물:트리에틸아민:PITC) 20 ㎖를 첨가한 후, 냉각, 동결건조시켜 시료를 20 분 동안 실온에서 유도체화하였다. 시료를 PICO-TAG Sample Diluent 200 ㎖에 최종 현탁시키고, 이를 HPLC 바이알로 분취하였다.

아미노산 표준물은 하기와 같이 제조하였다. 아미노산 표준물 (Product #: A-9531, 시그마) 0.1 ㎖를 0.1 M의 HCl 1.9 ㎖에 첨가하였다. HCl 0.1 M을 사용하여 1:1로 5 회 연속 희석하였다. 각 일련의 희석물에 대한 부피 100 ㎖ 및 L-노르류신 1.25 mmol/㎖를 함께 유리관 (6×55)에 첨가한 후, ICL 시료와 동일한 방법으로 제조하였다.

시료 및 표준물을 3.9×150 ㎜ PICO-TAG 아미노산 컬럼 (Part# 88131; 워터즈 코포레이션, 미국 매사츄세츠주 밀포드 소재)에서 실시하였다. 시료에 대해서 10 ㎖ 및 표준물 20 ㎖의 주입을 각각에 대해 3 회 분석하였다.

결과는 화학적으로 세정한 ICL 물질의 경우, 물질중의 주요 콜라겐성 아미노산의 함량이 정제된 콜라겐 제제의 함량에 가깝다는 것을 알 수 있다. 콜라겐 함량의 측정으로서 히드록시프롤린을 사용함으로써 ICL에서의 콜라겐의 중량 비율을 계산하여 콜라겐 건조 중량의 약 93% 이상이 됨을 알았다. 반대로, 화학적으로 세정하지 않은 ICL은 높은 비율의 비-콜라겐성 아미노산을 함유하여 ICL의 건조 중량의 약 11∼25%가 비-콜라겐성 물질이었다.

전술한 발명은 명료한 기재 및 이해를 목적으로 예시 및 실시예에서 상세하게 기재하기는 하였으나, 당업자라면 하기에 첨부된 특허청구의 범위의 범주내에서 특정한 변형예 및 수정예를 실시할 수 있을 것이라는 점은 명백하다.

Claims

(a) 인간을 제외한 포유류의 천연 조직을 알칼리성 용액 중에서 1∼200 mM의 킬레이트화제와 접촉시키는 단계,

(b) 염을 함유하는 0.5∼2 M의 산성 용액과 상기 조직을 접촉시키는 단계,

(c) 생리적 pH로 완충된 0.1∼2 M의 염 용액과 상기 조직을 접촉시키는 단계,

(d) 상기 조직을 헹굼제와 접촉시키는 단계를 포함하는, 거의 콜라겐성인 조직 기질을 얻기 위하여, 세제 및 효소를 사용하지 않고도 인간을 제외한 포유류의 천연 조직으로부터 비-콜라겐성 성분을 제거하는 방법.
제1항에 있어서, 단계 (a)의 킬레이트화제는 에틸렌디아민테트라아세트산 (EDTA) 및 에틸렌비스(옥시에틸렌니트릴로)테트라아세트산 (EGTA)으로 구성된 군에서 선택되는 것인 방법.
삭제
제2항에 있어서, 킬레이트화제의 농도가 50∼150 mM인 방법.
제1항에 있어서, 단계 (a)의 알칼리성 제제는 수산화나트륨, 수산화칼슘, 탄산나트륨 또는 과산화나트륨으로 구성된 군에서 선택되는 것인 방법.
제5항에 있어서, 알칼리성 제제의 농도가 0.001∼1 M인 방법.
제1항에 있어서, 단계 (b)의 산성 용액은 염산(HCl), 아세트산(CH₃COOH) 및 황산(H₂SO₄)으로 구성된 군에서 선택되는 것인 방법.
삭제
제7항에 있어서, 산성 용액의 농도가 0.95∼1.25 M인 방법.
제7항에 있어서, 산성 용액의 농도가 1 M인 방법.
제1항에 있어서, 산-염 용액의 pH가 0∼1인 방법.
제1항에 있어서, 산-염 용액의 pH가 0∼0.75인 방법.
제1항에 있어서, 산-염 용액의 pH가 0.1∼0.5인 방법.
제1항에 있어서, 단계 (b) 또는 단계 (c)의 염이 무기 염인 방법.
제1항에 있어서, 단계 (b) 또는 단계 (c)의 염이 염화나트륨 (NaCl), 염화칼슘 (CaCl₂), 염화칼륨 (KCl) 및 황산암모늄 (NH₃SO₄)로 구성된 군에서 선택되는 것인 방법.
삭제
제1항에 있어서, 단계 (b) 또는 단계 (c)의 염은 그 농도가 0.75∼1.25 M인 방법.
제1항에 있어서, 단계 (b) 또는 단계 (c)의 염은 그 농도가 1 M인 방법.
제1항에 있어서, 조직은 진피, 동맥, 정맥, 심막, 심장 판막, 경막, 인대, 뼈, 연골, 근막 및 장으로 구성된 군에서 선택되는 것인 방법.
제19항에 있어서, 장 조직은 소장의 점막하층을 포함하는 것인 방법.
제19항에 있어서, 조직은 소, 돼지, 양, 개, 염소 또는 말에서 유래된 것인 방법.
제1항에 있어서, 헹굼제는 물 또는 생리적 완충 염수로 구성된 군에서 선택되는 것인 방법.
제1항에 있어서, 단계 (b)는 단계 (a) 이전에 수행하는 것인 방법.
(a) 인간을 제외한 포유류의 천연 조직을 pH 8∼12에서 에틸렌디아민테트라아세트산의 염기성 용액과 접촉시키는 단계,

(b) pH 0∼1에서 염화나트륨의 산성 용액과 상기 조직을 접촉시키는 단계,

(c) 소정의 pH에서 염화나트륨 용액과 상기 조직을 접촉시키는 단계,

(d) 상기 조직을 헹구는 단계를 포함하는, 거의 콜라겐성인 조직 기질을 얻기 위하여, 세제 및 효소를 사용하지 않고도 인간을 제외한 포유류의 천연 조직으로부터 비-콜라겐성 성분을 제거하는 방법.
제1항 또는 제24항의 방법에 의해 얻은 생체리모델링성 콜라겐성 조직 기질.
콜라겐 및 엘라스틴을 포함하는 손상되거나 또는 병에 걸린 신체 일부를 회복 또는 대체하기 위한 이식을 위해, 인간을 제외한 포유류의 천연 조직에서 발견되는 비-콜라겐성 및 비-엘라스틴성 성분을 거의 포함하지 않고 세제 잔류물 및 효소 변형을 포함하지 않게 되는, 인간을 제외한 포유류의 천연 조직으로부터 유래된 생체리모델링성 콜라겐성 조직 기질 조성물.
조직 기질이 텔로펩티드 콜라겐; 엘라스틴 (총 조성물의 10% 미만); 비-콜라겐성 및 비-엘라스틴성 성분 (총 조성물의 5% 미만)을 포함하는, 소장의 천연 점막하층으로부터 유래하고, 세제 잔류물을 포함하지 않는 생체리모델링성 콜라겐성 조직 기질 조성물.