JPS6244174A - 植物の組織培養方法 - Google Patents
植物の組織培養方法Info
- Publication number
- JPS6244174A JPS6244174A JP60185438A JP18543885A JPS6244174A JP S6244174 A JPS6244174 A JP S6244174A JP 60185438 A JP60185438 A JP 60185438A JP 18543885 A JP18543885 A JP 18543885A JP S6244174 A JPS6244174 A JP S6244174A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- plant
- callus
- medium
- hydroquinone
- arbutin
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
［産業上の利用分野］
本発明は植物のカルスまたは腫瘍組織を用いて効率良く
アルブチンを製造するための組織培養方法に関する。
アルブチンを製造するための組織培養方法に関する。
［従来の技術］
従来アルブチンの製造方法には合成法（ＡｒｔｈｅｒＤ
、Ｊａｒｅｔｔ−ｃｏｒｐ ｏｆ Ｄｅｌａｗａｒｅ
Ｕ、Ｓ、Ｐ、 ３２０１３８５）とウワウルシ（Ａｒｃ
ｔｏｓｔａｐｈｙｌｏｓ ｕｖａ−ｕｒｓｉ）、コケモ
モ（Ｖａｃｃｉｎｉｕｍ ｖｉｔｉｓ−ｉｄａｅａ）な
どの天然植物から抽出する方法がある。
、Ｊａｒｅｔｔ−ｃｏｒｐ ｏｆ Ｄｅｌａｗａｒｅ
Ｕ、Ｓ、Ｐ、 ３２０１３８５）とウワウルシ（Ａｒｃ
ｔｏｓｔａｐｈｙｌｏｓ ｕｖａ−ｕｒｓｉ）、コケモ
モ（Ｖａｃｃｉｎｉｕｍ ｖｉｔｉｓ−ｉｄａｅａ）な
どの天然植物から抽出する方法がある。
［発明が解決しようとする問題点コ
合成法は、１）グルコースのアセチル化、２）ベンジル
エーテルの付加、３）脱アセチル化、４）脱ベンジル化
、の４工程からなり非常に繁雑であること、また抽出法
については、天然のウワウルシやコケモモのアルブチン
含有量が、それぞれ乾燥重量の５．０〜７．５％、４．
０〜７．０％と少ないうえに抽出の際に大量の鉛を使用
する。鉛を使用する方法は直接人体に摂取されたり、接
触するような医薬、農薬、化粧料添加物、食品添加物な
どに使用するための物質あるいはその原料を製造する方
法としては、重金属である鉛混入の危険があり、かつ使
用済の重金属を含む廃液の処理、廃棄などにも難点があ
り不適当である。
エーテルの付加、３）脱アセチル化、４）脱ベンジル化
、の４工程からなり非常に繁雑であること、また抽出法
については、天然のウワウルシやコケモモのアルブチン
含有量が、それぞれ乾燥重量の５．０〜７．５％、４．
０〜７．０％と少ないうえに抽出の際に大量の鉛を使用
する。鉛を使用する方法は直接人体に摂取されたり、接
触するような医薬、農薬、化粧料添加物、食品添加物な
どに使用するための物質あるいはその原料を製造する方
法としては、重金属である鉛混入の危険があり、かつ使
用済の重金属を含む廃液の処理、廃棄などにも難点があ
り不適当である。
本発明者等はこれら従来技術の問題点を解決する手段と
して、植物のカルス又は腫瘍組織を組織培養しアルブチ
ンを採取する方法について研究した結果、培地中にハイ
ドロキノンを添加することにより大量のアルブチンが培
養物中に蓄積することを見出し、先に特許出願をした。
して、植物のカルス又は腫瘍組織を組織培養しアルブチ
ンを採取する方法について研究した結果、培地中にハイ
ドロキノンを添加することにより大量のアルブチンが培
養物中に蓄積することを見出し、先に特許出願をした。
しかしながら本法においても、収率を上げる目的で基質
としてのハイドロキノンの添加量を増やすとかえって変
換効率が下り、結果として収率が低下するという欠点を
有していた。
としてのハイドロキノンの添加量を増やすとかえって変
換効率が下り、結果として収率が低下するという欠点を
有していた。
［問題点を解決するための手段］
本発明者等は上記の事情に鑑み、アルブチンを高収率で
得る組織培養方法について鋭意研究を重ねた結果、アル
ブチンの生産に用いる植物のカルスまたは腫瘍組織を継
代培養する際に一定量以下のハイドロキノンを培地に添
加して継代培養すると上記目的が達成できることを見出
し、この知見にもとずいて本発明を完成するに至った。
得る組織培養方法について鋭意研究を重ねた結果、アル
ブチンの生産に用いる植物のカルスまたは腫瘍組織を継
代培養する際に一定量以下のハイドロキノンを培地に添
加して継代培養すると上記目的が達成できることを見出
し、この知見にもとずいて本発明を完成するに至った。
すなわち本発明は１ｍ）４以下のハイドロキノンを添加
した培地で植物のカルスまたは腫瘍組織を継代培養する
ことによりアルブチン生成能に優れた培養物を誘導する
植物組織培養方法を提供するものである。
した培地で植物のカルスまたは腫瘍組織を継代培養する
ことによりアルブチン生成能に優れた培養物を誘導する
植物組織培養方法を提供するものである。
以下、本発明の詳細な説明する。
まずニチニチソウの芽生え（幼植物）の根、胚軸、子葉
、成熟植物の根、茎、葉、葉柄、花、花粉などの細胞群
又は組織片を出発原料として、これを通常の方法にてオ
ーキシンやサイトカイニンを添加した培地で培養すれば
カルスが誘導される。この場合、材料としていずれの植
物の器官の細胞群、組織を使用しても難易の差はあるが
カルスは誘導きれる。使用する培地はムラシゲ・スクー
グ培地に寒天を士ぜたものが通常用いられるがこれに限
らず、Ｗｈｉｔｅ、 Ｇａｍｂｏｒｇ、 Ｎ１ｔｓｃｈ
。
、成熟植物の根、茎、葉、葉柄、花、花粉などの細胞群
又は組織片を出発原料として、これを通常の方法にてオ
ーキシンやサイトカイニンを添加した培地で培養すれば
カルスが誘導される。この場合、材料としていずれの植
物の器官の細胞群、組織を使用しても難易の差はあるが
カルスは誘導きれる。使用する培地はムラシゲ・スクー
グ培地に寒天を士ぜたものが通常用いられるがこれに限
らず、Ｗｈｉｔｅ、 Ｇａｍｂｏｒｇ、 Ｎ１ｔｓｃｈ
。
Ｈｅ１ｌｅｒ、 ５ｃｈｅｎｋ−Ｈｉｌｄｅｂｒａｎｄ
ｔ、旧ｔｓｃｈ−Ｎ ｉ ｔｓｃｈ 。
ｔ、旧ｔｓｃｈ−Ｎ ｉ ｔｓｃｈ 。
Ｋｏｈｌｅｎｂａｃｈ−３ｃｈｍｉｄｔなどのいずれの
培地を用いてもよい。勿論、寒天を含まない液体培地で
もカルスは誘導できる。また一般にカルス誘導に際して
はオーキシンが必要とされるが、２．４−ジクロロフェ
ノキシ酢酸（２，４−Ｄ）、α−ナフタリン酢酸（ＨＡ
Ａ）、２．４．５−トリクロロフェノキシ酢酸（２，４
，５−Ｔ）、インドール酢酸（ＩＡＡ）などいずれを添
加してもよい。またサイトカイニンもゼアチン、６−ベ
ンジルアデニン、カイネチン、リボシルゼアチン、イソ
ペンテニルアデニンなどいずれを添加してもよい。添加
するオーキシンの濃度は、１０−７Ｍから１０−５Ｍの
範囲であり、サイトカイニンの濃度も１０−８Ｍから１
０’Ｍの範囲である。この様にして誘導したカルスは上
記培地に寒天を加えない液体培地に植え継ぎ振盪培養を
行う。もちろん寒天を含む培地でもカルスは分裂生長す
る。液体振盪培養では通気のために回転式振盪培養機か
往復式振盪培養機で常に振盪する。回転数は５０ｒｐｍ
から１５Ｏｒｐｍの範囲であればいずれでもよいが、１
１０ｒｐｍ程度が望ましい。培養中、光は照射してもし
なくてもよい。培養温度は２０°Ｃから３０°Ｃである
が、そのうちでも２７°Ｃ程度が望ましい。カルスは週
１回新しい培地に植え継ぎ、継代培養する。継代培養は
１ｍＭ以下のハイドロキノンを含む培地にて行なわれる
。ハイドロキノンの濃度が高過ぎるとカルスは増殖でき
ないので、０．０１ｍＭ乃至１ｍＭの数段階の濃度の培
地にて培養し、その中で最も高濃度の培地で増殖したカ
ルスを選び植えつぐようにする。このような操作を繰り
返すとカルスのハイドロキノンに対する耐性は次第に高
まってくる。
培地を用いてもよい。勿論、寒天を含まない液体培地で
もカルスは誘導できる。また一般にカルス誘導に際して
はオーキシンが必要とされるが、２．４−ジクロロフェ
ノキシ酢酸（２，４−Ｄ）、α−ナフタリン酢酸（ＨＡ
Ａ）、２．４．５−トリクロロフェノキシ酢酸（２，４
，５−Ｔ）、インドール酢酸（ＩＡＡ）などいずれを添
加してもよい。またサイトカイニンもゼアチン、６−ベ
ンジルアデニン、カイネチン、リボシルゼアチン、イソ
ペンテニルアデニンなどいずれを添加してもよい。添加
するオーキシンの濃度は、１０−７Ｍから１０−５Ｍの
範囲であり、サイトカイニンの濃度も１０−８Ｍから１
０’Ｍの範囲である。この様にして誘導したカルスは上
記培地に寒天を加えない液体培地に植え継ぎ振盪培養を
行う。もちろん寒天を含む培地でもカルスは分裂生長す
る。液体振盪培養では通気のために回転式振盪培養機か
往復式振盪培養機で常に振盪する。回転数は５０ｒｐｍ
から１５Ｏｒｐｍの範囲であればいずれでもよいが、１
１０ｒｐｍ程度が望ましい。培養中、光は照射してもし
なくてもよい。培養温度は２０°Ｃから３０°Ｃである
が、そのうちでも２７°Ｃ程度が望ましい。カルスは週
１回新しい培地に植え継ぎ、継代培養する。継代培養は
１ｍＭ以下のハイドロキノンを含む培地にて行なわれる
。ハイドロキノンの濃度が高過ぎるとカルスは増殖でき
ないので、０．０１ｍＭ乃至１ｍＭの数段階の濃度の培
地にて培養し、その中で最も高濃度の培地で増殖したカ
ルスを選び植えつぐようにする。このような操作を繰り
返すとカルスのハイドロキノンに対する耐性は次第に高
まってくる。
液体培養で継代しているカルスを、ハイドロキノンを含
む培地での継代培養に切り換える時期については特に制
限はないがカルスを誘導してから時を経ない方が、カル
スはより早くハイドロキノンに対する耐性を獲得するの
で好ましい。
む培地での継代培養に切り換える時期については特に制
限はないがカルスを誘導してから時を経ない方が、カル
スはより早くハイドロキノンに対する耐性を獲得するの
で好ましい。
ハイドロキノンを含む培地での継代培養を少なくとも３
ケ月以上継続した後、植えつぎ後３日目から１００日目
間に１０ｍＭ以下のハイドロキノンを再び添加するとす
みやかに多量のアルブチンが培地中に生産される。
ケ月以上継続した後、植えつぎ後３日目から１００日目
間に１０ｍＭ以下のハイドロキノンを再び添加するとす
みやかに多量のアルブチンが培地中に生産される。
［実施例１
次に実施例をあげて本発明をざらに詳細に説明する。本
発明はこれらに限定きれるものではない。
発明はこれらに限定きれるものではない。
実施例１
オーキシン類として２．４−Ｄを２．２Ｘ１０ ” ６
Ｍ含み寒天を含まないムラシゲ−スクーグ培地（ＫＣ社
裂、以下同じ） １８０ｒｎＱ−づつを５００＋Ｊの三
角フラスコに分注したものをオートクレーブで滅菌した
。
Ｍ含み寒天を含まないムラシゲ−スクーグ培地（ＫＣ社
裂、以下同じ） １８０ｒｎＱ−づつを５００＋Ｊの三
角フラスコに分注したものをオートクレーブで滅菌した
。
実験に使用したニチニチソウのカルスは以下のような処
理を施した。なお、培養条件は全て２７℃、光無照射下
で行ない、振盪培養する場合は回転式振盪培養装置（い
わしや科学源）を用いて１１０ｒｐｍで行なった。すな
わち、常法によりニチニチソウの茎より誘導したカルス
をハイドロキノン（三井石油化学製、以下同じ） ０．
０２ｍＭ−、０，２１１１Ｍ％ ０．５ｒｎＭｚ１ｍＭ
をそれぞれ含むムラシゲ・スクーグ培地に移植したとこ
ろ０．５ｍ１４以上のハイドロキノンを含む培地では増
殖しなかった。０ 、２ｍＭ以下の実験区でＬｆカルス
が増殖してきたので、０．２ｍＭ区のカルスを再び０．
２ｍＭハイドロキノンを含む培地で数回継代培養を行な
った。、かかるカルスを０．２＋＋）４．０．４ｍＭ、
０．６ｍＭ、 ０．８ｍＭ、 １．０ｍＭのハイドロキ
ノンを含む培地にそれぞれ移植した。０．６ｍＭ以下の
実験区で遅いながらもカルスが増殖してきたので、この
カルスを００６ｍＭハイドロキノンを含む培地で１年以
上継代培養を続けた。このような処理を経たカルス２ｇ
（生重量）を含む２０ｍＱ、細胞懸濁液をオートクレー
ブ殺菌済の５００ｄコルベンに植え込んだ。培養５日目
にハイドロキノン８８．１ｍｇを水溶”＜ｒｌとして培
地に添加した。
理を施した。なお、培養条件は全て２７℃、光無照射下
で行ない、振盪培養する場合は回転式振盪培養装置（い
わしや科学源）を用いて１１０ｒｐｍで行なった。すな
わち、常法によりニチニチソウの茎より誘導したカルス
をハイドロキノン（三井石油化学製、以下同じ） ０．
０２ｍＭ−、０，２１１１Ｍ％ ０．５ｒｎＭｚ１ｍＭ
をそれぞれ含むムラシゲ・スクーグ培地に移植したとこ
ろ０．５ｍ１４以上のハイドロキノンを含む培地では増
殖しなかった。０ 、２ｍＭ以下の実験区でＬｆカルス
が増殖してきたので、０．２ｍＭ区のカルスを再び０．
２ｍＭハイドロキノンを含む培地で数回継代培養を行な
った。、かかるカルスを０．２＋＋）４．０．４ｍＭ、
０．６ｍＭ、 ０．８ｍＭ、 １．０ｍＭのハイドロキ
ノンを含む培地にそれぞれ移植した。０．６ｍＭ以下の
実験区で遅いながらもカルスが増殖してきたので、この
カルスを００６ｍＭハイドロキノンを含む培地で１年以
上継代培養を続けた。このような処理を経たカルス２ｇ
（生重量）を含む２０ｍＱ、細胞懸濁液をオートクレー
ブ殺菌済の５００ｄコルベンに植え込んだ。培養５日目
にハイドロキノン８８．１ｍｇを水溶”＜ｒｌとして培
地に添加した。
また比較例としてハイドロキノン無添加−の培地で継代
培養したカルスを準備し、その他は実施例と同条件のも
のを１０本培養した。６日目、培養液を東洋濾紙Ｎｏ、
２で吸引濾過し残渣を充分純水で洗浄した。残渣を２０
０＋ｎＭなす型フラスコに移し、１００ｍ１の純水を加
えて ３分間、ヒスコトロン（日音速理科器械製作所製
）でホモジナイズし、湯浴上１００℃で２時間熱水抽出
を行なった。
培養したカルスを準備し、その他は実施例と同条件のも
のを１０本培養した。６日目、培養液を東洋濾紙Ｎｏ、
２で吸引濾過し残渣を充分純水で洗浄した。残渣を２０
０＋ｎＭなす型フラスコに移し、１００ｍ１の純水を加
えて ３分間、ヒスコトロン（日音速理科器械製作所製
）でホモジナイズし、湯浴上１００℃で２時間熱水抽出
を行なった。
これを遠心分離により上澄液をストックし、これをシリ
カゲルカラム（Ｗａｋｏ ｇｅｌ Ｃ−３００、和
光純薬裂）にかけ、混合溶出ｅ（りＯｒ：１ホルム：メ
タノール：水＝３０：１０：１）で溶出し、溶媒を留去
してアルブチンを結晶として２０５ｍｇ得た。比較例で
は１２０ｍｇであった。
カゲルカラム（Ｗａｋｏ ｇｅｌ Ｃ−３００、和
光純薬裂）にかけ、混合溶出ｅ（りＯｒ：１ホルム：メ
タノール：水＝３０：１０：１）で溶出し、溶媒を留去
してアルブチンを結晶として２０５ｍｇ得た。比較例で
は１２０ｍｇであった。
実施例２．３および比較例２．３
リンスマイヤー・スクーグの培地（極東製薬工業裂）を
使用した他は実施例１と同様の条件で培養を行った。培
養６日目にハイドロキノンを１１０ｍｇ（実施例２ ）
、１３２ｍｇ （実施例３）を添加し、７日目に実施
例１の要領で抽出し、高速液体クロマトグラフィー（日
本分光製）で定量した。溶媒は５％メタノール（ｐｈ
２．１）を使用し、流量１ 、５ ｍＬ ／ｍｉｎ、
、検出波長２３０ｎｍの条件で行なった。カラムはＯＤ
Ｓカラム（センシュウ科学製、５ｓｃ−。
使用した他は実施例１と同様の条件で培養を行った。培
養６日目にハイドロキノンを１１０ｍｇ（実施例２ ）
、１３２ｍｇ （実施例３）を添加し、７日目に実施
例１の要領で抽出し、高速液体クロマトグラフィー（日
本分光製）で定量した。溶媒は５％メタノール（ｐｈ
２．１）を使用し、流量１ 、５ ｍＬ ／ｍｉｎ、
、検出波長２３０ｎｍの条件で行なった。カラムはＯＤ
Ｓカラム（センシュウ科学製、５ｓｃ−。
Ｄ Ｓ −１６１）を使用した。その結果、アルブチン
の収量は２５９ｍｇ （実施例２ ） 、 ３０６ｍｇ
（実施例３）であった。一方ハイドロキノン処理をし
ないまま継代培養したカルスを使った比較例では収量１
０１ｍｇ （比較例２） 、 ６９ｍｇ （比較例３）
であった。
の収量は２５９ｍｇ （実施例２ ） 、 ３０６ｍｇ
（実施例３）であった。一方ハイドロキノン処理をし
ないまま継代培養したカルスを使った比較例では収量１
０１ｍｇ （比較例２） 、 ６９ｍｇ （比較例３）
であった。
表１に実施例１〜３および比較例１〜３のアルブチン生
産量と転換率を示す。ただし数値ば１０フラスコで生産
きれた総量の平均値である。
産量と転換率を示す。ただし数値ば１０フラスコで生産
きれた総量の平均値である。
表１
本発明によって生産されたアルブチンの機器分析による
データは、紫外吸収、赤外吸収、１３Ｃ核磁気共鳴の各
スペクトル分析において、市販されているアルブチン（
シグマ社製）のものと一致した。
データは、紫外吸収、赤外吸収、１３Ｃ核磁気共鳴の各
スペクトル分析において、市販されているアルブチン（
シグマ社製）のものと一致した。
Claims (2)
- （１）１ｍＭ以下のハイドロキノンを添加した培地で植
物のカルスまたは腫瘍組織を継代培養することによりア
ルブチン生成能に優れた培養物を誘導する植物組織培養
方法。 - （２）植物がニチニチソウ（Ｃａｔｈａｒａｎｔｈｕｓ
ｒｏｓｅｕｓＬ．）である特許請求の範囲第１項記載
の培養方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP60185438A JPH062053B2 (ja) | 1985-08-23 | 1985-08-23 | 植物の組織培養方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP60185438A JPH062053B2 (ja) | 1985-08-23 | 1985-08-23 | 植物の組織培養方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6244174A true JPS6244174A (ja) | 1987-02-26 |
| JPH062053B2 JPH062053B2 (ja) | 1994-01-12 |
Family
ID=16170789
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP60185438A Expired - Lifetime JPH062053B2 (ja) | 1985-08-23 | 1985-08-23 | 植物の組織培養方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH062053B2 (ja) |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6467129A (en) * | 1987-09-07 | 1989-03-13 | Mitsui Toatsu Chemicals | Tissue culture of radish |
| JPH01269498A (ja) * | 1988-04-22 | 1989-10-26 | Shiseido Co Ltd | アルブチンの製造方法 |
| JP2006111581A (ja) * | 2004-10-15 | 2006-04-27 | Nitto Best Kk | アルブチンの分離精製方法 |
| CN110800419A (zh) * | 2019-12-11 | 2020-02-18 | 湖北省益客迅电子商务有限公司 | 一种漆树根育苗方法 |
-
1985
- 1985-08-23 JP JP60185438A patent/JPH062053B2/ja not_active Expired - Lifetime
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6467129A (en) * | 1987-09-07 | 1989-03-13 | Mitsui Toatsu Chemicals | Tissue culture of radish |
| JPH01269498A (ja) * | 1988-04-22 | 1989-10-26 | Shiseido Co Ltd | アルブチンの製造方法 |
| JP2006111581A (ja) * | 2004-10-15 | 2006-04-27 | Nitto Best Kk | アルブチンの分離精製方法 |
| JP4738788B2 (ja) * | 2004-10-15 | 2011-08-03 | 日東ベスト株式会社 | アルブチンの分離精製方法 |
| CN110800419A (zh) * | 2019-12-11 | 2020-02-18 | 湖北省益客迅电子商务有限公司 | 一种漆树根育苗方法 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH062053B2 (ja) | 1994-01-12 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| RU2398874C2 (ru) | Клеточные клоны камбия, способ их выделения и консервации | |
| EP0380692B1 (en) | Plant tissue culture process | |
| JPS6296088A (ja) | 抗腫瘍性物質の製法 | |
| JPH0315326A (ja) | Ｐｉｎｅｌｌｉａ属植物の幼苗の生産方法 | |
| JPS6244174A (ja) | 植物の組織培養方法 | |
| Sujana et al. | Indirect plant regeneration from leaf explants of Mentha piperita L.–an important multipurpose medicinal plant | |
| JP2967532B2 (ja) | タキサン類化合物の製造方法 | |
| JPS61124391A (ja) | アルブチンの製造法 | |
| US5300128A (en) | Method of plant tissue culture | |
| JPS6036B2 (ja) | ムラサキ科植物の組織培養方法 | |
| JP2873023B2 (ja) | ポドフィロトキシン類化合物の製造方法 | |
| KR20050078372A (ko) | 산삼 배발생캘러스 배양에 의한 유식물체 및 부정근의생산방법 | |
| JPS6314953B2 (ja) | ||
| US5217892A (en) | Method of plant tissue culture | |
| JPS62289193A (ja) | ニンニクの組織培養によるアリイン等含硫化合物の製造法 | |
| JPH0951796A (ja) | フォルスコリンの製造方法 | |
| JPH05103685A (ja) | アントシアニン系色素の製造方法 | |
| JPH03244328A (ja) | シクラメンの組織培養培地および同培地を用いるシクラメンの組織培養方法 | |
| JPH07123878A (ja) | 同質４倍体パチョリ植物及びこれを用いるパチョリ精油の製造法 | |
| JPS62190075A (ja) | ウリ科植物の組織培養物の製造法 | |
| JPS63258589A (ja) | コルチカムの組織培養によるコルヒチン又はデメコルシンの製造法 | |
| JP2684401B2 (ja) | 植物体再生促進法 | |
| JPS63245687A (ja) | プロトピンの製造方法 | |
| JPH02249495A (ja) | グリシルリチンの製造方法 | |
| JPS63237784A (ja) | ブプレウルム属植物の根の培養方法 |