JPWO2005118619A1 - 血圧降下作用を有するジペプチド - Google Patents

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Abstract

アンジオテンシンI変換酵素の阻害活性を有し、血圧降下作用を示す新規物質、該新規物質の製造方法、並びに該物質を含む飲食品、機能性食品及び医薬組成物を提供する。本発明はアラニルフェニルアラニン（Ala-Phe）、グリシルフェニルアラニン（Gly-Phe）、それらの塩、及びそれらを含むアンジオテンシンI変換酵素阻害用組成物、並びにそれらを含有する飲食品用素材、飲食品及び医薬組成物に関する。

Description

本発明は、血圧降下作用を有するジペプチド、該ジペプチドを含む組成物、該組成物のビール酵母からの抽出製造法、並びに該ジペプチド又は組成物を含有する飲食品、機能性食品及び医薬品に関する。
現在国民の4人に1人は高血圧であると言われている。高血圧はサイレントキラーと言われ、大きな症状は無い。しかし放っておくと、主要死因の上位を占めている脳血管障害や、心疾患、さらに動脈硬化など、各種疾病を引き起こす。高血圧の治療として、現在、さまざまな治療薬が使用されているが、そのいくつかについては、副作用の問題が懸念されている。
高血圧の原因物質として知られる、強力な血管収縮物質であるアンジオテンシンII（Asp-Arg-Val-Try-Ile-His-Pro-Phe）は、不活性型ペプチドであるアンジオテンシンI（Asp-Arg-Val-Try-Ile-His-Pro-Phe-His-Leu）から、それが肺及び腎臓を循環する間にC末端側のHis-LeuがアンジオテンシンI変換酵素（ACE）により切断されることによって生成されることが知られている。近年では、このアンジオテンシンIからアンジオテンシンIIへの変換を伴う腎臓のレニン−アンジオテンシン系（RAS）が、高血圧症の約90％を占める本態性高血圧の発症に密接に関連しているとの報告もなされている。一方でアンジオテンシンI変換酵素（ACE）は、キニン−カリクレイン系において降圧ペプチドであるブラジキニンの分解を不活化する反応も触媒する。これらのことから、ACE活性を阻害すれば、血圧上昇が抑制され、高血圧の抑制につながることが予測される。
これまでに、ACE活性を阻害する様々なペプチド化合物が合成されてきている（特許文献１及び２）。また、乳タンパク質、魚介類及び植物起源のペプチド類からも、アンジオテンシンI変換酵素の基質と拮抗する基質として作用し、その結果血圧上昇レベルを低く維持するペプチド類が見出されており、それらの食品としての長期間にわたる摂取は高血圧の予防に有効であることが報告されている（非特許文献１〜３）。最近では、ACEを特異的に阻害したり、アンジオテンシンIと同じようにACEの基質として作用して相対的に低いACE活性をもたらしたりすることにより血圧上昇を抑制し、高血圧を改善・予防する成分を、様々な食品起源のタンパク質から創製・探索・分離する試みが活発に行われている（特許文献３〜６、非特許文献４〜９）。また、機能性食品素材の一つであるローヤルゼリー（RJ）に含まれるタンパク質は、タンパク質分解酵素処理によってACE阻害活性が著しく増強することが見出されており（非特許文献１０）、その際に遊離したペプチド類の経口投与によって、高血圧自然発症ラット（SHR）の血圧を降下させることも合わせて報告されている（非特許文献１１）。
特開昭５７−５３４４７号公報 特開平２−２８２３９５号公報 特開平５−９５８号公報 特開平１１−２９５９４号公報 特開２００２−２９９９５号公報 特開２００２−２９１４５２号公報 関栄治ら 著，「イワシタンパク質由来のペプチドならびにValyl-Tyrosineの降圧作用」，日本栄養・食糧学会誌，(1999) 52，p.271-277 大鶴勝ら 著，「マイタケ投与が高血圧自然発症ラットの血圧および体重に及ぼす影響」，日本食品工業学会誌，(1999) 46，p.806-814 川岸舜朗 編，「生物化学実験法３８ 食品中の生体機能調節物質研究法」，学会出版センター，(1996)，p.116-129 Sato, M. et al., Angiotensin I-Converting Enzyme Inhibitory Peptides Derived from Wakame (Undaria pinnatifida) and Their Antihypertensive Effect in Spontaneously Hypertensive Rats., J. Agric. Food. Chem., (2002) 50, p.6245-6252 Nakamura, Y. et al., Purification and characterization of Angiotensin-converting enzyme inhibitors from sour milk., J. Dairy Sci., (1995) 78, p.777-783 受田浩之ら 著，「イワシタンパク質加水分解物からのANGI変換酵素阻害ペプチドの調製とその分離」，日本農芸化学会誌，(1991) 65，p.1223-1228 Matsui, T. et al., Preparation and Characterization of Novel Bioactive Peptides Responsible for Angiotensin I-Converting Enzyme Inhibition from Wheat Germ., J. Peptide Sci., (1999) 5, p.289-297 受田浩之ら 著，「加熱イワシ筋肉のペプシン加水分解物中に存在するアンジオテンシンI変換酵素阻害ペプチド」，日本農芸化学会誌，(1992) Vol.66，No.1，pp.25-29 Saiga, A. et al., Angiotensin I-Converting Enzyme Inhibitory Peptides in a Hydrolyzed Chicken Breast Muscle Extract., J. Agric. Food Chem. (2003) 51, pp.1741-1745 鈴木和道ら 著，「プロテアーゼによるローヤルゼリー分解物のアンジオテンシンI変換酵素阻害活性」，日本食品科学工学会誌，(2003) 50，p.286-288 鈴木和道ら，「血圧自然発症ラットに対する蛋白質分解酵素処理ローヤルゼリーの血圧調節作用」，日本食品科学工学会誌，(2003) 50，p.47-462
本発明は、アンジオテンシンI変換酵素の阻害活性を有し、血圧降下作用を示す物質、該物質の製造方法、並びに該物質を含む飲食品、機能性食品及び医薬品を提供することを目的とする。
本研究者らは、上記課題を解決するために鋭意研究を行い、乾燥ビール酵母の加水分解物に由来するペプチド画分を高血圧自然発症ラット(SHR)に投与すると、ラットの血圧が降下することを見出した。そこで本発明者らは、乾燥ビール酵母加水分解物中から、アンジオテンシンI変換酵素（ACE）活性を阻害するペプチドの探索を行ったところ、血圧降下作用を有する２種のペプチドAla-Phe及びGly-Pheが見出された。本発明はこれらの知見に基づいて完成されたものであり、すなわち以下の通りである。
[1] アラニルフェニルアラニン（Ala-Phe）であるジペプチド又はその塩。
[2] グリシルフェニルアラニン（Gly-Phe）であるジペプチド又はその塩。
[3] アラニルフェニルアラニン（Ala-Phe）、グリシルフェニルアラニン（Gly-Phe）、及びそれらの塩からなる群より選択される少なくとも１つを含有する、アンジオテンシンI変換酵素阻害用組成物。
[4] 以下の工程a)〜c)を含む、アンジオテンシンI変換酵素阻害用組成物の製造方法。
a) ビール酵母を加水分解する工程、
b) その加水分解物をクロマトグラフィー法によって分画する工程、及び
c) アラニルフェニルアラニン（Ala-Phe）及び／又はグリシルフェニルアラニン（Gly-Phe）を含有する画分を分取する工程
[5] アラニルフェニルアラニン（Ala-Phe）及び／又はグリシルフェニルアラニン（Gly-Phe）を含有する画分が、分子量150〜2,000のペプチドを含む画分である、上記[4]に記載の方法。
[6] 上記[4]又は[5]に記載の方法により製造された、アンジオテンシンI変換酵素阻害用組成物。
[7] 上記[1]又は[2]に記載のジペプチド又はその塩を含有する、飲食品用素材。
[8] 上記[1]又は[2]に記載のジペプチド又はその塩を含有する、飲食品。
[9] 上記[1]又は[2]に記載のジペプチド又はその塩を添加増量した飲食品。
[10] 上記[3]又は[6]に記載の組成物を含有する、飲食品用素材。
[11] 上記[10]に記載の飲食品用素材を添加した飲食品。
[12] 飲料である、上記[8]、[9]又は[11]に記載の飲食品。
[13] 血圧を降下させるための、上記[8]、[9]、[11]又は[12]記載の飲食品。
[14] 上記[1]及び[2]に記載のジペプチド又はその塩を含有する、医薬組成物。
[15] 上記[3]又は[6]に記載の組成物を含有する、医薬組成物。
[16] 血圧降下剤である、上記[14]又は[15]に記載の医薬組成物。
[17] 以下の工程a)〜c)を含む、アラニルフェニルアラニン（Ala-Phe）及び／又はグリシルフェニルアラニン（Gly-Phe）を含有する組成物の製造方法。
a) ビール酵母を加水分解する工程、
b) その加水分解物を、疎水性吸着剤を充填したカラムに通液する工程、及び
c) 50〜100％の濃度のエタノール水溶液を用いて、その疎水性吸着剤から吸着物質を溶出させる工程
本発明に係るペプチドAla-Phe、Gly-Phe及びそれらの塩、並びにそれらを含む組成物は、アンジオテンシンI変換酵素（ACE）阻害活性を有する。本発明のペプチド、その塩、及びそれらを含む組成物は、血圧上昇を抑制する効果を発揮する。本発明のペプチド、その塩、又はそれらを含む組成物を含有する飲食品用素材、飲食品及び医薬組成物は、例えば経口投与によって、血圧上昇を抑制することができる。
本明細書は本願の優先権の基礎である日本国特許出願2004-166223号の明細書および／または図面に記載される内容を包含する。
図１は、乾燥ビール酵母加水分解物の調製手順を示す概略図である。 図２は、乾燥ビール酵母加水分解物のACE阻害活性の測定手順を示す概略図である。 図３は、各実験群への飼料給与スキームを示す図である。 図４は、各実験群における血圧の推移を表す図である。 図５は、各実験群における血圧変化量を表す図である。 図６は、血清中のアンジオテンシンI変換酵素活性の測定手順を示す概略図である。 図７は、腎臓からのアンジオテンシンI変換酵素活性測定用サンプルの調製手順を示す概略図である。 図８は、50%EtOH溶出画分からACE阻害物質を同定するために用いた実験手順を示す概略図である。 図９は、Sephadex-G-25カラムクロマトグラフィーによる酵母アルカラーゼ加水分解物の溶出パターンと、溶出画分のACE阻害活性を示す図である。 図１０は、画分18の逆相分取HPLCクロマトグラムを示す図である。ピーク画分A〜Cが示されている。 図１１は、画分18の逆相分取HPLCクロマトグラムを示す図である。ピーク画分D〜Fが示されている。 図１２は、画分Bと画分Eの混合物をゲル濾過HPLCに掛けて得られたHPLCクロマトグラムを示す図である。 図１３は、画分Gのマススペクトラムとフェニルアラニンの化学構造式を示す。 図１４は、画分Hのマススペクトラムとアラニルフェニルアラニンの化学構造式を示す。 図１５は、画分Iのマススペクトラムとグリシルフェニルアラニンの化学構造式を示す。 図１６は、AF又はGFの単回経口投与に伴う収縮期血圧の変動を示す図である。 図１７は、AF又はGFの単回経口投与に伴う最大収縮期血圧変化量の推移を示す図である。
以下、本発明を詳細に説明する。
1) アンジオテンシンI変換酵素（ACE）阻害活性を有する、ペプチドAla-Phe、Gly-Phe及びそれらの塩、並びにそれらを含むアンジオテンシンI変換酵素阻害用組成物
本発明に係るペプチドである、アラニルフェニルアラニン（Ala-Phe）、グリシルフェニルアラニン（Gly-Phe）及びそれらの塩は、それぞれ、アンジオテンシンI変換酵素（ACE）阻害活性を有する。
本発明において、アラニルフェニルアラニン（Ala-Phe）とは、N末端のアラニン残基とC末端のフェニルアラニン残基とを含むジペプチドを意味する。本発明におけるアラニルフェニルアラニンの塩としては、ナトリウム塩、カリウム塩等が挙げられる。
本発明では、グリシルフェニルアラニン（Gly-Phe）は、N末端のグリシン残基とC末端のフェニルアラニン残基とを含むジペプチドを意味する。本発明におけるグリシルフェニルアラニンの塩としては、ナトリウム塩、カリウム塩等が挙げられる。
本発明のペプチドAla-Phe、Gly-Phe又はそれらの塩は、当業者に公知のペプチド合成法、例えば、限定するものではないが、化学的若しくは酵素的切断法、化学合成法（液相法、固相法、カラム法及びバッチ法等）、クロマトグラフィー法による精製抽出法等を利用して製造することができる。ペプチド合成法の詳細は、例えば"The Peptides: Analysis, Synthesis, Biology", Vol. 1〜5, E. Gross, J. Meienhofer編; Vol.6〜9, S. Udenfriend, J. Meienhofer, Academic Press, New York (1979〜1987)、「ペプチド合成の基礎と実験」（泉屋信夫ら著, 丸善（株）（1985））等に記載されている。
また本発明のペプチドAla-Phe、Gly-Phe及びそれらの塩からなる群から選択される少なくとも１つを含有する組成物も、アンジオテンシンI変換酵素阻害活性を有する。従って本発明のこのような組成物は、アンジオテンシンI変換酵素（ACE）阻害用組成物として用いることができる。本発明のペプチドAla-Phe、Gly-Phe及びそれらの塩からなる群から選択される少なくとも１つを含有する組成物は、ビール酵母加水分解物から得られるペプチド画分（以下、AF/GFビール酵母由来画分と呼ぶ）として調製することもできる。
本発明に係るAF/GFビール酵母由来画分は、当業者に公知の任意の手法を用いて、以下の工程a)〜c)：
a) ビール酵母を加水分解する工程、
b) その加水分解物をクロマトグラフィー法によって分画する工程、及び
c) アラニルフェニルアラニン（Ala-Phe）及び／又はグリシルフェニルアラニン（Gly-Phe）を含有する画分を分取する工程を含む方法によって製造することができる。ビール酵母由来画分に含まれるペプチドの分子量は、150〜2000の範囲にあることが望ましいが、これに限定されるものではない。
AF/GFビール酵母由来画分の製造に使用するビール酵母は、ビールの醸造に用いられる任意の酵母であってよいが、サッカロミセス・セレビシエ（Saccharomyces cerevisiae）、サッカロミセス・パストリアヌス（Saccharomyces pastorianus）、サッカロミセス・バヤナス（Saccharomyces bayanus）等を用いることが好ましい。本発明に係るビール酵母は、乾燥状態（例えば粉末状又は顆粒状）であってもよいし、培養物であってもよい。本明細書で用いる「培養物」とは、培養中の細胞（菌体）と培地とを含む培養液、及び培養液から分離された培養細胞を包含する。
ビール酵母に適用する加水分解法には、典型的には酵素的又は化学的な加水分解法がある。酵素的な加水分解法としては、例えば、アルカリ性プロテアーゼ、中性プロテアーゼ、及び酸性プロテアーゼ等を含むプロテアーゼによって処理する方法が挙げられる。本発明で用いるプロテアーゼとしては、アルカリ性プロテアーゼ（アルカラーゼ（Alcalase 2.4L FG；novozymes社製）等）が好ましいが、これに限定されるものではない。化学的な加水分解法としては、例えば、強酸又は強アルカリによって処理する方法が挙げられる。加水分解の条件としては、公知の加水分解法で用いられる任意の条件を用いればよい。酵素法における酵素の添加量は、通常、タンパク質1g当たり0.001％以上、好ましくは0.1〜10％が適当である。反応pH及び反応温度は、使用する酵素の至適pH、至適温度付近に設定することが好ましい。反応時間は、酵素の種類、添加量、反応温度、反応pHに合わせて当業者が適宜設定することができるが、通常は、30分〜40時間の範囲である。加水分解反応の停止は、反応混合液の加熱やpH変化等による酵素の失活、限外濾過等による酵素の濾別等を含む公知の方法に従って行うことができる。
AF/GFビール酵母由来画分を分画するための手法として、有機物の分析に用いる様々な技術を用いることができる。そのような分画技術としては、例えば、限外濾過や精密濾過等の膜濾過、ゲル浸透クロマトグラフィーやゲル濾過クロマトグラフィー（例えば、高速液体クロマトグラフィー）等のサイズ排除クロマトグラフィー、分配クロマトグラフィー、吸着クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー等が挙げられる。具体的には例えば、ビール酵母加水分解物をクロマトグラフィーにかけて分画し、Ala-Phe及び／又はGly-Pheを含む画分を同定し、それを分取することが好ましい。ビール酵母加水分解物を順次異なるクロマトグラフィーにかけて、より精製された画分を得てもよい。この場合、ビール酵母加水分解物を、まず、疎水性を有する物質が吸着される吸着剤（例えばAmberliteTMXAD-2TM樹脂を充填したクロマトグラフィーに通し、有機溶媒（例えばエタノール（50〜100％EtOH）やメタノール等）で吸着画分を溶出させることにより疎水性を有する物質を含む画分を分取し、その画分をHPLC等のクロマトグラフィー法によってさらに分画し、各画分のACE阻害活性を測定し、高いACE阻害活性を有する画分を分取し、得られた画分をさらにHPLC等で分画してもよい。疎水性を有する物質を吸着する吸着剤としては、Amberlite(R)XAD-2TM樹脂（Rohm & Haas社製；ポリスチレン−ジビニルベンゼン共重合体、平均細孔径90Å、比表面積300m2/g、細孔容積率42％、真の密度1.02g/ml）、AmberliteTMXAD-4TM樹脂等が挙げられる。ビール酵母加水分解物は、クロマトグラフィーにかける前に、遠心分離や濾過等で固形成分を除去することが好ましい。
AF/GFビール酵母由来画分の具体的な製造方法の例は、実施例１及び４に記載した。
このようにして製造されるAF/GFビール酵母由来画分は、Ala-Phe（分子量236.12）、Gly-Phe（分子量222.10）及び／又はその塩を含有する。単一ピークのみを含む画分にまで分画して、アミノ酸分析又は質量分析を行えば、その画分に含まれるAla-Phe、Gly-Phe又はそれらの塩をさらに明確に確認することができる。アミノ酸分析や質量分析は当業者に公知の方法に従って行えばよい。例えばアミノ酸分析は、アミノ酸分析計（ATO MLC-703型）を用いて、製造業者の説明書に従って実施することができる。また質量分析は、液体クロマトグラフ／タンデム型質量分析装置（LC/MS/MS；LCQ Advantage ion trap mass spectrometer (Thermo Finnigan)）等を用いて行うことができる。
以上のようなAF/GFビール酵母由来画分は、そのままの溶液状態で、アンジオテンシンI変換酵素阻害用組成物として用いることができる。あるいは、AF/GFビール酵母由来画分に、例えば濃縮及び／又はエタノール除去等のさらなる処理を施したものを、アンジオテンシンI変換酵素阻害用組成物として用いてもよい。濃縮には、任意の手法を用いればよいが、加熱濃縮法、減圧加熱濃縮法やエタノール沈殿による濃縮方法、及び活性炭やイオン交換樹脂による濃縮法などが挙げられる。AF/GFビール酵母由来画分を乾燥させて、アンジオテンシンI変換酵素阻害用組成物として用いることもできる。そのような乾燥のための手法としては、風乾法、凍結乾燥法、スプレードライ法、減圧乾燥法、及び加熱乾燥法等の任意の手法が挙げられる。本発明のアンジオテンシンI変換酵素（ACE）阻害用組成物は、Ala-Phe、Gly-Phe及び／又はそれらの塩に加えて、場合により、薬剤に慣用的に添加される任意の賦形剤（水、安定化剤、緩衝剤、保存剤、及び抗酸化剤等）をさらに含んでいてもよい。
なお本発明は、上記のAF/GFビール酵母由来画分又はその画分からさらに分画した単一ピーク画分などの、アラニルフェニルアラニン（Ala-Phe）及び／又はグリシルフェニルアラニン（Gly-Phe）を含有する組成物の製造方法にも関する。本発明のそのような組成物の製造方法は、本明細書でも既に上述しているが、少なくとも以下の工程a)〜c)：
a) ビール酵母を加水分解する工程、
b) その加水分解物を、疎水性吸着剤を充填したカラムに通液する工程、及び
c) 濃度が0〜100％（好ましくは50〜100％）のエタノール水溶液を用いて、その疎水性吸着剤から吸着物質を溶出させる工程、
を含む。
この製造方法において、工程a)でビール酵母に適用する加水分解法は上述の通りである。また、工程b)で用いる疎水性吸着剤としては、限定するものではないが、Amberlite XAD-2、Amberlite XAD-4、Amberlite XAD-7、及びAmberlite XAD-10などのAmberlite XAD樹脂シリーズの吸着剤（Rohm & Haas, USA）が挙げられる。工程b)で用いる疎水性吸着剤としては、とりわけAmberlite XAD-2が好適である。
さらに、この製造方法の工程c)では、0〜100％（但し0％を除く）、好ましくは50〜100％の範囲に含まれる任意の濃度のエタノール水溶液を、適宜使用することができる。この工程c)における溶出法としては、例えばステップワイズ溶出、グラディエント溶出などの様々なカラム溶出手順を用いることができる。
上記の工程c)で溶出させた吸着物質には、アラニルフェニルアラニン（Ala-Phe）及びグリシルフェニルアラニン（Gly-Phe）の両方が含まれ得る。その場合、工程c)で溶出させた吸着物質をさらにクロマトグラフィー等の公知の分画方法によって分離することにより、アラニルフェニルアラニン（Ala-Phe）又はグリシルフェニルアラニン（Gly-Phe）を単独で含む画分を単離してもよい。
2) Ala-Phe、Gly-Phe、及びそれらの塩、並びにそれらを含むアンジオテンシンI変換酵素阻害用組成物の、アンジオテンシンI変換酵素阻害活性
Ala-Phe、Gly-Phe、及びそれらの塩、並びにそれらを含む組成物のアンジオテンシンI変換酵素（ACE）阻害活性は、非特許文献３に記載の方法で測定することができる。以下測定法の例示を行う。
本発明におけるACE阻害活性測定法は、酢酸エチル抽出法に従ってin vitroでのアンジオテンシンI変換酵素（ACE）阻害率を算出し、それを指標としてACE阻害活性を表すものである（非特許文献３、図２を参照）。具体的には、まず、ACE阻害活性を調べる被験サンプルを、10mg/ml濃度になるように蒸留水を用いて調製する。また、トリペプチドHip-His-Leu、及びNaClを、反応溶液中の終濃度がそれぞれ5mM、400mMになるようにホウ酸バッファー（pH8.3）に溶解したものを、アンジオテンシンI変換酵素の基質溶液として調製する。次いで、被験サンプル溶液15μlに、調製した基質溶液を125μl加え、37℃で5分間インキュベートする。続いて、アンジオテンシンI変換酵素（ACE）溶液（60mU/mlになるようにホウ酸バッファー（pH8.3）で調製したもの）50μlを加え、37℃で30分間インキュベートする。次に、1N HCl 125μlを加えて反応を停止させ、酢酸エチル0.75mlを加えて十分混合し、遠心分離（3,000rpm、15℃、10分）を行う。上層の酢酸エチル層を採取し、減圧乾固したものを、蒸留水1.0mlに溶解させる。最後に、その228nmにおける吸光度を測定する。
対照サンプルとしては、被験サンプル50μlに１N HCl 125μlを加えて37℃で5分間インキュベートし、次いで基質溶液 125μlとACE溶液 50μlを加えて37℃で30分間インキュベートした後、上記と同様に酢酸エチル 0.75mlを加え、さらにそれ以後の一連の操作を行って、サンプルブランクを調製する。また、被験サンプル溶液の代わりにホウ酸バッファー 50μlを加えて基質溶液 125μlとともに37℃で5分間インキュベートし、次いで１N HCl 125μlを加え、続いてACE溶液50μlを加えて37℃で30分間インキュベートした後、上記と同様に酢酸エチル0.75mlを加え、さらにそれ以後の一連の操作を行って、ブランクを調製する。さらに、被験サンプル溶液の代わりに蒸留水を加えること以外は上記と同様の一連の操作を行って、コントロールを調製する。サンプルブランク、ブランク、及びコントロールの吸光度測定を、上記と同様にして行う。
このようにして得られる吸光度の測定値に基づき、ACEの阻害率（％）を以下の式により算出する。
阻害率（％）＝{(Ec-Eb)−Es}/(Ec−Eb)×100
Ec： コントロールの吸光度
Eb： ブランクの吸光度
Es： 被験サンプルの吸光度−サンプルブランクの吸光度
本発明においては、この阻害率（％）でACE阻害活性を表す。阻害率（％）が高いほどACE阻害活性も高く、阻害率が低いほどACE阻害活性も低い。
3) Ala-Phe、Gly-Phe、若しくはそれらの塩、又は本発明のアンジオテンシンI変換酵素（ACE）阻害用組成物を含有する飲食品及び飲食品用素材
本発明の、Ala-Phe、Gly-Phe、若しくはそれらの塩、又はそれらを含むアンジオテンシンI変換酵素（ACE）阻害用組成物は、飲食品用素材として用いることができる。この飲食品用素材は、適量を添加することにより、例えば血圧降下作用等の機能性を飲食品に付与することができる。この飲食品用素材は、限定するものではないが、液体状、粉末状、顆粒状、又は固形状等であってよい。本発明の飲食品用素材としては、例えば酵母エキス等が包含される。好ましくは、この飲食品用素材は、Ala-Phe、Gly-Phe、若しくはそれらの塩、又はそれらを含むアンジオテンシンI変換酵素（ACE）阻害用組成物を高含量で含む。
本発明は、Ala-Phe、Gly-Phe、若しくはそれらの塩、又はそれらを含むアンジオテンシンI変換酵素（ACE）阻害用組成物を添加した飲食品にも関する。本明細書において「飲食品」とは、限定するものではないが、飲料、食品及び機能性食品を包含する。
Ala-Phe、Gly-Phe、若しくはそれらの塩、又はそれらを含むACE阻害用組成物の飲食品への配合量は特に限定されず、例えば、Ala-Phe、Gly-Phe及びそれらの塩の総量が、0.001〜100重量％となる配合量を例示することができる。但し実際の配合量は、飲食品の種類や求める味や食感を考慮して、当業者が適宜定めることができる。
本発明のさらに好ましい態様は、Ala-Phe、Gly-Phe、若しくはそれらの塩、又はそれらを含むACE阻害用組成物を添加してその量を増大させた（添加増量した）飲食品である。このような本発明に係る飲食品は、Ala-Phe、Gly-Phe、若しくはそれらの塩、又はそれらを含むACE阻害用組成物のいずれか１つを、又はそれらを組み合わせて、有効量にて含有することが特に好ましい。
Ala-Phe、Gly-Phe、若しくはそれらの塩、又はそれらを含むアンジオテンシンI変換酵素（ACE）阻害用組成物は、当業者が利用可能である任意の適切な方法によって、飲食品に含有させればよい。例えば、Ala-Phe、Gly-Phe、若しくはそれらの塩、又はそれらを含むACE組成物は、液状、固体若しくは顆粒状に加工してから食品に含有させてもよい。あるいは飲食品中に直接混合又は溶解してもよいし、飲食品中に埋め込んでもよい。Ala-Phe、Gly-Phe、若しくはそれらの塩、又はそれらを含むACE阻害用組成物は、食品に塗布、被覆、浸透又は吹き付けてもよい。Ala-Phe、Gly-Phe、若しくはそれらの塩、又はそれらを含むACE阻害用組成物は、飲食品中に均一に分布していてもよいし、不均一に分布していてもよい。あるいはAla-Phe、Gly-Phe、若しくはそれらの塩、又はそれらを含むACE阻害用組成物は、食品中の特定部位に偏在していてもよい。Ala-Phe、Gly-Phe、若しくはそれらの塩、又はそれらを含むACE阻害用組成物を、凍結乾燥させた状態で飲料に溶解する場合には、例えば水に溶解させ、攪拌により均一に混合させた後、飲料、水等に添加することが好ましい。また、Ala-Phe、Gly-Phe、若しくはそれらの塩、又はそれらを含むACE阻害用組成物を固形食品に混合する場合は、例えば食品材料に添加し、攪拌により均一に混合した後、加工することが好ましい。また、Ala-Phe、Gly-Phe、若しくはそれらの塩、又はそれらを含むACE阻害用組成物を含有させた飲食品をさらに加工することもできる。そのような加工製品も、本発明の範囲に包含される。あるいはまた、Ala-Phe、Gly-Phe、若しくはそれらの塩、又はそれらを含むACE阻害用組成物それ自体を、固形成形したり、カプセルや糖衣錠等の形状に製剤したりしたものも、本発明の飲食品に包含される。
本発明の飲食品の製造においては、飲食品に慣用的に使用される各種添加物を使用してもよい。添加物としては、限定するものではないが、発色剤（亜硝酸ナトリウム等）、着色料（クチナシ色素、赤１０２等）、香料（オレンジ香料等）、甘味料（ステビア、アステルパーム等）、保存料（酢酸ナトリウム、ソルビン酸等）、乳化剤（コンドロイチン硫酸ナトリウム、プロピレングリコール脂肪酸エステル等）、酸化防止剤（ＥＤＴＡ二ナトリウム、ビタミンＣ等）、ｐＨ調整剤（クエン酸等）、化学調味料（イノシン酸ナトリウム等）、増粘剤（キサンタンガム等）、膨張剤（炭酸カルシウム等）、消泡剤（リン酸カルシウム）等、結着剤（ポリリン酸ナトリウム等）、栄養強化剤（カルシウム強化剤、ビタミンＡ等）等が挙げられる。さらに、オタネニンジンエキス、エゾウコギエキス、ユーカリエキス、杜仲茶エキス等の機能性素材を添加してもよい。
本発明の飲料の種類は、特に限定されない。本発明の飲料は、例えば、お茶系飲料（玄米茶や緑茶等の不発酵茶、紅茶等の発酵茶、ウーロン茶やジャスミン茶等の半発酵茶、杜仲茶、柿の葉茶、熊笹茶、ギャバロン茶、コーン茶、ハブ茶、菊花茶等を含む飲料）、果物・野菜系飲料（オレンジ、りんご、ぶどう、もも、いちご、バナナ、レモンなどの果汁や、トマト、ニンジン、キャベツ、セロリなどの野菜汁を含む飲料）、アルコール性飲料（ビール、発泡酒、ウイスキー、ワイン、リキュール類等を含む飲料）、炭酸飲料、乳酸菌飲料、乳飲料（コーヒー牛乳、フルーツ牛乳、機能性牛乳等）、清涼飲料、低カロリー飲料等の飲料を具体的に例示することができる。各種飲料の製造法等については、既存の参考書、例えば「最新・ソフトドリンクス」(2003)（株式会社光琳）等を参考にすることができる。
本発明の食品の種類は、特に限定されない。本発明の食品は、生鮮食品であってもよいし、加工食品であってもよい。例えば、クッキー、パン、ケーキ、煎餅などの焼き菓子、羊羹などの和菓子、プリン、ゼリー、アイスクリーム類などの冷菓、チューインガム、キャンディ等の菓子類、クラッカー、チップス等のスナック類、パスタ、うどん、そば等の麺類、かまぼこ、ハム、魚肉ソーセージ等の魚肉練り製品、みそ、しょう油、ドレッシング、マヨネーズ、甘味料等の調味料類、豆腐、こんにゃく、その他佃煮、餃子、コロッケ、サラダ、スープ、シチュー等の各種総菜、パン、カット野菜、魚の切り身、加工肉等を具体的に例示することができる。
上記のAla-Phe、Gly-Phe、若しくはそれらの塩、又はそれらを含むアンジオテンシンI変換酵素（ACE）阻害用組成物を含有する飲食品は、好ましくは機能性食品である。本発明の「機能性食品」は、一定の機能をもつ食品を意味し、例えば、特定保健用食品及び栄養機能食品を含む保健機能食品、特定用途食品（病者用食品、妊産婦・授乳婦用粉乳、乳児用調整粉乳、高齢者用食品等）に加えて、栄養補助食品、健康補助食品、サプリメント及び美容食品（例えばダイエット食品）等のいわゆる健康食品全般を包含する。本発明の機能性食品はまた、コーデックス（FAO/WHO合同食品規格委員会）の食品規格に基づく健康強調表示（Health claim）が適用される健康食品を包含する。
本発明の機能性食品は、錠剤、顆粒剤、散剤、丸剤、カプセル剤等の固形製剤、液剤、懸濁剤、シロップ剤等の液体製剤、あるいはジェル剤等の製剤の形状であってもよいし、通常の飲食品の形状（例えば、飲料、粉状茶葉、菓子等）であってもよい。
機能性食品へのAla-Phe、Gly-Phe、若しくはそれらの塩、又はそれらを含むアンジオテンシンI変換酵素（ACE）阻害用組成物の配合量、配合方法、並びに機能性食品に配合しうる添加物については、上記の飲食品の記載と同じである。
本発明の機能性食品は、限定するものではないが、特に血圧を降下させるためのものであることが好ましく、具体的には、血圧降下が望まれる人を対象とするものであることが好ましい。本発明において「血圧降下が望まれる人」とは、一般的には血圧が高めな人を意味し、客観的には同年代の同性の人々の平均値と比べて血圧が有意に高いけれどもまだ高血圧とは診断されていない人を指すが、血圧が日常的に高めであって血圧を降下させる必要性を感じると主観的に認識している人も包含されるものとする。「血圧降下が望まれる人を対象とする」とは、血圧降下が望まれる人の摂取に適した飲食品である旨が記載又は表示されており、それを摂取した人の血圧上昇レベルを抑制したり、血圧を降下させたりする効果が期待されることを意味する。血圧降下が望まれる人の摂取に適した飲食品である旨の記載又は表示は、例えば特定保健用食品及び栄養機能食品等の保健機能食品について法令上の規定に基づいて認められた機能表示（栄養成分機能表示又は保健用途の表示）に従ったものであってよい。
4) Ala-Phe、Gly-Phe、若しくはそれらの塩、又はそれらを含むアンジオテンシンI変換酵素（ACE）阻害用組成物を含有する医薬組成物
本発明は、Ala-Phe、Gly-Phe、若しくはそれらの塩、又はそれらを含むアンジオテンシンI変換酵素（ACE）阻害用組成物を有効成分として含有する医薬組成物にも関する。
本発明の医薬組成物には、医薬製剤上許容される担体又は添加物を配合してもよい。このような担体及び添加物の例として、水、医薬的に許容される有機溶剤、コラーゲン、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、カルボキシビニルポリマー、アルギン酸ナトリウム、水溶性デキストラン、カルボキシメチルスターチナトリウム、ペクチン、キサンタンガム、アラビアゴム、カゼイン、ゼラチン、寒天、グリセリン、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール、ワセリン、パラフィン、ステアリルアルコール、ステアリン酸、ヒト血清アルブミン、マンニトール、ソルビトール、ラクトース、医薬添加物として許容される界面活性剤などの他、リポゾームなどの人工細胞構造物などが挙げられる。使用される添加物は、製剤の剤形に応じて適宜又は組み合わせて選択される。本発明の医薬組成物は、さらに他の薬理成分を含有していてもよい。
本発明の医薬組成物は、経口的又は非経口的に投与することができるが、特に経口的に投与することが好ましい。経口的に投与される本発明の医薬組成物は、錠剤、顆粒剤、散剤、丸剤、カプセル剤などの固形製剤、ジェル剤、あるいは液剤、懸濁剤、シロップ剤などの液体製剤等の剤形であってよい。液体製剤として用いる場合には、本発明の医薬組成物を使用する際に再溶解させることを意図した乾燥物として供給してもよい。
上記剤形のうち経口用固形製剤は、薬学上一般に使用される結合剤、賦形剤、滑沢剤、崩壊剤、湿潤剤などの添加剤を含有してもよい。また、経口用液体製剤は、薬学上一般に使用される安定剤、緩衝剤、矯味剤、保存剤、芳香剤、着色剤などの添加剤を含有してもよい。
本発明の医薬組成物は、血圧降下作用を有することから、血圧降下剤として用いることができる。本発明の血圧降下剤は、血圧の上昇レベルを有意に抑制するか、あるいは血圧を有意に降下させることができる。本発明の血圧降下剤は、例えば、最大収縮期血圧を、単回投与から8時間後までに、投与前の血圧の90〜60％のレベルまで、降下させることができる。
また、本発明の医薬組成物の投与量は、投与対象の年齢及び体重、投与経路、投与回数により異なり、当業者の裁量によって広範囲に変更することができる。例えば、経口的に投与する場合には、本発明のAla-Phe、Gly-Phe、若しくはそれらの塩、又はそれらを含むアンジオテンシンI変換酵素（ACE）阻害用組成物の乾燥重量で、１日につき体重１kg当たり1mg〜1gであることが好ましい。本発明の医薬組成物は、単回投与でもよいが、6〜8時間の間隔で反復的に投与してもよい。
本発明の医薬組成物を投与する対象は、ヒト、家畜、愛玩動物、実験（試験）動物等を含む哺乳動物である。特に、血圧（収縮期血圧）が健常な個体の平均値よりも日常的に有意に高い哺乳動物、血圧（収縮期血圧）が健常な個体の平均値よりも高くなりやすい傾向のある哺乳動物、あるいは、高血圧の素因（遺伝的又は環境的素因）を有する哺乳動物が、本発明の医薬組成物を投与する対象として好ましい。本発明の医薬組成物は、副作用の心配が少ないことから、継続的に利用する上で非常に有用に用いることができる。
5) Ala-Phe、Gly-Phe及びそれらの塩、並びにそれらを含むアンジオテンシンI変換酵素（ACE）阻害用組成物の、血圧降下作用
本発明の、Ala-Phe、Gly-Phe及びそれらの塩、並びにアンジオテンシンI変換酵素（ACE）阻害用組成物は、血圧降下作用を有する。この血圧降下作用は、当業者に公知の方法によって確認することができるが、本発明においては例えば次のようにして確認することができる。
まず、12時間絶食させた高血圧自然発症ラット（SHR）（雄、日本SLCから購入可能）に、16mg/ml H2Oとして調製した本発明のAla-Phe、Gly-Phe若しくはそれらの塩又はそれらを含むアンジオテンシンI変換酵素（ACE）阻害用組成物を、一匹当たり1ml経口投与する。経口投与直前（0時間）、並びに経口投与の2、4、6及び8時間後に、(株)ソフトロン社製の非観血式自動血圧装置BP-98Aを用いてTail cuff 法により血圧測定を行う。血圧測定は、ラットを37℃で約10〜15分間予備保温し、そのすぐ後に行う。血圧測定は連続して複数回（2〜3回）行うことが好ましい。
血圧は、測定した最大収縮期血圧値について複数回の測定値の平均として表す。データは、分散分析(ANOVA)、Duncanの多重比較検定法、Student's t-test等によって統計的に処理し、実験群間での有意差及び有意性を検討することが好ましい。
本発明における血圧降下作用は、このようにして測定及び算出された血圧の値で評価することができる。本発明では、投与後の最大収縮期血圧（収縮期血圧）が投与直前の最大収縮期血圧と比較して95〜60％のレベルまで、好ましくは90％〜60％のレベルまで低下している場合に、血圧降下作用があるものとする。
本明細書で引用した全ての刊行物、特許および特許出願をそのまま参考として本明細書にとり入れるものとする。
以下、本発明を実施例を用いてさらに具体的に説明する。但し、本発明はこれら実施例にその技術的範囲が限定されるものではない。
[実施例１] 乾燥ビール酵母加水分解物由来画分の調製
本実施例で用いた乾燥ビール酵母加水分解物由来画分の調製手順の概略を図１に示す。
まず、キリンビール株式会社製の乾燥ビール酵母粉末（サッカロミセス・セレビシエ（Saccharomyces cerevisiae）；商品名 キリン乾燥ビール酵母A）50gに、0.05N NaOH 500ml、及びアルカラーゼ（Alcalase 2.4L FG；novozymes社製）10mlを添加し、50℃で12時間攪拌しながら加水分解を行った。その後、4℃下、10,000 x gで20分の遠心分離を行い、その上清をToyo No.2濾紙を用いて濾過した。濾液をXAD-2カラム（Rohm & Haas社製）に通し、非吸着画分を含む透過液を得た。一方、XAD-2カラムへの吸着画分を、順次、50％EtOH、100％EtOHを用いて溶出した。得られたそれぞれの画分を減圧下で濃縮し、さらに凍結乾燥した。このようにして得られた各画分の凍結乾燥物（粉末状）を、以下の実施例において使用した。
[実施例２] 乾燥ビール酵母加水分解物由来画分のin vitroにおけるアンジオテンシンI変換酵素（ACE）阻害活性
アンジオテンシンI変換酵素（ACE）阻害活性は、非特許文献３に記載の「酢酸エチル抽出法」に従ってアンジオテンシンI変換酵素（ACE）阻害率を算出し、それを指標として表した。酢酸エチル抽出法は、ACEを用いてHip（馬尿酸）-His-LeuからジペプチドHis-Leuを切断し、それによって遊離したHipを酢酸エチルで抽出することを利用した方法である。図２に、本実施例で用いたACE阻害活性の測定手順の概略を示した。
ACE阻害活性の指標とする、算出された阻害率（％）を表１に示す。
Figure 2005118619
表１に示される通り、50%EtOH溶出画分と100%EtOH溶出画分はいずれも高い阻害率を示したことから、それらが高いACE阻害活性を有することが分かった。
XAD-2カラム非吸着画分のACE阻害活性は低いことから、乾燥ビール酵母加水分解物中に含まれるACE阻害物質は疎水性を有することが推察された。
[実施例３] 乾燥ビール酵母加水分解物由来画分及び乾燥ビール酵母のin vivoにおける血圧上昇抑制作用
(1) 実験動物への乾燥ビール酵母加水分解物由来画分の給与
日本SLCから購入した、高血圧自然発症ラット（SHR）（雄、10週令、初体重平均300ｇ）を用いた。
飼育は、個別のワイヤーゲージに入れ、室温22℃±2℃、湿度は40〜60％、明暗周期は12時間（7時〜19時）の条件下で行った。飼育期間は22日間とした。飼料は午後10時から翌日の午前11時まで与え、水は自由摂取とした。
ラットに与える飼料は、基本飼料（ここでは「Con(-)」と称する）、基本飼料にNaClを１％添加した飼料（ここでは「Con(+)」と称する）、Con(+)に50%EtOH溶出画分（「Alka」）0.4％を添加した飼料（ここでは「(+)+Alka」と称する）、及びCon(+)に上記乾燥ビール酵母粉末（「koubo」）を３％添加した飼料（ここでは「(+)+Koubo」と称する）を用いた。飼料組成を表２に示した。
Figure 2005118619
実験群は、Con(-)を実験食として給与する対照群（Con(-)群）、Con(+)を実験食として給与する群（Con(+)群）、及び、実験前半に(+)+Alkaを実験食として給与（(+)+Alka群）し、実験後半には(+)+Alkaの代わりに(+)+Kouboを実験食として給与（(+)+Koubo群）する群とし、各群のラットを5匹とした。
各実験群のラットへの飼料の給与は図３に示すようにして行った。本実施例では、各実験群への飼料（Con(-)）の給与を開始した日付を、0日目とした。最初の2日間は全ての実験群にCon(-)を与え、その後4日間は各実験群に実験食（それぞれ、Con(-)、Con(+)、(+)+Alka）を与えた。さらにその後4日間は、Con(+)群及び(+)+Alka群にはCon(+)、Con(-)群にはそのままCon(-)を与えた。その後は実験終了まで再び各実験群の実験食を与えたが、但し(+)+Alka群には(+)+Alkaの代わりに(+)+Kouboを給与し、(+)+Koubo群と称した。
各実験群のラットについては、飼料摂取量と体重を毎日９時〜１１時に測定した。2日目の体重、6日間の累積飼料摂取量、及び体重増加量を表３に示す。各値は、各実験群のラット5匹の平均値±標準誤差(SEM)を表す。
Figure 2005118619
また、6日目の体重と、それ以降22日目までの16日間の累積飼料摂取量と体重増加量、及び解剖時の肝重量を表４に示す。各値は、各実験群に含まれるラット5匹についての平均値±標準誤差(SEM)を表す。
Figure 2005118619
表３に示すように、6日目までは、累積飼料摂取量、体重増加量のいずれにおいても各群間で有意差はみられなかった。6日目以降22日目までの16日間では、表４に示すように、(+)Koubo群は、Con(+)群に比べて、累積飼料摂取量と体重増加量のいずれにおいても有意に低いか、又は低い傾向を示した。解剖時の肝重量（体重比）については、Con(-)群、Con(+)群、(+)Koubo群間で有意な差はみられなかった。
(2) 血圧測定
本実施例では、ラットの血圧測定を、(株)ソフトロン社製の非観血式自動血圧装置BP-98Aを用いてTail cuff法により行った。ラットは、測定前に37℃で約10〜15分間予備保温し、その後連続して血圧測定を3回行った。測定値はその3回の測定の平均値として表した。得られた血圧測定値に基づく血圧の推移を図４に、各ラットにおける2日目の血圧測定値を0とした場合の血圧変化量に基づく血圧の変動を図５に示した。
図５に示したデータについては、Con(-)群、Con(+)群及び(+)+Alka群の3群間、並びにCon(-)群、Con(+)群及び(+)+Koubo群の3群間に関して、分散分析(ANOVA)を行って有意性を検討した。またそれらの有意差はDuncanの多重比較検定法で検討した。また、2群間の有意差については、Student's t-testによる検定も行った。
この結果、実験食（Con(-)、Con(+)、(+)+Alka）に変更してから3日間飼料を給与した後の血圧測定では、(+)+Alka群がCon(+)群に比べて有意に低い血圧上昇レベルを示した（図５）。その後、Con(-)、Con(+)、(+)+Alka食を4回給与した後で、Con(+)群と(+)+Alka群にはCon(+)食、Con(-)群にはそのままCon(-)食を給与した4日間の血圧測定では、実験群間の血圧上昇レベルに有意な差は認められなかった（図５）。さらに、続いてCon(-)群にはCon(-)食、Con(+)群にはCon(+)食、(+)+Alka群には(+)+Koubo食を給与したところ、12〜20日目の血圧測定では、(+)+Alka群に(+)+Koubo食を給与した群（ここでは、(+)+Koubo群と称する）がCon(+)群に比べて有意に低い血圧上昇レベルを示した（図５）。
以上の結果から、(+)+Alka食及び(+)+Koubo食が、血圧上昇抑制効果を有することが示された。後述の(4)及び(5)で示されるように、Con(+)群と(+)+Koubo群との間で血清中のACE活性に有意な差が認められないこと、腎臓におけるACE活性については(+)+Koubo群においてCon(-)群及びCon(+)群より低い値が示されることから、(+)+Koubo食による血圧上昇レベルの抑制は、少なくとも部分的には、腎臓におけるACE活性が低く維持されることに起因するものと推察された。
(3) 血清の調製
飼育最終日（22日目）に、各実験群のラットについて、ネンブタール麻酔下（0.1ml/体重100g）で開腹し、シリンジを用いて心臓より直接採血を行った。採血した血液は、試験管に入れ、室温で1時間放置した後、遠心分離（3,000rpm、15℃、15min）を行い、血清を分離した。
(4) 血清中のアンジオテンシンI変換酵素活性の測定
血清中のアンジオテンシンI変換酵素（ACE）活性の測定は、Liebermanら（Jack Lieberman,M.D.: Elevation of Serum Angiotensin-Converting-Enzyme（ACE）Level in Sarcoidosis. The American Journal of Medicine, 59, pp.365-367 (1975)）、及びKasaharaら（Kasahara, Y. and Ashihara, Y.: Colorimetry of angiotensin-I converting enzyme activity in serum. Clin. Chem., pp.1922-1925 (1981)）の方法に従い、酢酸エチル抽出法により行った。酢酸エチル抽出法は、ACEを用いてHip-His-LeuからジペプチドHis-Leuを切断し、それによって遊離した馬尿酸（Hip）を酢酸エチルで抽出することを利用した方法である。図６に、本実施例で用いた血清中のACE活性の測定手順の概略を示す。
血清中のACE活性を表５に示す。表５に示したデータについては、Con(-)群、Con(+)群及び(+)+Koubo群の3群間で分散分析(ANOVA)を行って、有意性を検討した。それらの有意差はDuncanの多重比較検定法で検討した。また、2群間の有意差についてはStudent's t-testによる検定も行った。その結果、血清中のACE活性については、Con(-)群、Con(+)群及び(+)Koubo群の3群間で有意な差が示されなかった。
Figure 2005118619
(5) 腎臓におけるACE酵素活性の測定
腎臓からのACE活性測定用サンプルの調製手順の概略を図７に示した。凍結した約0.7gの腎臓組織をテフロン製ホモジナイザーに入れ、10倍量の緩衝液（50mM Na2B4O7と200mM H３BO３とを混合し、pH8.3に調整）を加えてホモジナイズした後、4℃下で遠心分離（10,000rpm、20分）を行った。パスツールピペットで採取した上清を、測定用サンプルとした。
ACE活性の測定は、上記(4)に記載した血清の場合と同様に、酢酸エチル抽出法を用いて馬尿酸の定量を行い、その測定値に基づいて算出した。
さらに、腎臓組織に含まれるタンパク質1mg当たりのACE活性を算出するため、Lowryらの方法（Lowry, OH., Rosenbrough, NJ., Farr, AJ. and Randall RJ.: Protein measurement with the Folin phenol reagent. J. Biol. Chem., 193, pp.265-275 (1951)）に従って、使用した約0.7gの腎臓組織に含まれるタンパク量を定量した。
得られた測定値から、腎臓組織に含まれるタンパク質1mg当たりのACE活性を算出した。腎臓におけるACE活性を表６に示す。また表６のデータについては、Con(-)群、Con(+)群及び(+)+Koubo群の3群間で分散分析(ANOVA)を行って、有意性を検討した。それらの有意差はDuncanの多重比較検定法で検討した。また、2群間の有意差についてはStudent's t-testによる検定も行った。腎臓でのACE活性については、Con(-)群及びCon(+)群と比較して、(+)Koubo群で有意に低い値が示された（p<0.01）。
Figure 2005118619
[実施例４] アンジオテンシンI変換酵素阻害物質の探索及び構造解析
(1) カラムクロマトグラフィーによる分画
実施例２で高いACE阻害活性を示した50%EtOH溶出画分から、アンジオテンシンI変換酵素阻害物質の同定を試みた。
まず、実施例１と同様にして、乾燥ビール酵母をアルカラーゼにより加水分解し、遠心分離後に濾過して上清を得、それをXAD-2カラムに通し、カラムを水洗後、50％EtOHを用いてペプチド類の溶出を行った。さらに、50%EtOH溶出画分をロータリーエバポレーターで濃縮してエタノールを除去し、次いで凍結乾燥することにより、50%EtOH溶出画分の凍結乾燥物を調製した。この凍結乾燥物からACE阻害物質を同定するために本実施例で用いた手順を図８に示す。
凍結乾燥物を蒸留水に溶解した後、その可溶画分をSephadex-G-25カラムクロマトグラフィー（展開溶媒：蒸留水）にかけて、18の画分に分画した。得られたSephadex-G-25カラムクロマトグラフィーによる溶出パターンを図９に示す。各画分について280nmでの吸光度を測定した。吸光度が高かった画分については、実施例２と同様の方法でACE阻害活性も測定した。280nmで高い吸光度を示した画分17〜19は、ACE阻害活性（阻害率）の値もそれぞれ61%、62%、64%と高かった。溶出画分17、18、19、20及び24のACE阻害活性を表７に示す（表７）。高いACE阻害活性を示した画分17〜19を、ロータリーエバポレーターにより減圧下で濃縮した後、凍結乾燥した。
Figure 2005118619
(2) 逆相分取HPLCによる分画・精製
上記(1)で調製された高いACE阻害活性を示した画分の凍結乾燥物を、蒸留水に溶解した後、さらに逆相分取HPLCにかけた。なお逆相分取HPLCでは、カラムとしてDevelosil C30-UG-5（25mm×250mm）を、展開溶媒として1) 5%MeCN、及び2) 20%MeCNを用い、展開溶媒2)が180分で100%となるリニアグラジエント（線形勾配）で展開させた。流速は2.0ml/分、検出は215nmで行った。
図１０及び図１１は、上記(1)で調製された画分18を逆相分取HPLC（Develosil C30-UG-5（25mm×250mm））を行なって得られたHPLCクロマトグラムを示している。主要なピークは30、50、70分付近（溶出時間）で見られた。それらの主要なピークを図１０ではA〜C、図１１ではD〜Fとして示した。主要なピークについては、実施例２と同様にしてACE阻害活性を測定した。ピークAを含む画分（画分A）、ピークBを含む画分（画分B）のACE阻害活性（阻害率）は、18％、23％であった。同様に、ピークE、ピークFをそれぞれ含む画分（画分E、画分F）のACE阻害活性（阻害率）は、18％、14％であった。
次に、高いACE阻害活性を示した画分B及び画分Eを混合し、それをゲル濾過HPLCに供した。ゲル濾過HPLCでは、カラムとしてDevelosil 300 Diol-5（10mm×250mm）を用い、展開溶媒としては蒸留水を用いた。検出は215nmで行い、主要なピーク画分について上記と同様にACE阻害活性を測定した。得られたゲル濾過HPLCクロマトグラムを図１２に示す。3つの主要なピークG〜Iが得られたが、それらのピークを含む画分（画分G〜I）はいずれもACE阻害活性を示した（表８）。
Figure 2005118619
なお、ピーク画分G〜Iについては、再度Develosil C30-UG-5（4.6mm×250mm）による逆相分取HPLC分析を行い、ピークの単一性を確認した。
(3) アミノ酸分析及び質量分析（LC/MS・MS）
上記(2)で得られた単一ピークを含むピーク画分G〜Iのそれぞれについて、アミノ酸分析を行った。ピーク画分を0.5ml取り、それに12N HCl 0.5mlを加え、さらに、α-メルカプト酢酸を一滴入れ、N２ガスで試験管内の空気を置換した。次いでアルミホイルで遮光した状態でリアクションヒーターを使用して、110℃で24時間かけて加水分解を行った。放冷後、G-4グラスフィルターを用いて吸引濾過した。濾液を濃縮乾固した後、0.2Nのクエン酸ナトリウム緩衝液（pH2.2）2mlを加えてアミノ酸を溶解させ、フィルター濾過（親水性；0.2μm)を行ったものを、アミノ酸分析用サンプルとした。分析には、アミノ酸分析計（ATO MLC-703型）を用いた。
アミノ酸分析の結果、画分Gにはアミノ酸としてPheのみが検出された。一方、画分Hではアラニン（Ala）：フェニルアラニン（Phe）＝1:1、画分Iではグリシン（Gly）：フェニルアラニン（Phe）＝2:1〜1:1のアミノ酸モル比が検出された。このように、画分G〜Iはいずれも、フェニルアラニンを含んでいた。
続いて画分G〜Iについて、液体クロマトグラフ／タンデム型質量分析装置（LC/MS/MS；LCQ Advantage ion trap mass spectrometer (Thermo Finnigan)）を用いて質量分析を行った。
その結果、画分Gは、m/z 166 [ M+H]+を与えたことから、フェニルアラニン（Phe、又はF）と同定された。図１３に、画分Gについて得られたマススペクトラムとフェニルアラニンの化学構造式を示す。画分Hは、m/z 237 [ M+H]+を与え、さらにMS/MS分析の2次イオンとしてm/z 166 [M+H]+を与えたことから、アラニルフェニルアラニン(Ala-Phe、又はAF)と同定された。図１４に、画分Hについて得られたマススペクトラムとアラニルフェニルアラニンの化学構造式を示す。画分Iは、m/z 223 [ M+H]+を与え、さらに2次イオンとしてm/z 166 [M+H]+を与えたことから、グリシルフェニルアラニン(Gly-Phe、又はGF)と同定された。図１５に、画分Iについて得られたマススペクトラムとグリシルフェニルアラニンの化学構造式を示す。
[実施例５] 合成AF及びGFによる血圧降下作用
BACHEM(Bachem AG, Hauptstrasse 144, CH-4416, Budendorf)に合成を委託し入手した、合成アラニルフェニルアラニン(AF)又はグリシルフェニルアラニン(GF)を、12時間絶食させたSHRラット（雄、21週齢、366g〜396g；日本SLCから購入）に、16mg/ml H2Oとして一匹当たり1mlを経口投与した。経口投与直前（0時間）、並びに経口投与の2、4、6及び8時間後に、(株)ソフトロン社製の非観血式自動血圧測定装置BP-98Aを用いてTail cuff 法により血圧測定を２回行った。実験群は、AF投与群（２匹）、GF投与群（２匹）、対照群（AF又はGFの代わりに蒸留水を1ml経口投与；1匹）とした。
この結果を表９に示す。表中のAF投与群及びGF投与群のデータは、各群のラットの血圧測定値の平均値±標準誤差(SEM)である。
Figure 2005118619
このデータに基づく収縮期血圧の推移を示すグラフを図１６に示す。また、各ラットにおける0時間の血圧をOとしたときの血圧変化値を算出し、その値に基づく血圧の変化量の推移を図１７にグラフで示す。
図１６に示される通り、AFとGFはいずれも高血圧自然発症(SHR)ラットにおいて血圧降下作用を示した。対照群ラットの血圧変動が大きいために、投与の2、4、6時間後ではAF投与群、GF投与群における血圧降下は明瞭には示されていないが、投与の8時間後には、AF投与群とGF投与群は対照群に比べて明らかに低い血圧を示した。
図１７に示される通り、AF投与群とGF投与群では、少なくとも投与の８時間後まで血圧が降下したまま維持されていた。
本発明に係るペプチド及び組成物は、アンジオテンシンI変換酵素の活性を効果的に阻害することができる。また本発明に係るペプチド及び組成物は、飲食品、機能性食品及び医薬品に含有させることにより、血圧降下作用をもつ飲食品、機能性食品及び医薬品を製造することができる。

Claims (17)

  1. アラニルフェニルアラニン（Ala-Phe）であるジペプチド又はその塩。
  2. グリシルフェニルアラニン（Gly-Phe）であるジペプチド又はその塩。
  3. アラニルフェニルアラニン（Ala-Phe）、グリシルフェニルアラニン（Gly-Phe）、及びそれらの塩からなる群より選択される少なくとも１つを含有する、アンジオテンシンI変換酵素阻害用組成物。
  4. 以下の工程a)〜c)を含む、アンジオテンシンI変換酵素阻害用組成物の製造方法。
    a) ビール酵母を加水分解する工程、
    b) その加水分解物をクロマトグラフィー法によって分画する工程、及び
    c) アラニルフェニルアラニン（Ala-Phe）及び／又はグリシルフェニルアラニン（Gly-Phe）を含有する画分を分取する工程
  5. アラニルフェニルアラニン（Ala-Phe）及び／又はグリシルフェニルアラニン（Gly-Phe）を含有する画分が、分子量150〜2,000のペプチドを含む画分である、請求項４に記載の方法。
  6. 請求項４又は５に記載の方法により製造された、アンジオテンシンI変換酵素阻害用組成物。
  7. 請求項１又は２に記載のジペプチド又はその塩を含有する、飲食品用素材。
  8. 請求項１又は２に記載のジペプチド又はその塩を含有する、飲食品。
  9. 請求項１又は２に記載のジペプチド又はその塩を添加増量した飲食品。
  10. 請求項３又は６に記載の組成物を含有する、飲食品用素材。
  11. 請求項１０に記載の飲食品用素材を添加した飲食品。
  12. 飲料である、請求項８、９又は１１に記載の飲食品。
  13. 血圧を降下させるための、請求項８、９、１１又は１２に記載の飲食品。
  14. 請求項１又は２に記載のジペプチド又はその塩を含有する、医薬組成物。
  15. 請求項３又は６に記載の組成物を含有する、医薬組成物。
  16. 血圧降下剤である、請求項１４又は１５に記載の医薬組成物。
  17. 以下の工程a)〜c)を含む、アラニルフェニルアラニン（Ala-Phe）及び／又はグリシルフェニルアラニン（Gly-Phe）を含有する組成物の製造方法。
    a) ビール酵母を加水分解する工程、
    b) その加水分解物を、疎水性吸着剤を充填したカラムに通液する工程、及び
    c) 濃度50〜100％のエタノール水溶液を用いて、その疎水性吸着剤から吸着物質を溶出させる工程
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