JPS62253398A - (+)−トランス−パ−メトリン酸の製造法 - Google Patents
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利用分野
本発明は、(+)−)ランス−パーメトリン酸の製造法
に関する。
に関する。
更に詳しくは、本発明は、一般式:
(式中、R′は、01〜C4のアルキル基を表す。 本
式は、立体関係を表すものではない。)で表されるシク
ロプロパンカルボン酸エステル類に、後述の微生物群か
ら選ばれた微生物あるいは該微生物が生産するエステラ
ーゼを作用させ、(式中、Rは、水素あるいは金属イオ
ンを表す。
式は、立体関係を表すものではない。)で表されるシク
ロプロパンカルボン酸エステル類に、後述の微生物群か
ら選ばれた微生物あるいは該微生物が生産するエステラ
ーゼを作用させ、(式中、Rは、水素あるいは金属イオ
ンを表す。
本式は、立体関係を表すものではない。)で表される(
+)−)ランス−パーメトリン酸類とそのジアステレオ
マーのエステルとに分割した後、該(+)−)ランス−
パーメトリン酸類を回収することを特徴とする式(n)
で表される(+)−トランス−パーメトリン酸類の製造
方法に関する。
+)−)ランス−パーメトリン酸類とそのジアステレオ
マーのエステルとに分割した後、該(+)−)ランス−
パーメトリン酸類を回収することを特徴とする式(n)
で表される(+)−トランス−パーメトリン酸類の製造
方法に関する。
従来技術および問題点
式(n)で表されるパーメトリン酸は、パーメスリン等
のいわゆるピレスロイドと総称される低毒速効性殺虫エ
ステルの酸成分を構成する化合物である。 上記式(f
f)のパーメトリン酸にはそのC1位およびC3位に不
斉炭素が存在し、四種のジアステレオマーが存在するが
、rR3命名法」に於いてその絶対配置がrlR3sJ
およびrlR3RJのものは旋光性が(特定の溶媒中で
)(+)であり置換基がそれぞれシス、トランスの関係
にあることからそれぞれ「(+)−シス」体、「(+)
−トランス」体、rls3sJおよびrls3RJのも
のは、旋光性が(−)であり、置換基がそれぞれシス、
トランスの関係にあることから、それぞれ「(=)−シ
ス」体およびr(−)−トランス」体と称される。
のいわゆるピレスロイドと総称される低毒速効性殺虫エ
ステルの酸成分を構成する化合物である。 上記式(f
f)のパーメトリン酸にはそのC1位およびC3位に不
斉炭素が存在し、四種のジアステレオマーが存在するが
、rR3命名法」に於いてその絶対配置がrlR3sJ
およびrlR3RJのものは旋光性が(特定の溶媒中で
)(+)であり置換基がそれぞれシス、トランスの関係
にあることからそれぞれ「(+)−シス」体、「(+)
−トランス」体、rls3sJおよびrls3RJのも
のは、旋光性が(−)であり、置換基がそれぞれシス、
トランスの関係にあることから、それぞれ「(=)−シ
ス」体およびr(−)−トランス」体と称される。
これらのピレスロイドエステルとしての殺虫効力は、(
+)一体のみが有効であり(−)一体は殆ど無効である
。
+)一体のみが有効であり(−)一体は殆ど無効である
。
シスとトランス異性体の効力相関は対象害虫、効力の性
質によって異なり、(+)−)ランス体のピレスロイド
と(+)−シス体のピレスロイドとはそれぞれ異なった
目的に使用する事も可能であり、工業的に有利に(+)
−)ランス−パーメトリン酸を製造することは重要であ
る。
質によって異なり、(+)−)ランス体のピレスロイド
と(+)−シス体のピレスロイドとはそれぞれ異なった
目的に使用する事も可能であり、工業的に有利に(+)
−)ランス−パーメトリン酸を製造することは重要であ
る。
現在知られている(+)−)ランス体の製造方法は主と
して有機合成化学的な分割法であるが、比較的高価な光
学活性試薬を必要とする事、あるいは煩雑な工程を必要
とすることなどの点からより経済的に有利な光学分割法
の開発が望まれているのが現状である。
して有機合成化学的な分割法であるが、比較的高価な光
学活性試薬を必要とする事、あるいは煩雑な工程を必要
とすることなどの点からより経済的に有利な光学分割法
の開発が望まれているのが現状である。
一方、一般式(1)のシクロプロパンカルボン酸エステ
ル類を酵素または微生物を用いて不斉加水分解し、一般
式(II)で示される光学活性な(+)−)ランス体の
酸をを得る方法としては、豚肝エステラーゼを用いる方
法(例えば、5chneider ら、Angew、
Chem、 Int、 Ed、 Engl、 23.6
4 (1984) ) 、および微生物由来のエステラ
ーゼを用いる方法(特開昭6O−244295)が知ら
れている。 しかし、前者においては、使用する豚肝
エステラーゼが高価である上に量的な供給にも制限があ
るため工業的に実施する上で問題がある。また、後者に
ついては、その収量は微生物培養液100mJ当り31
mg程度であり、工業的に実施するには不十分なもので
ある。
ル類を酵素または微生物を用いて不斉加水分解し、一般
式(II)で示される光学活性な(+)−)ランス体の
酸をを得る方法としては、豚肝エステラーゼを用いる方
法(例えば、5chneider ら、Angew、
Chem、 Int、 Ed、 Engl、 23.6
4 (1984) ) 、および微生物由来のエステラ
ーゼを用いる方法(特開昭6O−244295)が知ら
れている。 しかし、前者においては、使用する豚肝
エステラーゼが高価である上に量的な供給にも制限があ
るため工業的に実施する上で問題がある。また、後者に
ついては、その収量は微生物培養液100mJ当り31
mg程度であり、工業的に実施するには不十分なもので
ある。
発明の説明
本発明者らは、このような状況の中で、工業的に存利な
(+)−)ランス−パーメトリン酸類(II)の製造方
法を開発すべく研究を続けた結果、ロドトルラ・ルブラ
(Rhodotorula rubra)IFO−09
18 0ドトルラ・ルブラ(Rhodotorula rub
ra)IFO−1100 ロドトルラ・ルブラ(Rhodotorula rub
ra)IFO−0889 0ドトルラ・ルブラ(Rhodotorula rub
ra)IFD−0909 キャンディダ・フミコラ(Candida humic
ola)IFO−0760 キャンディダ・リポリティカ(Candida!1po
lytica) NRRL−Y−6795アスペルギラ
ス・オリーゼ(Aspergi ] Iusoryza
e) ATCC−14605アスペルギラス・フラハス
(Aspergi I Iusflavus) ATC
C−11492およびバシラス エスピー(Bacil
lus sp、 )DC−1(i工研菌寄第8719号
)から選ばれた微生物あるいは該微生物が生産するエス
テラーゼが、前記の一般式(1)のエステルに作用して
、高収率、高光学純度で一般式(n)で表される(+)
−1−ランス−パーメトリン酸を与えること、特に、本
発明者らが、分離した微生物バシラス エスピーDC−
1を用いた場合には、微生物培養液100mlあたり旧
来の技術で得られる量の10倍量以上の(+)−トラン
ス−パーメトリン酸類が高光学純度で得られることを確
認し、本発明を完成した。
(+)−)ランス−パーメトリン酸類(II)の製造方
法を開発すべく研究を続けた結果、ロドトルラ・ルブラ
(Rhodotorula rubra)IFO−09
18 0ドトルラ・ルブラ(Rhodotorula rub
ra)IFO−1100 ロドトルラ・ルブラ(Rhodotorula rub
ra)IFO−0889 0ドトルラ・ルブラ(Rhodotorula rub
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ola)IFO−0760 キャンディダ・リポリティカ(Candida!1po
lytica) NRRL−Y−6795アスペルギラ
ス・オリーゼ(Aspergi ] Iusoryza
e) ATCC−14605アスペルギラス・フラハス
(Aspergi I Iusflavus) ATC
C−11492およびバシラス エスピー(Bacil
lus sp、 )DC−1(i工研菌寄第8719号
)から選ばれた微生物あるいは該微生物が生産するエス
テラーゼが、前記の一般式(1)のエステルに作用して
、高収率、高光学純度で一般式(n)で表される(+)
−1−ランス−パーメトリン酸を与えること、特に、本
発明者らが、分離した微生物バシラス エスピーDC−
1を用いた場合には、微生物培養液100mlあたり旧
来の技術で得られる量の10倍量以上の(+)−トラン
ス−パーメトリン酸類が高光学純度で得られることを確
認し、本発明を完成した。
即ち、本発明は、上記の微生物群から選ばれた微生物あ
るいは該微生物が生産するエステラーゼを一般弐: (式中、R゛ は、1〜C4のアルキル基を表す。
るいは該微生物が生産するエステラーゼを一般弐: (式中、R゛ は、1〜C4のアルキル基を表す。
本式は、立体関係を表すものではない。)で表されるシ
クロカルボン酸類に作用させ、不斉加水分解して、一般
式: (式中、Rは、水素あるいは金属イオンを表す。
クロカルボン酸類に作用させ、不斉加水分解して、一般
式: (式中、Rは、水素あるいは金属イオンを表す。
本式は、立体関係を表すものではない。)で表される光
学活性な(+)−)ランス−パーメトリン酸類とそのジ
アステレオマーのエステルとに分割した後、8亥(+)
−トランス−パーメトリン酸類を回収することを特徴と
する式(n)で表される(+)−)ランス−パーメトリ
ン酸類の製造方法に関する。
学活性な(+)−)ランス−パーメトリン酸類とそのジ
アステレオマーのエステルとに分割した後、8亥(+)
−トランス−パーメトリン酸類を回収することを特徴と
する式(n)で表される(+)−)ランス−パーメトリ
ン酸類の製造方法に関する。
前述の菌は、いずれもA T CC(AmercanT
ype Cu1ture Co11ection)、工
業技術院微生物工業技術研究所あるいは財団法人醗酵研
究所(IFO)に保存され容易に人手可能である。
ype Cu1ture Co11ection)、工
業技術院微生物工業技術研究所あるいは財団法人醗酵研
究所(IFO)に保存され容易に人手可能である。
この内、バシラス エスピー DC−1(Bac i
I I ussp、 DC−1)は、本発明者らが分離
した新規な微生物であり、その微生物学的特徴は後述の
とおりである。
I I ussp、 DC−1)は、本発明者らが分離
した新規な微生物であり、その微生物学的特徴は後述の
とおりである。
本発明の原料として用いられる一般式(1)で表される
エステル類は、自体公知の方法で容易に製造できる。
エステル類は、自体公知の方法で容易に製造できる。
例えば、■、1−ジクロロー4−メチルー1゜3−ペン
タジェンとジアゾ酢酸エステルとの反応による方法等が
挙げられる。 原料として用いるエステルは、メチルエ
ステル、エチルエステル、プロピルエステル、ブチルエ
ステルなどの01〜C4アルキルエステルが、都合良く
使用されるが、特にメチルエステル、エチルエステルが
、入手の容易さや取扱いの容易さから好適である。
タジェンとジアゾ酢酸エステルとの反応による方法等が
挙げられる。 原料として用いるエステルは、メチルエ
ステル、エチルエステル、プロピルエステル、ブチルエ
ステルなどの01〜C4アルキルエステルが、都合良く
使用されるが、特にメチルエステル、エチルエステルが
、入手の容易さや取扱いの容易さから好適である。
原料として用いる一般式(1)のエステルの立体関係は
、(+l)ランス体を含むものであれば様々な組合せが
可能であるが(±)−トランス一体の混合物あるいは(
±)−シス、トランス体の混合物が入手の容易さから好
都合である。
、(+l)ランス体を含むものであれば様々な組合せが
可能であるが(±)−トランス一体の混合物あるいは(
±)−シス、トランス体の混合物が入手の容易さから好
都合である。
上記微生物の培養は常法に従って液体培養、例えば滅菌
した液体培地に微生物を接種し、通常20−40°Cで
1〜8日間往復振盪培養を行うこともできるし、また、
必要に応じて固体で培養を行うこともできる。
した液体培地に微生物を接種し、通常20−40°Cで
1〜8日間往復振盪培養を行うこともできるし、また、
必要に応じて固体で培養を行うこともできる。
培地の組成については、通常の微生物の培養に用いられ
るもので、上記微生物により利用可能なものであれば特
に制限はなく、例えば炭素源および窒素源として、グル
コース、デンプンデキストリン、糖蜜、油脂類、大豆粉
、脱脂大豆粉、脂肪大豆粕、コーンステイープリカー等
を用いることができる。 また、無機塩類としては、
硫安、リン酸二カリ、硫酸マグネシウム、尿素等を使用
することができる。 また、場合によっては、培地中に
一般式(I)で示されるシクロプロパンカルボン酸エス
テル類や脂肪酸エステルを添加することも可能である。
るもので、上記微生物により利用可能なものであれば特
に制限はなく、例えば炭素源および窒素源として、グル
コース、デンプンデキストリン、糖蜜、油脂類、大豆粉
、脱脂大豆粉、脂肪大豆粕、コーンステイープリカー等
を用いることができる。 また、無機塩類としては、
硫安、リン酸二カリ、硫酸マグネシウム、尿素等を使用
することができる。 また、場合によっては、培地中に
一般式(I)で示されるシクロプロパンカルボン酸エス
テル類や脂肪酸エステルを添加することも可能である。
本発明の方法を実施するに際し、一般式(■)のシクロ
プロパンカルボン酸エステル類の不斉加水分解反応は、
前記微生物を培養した培養液、培養濾液、菌体懸濁液、
エステラーゼ抽出液または濃縮液などのエステラーゼ含
有物、あるいはこれらの処理物、例えば粗製エステラー
ゼ、精製エステラーゼを含有する水溶液と一般式(1)
で示されるシクロプロパンカルボン酸エステル類を混合
し、撹拌または振盪することにより行われる。 必要に
応じ、非エステル系の界面活性剤を添加してもよく、ま
た菌体又はエステラーゼを固定化して使用することも可
能である。
プロパンカルボン酸エステル類の不斉加水分解反応は、
前記微生物を培養した培養液、培養濾液、菌体懸濁液、
エステラーゼ抽出液または濃縮液などのエステラーゼ含
有物、あるいはこれらの処理物、例えば粗製エステラー
ゼ、精製エステラーゼを含有する水溶液と一般式(1)
で示されるシクロプロパンカルボン酸エステル類を混合
し、撹拌または振盪することにより行われる。 必要に
応じ、非エステル系の界面活性剤を添加してもよく、ま
た菌体又はエステラーゼを固定化して使用することも可
能である。
また、この時反応温度としては10〜65℃が適当であ
り、高温で菌体の加水分解能又はエステラーゼの安定性
が低下しやすいことおよびあまり低温では反応速度が遅
いことから20〜50℃が好ましい。 また、反応中の
pHは、p H3〜11、好ましくは、pH5〜9付近
であることが望ましい。 次に、このようにして不斉加
水分解反応を行った後、遊離したカルボン酸またはその
塩と未反応のエステル類を分離回収する。 この分離回
収に際しては溶媒抽出、カラムクロマトグラフィー、分
別蒸留などの操作を適宜採用することができる。 例え
ば、反応液をメチルイソブチルケトン、クロロホルム、
エーテル、ベンゼンあるいはトルエンなどの有機溶媒で
抽出し、抽出物を減圧で分別蒸留し、遊離のカルボン酸
またはその塩と未反応エステルとを分離する。
り、高温で菌体の加水分解能又はエステラーゼの安定性
が低下しやすいことおよびあまり低温では反応速度が遅
いことから20〜50℃が好ましい。 また、反応中の
pHは、p H3〜11、好ましくは、pH5〜9付近
であることが望ましい。 次に、このようにして不斉加
水分解反応を行った後、遊離したカルボン酸またはその
塩と未反応のエステル類を分離回収する。 この分離回
収に際しては溶媒抽出、カラムクロマトグラフィー、分
別蒸留などの操作を適宜採用することができる。 例え
ば、反応液をメチルイソブチルケトン、クロロホルム、
エーテル、ベンゼンあるいはトルエンなどの有機溶媒で
抽出し、抽出物を減圧で分別蒸留し、遊離のカルボン酸
またはその塩と未反応エステルとを分離する。
次に、本発明者らが、分離・採取したバシラス エスピ
ー DC−1(Bacillus sp、 DC−1)
株の特徴を詳細に述べる。
ー DC−1(Bacillus sp、 DC−1)
株の特徴を詳細に述べる。
(a)形態
1)細胞の形態および大きさ二環状で(0,5〜0.6
)μm x(1,2〜1.7) μm、単独または2 〜3個の連鎖をなす。
)μm x(1,2〜1.7) μm、単独または2 〜3個の連鎖をなす。
2)多形性:なし
3)運動性:あり 周鞭毛を有する。
4)胞子の形成:あり 球状あるいはやや卵形で、直径
0.4〜0.6μm。栄養 細胞の末端に形成されふく らみを有する。
0.4〜0.6μm。栄養 細胞の末端に形成されふく らみを有する。
5)ダラム染色:陰性
6)抗 酸 性:なし
くb)各種培地における生育状態
l)肉汁寒天平板培地(35℃、24時間)形 状 二
円形 周 縁 : なし 隆 起 : 凸状 光 沢 : あり 表 面 : 平滑 色 調 二 半透明で黄白色 2)肉汁寒天斜面培養(35℃、24時間)生育度 :
普通 拡布状またはしゆず状に生育 表 面 : 平滑 色 調 : 半透明で黄白色 光 沢 : あり 3)肉汁液体培養(35°C124時間)生育度 :
g通 着色・脱色:なし 表面生育: 閉環は形成しない 沈 渣 : 生じる 4)肉汁ゼラチン穿刺培養(35℃、14日間)ゼラチ
ンを液化しない 5)リドマスミルク培地(35℃、14日間)わずかに
アルカリ化し、凝固およびペプトン化しない。
円形 周 縁 : なし 隆 起 : 凸状 光 沢 : あり 表 面 : 平滑 色 調 二 半透明で黄白色 2)肉汁寒天斜面培養(35℃、24時間)生育度 :
普通 拡布状またはしゆず状に生育 表 面 : 平滑 色 調 : 半透明で黄白色 光 沢 : あり 3)肉汁液体培養(35°C124時間)生育度 :
g通 着色・脱色:なし 表面生育: 閉環は形成しない 沈 渣 : 生じる 4)肉汁ゼラチン穿刺培養(35℃、14日間)ゼラチ
ンを液化しない 5)リドマスミルク培地(35℃、14日間)わずかに
アルカリ化し、凝固およびペプトン化しない。
(c)生理学的性質
35℃、1〜5日間培養。陰性のものは14日間まで観
察。
察。
1)硫酸塩の還元:陽性
硫酸を還元し、亜硝酸を生成す
る。
2)脱窒反応:陰性
3)たIRテスト:陰性
4M/Pテスト;陰性
5)インドールの生成:陰性
6)硫化水素の生成:陰性
7)デンプンの加水分解:陰性
8)クエン酸の利用
Koserの培地:陰性
Christensenの培地:陽性
9)無機・窒素源の利用
山王らによる5tanierらの培地の変法(Yama
zato et al、 J、 Gen、 Appl、
Microbiol。
zato et al、 J、 Gen、 Appl、
Microbiol。
(1982) 28: 195−213)を用い、コハ
ク酸ナトリウムを炭素源として使用した。
ク酸ナトリウムを炭素源として使用した。
硝酸塩 : 利用しない
アンモニウム塩:利用する
10)色素の生成 生成しない
11)ウレアーゼ
Christensenの尿素培地:陽性12)オキシ
ターゼ:陽性 13)カラターゼ:陽性 14)生育の範囲 生育温度:10〜45℃(最適30〜35℃)生育p1
16.o〜9.5(最適8.5〜9.0)15)酸素に
対する態度:好気的にのみ生育する16)OFテスト:
陰性 17)糖[からの酸・ガスの生成 酸 ガス ■ L−アラビノース −− ■ D−キシロース −− ■ D−グルコース − − ■ D−マンノース −− ■ D−フラクトース −− ■ D−ガラクトース −− ■ 麦芽糖 −− ■ ショ糖 −− ■ 乳糖 −− [相] トレハロース −− ■ D−ソルビトール −− o D−マンニット −− ◎ イノジット − − [相] グリセリン −− [相] デンプン −− 以上の菌学的性質を有する苗について、パージエイズ・
マニュアル・オプ・デターミイネイティブ・ハタテリオ
ロジ−(Bergey’s Manual of De
ter−minative Bacteriology
)第8版(1974年)に基づき検索した結果、好気的
条件下に生育する有胞子桿菌であることから、バシラス
(Bacillus)属に属する菌株と同定した。また
、本菌株を同属中の菌種と比較すると、バシラス・スフ
ァエリカス(Bacillussphaericus)
およびバシラス・パステウリー(Bacillus p
asteurii)に近似しているが、表1に示す点で
、これらの菌種とは異なっている。
ターゼ:陽性 13)カラターゼ:陽性 14)生育の範囲 生育温度:10〜45℃(最適30〜35℃)生育p1
16.o〜9.5(最適8.5〜9.0)15)酸素に
対する態度:好気的にのみ生育する16)OFテスト:
陰性 17)糖[からの酸・ガスの生成 酸 ガス ■ L−アラビノース −− ■ D−キシロース −− ■ D−グルコース − − ■ D−マンノース −− ■ D−フラクトース −− ■ D−ガラクトース −− ■ 麦芽糖 −− ■ ショ糖 −− ■ 乳糖 −− [相] トレハロース −− ■ D−ソルビトール −− o D−マンニット −− ◎ イノジット − − [相] グリセリン −− [相] デンプン −− 以上の菌学的性質を有する苗について、パージエイズ・
マニュアル・オプ・デターミイネイティブ・ハタテリオ
ロジ−(Bergey’s Manual of De
ter−minative Bacteriology
)第8版(1974年)に基づき検索した結果、好気的
条件下に生育する有胞子桿菌であることから、バシラス
(Bacillus)属に属する菌株と同定した。また
、本菌株を同属中の菌種と比較すると、バシラス・スフ
ァエリカス(Bacillussphaericus)
およびバシラス・パステウリー(Bacillus p
asteurii)に近似しているが、表1に示す点で
、これらの菌種とは異なっている。
表1
以上のことから、本菌株をバシラス(Bacillus
)属に属する新菌種と認め、バシラス エスピーD C
−1(Bacillus Sp、 DC−1)と命名し
た。なお、本菌株は、工業技術院 微生物工業技術研究
所に受託番号 微工研菌寄第8719号として寄託され
ている。
)属に属する新菌種と認め、バシラス エスピーD C
−1(Bacillus Sp、 DC−1)と命名し
た。なお、本菌株は、工業技術院 微生物工業技術研究
所に受託番号 微工研菌寄第8719号として寄託され
ている。
次に、実施例を挙げ、本発明の詳細な説明するが、本発
明は、この実施例にのみ限定されるものではなく、通常
の変更、改良を含むものである。
明は、この実施例にのみ限定されるものではなく、通常
の変更、改良を含むものである。
実施例 1
酵母エキス5g、ポリペプトン5g、リン酸−カリウム
1g、硫酸マグネシウム(7水塩)0.2gを蒸留水1
1に溶し、10%炭酸ナトリウム水溶液でI)Hを9.
0に調整した。 この液体培地10ml!を直径24m
mの試験管に入れ、120°Cで15分間高圧蒸気滅菌
した後、バシラス エスピー DC−1(Bacill
us sp、 DC−1)を1白金耳接種し30℃で2
4時間振盪培養し、前培養とした。
1g、硫酸マグネシウム(7水塩)0.2gを蒸留水1
1に溶し、10%炭酸ナトリウム水溶液でI)Hを9.
0に調整した。 この液体培地10ml!を直径24m
mの試験管に入れ、120°Cで15分間高圧蒸気滅菌
した後、バシラス エスピー DC−1(Bacill
us sp、 DC−1)を1白金耳接種し30℃で2
4時間振盪培養し、前培養とした。
上記と同じ組成の培地100mAを500mj!容の三
角フラスコに入れ、同様に滅菌した後、前培養液1mI
!を接種し゛、30℃で24時間振盪培養した後、(±
)−シス、トランス−パーメトリン酸エチル(シス/ト
ランス比−45155)1゜5gを添加し、さらに30
℃で120時間振盪し、反応させた。この反応液に35
%HCl1m1を加え、メチルイソブチルケトン5 Q
m 1で抽出した。 抽出物をガスクロマトグラフィ
ー(カラム:3% Thermon 3000.1.1
m、 140℃)で分析し、パーメトリン酸とパーメト
リン酸エチルのピーク面積比から収率を算出した。
角フラスコに入れ、同様に滅菌した後、前培養液1mI
!を接種し゛、30℃で24時間振盪培養した後、(±
)−シス、トランス−パーメトリン酸エチル(シス/ト
ランス比−45155)1゜5gを添加し、さらに30
℃で120時間振盪し、反応させた。この反応液に35
%HCl1m1を加え、メチルイソブチルケトン5 Q
m 1で抽出した。 抽出物をガスクロマトグラフィ
ー(カラム:3% Thermon 3000.1.1
m、 140℃)で分析し、パーメトリン酸とパーメト
リン酸エチルのピーク面積比から収率を算出した。
加えたパーメトリン酸エチルは、パーメトリン酸に転換
したものを除いて全てパーメトリン酸エチルとして回収
された。
したものを除いて全てパーメトリン酸エチルとして回収
された。
更に、抽出物にIN水酸化ナトリウム溶液を加えパーメ
トリン酸のみをナトリウム塩として水層に抽出した後、
水層を塩酸でpH2以下として、遊離したパーメトリン
酸をメチルイソブチルケトンで抽出した。 抽出液を濃
縮、乾固して化学的にほぼ純粋なパーメトリン酸0.4
04gを得た。
トリン酸のみをナトリウム塩として水層に抽出した後、
水層を塩酸でpH2以下として、遊離したパーメトリン
酸をメチルイソブチルケトンで抽出した。 抽出液を濃
縮、乾固して化学的にほぼ純粋なパーメトリン酸0.4
04gを得た。
得られたパーメトリン酸のうち5 m gをトルエンl
m I!に溶解し、等モルの塩化チオニル、ピリジン
、3,5−ジクロルアニリンを加えて反応させアニリド
とし高速液体クロマトグラフィー(カーy ム: SU
MIPAX 0A−2100、移動相jl−ヘキサン−
ジクロロエタン(17: 3.V/V、流速: 1 、
Om l / m i n )で異性体分析を行った
。
m I!に溶解し、等モルの塩化チオニル、ピリジン
、3,5−ジクロルアニリンを加えて反応させアニリド
とし高速液体クロマトグラフィー(カーy ム: SU
MIPAX 0A−2100、移動相jl−ヘキサン−
ジクロロエタン(17: 3.V/V、流速: 1 、
Om l / m i n )で異性体分析を行った
。
結果を表2に示す。 表中、収率は、原料中の(+)−
)ランス−パーメトリン酸エチルに対する得られた(十
)−)ランス−パーメトリン酸のモル収率を表す。
)ランス−パーメトリン酸エチルに対する得られた(十
)−)ランス−パーメトリン酸のモル収率を表す。
実施例2
実施例1と同様にしてバシラス エスピーDC−1(B
acillus sp、 DC−1)を培養し、この培
養液100mj!を遠心分離して湿重量0.5gの菌体
を得た。 この菌体をpH8,0の0.1Mリン酸緩衝
液IQm/に!!!濁し、これに(±)−シス、トラン
ス−パーメトリン酸メチル(シス/トランス比=451
55)1.0gを加え30°c96時間攪拌した。 実
施例1と同様にして抽出、単離を行い0.277gのパ
ーメトリン酸を得た。 加えたパーメトリン酸メチルは
パーメトリン酸に転換したものを除いて全てパーメトリ
ン酸メチルとして回収された。
acillus sp、 DC−1)を培養し、この培
養液100mj!を遠心分離して湿重量0.5gの菌体
を得た。 この菌体をpH8,0の0.1Mリン酸緩衝
液IQm/に!!!濁し、これに(±)−シス、トラン
ス−パーメトリン酸メチル(シス/トランス比=451
55)1.0gを加え30°c96時間攪拌した。 実
施例1と同様にして抽出、単離を行い0.277gのパ
ーメトリン酸を得た。 加えたパーメトリン酸メチルは
パーメトリン酸に転換したものを除いて全てパーメトリ
ン酸メチルとして回収された。
更に、実施例1と同様に分析し表3に示す結果を得た。
表3中、収率は、原料中のく+)−トランス−パーメ
トリン酸メチルに対する得られた(+)−トランス−パ
ーメトリン酸のモル収率を表す。
トリン酸メチルに対する得られた(+)−トランス−パ
ーメトリン酸のモル収率を表す。
実施例3〜10
105O0!i付フラスコに液体培地(水1Nにペプト
ン5.0g、グルコース10.0g、麦芽エキス3.0
gおよび酵母エキス3.0gを溶解し、pH6,5とす
る。)100mj!を入れて殺菌した後、表4に記載し
た各微生物を斜面培養から1白金耳接種し30℃で20
時間柱往復盪培養した。
ン5.0g、グルコース10.0g、麦芽エキス3.0
gおよび酵母エキス3.0gを溶解し、pH6,5とす
る。)100mj!を入れて殺菌した後、表4に記載し
た各微生物を斜面培養から1白金耳接種し30℃で20
時間柱往復盪培養した。
次いで、(±)−シス、トランス−パーメトリン酸エチ
ル(シル/トランス比=45155)1.0gを加え7
2時間30℃で往復振盪した。 実施例1と同様に抽出
、単離、分析を行ったところ、化学的にほぼ純粋なパー
メトリン酸が得られた。 使用したパーメトリン酸エチ
ルのうち、パーメトリン酸に転化したちの以外は全て回
収された。 各菌株による反応の分析結果を表4に示す
。 表中、収率は、原料中の(+)−トランス−パーメ
トリン酸エチルに対する得られた(+)−)ランス−パ
ーメトリン酸のモル収率を表す。
ル(シル/トランス比=45155)1.0gを加え7
2時間30℃で往復振盪した。 実施例1と同様に抽出
、単離、分析を行ったところ、化学的にほぼ純粋なパー
メトリン酸が得られた。 使用したパーメトリン酸エチ
ルのうち、パーメトリン酸に転化したちの以外は全て回
収された。 各菌株による反応の分析結果を表4に示す
。 表中、収率は、原料中の(+)−トランス−パーメ
トリン酸エチルに対する得られた(+)−)ランス−パ
ーメトリン酸のモル収率を表す。
一ゝ\ ′−′、
“\
■
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 一般式: ▲数式、化学式、表等があります▼( I ) (式中、R′は、C1〜C4のアルキル基を表す。 本式は、立体関係を表すものではない。)で表されるシ
クロプロパンカルボン酸エステル類に、ロドトルラ・ル
ブラ(Rhodotorula rubra)IFO−
0918 ロドトルラ・ルブラ(Rhodotorula rub
ra)IFO−1100 ロドトルラ・ルブラ(Rhodotorula rub
ra)IFO−0889 ロドトルラ・ルブラ(Rhodotorula rub
ra)IFO−0909 キャンディダ・フミコラ(Candida humic
ola)IFO−0760 キャンディダ・リポリティカ(Candidalipo
lytica)NRRL−Y−6795アスペルギラス
・オリーゼ(Aspergillusoryzae)A
TCC−14605 アスペルギラス・フラバス(Aspergillusf
lavus)ATCC−11492あるいは、バシラス
エスピー(Bacillus sp.)DC−1(微
工研菌寄第8719号)から選ばれた微生物あるいは該
微生物が生産するエステラーゼを作用させ、 ▲数式、化学式、表等があります▼(II) (式中、Rは、水素あるいは金属イオンを表す。 本式は、立体関係を表すものではない。)で表される光
学活性な(+)−トランス−バーメトリン酸とそのジア
ステレオマーのエステルとに分割した後、式(II)の光
学活性な(+)−トランス−バーメトリン酸類を回収す
ることを特徴とする式(II)で表される光学活性な(+
)−トランス−バーメトリン酸類の製造方法
Priority Applications (7)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP61095444A JPH0751077B2 (ja) | 1986-04-24 | 1986-04-24 | (+)−トランス−パ−メトリン酸の製造法 |
DE19873785132 DE3785132T2 (de) | 1986-04-16 | 1987-04-16 | Herstellung optisch aktiver cyclopropancarbonsäuren. |
EP92200537A EP0488999B1 (en) | 1986-04-16 | 1987-04-16 | A method for producing optically active cyclopropane carboxylic acid |
PCT/JP1987/000244 WO1987006269A1 (en) | 1986-04-16 | 1987-04-16 | Process for preparing optically active cyclopropanecarboxylic acids |
EP19870902734 EP0264457B1 (en) | 1986-04-16 | 1987-04-16 | Process for preparing optically active cyclopropanecarboxylic acids |
DE19873752086 DE3752086T2 (de) | 1986-04-16 | 1987-04-16 | Verfahren zur Herstellung von optisch-aktiven Cyclopropancarbonsäure |
US07/620,385 US5180671A (en) | 1986-04-16 | 1987-04-16 | Method for producing optically active cyclopropane carboxylic acid |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP61095444A JPH0751077B2 (ja) | 1986-04-24 | 1986-04-24 | (+)−トランス−パ−メトリン酸の製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS62253398A true JPS62253398A (ja) | 1987-11-05 |
JPH0751077B2 JPH0751077B2 (ja) | 1995-06-05 |
Family
ID=14137861
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP61095444A Expired - Lifetime JPH0751077B2 (ja) | 1986-04-16 | 1986-04-24 | (+)−トランス−パ−メトリン酸の製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0751077B2 (ja) |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS60244295A (ja) * | 1984-05-17 | 1985-12-04 | バイエル・アクチエンゲゼルシヤフト | (十)‐トランス‐シクロプロパンカルボン酸の製造方法 |
-
1986
- 1986-04-24 JP JP61095444A patent/JPH0751077B2/ja not_active Expired - Lifetime
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS60244295A (ja) * | 1984-05-17 | 1985-12-04 | バイエル・アクチエンゲゼルシヤフト | (十)‐トランス‐シクロプロパンカルボン酸の製造方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0751077B2 (ja) | 1995-06-05 |
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