JPS6236672B2 - - Google Patents
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
この発明は、発酵法によるL−リジンの製造法
に関する。本発明者らは、より効率の高いL−リ
ジン生産菌を誘導すべく研究した結果、ブレビバ
クテリウム属又はコリネバクテリウム属のL−リ
ジン生産菌のホスフオエノールピルビン酸カルボ
キシラーゼ(EC 4、1、1、31以下、PEPCと
記す)活性が、親株の1.2倍以上の活性を有する
変異株のうちより、高い頻度でL−リジンの生産
能が、親株より高い菌株を得た。 本発明において使用される変異株は、ブレビバ
クテリウム属又はコリネバクテリウム属に属し、
PEPC活性が、親株のそれより1.2倍以上高くなつ
ていて、更に従来のL−リジン生産性付与の為に
必要な性質、(例えば、S−(2−アミノエチル)
−L−システイン(以下、AECと記す)耐性、
ホモセリン要求性、α−クロロカプラクタム耐
性)即ち、L−リジン生産能を有しているもので
ある。 具体的に例示すれば、以下のものがある。 ブレビバクテリウム・ラクトフエルメンタム AJ 11604 FERM−P 5629 ブレビバクテリウム・ラクトフエルメンタム AJ 11605 FERM−P 5630 コリネバクテリウム・アセトグルタミクム AJ 11606 FERM−P 5631 コリネバクテリウム・グルタミクム AJ 11607 FERM−P 5632 この様な変異株を得る際に使用される親株とし
ては、すでにL−リジンを生産する事が知られて
いるブレビバクテリウム属およびコリネバクテリ
ウム属の変異株が用いられる。 更に下記に例示したブレビバクテリウム属およ
びコリネバクテリウム属の野性株も本親株として
使用できる。 ブレビバクテリウム・デイバリカタム ATCC 14020 ブレビバクテリウム・フラバム ATCC 14067 ブレビバクテリウム・ラクトフエルメンタム ATCC 13869 ブレビバクテリウム・ロゼウム ATCC 13825 コリネバクテリウム・グルタミクムATCC 13032 コリネバクテリウム・アセトアシドフイルム ATCC 13870 コリネバクテリウム・アセトグルタミクム ATCC 15806 これらの野性株に先にL−リジン生産能を付与
してもよいが、先にPEPC活性が高い菌株を誘導
し、後でL−リジン生産能を付与してもよい。 これらの親株を変異処理する方法は、N−メチ
ル−N′−ニトロ−N−ニトロソグアニジンに接
触せしめる等の通常の方法が、適用できる。 変異処理した菌株よりPEPC活性の高い菌株を
得るには、本発明者らの知見によれば、モノフル
オロ酢酸に耐性を有する変異株を選択すれば、高
い頻度でPEPC活性が強化された菌株が得られ
る。 従つて先ずモノフルオロ酢酸に耐性を有する変
異株を選択したのち、それぞれの菌株について
PEPC活性を測定し、PEPC活性が望ましい程度
にまで強化された菌株を選べばよい。 モノフルオロ酢酸に耐性を有する変異株の選別
方法は、通常の方法でよい。PEPC活性の測定方
法は、T.Nishikidoらの方法(Biochem.Biophys.
Res.Comm.21、P95(1965))を用いて行つた。 本発明の変異株に更に従来L−リジン生産性を
高めることが等られている性質、例えば、L−ロ
イシン要求性、L−アラニン要求性、L−セリン
要求性、L−ロイシンアナログ耐性、フロロピル
ビン酸感受性、γ−メチルリジン耐性等を付与す
れば、よりL−リジン収率が高くなることが多
い。 上記例示の変異株について、その具体的誘導法
の1例と得られた菌株について、モノフルオロ酢
酸に対する耐性度を第1表に、PEPC活性を第2
表に、それぞれ親株と比較して示す。
に関する。本発明者らは、より効率の高いL−リ
ジン生産菌を誘導すべく研究した結果、ブレビバ
クテリウム属又はコリネバクテリウム属のL−リ
ジン生産菌のホスフオエノールピルビン酸カルボ
キシラーゼ(EC 4、1、1、31以下、PEPCと
記す)活性が、親株の1.2倍以上の活性を有する
変異株のうちより、高い頻度でL−リジンの生産
能が、親株より高い菌株を得た。 本発明において使用される変異株は、ブレビバ
クテリウム属又はコリネバクテリウム属に属し、
PEPC活性が、親株のそれより1.2倍以上高くなつ
ていて、更に従来のL−リジン生産性付与の為に
必要な性質、(例えば、S−(2−アミノエチル)
−L−システイン(以下、AECと記す)耐性、
ホモセリン要求性、α−クロロカプラクタム耐
性)即ち、L−リジン生産能を有しているもので
ある。 具体的に例示すれば、以下のものがある。 ブレビバクテリウム・ラクトフエルメンタム AJ 11604 FERM−P 5629 ブレビバクテリウム・ラクトフエルメンタム AJ 11605 FERM−P 5630 コリネバクテリウム・アセトグルタミクム AJ 11606 FERM−P 5631 コリネバクテリウム・グルタミクム AJ 11607 FERM−P 5632 この様な変異株を得る際に使用される親株とし
ては、すでにL−リジンを生産する事が知られて
いるブレビバクテリウム属およびコリネバクテリ
ウム属の変異株が用いられる。 更に下記に例示したブレビバクテリウム属およ
びコリネバクテリウム属の野性株も本親株として
使用できる。 ブレビバクテリウム・デイバリカタム ATCC 14020 ブレビバクテリウム・フラバム ATCC 14067 ブレビバクテリウム・ラクトフエルメンタム ATCC 13869 ブレビバクテリウム・ロゼウム ATCC 13825 コリネバクテリウム・グルタミクムATCC 13032 コリネバクテリウム・アセトアシドフイルム ATCC 13870 コリネバクテリウム・アセトグルタミクム ATCC 15806 これらの野性株に先にL−リジン生産能を付与
してもよいが、先にPEPC活性が高い菌株を誘導
し、後でL−リジン生産能を付与してもよい。 これらの親株を変異処理する方法は、N−メチ
ル−N′−ニトロ−N−ニトロソグアニジンに接
触せしめる等の通常の方法が、適用できる。 変異処理した菌株よりPEPC活性の高い菌株を
得るには、本発明者らの知見によれば、モノフル
オロ酢酸に耐性を有する変異株を選択すれば、高
い頻度でPEPC活性が強化された菌株が得られ
る。 従つて先ずモノフルオロ酢酸に耐性を有する変
異株を選択したのち、それぞれの菌株について
PEPC活性を測定し、PEPC活性が望ましい程度
にまで強化された菌株を選べばよい。 モノフルオロ酢酸に耐性を有する変異株の選別
方法は、通常の方法でよい。PEPC活性の測定方
法は、T.Nishikidoらの方法(Biochem.Biophys.
Res.Comm.21、P95(1965))を用いて行つた。 本発明の変異株に更に従来L−リジン生産性を
高めることが等られている性質、例えば、L−ロ
イシン要求性、L−アラニン要求性、L−セリン
要求性、L−ロイシンアナログ耐性、フロロピル
ビン酸感受性、γ−メチルリジン耐性等を付与す
れば、よりL−リジン収率が高くなることが多
い。 上記例示の変異株について、その具体的誘導法
の1例と得られた菌株について、モノフルオロ酢
酸に対する耐性度を第1表に、PEPC活性を第2
表に、それぞれ親株と比較して示す。
【表】
【表】
実験方法
(1) ブレビバクテリウム・ラクトフエルメンタム
AJ 11273(FERM−P 4547)(AECr、
CCLr、Ala-、EPs)を常法により、N− メチル
−N′−ニトロ−N−ニトロソグアニジンにて
処理(250μg/ml、30℃で30分)した後、以
下に示す最少培地に、モノフルオロ酢酸を親株
を阻害する濃度に添加した培地で生育したコロ
ニーを採取した。 最少培地組成: グルコース 2.0g/dl 尿 素 0.25g/dl 硫酸アンモニウム 1.0g/dl KH2PO4 0.1g/dl MgSO4・7H2O 0.04g/dl FeSO4・7H2O 0.1mg/dl L−アラニン 50mg/dl ニコチン酸アミド 0.5mg/dl MnSO4・4H2O 1.0mg/dl ビオチン 5.0μg/dl サイアミン・塩酸塩 10μg/dl NaCl 5.0mg/dl pH7.2 この様にして得られた変異株の内、L−リジ
ン生産能のすぐれた変異株として AJ 11604(FERM−P 5629)(AECr、
CCLr、Ala-、EPs、MFr、 KMr)、AJ 11605
(FERM−P 5630)(AECr、CCLr、A la-、
FPs、MFr)を採取した。 又、同様の方法により、コリネバクテリウ
ム・アセトグルタミクムAJ 11094(FERM−
P 3856)(AECr、Ala-)を親株としてAJ
11606(FERM−P 5631)(AECr、Ala-、
MFr)を採取した。 更に同様の方法により、コリネバクテリウ
ム・グルタミクムAJ 3463(FERM−P
1987)(AECr)を親株として、AJ 11607
(FERM−P 5632)(AECr、MFr)を得た。 Ala-:アラニン要求性 CCLr:α−クロロカプロラクタム耐性 EPs:フルオロピルビン酸感受性 KMr:ケトマロン酸耐性 MFr:モノフルオロ酢酸耐性 (2) 下記の組成の培地にモノフルオロ酢酸を添加
し、その4mlを小型試験管に分注し、殺菌後、
試験菌株を接種して、30℃にて、24時間、培養
した。 吸光度を測定して、相対生育度を算出し、各
菌株の耐性度を調べた。 培地組成: グルコース 2.0g/dl (NH4)2SO4 1.0g/dl KH2PO4 0.1g/dl MgSO4・7H2O 0.04g/dl NaCl 0.05g/dl 尿 素 0.25g/dl ビチオン 5.0μg/dl サイアミン塩酸塩 20μg/dl FeSO4・7H2O 1.0mg/dl MnSO4・4H2O 1.0mg/dl L−アラニン 50mg/dl ニコチン酸アミド 0.5mg/dl pH7.2(KOHによる) これらの変異株およびその親株のPEPC活性
を測定した結果を第2表に示す。
CCLr、Ala-、EPs)を常法により、N− メチル
−N′−ニトロ−N−ニトロソグアニジンにて
処理(250μg/ml、30℃で30分)した後、以
下に示す最少培地に、モノフルオロ酢酸を親株
を阻害する濃度に添加した培地で生育したコロ
ニーを採取した。 最少培地組成: グルコース 2.0g/dl 尿 素 0.25g/dl 硫酸アンモニウム 1.0g/dl KH2PO4 0.1g/dl MgSO4・7H2O 0.04g/dl FeSO4・7H2O 0.1mg/dl L−アラニン 50mg/dl ニコチン酸アミド 0.5mg/dl MnSO4・4H2O 1.0mg/dl ビオチン 5.0μg/dl サイアミン・塩酸塩 10μg/dl NaCl 5.0mg/dl pH7.2 この様にして得られた変異株の内、L−リジ
ン生産能のすぐれた変異株として AJ 11604(FERM−P 5629)(AECr、
CCLr、Ala-、EPs、MFr、 KMr)、AJ 11605
(FERM−P 5630)(AECr、CCLr、A la-、
FPs、MFr)を採取した。 又、同様の方法により、コリネバクテリウ
ム・アセトグルタミクムAJ 11094(FERM−
P 3856)(AECr、Ala-)を親株としてAJ
11606(FERM−P 5631)(AECr、Ala-、
MFr)を採取した。 更に同様の方法により、コリネバクテリウ
ム・グルタミクムAJ 3463(FERM−P
1987)(AECr)を親株として、AJ 11607
(FERM−P 5632)(AECr、MFr)を得た。 Ala-:アラニン要求性 CCLr:α−クロロカプロラクタム耐性 EPs:フルオロピルビン酸感受性 KMr:ケトマロン酸耐性 MFr:モノフルオロ酢酸耐性 (2) 下記の組成の培地にモノフルオロ酢酸を添加
し、その4mlを小型試験管に分注し、殺菌後、
試験菌株を接種して、30℃にて、24時間、培養
した。 吸光度を測定して、相対生育度を算出し、各
菌株の耐性度を調べた。 培地組成: グルコース 2.0g/dl (NH4)2SO4 1.0g/dl KH2PO4 0.1g/dl MgSO4・7H2O 0.04g/dl NaCl 0.05g/dl 尿 素 0.25g/dl ビチオン 5.0μg/dl サイアミン塩酸塩 20μg/dl FeSO4・7H2O 1.0mg/dl MnSO4・4H2O 1.0mg/dl L−アラニン 50mg/dl ニコチン酸アミド 0.5mg/dl pH7.2(KOHによる) これらの変異株およびその親株のPEPC活性
を測定した結果を第2表に示す。
【表】
実験方法は:Biochem.Biophys.Res.Comm.
21、P95(1965)に記載の方法に準じて行つ
た。 酵素標品は、次のように調整した。 グルコース10g/dl、硫酸アンモニウム4.5
g/dl、KH2PO40.1g/dl、MgSO4・
7H2O0.04g/dl、FeSO4・7H2O1.0mg/dl、
MnSO4・4H2O1.0mg/dl、ビオチン500μg/
、サイアミン塩酸塩200μg/、大豆タン
パク塩酸加水分解液濃縮物(総窒素7%)1.5
ml/dl、および炭酸カルシウム(別殺菌添加)
5g/dlを含み、pH8.0に調節した培地を用い
て31℃、48時間とう培養後、集菌した。トリ
ス・塩酸バツフアー(pH7.5、0.56M)で2回
洗浄し、超音波破砕(10KC、5分間)後
12000rpm−30分後遠沈し、破砕物を除いた。 上清は、「セフアデツクス G−10」を用
い、低分子物質を除き、ゲル濾過した液を酵素
標品として用いた。 これらの微生物をもちいてL−リジンを生産
せしめるには、とくに困難はなく、炭素源、窒
素源、無機塩類、生育因子および使用する微生
物が要求する栄養物質を含有する通常の栄養培
地をもちいて常法によりおこなう。もちいられ
る炭素源としては、グルコース、シユークロー
ス、糖密、デンプン加水分解液などの糖類、酢
酸、プロピオン酸などの有機酸、エタノール、
プロパノールなどのアルコール類などが使用で
きる。 窒素源としては、硫安、硝安、塩安、リン
安、尿素、アンモニアその他を使用できる。 培養方法は、通気培養が良く、発酵温度は、
24〜37℃、発酵日数は通常2〜7日である。発
酵開始時および培養中のpHは5.0〜9.0が良く、
pHの調整には、無機あるいは有機の酸性あるい
はアルカリ性物質、更には尿素、炭素カルシウ
ム、アンモニアガスなどを使用することができ
る。発酵液からのL−リジンの採取は、通常イ
オン交換樹脂法、その他の公知の方法を組み合
わせることにより、おこなわれ、培地の種類に
よつては、直接晶析法により行なうことも可能
である。 実施例 1 下記の組成の培地を20ml宛、500ml容振とうフ
ラスコに分注し、110℃にて5分間蒸気殺菌し
た。 培地組成: グルコース 10g/dl 硫酸アンモニウム 4.5g/dl KH2PO4 0.1g/dl MgSO4・7H2O 0.04g/dl FeSO4・7H2O 1.0mg/dl MnSO4・4H2O 1.0mg/dl ビオチン 5.0μg/dl サイアミン塩酸塩 20μg/dl 大豆タンパク塩酸加水分解液濃縮物(総窒素7
%)1.5ml/dl 炭酸カルシウム(別殺菌添加) 5g/dl pH7.0 上記の如く調製したフラスコ中の培地に、あら
かじめグルコース・ブイヨンスラント上で育成せ
しめた第3表に示す菌株を1白金耳ずつ接種し、
それらを3℃にて72時間振とう培養した。72時間
培養後の培地中のL−リジン生成量を、酸性−銅
ニンヒドリン反応を用いる比色法によつて行つ
た。結果を第3表に示す。
21、P95(1965)に記載の方法に準じて行つ
た。 酵素標品は、次のように調整した。 グルコース10g/dl、硫酸アンモニウム4.5
g/dl、KH2PO40.1g/dl、MgSO4・
7H2O0.04g/dl、FeSO4・7H2O1.0mg/dl、
MnSO4・4H2O1.0mg/dl、ビオチン500μg/
、サイアミン塩酸塩200μg/、大豆タン
パク塩酸加水分解液濃縮物(総窒素7%)1.5
ml/dl、および炭酸カルシウム(別殺菌添加)
5g/dlを含み、pH8.0に調節した培地を用い
て31℃、48時間とう培養後、集菌した。トリ
ス・塩酸バツフアー(pH7.5、0.56M)で2回
洗浄し、超音波破砕(10KC、5分間)後
12000rpm−30分後遠沈し、破砕物を除いた。 上清は、「セフアデツクス G−10」を用
い、低分子物質を除き、ゲル濾過した液を酵素
標品として用いた。 これらの微生物をもちいてL−リジンを生産
せしめるには、とくに困難はなく、炭素源、窒
素源、無機塩類、生育因子および使用する微生
物が要求する栄養物質を含有する通常の栄養培
地をもちいて常法によりおこなう。もちいられ
る炭素源としては、グルコース、シユークロー
ス、糖密、デンプン加水分解液などの糖類、酢
酸、プロピオン酸などの有機酸、エタノール、
プロパノールなどのアルコール類などが使用で
きる。 窒素源としては、硫安、硝安、塩安、リン
安、尿素、アンモニアその他を使用できる。 培養方法は、通気培養が良く、発酵温度は、
24〜37℃、発酵日数は通常2〜7日である。発
酵開始時および培養中のpHは5.0〜9.0が良く、
pHの調整には、無機あるいは有機の酸性あるい
はアルカリ性物質、更には尿素、炭素カルシウ
ム、アンモニアガスなどを使用することができ
る。発酵液からのL−リジンの採取は、通常イ
オン交換樹脂法、その他の公知の方法を組み合
わせることにより、おこなわれ、培地の種類に
よつては、直接晶析法により行なうことも可能
である。 実施例 1 下記の組成の培地を20ml宛、500ml容振とうフ
ラスコに分注し、110℃にて5分間蒸気殺菌し
た。 培地組成: グルコース 10g/dl 硫酸アンモニウム 4.5g/dl KH2PO4 0.1g/dl MgSO4・7H2O 0.04g/dl FeSO4・7H2O 1.0mg/dl MnSO4・4H2O 1.0mg/dl ビオチン 5.0μg/dl サイアミン塩酸塩 20μg/dl 大豆タンパク塩酸加水分解液濃縮物(総窒素7
%)1.5ml/dl 炭酸カルシウム(別殺菌添加) 5g/dl pH7.0 上記の如く調製したフラスコ中の培地に、あら
かじめグルコース・ブイヨンスラント上で育成せ
しめた第3表に示す菌株を1白金耳ずつ接種し、
それらを3℃にて72時間振とう培養した。72時間
培養後の培地中のL−リジン生成量を、酸性−銅
ニンヒドリン反応を用いる比色法によつて行つ
た。結果を第3表に示す。
【表】
同様にして培養したAJ 11604株の培養終了液
を集め、遠心分離によつて、菌体およびカルシウ
ム塩を除いた上清液1を強酸性イオン交換樹脂
「アンバーライト」IR−120 OH型)に通過さ
せ、L−リジンを吸着させた。ついで、3%アン
モニア水で吸着したL−リジンを溶出し、溶出液
を減圧濃縮した。濃縮液に塩酸を添加した後冷却
し、L−リジンをL−リジン塩酸塩第2水和物と
して析出させ、結晶38.5gを得た。 実施例 2 コリネバクテリウム・グルタミクムAJ11607お
よびその親株AJ 3463をそれぞれスランド上より
1白金耳かきとり、次記種培養培地50mlに接種
し、18時間、31℃にて通気攪拌培養をおこなつて
種培養液を調整した。 種培養培地組成: グルコース 1.5g/dl 酢酸アンモニウム 0.3g/dl 尿素 0.1g/dl KH2PO4 0.1g/dl MgSO4・7H2O 0.04g/dl FeSO4・7H2O 1.0mg/dl MnSO4・4H2O 1.0mg/dl ビオチン 5.0μg/dl サイアミン塩酸塩 20μg/dl 大豆タンパク塩酸加水分解液濃縮物(総窒素7
%)2.0ml/dl pH7.5 一方、1容小型ガラス製ジヤー・フアーメン
ターに次記の組成より成る主発酵培地を300ml宛
分注し、常法により殺菌した。 これらに上記の種培養液をそれぞれ15ml宛接種
し、31℃にて通気攪拌培養を開始した。 主発酵培地組成: グルコース 2.0g/dl 酢酸アンモニウム 0.5g/dl 尿素 0.2g/dl KH2PO4 0.1g/dl MgSO4・7H2O 0.04g/dl FeSO4・7H2O 1.0ml/dl MnSO4・4H2O 1.0mg/dl ビオチン 5.0μg/ サイアミン塩酸塩 50μg/ ニコチン塩酸塩 1.0mg/ 大豆タンパク塩酸加水分解液濃縮物(総窒素7
%)3.0ml/dl pH7.2 培養液中に、酢酸と酢酸アンモニウムとの混合
液(酢酸:酢酸アンモニウムとの混合液のモル比
は1:0.25、混合液の酢酸濃度は60%)を培地の
pHを7.2〜8.0の間に保持するように添加して31〜
33℃で、55時間培養を行つた。結果を、第4表に
示す。
を集め、遠心分離によつて、菌体およびカルシウ
ム塩を除いた上清液1を強酸性イオン交換樹脂
「アンバーライト」IR−120 OH型)に通過さ
せ、L−リジンを吸着させた。ついで、3%アン
モニア水で吸着したL−リジンを溶出し、溶出液
を減圧濃縮した。濃縮液に塩酸を添加した後冷却
し、L−リジンをL−リジン塩酸塩第2水和物と
して析出させ、結晶38.5gを得た。 実施例 2 コリネバクテリウム・グルタミクムAJ11607お
よびその親株AJ 3463をそれぞれスランド上より
1白金耳かきとり、次記種培養培地50mlに接種
し、18時間、31℃にて通気攪拌培養をおこなつて
種培養液を調整した。 種培養培地組成: グルコース 1.5g/dl 酢酸アンモニウム 0.3g/dl 尿素 0.1g/dl KH2PO4 0.1g/dl MgSO4・7H2O 0.04g/dl FeSO4・7H2O 1.0mg/dl MnSO4・4H2O 1.0mg/dl ビオチン 5.0μg/dl サイアミン塩酸塩 20μg/dl 大豆タンパク塩酸加水分解液濃縮物(総窒素7
%)2.0ml/dl pH7.5 一方、1容小型ガラス製ジヤー・フアーメン
ターに次記の組成より成る主発酵培地を300ml宛
分注し、常法により殺菌した。 これらに上記の種培養液をそれぞれ15ml宛接種
し、31℃にて通気攪拌培養を開始した。 主発酵培地組成: グルコース 2.0g/dl 酢酸アンモニウム 0.5g/dl 尿素 0.2g/dl KH2PO4 0.1g/dl MgSO4・7H2O 0.04g/dl FeSO4・7H2O 1.0ml/dl MnSO4・4H2O 1.0mg/dl ビオチン 5.0μg/ サイアミン塩酸塩 50μg/ ニコチン塩酸塩 1.0mg/ 大豆タンパク塩酸加水分解液濃縮物(総窒素7
%)3.0ml/dl pH7.2 培養液中に、酢酸と酢酸アンモニウムとの混合
液(酢酸:酢酸アンモニウムとの混合液のモル比
は1:0.25、混合液の酢酸濃度は60%)を培地の
pHを7.2〜8.0の間に保持するように添加して31〜
33℃で、55時間培養を行つた。結果を、第4表に
示す。
【表】
AJ 11607の発酵終了液300mlから実施例1と同
様の方法により、14.0gのL−リジン塩酸塩第2
加水物結晶を得た。 実施例 3 コリネバクテリウム・グルタミクムAJ11607
およびその親株であるAJ 3463をそれぞれ1白金
耳、実施例2に示した種培養培地(但し、酢酸ア
ンモニウムの代りにエチルアルコールを0.5%使
用し、さらに尿素を0.3g/dlに変更した)50ml
に接種し、18時間31℃にて通気攪拌培養を行つ
た。一方、1容の小型ガラス製ジヤーフアーメ
ンターに実施例2において示した主発酵培地(但
し、グルコース濃度は、1g/dlになるように
し、酢酸アンモニウムの代りにエチルアルコール
を1g/dl、硫酸アンモニウムを0.5gdl添加
した。)を300ml宛分注し、殺菌した。これらに上
記の種培養液をそれぞれ15ml宛接種し、31℃にて
通気攪拌培養を開始した。 培養中、アンモニアガスによりpHを、7.2〜8.2
の間に保持した。エチルアルコールは、その消費
をガスクロマトグラフで定量し、その培地中の濃
度が0.3g/dlに減少したとき少量培地に添加し
た。31〜33℃で、48時間培養後、それぞれ第5表
に示す量のL−リジンが培養液中に蓄積した。
様の方法により、14.0gのL−リジン塩酸塩第2
加水物結晶を得た。 実施例 3 コリネバクテリウム・グルタミクムAJ11607
およびその親株であるAJ 3463をそれぞれ1白金
耳、実施例2に示した種培養培地(但し、酢酸ア
ンモニウムの代りにエチルアルコールを0.5%使
用し、さらに尿素を0.3g/dlに変更した)50ml
に接種し、18時間31℃にて通気攪拌培養を行つ
た。一方、1容の小型ガラス製ジヤーフアーメ
ンターに実施例2において示した主発酵培地(但
し、グルコース濃度は、1g/dlになるように
し、酢酸アンモニウムの代りにエチルアルコール
を1g/dl、硫酸アンモニウムを0.5gdl添加
した。)を300ml宛分注し、殺菌した。これらに上
記の種培養液をそれぞれ15ml宛接種し、31℃にて
通気攪拌培養を開始した。 培養中、アンモニアガスによりpHを、7.2〜8.2
の間に保持した。エチルアルコールは、その消費
をガスクロマトグラフで定量し、その培地中の濃
度が0.3g/dlに減少したとき少量培地に添加し
た。31〜33℃で、48時間培養後、それぞれ第5表
に示す量のL−リジンが培養液中に蓄積した。
【表】
実施例 4
ブレビバクテリウム・ラクトフエルメンタム
AJ 11604、同AJ 11605、コリネバクテリウム・
アセトグルタミクムAJ 11606、コネリバクテリ
ウム・グルタミクムAJ 11607、並びに、対照と
してそれらの親株であるブレビバクテリウム・ラ
クトフエルメンタムAJ 11273、コリネバクテリ
ウム・アセトグルタミクムAJ 11094およびコリ
ネリバクテリウム・グルタミクムAJ 3463の計7株
を、あらかじめグルコース・ブイヨンスラント上
で生育させ、それぞれ1白金耳ずつ、50ml容の
振とうフラスコに分注し、殺菌した下記組成の培
地21mlに接種した。 培地組成: ビート又はケーン糖蜜(グルコース換算) 10g/dl 硫酸アンモニウム 5.0g/dl KH2PO4 0.1g/dl MgSO4・7H2O 40mg/dl ビオチン 50μg/dl 炭酸カルシウム(別殺菌添加) 5g/dl pH7.0 これらを30℃で72時間培養をおこなつたとこ
ろ、第6表のごとく、リジンを蓄積した。
AJ 11604、同AJ 11605、コリネバクテリウム・
アセトグルタミクムAJ 11606、コネリバクテリ
ウム・グルタミクムAJ 11607、並びに、対照と
してそれらの親株であるブレビバクテリウム・ラ
クトフエルメンタムAJ 11273、コリネバクテリ
ウム・アセトグルタミクムAJ 11094およびコリ
ネリバクテリウム・グルタミクムAJ 3463の計7株
を、あらかじめグルコース・ブイヨンスラント上
で生育させ、それぞれ1白金耳ずつ、50ml容の
振とうフラスコに分注し、殺菌した下記組成の培
地21mlに接種した。 培地組成: ビート又はケーン糖蜜(グルコース換算) 10g/dl 硫酸アンモニウム 5.0g/dl KH2PO4 0.1g/dl MgSO4・7H2O 40mg/dl ビオチン 50μg/dl 炭酸カルシウム(別殺菌添加) 5g/dl pH7.0 これらを30℃で72時間培養をおこなつたとこ
ろ、第6表のごとく、リジンを蓄積した。
Claims (1)
- 1 ブレビバクテリウム属又はコリネバクテリウ
ム属に属し、ホスフオエノールピルビン酸カルボ
キシラーゼ(EC 4、1、1、31)活性がその親
株の1.2倍以上の活性を有し、かつL−リジンを
生産する能力を有する変異株を培養し、生成蓄積
したL−リジンを採取することを特徴とする発酵
法によるL−リジンの製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP10339480A JPS5729290A (en) | 1980-07-28 | 1980-07-28 | Preparation of l-lysine by fermentation method |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP10339480A JPS5729290A (en) | 1980-07-28 | 1980-07-28 | Preparation of l-lysine by fermentation method |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS5729290A JPS5729290A (en) | 1982-02-17 |
JPS6236672B2 true JPS6236672B2 (ja) | 1987-08-07 |
Family
ID=14352840
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP10339480A Granted JPS5729290A (en) | 1980-07-28 | 1980-07-28 | Preparation of l-lysine by fermentation method |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS5729290A (ja) |
Families Citing this family (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS6035629A (ja) * | 1983-08-06 | 1985-02-23 | Asmo Co Ltd | 自動変速機の駐車位置自動設定装置 |
JPH0783714B2 (ja) * | 1983-08-29 | 1995-09-13 | 味の素株式会社 | 発酵法によるl―アミノ酸の製造法 |
JPS60179556A (ja) * | 1984-02-23 | 1985-09-13 | Nissan Motor Co Ltd | 車両用自動変速機 |
JP2735115B2 (ja) * | 1986-07-01 | 1998-04-02 | アイシン・エィ・ダブリュ株式会社 | 自動変速機におけるリバースシフト制御装置 |
JPH028551A (ja) * | 1988-06-27 | 1990-01-12 | Daikin Mfg Co Ltd | 自動車変速機の変速段切り換え制御装置 |
US5409434A (en) * | 1992-01-30 | 1995-04-25 | Toyota Jidosha Kabushiki Kaisha | Control system with failsafe for shift-by-wire automatic transmission |
-
1980
- 1980-07-28 JP JP10339480A patent/JPS5729290A/ja active Granted
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS5729290A (en) | 1982-02-17 |
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