JPWO2015174427A1 - 微生物を用いたマイコスポリン様アミノ酸を生産する方法 - Google Patents
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Abstract
Description
(1)マイコスポリン様アミノ酸を生産する方法であって、
マイコスポリン様アミノ酸を菌体外に産生する微生物を培養する工程、
菌体と菌体外培養液を分離する工程、および
菌体外培養液からマイコスポリン様アミノ酸を回収する工程
を含む、方法;
(2)回収したマイコスポリン様アミノ酸を精製する工程をさらに含む、(1)に記載の方法;
(3)微生物が大腸菌、酵母、放線菌、微細藻類またはラビリンチュラ類に属する微生物である、(1)または(2)に記載の方法;
(4)微生物が放線菌である、(3)に記載の方法;
(5)放線菌が、ストレプトマイセス(Streptomyces)属、アクチノシネマ(Actinosynnema)属、シュードノカルディア(Pseudonocardia)属またはコリネバクテリウム(Corynebacterium)属である、(4)に記載の方法;
(6)微生物がラビリンチュラ類であって、該ラビリンチュラ類がオーランチオキトリウム(Aurantiochytrium)属である、(3)に記載の方法;
(7)微生物が酵母であって、該酵母がサッカロミセス(Saccharomyces)属である、(3)に記載の方法;
(8)微生物が異種由来のマイコスポリン様アミノ酸生合成酵素遺伝子群を含む、(1)〜(7)のいずれか一つに記載の方法;
(9)マイコスポリン様アミノ酸生合成酵素遺伝子群が、アクチノシネマ・ミルム(Actinosynnema mirum)由来のamir_4256、amir_4257、amir_4258およびamir_4259遺伝子である、(8)に記載の方法;
(10)マイコスポリン様アミノ酸生合成酵素遺伝子群の少なくとも1つの遺伝子のコドンが、導入される微生物用に改変されている、(8)に記載の方法;
(11)微生物が、ストレプトマイセス・エバメチルス(Streptomyces avermitilis) MA−4680株(NITE寄託番号:NBRC 14893)、ストレプトマイセス・リビダンス(Streptomyces lividans) 1326株(NITE寄託番号:NBRC 15675)、コリネバクテリウム・グルタミカム(Corynebacterium glutamicum) ATCC13032株)(NITE寄託番号:NBRC 12168)、オーランチオキトリウム(Aurantiochytrium sp.) SAM2179株(FERM BP−5601)、エシェリヒア・コリ(Escherichia coli) JM109株、またはサッカロミセス・セレビシエ(Saccharomyces cerevisiae) YPH499XW株である、(9)または(10)に記載の方法;
(12)下記、式1で表されるマイコスポリン様アミノ酸
(14)(1)〜(11)のいずれか一つに記載の方法によって生産されるマイコスポリン様アミノ酸、または(12)もしくは(13)に記載のマイコスポリン様アミノ酸と、化粧品、医薬部外品もしくは医薬品に許容される成分とを含む、紫外線吸収用組成物;および
(15)急性皮膚反応、皮膚老化および皮膚癌からなる群から選択される一以上の症状または疾患を予防するための、(1)〜(11)のいずれか一つに記載の方法によって生産されるマイコスポリン様アミノ酸、または(12)もしくは(13)に記載のマイコスポリン様アミノ酸と、化粧品、医薬部外品もしくは医薬品に許容される成分とを含む、組成物。
1.ストレプトマイセスを用いたMAAの産生
本発明者らは、ストレプトマイセス・リビダンス(Streptomyces lividans)およびストレプトマイセス・エバメチルス(Streptomyces avermitilis)を用いて、MAAを産生した。また、本発明者らは、菌体外培養液および菌体内におけるMAA産生量の比較を行った(図1)。
1−1−1.ストレプトマイセス・リビダンスへのMAA生合成酵素遺伝子の導入
MAA生合成酵素遺伝子として、アクチノシネマ・ミルム(Actinosynnema mirum) DSM43827由来のamir_4256(配列番号1)、amir_4257(配列番号2)、amir_4258(配列番号3)およびamir_4259(配列番号4)遺伝子を用いた。これらの遺伝子を、PLDプロモーター(特開2002−51780号公報を参照のこと)の制御下にてpIJ101の複製起点を有するベクターに連結し、遺伝子発現ベクターを作製した。この遺伝子発現ベクターを用いて、ストレプトマイセス・リビダンス 1326株(NITE寄託番号:NBRC 15675)を形質転換し、MAA生産株を得た。ストレプトマイセス・リビダンスの形質転換は、従来公知の方法に従って行った。
上記遺伝子amir_4256(配列番号1)、amir_4257(配列番号2)、amir_4258(配列番号3)およびamir_4259(配列番号4)をストレプトマイセス・エバメチルス MA−4680株(NITE寄託番号:NBRC 14893)に、相同組換えによって導入し、MAA生産株を得た。ストレプトマイセス・エバメチルスの相同組換えは、従来公知の方法に従って行った。
5mLのAVM培地(以下、表1を参照のこと)に、上記1−1で作製したMAA生合成酵素遺伝子を有する、ストレプトマイセス・リビダンス 1326株またはストレプトマイセス・エバメチルス MA−4680株の胞子のグリセロールストックを添加した。28℃、160rpmで48時間、これらの放線菌を振盪培養した。
0.1%量の前培養液を、500mLバッフル付フラスコ中の50mLのTSBt培地(以下、表2〜4を参照のこと)に添加した。なお、グルコースの初期濃度が50g/Lとなるように、培養開始時にTSBt培地へグルコースをさらに追加した。28℃、160rpmで2週間、振盪培養した。
本培養の間、所定の時間に培養液1mLを採取し、600nmでの濁度を測定した。採取した培養液を14000rpmで20分間、遠心分離して、菌体外培養液と沈殿物(菌体)とに分離した。分離した菌体外培養液を、菌体外培養液サンプルとして用いた。分離した菌体に1mLのメタノールを添加し、撹拌によって菌体を破砕した。次いで、遠心分離に供し、上清を回収した(菌体サンプル)。菌体外培養液サンプルおよび、希釈した菌体サンプルそれぞれにおける、シノリンおよびポルフィラ−334の生産量を、HPLCにより測定した。HPLC測定条件は以下の表の通りである。
ストレプトマイセス・エバメチルス MA−4680株の結果を図1に示す。図1(A)はシノリンの分布を、図1(B)はポルフィラ−334の分布を示す。シノリンおよびポルフィラ−334のいずれについても、菌体内よりも菌体外培養液中に多く分布していることが確認された。これらの結果より、培養開始から2週間の時点で、菌体外培養液中のシノリン生産量は、菌体内のシノリン生産量に比べ、約5倍であることが示された。ポルフィラ−334についても同様に、菌体外培養液中の生産量が菌体内の生産量に比べ、約7倍であることが示された。ストレプトマイセス・リビダンス 1326株では、培養約1週間で、菌体外に150mg/L、菌体内に50mg/Lのシノリンが生産された。培養約2週間では、菌体外に510mg/L、菌体内に105mg/Lのシノリンが生産された。
2.新規MAA(マイコスポリン−グリシン−アラニン)の産生
2−1.実施例1と同様にして、MAAを生産するストレプトマイセス・エバメチルスを2週間培養した。但し、初期グルコース濃度は100g/Lとした。その結果、菌体外培養液中に、シノリンおよびポルフィラ−334に加え、新規MAAとしてマイコスポリン−グリシン−アラニンが生産された。得られたマイコスポリン−グリシン−アラニンの生産量は25mg/Lであった。表5に示す条件でHPLC分析すると、保持時間は15分付近であった。
上記新規MAAの同定は、以下の様に行った。分析には、フォトダイオードアレイ検出器とHR−MS検出器を備えたHPLCを用い、紫外吸収スペクトルと精密質量を測定した。HPLC測定条件は、以下の表の通りである。
3.コリネバクテリウムを用いたMAAの産生
本発明者らは、コリネバクテリウム・グルタミカム(Corynebacterium glutamicum)を用いて、MAAを産生した。
3−1−1.コリネバクテリウム・グルタミカムへのMAA生合成酵素遺伝子の導入
MAA生合成酵素遺伝子として、アクチノシネマ・ミルム(Actinosynnema mirum) DSM43827由来のamir_4256(配列番号1)、amir_4257(配列番号2)、amir_4258(配列番号3)およびamir_4259(配列番号4)遺伝子を用いた。これらの遺伝子を、gapAプロモーター(Appl Microbiol Biotechnol (2008) 81:291−301を参照のこと)の制御下にてpBL1の複製起点を有するベクターに連結し、遺伝子発現ベクターを作製した。この遺伝子発現ベクターを用いて、コリネバクテリウム・グルタミカム ATCC13032株(NITE寄託番号:NBRC 12168、独立行政法人製品評価技術基盤機構(NITE)、特許生物寄託センター(IPOD)、千葉県木更津市かずさ鎌足2−5−8)をエレクトロポレーション法によって形質転換し、MAA生産株を得た。エレクトロポレーション法は、従来公知の方法に従って行った。
50mLのBHI培地(以下、表7を参照のこと)に、上記3−1で作製したMAA生合成酵素遺伝子を有する、コリネバクテリウム・グルタミカム ATCC13032株のグリセロールストックを添加した。30℃、180rpmで24時間、これらのコリネバクテリウム・グルタミカムを振盪培養した。
3%量の前培養液を、坂口フラスコ中の50mLのBHI培地に添加した。なお、グルコン酸ナトリウムの初期濃度が20g/Lとなるように、培養開始時にBHI培地へ400g/Lのグルコン酸ナトリウムを5mL追加した。pH調整のため、10%炭酸カルシウム溶液を5mL添加した。30℃、180rpmで48時間、振盪培養した。
本培養の間、所定の時間に培養液1mLを採取し、600nmでの濁度を測定した。採取した培養液を15000rpmで10分間、遠心分離して、菌体外培養液と沈殿物(菌体)とに分離した。分離した菌体外培養液を孔径0.2μmのメンブレンフィルターを用いてろ過し、ろ液を菌体外培養液サンプルとして用いた。菌体外培養液サンプルにおける、シノリンおよびポルフィラ−334の生産量を、HPLCにより測定した。HPLC測定条件は表5に記載する条件と同じである。
結果を図2に示す。シノリンおよびポルフィラ−334のいずれについても、菌体外培養液中に存在することが確認された。
4.酵母を用いたMAAの産生
本発明者らは、サッカロミセス・セレビシエ(Saccharomyces cerevisiae)を用いて、MAAを産生した。
4−1−1.YPH499XW株の構築
プラスミドpWX1X2XK(Appl Environ Microbiol. 2004 Sep;70(9):5407−14を参照のこと)から、キシロース資化性遺伝子をコードするXYL1(Scheffersomyces stipitis由来キシロースレダクダーゼ)(配列番号13)、XYL2(Scheffersomyces stipitis由来キシリトールデヒドロゲナーゼ)(配列番号14)、およびXKS1(Saccharomyces cerevisiae由来キシルロキナーゼ)(配列番号15)をTDH3プロモーターの制御下にてそれぞれ発現するカセットを、BssHIIで切断した。これらのカセットを、BssHIIで切断したTRP1選択マーカーを有するpRS404ベクター(ATCC寄託番号:ATCC 87515)に連結し、ゲノム組込み用ベクターpIWX1X2XKを作製した。このゲノム組込み用ベクターpIWX1X2XKをEcoRVで処理した。得られた断片を用いて、サッカロミセス・セレビシエ(Saccharomyces cerevisiae)YPH499株(Genetics 1989 May;122(1):19−27)を形質転換し、キシロース資化性を有するYPH499XW株を得た。サッカロミセス・セレビシエの形質転換は、従来公知の方法に従って行った。
MAA生合成酵素遺伝子amir4256(配列番号1)およびamir4257(配列番号2)を、TDH3プロモーターおよびADH1プロモーターの制御下にて発現するよう、2μの複製起点およびURA3選択マーカーを有するpAT426ベクター(FEMS Yeast Res. 2014 May;14(3):399−411)に連結し、遺伝子発現ベクターpAT426-amir4256-7を作製した。また、MAA生合成酵素遺伝子amir4258(配列番号3)およびamir4259(配列番号4)を、TDH3プロモーターおよびADH1プロモーターの制御下にて2μの複製起点を有するpAT425ベクター(FEMS Yeast Res. 2014 May;14(3):399−411)に連結し、遺伝子発現ベクターpAT425-amir4258-9を作製した。これらの遺伝子発現ベクターpAT426-amir4256-7およびpAT425-amir4258-9を用いて、YPH499XW株を形質転換し、MAA生産株であるYPH499XWMAA株を得た。サッカロミセス・セレビシエの形質転換は、従来公知の方法に従って行った。
上記5−1で作製したMAA生合成酵素遺伝子を有する、YPH499XWMAA株のグリセロールストックを、SD-LUW寒天培地(以下、表8を参照のこと)上で培養した。その後、5mLのSX-LUW液体培地(以下、表9を参照のこと)に得られたコロニーを植菌した。30℃、150opmで13日間、振盪培養した。
2%量の前培養液を、300mLバッフル付フラスコ中の100mLのSD-LU液体培地に添加した。30℃、150rpmで48時間、振盪培養した。
13日間培養後、培養液4mLを採取し、600nmでの濁度を測定した。採取した培養液を3,000rpmで5分間、遠心分離して、菌体外培養液と沈殿物(菌体)とに分離した。分離した菌体外培養液をPTFEフィルター(0.45μm)に通し、得られた溶液を菌体外培養液サンプルとして用いた。
菌体外培養液のMAA濃度を測定した。結果、0.19mg/Lのシノリンが菌体外に生産された。
5.ラビリンチュラ類を用いたMAAの産生
本発明者らは、ラビリンチュラ類を用いて、MAAを産生した。
5−1.ラビリンチュラ類へのMAA生合成酵素遺伝子の導入
オーランチオキトリウム(Aurantiochytrium sp.) SAM2179株(FERM BP−5601)用に、上記遺伝子amir_4256(配列番号1)、amir_4257(配列番号2)、amir_4258(配列番号3)およびamir_4259(配列番号4)のコドンを改変した(それぞれ、配列番号9〜12)。改変したこれらの遺伝子を相同組換えによってオーランチオキトリウム SAM2179株に導入し、MAA生産株を得た。ラビリンチュラ類の相同組換えは、従来公知の方法に従って行った。
1.5%寒天を含むGY海水培地プレート(以下、表10を参照のこと)に、上記5−1で作製したMAA生合成酵素遺伝子を有する、オーランチオキトリウム SAM2179 株のグリセロールストックを添加した。28℃で2日間、このオーランチオキトリウムを培養した。
本培養の後、培養液を15000rpmで10分間、遠心分離して、菌体外培養液と沈殿物(菌体)とに分離した。分離した菌体外培養液を孔径0.2μmのメンブレンフィルターを用いてろ過し、得られた溶液を菌体外培養液サンプルとして用いた。菌体外培養液サンプルにおける、シノリンの生産量を、HPLCにより測定した。HPLC測定条件は表5に記載する条件と同じである。
菌体外に1.5mg/Lのシノリンが生産された。
6.大腸菌を用いたMAAの生産
本発明者らは、エシェリヒア・コリ(Escherichia coli)を用いて、MAAを産生した。
6−1−1.エシェリヒア・コリへのMAA生合成酵素遺伝子の導入
上記MAA生合成酵素遺伝子として、amir_4256(配列番号1)、amir_4257(配列番号2)、amir_4258(配列番号3)およびamir_4259(配列番号4)を用いた。これらの遺伝子を、tacプロモーターの制御下にてpBR322の複製起点を有するベクターpkk223−3(GenBank No.M77749)に連結し、遺伝子発現ベクターを作製した。この遺伝子発現ベクターを用いて、エシェリヒア・コリ(Escherichia coli) JM109株(タカラバイオ社製、製品コード:9052)を形質転換し、MAA生産株を得た。エシェリヒア・コリの形質転換は、従来公知の方法に従って行った。
5mLのLB培地(以下、表12を参照のこと)に、上記6−1で作製したMAA生合成酵素遺伝子を有する、エシェリヒア・コリJM109株のグリセロールストックを添加した。37℃、160rpmで18時間、これらのエシェリヒア・コリを振盪培養した。
2%量の前培養液を、500mLバッフル付フラスコ中の50mLのLB培地へ植菌した。なお、グルコン酸ナトリウムの初期濃度が50g/Lとなるように、培養開始時にLB培地へグルコン酸ナトリウムを追加し(終濃度50g/L)、炭酸カルシウムを終濃度0.5%となるようにさらに追加した。30℃、160rpmで1週間、振盪培養した。
本培養の開始から24時間後に培養液1mLを採取し、14000rpmで10分間、遠心分離して、菌体外培養液と沈殿物(菌体)とに分離した。分離した菌体外培養液を、菌体外培養液サンプルとして用いた。菌体外培養液サンプルにおける、シノリンの生産量を、HPLCにより測定した。HPLC測定条件は表5に記載する条件と同じである。
菌体外培養液のMAA濃度を測定した。結果、0.82mg/Lのシノリンが菌体外に生産された。
SEQ ID NO:10: Codon-optimized amir_4257 for SAM2179
SEQ ID NO:11: Codon-optimized amir_4258 for SAM2179
SEQ ID NO:12: Codon-optimized amir_4259 for SAM2179
Claims (15)
- マイコスポリン様アミノ酸を生産する方法であって、
マイコスポリン様アミノ酸を菌体外に産生する微生物を培養する工程、
菌体と菌体外培養液を分離する工程、および
菌体外培養液からマイコスポリン様アミノ酸を回収する工程
を含む、方法。 - 回収したマイコスポリン様アミノ酸を精製する工程をさらに含む、請求項1に記載の方法。
- 微生物が大腸菌、酵母、放線菌、微細藻類またはラビリンチュラ類に属する微生物である、請求項1または2に記載の方法。
- 微生物が放線菌である、請求項3に記載の方法。
- 放線菌が、ストレプトマイセス(Streptomyces)属、アクチノシネマ(Actinosynnema)属、シュードノカルディア(Pseudonocardia)属またはコリネバクテリウム(Corynebacterium)属である、請求項4に記載の方法。
- 微生物がラビリンチュラ類であって、該ラビリンチュラ類がオーランチオキトリウム(Aurantiochytrium)属である、請求項3に記載の方法。
- 微生物が酵母であって、該酵母がサッカロミセス(Saccharomyces)属である、請求項3に記載の方法。
- 微生物が異種由来のマイコスポリン様アミノ酸生合成酵素遺伝子群を含む、請求項1〜7のいずれか一項に記載の方法。
- マイコスポリン様アミノ酸生合成酵素遺伝子群が、アクチノシネマ・ミルム(Actinosynnema mirum)由来のamir_4256、amir_4257、amir_4258およびamir_4259遺伝子である、請求項8に記載の方法。
- マイコスポリン様アミノ酸生合成酵素遺伝子群の少なくとも1つの遺伝子のコドンが、導入される微生物用に改変されている、請求項8に記載の方法。
- 微生物が、ストレプトマイセス・エバメチルス(Streptomyces avermitilis) MA−4680株(NITE寄託番号:NBRC 14893)、ストレプトマイセス・リビダンス(Streptomyces lividans) 1326株(NITE寄託番号:NBRC 15675)、コリネバクテリウム・グルタミカム(Corynebacterium glutamicum) ATCC13032株)(NITE寄託番号:NBRC 12168)、オーランチオキトリウム(Aurantiochytrium) SAM2179株(FERM BP−5601)、エシェリヒア・コリ(Escherichia coli) JM109株、またはサッカロミセス・セレビシエ(Saccharomyces cerevisiae) YPH499XW株である、請求項9または10に記載の方法。
- 請求項1〜11のいずれか一項に記載の方法によって生産される、請求項12に記載のマイコスポリン様アミノ酸。
- 請求項1〜11のいずれか一項に記載の方法によって生産されるマイコスポリン様アミノ酸、または請求項12もしくは13に記載のマイコスポリン様アミノ酸と、化粧品、医薬部外品もしくは医薬品に許容される成分とを含む、紫外線吸収用組成物。
- 急性皮膚反応、皮膚老化および皮膚癌からなる群から選択される一以上の症状または疾患を予防するための、請求項1〜11のいずれか一項に記載の方法によって生産されるマイコスポリン様アミノ酸、または請求項12もしくは13に記載のマイコスポリン様アミノ酸と、化粧品、医薬部外品もしくは医薬品に許容される成分とを含む、組成物。
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