JPS6388195A - ウルダマイシンgおよびその誘導体ならびにそれらの製法 - Google Patents
ウルダマイシンgおよびその誘導体ならびにそれらの製法Info
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- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
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- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
西ドイツ特許公開公報第3,441,933号にはウル
ダマイシンA−Fおよび相当するウルダマイシノンであ
るそれらのアグリコンが記載されている。これらウルダ
マイシンはタンザニアの土壌試料から単離された微生物
菌株を用いて発酵させることにより製造される。この微
生物はストレプトミセス・フラジエ(8treptom
yces Fradiae)と同定され、西ドイツ微生
物収集機関(DSM)に寄託番号DSM 3093の下
に寄託されている。相当するウルダマイシノンはウルダ
マイシンの酸加水分解またはメタツリシスにより得られ
うる。
ダマイシンA−Fおよび相当するウルダマイシノンであ
るそれらのアグリコンが記載されている。これらウルダ
マイシンはタンザニアの土壌試料から単離された微生物
菌株を用いて発酵させることにより製造される。この微
生物はストレプトミセス・フラジエ(8treptom
yces Fradiae)と同定され、西ドイツ微生
物収集機関(DSM)に寄託番号DSM 3093の下
に寄託されている。相当するウルダマイシノンはウルダ
マイシンの酸加水分解またはメタツリシスにより得られ
うる。
知られたウルダマイシンおよびウルダマイシノンは抗菌
作用および@瘍抑制作用を示しそしてそれゆえ医薬製剤
の形態で人間または動物の細菌感染の治療または腫瘍疾
患の治療に使用されうる。
作用および@瘍抑制作用を示しそしてそれゆえ医薬製剤
の形態で人間または動物の細菌感染の治療または腫瘍疾
患の治療に使用されうる。
ウルダマイシンA−Fの混合物の組成は微生物の培養条
件の如何によることが観察されている。従って全脂大豆
(2%)およびグルブース(2%)を含有する栄養培地
が使用される場合は主生成物(65%)としてウルダマ
イシンAが、一方ngs(モルホリノエタンスルホン酸
)緩衝液をこの栄養培地に添加するとウルダマイシンム
の生成が強く抑制され、そしてウルダマイシンCおよび
ウルダマイシンDが主に形成される。
件の如何によることが観察されている。従って全脂大豆
(2%)およびグルブース(2%)を含有する栄養培地
が使用される場合は主生成物(65%)としてウルダマ
イシンAが、一方ngs(モルホリノエタンスルホン酸
)緩衝液をこの栄養培地に添加するとウルダマイシンム
の生成が強く抑制され、そしてウルダマイシンCおよび
ウルダマイシンDが主に形成される。
ウルダマイシンEは肉エキスおよびグルコースを添加(
それぞれ20%)した栄養培地における主生成物(53
%)である。ウルダマイシンBは全脂大豆(2%)、グ
ルコース(1%)、殿粉(1ts)およびNaHPO4
(1% )が栄養培地ト1.テ使用された場合に主生成
物として産生される。
それぞれ20%)した栄養培地における主生成物(53
%)である。ウルダマイシンBは全脂大豆(2%)、グ
ルコース(1%)、殿粉(1ts)およびNaHPO4
(1% )が栄養培地ト1.テ使用された場合に主生成
物として産生される。
今、ウルダマイシンGが同様にストレプトミセス・フラ
ジエを用いて製造されうろことが見出された。収量はこ
こでも発酵の如何による。
ジエを用いて製造されうろことが見出された。収量はこ
こでも発酵の如何による。
この新規化合物およびそのアシル誘導体も知られたウル
ダマイシンと同様に抗菌作用および腫瘍抑制作用を有す
る。特にアシル誘導体はより活性が高(さえある。
ダマイシンと同様に抗菌作用および腫瘍抑制作用を有す
る。特にアシル誘導体はより活性が高(さえある。
それゆえ本発明は一般式I
(式中B1〜R4は相互に独立して水素または(C1〜
018)−アシル基を意味する)を有する化合物に関す
る。
018)−アシル基を意味する)を有する化合物に関す
る。
本発明はさらに、ストレプトミセス・7ラジエを培養し
、一般式Iを有する化合物を培養基から単離しそして場
合によりアシル化することからなる一般式Iを有する化
合物の製造にも関する。
、一般式Iを有する化合物を培養基から単離しそして場
合によりアシル化することからなる一般式Iを有する化
合物の製造にも関する。
本発明はまた薬剤の製造への一般式Iを有する化合物の
使用にも関する。
使用にも関する。
以下に本発明を特にその好ましい態様に関して説明する
。
。
ストレプトミセス・7ラジエは下記の特徴を有する。
胞子表面 am
胞子形態 Sa
色素形成性 C−
空気中の菌糸体の色 肉桂色
発酵にはストレプトミセス・7ラジ工%KDSM 30
93菌株が用いられる。DAM 3093の代りにその
突然変異体および変種もそれらがウルダマイシンGを合
成する限り使用されうる。かかる突然変異体はそれ自体
知られた方法で、物理的手段、例えば紫外線またはx、
l照射のような照射、または例えばエチルメタンスルホ
ネート(略称EMEI )または2−ヒト四キシー4−
メトキシベンゾフェノン(MOB)のような化学的突然
変異原によって生成されうる。
93菌株が用いられる。DAM 3093の代りにその
突然変異体および変種もそれらがウルダマイシンGを合
成する限り使用されうる。かかる突然変異体はそれ自体
知られた方法で、物理的手段、例えば紫外線またはx、
l照射のような照射、または例えばエチルメタンスルホ
ネート(略称EMEI )または2−ヒト四キシー4−
メトキシベンゾフェノン(MOB)のような化学的突然
変異原によって生成されうる。
好気性発酵に好ましい炭素源は同化しうる炭水化物およ
び糖アルコール例えばグルコース、ラクトースまたはD
−マンニトール、ならびに炭水化物含有天然産物例えば
麦芽エキスが適する。好ましい窒素含有栄養物質として
はアミノ酸、はプチドおよびタンパク質ならびKそれら
の分解産物例えばペプトンまたはトリプトン、さらに肉
エキス、粉砕された種子例えばとうもろこし、小麦、豆
種、大豆または綿の木の粉砕された種子、アルコール製
造の蒸留残留物、肉粉または酵母エキス、またアンモニ
ウム塩および硝酸塩が適当である。その他に栄養溶液は
例えばアルカリ金属またはアルカリ土類金属、鉄、亜鉛
およびマンカンの塩化物、炭酸塩、硫酸塩または燐酸塩
を付加的な無機塩として含有しうる。ウルダマイシンG
の生成は栄養溶液の総重量に基づきそれぞれ全脂大豆α
5〜5チ好ましくは2優、ならびにグルコースα5〜4
%好ましくは2%を含有する栄養溶液中で特に良的に進
行する。
び糖アルコール例えばグルコース、ラクトースまたはD
−マンニトール、ならびに炭水化物含有天然産物例えば
麦芽エキスが適する。好ましい窒素含有栄養物質として
はアミノ酸、はプチドおよびタンパク質ならびKそれら
の分解産物例えばペプトンまたはトリプトン、さらに肉
エキス、粉砕された種子例えばとうもろこし、小麦、豆
種、大豆または綿の木の粉砕された種子、アルコール製
造の蒸留残留物、肉粉または酵母エキス、またアンモニ
ウム塩および硝酸塩が適当である。その他に栄養溶液は
例えばアルカリ金属またはアルカリ土類金属、鉄、亜鉛
およびマンカンの塩化物、炭酸塩、硫酸塩または燐酸塩
を付加的な無機塩として含有しうる。ウルダマイシンG
の生成は栄養溶液の総重量に基づきそれぞれ全脂大豆α
5〜5チ好ましくは2優、ならびにグルコースα5〜4
%好ましくは2%を含有する栄養溶液中で特に良的に進
行する。
発酵は好気的に、すなわち例えば場合により空気または
酵素を導入して振盪フラスコまたは発酵器中で振盪また
は攪拌しながら液中にて遂行される。発酵は温度範囲的
18〜40℃、好ましくは約25〜30℃、特に27〜
28℃で行われうる。前記した条件下に定常期に達する
まで約60〜80時間、好ましくは70〜75時間微生
物を培養する。
酵素を導入して振盪フラスコまたは発酵器中で振盪また
は攪拌しながら液中にて遂行される。発酵は温度範囲的
18〜40℃、好ましくは約25〜30℃、特に27〜
28℃で行われうる。前記した条件下に定常期に達する
まで約60〜80時間、好ましくは70〜75時間微生
物を培養する。
数段階で培養するのが好ましい、すなわち、はじめに1
種またはそれ以上のライ;1培養物を液体栄養培地中に
調製し、これを次に実際の生産用培地すなわち主培養液
中に例えば容量比1:10で接種する。予備培器物は例
えば胞子形成された菌糸体を栄養溶液中に接種しそして
これを約48〜72時間生育せしめることにより得られ
る。胞子形成された菌糸体はこの菌株を固形または液体
状培会基例えば酵母−麦芽一寒天上約7日間生育せしめ
ることにより得られうる。。
種またはそれ以上のライ;1培養物を液体栄養培地中に
調製し、これを次に実際の生産用培地すなわち主培養液
中に例えば容量比1:10で接種する。予備培器物は例
えば胞子形成された菌糸体を栄養溶液中に接種しそして
これを約48〜72時間生育せしめることにより得られ
る。胞子形成された菌糸体はこの菌株を固形または液体
状培会基例えば酵母−麦芽一寒天上約7日間生育せしめ
ることにより得られうる。。
発酵の経過は培養液のpHまたは菌糸体量に基づき、薄
層クロマトグラフィーによるかまたは生物活性を検査す
ることにより監視され5る。
層クロマトグラフィーによるかまたは生物活性を検査す
ることにより監視され5る。
ウルグマイシンGは知られた方法に従い生成物の化学的
、物理的および生物学的性質を顧慮して培養基から単離
される。培養基中または何個の単離段階における抗生物
質濃度を試股するには、例えば溶離剤としてクロロホル
ム/メタノールを用いるシリカゲル上の薄層クロマトグ
ラフィーが用いられ、形成された抗生物質曾を好都合に
は検量溶液と比較する。
、物理的および生物学的性質を顧慮して培養基から単離
される。培養基中または何個の単離段階における抗生物
質濃度を試股するには、例えば溶離剤としてクロロホル
ム/メタノールを用いるシリカゲル上の薄層クロマトグ
ラフィーが用いられ、形成された抗生物質曾を好都合に
は検量溶液と比較する。
ウルダマイシンGは菌糸体または培巷ブロス中で知られ
たウルグマイシンA−Fと一緒に存在する。これら抗生
物質は濾過されてない培養ブロスから水非混和性または
水とわずかしか混和しない有機溶媒例えばクロロホルム
または酢酸エチルを用いて抽出され5る。しかしながら
これらは菌糸体中にはほんのわずかにしか存在しないの
で、例えば遠心分離によるか、または好ましくは濾過助
剤を添加してf適することにより培養ブロスから菌糸体
を分離するのが好都合である。
たウルグマイシンA−Fと一緒に存在する。これら抗生
物質は濾過されてない培養ブロスから水非混和性または
水とわずかしか混和しない有機溶媒例えばクロロホルム
または酢酸エチルを用いて抽出され5る。しかしながら
これらは菌糸体中にはほんのわずかにしか存在しないの
で、例えば遠心分離によるか、または好ましくは濾過助
剤を添加してf適することにより培養ブロスから菌糸体
を分離するのが好都合である。
次に抗生物質は好都合には弱酸性ないし中註關範囲、好
ましくは關6〜7で上澄みまたはP液から単離され5る
。この目的には好都合には水非混和性またはわずかじか
混和しない有機溶媒、特にクロロホルムまたはメチレン
クロライドのようなりロル化炭化水素あるいは酢酸エチ
ルのようなエステルが使用される。着色した抽出液を場
合により蒸発および極性有機溶媒中にとったのち無極性
溶媒好都合には石油エーテルのような炭化水素を用いて
沈殿させることにより、総抽出物の約80チまでを占め
うる強い親脂性成分を除去できる。残留物からウルダマ
イシンGがクロマトグラフィーにより単離されうる。
ましくは關6〜7で上澄みまたはP液から単離され5る
。この目的には好都合には水非混和性またはわずかじか
混和しない有機溶媒、特にクロロホルムまたはメチレン
クロライドのようなりロル化炭化水素あるいは酢酸エチ
ルのようなエステルが使用される。着色した抽出液を場
合により蒸発および極性有機溶媒中にとったのち無極性
溶媒好都合には石油エーテルのような炭化水素を用いて
沈殿させることにより、総抽出物の約80チまでを占め
うる強い親脂性成分を除去できる。残留物からウルダマ
イシンGがクロマトグラフィーにより単離されうる。
脱脂された粗製抽出物からウルダマイシンGを単離する
には、粗製抽出物を好都合にはシリカゲルカラムで清製
する。その場合溶離剤としては低分子量クロル化炭化水
素とアルカノールの混合物、例えばクロロホルムとメタ
ノールの容量比4:1の混合物またはメチレンクロライ
ドとメタノールの容量比85:15の混合物が良いこと
が判った。U々に着色したフラクションの形態で吸着さ
れた成分は種々に着色した溶出液の形態で連続して溶離
される。ウルダマイシンG(第2フラクシヨン)および
ウルダマイシンA(第572クシヨン、西ドイツ特許公
開公報第3,441,933号参照)が2つの主フラク
ション中に含有される。
には、粗製抽出物を好都合にはシリカゲルカラムで清製
する。その場合溶離剤としては低分子量クロル化炭化水
素とアルカノールの混合物、例えばクロロホルムとメタ
ノールの容量比4:1の混合物またはメチレンクロライ
ドとメタノールの容量比85:15の混合物が良いこと
が判った。U々に着色したフラクションの形態で吸着さ
れた成分は種々に着色した溶出液の形態で連続して溶離
される。ウルダマイシンG(第2フラクシヨン)および
ウルダマイシンA(第572クシヨン、西ドイツ特許公
開公報第3,441,933号参照)が2つの主フラク
ション中に含有される。
純粋なウルダマイシンGを単離するには、慣用の操作法
、例えばクロマトグラフィー、ゲル濾過、または適当な
有機溶媒中におけるその溶液からの沈殿が用いられる。
、例えばクロマトグラフィー、ゲル濾過、または適当な
有機溶媒中におけるその溶液からの沈殿が用いられる。
溶離剤として低級ハロゲン化炭化水素と低級アルカノー
ルとの混合物、例えばメチレンクロライド/エタノール
マタハクロロホルム/メタノールの例えば容量比9:1
の混合物を使用するシリカゲルでのクロマトグラフィー
、続いて適当な媒体例えばヒドロキシアルコキシプロピ
ルデキストラン(親指型、セファデックス(Sepha
dex)OLHブランド)でメタノールのような低級ア
ルカノールを用いるゲル濾過、そして次に沈殿、例えば
アセトンノヨウな極性有機溶媒中のウルダマイシンの濃
厚溶液を無極性溶媒特に例えば石油エーテルまたはn−
ヘキサンのような炭化水素中に滴下することによる沈殿
が特に良いことが判った。
ルとの混合物、例えばメチレンクロライド/エタノール
マタハクロロホルム/メタノールの例えば容量比9:1
の混合物を使用するシリカゲルでのクロマトグラフィー
、続いて適当な媒体例えばヒドロキシアルコキシプロピ
ルデキストラン(親指型、セファデックス(Sepha
dex)OLHブランド)でメタノールのような低級ア
ルカノールを用いるゲル濾過、そして次に沈殿、例えば
アセトンノヨウな極性有機溶媒中のウルダマイシンの濃
厚溶液を無極性溶媒特に例えば石油エーテルまたはn−
ヘキサンのような炭化水素中に滴下することによる沈殿
が特に良いことが判った。
ウルダマイシンGは橙色、無定形の固形物であって、メ
タノール、アセトン、DMSO、ジオキサンおよびクロ
ロホルム中に良好に溶解するが。
タノール、アセトン、DMSO、ジオキサンおよびクロ
ロホルム中に良好に溶解するが。
水およびアルカン中には溶解しない。この物質は固形状
態においておよびメ(3〜9特にpH5〜8の範囲の溶
液中で安定であり、従−って慣用の医薬製剤中に混入さ
れうる。
態においておよびメ(3〜9特にpH5〜8の範囲の溶
液中で安定であり、従−って慣用の医薬製剤中に混入さ
れうる。
抗菌作用は、例えばイン・ビトロのプレート−寒天拡散
テスト(直径6簡の1試験サークル当り10μL1にお
いて示されうるように、ダラム陽性ならびにダラム陰性
細菌の両方に有効である。α06〜α3μt/dの範囲
の最小阻止濃度で感受性を示す往々のPFI菌の例をあ
げれば、アクロモバクタ−・ジエミニアニ(Achro
mobactergeminiani )、バチルス−
プレビス(Bacillusbrevis)、バチルス
−サブチリス(B、 5ubtilis)、アースロバ
クターφオーレセンス(Arthrobacterau
ra日Cθns)、アースロバフタ−命りリスタロボイ
エテ(A、 crystallopoietθ)、ブレ
ビバクテリウム・フラバム(Brevibacteri
um flavum)および穏々のストレプトミセス科
(Streptomycetes )の菌例えばストレ
プトミセス・アンチバイオティクス(S、 antib
ioticua)、ストレプトミセス・バイオラセオル
バ−(S、 violaceoruber)、ストレプ
トミセス会ブラシナス(s、 prasinus)、ス
トレプトミセス・ラベンドウレ(S、 1avendu
lae)、ストレフトミセス・グラッセセンス(8,g
laucs−scens)およびストレプトミセス・ピ
リドクロモゲネス(S、 viridochromog
enes)である。
テスト(直径6簡の1試験サークル当り10μL1にお
いて示されうるように、ダラム陽性ならびにダラム陰性
細菌の両方に有効である。α06〜α3μt/dの範囲
の最小阻止濃度で感受性を示す往々のPFI菌の例をあ
げれば、アクロモバクタ−・ジエミニアニ(Achro
mobactergeminiani )、バチルス−
プレビス(Bacillusbrevis)、バチルス
−サブチリス(B、 5ubtilis)、アースロバ
クターφオーレセンス(Arthrobacterau
ra日Cθns)、アースロバフタ−命りリスタロボイ
エテ(A、 crystallopoietθ)、ブレ
ビバクテリウム・フラバム(Brevibacteri
um flavum)および穏々のストレプトミセス科
(Streptomycetes )の菌例えばストレ
プトミセス・アンチバイオティクス(S、 antib
ioticua)、ストレプトミセス・バイオラセオル
バ−(S、 violaceoruber)、ストレプ
トミセス会ブラシナス(s、 prasinus)、ス
トレプトミセス・ラベンドウレ(S、 1avendu
lae)、ストレフトミセス・グラッセセンス(8,g
laucs−scens)およびストレプトミセス・ピ
リドクロモゲネス(S、 viridochromog
enes)である。
人間および動物の腫瘍細胞に対するウルダマイシンGの
腫瘍抑制作用はイン・ビトロで示されうる。
腫瘍抑制作用はイン・ビトロで示されうる。
ウルダマイシンGの相当する(CrC+a)−アシル化
合物、好ましくは(C+〜C1o)−アシル化合am特
にアセチル化合物への変換は、それ自体知られた方法に
従い、所望の有機カルボン酸のアシル残基を導入するア
シル化剤を用いて遂行される。その場合適当なカルボン
酸、または反応往訪導体特に無水物が使用される。アシ
ル化は適当な縮合剤の存在下に、例えば遊離のカルボン
酸を使用する場合はジシクロへキシルカルボジイミドの
:うなカルボジイミド化合物、またはジイミダゾリル力
ルボニルのようなカルボニル化合物の存在下に、そして
例えば反応性カルボン酸誘導体を使用する場合は塩基性
薬剤、例えばトリエチルアミンのようなトリ低級アルキ
ルアミン、あるいは例えばピリジンまたは4−ジメチル
アミノピリジンのような複素環式塩基あるいは無水酢酸
ナトリウムのような塩基性塩の存在下に実施されうる。
合物、好ましくは(C+〜C1o)−アシル化合am特
にアセチル化合物への変換は、それ自体知られた方法に
従い、所望の有機カルボン酸のアシル残基を導入するア
シル化剤を用いて遂行される。その場合適当なカルボン
酸、または反応往訪導体特に無水物が使用される。アシ
ル化は適当な縮合剤の存在下に、例えば遊離のカルボン
酸を使用する場合はジシクロへキシルカルボジイミドの
:うなカルボジイミド化合物、またはジイミダゾリル力
ルボニルのようなカルボニル化合物の存在下に、そして
例えば反応性カルボン酸誘導体を使用する場合は塩基性
薬剤、例えばトリエチルアミンのようなトリ低級アルキ
ルアミン、あるいは例えばピリジンまたは4−ジメチル
アミノピリジンのような複素環式塩基あるいは無水酢酸
ナトリウムのような塩基性塩の存在下に実施されうる。
アシル化反応は溶媒または溶媒混合物の存在下または非
存在下に冷却下にか、室温でか、または加温下に、かつ
必要な場合は封管中および/または不活性気体例えば窒
素雰囲気中で実施されうる。適当な溶媒は例えば単純な
または置換された、例えばクロル化された脂肪族、環状
脂肪族または芳香族炭化水素であり、その場合適当なエ
ステル化試薬例えば無水酢酸、ならびに適当な塩基例え
ばピリジンが希釈剤として使用されうる。
存在下に冷却下にか、室温でか、または加温下に、かつ
必要な場合は封管中および/または不活性気体例えば窒
素雰囲気中で実施されうる。適当な溶媒は例えば単純な
または置換された、例えばクロル化された脂肪族、環状
脂肪族または芳香族炭化水素であり、その場合適当なエ
ステル化試薬例えば無水酢酸、ならびに適当な塩基例え
ばピリジンが希釈剤として使用されうる。
しかしながらこの反応は無水物特に無水酢酸を用いピリ
ジンまたは酢酸ナトリウムの存在下に実施されるのが好
ましい。反応温度および反応待間は一10℃〜+100
℃および2分ないし48時間、好ましくは20〜30℃
および8分ないし16時間である。無水物対塩基の比率
は2o:1〜1:1好ましくは2:1である。反応混合
物中のウルダマイシンGの濃度は0.05〜10%、好
ましくは0.1〜1チである。
ジンまたは酢酸ナトリウムの存在下に実施されるのが好
ましい。反応温度および反応待間は一10℃〜+100
℃および2分ないし48時間、好ましくは20〜30℃
および8分ないし16時間である。無水物対塩基の比率
は2o:1〜1:1好ましくは2:1である。反応混合
物中のウルダマイシンGの濃度は0.05〜10%、好
ましくは0.1〜1チである。
反応終了後反応生成物は抽出により単離されうる。さら
に精製するにはこれを次に例えば、シリカゲルでクロマ
トグラフィーに付することができる。
に精製するにはこれを次に例えば、シリカゲルでクロマ
トグラフィーに付することができる。
あるいはまたモノないしトリアジル化合物は”’r4A
、4C,B−テトラーO−アシルウルダマイシンGの塩
基性アシル分解によっても調製されうる。水性/アルコ
ール性溶液中アルカリ金属またはアルカリ土類金属の水
酸化物あるいはアルカリ金属炭酸塩のよ5な塩基が一1
0〜+100℃で使用される。このアシル分解は好まし
くは水性/メタノール性溶液中で飽和炭酸ナトリウム溶
液を用い25℃で行われる。続く後処理は前記のように
して行われる。
、4C,B−テトラーO−アシルウルダマイシンGの塩
基性アシル分解によっても調製されうる。水性/アルコ
ール性溶液中アルカリ金属またはアルカリ土類金属の水
酸化物あるいはアルカリ金属炭酸塩のよ5な塩基が一1
0〜+100℃で使用される。このアシル分解は好まし
くは水性/メタノール性溶液中で飽和炭酸ナトリウム溶
液を用い25℃で行われる。続く後処理は前記のように
して行われる。
前記アシル基は有機カルボン酸から訪導される。これら
カルボン酸には直鎖状、分枝鎖状、または星状の脂肪族
、脂肪族−芳香族または芳香族炭化水素基(これらの基
はまたそれら自身が未置換であるかまたはハロゲン例え
ば塩素才たは臭素で置換されるか、あるいはエステル化
またはエーテル化されたヒドロキシル基で置換されてい
る)が包含される。
カルボン酸には直鎖状、分枝鎖状、または星状の脂肪族
、脂肪族−芳香族または芳香族炭化水素基(これらの基
はまたそれら自身が未置換であるかまたはハロゲン例え
ば塩素才たは臭素で置換されるか、あるいはエステル化
またはエーテル化されたヒドロキシル基で置換されてい
る)が包含される。
かくして製造された化合物は同様に腫瘍抑制作用を示す
。
。
以下の実施例において本発明をさらに詳細に説明する。
チの表示は別に断わりなければ重量によるものとする。
実施例
1、a)産生性菌株の胞子懸濁液の調製500−の三角
フラスコ中の栄養溶液(酵母エキス4.!i’、麦?エ
キス101/、!ルコース41%水道水iz、滅菌前の
PH7,3)100ゴに菌株DSM 3093を接種し
そして27℃および12Orpmで回転振盪器上72時
間インキュベーションする。次に、固形化させるために
寒天20//lが添加された前記組成の培養基を含有す
る500−の三角フラスコ中に培養液20−を均等に分
散させそして上沿液をデカンテーションする。この培養
液を27℃で10〜14日間インキュベーションする。
フラスコ中の栄養溶液(酵母エキス4.!i’、麦?エ
キス101/、!ルコース41%水道水iz、滅菌前の
PH7,3)100ゴに菌株DSM 3093を接種し
そして27℃および12Orpmで回転振盪器上72時
間インキュベーションする。次に、固形化させるために
寒天20//lが添加された前記組成の培養基を含有す
る500−の三角フラスコ中に培養液20−を均等に分
散させそして上沿液をデカンテーションする。この培養
液を27℃で10〜14日間インキュベーションする。
この時間経過後に、生成したフラスコ中の胞子を、市販
の非イオン界面活性剤1滴を含有する脱ミネラル水50
0mで洗い落し、直ちに以後の使用に供するかまたは一
22℃で貯蔵する。
の非イオン界面活性剤1滴を含有する脱ミネラル水50
0mで洗い落し、直ちに以後の使用に供するかまたは一
22℃で貯蔵する。
b)三角フラスコ中の産生性菌株の培養物または予備培
養物の調製 栄養溶液(組成、肉粉2%、麦芽エキス10チ、炭酸カ
ルシウム1%および水を加えて100チとなす。−は圧
熱滅菌前で7.2)100−を含有する500−の三角
フラスコに斜面管上に生育した培養物または胞子懸濁液
[L2−を接種し、そして振盪器上120 rpmおよ
び27℃でインキュベーションする。抗生物質の産生け
72時間後に最大に達する。10および100tの、発
酵器の接種には同じ栄養溶液から得られる48時間令液
中培養物(5%)で充分である。
養物の調製 栄養溶液(組成、肉粉2%、麦芽エキス10チ、炭酸カ
ルシウム1%および水を加えて100チとなす。−は圧
熱滅菌前で7.2)100−を含有する500−の三角
フラスコに斜面管上に生育した培養物または胞子懸濁液
[L2−を接種し、そして振盪器上120 rpmおよ
び27℃でインキュベーションする。抗生物質の産生け
72時間後に最大に達する。10および100tの、発
酵器の接種には同じ栄養溶液から得られる48時間令液
中培養物(5%)で充分である。
2、 ウルダマイシンGの調製
10/、の発酵器を下記条件で操作する。
栄養培地:全脂大豆2チ
グルコース2%
pi(7,2
インキュベーション時間: 72時間
インキュベーション温度:27℃
攪拌速度:250rpm
通気:空気417分
エタノール性ポリオール溶液2〜3滴を反復して添加す
ることにより泡の発生が抑制されうる。約70時間後(
pH−5,3)に最大生産に達する。収量はウルダマイ
シンG約40■/lである。
ることにより泡の発生が抑制されうる。約70時間後(
pH−5,3)に最大生産に達する。収量はウルダマイ
シンG約40■/lである。
五 ウルダマイシンGの単離
Dshi093の発酵後、濾過助剤としてセライト2優
を添加して培養ブロスを濾過する。菌糸体をアセトンで
抽出し、有機相を蒸発させそして水性残留物を酢酸エチ
ルで抽出する。培養F液は同様にpt(7で酢酸エチル
を用(・て充分に抽出し尽す。この抽出液を菌糸体から
の抽出液と合し、乾燥しそして蒸発させる。油状の残留
物を充分量の石油エーテルで被覆する。析出した沈殿を
遠心分離しそして乾燥する。粗生成物をシリカゲルカラ
ム(シリカゲル60 、Macherey−Naged
)でメチレンクロライド/メタノール(85:15 v
:v)を用いてクロマトグラフィーする。溶出液の第2
フラクシヨン(黄赤色)中にウルダマイシンGが濃縮さ
れている。これをメタノール中セファデックスLH−2
0でさらに精製する。
を添加して培養ブロスを濾過する。菌糸体をアセトンで
抽出し、有機相を蒸発させそして水性残留物を酢酸エチ
ルで抽出する。培養F液は同様にpt(7で酢酸エチル
を用(・て充分に抽出し尽す。この抽出液を菌糸体から
の抽出液と合し、乾燥しそして蒸発させる。油状の残留
物を充分量の石油エーテルで被覆する。析出した沈殿を
遠心分離しそして乾燥する。粗生成物をシリカゲルカラ
ム(シリカゲル60 、Macherey−Naged
)でメチレンクロライド/メタノール(85:15 v
:v)を用いてクロマトグラフィーする。溶出液の第2
フラクシヨン(黄赤色)中にウルダマイシンGが濃縮さ
れている。これをメタノール中セファデックスLH−2
0でさらに精製する。
4、 ウルダマイシンGの特性
精製されたウルダマイシンGを少量のアセトン中に溶解
させ、そしてこの溶液を20倍の過剰のn−ヘキサン中
に滴下することにより沈殿させる。かくして得られる橙
色固体は141℃で分解しそして下記の性質を有する。
させ、そしてこの溶液を20倍の過剰のn−ヘキサン中
に滴下することにより沈殿させる。かくして得られる橙
色固体は141℃で分解しそして下記の性質を有する。
薄層クロマトグラフィー:(シリカゲル5ilG−25
* UV254+566 ) クロロホルム/メタノール(85:15;v:v):R
fα44 クロロホルム/メタノール(9: 1 ;v:v) :
uf[130 負のFAB−MS:IQ/+3=714(M;12%)
;664(4俤);654(5%);281(54チ)
;279(46チ)。
* UV254+566 ) クロロホルム/メタノール(85:15;v:v):R
fα44 クロロホルム/メタノール(9: 1 ;v:v) :
uf[130 負のFAB−MS:IQ/+3=714(M;12%)
;664(4俤);654(5%);281(54チ)
;279(46チ)。
C57Ha6014(714−77)に相当IP、 (
KBr) : 3420 ;2958 oh; 291
0:2840:1718;1650 sh; 1/
)45 日h; 1630; 1615;155
5crn−’ UV (メタノール) : 2max(ε)=426.
5(4060);319.5(2990)nm UV (メタノール/HC’t):λmaw(”)−4
30(3950);517(2900) nm UV (メタノール/ NaOH) :λmax(’)
=577.2(3800);404(1650);
324(6040) nm1HNMR(200MHz
、 CDCl2 ) :δ−(1513(d、 :J−
6Hz、 5C−CH3); 1.24 (s、 5−
OH5): 1.24 (d、J=6.5 Hz、 5
A−cn5) :約1.30 (covered 3’
−Ha) ; (1,43((1,J*6Hz、
6’−OH5) ; 1.4〜2.2 (compl
ex。
KBr) : 3420 ;2958 oh; 291
0:2840:1718;1650 sh; 1/
)45 日h; 1630; 1615;155
5crn−’ UV (メタノール) : 2max(ε)=426.
5(4060);319.5(2990)nm UV (メタノール/HC’t):λmaw(”)−4
30(3950);517(2900) nm UV (メタノール/ NaOH) :λmax(’)
=577.2(3800);404(1650);
324(6040) nm1HNMR(200MHz
、 CDCl2 ) :δ−(1513(d、 :J−
6Hz、 5C−CH3); 1.24 (s、 5−
OH5): 1.24 (d、J=6.5 Hz、 5
A−cn5) :約1.30 (covered 3’
−Ha) ; (1,43((1,J*6Hz、
6’−OH5) ; 1.4〜2.2 (compl
ex。
8H,5A−H2,2A−H2,3C−H2,2C’−
CH2); 1.84((1,J=15Hz、4−H
a); 2.16 (ad、J−15;2Hz、 4
−H6); 2.46 (ddi、 、T =13;5
,2Hz、 5’−H6) ;2.52 (a、J=1
2.5; 2−Ha); 2.79 (ad、 、’=
12.5 ; 2.5Hz、 2−H6); 3.1
9 (aa、 J=9 ; 9Hz、 5’−H);
&4〜五6(complex、 2H,4C−H。
CH2); 1.84((1,J=15Hz、4−H
a); 2.16 (ad、J−15;2Hz、 4
−H6); 2.46 (ddi、 、T =13;5
,2Hz、 5’−H6) ;2.52 (a、J=1
2.5; 2−Ha); 2.79 (ad、 、’=
12.5 ; 2.5Hz、 2−H6); 3.1
9 (aa、 J=9 ; 9Hz、 5’−H);
&4〜五6(complex、 2H,4C−H。
6’−H); 3.70 (e、 巾広、 4A−
H) ; 3.72 (covered。
H) ; 3.72 (covered。
5c−H) t l 73 (mT 4’、H)
;4−18 (dq T J−6,5:2H2; 5
A−H); 4.88(da、 J−11,5;2
Hz。
;4−18 (dq T J−6,5:2H2; 5
A−H); 4.88(da、 J−11,5;2
Hz。
2′−H);5.01(0,7Mm3X2H2,1人−
H);5.40(8,巾広、IC−H); 6.41
((1,J= 10 Hz、5−H);&89 (a
、 J−10Hz、 6−H) ;7.67 (a、
J=8 ;CL8Hz、 1l−H); 7.93
(d、 J−8;α3Hz、1O−H); 12.3
3 (s、巾広、OH)” ppm傘シグナルはD20
交換後に消失 コD(メタノール):λeXtr6.(σ20X10’
″5)=401(−9,2); 529(21,1);
289(1α0); 265(−4,7); 2
35(2CLO)nmCaEdo(c−(N 、 メ
タノール): +37S。
H);5.40(8,巾広、IC−H); 6.41
((1,J= 10 Hz、5−H);&89 (a
、 J−10Hz、 6−H) ;7.67 (a、
J=8 ;CL8Hz、 1l−H); 7.93
(d、 J−8;α3Hz、1O−H); 12.3
3 (s、巾広、OH)” ppm傘シグナルはD20
交換後に消失 コD(メタノール):λeXtr6.(σ20X10’
″5)=401(−9,2); 529(21,1);
289(1α0); 265(−4,7); 2
35(2CLO)nmCaEdo(c−(N 、 メ
タノール): +37S。
5、 5’、4A、4C,8−テトラ−0−アセチルウ
ルダマイシンGの製造 ウルダマイシンG 20 tqを無水酢酸/ピリジン(
2:1 v:v )混合物12−中室温で5.5時・間
攪拌する。この混合物を氷上に注ぎそして5〇−ずつの
クロロホルムを用いて3回抽出する。
ルダマイシンGの製造 ウルダマイシンG 20 tqを無水酢酸/ピリジン(
2:1 v:v )混合物12−中室温で5.5時・間
攪拌する。この混合物を氷上に注ぎそして5〇−ずつの
クロロホルムを用いて3回抽出する。
有機相を真空下に可縮しそして痕跡量のピリジン残分を
反復してトルエン中にとF)蒸発させることにより除去
する。固形残留物をシリカケ゛ル(カラム2.5X30
α、メチレンクロライド/エタノール95 : 5 v
/v )でクロマトグラフィーに付する。2個のフラク
ションが得られる(下部の方から数える)。
反復してトルエン中にとF)蒸発させることにより除去
する。固形残留物をシリカケ゛ル(カラム2.5X30
α、メチレンクロライド/エタノール95 : 5 v
/v )でクロマトグラフィーに付する。2個のフラク
ションが得られる(下部の方から数える)。
(1) tlc上単一なテトラ−0−アセチルークル
ダマイシンG17rN!、黄色、 C2)混合フラクション4”y s 黄色。
ダマイシンG17rN!、黄色、 C2)混合フラクション4”y s 黄色。
テトラ−0−アセチルーウルダマイシンGを次にセファ
デックスシト2o(カラム2.5x50cIn。
デックスシト2o(カラム2.5x50cIn。
メタノール)でクロマトグラフィーすることにより精製
してテトラ−0−アセチルーウルダマイシンG16岬(
65%)を黄色固形物として得た。
してテトラ−0−アセチルーウルダマイシンG16岬(
65%)を黄色固形物として得た。
薄層りOマドグラフィー(5iIG25 * U■50
4 + 566+20X20cIn、ガラス上[lL2
5 m (Macherey−Naged)) 。
4 + 566+20X20cIn、ガラス上[lL2
5 m (Macherey−Naged)) 。
展開距離15−:
りo o ホ/L/ ム/ メタノール(85’ 15
T v : v) : Rf [L70りaoホルム
/メタノール(9: 1. v:v) :P、fCL6
0c4sH54o18 (882,8) 融点161℃ 工R(KBr): 6450; 2990; 2950
; 1788; 1742;1670; 1657 s
h; 1603; 1566an−’Uv (メタノー
ル):λtQaX (リ−355(3060); 31
3(3030)+ 259(11760)nmIHIJ
MR(200MH2、CDC4) : δ=0.51
(d、 、T −&5H2,5C−CH3):1.1
6(d、J=6.5H2,5A−CH3);1.26
(B、 3−CH5); 1.29 (d、 J−6H
z、 6’−CH,5);1.2〜2.2 (comp
lex、 i2H,2A−Hz、 3A−Hz、 3
’−Hz、4−Hz、2C−Hz、3C−Hz);
2.01 ; 2.11; 2.14(3s、 5’
−、4A−および4C−OAc); 2.49 (s、
3H。
T v : v) : Rf [L70りaoホルム
/メタノール(9: 1. v:v) :P、fCL6
0c4sH54o18 (882,8) 融点161℃ 工R(KBr): 6450; 2990; 2950
; 1788; 1742;1670; 1657 s
h; 1603; 1566an−’Uv (メタノー
ル):λtQaX (リ−355(3060); 31
3(3030)+ 259(11760)nmIHIJ
MR(200MH2、CDC4) : δ=0.51
(d、 、T −&5H2,5C−CH3):1.1
6(d、J=6.5H2,5A−CH3);1.26
(B、 3−CH5); 1.29 (d、 J−6H
z、 6’−CH,5);1.2〜2.2 (comp
lex、 i2H,2A−Hz、 3A−Hz、 3
’−Hz、4−Hz、2C−Hz、3C−Hz);
2.01 ; 2.11; 2.14(3s、 5’
−、4A−および4C−OAc); 2.49 (s、
3H。
8−OAc):2.55(d、J:=13H2,2−F
Ja、Z83(己。
Ja、Z83(己。
J””’ 1312 H2p 2 ””6 ) F ’
59 (d t J r2 Hz OHす;16〜1
7 (complex、 2H,6’−H,5C−H
); 196(dq、J−9,6H2,5A−H);&
98(m、4′−H);4f:J6(S、 CH本);
4.70 (o、 J=3x2Hz、 4C−H)
; 484(0,、Tx3x2Hz、 4A−H) ;
486 (dd、 、T=9.9Hz。
59 (d t J r2 Hz OHす;16〜1
7 (complex、 2H,6’−H,5C−H
); 196(dq、J−9,6H2,5A−H);&
98(m、4′−H);4f:J6(S、 CH本);
4.70 (o、 J=3x2Hz、 4C−H)
; 484(0,、Tx3x2Hz、 4A−H) ;
486 (dd、 、T=9.9Hz。
5′−H)t 5−00 (s、巾広、IA−H);
5.00 (covered。
5.00 (covered。
2’−H); 5.49(d、 y−2Hz、
IC−H); 6.42(dd。
IC−H); 6.42(dd。
:r−10Hz、 5−H): 6,89 (d、
、T−1,0Hz、 6−H);a06 (d、J−
8Hz、1l−H): al 5(d、J−8Hz。
、T−1,0Hz、 6−H);a06 (d、J−
8Hz、1l−H): al 5(d、J−8Hz。
1o−H)ppm
申シグナルはD20交換後に消失
CD (メタノール):λextr; (σ20X 1
0−3) = 501(−4,6); 450(1,4
); 394(−12,0); 30B(2(13);
295 ah (16,5); 266(−11,
2);233(25,6)nm & 細胞増殖抑制作用に関するイン・ビトロ試験 この実験はHamburgerおよびSal!ll0n
氏(NewKngl、1.Med、29B、1321〜
1327(1978))の方法に従い行われた。培地は
McCoy 5 Aと置換しそして細胞数は5X102
個/プレートに低下させた。
0−3) = 501(−4,6); 450(1,4
); 394(−12,0); 30B(2(13);
295 ah (16,5); 266(−11,
2);233(25,6)nm & 細胞増殖抑制作用に関するイン・ビトロ試験 この実験はHamburgerおよびSal!ll0n
氏(NewKngl、1.Med、29B、1321〜
1327(1978))の方法に従い行われた。培地は
McCoy 5 Aと置換しそして細胞数は5X102
個/プレートに低下させた。
a)連続実験におけるL1210白血病細胞への作用
実施例4および5から得られるd々の濃厚の試験物質と
細胞を連続インキュベーションした。
細胞を連続インキュベーションした。
試験すべき化合物は細胞培養物を塗布する前に寒天プレ
ートに加えた。次に糾胞培養物をCO25チおよび02
20%を含有する大気中相対湿度95%および37℃で
インキュベーター中5〜7日間生育させた。この時間経
過後直径60μm以上を有する細胞コロニー数を比較の
ため試験物質なしで生育した細胞コロニー数と比較して
測定した(%)。
ートに加えた。次に糾胞培養物をCO25チおよび02
20%を含有する大気中相対湿度95%および37℃で
インキュベーター中5〜7日間生育させた。この時間経
過後直径60μm以上を有する細胞コロニー数を比較の
ため試験物質なしで生育した細胞コロニー数と比較して
測定した(%)。
b)1時間実験におけるL1210白血病細胞への作用
この試験においては、細胞を種々の濃度の試験物質と3
7℃で1時間インキュベーションした。次に細胞をMC
CO75A溶py、(Flow catalog。
7℃で1時間インキュベーションした。次に細胞をMC
CO75A溶py、(Flow catalog。
Meckenheim、西ドイツ)で2回洗い、そして
Hamburgerおよび13a1mon氏の方法によ
る寒天プレートに加える。この細胞を前記したようにし
て培養しそして細胞コロニー数を測定した(評価は已に
おけると同じ)。
Hamburgerおよび13a1mon氏の方法によ
る寒天プレートに加える。この細胞を前記したようにし
て培養しそして細胞コロニー数を測定した(評価は已に
おけると同じ)。
薬量/作用曲線から、連続インキュベーションおよび1
時間インキュベーションについてのIC5Q値を測定し
た。
時間インキュベーションについてのIC5Q値を測定し
た。
C)増殖実験
指数生長期にあるL−1210@i細胞(Rogwel
’IPark Memorial工nstitute(
RpM工)培地中細胞5X103個/rnt)をくぼみ
26個を有するミクロ滴定プレート中、C02S%およ
び相対湿度95チの空気中で種々の濃度の試験物質と共
に67℃で72時間インキュベーションした。65時間
後これに50μtの!l −(4,5−vメチルチアゾ
ール−2−イル) −2,5−’、;フェニルテトラゾ
リウムブロマイド(MTT) (燐酸塩緩衝食塩水(P
B8)中のMTT z、sn?/−)を加えた。このk
iTTは生きた細胞により赤色の水不溶性色素ホルマザ
ンに還元される。さらに7時間後に上回み培地を慎重に
除去した。ホルマザンはくぼみ1個当り100μtのジ
メチルスルホキシドラ添加し次に軽(振盪することによ
り溶解させた。各(ぼみの吸光をマルチサン(Mult
isan) 340 CC光度計(Mθaera、 F
low !A)を用い492nmで測定した。試験物質
を用いた細胞対試験物質なしの細胞の吸光比から結果を
計算した。
’IPark Memorial工nstitute(
RpM工)培地中細胞5X103個/rnt)をくぼみ
26個を有するミクロ滴定プレート中、C02S%およ
び相対湿度95チの空気中で種々の濃度の試験物質と共
に67℃で72時間インキュベーションした。65時間
後これに50μtの!l −(4,5−vメチルチアゾ
ール−2−イル) −2,5−’、;フェニルテトラゾ
リウムブロマイド(MTT) (燐酸塩緩衝食塩水(P
B8)中のMTT z、sn?/−)を加えた。このk
iTTは生きた細胞により赤色の水不溶性色素ホルマザ
ンに還元される。さらに7時間後に上回み培地を慎重に
除去した。ホルマザンはくぼみ1個当り100μtのジ
メチルスルホキシドラ添加し次に軽(振盪することによ
り溶解させた。各(ぼみの吸光をマルチサン(Mult
isan) 340 CC光度計(Mθaera、 F
low !A)を用い492nmで測定した。試験物質
を用いた細胞対試験物質なしの細胞の吸光比から結果を
計算した。
すべての場合において実験は4回実りされた。
結果の偏差は15チより少なかった。
その結果を下記の表にまとめる。
試験物質 工Cso Cμt/ゴ)ウルダマイシン
o 3.5 CL85セチルーウル
ダ マイシンG
o 3.5 CL85セチルーウル
ダ マイシンG
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1)式 I ▲数式、化学式、表等があります▼ (式中R^1〜R^4は相互に独立して水素または(C
_1−C_1_8)−アシル基を意味する)を有する化
合物。 2)R^1〜R^4が相互に独立して水素または(C_
1−C_1_0)−アシルを表わす特許請求の範囲第1
項記載の化合物。 3)R^1〜R^4が相互に独立して水素またはアセチ
ルである特許請求の範囲第1項記載の化合物。 4)式 I ▲数式、化学式、表等があります▼ (式中R^1〜R^4は相互に独立して水素または(C
_1〜C_1_8)−アシル基を意味する)を有する化
合物を製造するにあたり、 a)ストレプトミセス・フラジエを培養し、b)式 I
(式中R^1〜R^4は水素を意味する)を有する化合
物を単離しそして場合により c)この化合物をアシル化する、 ことからなる方法。 5)ストレプトミセス・フラジエDSM3093を用い
ることからなる特許請求の範囲第4項記載の方法。 6)全脂大豆0.5〜5%を含有する栄養溶液中でスト
レプトミセス・フラジエを培養することからなる特許請
求の範囲第4または5項記載の方法。 7)ストレプトミセス・フラジエを18℃〜40℃の温
度範囲で培養することからなる特許請求の範囲第4〜6
項のいずれか1項記載の方法。 8)温度範囲が25℃〜30℃であることからなる特許
請求の範囲第7項記載の方法。 9)ストレプトミセス・フラジエを40〜80時間培養
することからなる特許請求の範囲第4〜8項のいずれか
1項記載の方法。 10)ストレプトミセス・フラジエを70〜75時間培
養することからなる特許請求の範囲第9項記載の方法。 11)薬剤の製造への特許請求の範囲第1〜3項のいず
れか1項記載の式 I を有する化合物の使用。 12)腫瘍および感染性疾患治療用の薬剤の製造への特
許請求の範囲第11項記載の使用。 13)特許請求の範囲第1〜6項のいずれか1項記載の
式 I を有する化合物の抗生物質としての使用。 14)特許請求の範囲第1項記載の化合物の有効量およ
び製剤上受容されうる担体を含有する医薬組成物。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE3629274.5 | 1986-08-28 | ||
DE19863629274 DE3629274A1 (de) | 1986-08-28 | 1986-08-28 | Urdamycin g und dessen derivate, verfahren zu ihrer herstellung und ihre verwendung |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6388195A true JPS6388195A (ja) | 1988-04-19 |
Family
ID=6308376
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP62211508A Pending JPS6388195A (ja) | 1986-08-28 | 1987-08-27 | ウルダマイシンgおよびその誘導体ならびにそれらの製法 |
Country Status (9)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4859655A (ja) |
EP (1) | EP0259698A3 (ja) |
JP (1) | JPS6388195A (ja) |
AT (1) | AT390962B (ja) |
AU (1) | AU598293B2 (ja) |
DE (1) | DE3629274A1 (ja) |
DK (1) | DK447687A (ja) |
FI (1) | FI873699A (ja) |
PT (1) | PT85598B (ja) |
Families Citing this family (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FI873698A (fi) * | 1986-08-28 | 1988-02-29 | Hoechst Ag | Acylderivat av urdamycin a, deras framstaellning och anvaendning. |
DE3811463A1 (de) * | 1988-04-06 | 1989-10-19 | Behringwerke Ag | Sakyomicin e und dessen derivate, verfahren zu ihrer herstellung und ihre verwendung |
Family Cites Families (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE3441933A1 (de) * | 1984-11-16 | 1986-06-05 | Hoechst Ag, 6230 Frankfurt | Urdamycine, verfahren und streptomyceten-stamm zu ihrer herstellung und ihre verwendung |
DE3727139A1 (de) * | 1986-08-28 | 1988-03-10 | Hoechst Ag | Acylderivate von urdamycin a, ihre herstellung und ihre verwendung |
-
1986
- 1986-08-28 DE DE19863629274 patent/DE3629274A1/de not_active Withdrawn
-
1987
- 1987-08-26 US US07/089,434 patent/US4859655A/en not_active Expired - Fee Related
- 1987-08-26 FI FI873699A patent/FI873699A/fi not_active Application Discontinuation
- 1987-08-26 EP EP87112377A patent/EP0259698A3/de not_active Withdrawn
- 1987-08-27 DK DK447687A patent/DK447687A/da not_active Application Discontinuation
- 1987-08-27 PT PT85598A patent/PT85598B/pt unknown
- 1987-08-27 JP JP62211508A patent/JPS6388195A/ja active Pending
- 1987-08-27 AU AU77626/87A patent/AU598293B2/en not_active Expired - Fee Related
- 1987-10-08 AT AT0257987A patent/AT390962B/de not_active IP Right Cessation
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
DE3629274A1 (de) | 1988-03-10 |
US4859655A (en) | 1989-08-22 |
FI873699A (fi) | 1988-02-29 |
PT85598A (de) | 1987-09-01 |
ATA257987A (de) | 1990-01-15 |
AU598293B2 (en) | 1990-06-21 |
FI873699A0 (fi) | 1987-08-26 |
AT390962B (de) | 1990-07-25 |
DK447687A (da) | 1988-02-29 |
DK447687D0 (da) | 1987-08-27 |
PT85598B (de) | 1989-11-30 |
EP0259698A2 (de) | 1988-03-16 |
AU7762687A (en) | 1988-03-03 |
EP0259698A3 (de) | 1988-07-13 |
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