JPWO2018155485A1 - 新規微生物、およびそれを用いたウロリチン類の製造方法 - Google Patents
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Abstract
本発明が解決しようとする課題は、高いウロリチン類産生能を有する新規微生物の提供、及びそれを用いたウロリチン類の製造方法の提供であり、該課題を、ウロリチン類を産生する、エガセラ属に属する微生物で解決する。
Description
本発明は、新規微生物、およびそれを用いたウロリチン類の製造方法に関する。
ウロリチンＡやウロリチンＣに代表されるウロリチン類は、ザクロ、ラズベリー、ブラックベリー、クラウドベリー、イチゴ、クルミなどに含まれるエラジタンニン等に由来するエラグ酸の代謝物として知られている。
エラジタンニンは加水分解性タンニンに分類され、摂取されると体内で加水分解され、エラグ酸に変換されることが知られている。また、果実等にはエラグ酸としても存在している。このようなエラジタンニンやエラグ酸は体内の腸管吸収性は非常に低いが、これらが摂取された際、ヒト結腸微生物叢によって更に代謝されてウロリチン類に変換されることが知られている。
エラジタンニンは加水分解性タンニンに分類され、摂取されると体内で加水分解され、エラグ酸に変換されることが知られている。また、果実等にはエラグ酸としても存在している。このようなエラジタンニンやエラグ酸は体内の腸管吸収性は非常に低いが、これらが摂取された際、ヒト結腸微生物叢によって更に代謝されてウロリチン類に変換されることが知られている。
例えば、生体内におけるウロリチン類の産生については、ゲラニインなどのエラジタンニンをラットに摂取させた後、尿中のウロリチン類を分析することによって、ウロリチン類が生じることが報告されている（非特許文献１）。
また、ヒトにおいて、プニカラジンを主としたエラジタンニンを含むザクロ抽出物を摂取後、尿中においてウロリチン類が検出され、特にウロリチンＡ及びウロリチンＣが主要なエラグ酸代謝物であることが報告されている（非特許文献２）。
さらに、ウロリチンＡには抗酸化作用（非特許文献３）、抗炎症作用（非特許文献４）、抗糖化作用（非特許文献５）、マイトファジーの促進作用（非特許文献６）などの機能を有することが報告されており、抗老化機能を有する素材としての開発が期待されている。
また、ヒトにおいて、プニカラジンを主としたエラジタンニンを含むザクロ抽出物を摂取後、尿中においてウロリチン類が検出され、特にウロリチンＡ及びウロリチンＣが主要なエラグ酸代謝物であることが報告されている（非特許文献２）。
さらに、ウロリチンＡには抗酸化作用（非特許文献３）、抗炎症作用（非特許文献４）、抗糖化作用（非特許文献５）、マイトファジーの促進作用（非特許文献６）などの機能を有することが報告されており、抗老化機能を有する素材としての開発が期待されている。
これらのウロリチン類を合成する方法としては、２‐ブロモ‐５‐メトキシ安息香酸を出発原料として脱メチル化によって２‐ブロモ‐５‐ヒドロキシ安息香酸とし、レゾルシノールと反応させることによってウロリチンＡを得る方法などが報告されている（非特許文献７）。しかし、ウロリチン類を機能性食品（飲料、サプリメントを含む。）の素材として利用する目的には、化学合成法は適さない。
近年、ウロリチン類の一種であるウロリチンＣをエラグ酸から産生する腸内細菌としてGordonibacter urolithinfaciensが分離、同定され、この腸内細菌を用いてエラグ酸を発酵させることによってウロリチンＣを産生させる方法が報告された（特許文献１、非特許文献８）。しかし、発酵液中のウロリチンＣの蓄積濃度は２ｍｇ／Ｌ程度であり、斯かる目的には適さないものであった。また、Gordonibacter urolithinfaciensの近縁種であるGordonibacter pamelaeae DSM 19378株 はウロリチンを産生する能力を有しているが、Eggerthella lenta DSM 2243株、Eggerthella sinensis DSM 16107株、Paraeggerthella honkongensis DSM 16106株などの他の腸内細菌はウロリチン類を産生する能力を有していないことが報告されている（非特許文献８）。
J. Agric. Food Chem. 56, 393-400 (2008)
Mol. Nutr. Food Res. 58, 1199-1211 (2014)
Biosci. Biotechnol. Biochem. 76, 395-399 (2012)
J. Agric. Food Chem. 60, 8866-8876 (2012)
Mol. Nutr. Food Res. 55, S35-S43 (2011)
Planta Med, 77, 1110-1115 (2011)
J. Agric. Food Chem.,56, 393-400 (2008)
Food Func., 5, 8, 1779-1784 (2014)
本発明は、高いウロリチン類産生能を有する新規微生物の提供、及びそれを用いたウロリチン類の製造方法の提供を課題とする。
上記課題を解決するために、本発明者らは、目的とする微生物を鋭意探索し、高いウロリチン類産生能を有する新規微生物を見出して、本発明を完成させた。
本発明は以下の通りである。
本発明は以下の通りである。
〔１〕
ウロリチン類を産生する、エガセラ属に属する微生物。
〔２〕
エラグ酸を原料として前記ウロリチン類を産生する、〔１〕に記載の微生物。
〔３〕
前記ウロリチン類がウロリチンＣである、〔１〕又は〔２〕に記載の微生物。
〔４〕
前記エガセラ属に属する微生物が、エガセラ・エスピー（Eggerthella sp.） DC 3563（NITE BP-02376）である、〔１〕〜〔３〕のいずれかに記載の微生物。
〔５〕
下記工程（ａ）を含むウロリチン類の製造方法。
工程（ａ）：ウロリチン類の原料を含有する溶液において、該ウロリチン類の原料からウロリチン類を産生する能力を有するエガセラ属に属する微生物に、該ウロリチン類の原料からウロリチン類を産生させる工程。
〔６〕
前記ウロリチン類の原料がエラグ酸である、〔５〕に記載の製造方法。
〔７〕
前記ウロリチン類がウロリチンＣである、〔５〕又は〔６〕に記載の製造方法。
〔８〕
気相及び／又はウロリチン類の原料を含有する溶液が水素を含む環境下で、工程（ａ）が行われる、〔５〕〜〔７〕のいずれかに記載の製造方法。
〔９〕
前記ウロリチン類の原料を含有する溶液が、α‐シクロデキストリン、β‐シクロデキストリン及びγ‐シクロデキストリン、並びにそれらの誘導体からなる包摂化合物の群から選択される１種以上をさらに含む、〔５〕〜〔８〕のいずれかに記載の製造方法。
〔１０〕
前記包摂化合物が、β‐シクロデキストリン及びγ‐シクロデキストリン、並びにそれらの誘導体からなる群から選択される１種以上である、〔９〕に記載の製造方法。
〔１１〕
配列番号１で表される、エガセラ・エスピー（Eggerthella sp.） DC 3563（NITE BP-02376）の16S rRNA遺伝子。
ウロリチン類を産生する、エガセラ属に属する微生物。
〔２〕
エラグ酸を原料として前記ウロリチン類を産生する、〔１〕に記載の微生物。
〔３〕
前記ウロリチン類がウロリチンＣである、〔１〕又は〔２〕に記載の微生物。
〔４〕
前記エガセラ属に属する微生物が、エガセラ・エスピー（Eggerthella sp.） DC 3563（NITE BP-02376）である、〔１〕〜〔３〕のいずれかに記載の微生物。
〔５〕
下記工程（ａ）を含むウロリチン類の製造方法。
工程（ａ）：ウロリチン類の原料を含有する溶液において、該ウロリチン類の原料からウロリチン類を産生する能力を有するエガセラ属に属する微生物に、該ウロリチン類の原料からウロリチン類を産生させる工程。
〔６〕
前記ウロリチン類の原料がエラグ酸である、〔５〕に記載の製造方法。
〔７〕
前記ウロリチン類がウロリチンＣである、〔５〕又は〔６〕に記載の製造方法。
〔８〕
気相及び／又はウロリチン類の原料を含有する溶液が水素を含む環境下で、工程（ａ）が行われる、〔５〕〜〔７〕のいずれかに記載の製造方法。
〔９〕
前記ウロリチン類の原料を含有する溶液が、α‐シクロデキストリン、β‐シクロデキストリン及びγ‐シクロデキストリン、並びにそれらの誘導体からなる包摂化合物の群から選択される１種以上をさらに含む、〔５〕〜〔８〕のいずれかに記載の製造方法。
〔１０〕
前記包摂化合物が、β‐シクロデキストリン及びγ‐シクロデキストリン、並びにそれらの誘導体からなる群から選択される１種以上である、〔９〕に記載の製造方法。
〔１１〕
配列番号１で表される、エガセラ・エスピー（Eggerthella sp.） DC 3563（NITE BP-02376）の16S rRNA遺伝子。
本発明によれば、高いウロリチン類産生能を有する新規微生物が提供でき、及び、それを用いたウロリチン類の効率的な製造方法が提供できる。
そして、該製造方法により得られるウロリチン類を、化粧品、医薬部外品、医療用品、衛生用品、医薬品、飲食品（サプリメントを含む。）等に用いることにより、抗酸化、抗炎症、抗糖化、マイトファジーの促進作用などの効果を得ることが期待できる。
そして、該製造方法により得られるウロリチン類を、化粧品、医薬部外品、医療用品、衛生用品、医薬品、飲食品（サプリメントを含む。）等に用いることにより、抗酸化、抗炎症、抗糖化、マイトファジーの促進作用などの効果を得ることが期待できる。
本発明は、新規微生物に係る発明（第一の発明）、それを用いたウロリチン類の製造方法に係る発明（第二の発明）、及び新規微生物の16S rRNA遺伝子（第三の発明）を含む。
＜１．第一の発明＞
本発明の第一の発明は、新規微生物に係る発明である。新規微生物とは、具体的には、ウロリチン類を産生する、エガセラ（Eggerthella）属に属する微生物である。以下、同微生物を「本微生物」などと記載することがある。
本発明の第一の発明は、新規微生物に係る発明である。新規微生物とは、具体的には、ウロリチン類を産生する、エガセラ（Eggerthella）属に属する微生物である。以下、同微生物を「本微生物」などと記載することがある。
（ウロリチン類を産生する、エガセラ（Eggerthella）属に属する微生物）
本発明の第一の発明は、ウロリチン類を産生する、エガセラ（Eggerthella）属に属する微生物である。本微生物は、好ましくはエガセラ・エスピー（Eggerthella sp.） DC 3563（NITE BP-02376）株である。以下、同株を「本菌株」や「DC 3563株」などと記載することがある。
本菌株は、健常ヒト糞便を分離源として分離された。本菌株は、2016年11月11日に独立行政法人製品評価技術基盤機構（ＮＩＴＥ） 特許微生物寄託センター（〒292-0818 千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8 122号室）に、NITE BP-02376の受託番号でブダペスト条約に基づいて国際寄託された。
本発明の第一の発明は、ウロリチン類を産生する、エガセラ（Eggerthella）属に属する微生物である。本微生物は、好ましくはエガセラ・エスピー（Eggerthella sp.） DC 3563（NITE BP-02376）株である。以下、同株を「本菌株」や「DC 3563株」などと記載することがある。
本菌株は、健常ヒト糞便を分離源として分離された。本菌株は、2016年11月11日に独立行政法人製品評価技術基盤機構（ＮＩＴＥ） 特許微生物寄託センター（〒292-0818 千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8 122号室）に、NITE BP-02376の受託番号でブダペスト条約に基づいて国際寄託された。
また、本菌株は、それと実質的に同等の菌株であってもよい。実質的に同等の菌株とは、ウロリチン類を産生する、エガセラ（Eggerthella）属に属する微生物であって、本菌株と同程度の高いウロリチン類産生能を有する菌株をいう。また、その16S rRNA遺伝子の塩基配列が、本菌株の16S rRNA遺伝子の塩基配列（配列番号１）と９８％以上、好ましくは９９％以上、より好ましくは１００％の相同性を有し、且つ、好ましくは本菌株と同一の菌学的性質を有する。さらに、本菌株は、本菌株、又はそれと実質的に同等の菌株から、変異処理、遺伝子組換え、自然変異株の選択等によって育種された菌株であってもよい。
本微生物は、既知のウロリチン類産生菌であるGordonibacter urolithinfaciensと比較し、高いウロリチン類産生能を有する。ウロリチン類産生能は、実施例に記載した方法と同様にして測定することができる。
本微生物が産生するウロリチン類の原料は、該原料を用いて本微生物によりウロリチン類が産生されれば特に制限されないが、例えば、エラグ酸；該エラグ酸の前駆体である、プニカラジン、ゲラニインなどのエラジタンニンなどが挙げられる。このうち、本微生物によるウロリチン類の産生効率が他の原料に比べて多いことからエラグ酸が好ましい。すなわち、本微生物は、好ましくは、エラグ酸を原料としてウロリチン類を産生する。ウロリチン類の原料については、後述する本発明の第二の発明における「ウロリチン類の原料」欄に記載した内容が適用される。
（ウロリチン類を産生する、エガセラ（Eggerthella）属に属する微生物の培養条件）
本微生物は、例えば、培養することにより容易に増殖できる。その方法は、本微生物が増殖できる限り特に限定されず、本微生物の増殖に通常用いられる方法を必要により適宜変更して用いることができる。以下にその例を記載するが、後述する本発明の第二の発明における「ウロリチン類の産生」欄に記載した各態様で培養することもできる。
本微生物は、例えば、培養することにより容易に増殖できる。その方法は、本微生物が増殖できる限り特に限定されず、本微生物の増殖に通常用いられる方法を必要により適宜変更して用いることができる。以下にその例を記載するが、後述する本発明の第二の発明における「ウロリチン類の産生」欄に記載した各態様で培養することもできる。
本微生物の培養温度は、好ましくは２０℃以上、より好ましくは２５℃以上、さらに好ましくは３０℃以上であり、一方で、好ましくは４２℃以下、より好ましくは４０℃以下、さらに好ましくは３７℃以下である。培養培地としては、特に限定されず、通常用いられる培地を必要により適宜変更して用いることができる。例えば、OXIO社製のANAEROBE BASAL BROTH（ABB）培地、Oxoid社製のWilkins-Chalgren Anaerobe Broth（CM0643）、日水製薬株式会社製のGAM培地、変法GAM培地等を使用することができる。
さらに、例えば、水溶性の有機物を炭素源として加えることができる。水溶性の有機物として、以下の化合物を挙げることができる。例えば、ソルボース、フラクトース、グルコース、ブドウ糖などの糖類；メタノールなどのアルコール類；吉草酸、酪酸、プロピオン酸、酢酸、ギ酸など有機酸類などである。
炭素源としての培地に加える有機物の濃度は、効率的に発育させるために適宜調節することができる。通常、０．１〜１０ｗｔ／ｖｏｌ％の範囲で選択できる。
炭素源としての培地に加える有機物の濃度は、効率的に発育させるために適宜調節することができる。通常、０．１〜１０ｗｔ／ｖｏｌ％の範囲で選択できる。
上記の炭素源に加えて、培地には、窒素源が加えられる。窒素源としては、通常の培養や発酵に用いうる各種の窒素化合物を用いることができる。
好ましい無機窒素源は、アンモニウム塩、及び硝酸塩である。より好ましくは、硫安、塩化アンモニウム、リン酸アンモニウム、リン酸水素アンモニウム、クエン酸トリアンモニウム、硝酸カリウム及び硝酸ソーダである。
一方、好ましい有機窒素源は、アミノ酸類、酵母エキス、ペプトン類（例えば、ポリペプトンＮなど）、肉エキス（例えば、ラブ‐レムコ末、ブイヨンなど）、肝臓エキス、消化血清末などである。より好ましい有機窒素源は、アルギニン、システイン、シトルリン、リジン、酵母エキス、ペプトン類（例えば、ポリペプトンＮなど）である。
好ましい無機窒素源は、アンモニウム塩、及び硝酸塩である。より好ましくは、硫安、塩化アンモニウム、リン酸アンモニウム、リン酸水素アンモニウム、クエン酸トリアンモニウム、硝酸カリウム及び硝酸ソーダである。
一方、好ましい有機窒素源は、アミノ酸類、酵母エキス、ペプトン類（例えば、ポリペプトンＮなど）、肉エキス（例えば、ラブ‐レムコ末、ブイヨンなど）、肝臓エキス、消化血清末などである。より好ましい有機窒素源は、アルギニン、システイン、シトルリン、リジン、酵母エキス、ペプトン類（例えば、ポリペプトンＮなど）である。
さらに、炭素源や窒素源に加えて、他の有機物あるいは無機物を培地に加えることもできる。例えば、ビタミンなどの補因子や各種の塩類等の無機化合物を培地に加えることによって、増殖や活性を増強できる場合もある。例えば、無機化合物、ビタミン類など、動植物由来の微生物増殖補助因子として以下のものを挙げることができる。
無機化合物 ビタミン類
リン酸二水素カリウム ビオチン
硫酸マグネシウム 葉酸
硫酸マンガン ピリドキシン
塩化ナトリウム チアミン
塩化コバルト リボフラビン
塩化カルシウム ニコチン酸
硫酸亜鉛 パントテン酸
硫酸銅 ビタミンB12
明ばん チオオクト酸
モリブデン酸ソーダ ｐ‐アミノ安息香酸
塩化カリウム
ホウ酸等
塩化ニッケル
タングステン酸ナトリウム
セレン酸ナトリウム
硫酸第一鉄アンモニウム
酢酸ナトリウム三水和物
硫酸マグネシウム七水和物
硫酸マンガン四水和物
無機化合物 ビタミン類
リン酸二水素カリウム ビオチン
硫酸マグネシウム 葉酸
硫酸マンガン ピリドキシン
塩化ナトリウム チアミン
塩化コバルト リボフラビン
塩化カルシウム ニコチン酸
硫酸亜鉛 パントテン酸
硫酸銅 ビタミンB12
明ばん チオオクト酸
モリブデン酸ソーダ ｐ‐アミノ安息香酸
塩化カリウム
ホウ酸等
塩化ニッケル
タングステン酸ナトリウム
セレン酸ナトリウム
硫酸第一鉄アンモニウム
酢酸ナトリウム三水和物
硫酸マグネシウム七水和物
硫酸マンガン四水和物
これらの無機化合物やビタミン類など、動植物由来の増殖補助因子を添加して培養液を製造する方法は公知である。培地は、液体、半固体、あるいは固体とすることができる。好ましい培地の形態は、液体培地である。
（エガセラ（Eggerthella）属に属する微生物の静止菌体）
本微生物は、その静止菌体を含む。静止菌体とは、培養した微生物から遠心分離等の操作により培地成分を取り除き、水や生理食塩水等の塩溶液、あるいは緩衝液で洗浄し、洗浄液等に懸濁した菌体であって、本発明の第一の発明においては、少なくとも、ウロリチン類を産生する代謝系を有している菌体をいう。緩衝液としては、リン酸緩衝液、トリス‐塩酸緩衝液、クエン酸‐リン酸緩衝液、クエン酸緩衝液、MOPS緩衝液、酢酸緩衝液、グリシン緩衝液等などが好ましい。緩衝液のｐＨや濃度は、常法に従い適宜調製したものを使用できる。
本微生物は、その静止菌体を含む。静止菌体とは、培養した微生物から遠心分離等の操作により培地成分を取り除き、水や生理食塩水等の塩溶液、あるいは緩衝液で洗浄し、洗浄液等に懸濁した菌体であって、本発明の第一の発明においては、少なくとも、ウロリチン類を産生する代謝系を有している菌体をいう。緩衝液としては、リン酸緩衝液、トリス‐塩酸緩衝液、クエン酸‐リン酸緩衝液、クエン酸緩衝液、MOPS緩衝液、酢酸緩衝液、グリシン緩衝液等などが好ましい。緩衝液のｐＨや濃度は、常法に従い適宜調製したものを使用できる。
（ウロリチン類）
ウロリチン類は、その構造が下記一般式（１）で表される既知の物質である。例えば、表１に示すように、ウロリチン類は化学式におけるＲ１〜Ｒ６の違いによる、ウロリチンＡ、ウロリチンＢ、ウロリチンＣ、ウロリチンＤ、ウロリチンＥ、ウロリチンＭ３、ウロリチンＭ４、ウロリチンＭ５、ウロリチンＭ６、ウロリチンＭ７、及びイソウロリチンＡなどが知られている。
本発明の第一の発明では、本微生物によるその産生効率が高いことから、好ましくはウロリチンＣである。
ウロリチン類は、その構造が下記一般式（１）で表される既知の物質である。例えば、表１に示すように、ウロリチン類は化学式におけるＲ１〜Ｒ６の違いによる、ウロリチンＡ、ウロリチンＢ、ウロリチンＣ、ウロリチンＤ、ウロリチンＥ、ウロリチンＭ３、ウロリチンＭ４、ウロリチンＭ５、ウロリチンＭ６、ウロリチンＭ７、及びイソウロリチンＡなどが知られている。
本発明の第一の発明では、本微生物によるその産生効率が高いことから、好ましくはウロリチンＣである。
＜２．第二の発明＞
本発明の第二の発明は、ウロリチン類を産生する能力を有するエガセラ（Eggerthella）属に属する微生物を用いたウロリチン類の製造方法である。
本発明の第二の発明は下記工程（ａ）を含むが、その他の工程を含んでもよい。
本発明の第二の発明は、ウロリチン類を産生する能力を有するエガセラ（Eggerthella）属に属する微生物を用いたウロリチン類の製造方法である。
本発明の第二の発明は下記工程（ａ）を含むが、その他の工程を含んでもよい。
（１）工程（ａ）
工程（ａ）は、ウロリチン類の原料を含有する溶液において、該ウロリチン類の原料からウロリチン類を産生する能力を有するエガセラ（Eggerthella）属に属する微生物に、該ウロリチン類の原料からウロリチン類を産生させる工程である。
工程（ａ）は、ウロリチン類の原料を含有する溶液において、該ウロリチン類の原料からウロリチン類を産生する能力を有するエガセラ（Eggerthella）属に属する微生物に、該ウロリチン類の原料からウロリチン類を産生させる工程である。
（エガセラ（Eggerthella）属に属する微生物）
本発明の第二の発明におけるエガセラ（Eggerthella）属に属する微生物については、本発明の第一の発明における説明が適用される。
本発明の第二の発明におけるエガセラ（Eggerthella）属に属する微生物については、本発明の第一の発明における説明が適用される。
（ウロリチン類の原料を含有する溶液）
本発明の第二の発明におけるウロリチン類の原料を含有する溶液とは、該溶液において、該ウロリチン類の原料からウロリチン類を産生する能力を有する本微生物に、該ウロリチン類の原料からウロリチン類を産生させることができるものであれば特に制限されない。好ましくは培地であり、上記した「ウロリチン類を産生する、エガセラ（Eggerthella）属に属する微生物の培養条件」欄の態様とすることができる。
尚、本明細書に記載されている「培地」とは、いずれも、最少培地を含む、本微生物が増殖できる溶液をいい、本微生物が増殖できない溶液、例えば、前述した塩溶液や緩衝液などを含まないものとする。
本発明の第二の発明におけるウロリチン類の原料を含有する溶液とは、該溶液において、該ウロリチン類の原料からウロリチン類を産生する能力を有する本微生物に、該ウロリチン類の原料からウロリチン類を産生させることができるものであれば特に制限されない。好ましくは培地であり、上記した「ウロリチン類を産生する、エガセラ（Eggerthella）属に属する微生物の培養条件」欄の態様とすることができる。
尚、本明細書に記載されている「培地」とは、いずれも、最少培地を含む、本微生物が増殖できる溶液をいい、本微生物が増殖できない溶液、例えば、前述した塩溶液や緩衝液などを含まないものとする。
本微生物が静止菌体である場合のウロリチン類の原料を含有する溶液としては、前述した塩溶液や緩衝液が好ましい。
（ウロリチン類の原料）
ウロリチン類の原料としては、該原料を用いて本微生物によりウロリチン類が産生されれば特に制限されないが、例えば、エラグ酸；該エラグ酸の前駆体である、プニカラジン、ゲラニインなどのエラジタンニンなどが挙げられる。このうち、本微生物によるウロリチン類の産生効率が他の原料に比べて多いことからエラグ酸が好ましい。このとき、植物からプニカラジン、ゲラニインなどのエラジタンニンを抽出し、これを加水分解してエラグ酸としてもよいし、エラグ酸自体を抽出してもよい。
ウロリチン類の原料としては、該原料を用いて本微生物によりウロリチン類が産生されれば特に制限されないが、例えば、エラグ酸；該エラグ酸の前駆体である、プニカラジン、ゲラニインなどのエラジタンニンなどが挙げられる。このうち、本微生物によるウロリチン類の産生効率が他の原料に比べて多いことからエラグ酸が好ましい。このとき、植物からプニカラジン、ゲラニインなどのエラジタンニンを抽出し、これを加水分解してエラグ酸としてもよいし、エラグ酸自体を抽出してもよい。
ウロリチン類の原料は、ウロリチン類の産生前に、ウロリチン類の原料を含有する溶液となる溶液や溶媒に添加されてもよく、また、ウロリチン類の産生の途中で溶液に追加で添加されてもよい。このとき、該原料は、一括添加、逐次添加、連続添加でもよい。
ウロリチン類の原料を含有する溶液中の該原料の含有量は、通常０．０１ｇ／Ｌ以上、好ましくは０．１ｇ／Ｌ以上、より好ましくは１．０ｇ／Ｌ以上である。一方、通常１００ｇ／Ｌ以下、好ましくは２０ｇ／Ｌ以下、より好ましくは１０ｇ／Ｌ以下である。
ウロリチン類の原料を含有する溶液中の該原料の含有量は、通常０．０１ｇ／Ｌ以上、好ましくは０．１ｇ／Ｌ以上、より好ましくは１．０ｇ／Ｌ以上である。一方、通常１００ｇ／Ｌ以下、好ましくは２０ｇ／Ｌ以下、より好ましくは１０ｇ／Ｌ以下である。
エラグ酸及び／又はエラジタンニンを生産する植物としては特に制限はないが、例えば、ザクロ、ラズベリー、ブラックベリー、クラウドベリー、ボイセンベリー、イチゴ、クルミ、ゲンノショウコ等が挙げられる。このうち、エラグ酸及び／又はエラジタンニンを高含有していることから、ザクロ、ボイセンベリー、ゲンノショウコが好ましく、ザクロがより好ましい。
これらの植物は、いずれか１種のみを用いてもよいし、２種以上を併用してもよい。また、該植物からのエラグ酸及び／又はエラジタンニンの抽出方法及び抽出条件は特段限定されず、常法に従えばよい。例えば、水抽出、熱水抽出、温水抽出、アルコール抽出、超臨界抽出等の公知の抽出方法を用いることができる。
溶媒抽出を行う場合、溶媒としては、例えば、水；メタノール、エタノール等の低級アルコールや、プロピレングリコール、１，３‐ブチレングリコール等の多価アルコール等のアルコール類（無水、含水の別を問わない）；アセトン等のケトン類、ジエチルエーテル、ジオキサン、アセトニトリル、酢酸エチルエステル等のエステル類、キシレン等が挙げられ、好ましくは水、エタノール等である。これらの溶媒は、いずれか１種のみを用いてもよいし、２種以上を併用してもよい。
抽出したプニカラジンなどのエラジタンニンをエラグ酸に加水分解する方法としては特段限定されないが、酸、酵素、微生物によって加水分解する方法が挙げられる。
溶媒抽出を行う場合、溶媒としては、例えば、水；メタノール、エタノール等の低級アルコールや、プロピレングリコール、１，３‐ブチレングリコール等の多価アルコール等のアルコール類（無水、含水の別を問わない）；アセトン等のケトン類、ジエチルエーテル、ジオキサン、アセトニトリル、酢酸エチルエステル等のエステル類、キシレン等が挙げられ、好ましくは水、エタノール等である。これらの溶媒は、いずれか１種のみを用いてもよいし、２種以上を併用してもよい。
抽出したプニカラジンなどのエラジタンニンをエラグ酸に加水分解する方法としては特段限定されないが、酸、酵素、微生物によって加水分解する方法が挙げられる。
得られたエラグ酸及び／又はエラジタンニンをそのままの状態で使用することもできるが、乾燥させて粉末状にする工程を経てもよい。また、必要に応じて、得られたエラグ酸及び／又はエラジタンニンに精製、濃縮処理等を施してもよい。精製処理としては、濾過又はイオン交換樹脂や活性炭カラム等を用いた吸着、脱色といった処理を行うことができる。また、濃縮処理としては、エバポレーター等の常法を利用できる。また、得られたエラグ酸及び／又はエラジタンニン（又は、これらの精製処理物若しくは濃縮物）を、凍結乾燥処理に供して粉末化する方法、デキストリン、コーンスターチ、アラビアゴム等の賦形剤を添加してスプレードライ処理により粉末化する方法等の公知の方法に従って粉末化する工程を経てもよい。さらにその後に、必要に応じて純水、エタノール等に溶解して用いてもよい。
エラグ酸及び／又はエラジタンニンが含まれているものであれば、市販されている飲食品等を用いることもできる。例えば、ザクロ抽出物、ザクロ濃縮果汁、ザクロジュースなどを用いることができるがこれらに限定されない。
（ウロリチン類）
本発明の第二の発明におけるウロリチン類には、上記した本発明の第一の発明におけるウロリチン類の記載が援用される。
本発明の第二の発明におけるウロリチン類には、上記した本発明の第一の発明におけるウロリチン類の記載が援用される。
（本微生物によるウロリチン類の産生）
本微生物は、ウロリチン類の原料を含有する溶液において、ウロリチン類の産生に適した方法で培養されることにより、ウロリチン類を産生する。
該溶液は、好ましくは培地（培養液）であり、その態様として本発明の第一の発明に記載した説明が適用される。尚、本微生物の静止菌体を用いる場合については後述する。
また、ウロリチン類の産生に適した方法とは、本微生物の増殖に通常用いられる方法を必要により適宜変更して用いることができる。
本微生物は、ウロリチン類の原料を含有する溶液において、ウロリチン類の産生に適した方法で培養されることにより、ウロリチン類を産生する。
該溶液は、好ましくは培地（培養液）であり、その態様として本発明の第一の発明に記載した説明が適用される。尚、本微生物の静止菌体を用いる場合については後述する。
また、ウロリチン類の産生に適した方法とは、本微生物の増殖に通常用いられる方法を必要により適宜変更して用いることができる。
工業的な製造においては、培地や基質ガスを連続的に供給することができ、かつ培養物を回収するための機構を備えた連続培養システム（continuous fermentation system）を用いることも可能である。
培養器としては、通常用いられる培養槽がそのまま利用できる。本微生物の培養にも利用することができる培養タンクが市販されている。培養槽内に混入する酸素を、窒素などの不活性気体あるいは基質ガスなどで置換することにより、嫌気的な雰囲気を作ることもできる。
本微生物の培養においては、培養槽に付加的な機能を与えることができる。例えば、通常使用される撹拌混合槽のほか、気泡塔型、ドラフトチューブ型の培養槽も利用できる。液体培地に吹き込まれる混合気体によって本微生物は遊離分散され、本微生物と培地を十分に接触させることができる。また、バイオトリックリングフィルター（biotrickling filter）のように通気性の高いスラグ、その他セラミック系の無機充てん物、あるいはポリプロピレン等の有機合成物質の充てん層に、水分を滴らせながら本微生物を生息させ、そこにガスを通気しながら培養することもできる。さらに、使用する本微生物は常法によりカラギーナンゲル、アルギン酸ゲル、アクリルアミドゲル、キチン、セルロース、寒天などに固定化して用いることもできる。
培養槽の形状によっては、培地を十分に撹拌するため、撹拌機等を利用することもできる。培養槽内の培養物を撹拌することによって、培地成分や基質ガスを嫌気性微生物に接触させる機会を増やして、ウロリチン類の産生効率を最適化することができる。また基質ガスをナノバブルとして供給することもできる。
本微生物の十分な生育のため、培養物のｐＨは、好ましくは６．０以上、より好ましくは６．５以上、さらに好ましくは６．８以上であり、一方で、好ましくは８．５以下、より好ましくは８．０以下、さらに好ましくは７．５以下である。
また、培養槽の温度は特に制限されないが、ウロリチン類の回収量を増加させるため、好ましくは２０℃以上、より好ましくは２５℃以上、さらに好ましくは３０℃以上であり、一方で、好ましくは４２℃以下、より好ましくは４０℃以下、さらに好ましくは３７℃以下である。
培養時間は、ウロリチン類の産生量、原料の残存量等に応じて適宜設定できる。通常８時間以上、好ましくは１２時間以上、より好ましくは１６時間以上であり、一方で、通常３４０時間以下、好ましくは２４０時間以下、より好ましくは１７０時間以下であるが、これらに限定されない。
効率よくウロリチン類を回収するため、培地を連続的に供給することもできる。培養槽に供給される新鮮な培地の量は、培養槽内の培養物における希釈率が、好ましくは０．０４／ｈｒ以上、より好ましくは０．０８／ｈｒ以上であり、一方で、好ましくは２／ｈｒ以下、より好ましくは１／ｈｒ以下である。
また、培養槽の温度は特に制限されないが、ウロリチン類の回収量を増加させるため、好ましくは２０℃以上、より好ましくは２５℃以上、さらに好ましくは３０℃以上であり、一方で、好ましくは４２℃以下、より好ましくは４０℃以下、さらに好ましくは３７℃以下である。
培養時間は、ウロリチン類の産生量、原料の残存量等に応じて適宜設定できる。通常８時間以上、好ましくは１２時間以上、より好ましくは１６時間以上であり、一方で、通常３４０時間以下、好ましくは２４０時間以下、より好ましくは１７０時間以下であるが、これらに限定されない。
効率よくウロリチン類を回収するため、培地を連続的に供給することもできる。培養槽に供給される新鮮な培地の量は、培養槽内の培養物における希釈率が、好ましくは０．０４／ｈｒ以上、より好ましくは０．０８／ｈｒ以上であり、一方で、好ましくは２／ｈｒ以下、より好ましくは１／ｈｒ以下である。
培養液の気相、水相（ウロリチン類の原料を含有する溶液）としては、空気又は酸素を含まないことが好ましく、例えば、窒素及び／又は水素を任意の比率で含むことや、窒素及び／又は二酸化炭素を任意の比率で含むことが挙げられ、水素を含む、気相や水相であることが好ましい。
気相における水素の割合は、ウロリチン類の産生が促進されることから、通常０．１％以上、好ましくは１％以上、より好ましくは２％以上であり、一方、通常１００％以下、好ましくは５０％以下、より好ましくは２０％以下である。
気相における水素の割合は、ウロリチン類の産生が促進されることから、通常０．１％以上、好ましくは１％以上、より好ましくは２％以上であり、一方、通常１００％以下、好ましくは５０％以下、より好ましくは２０％以下である。
気相や水相をこのような環境にする方法は特に制限されないが、例えば、培養前に上記ガスで気相を置換する、培養中も培養器の底部から供給する、培養器の気相部に供給する、培養前に上記ガスで水相をバブリングするなどの方法をとることが出来る。通気量としては、通常０．００５ｖｖｍ以上、好ましくは０．０５ｖｖｍ以上であり、一方で、通常２ｖｖｍ以下、好ましくは０．５ｖｖｍ以下である。また、混合ガスはナノバブルとして供給することもできる。尚、本明細書において「ｖｖｍ」とは、１分間で液容量の何倍の通気をするかを示すものであり、例えば、１０Ｌの水相に対して、２ｖｖｍの通気を行ったとは、毎分２０Ｌの通気を行ったことを意味する。
また、前記水素は、水素ガスをそのまま用いてもよいが、水相にギ酸又はその塩などの水素の前駆体が添加されてもよい。
また、前記水素は、水素ガスをそのまま用いてもよいが、水相にギ酸又はその塩などの水素の前駆体が添加されてもよい。
本微生物を培養する際の加圧条件は、生育できる条件であれば特に限定されるものではない。好ましい加圧条件としては、０．０２〜０．２ＭＰａの範囲を挙げることができるがこれに限定されない。
また、水相に界面活性剤、吸着剤、包摂化合物などを添加することにより、ウロリチン類の生成を促進できる場合がある。
界面活性剤としては、例えば、Tween 80等が挙げられ、０．００１ｇ／Ｌ以上１０ｇ／Ｌ以下程度添加することが出来る。
吸着剤としては、例えば、セルロース及びその誘導体；デキストリン；三菱化学株式会社製の疎水吸着剤であるダイアイオンHPシリーズやセパビーズシリーズ；オルガノ株式会社製のアンバーライトXADシリーズなどを挙げることができる。
界面活性剤としては、例えば、Tween 80等が挙げられ、０．００１ｇ／Ｌ以上１０ｇ／Ｌ以下程度添加することが出来る。
吸着剤としては、例えば、セルロース及びその誘導体；デキストリン；三菱化学株式会社製の疎水吸着剤であるダイアイオンHPシリーズやセパビーズシリーズ；オルガノ株式会社製のアンバーライトXADシリーズなどを挙げることができる。
包摂化合物としては、例えば、α‐シクロデキストリン、β‐シクロデキストリン、γ‐シクロデキストリン、クラスターデキストリン（高度分岐環状デキストリン）、及び、これらの誘導体などを挙げることができる。また、２種以上の包摂化合物を共存させることにより、ウロリチン類の生成を更に促進できる場合がある。
包摂化合物の添加量としては、ウロリチン類の原料に対し、モル比の総量で、通常０．２当量以上、好ましくは１．０当量以上、より好ましくは２．０当量以上であり、一方、通常１０．０当量以下、好ましくは５．０当量以下、より好ましくは４．０当量以下である。
包摂化合物の添加量としては、ウロリチン類の原料に対し、モル比の総量で、通常０．２当量以上、好ましくは１．０当量以上、より好ましくは２．０当量以上であり、一方、通常１０．０当量以下、好ましくは５．０当量以下、より好ましくは４．０当量以下である。
（本微生物の静止菌体によるウロリチン類の産生）
本微生物が静止菌体である場合のウロリチン類の原料を含有する溶液は、前記培地の代わりに、前述した「エガセラ（Eggerthella）属に属する微生物の静止菌体」欄に記載した塩溶液や緩衝液が好ましい。その他の条件については、上記「本微生物によるウロリチン類の産生」欄の記載が援用される。
本微生物が静止菌体である場合のウロリチン類の原料を含有する溶液は、前記培地の代わりに、前述した「エガセラ（Eggerthella）属に属する微生物の静止菌体」欄に記載した塩溶液や緩衝液が好ましい。その他の条件については、上記「本微生物によるウロリチン類の産生」欄の記載が援用される。
（その他の工程）
本発明の第二の発明は、上記工程の他に、産生したウロリチン類の量を測定する工程や、産生したウロリチン類を精製する工程、その他の必要な工程を含んでもよい。
本発明の第二の発明は、上記工程の他に、産生したウロリチン類の量を測定する工程や、産生したウロリチン類を精製する工程、その他の必要な工程を含んでもよい。
（産生したウロリチン類の量を測定する工程）
産生したウロリチン類の量は、産生条件によって異なるが、ウロリチン類産生後の溶液１．０Ｌ当たり、総量で、通常０．００５ｇ以上、好ましくは０．１ｇ以上、より好ましくは１ｇ以上である。一方で、上限は特に制限されないが、通常２０ｇ以下、好ましくは１５ｇ以下、より好ましくは１０ｇ以下である。
産生したウロリチン類の量は、産生条件によって異なるが、ウロリチン類産生後の溶液１．０Ｌ当たり、総量で、通常０．００５ｇ以上、好ましくは０．１ｇ以上、より好ましくは１ｇ以上である。一方で、上限は特に制限されないが、通常２０ｇ以下、好ましくは１５ｇ以下、より好ましくは１０ｇ以下である。
ウロリチン類が産生したことは、ウロリチン類産生後の溶液中の原料やウロリチン類を定量することにより確認できる。その一例を以下に示す。
例えば、ウロリチン類産生後の溶液に、必要に応じてギ酸などの酸を添加した酢酸エチルを加えて、激しく撹拌した後遠心し、酢酸エチル層を取り出す。必要に応じて同溶液に同様の操作を数回行い、それら酢酸エチル層を合わせてウロリチン類抽出液を得ることができる。この抽出液をエバポレーターなどを用いて減圧下に濃縮、乾固し、メタノールに溶解させる。これをポリテトラフルオロエチレン（ＰＴＦＥ）膜などの膜を使用して濾過し、不溶物を除去したものを高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）のサンプルとすることができる。高速液体クロマトグラフィーの条件としては、例えば以下が挙げられるが、これに限定されない。
例えば、ウロリチン類産生後の溶液に、必要に応じてギ酸などの酸を添加した酢酸エチルを加えて、激しく撹拌した後遠心し、酢酸エチル層を取り出す。必要に応じて同溶液に同様の操作を数回行い、それら酢酸エチル層を合わせてウロリチン類抽出液を得ることができる。この抽出液をエバポレーターなどを用いて減圧下に濃縮、乾固し、メタノールに溶解させる。これをポリテトラフルオロエチレン（ＰＴＦＥ）膜などの膜を使用して濾過し、不溶物を除去したものを高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）のサンプルとすることができる。高速液体クロマトグラフィーの条件としては、例えば以下が挙げられるが、これに限定されない。
［高速液体クロマトグラフィー条件］
カラム：Ｉｎｅｒｔｓｉｌ ＯＤＳ−３（２５０×４．６ｍｍ）（ＧＬ Ｓｃｉｅｎｃｅ社製）
溶離液：水／アセトニトリル／酢酸 ＝ ７４／２５／１
流速：１．０ｍＬ／ｍｉｎ
カラム温度：４０℃
検出：３０５ｎｍ
カラム：Ｉｎｅｒｔｓｉｌ ＯＤＳ−３（２５０×４．６ｍｍ）（ＧＬ Ｓｃｉｅｎｃｅ社製）
溶離液：水／アセトニトリル／酢酸 ＝ ７４／２５／１
流速：１．０ｍＬ／ｍｉｎ
カラム温度：４０℃
検出：３０５ｎｍ
（産生したウロリチン類を精製する工程）
産生したウロリチン類をそのままの状態で使用することもできるが、乾燥させて粉末状にする工程を経てもよい。また、必要に応じて、得られたウロリチン類に精製、濃縮処理等を施してもよい。精製処理としては、濾過又はイオン交換樹脂や活性炭カラム等を用いた吸着、脱色といった処理を行うことができる。また、濃縮処理としては、エバポレーター等の常法を利用できる。また、得られたウロリチン類（又は、この精製処理物若しくは濃縮物）を、凍結乾燥処理に供して粉末化する方法、デキストリン、コーンスターチ、アラビアゴム等の賦形剤を添加してスプレードライ処理により粉末化する方法等の公知の方法に従って粉末化する工程を経てもよい。さらにその後に、必要に応じて純水、エタノール等に溶解して用いてもよい。
産生したウロリチン類をそのままの状態で使用することもできるが、乾燥させて粉末状にする工程を経てもよい。また、必要に応じて、得られたウロリチン類に精製、濃縮処理等を施してもよい。精製処理としては、濾過又はイオン交換樹脂や活性炭カラム等を用いた吸着、脱色といった処理を行うことができる。また、濃縮処理としては、エバポレーター等の常法を利用できる。また、得られたウロリチン類（又は、この精製処理物若しくは濃縮物）を、凍結乾燥処理に供して粉末化する方法、デキストリン、コーンスターチ、アラビアゴム等の賦形剤を添加してスプレードライ処理により粉末化する方法等の公知の方法に従って粉末化する工程を経てもよい。さらにその後に、必要に応じて純水、エタノール等に溶解して用いてもよい。
このような方法によって得られる加熱乾燥処理もしくは噴霧乾燥処理、もしくは凍結乾燥処理されたウロリチン類は、乾燥粉末中、ウロリチン類の総量で、通常１〜５０質量％含む。また、例えば、１％、２％、３％、４％、５％、６％、７％、８％、９％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％から選択される２点の質量パーセント濃度を下限（〜以上、又は、〜より高い）及び上限（〜以下、又は、〜より低い）とする濃度範囲で示される質量％であることが好ましい。
＜３．第三の発明＞
本発明の第三の発明は、配列番号１で表される、エガセラ・エスピー（Eggerthella sp.） DC 3563（NITE BP-02376）の16S rRNA遺伝子である。16S rRNA遺伝子の塩基配列の決定方法は公知である。該塩基配列は実施例に記載の方法により同定されたものである。
本発明の第三の発明は、配列番号１で表される、エガセラ・エスピー（Eggerthella sp.） DC 3563（NITE BP-02376）の16S rRNA遺伝子である。16S rRNA遺伝子の塩基配列の決定方法は公知である。該塩基配列は実施例に記載の方法により同定されたものである。
以下、具体的な実施例により本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
＜１．本菌株の分離、分類学的性質＞
［実施例１］
本菌株であるエガセラ・エスピー（Eggerthella sp.） DC 3563（NITE BP-02376）株の分離および分類学的性質を以下に述べる。
［実施例１］
本菌株であるエガセラ・エスピー（Eggerthella sp.） DC 3563（NITE BP-02376）株の分離および分類学的性質を以下に述べる。
本菌株の分離のため、ＡＢＢ培地（Ｏｘｏｉｄ社製）に、最終濃度１ｇ／Ｌのエラグ酸を添加した後、加熱滅菌し、気相をＮ２：ＣＯ２：Ｈ２（８０％／１０％／１０％）ガスで置換したものを基本培地として使用した。基本培地に、ヒト糞便を植菌し、３７℃で嫌気的に培養した。培養後の培養液を希釈し、ＡＢＢ寒天培地上に塗布した。３７℃で嫌気的に培養し、複数の単菌を取得した。取得した複数の単菌を、基本培地に各々植菌し、３７℃で嫌気的に培養した。
培養後の培養液中のウロリチン類の定量は以下の方法により行った。
培養液５ｍＬに対して等量の酢酸エチルでウロリチン類を抽出し、得られた酢酸エチル相を減圧濃縮し、乾固した。このようにして得た乾固物をメタノール０．５ｍＬに再溶解し、ＨＰＬＣによりウロリチン類の定量分析を行った。
培養液５ｍＬに対して等量の酢酸エチルでウロリチン類を抽出し、得られた酢酸エチル相を減圧濃縮し、乾固した。このようにして得た乾固物をメタノール０．５ｍＬに再溶解し、ＨＰＬＣによりウロリチン類の定量分析を行った。
ＨＰＬＣは以下に記載の条件で行った。
ＨＰＬＣ分析条件：
カラム：Ｉｎｅｒｔｓｉｌ ＯＤＳ−３（２５０×４．６ｍｍ）（ＧＬ Ｓｃｉｅｎｃｅ社製）
溶離液：水／アセトニトリル／酢酸＝７４／２５／１
流速：１．０ｍＬ／ｍｉｎ
カラム温度：４０℃
検出：３０５ｎｍ
ＨＰＬＣ分析条件：
カラム：Ｉｎｅｒｔｓｉｌ ＯＤＳ−３（２５０×４．６ｍｍ）（ＧＬ Ｓｃｉｅｎｃｅ社製）
溶離液：水／アセトニトリル／酢酸＝７４／２５／１
流速：１．０ｍＬ／ｍｉｎ
カラム温度：４０℃
検出：３０５ｎｍ
標品として、ＤＡＬＴＯＮ ＰＨＡＲＭＡ社製のウロリチン類をＤＭＳＯに溶解して用いた。２週間の培養により、添加したエラグ酸をウロリチンＣに変換する微生物として、本菌株であるエガセラ・エスピー（Eggerthella sp.） DC 3563（NITE BP-02376）株を取得した。
公知の方法を用いて分析したDC 3563株の菌学的性質を表２にまとめた。
公知の方法を用いて分析したDC 3563株の菌学的性質を表２にまとめた。
＜２．株の同定＞
［実施例２］
本菌株であるDC 3563株からDNAを抽出し、16S rRNA遺伝子に特異的なユニバーサルプライマーを用いて16S rRNA遺伝子の全長をPCR増幅して、本菌株の16S rRNA遺伝子の塩基配列を決定した（配列番号１とした。）。
国際塩基配列データベース（DDBJ）を用いて相同性検索を行ったところ、本菌株であるDC 3563株は、エガセラ・レンタ（Eggerthella lenta）JCM 9979（AB558167）株と９９．９％の相同性を有していた。
［実施例２］
本菌株であるDC 3563株からDNAを抽出し、16S rRNA遺伝子に特異的なユニバーサルプライマーを用いて16S rRNA遺伝子の全長をPCR増幅して、本菌株の16S rRNA遺伝子の塩基配列を決定した（配列番号１とした。）。
国際塩基配列データベース（DDBJ）を用いて相同性検索を行ったところ、本菌株であるDC 3563株は、エガセラ・レンタ（Eggerthella lenta）JCM 9979（AB558167）株と９９．９％の相同性を有していた。
また、核酸データベースより入手した、本菌株と相同性の高い菌種の各基準株の塩基配列を多重整列後、ＮＪ法により分子系統樹を作成した結果、本菌株であるDC 3563株は、エガセラ（Eggerthella）属で構成される菌種とクラスターを形成し近縁種であることが示された。
以上の形態、資化性、16S rRNA遺伝子の解析結果を総合的に判断した結果、本菌株であるDC 3563株は、エガセラ・エスピー（Eggerthella sp.）に属する微生物であると同定された。
＜３．ウロリチン類の産生（発酵）＞
［実施例３］
実施例１に記載の基本培地に、本菌株であるDC 3563株を植菌し、３７℃で２週間、嫌気的に培養した。培養終了後、実施例１に記載の方法によりウロリチン類の定量分析を行った。
その結果、添加したエラグ酸に対して、ウロリチンＣが９０．３％のモル収率で得られた。
［実施例３］
実施例１に記載の基本培地に、本菌株であるDC 3563株を植菌し、３７℃で２週間、嫌気的に培養した。培養終了後、実施例１に記載の方法によりウロリチン類の定量分析を行った。
その結果、添加したエラグ酸に対して、ウロリチンＣが９０．３％のモル収率で得られた。
［実施例４］
実施例１に記載の基本培地に、更に、エラグ酸に対してモル比で２．４当量のβ‐シクロデキストリンを添加したもの、エラグ酸に対してモル比で２．４当量のγ‐シクロデキストリンを添加したもの、又は、これらを添加しないものを用いたこと以外は、実施例１と同様にしたものを実施例４とした。
その結果、添加したエラグ酸に対して、シクロデキストリンを添加しなかった場合には、ウロリチンＣが２６．６％のモル収率で得られた。β‐シクロデキストリンを添加した場合には、ウロリチンＣが３０．２％のモル収率で得られた。γ‐シクロデキストリンを添加した場合には、ウロリチンＣが３１．９％のモル収率で得られた。
実施例１に記載の基本培地に、更に、エラグ酸に対してモル比で２．４当量のβ‐シクロデキストリンを添加したもの、エラグ酸に対してモル比で２．４当量のγ‐シクロデキストリンを添加したもの、又は、これらを添加しないものを用いたこと以外は、実施例１と同様にしたものを実施例４とした。
その結果、添加したエラグ酸に対して、シクロデキストリンを添加しなかった場合には、ウロリチンＣが２６．６％のモル収率で得られた。β‐シクロデキストリンを添加した場合には、ウロリチンＣが３０．２％のモル収率で得られた。γ‐シクロデキストリンを添加した場合には、ウロリチンＣが３１．９％のモル収率で得られた。
本発明の新規微生物は、ウロリチン類産生能を有する従来の微生物よりも高いウロリチン類産生能を有する。該微生物を用いたウロリチン類の製造方法では、微生物を用いた従来のウロリチン類の製造方法よりも効率的にウロリチン類を製造することができる。
ウロリチン類を用いた化粧品、医薬部外品、医療用品、衛生用品、医薬品、飲食品（サプリメントを含む。）等は、抗酸化、抗炎症、抗糖化等のために用いられる。
ウロリチン類を用いた化粧品、医薬部外品、医療用品、衛生用品、医薬品、飲食品（サプリメントを含む。）等は、抗酸化、抗炎症、抗糖化等のために用いられる。
本明細書において引用された全ての先行技術文献は、参照として本明細書に組み入れられる。
Claims (11)
- ウロリチン類を産生する、エガセラ属に属する微生物。
- エラグ酸を原料として前記ウロリチン類を産生する、請求項１に記載の微生物。
- 前記ウロリチン類がウロリチンＣである、請求項１又は２に記載の微生物。
- 前記エガセラ属に属する微生物が、エガセラ・エスピー（Eggerthella sp.） DC 3563（NITE BP-02376）である、請求項１〜３のいずれか１項に記載の微生物。
- 下記工程（ａ）を含むウロリチン類の製造方法。
工程（ａ）：ウロリチン類の原料を含有する溶液において、該ウロリチン類の原料からウロリチン類を産生する能力を有するエガセラ属に属する微生物に、該ウロリチン類の原料からウロリチン類を産生させる工程。 - 前記ウロリチン類の原料がエラグ酸である、請求項５に記載の製造方法。
- 前記ウロリチン類がウロリチンＣである、請求項５又は６に記載の製造方法。
- 気相及び／又はウロリチン類の原料を含有する溶液が水素を含む環境下で、工程（ａ）が行われる、請求項５〜７のいずれか１項に記載の製造方法。
- 前記ウロリチン類の原料を含有する溶液が、α‐シクロデキストリン、β‐シクロデキストリン及びγ‐シクロデキストリン、並びにそれらの誘導体からなる包摂化合物の群から選択される１種以上をさらに含む、請求項５〜８のいずれか１項に記載の製造方法。
- 前記包摂化合物が、β‐シクロデキストリン及びγ‐シクロデキストリン、並びにそれらの誘導体からなる群から選択される１種以上である、請求項９に記載の製造方法。
- 配列番号１で表される、エガセラ・エスピー（Eggerthella sp.） DC 3563（NITE BP-02376）の16S rRNA遺伝子。
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| INT. J. SYST. EVOL. MICROBIOL., vol. Vol.64, Pt.7, JPN6018018542, July 2014 (2014-07-01), pages 2346 - 2352, ISSN: 0004845268 * |
| MOL. NUTR. FOOD RES., vol. 61, no. 1, JPN6018018544, January 2017 (2017-01-01), pages 1 - 35, ISSN: 0004845270 * |
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