JPWO2011013340A1 - 光学活性３−置換グルタル酸モノアミドの製造法 - Google Patents
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Abstract
本発明は、プロキラルな３−置換グルタル酸ジアミドに、当該化合物を不斉加水分解する活性を有する酵素源を作用させることにより、光学活性３−置換グルタル酸モノアミドを製造する方法に関する。本発明によれば、医薬品中間体として有用な光学活性３−置換グルタル酸モノアミドを、安価で入手容易原料から、高収率にて製造することができる。
Description
本発明は、医薬品中間体として有用な光学活性３−置換グルタル酸モノアミドの製造法に関する。
光学活性３−置換グルタル酸モノアミドの製造法として、例えば、以下の方法が知られている。
１）ラセミ体３−置換グルタル酸モノアミドを造塩晶析等で光学分割することによる光学活性３−置換グルタル酸モノアミドを取得する方法（特許文献１、非特許文献１）。
２）エステラーゼやリパーゼを用いた３−置換グルタル酸ジエステルの不斉加水分解反応により光学活性３−置換グルタル酸モノエステルを得た後に、これをアミド化することによる光学活性３−置換グルタル酸モノアミドを取得する方法（非特許文献２）。
１）ラセミ体３−置換グルタル酸モノアミドを造塩晶析等で光学分割することによる光学活性３−置換グルタル酸モノアミドを取得する方法（特許文献１、非特許文献１）。
２）エステラーゼやリパーゼを用いた３−置換グルタル酸ジエステルの不斉加水分解反応により光学活性３−置換グルタル酸モノエステルを得た後に、これをアミド化することによる光学活性３−置換グルタル酸モノアミドを取得する方法（非特許文献２）。
しかし、１）の方法は光学分割法であるため５０％以上の収率が望めず、一方、２）の方法では不斉加水分解反応後のアミド化工程において高圧、低温条件が必要である。
このように、現在知られている光学活性３−置換グルタル酸モノアミドの製造方法は、収率面、反応条件の面で、工業的生産に有利な方法とは言い難い。
Jounal of the Chemical Society,Perkin Transactions 2: 1997(4), 763-768
Can. J. Chem., 72, 2312 (1994)
上記に鑑み、本発明の目的は、医薬品中間体として有用な光学活性３−置換グルタル酸モノアミドを高収率にて製造する方法を提供することにある。
本発明者らは、前記課題に基づき鋭意検討を行った結果、３−置換グルタル酸ジアミドを立体選択的に不斉加水分解する微生物を取得することにより、圧力・温度ともに温和な反応条件において、５０％に留まらない高収率の光学活性３−置換グルタル酸モノアミド取得を可能にし、本発明を完成させるに至った。
即ち、本発明は下記式（１）；
（式中、Ｒは置換基を有していてもよい炭素数１〜８のアルキル基、置換基を有していてもよい炭素数２〜８のアルケニル基、置換基を有していてもよい炭素数２〜８のアルキニル基、置換基を有していてもよい炭素数４〜２０のアリール基、または置換基を有していてもよい炭素数５〜２０のアラルキル基を示す。）で表される３−置換グルタル酸ジアミドに、当該化合物を不斉加水分解する活性を有する酵素源を作用させることを特徴とする、下記式（２）；
（式中、＊は不斉炭素原子を表す。Ｒは前記に同じ。）で表される光学活性３−置換グルタル酸モノアミド化合物の製造法に関する。
本発明により、プロキラルな３−置換グルタル酸ジアミドを原料として、５０％以上の高収率で光学活性３−置換グルタル酸モノアミドを製造できる。
以下、本発明を、実施形態を用いて詳細に説明する。本発明はこれらにより限定されるものではない。
本発明の原料である３−置換グルタル酸ジアミドは下記式（１）；
で表される。前記式（１）において、Ｒは置換基を有していてもよい炭素数１〜８のアルキル基、置換基を有していてもよい炭素数２〜８のアルケニル基、置換基を有していてもよい炭素数２〜８のアルキニル基、置換基を有していてもよい炭素数４〜２０のアリール基、または置換基を有していてもよい炭素数５〜２０のアラルキル基を示す。
前記炭素数１〜８のアルキル基としては、直鎖状であっても分岐鎖状であっても良く、例えば、メチル基、エチル基、ｎ−プロピル基、イソプロピル基、ｎ−ブチル基、イソブチル基、ｔｅｒｔ−ブチル基、ペンタニル基、ヘキサニル基、ヘプタニル基、オクタニル基等が挙げられる。
前記炭素数２〜８のアルケニル基としては、エテニル基、プロペニル基、ブテニル基、ペンテニル基、ヘキセニル基、ヘプテニル基、オクテニル基等が挙げられる。
前記炭素数２〜８のアルキニル基としては、エチニル基、プロピニル基、ブチニル基、ペンチニル基、ヘキシニル基、ヘプチニル基、オクチニル基等が挙げられる。
前記炭素数４〜２０のアリール基としては、フェニル基、ナフチル基、アントラニル基、ピリジル基、ピリミジル基、インダニル基、インデニル基等が挙げられる。
前記炭素数５〜２０のアラルキル基としては、ベンジル基、ナフチルメチル基、アントラニルメチル基、ピリジルメチル基、ピリミジルメチル基、インダニルメチル基、インデニルメチル基等が挙げられる。
上記アルキル基、アルケニル基、アルキニル基、アリール基及びアラルキル基は置換基を有していても良く、置換基としては、ハロゲン原子、水酸基、アミノ基、ニトロ基等が挙げられる。
前記式（１）で表される３−置換グルタル酸ジアミドとして、具体的には、３−プロピルグルタル酸ジアミド、３−イソブチルグルタル酸ジアミド、３−フェニルグルタル酸ジアミド、３−（４−クロロフェニル）グルタル酸ジアミド等が挙げられる。
本発明の生成物である光学活性３−置換グルタル酸モノアミドは下記式（２）；
で表される。前記式（２）におけるＲは、前記式（１）におけるＲと同様である。
前記式（２）で表される化合物は、絶対配置がＲであってもＳであっても良く、具体的には、絶対配置がＲである３−プロピルグルタル酸モノアミド、３−イソブチルグルタル酸モノアミド、３−フェニルグルタル酸モノアミド、３−（４−クロロフェニル）グルタル酸モノアミド、絶対配置がＳである３−プロピルグルタル酸モノアミド、３−イソブチルグルタル酸モノアミド、３−フェニルグルタル酸モノアミド、３−（４−クロロフェニル）グルタル酸モノアミド等が挙げられる。
本発明で用いる「酵素源」とは、３−置換グルタル酸ジアミドを不斉加水分解する活性を有する微生物の菌体およびその処理物が含まれる。
「微生物の菌体」とは、菌体そのものの他、菌体を含む培養液あるいは菌体懸濁液を含めて意味する。なお、微生物としては、野生株の他、変異を生じさせて有利な性質を得た変異株も含み、さらには、該微生物由来の上記不斉加水分解活性を有する酵素をコードするＤＮＡが導入された形質転換株も含む。
「菌体の処理物」とは、例えば、粗抽出液、凍結乾燥菌体、アセトン乾燥菌体、又はそれら菌体の破砕物等を意味し、さらには、３−置換グルタル酸ジアミドを不斉加水分解する活性を有する酵素自体、或いは部分精製酵素であってもよい。さらにそれらは、酵素自体あるいは菌体を固定化し、固定化酵素あるいは固定化菌体として用いることもできる。固定化は、当業者に周知の方法（例えば架橋法、物理的吸着法、包括法等）で行うことができる。
本明細書で後述する各微生物は、特許生物寄託機関やその他研究機関から入手可能であり、更には、自然界から分離することもできる。例えば、ＮＢＲＣ番号で特定される微生物は、独立行政法人製品評価技術基盤機構生物遺伝資源部門より、ＦＥＲＭ番号で特定される微生物は、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターより、ＩＡＭ番号で特定される微生物は、東京大学分子細胞生物学研究所細胞機能情報研究センターより、ＪＣＭ番号で特定される微生物は、独立行政法人理化学研究所バイオリソースセンター微生物材料開発室より入手可能である。
また、３−置換グルタル酸ジアミドや酵素生産を誘導するための誘導剤を用いて集積培養することにより、自然界から分離することもできる。
前記３−置換グルタル酸ジアミドに不斉加水分解活性を有する酵素源としては、例えば、アクロモバクター（Achromobacter）属、アルカリゲネス（Alcaligenes）属、アースロバクター（Arthrobacter）属、アシネトバクター（Acinetobacter）属、セルロモナス(Cellulomonas)属、コマモナス（Comamonas）属、デルフチア（Delftia）属、ノカルディア（Nocardia）属、シュードモナス（Pseudomonas）属、ロドコッカス（Rhodococcus）属、又はステノトロホモナス（Stenotrophomonas）属からなる群から選ばれた微生物由来の酵素源が挙げられる。
前記酵素源のうち、絶対配置がＳである３−置換グルタル酸モノアミドを製造する能力を有する酵素源としては、例えば、アクロモバクター（Achromobacter）属、アルカリゲネス（Alcaligenes）属、アースロバクター（Arthrobacter）属、アシネトバクター（Acinetobacter）属、セルロモナス(Cellulomonas)属、デルフチア（Delftia）属、シュードモナス（Pseudomonas）属、又はステノトロホモナス（Stenotrophomonas）属からなる群から選ばれた微生物由来の酵素源が挙げられる。
好ましくは、アクロモバクター スピーシーズ（Achromobacter sp.）、アクロモバクター キシロソキシダンス サブスピーシーズ デニトリフィカンス（Achromobacter xylosoxidans subsp. denitrificans）、アルカリゲネス キシロソキシダンス サブスピーシーズ デニトリフィカンス（Alcaligenes xylosoxidanssubsp. denitrificans）、アースロバクター スピーシーズ（Arthrobacter sp.）、アシネトバクター スピーシーズ（Acinetobacter sp.）、セルロモナス フィミ(Cellulomonasfimi)、デルフチア アシドボランス（Delftia acidovorans）、シュードモナス スピーシーズ（Pseudomonas sp.）、又はステノトロホモナス スピーシーズ（Stenotrophomonas sp.）由来の酵素源である。
より好ましくはアクロモバクター キシロソキシダンス サブスピーシーズ デニトリフィカンス（Achromobacter xylosoxidans subsp. denitrificans）ＩＦＯ１５１２５、アクロモバクター キシロソキシダンス サブスピーシーズ デニトリフィカンス（Achromobacter xylosoxidans subsp. denitrificans）ＩＦＯ１２６６９、セルロモナス フィミ(Cellulomonas fimi)ＩＦＯ１５５１３、デルフチア（Delftia）ＮＢＲＣ１３５８２、デルフチア（Delftia）ＮＢＲＣ１４９５０由来の酵素源である。
また、前記酵素源のうち、絶対配置がＲである３−置換グルタル酸モノアミドを製造する能力を有する酵素源としては、例えば、アルカリゲネス（Alcaligenes）属、アシネトバクター（Acinetobacter）属、コマモナス（Comamonas）属、ノカルディア（Nocardia）属、ロドコッカス（Rhodococcus）属、又はシュードモナス（Pseudomonas）属、からなる群から選ばれた微生物由来の酵素源が挙げられる。
好ましくは、アルカリゲネス スピーシーズ（Alcaligenes sp.）、アシネトバクター スピーシーズ（Acinetobacter sp.）、コマモナス スピーシーズ（Comamonas sp.）、ノカルディア グロベルラ（Nocardia globerula）、ロドコッカス エリスロポリス（Rhodococcus erythropolis）、ロドコッカス ロドクロウス（Rhodococcus rhodochrous）、又はシュードモナス スピーシーズ（Pseudomonas sp.）由来の酵素源である。
より好ましくはアルカリゲネス スピーシーズ（Alcaligenes sp.）ＩＦＯ１４１３０、コマモナス スピーシーズ（Comamonas sp.）ＫＮＫ３−７（ＮＩＴＥ ＢＰ−９６３）、ロドコッカス エリスロポリス（Rhodococcus erythropolis）ＩＦＯ１２５３８、ロドコッカス エリスロポリス（Rhodococcus erythropolis）ＩＦＯ１２５３９、ロドコッカス エリスロポリス（Rhodococcus erythropolis）ＩＡＭ１４４０、ロドコッカス エリスロポリス（Rhodococcus erythropolis）ＩＡＭ１４５２、ロドコッカス エリスロポリス（Rhodococcus erythropolis）ＩＡＭ１４７４、ロドコッカス エリスロポリス（Rhodococcus erythropolis）ＩＡＭ１２１２２、ロドコッカス ロドクロウス（Rhodococcus rhodochrous）ＮＢＲＣ１５５６４、又はシュードモナス スピーシーズ（Pseudomonas sp.）ＫＮＫ２４−９（ＮＩＴＥ ＢＰ−９６２）由来の酵素源である。
なお、前記のコマモナス スピーシーズ（Comamonas sp.）ＫＮＫ３−７株（ＮＩＴＥ ＢＰ−９６３）、及び、シュードモナス スピーシーズ（Pseudomonas sp.）ＫＮＫ２４−９株（ＮＩＴＥ ＢＰ−９６２）は、本発明者らによって土壌から分離された菌株であり、それぞれ前記の受託番号で、平成２２年７月７日付けで、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足２−５−８）に寄託されている。
また、本発明の酵素源となりうる微生物としては、野生株又は変異株のいずれでもよい。あるいは細胞融合又は遺伝子操作等の遺伝学的手法により誘導される微生物も用いることができる。
例えば、遺伝子操作された微生物であれば、上記で例示した微生物から３−置換グルタル酸モノアミドを不斉加水分解しうる酵素を単離及び／又は精製して酵素のアミノ酸配列の一部又は全部を決定する工程、このアミノ酸配列に基づいて酵素をコードするＤＮＡ配列を得る工程、このＤＮＡを他の微生物に導入して組換え微生物を得る工程、及びこの組換え微生物を培養して、本酵素を得る工程を含有する方法等により得ることができる。これらの各工程は、当業者に周知の遺伝子組換え技術により、実施することができる。
上記のような組換え微生物としては、前記加水分解酵素をコードするＤＮＡを有するプラスミドで形質転換された形質転換微生物が挙げられる。また、宿主微生物としてはエシェリヒア・コリ（Escherichia coli）が好ましい。
酵素源として用いる微生物の為の培養培地は、その微生物が増殖し得るものである限り特に限定されない。例えば、炭素源として、グルコース、シュークロース等の糖質、エタノール、グリセロール等のアルコール類、オレイン酸、ステアリン酸等の脂肪酸及びそのエステル類、菜種油、大豆油等の油類、窒素源として、硫酸アンモニウム、硝酸ナトリウム、ペプトン、カザミノ酸、コーンスティープリカー、ふすま、酵母エキスなど、無機塩類として、硫酸マグネシウム、塩化ナトリウム、炭酸カルシウム、燐酸１水素カリウム、燐酸２水素カリウムなど、他の栄養源として、麦芽エキス、肉エキス等を含有する通常の液体培地を使用することができる。
また、微生物の酵素生産を誘導するために誘導剤を培地に添加してもよい。誘導剤としては、ニトリル、ラクタム化合物、アミド等が挙げられる。例えば、ニトリルとしては、アセトニトリル、イソバレロニトリル、プロピオニトリル、ピバロニトリル、ｎ−ブチロニトリル、イソブチロニトリル、ｎ−カプロニトリル、３−ペンテンニトリルなどが挙げられ、ラクタム化合物としては、γ−ブチロラクタム、δ−バレロラクタム、ε−カプロラクタムなどが挙げられ、アミドとしては、クロトンアミド、ベンズアミド、プロピオンアミド、アセトアミド、ｎ−ブチルアミド、イソブチルアミド、ｎ−バレルアミド、ｎ−カプロンアミド、メタクリルアミド、フェニルアセトアミド、シクロヘキサンカルボキサミドなどが挙げられる。
これら誘導剤の培地への添加量は０．０５％〜２．０％、好ましくは０．１％〜１．０％である。培養は好気的に行い、通常、培養時間は１〜５日間程度、培地のｐＨが３〜９、培養温度は１０〜５０℃で行うことができる。
本発明において、３−置換グルタル酸ジアミド（１）の立体選択的な加水分解反応は、適当な溶媒中に原料である３−置換グルタル酸ジアミド（１）、及び前記微生物の菌体又はその処理物等を添加し、ｐＨ調整下攪拌することにより行うことができる。
反応条件は用いる酵素、微生物又はその処理物、基質濃度等によって異なるが、通常、基質濃度は約０．１〜９９重量％、好ましくは１〜６０重量％であり、反応温度は１０〜６０℃、好ましくは２０〜５０℃であり、反応のｐＨは４〜１１、好ましくは６〜９であり、反応時間は１〜１２０時間、好ましくは１〜７２時間で行うことができる。基質は一括、又は連続的に添加して行うことができる。反応はバッチ方式又は連続方式で行うことができる。
反応で生じた光学活性３−置換グルタル酸モノアミドは、常法により、それぞれを単離、精製できる。例えば、加水分解反応で生じた光学活性３−置換グルタル酸モノアミドを含む反応液を、酢酸エチル、トルエン等の有機溶媒で抽出し、有機溶媒を減圧下で留去した後、蒸留、再結晶、又は、クロマトグラフィー等の処理を行うことにより、単離、精製できる。また、反応液から微生物菌体を除去したろ液を、硫酸等を用いて中和晶析し、析出した目的物をろ別することによっても単離、精製できる。
以下に実施例を挙げて、本発明を更に具体的に説明するが、本発明はこれら実施例のみに限定されるものではない。
（実施例１）３−プロピルグルタル酸ジアミドの立体選択的加水分解
表１及び表２に示した各微生物を、試験管内で滅菌した８ｍｌの培地（グリセロール１．０％、ペプトン０．５％、モルトエキス０．３％、イーストエキス０．３％、ε−カプロラクタム０．１％、ｐＨ７．０）に植菌して、３０℃で７２時間、振とう培養した。培養終了後、遠心分離により菌体を集め、２ｍｌの１００ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）に懸濁した。
表１及び表２に示した各微生物を、試験管内で滅菌した８ｍｌの培地（グリセロール１．０％、ペプトン０．５％、モルトエキス０．３％、イーストエキス０．３％、ε−カプロラクタム０．１％、ｐＨ７．０）に植菌して、３０℃で７２時間、振とう培養した。培養終了後、遠心分離により菌体を集め、２ｍｌの１００ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）に懸濁した。
この菌体懸濁液１ｍｌと、（参考例１）に記載した方法で合成した基質３−プロピルグルタル酸ジアミド２ｍｇを混合し、３０℃にて２４時間振とうした。反応終了後、遠心分離にて固形物を除去し、反応液中の基質及び生成物を高速液体クロマトグラフィーにて分析することにより、変換率（％）を求めた。
さらに、反応液中生成物を、フェナシルブロマイドを用いて誘導化することで取得した誘導体を高速液体クロマトグラフィーにて分析することにより、光学純度（％ｅｅ）を求めた。
その結果を表１及び２に示す。
・変換率（％）＝生成物量／（基質量＋生成物量）×１００
・光学純度（％ｅｅ）＝（Ａ−Ｂ）／（Ａ＋Ｂ）×１００ （Ａ及びＢは対応する鏡像異性体量を表し、Ａ＞Ｂである）
＜高速液体クロマトグラフィー分析条件＞
［変換率の分析］
・カラム：５Ｃ１８−ＡＲII（４．６ｍｍφ×２５０ｍｍ、ナカライテスク社製）
・溶離液：２０ｍＭリン酸水溶液（ｐＨ２．５）／アセトニトリル＝８／２
・流速：１．０ｍｌ／分、カラム温度：３０℃、測定波長：２１０ｎｍ
［光学純度の分析］
・カラム：ＣＨＩＲＡＬＰＡＫ ＡＤ−ＲＨ（４．６ｍｍφ×１５０ｍｍ、ダイセル化学社製）
・溶離液：２０ｍＭリン酸水溶液（ｐＨ２．５）／アセトニトリル＝１／１
・流速：０．５ｍｌ／分、カラム温度：室温、測定波長：２１０ｎｍ。
・光学純度（％ｅｅ）＝（Ａ−Ｂ）／（Ａ＋Ｂ）×１００ （Ａ及びＢは対応する鏡像異性体量を表し、Ａ＞Ｂである）
＜高速液体クロマトグラフィー分析条件＞
［変換率の分析］
・カラム：５Ｃ１８−ＡＲII（４．６ｍｍφ×２５０ｍｍ、ナカライテスク社製）
・溶離液：２０ｍＭリン酸水溶液（ｐＨ２．５）／アセトニトリル＝８／２
・流速：１．０ｍｌ／分、カラム温度：３０℃、測定波長：２１０ｎｍ
［光学純度の分析］
・カラム：ＣＨＩＲＡＬＰＡＫ ＡＤ−ＲＨ（４．６ｍｍφ×１５０ｍｍ、ダイセル化学社製）
・溶離液：２０ｍＭリン酸水溶液（ｐＨ２．５）／アセトニトリル＝１／１
・流速：０．５ｍｌ／分、カラム温度：室温、測定波長：２１０ｎｍ。
（実施例２）３−（４−クロロフェニル）グルタル酸ジアミドの立体選択的加水分解
表３及び表４に示した各微生物を、試験管内で滅菌した８ｍｌの培地（グリセロール１．０％、ペプトン０．５％、モルトエキス０．３％、イーストエキス０．３％、ε−カプロラクタム０．１％、ｐＨ７．０）に植菌して、３０℃で７２時間、振とう培養した。培養終了後、遠心分離により菌体を集め、２ｍｌの１００ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）に懸濁した。
表３及び表４に示した各微生物を、試験管内で滅菌した８ｍｌの培地（グリセロール１．０％、ペプトン０．５％、モルトエキス０．３％、イーストエキス０．３％、ε−カプロラクタム０．１％、ｐＨ７．０）に植菌して、３０℃で７２時間、振とう培養した。培養終了後、遠心分離により菌体を集め、２ｍｌの１００ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）に懸濁した。
この菌体懸濁液１ｍｌと、（参考例２）に記載した方法で合成した基質３−（４−クロロフェニル）グルタル酸ジアミド２ｍｇを混合し、３０℃にて２４時間振とうした。反応終了後、遠心分離にて固形物を除去し、反応液中の基質及び生成物を高速液体クロマトグラフィーにて分析することにより、変換率（％）及び光学純度（％ｅｅ）を求めた。
その結果を表３及び４に示す。
・変換率（％）＝生成物量／（基質量＋生成物量）×１００
・光学純度（％ｅｅ）＝（Ａ−Ｂ）／（Ａ＋Ｂ）×１００ （Ａ及びＢは対応する鏡像異性体量を表し、Ａ＞Ｂである）
＜高速液体クロマトグラフィー分析条件＞
［変換率の分析］
・カラム：５Ｃ１８−ＡＲII（４．６ｍｍφ×２５０ｍｍ、ナカライテスク社製）
・溶離液：２０ｍＭリン酸水溶液（ｐＨ２．５）／アセトニトリル＝７／３
・流速：１．０ｍｌ／分、カラム温度：３０℃、測定波長：２１０ｎｍ
［光学純度の分析］
・カラム：ＳＵＭＩＣＨＩＲＡＬ ＯＡ−７０００（４．６ｍｍφ×２５０ｍｍ、住化分析センター社製）
・溶離液：２０ｍＭリン酸水溶液（ｐＨ２．５）／アセトニトリル＝８／２
・流速：０．５ｍｌ／分、カラム温度：室温、測定波長：２１０ｎｍ。
・光学純度（％ｅｅ）＝（Ａ−Ｂ）／（Ａ＋Ｂ）×１００ （Ａ及びＢは対応する鏡像異性体量を表し、Ａ＞Ｂである）
＜高速液体クロマトグラフィー分析条件＞
［変換率の分析］
・カラム：５Ｃ１８−ＡＲII（４．６ｍｍφ×２５０ｍｍ、ナカライテスク社製）
・溶離液：２０ｍＭリン酸水溶液（ｐＨ２．５）／アセトニトリル＝７／３
・流速：１．０ｍｌ／分、カラム温度：３０℃、測定波長：２１０ｎｍ
［光学純度の分析］
・カラム：ＳＵＭＩＣＨＩＲＡＬ ＯＡ−７０００（４．６ｍｍφ×２５０ｍｍ、住化分析センター社製）
・溶離液：２０ｍＭリン酸水溶液（ｐＨ２．５）／アセトニトリル＝８／２
・流速：０．５ｍｌ／分、カラム温度：室温、測定波長：２１０ｎｍ。
（参考例１）３−（４−クロロフェニル）グルタル酸ジアミドの合成
３−（４−クロロフェニル）グルタル酸（１０．０ｇ、４１．２ｍｍｏｌ）をメタノール（６０ｍｌ）に溶解させ、塩化チオニル（１２．３ｇ、１０３ｍｍｏｌ）を滴下した。滴下終了後、２時間攪拌した後、減圧下にて溶媒を留去することにより、３−（４−クロロフェニル）グルタル酸ジメチルの白色固体（１１．１ｇ、４１．２ｍｍｏｌ）を得た。
３−（４−クロロフェニル）グルタル酸（１０．０ｇ、４１．２ｍｍｏｌ）をメタノール（６０ｍｌ）に溶解させ、塩化チオニル（１２．３ｇ、１０３ｍｍｏｌ）を滴下した。滴下終了後、２時間攪拌した後、減圧下にて溶媒を留去することにより、３−（４−クロロフェニル）グルタル酸ジメチルの白色固体（１１．１ｇ、４１．２ｍｍｏｌ）を得た。
上記の３−（４−クロロフェニル）グルタル酸ジメチルの固体（８．０ｇ、３０．０ｍｍｏｌ）を耐圧容器に入れ、アンモニア／メタノール溶液（有姿８０ｇ、８００ｍｍｏｌ）を加えた後、密閉系にて８０℃に加熱した。
３日間攪拌した後、内容物を粗濃縮し、析出した固体を濾別した。濾別した固体を減圧下にて乾燥することにより、３−（４−クロロフェニル）グルタル酸ジアミドの白色固体（６．５ｇ、２７．０ｍｍｏｌ）を得た。
（参考例２）３−プロピルグルタル酸ジアミドの合成
３−プロピルグルタル酸（８．０ｇ、４５．９ｍｍｏｌ）をメタノール（５０ｍｌ）に溶解させ、塩化チオニル（１３．７ｇ、１１５ｍｍｏｌ）を滴下した。滴下終了後、２時間攪拌した後、減圧下にて溶媒を留去することにより、３−プロピルグルタル酸ジメチルの油状物（９．３ｇ、４５．９ｍｍｏｌ）を得た。
３−プロピルグルタル酸（８．０ｇ、４５．９ｍｍｏｌ）をメタノール（５０ｍｌ）に溶解させ、塩化チオニル（１３．７ｇ、１１５ｍｍｏｌ）を滴下した。滴下終了後、２時間攪拌した後、減圧下にて溶媒を留去することにより、３−プロピルグルタル酸ジメチルの油状物（９．３ｇ、４５．９ｍｍｏｌ）を得た。
上記の３−プロピルグルタル酸ジメチルの油状物（９．０ｇ、４４．５ｍｍｏｌ）を耐圧容器に入れ、アンモニア／メタノール溶液（有姿９０ｇ、９００ｍｍｏｌ）を加えた後、密閉系にて８０℃に加熱した。
５日間攪拌した後、内容物を粗濃縮し、析出した固体を濾別した。濾別した固体を減圧下にて乾燥することにより、３−プロピルグルタル酸ジアミドの固体（２．３ｇ、１３．４ｍｍｏｌ）を得た。
Claims (9)
- 下記式（１）；
- Ｒが置換基を有していてもよい炭素数１〜８のアルキル基又は置換基を有していてもよい炭素数４〜２０のアリール基である請求項１に記載の製造法。
- Ｒがプロピル基、イソブチル基、フェニル基又は４−クロロフェニル基である請求項１に記載の製造法。
- 酵素源が、アクロモバクター（Achromobacter）属、アルカリゲネス（Alcaligenes）属、アースロバクター（Arthrobacter）属、アシネトバクター（Acinetobacter）属、セルロモナス(Cellulomonas)属、コマモナス（Comamonas）属、デルフチア（Delftia）属、ノカルディア（Nocardia）属、シュードモナス（Pseudomonas）属、ロドコッカス（Rhodococcus）属、又はステノトロホモナス（Stenotrophomonas）属からなる群から選択される少なくとも１種の微生物の菌体及び／又はその処理物である請求項１〜３のいずれかに記載の製造法。
- 酵素源が、アクロモバクター スピーシーズ（Achromobacter sp.）、アクロモバクター キシロソキシダンス サブスピーシーズ デニトリフィカンス（Achromobacter xylosoxidans subsp. denitrificans）、アルカリゲネス スピーシーズ（Alcaligenes sp.）、アルカリゲネス キシロソキシダンス サブスピーシーズ デニトリフィカンス（Alcaligenes xylosoxidans subsp. denitrificans）、アースロバクター スピーシーズ（Arthrobacter sp.）、アシネトバクター スピーシーズ（Acinetobacter sp.）、セルロモナス フィミ(Cellulomonas fimi)、コマモナス スピーシーズ（Comamonas sp.）、デルフチア アシドボランス（Delftia acidovorans）、ノカルディア グロベルラ（Nocardia globerula）、シュードモナス スピーシーズ（Pseudomonas sp.）、ロドコッカス エリスロポリス（Rhodococcus erythropolis）、ロドコッカス ロドクロウス（Rhodococcus rhodochrous）、ステノトロホモナス スピーシーズ（Stenotrophomonas sp.）からなる群から選択される少なくとも１種の微生物の菌体及び／又はその処理物である請求項１〜４のいずれかに記載の製造法。
- 酵素源として、アクロモバクター（Achromobacter）属、アルカリゲネス（Alcaligenes）属、アースロバクター（Arthrobacter）属、アシネトバクター（Acinetobacter）属、セルロモナス(Cellulomonas)属、デルフチア（Delftia）属、シュードモナス（Pseudomonas）属、又はステノトロホモナス（Stenotrophomonas）属からなる群から選択される少なくとも１種の微生物の菌体及び／又はその処理物を用いて絶対配置がＳである３−置換グルタル酸モノアミド化合物を製造する請求項４に記載の製造法。
- 酵素源として、アクロモバクター スピーシーズ（Achromobacter sp.）、アクロモバクター キシロソキシダンス サブスピーシーズ デニトリフィカンス（Achromobacter xylosoxidans subsp. denitrificans）、アルカリゲネス キシロソキシダンス サブスピーシーズ デニトリフィカンス（Alcaligenes xylosoxidans subsp. denitrificans）、アースロバクター スピーシーズ（Arthrobacter sp.）、アシネトバクター スピーシーズ（Acinetobacter sp.）、セルロモナス フィミ(Cellulomonas fimi)、デルフチア アシドボランス（Delftia acidovorans）、シュードモナス スピーシーズ（Pseudomonas sp.）、又はステノトロホモナス スピーシーズ（Stenotrophomonas sp.）属からなる群から選択される少なくとも１種の微生物の菌体及び／又はその処理物を用いて絶対配置がＳである３−置換グルタル酸モノアミド化合物を製造する請求項６に記載の製造法。
- 酵素源として、アルカリゲネス（Alcaligenes）属、アシネトバクター（Acinetobacter）属、コマモナス（Comamonas）属、ノカルディア（Nocardia）属、ロドコッカス（Rhodococcus）属、又はシュードモナス（Pseudomonas）属からなる群から選択される少なくとも１種の微生物の菌体及び／又はその処理物を用いて絶対配置がＲである３−置換グルタル酸モノアミドを製造する請求項４に記載の製造法。
- 酵素源として、アルカリゲネス スピーシーズ（Alcaligenes sp.）、アシネトバクター スピーシーズ（Acinetobacter sp.）、コマモナス スピーシーズ（Comamonas sp.）、ノカルディア グロベルラ（Nocardia globerula）、ロドコッカス エリスロポリス（Rhodococcus erythropolis）、ロドコッカス ロドクロウス（Rhodococcus rhodochrous）、又はシュードモナス スピーシーズ（Pseudomonas sp.）からなる群から選択される少なくとも１種の微生物の菌体及び／又はその処理物を用いて絶対配置がＲである３−置換グルタル酸モノアミドを製造する請求項８に記載の製造法。
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