JPS634147B2 - - Google Patents
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- JPS634147B2 JPS634147B2 JP54110468A JP11046879A JPS634147B2 JP S634147 B2 JPS634147 B2 JP S634147B2 JP 54110468 A JP54110468 A JP 54110468A JP 11046879 A JP11046879 A JP 11046879A JP S634147 B2 JPS634147 B2 JP S634147B2
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Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Description
本発明は酵素免疫測定法における非特異的阻害
作用の除去法に関するものである。更に詳しくは
酵素免疫測定法による生体中の微量物質量の決定
の際、ゼラチン分解物又はケラチン分解物と塩類
を特定量共存させて、生体試料中に含まれる干渉
物質の影響を抑え、生体中に存在する、目的とす
る物質量の含量を正確に測定することを可能なら
しめるところの酵素免疫測定法における非特異的
阻害作用の除去法に関するものである。 一般に、血清、尿等の生体試料中に含有される
微量物質、例えば、ペプタイドホルモン類、ステ
ロイドホルモン類、蛋白質類などの含有量を決定
する場合、その濃度が非常に低いため、これまで
免疫反応を利用したラジオイムノアツセイ法が用
いられてきた。 また、最近になつて、簡便さ、安全性の面から
同じく免疫反応を利用した酵素免疫測定法、レー
ザーネフエロメトリー法が開発され、かくして血
清、尿を用いての微量物質を測定する免疫測定法
が拡められてきたのである。 しかしながら、これら免疫測定法の感度には一
定の限界があるので、さらに感度を高めるために
は測定試料を多く用いることが必要であつたが、
単に測定試料を多くするだけでは生体試料中に共
存するある種の因子によつて、免疫反応が非特異
的に阻害されるため、目的とする微量物質の定量
が大きく妨げられることがあきらかになつたので
ある。 例えば、固相法によるLHホルモンのラジオイ
ムノアツセイ〔Acta Endocrinologica Vol72、
235〜242(1973)〕の場合、α−フエトプロテイン
の酵素免疫測定法〔Clinica Chimica Acta
Vol87、367〜372(1978)〕の場合、及び二抗体法
及びチヤーコールデキストラン法によるセクレチ
ンのラジオイムノアツセイ〔Analytical
Biochemistry Vol87、376〜385(1978)〕の場合
等でそれぞれ明らかにされている。 従つて、これら免疫測定法(特に固相法の免疫
測定法)をより一般的に使い易くするためには測
定試料中の免疫反応阻害物質の影響を除去するこ
とが必須の条件とされてきたわけであるが、現状
においては、阻害作用が発現しない程度の少量の
検体を使用するとか、目的とする微量物質を抽出
等により阻害物質と分離したうえで、使用すると
か、標準検体中に測定物質を除去した同種又は異
種の検体試料を添加して使用するとかして、生体
試料中の免疫反応阻害作用の影響をできる限り抑
えて測定されている。 しかしながら、これら従来の操作は測定感度を
低下させたり、操作が繁雑になつたりしていずれ
も好ましいものではない。 そこで、本発明者らは、生体試料中の免疫反応
阻害物質による免疫微量測定法への免疫反応阻害
作用を抑制することができさえすれば、この問題
を解決することができるものと考え、鋭意研究を
続けた結果、先に、反応測定時に疎水性の高い蛋
白質であるコラーゲン水解物、即ちゼラチンを添
加し、かつイオン強度を高く保つことにより、上
記した被検体中のある成分による測定系への阻害
作用を抑制して、正確な酸素免疫測定ができると
ともに、測定試料を多く投入することができるこ
とを見い出したものである(特願昭53−157546
(特公昭59−25184、特許第1366997号))。 しかしながら、この方法においてもなお、低温
下で免疫反応測定を実施する場合においては、往
往にして、ゼラチンがゲル化してしまうために免
疫反応測定を正確に行なうことができない欠点が
存在していたものである。 本発明者らは、更に検討を重ね、ゼラチンにか
え、ゼラチン分解物を用いたところ、低温下での
ゲル化を防止することができ、かつ測定系への阻
害作用を消失させることができたものである。 更にケラチン分解物を用いた場合も、同様な効
果があることを見い出し、本発明を完成したもの
である。 従来、免疫測定系(一例として酵素免疫測定
法)に加えられる蛋白質としては、牛血清アルブ
ミン、家兎血清等があり、血清試料は測定系へ反
応液の10〜30%添加される。この時、血清試料中
の免疫反応阻害物質の作用を受け、その阻害物質
の量によつては目的とする微量物質の測定回収率
は3〜100%と、大きくばらついてしまつていた
のである。 本発明の特色とするところは、酵素免疫測定系
にゼラチン分解物又はケラチン分解物を0.1%以
上添加することによつて目的とする微量物質の測
定回収率を90〜100%まで高めるにある。 本発明に使用するゼラチン分解物は、アルカリ
又は酵素によりゼラチンを加水分解し、低分子化
したものであり、又、ケラチン分解物は、例え
ば、10%量のケラチンを1M苛性ソーダで100℃、
1時間加水分解したものである。 これら分解物は酵素免疫測定系に0.1%以上、
好ましくは0.5%程度添加させる。これら分解物
を使用すればゼラチンを用いるときのように反応
系がゲル化を起すことはない。 又、イオン強度を保つ塩類としては、測定系を
阻害しなければ、特に限定されないが臨床検査試
薬として一般的な食塩、燐酸塩が利用される。 この場合の塩濃度としては、例えば食塩につい
て述べれば、0.2M〜1.0Mで使用できるが、0.3M
程度が測定感度を高く保つために好ましい。 本発明において、免疫反応阻害作用を除去する
ためには、ゼラチン分解物又はケラチン分解物を
加える必要があるが、単独では完全ではなく、高
塩濃度を保つ塩濃度を保つ塩類を共存せしめ、し
かも両者を上記した特定量ずつ存在せしめること
が必要である。 本発明の酵素免疫測定法におけるゼラチン分解
物又はケラチン分解物0.1%以上と塩類0.2〜1.0M
の共存による生体試料中に存在する免疫反応阻害
作用の除去方法は、測定値の信頼性を高めること
ができ、かつ生体試料を多く使用できるので、更
に微量な物質を測定することができるとともに、
測定法の安定性を増加せしめることができるもの
である。 次に本発明の製造例、試験例及び実施例を示
す。 製造例 1 ゼラチンの酵素分解物製造:ゼラチンを10%濃
度とし、これにプロテアーゼを2μg/ml添加し、
50℃で10分〜40分程度反応させた後、100℃で20
分間加熱して反応を止め、分解物を得る。 製造例 2 ゼラチンのアルカリ分解物製造:ゼラチンを
1M苛性ソーダに溶かし、10%濃度とし、100℃で
1時間加水分解し、ゼラチン分解物を得る。 製造例 3 ケラチンのアルカリ分解物製造:ケラチンを10
%濃度とし、これに1M苛性ソーダに溶かし、10
%濃度とし1時間加水分解し、ケラチン分解物を
得る。 試験例 1 固相法によるインシユリンの酵素免疫測定系で
本発明によつて血清阻害作用が除去されるかどう
かを見た。測定方法は、実施例1に示すように行
ない、各血清に一定量(1μUnit)のインシユリ
ンを添加し、その回収率を調べた。 結果は第1図に示されるが、緩衝液Aによれば
インシユリンの回収率は20〜30%まで低下し、緩
衝液Kによれば90〜100%の回収率で測定できる
ことが分る。即ち、これによつて血清の阻害作用
が抑制されていることが分る。 試験例 2 試験例1と同様に固相法によるインシユリンの
酵素免疫測定系で本発明によつて血清阻害作用が
除去されるかどうかを見た。 ただし、緩衝液K中のチラチン分解物の代わり
にゼラチン分解物〔10%濃度のゼラチンを細菌プ
ロテアーゼ(サモアーゼ:大和化成社製)2μ
g/mlで50℃にて各時間(分)処理したもの〕を
使用し、緩衝液G0〜80とし、又人血清の量を100μ
とし、1μUnitのインシユリンを添加した場合
の各緩衝液における回収率を調べた。 その結果を表1に示す。
作用の除去法に関するものである。更に詳しくは
酵素免疫測定法による生体中の微量物質量の決定
の際、ゼラチン分解物又はケラチン分解物と塩類
を特定量共存させて、生体試料中に含まれる干渉
物質の影響を抑え、生体中に存在する、目的とす
る物質量の含量を正確に測定することを可能なら
しめるところの酵素免疫測定法における非特異的
阻害作用の除去法に関するものである。 一般に、血清、尿等の生体試料中に含有される
微量物質、例えば、ペプタイドホルモン類、ステ
ロイドホルモン類、蛋白質類などの含有量を決定
する場合、その濃度が非常に低いため、これまで
免疫反応を利用したラジオイムノアツセイ法が用
いられてきた。 また、最近になつて、簡便さ、安全性の面から
同じく免疫反応を利用した酵素免疫測定法、レー
ザーネフエロメトリー法が開発され、かくして血
清、尿を用いての微量物質を測定する免疫測定法
が拡められてきたのである。 しかしながら、これら免疫測定法の感度には一
定の限界があるので、さらに感度を高めるために
は測定試料を多く用いることが必要であつたが、
単に測定試料を多くするだけでは生体試料中に共
存するある種の因子によつて、免疫反応が非特異
的に阻害されるため、目的とする微量物質の定量
が大きく妨げられることがあきらかになつたので
ある。 例えば、固相法によるLHホルモンのラジオイ
ムノアツセイ〔Acta Endocrinologica Vol72、
235〜242(1973)〕の場合、α−フエトプロテイン
の酵素免疫測定法〔Clinica Chimica Acta
Vol87、367〜372(1978)〕の場合、及び二抗体法
及びチヤーコールデキストラン法によるセクレチ
ンのラジオイムノアツセイ〔Analytical
Biochemistry Vol87、376〜385(1978)〕の場合
等でそれぞれ明らかにされている。 従つて、これら免疫測定法(特に固相法の免疫
測定法)をより一般的に使い易くするためには測
定試料中の免疫反応阻害物質の影響を除去するこ
とが必須の条件とされてきたわけであるが、現状
においては、阻害作用が発現しない程度の少量の
検体を使用するとか、目的とする微量物質を抽出
等により阻害物質と分離したうえで、使用すると
か、標準検体中に測定物質を除去した同種又は異
種の検体試料を添加して使用するとかして、生体
試料中の免疫反応阻害作用の影響をできる限り抑
えて測定されている。 しかしながら、これら従来の操作は測定感度を
低下させたり、操作が繁雑になつたりしていずれ
も好ましいものではない。 そこで、本発明者らは、生体試料中の免疫反応
阻害物質による免疫微量測定法への免疫反応阻害
作用を抑制することができさえすれば、この問題
を解決することができるものと考え、鋭意研究を
続けた結果、先に、反応測定時に疎水性の高い蛋
白質であるコラーゲン水解物、即ちゼラチンを添
加し、かつイオン強度を高く保つことにより、上
記した被検体中のある成分による測定系への阻害
作用を抑制して、正確な酸素免疫測定ができると
ともに、測定試料を多く投入することができるこ
とを見い出したものである(特願昭53−157546
(特公昭59−25184、特許第1366997号))。 しかしながら、この方法においてもなお、低温
下で免疫反応測定を実施する場合においては、往
往にして、ゼラチンがゲル化してしまうために免
疫反応測定を正確に行なうことができない欠点が
存在していたものである。 本発明者らは、更に検討を重ね、ゼラチンにか
え、ゼラチン分解物を用いたところ、低温下での
ゲル化を防止することができ、かつ測定系への阻
害作用を消失させることができたものである。 更にケラチン分解物を用いた場合も、同様な効
果があることを見い出し、本発明を完成したもの
である。 従来、免疫測定系(一例として酵素免疫測定
法)に加えられる蛋白質としては、牛血清アルブ
ミン、家兎血清等があり、血清試料は測定系へ反
応液の10〜30%添加される。この時、血清試料中
の免疫反応阻害物質の作用を受け、その阻害物質
の量によつては目的とする微量物質の測定回収率
は3〜100%と、大きくばらついてしまつていた
のである。 本発明の特色とするところは、酵素免疫測定系
にゼラチン分解物又はケラチン分解物を0.1%以
上添加することによつて目的とする微量物質の測
定回収率を90〜100%まで高めるにある。 本発明に使用するゼラチン分解物は、アルカリ
又は酵素によりゼラチンを加水分解し、低分子化
したものであり、又、ケラチン分解物は、例え
ば、10%量のケラチンを1M苛性ソーダで100℃、
1時間加水分解したものである。 これら分解物は酵素免疫測定系に0.1%以上、
好ましくは0.5%程度添加させる。これら分解物
を使用すればゼラチンを用いるときのように反応
系がゲル化を起すことはない。 又、イオン強度を保つ塩類としては、測定系を
阻害しなければ、特に限定されないが臨床検査試
薬として一般的な食塩、燐酸塩が利用される。 この場合の塩濃度としては、例えば食塩につい
て述べれば、0.2M〜1.0Mで使用できるが、0.3M
程度が測定感度を高く保つために好ましい。 本発明において、免疫反応阻害作用を除去する
ためには、ゼラチン分解物又はケラチン分解物を
加える必要があるが、単独では完全ではなく、高
塩濃度を保つ塩濃度を保つ塩類を共存せしめ、し
かも両者を上記した特定量ずつ存在せしめること
が必要である。 本発明の酵素免疫測定法におけるゼラチン分解
物又はケラチン分解物0.1%以上と塩類0.2〜1.0M
の共存による生体試料中に存在する免疫反応阻害
作用の除去方法は、測定値の信頼性を高めること
ができ、かつ生体試料を多く使用できるので、更
に微量な物質を測定することができるとともに、
測定法の安定性を増加せしめることができるもの
である。 次に本発明の製造例、試験例及び実施例を示
す。 製造例 1 ゼラチンの酵素分解物製造:ゼラチンを10%濃
度とし、これにプロテアーゼを2μg/ml添加し、
50℃で10分〜40分程度反応させた後、100℃で20
分間加熱して反応を止め、分解物を得る。 製造例 2 ゼラチンのアルカリ分解物製造:ゼラチンを
1M苛性ソーダに溶かし、10%濃度とし、100℃で
1時間加水分解し、ゼラチン分解物を得る。 製造例 3 ケラチンのアルカリ分解物製造:ケラチンを10
%濃度とし、これに1M苛性ソーダに溶かし、10
%濃度とし1時間加水分解し、ケラチン分解物を
得る。 試験例 1 固相法によるインシユリンの酵素免疫測定系で
本発明によつて血清阻害作用が除去されるかどう
かを見た。測定方法は、実施例1に示すように行
ない、各血清に一定量(1μUnit)のインシユリ
ンを添加し、その回収率を調べた。 結果は第1図に示されるが、緩衝液Aによれば
インシユリンの回収率は20〜30%まで低下し、緩
衝液Kによれば90〜100%の回収率で測定できる
ことが分る。即ち、これによつて血清の阻害作用
が抑制されていることが分る。 試験例 2 試験例1と同様に固相法によるインシユリンの
酵素免疫測定系で本発明によつて血清阻害作用が
除去されるかどうかを見た。 ただし、緩衝液K中のチラチン分解物の代わり
にゼラチン分解物〔10%濃度のゼラチンを細菌プ
ロテアーゼ(サモアーゼ:大和化成社製)2μ
g/mlで50℃にて各時間(分)処理したもの〕を
使用し、緩衝液G0〜80とし、又人血清の量を100μ
とし、1μUnitのインシユリンを添加した場合
の各緩衝液における回収率を調べた。 その結果を表1に示す。
【表】
表1より明らかな如く、緩衝液Aよりも緩衝液
G0〜G40のいずれにおいても効果が認められるこ
とが分つた。 しかしながら、プロテアーゼ未処理のゼラチン
を用いた場合には、4℃の低温測定時においては
ゲル化がみられるのでこのような低温測定の場合
には緩衝液G10〜G40を用いるのがよいことが分
る。 実施例 1 サンドイツチ法によるインシユリンの酸素免疫
測定法:インシユリン測定系−A:緩衝液A
〔0.1M NaCl、1mM MgCl2、0.1%牛血清アル
ブミン、0.1%NaN3を含む0.001M燐酸ナトリウ
ム緩衝液(PH7.0)〕0.45mlに適当に希釈したイン
シユリン含有液50μを加え、更にシリコンゴム
−抗インシユリン抗体結合物(φ3×4mm)を1
ケ加えて、30℃で2時間振盪する。振盪終了後、
緩衝液Aにてシリコンゴムをよく洗浄し、緩衝液
Aで希釈した抗インシユリン抗体−β−ガラクト
シダーゼ複合体0.2mlを加えて、4℃にて一夜反
応させる。反応終了物を再び緩衝液Aにてよく洗
浄し、シリコンゴムに結合しているβ−ガラクト
シダーゼ活性を測定する。 インシユリン測定系−K:緩衝液K〔緩衝液A
にケラチン分解物0.5%とNaCl0.2Mを加えたも
の〕0.45mlに適当に希釈したインシユリン含有液
50μを加え、以下測定系Aと同様の操作をす
る。但し30℃、2時間振盪後のシリコンゴム固相
の洗浄は、はじめの緩衝液Kで行ない、ついで緩
衝液Aでする。 このようにして求められた上記両測定系での標
準曲線を第2図に示す。 ついで種々な人血清50μを用い両測定系で得
られたインシユリン測定値とラジオイムノアツセ
イ・インシユリンリアキツト(ダイナボツトRI
研究所製)法で得られたインシユリン値との相関
を求めた。 結果は第3図、第4図に示されるが、これから
測定系Aとラジオイムノアツセイ法との相関はみ
られないが、測定系Kとラジオイムアツセイ法と
ではよく相関することが分る。 実施例 2 人イムグロブリン−E(以下IgEと略す)の酵
素免疫測定法:固相をポリスチレンボール−抗体
IgG結合物、複合体を抗IgE抗体−β−ガラクト
シダーゼに代える以外は実施例1に示す方法で行
ない標準曲線を求め、次に5種類の乳幼児血清に
ついて試験例2に示した緩衝液A、緩衝液G10を
用いてIgE量を測定し、同時に各々の血清にIgE
(20単位/ml)を添加して両測定系におけるIgE
量を測定し、回収率を求めた。その結果を表2に
示す。
G0〜G40のいずれにおいても効果が認められるこ
とが分つた。 しかしながら、プロテアーゼ未処理のゼラチン
を用いた場合には、4℃の低温測定時においては
ゲル化がみられるのでこのような低温測定の場合
には緩衝液G10〜G40を用いるのがよいことが分
る。 実施例 1 サンドイツチ法によるインシユリンの酸素免疫
測定法:インシユリン測定系−A:緩衝液A
〔0.1M NaCl、1mM MgCl2、0.1%牛血清アル
ブミン、0.1%NaN3を含む0.001M燐酸ナトリウ
ム緩衝液(PH7.0)〕0.45mlに適当に希釈したイン
シユリン含有液50μを加え、更にシリコンゴム
−抗インシユリン抗体結合物(φ3×4mm)を1
ケ加えて、30℃で2時間振盪する。振盪終了後、
緩衝液Aにてシリコンゴムをよく洗浄し、緩衝液
Aで希釈した抗インシユリン抗体−β−ガラクト
シダーゼ複合体0.2mlを加えて、4℃にて一夜反
応させる。反応終了物を再び緩衝液Aにてよく洗
浄し、シリコンゴムに結合しているβ−ガラクト
シダーゼ活性を測定する。 インシユリン測定系−K:緩衝液K〔緩衝液A
にケラチン分解物0.5%とNaCl0.2Mを加えたも
の〕0.45mlに適当に希釈したインシユリン含有液
50μを加え、以下測定系Aと同様の操作をす
る。但し30℃、2時間振盪後のシリコンゴム固相
の洗浄は、はじめの緩衝液Kで行ない、ついで緩
衝液Aでする。 このようにして求められた上記両測定系での標
準曲線を第2図に示す。 ついで種々な人血清50μを用い両測定系で得
られたインシユリン測定値とラジオイムノアツセ
イ・インシユリンリアキツト(ダイナボツトRI
研究所製)法で得られたインシユリン値との相関
を求めた。 結果は第3図、第4図に示されるが、これから
測定系Aとラジオイムノアツセイ法との相関はみ
られないが、測定系Kとラジオイムアツセイ法と
ではよく相関することが分る。 実施例 2 人イムグロブリン−E(以下IgEと略す)の酵
素免疫測定法:固相をポリスチレンボール−抗体
IgG結合物、複合体を抗IgE抗体−β−ガラクト
シダーゼに代える以外は実施例1に示す方法で行
ない標準曲線を求め、次に5種類の乳幼児血清に
ついて試験例2に示した緩衝液A、緩衝液G10を
用いてIgE量を測定し、同時に各々の血清にIgE
(20単位/ml)を添加して両測定系におけるIgE
量を測定し、回収率を求めた。その結果を表2に
示す。
第1図は試験例における人血清中に加えたイン
シユリンの回収率を示す図で、a,bは緩衝液K
における各人血清に加えたインシユリンの回収率
を示し、a′,b′は緩衝液Aにおける各人血清に加
えたインシユリンの回収率を示している。第2図
は実施例1における標準曲線を示す図で、Aは緩
衝液Aにおける測定値、Kは緩衝液Kにおける測
定値を示している。第3図、第4図はラジオイム
ノアツセイ法(RIA)による測定値と酵素免疫測
定法(EIA)による測定値の相関を示す図で、酵
素免疫測定法は第3図では緩衝液Aを用い、第4
図では緩衝液Kを用いた。
シユリンの回収率を示す図で、a,bは緩衝液K
における各人血清に加えたインシユリンの回収率
を示し、a′,b′は緩衝液Aにおける各人血清に加
えたインシユリンの回収率を示している。第2図
は実施例1における標準曲線を示す図で、Aは緩
衝液Aにおける測定値、Kは緩衝液Kにおける測
定値を示している。第3図、第4図はラジオイム
ノアツセイ法(RIA)による測定値と酵素免疫測
定法(EIA)による測定値の相関を示す図で、酵
素免疫測定法は第3図では緩衝液Aを用い、第4
図では緩衝液Kを用いた。
Claims (1)
- 1 酵素免疫測定法による生体中微量物質量の決
定の際、ゼラチン分解物又はケラチン分解物0.1
%以上と塩類0.2M〜1.0Mとを共存させて、生体
試料中に含まれる干渉物質の影響を抑制すること
を特徴とする酵素免疫測定法における非特異的阻
害作用の除去法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP11046879A JPS5642142A (en) | 1979-08-31 | 1979-08-31 | Removing method for nonspecific reaction inhibiting action in immunity measuring method |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP11046879A JPS5642142A (en) | 1979-08-31 | 1979-08-31 | Removing method for nonspecific reaction inhibiting action in immunity measuring method |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS5642142A JPS5642142A (en) | 1981-04-20 |
JPS634147B2 true JPS634147B2 (ja) | 1988-01-27 |
Family
ID=14536465
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP11046879A Granted JPS5642142A (en) | 1979-08-31 | 1979-08-31 | Removing method for nonspecific reaction inhibiting action in immunity measuring method |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS5642142A (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH0588173U (ja) * | 1992-04-24 | 1993-11-26 | 日立工機株式会社 | 整流子電動機のブラシ保持器 |
WO2021255517A1 (en) | 2020-06-15 | 2021-12-23 | Toyota Jidosha Kabushiki Kaisha | Vehicle charged to positive potential and having friction neutralizing-static eliminating type lubrication mechanism |
Families Citing this family (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS58144748A (ja) * | 1982-02-23 | 1983-08-29 | Eiken Kagaku Kk | 免疫学的反応用ラテツクス試薬 |
GB8317855D0 (en) * | 1983-06-30 | 1983-08-03 | Iq Bio Ltd | Biochemical detection method |
DE3637253A1 (de) * | 1986-11-03 | 1988-05-05 | Behringwerke Ag | Latex-agglutinations-verfahren zum nachweis von anti-streptokokken-desoxyribonuclease b |
JP2714572B2 (ja) * | 1986-11-13 | 1998-02-16 | ベーリング・ダイアグノステイツクス・ゲゼルシヤフト・ミツト・ベシユレンクテル・ハフツング | 固相免疫測定アツセイ用のラクトフエリン含有インキュベーション媒質 |
JPH0746106B2 (ja) * | 1988-07-26 | 1995-05-17 | 帝人株式会社 | 免疫測定方法 |
JPH1138006A (ja) * | 1995-06-27 | 1999-02-12 | Dainabotsuto Kk | 検査方法及び検査用キット |
Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS5029735A (ja) * | 1973-03-22 | 1975-03-25 | ||
US3987159A (en) * | 1973-03-02 | 1976-10-19 | Schering Aktiengesellschaft | Stable sensitized erythrocytes and preparation means |
JPS52151726A (en) * | 1976-06-11 | 1977-12-16 | Takeda Chem Ind Ltd | Serodiagnostic reagent and method of preparing same |
US4081525A (en) * | 1976-08-16 | 1978-03-28 | Beckman Instruments, Inc. | Radioimmunoassay of plasma steroids |
US4088746A (en) * | 1976-11-11 | 1978-05-09 | Bio-Rad Laboratories, Inc. | Radioimmunoassay for thyroid-stimulating hormone (TSH) |
-
1979
- 1979-08-31 JP JP11046879A patent/JPS5642142A/ja active Granted
Patent Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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US3987159A (en) * | 1973-03-02 | 1976-10-19 | Schering Aktiengesellschaft | Stable sensitized erythrocytes and preparation means |
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WO2021255517A1 (en) | 2020-06-15 | 2021-12-23 | Toyota Jidosha Kabushiki Kaisha | Vehicle charged to positive potential and having friction neutralizing-static eliminating type lubrication mechanism |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS5642142A (en) | 1981-04-20 |
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