JPS62163685A - ビフイドバクテリウム菌増殖促進組成物及びその製造法 - Google Patents
ビフイドバクテリウム菌増殖促進組成物及びその製造法Info
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- JPS62163685A JPS62163685A JP423486A JP423486A JPS62163685A JP S62163685 A JPS62163685 A JP S62163685A JP 423486 A JP423486 A JP 423486A JP 423486 A JP423486 A JP 423486A JP S62163685 A JPS62163685 A JP S62163685A
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- bifidobacterium
- laminarioligosaccharide
- growth
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- glucanase
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- Dairy Products (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は、新規なビフィドバクテリウム菌増殖促進組成
物及びその製造法に関する。更に詳しくはラミナリオリ
ゴ糖を有効成分としたビフィドバクテリウム菌増殖促進
組成物及びβ−1,3−グルコシル糖化合物を特定のβ
−1,3−グルカナーゼで処理することを特徴としたビ
フィドバクテリウム菌増殖促進組成物の製造法に関する
。
物及びその製造法に関する。更に詳しくはラミナリオリ
ゴ糖を有効成分としたビフィドバクテリウム菌増殖促進
組成物及びβ−1,3−グルコシル糖化合物を特定のβ
−1,3−グルカナーゼで処理することを特徴としたビ
フィドバクテリウム菌増殖促進組成物の製造法に関する
。
(従来の技術)
ビフィドバクテリウム菌は幼児から老人に至るまでほと
んどの人の腸内に定着しており、近年有益な様々の役割
を演じていることが明らかになってきている。例えば、
ビフィドバクテリウム菌の有用性を列挙すると以下のよ
うなことがある。
んどの人の腸内に定着しており、近年有益な様々の役割
を演じていることが明らかになってきている。例えば、
ビフィドバクテリウム菌の有用性を列挙すると以下のよ
うなことがある。
1)腸内有害菌の抑制、排除、2)有機酸の産生、3)
便秘、下痢の改善4)蛋白質の吸収促進5)ビタミンの
産生6)抗ガン作用(食品工業1下−198i p、4
4−51)等である。この為、ビフィドバクテリウム菌
を含有させた牛乳、ヨーグルト等の飲食品が市販され、
健康の維持、増進を目的として広く利用されるようにな
りてきた。一方、最近腸内におけるビフィドバクテリウ
ム菌の増殖を促進させる物質をビフィドバクテリウム菌
とともに、又は単独で投与することにより腸内ビフィド
バクテリウム菌数を高水準に維持しようとする試みがな
されビフィドバクテリウム菌増殖因子としてラクチュロ
ース、N−アセチルグルコサミン、パンテチン類等が知
られているが、一方でビフイドパクテリウム菌が選択的
に資化し得る糖類の研究も多くなされている。
便秘、下痢の改善4)蛋白質の吸収促進5)ビタミンの
産生6)抗ガン作用(食品工業1下−198i p、4
4−51)等である。この為、ビフィドバクテリウム菌
を含有させた牛乳、ヨーグルト等の飲食品が市販され、
健康の維持、増進を目的として広く利用されるようにな
りてきた。一方、最近腸内におけるビフィドバクテリウ
ム菌の増殖を促進させる物質をビフィドバクテリウム菌
とともに、又は単独で投与することにより腸内ビフィド
バクテリウム菌数を高水準に維持しようとする試みがな
されビフィドバクテリウム菌増殖因子としてラクチュロ
ース、N−アセチルグルコサミン、パンテチン類等が知
られているが、一方でビフイドパクテリウム菌が選択的
に資化し得る糖類の研究も多くなされている。
例えば合成オリゴ糖、コンニャクマンナン分解物及びフ
ラクトオリゴ糖等。(「腸内フローラと食物因子」光岡
知足編−学会出版センター刊より)またガラクトース−
グルコースオリゴ糖(特開昭55−104885号公報
)及び大豆オリがIi(特開昭60−66978号公報
)が知られている。
ラクトオリゴ糖等。(「腸内フローラと食物因子」光岡
知足編−学会出版センター刊より)またガラクトース−
グルコースオリゴ糖(特開昭55−104885号公報
)及び大豆オリがIi(特開昭60−66978号公報
)が知られている。
(問題を解決する為の手段)
しかしながら、本発明者らは、前記のような従来のビフ
ィドバクテリウム増殖促進物質とはいずれとも異なる新
規な促進物質について鋭意研究した結果、本発明に至り
た。
ィドバクテリウム増殖促進物質とはいずれとも異なる新
規な促進物質について鋭意研究した結果、本発明に至り
た。
即ち、本発明は、ラミナリオリゴ糖を有効成分とするビ
フィドバクテリウム菌の増殖促進組成物及び
゛ 微生物が生産す1こるエンド型β−1
,3−グルカナーゼによりβ−1,3−グルコシル糖化
合物を処理することを特徴としたビフィドバクテリウム
菌増殖促進組成物の製造法を提供するものである。
フィドバクテリウム菌の増殖促進組成物及び
゛ 微生物が生産す1こるエンド型β−1
,3−グルカナーゼによりβ−1,3−グルコシル糖化
合物を処理することを特徴としたビフィドバクテリウム
菌増殖促進組成物の製造法を提供するものである。
(発明の構成)
本発明のβ−1,3−グルコシル糖化合物とは、カード
ラン(アルカリ土類金属が生産する直鎖型β−1゜3−
グルカン(A、B、C,29,757、′65又は発酵
と工業36,2、’78 ) )、ラミナリン、パキマ
ン、酵母細胞壁及び天然の海藻類等が挙げられるが、そ
の中でも直鎖型β−1,3−グルカンであるカードシン
がより好ましい。
ラン(アルカリ土類金属が生産する直鎖型β−1゜3−
グルカン(A、B、C,29,757、′65又は発酵
と工業36,2、’78 ) )、ラミナリン、パキマ
ン、酵母細胞壁及び天然の海藻類等が挙げられるが、そ
の中でも直鎖型β−1,3−グルカンであるカードシン
がより好ましい。
本発明のラミナリオリゴ糖とは、前記β−1,3−グル
コシル糖化合物をエンド型β−1,3−グルカナーゼに
より分解して得られるグルコース(G)がβ−1゜3−
結合で2〜10、好ましくは3〜7個程度結合した水溶
性の糖である。その具体例としては、ラミナリビオース
(G2) 、ラミナリトリオース(G3)、ラミナリテ
トラオース(Ga) 、ラミナリペンタオース(Gs)
、ラミナリヘキサオース<Gb) 、ラミナリヘプタ
オース(G7)、ラミナリオクタオース(Gs)−yミ
ナリノナオース(G9)、ラミナリデカンオース(G1
0)等である。特に、増殖促進効果の点から、ラミナリ
トリオース及び/又はラミナリテトラオースを有効成分
として多く含む組成のものが好ましい。
コシル糖化合物をエンド型β−1,3−グルカナーゼに
より分解して得られるグルコース(G)がβ−1゜3−
結合で2〜10、好ましくは3〜7個程度結合した水溶
性の糖である。その具体例としては、ラミナリビオース
(G2) 、ラミナリトリオース(G3)、ラミナリテ
トラオース(Ga) 、ラミナリペンタオース(Gs)
、ラミナリヘキサオース<Gb) 、ラミナリヘプタ
オース(G7)、ラミナリオクタオース(Gs)−yミ
ナリノナオース(G9)、ラミナリデカンオース(G1
0)等である。特に、増殖促進効果の点から、ラミナリ
トリオース及び/又はラミナリテトラオースを有効成分
として多く含む組成のものが好ましい。
次に微生物が生産する工/ド型β−1,3−グルカナー
ゼの調製方法について述べる。反応に用いるエンド型β
−1,3−グルカナーゼは、β−1,3−グルコシル糖
化合物を加水分解し、ラミナリオリゴ糖を生成するもの
で63はいずれの起源からのものでもよいが、ストレプ
トマイ七ス属に属する微生物からのものが好ましい。又
通常市販のβ−1,3−グルカナーゼも使用できなくは
ないが、エキソ型β−1,3−グルカナーゼを混入して
いる為、グルコースが多量に生成され、こnではビフィ
ドバクテリウム菌の選択糖源にならない。従って、イオ
ン交換クロマトグラフィーあるいは分子ふるい等で両酵
素を分画して使用すれば良い。本発明で特に好ましく用
いられるストレグトマイセス属に属する微生物としては
、例エハストレグトマイセスip 、DIC−108が
挙げられる。DIC−108菌株は、培養液中にエンド
型とエキソ型の両タイプのβ−1,3−グルカナーゼを
生産するが、エキソ型のβ−1,3−グルカナーゼは適
当な条件で加熱処理を行うことによりすみやかに失活さ
せることが出来、エンド型のβ−1,3−グルカナーゼ
のみを得ることが可能であるのでより好ましいが、これ
に限定されるものではない。
ゼの調製方法について述べる。反応に用いるエンド型β
−1,3−グルカナーゼは、β−1,3−グルコシル糖
化合物を加水分解し、ラミナリオリゴ糖を生成するもの
で63はいずれの起源からのものでもよいが、ストレプ
トマイ七ス属に属する微生物からのものが好ましい。又
通常市販のβ−1,3−グルカナーゼも使用できなくは
ないが、エキソ型β−1,3−グルカナーゼを混入して
いる為、グルコースが多量に生成され、こnではビフィ
ドバクテリウム菌の選択糖源にならない。従って、イオ
ン交換クロマトグラフィーあるいは分子ふるい等で両酵
素を分画して使用すれば良い。本発明で特に好ましく用
いられるストレグトマイセス属に属する微生物としては
、例エハストレグトマイセスip 、DIC−108が
挙げられる。DIC−108菌株は、培養液中にエンド
型とエキソ型の両タイプのβ−1,3−グルカナーゼを
生産するが、エキソ型のβ−1,3−グルカナーゼは適
当な条件で加熱処理を行うことによりすみやかに失活さ
せることが出来、エンド型のβ−1,3−グルカナーゼ
のみを得ることが可能であるのでより好ましいが、これ
に限定されるものではない。
尚、ストレゾトマイセス・エスピーI)IC−108の
菌学的性質については1%開昭59−17996号公報
に既に記載されているが、詳細には以下の様な性質を有
するものである。
菌学的性質については1%開昭59−17996号公報
に既に記載されているが、詳細には以下の様な性質を有
するものである。
〔ストレプトマイセス・sp、DIc−108の菌学的
性質〕(1)形態的特徴 使用した培地(rsp培地を含む)上での栄養菌糸の生
育は優nてお夛、デンプン無機塩、オートミール寒天、
イースト麦芽寒天培地上で豊富な気菌糸を形成する。
性質〕(1)形態的特徴 使用した培地(rsp培地を含む)上での栄養菌糸の生
育は優nてお夛、デンプン無機塩、オートミール寒天、
イースト麦芽寒天培地上で豊富な気菌糸を形成する。
胞子形成気菌糸は直状又は直曲状である。胞子は楕円体
で大きさは、短径×長径0.7〜0.8μ×1、0〜1
.2μである。走査型電子顕微鏡による観察では胞子の
表面構造はイI状(Wa r t y )である。
で大きさは、短径×長径0.7〜0.8μ×1、0〜1
.2μである。走査型電子顕微鏡による観察では胞子の
表面構造はイI状(Wa r t y )である。
(2)各種培地における生育状態
1)シュクロース硝酸塩寒天培地(37℃)薄茶色の基
土菌糸状に灰色の気菌糸を形成し、溶解性色素は認めら
れない。
土菌糸状に灰色の気菌糸を形成し、溶解性色素は認めら
れない。
2)グルコース・アスノクラギン寒天培地(37℃)薄
黄白色の生育で気菌糸の形成はみとめられな旨。また溶
解性色素は認められない。
黄白色の生育で気菌糸の形成はみとめられな旨。また溶
解性色素は認められない。
3)グリセリン・アスノ々ライン寒天培地(xsp培地
−煮537℃) 薄黄色の生育で気菌糸の着生はみとめられなり。
−煮537℃) 薄黄色の生育で気菌糸の着生はみとめられなり。
又、溶解性色素は認められな−。
4)スターチ・無機塩寒天培地(rsp培地37℃)無
色の発育上に緑灰色の気菌糸を着生し、溶解性色素は認
められない。
色の発育上に緑灰色の気菌糸を着生し、溶解性色素は認
められない。
5)チロシン寒天培地(ISP培地−7,37℃)薄茶
色の発育上に培養7日目では気菌糸は着生せず、144
日目白灰色の気菌糸を着生する。溶解性色素は認められ
ない。
色の発育上に培養7日目では気菌糸は着生せず、144
日目白灰色の気菌糸を着生する。溶解性色素は認められ
ない。
6)栄養寒天培地(37℃)
緑灰黒色の発育上に薄縁灰色の気菌糸を着生し、溶解性
色素は認められな込。
色素は認められな込。
7)イースト麦芽寒天培地(ISP培地−2,37℃)
薄茶色の生育上に薄縁灰色の気菌糸を着生する。
薄茶色の生育上に薄縁灰色の気菌糸を着生する。
水溶性色素の生成は認められない。
8)オートミール寒天培地(ISP培地−3,37℃)
無色の生育上に緑茶灰色の気菌糸を着生し、水溶性色素
の生成は認められな込。
無色の生育上に緑茶灰色の気菌糸を着生し、水溶性色素
の生成は認められな込。
(3) 生理的性質
1)生育温度範囲
酵母エキス・麦芽エキス液体培地による生育試験では、
30℃〜50℃で生育するが、至適温度は37℃〜45
℃である。
30℃〜50℃で生育するが、至適温度は37℃〜45
℃である。
2)ゼラチンの液化:陰性
3)脱脂乳の凝固及び
脱脂乳のペプトン化:陰性
4)メラニン色素の生成(ペプトン・イースト・鉄寒天
培地、ISP培地6):陰性 5)デンプンの分解性:*性(分解ゾーンに白いリング
を形成) 6)炭素源の利用性(プリドハム、コ0ドリープ寒天培
地−9,37℃) D−グルコース、L−アラビノース、D−キシロース、
D−フルクトース、イノシトール、L−ラムノース、D
−マンニトール、カラクトースをよく利用して生育し、
シュクa−ス、ラフィノース、プリジンは利用しない。
培地、ISP培地6):陰性 5)デンプンの分解性:*性(分解ゾーンに白いリング
を形成) 6)炭素源の利用性(プリドハム、コ0ドリープ寒天培
地−9,37℃) D−グルコース、L−アラビノース、D−キシロース、
D−フルクトース、イノシトール、L−ラムノース、D
−マンニトール、カラクトースをよく利用して生育し、
シュクa−ス、ラフィノース、プリジンは利用しない。
7)細胞壁組成
ISPに記載されている糖組成TypeとしてはTyp
eIに属する。
eIに属する。
尚、本菌株は、工業技術院微生物工業技術研究所に寄託
申請し、微工研菌寄第6593号として受託されている
。
申請し、微工研菌寄第6593号として受託されている
。
本発明による酵素生産の為の培養には、通常の固体培地
又は液体培地が使用され、液体培養の為の培地の炭素源
としては、β−1,3−グルコシル糖化合物であれば利
用できる。
又は液体培地が使用され、液体培養の為の培地の炭素源
としては、β−1,3−グルコシル糖化合物であれば利
用できる。
例えば、カードラン、ノ中キマン、ラミナリン。
リケナン、酵母細胞壁又はその部分加水分解物、リーラ
コシン、カミース、ノ譬うミaン等が挙げられ、又窒素
源としては硫安、塩安、リン安、硝酸ナトリウム、尿素
、ペグトン、カゼイン等、有機窒素、無機窒素、いずれ
も利用できる。
コシン、カミース、ノ譬うミaン等が挙げられ、又窒素
源としては硫安、塩安、リン安、硝酸ナトリウム、尿素
、ペグトン、カゼイン等、有機窒素、無機窒素、いずれ
も利用できる。
天然栄養源としては、例えば各種糖蜜、コーンステイー
グリカー、オートミール、味液、魚粉、肉エキス、酵母
、酵母エキス、ポテトエキス、麦芽エキス等があげられ
る。
グリカー、オートミール、味液、魚粉、肉エキス、酵母
、酵母エキス、ポテトエキス、麦芽エキス等があげられ
る。
無機物としては、例えばリン酸二カリウム、リン酸−ナ
トリウム、硫酸マグネシウム、倣貴金属類などが挙げら
れる。その他、必要に応じてビタミン類等を添加するこ
ともできる。これらの使用濃度としては、0.1〜40
iiチが用いられる。
トリウム、硫酸マグネシウム、倣貴金属類などが挙げら
れる。その他、必要に応じてビタミン類等を添加するこ
ともできる。これらの使用濃度としては、0.1〜40
iiチが用いられる。
また醗酵中の発泡を抑制するため、0.0001〜1、
O重f!に%の消泡剤を添加してもよい。消泡剤とし
ては、シリコーン、大豆油など通常の消泡剤を用いる。
O重f!に%の消泡剤を添加してもよい。消泡剤とし
ては、シリコーン、大豆油など通常の消泡剤を用いる。
培養方法は、振とう培養、通気培養などの好気的液体培
養が遇しておシ、PHs、o〜8.0、培養温度20℃
〜50℃で1〜6日、望ましくはpH6,5〜7.5.
35〜40℃で2日前後培養する。
養が遇しておシ、PHs、o〜8.0、培養温度20℃
〜50℃で1〜6日、望ましくはpH6,5〜7.5.
35〜40℃で2日前後培養する。
エンド型のβ−1,3−グルカナーゼは、菌体外に生産
する酵素であるので、培養終了後、口過又は遠心分離し
て除菌し、上清液を回収する。そして必要に応じてm縮
し、硫安、硫酸ナトリウムによる塩析、又はアセトン、
エタノール、メタノール、イソグロパノールなどの有機
溶剤を加え、酵素を沈澱物として取得し、乾燥、保存す
る。
する酵素であるので、培養終了後、口過又は遠心分離し
て除菌し、上清液を回収する。そして必要に応じてm縮
し、硫安、硫酸ナトリウムによる塩析、又はアセトン、
エタノール、メタノール、イソグロパノールなどの有機
溶剤を加え、酵素を沈澱物として取得し、乾燥、保存す
る。
本発明で好ましく用いられる前記DIC−108株から
のエンド型β−1,3−グルカナーゼの性質を次に示す
。
のエンド型β−1,3−グルカナーゼの性質を次に示す
。
エンド型β−1,3−グルカナーゼ
(1) 作用
β−1,3−グルコシル糖化合物、例えばカードラン、
ラミナリン、ノ譬キマン、酵母細胞壁及びその部分分解
物に作用してエンドタイグの加水分解作用を示す。G5
(ラミナリペンタオース)を基質とした時の主分解生成
物はG2とG3である。(図−1,2参照) (2) 作用pJ(範囲及び最適作用−1=−3〜9
の範囲で作用し、最適作用−(は6付近にある。(図−
3参照) (3) 作用1m度範囲及び最適作用温度:約り0℃
〜約70℃まで作用し、最適作用温度は約65℃である
。(図−4参照) (4) 熱安定性: 0.1Mリン酸緩衝液(pH6,0)中、1時間の熱処
理によシ活性は、約50係低下し友。
ラミナリン、ノ譬キマン、酵母細胞壁及びその部分分解
物に作用してエンドタイグの加水分解作用を示す。G5
(ラミナリペンタオース)を基質とした時の主分解生成
物はG2とG3である。(図−1,2参照) (2) 作用pJ(範囲及び最適作用−1=−3〜9
の範囲で作用し、最適作用−(は6付近にある。(図−
3参照) (3) 作用1m度範囲及び最適作用温度:約り0℃
〜約70℃まで作用し、最適作用温度は約65℃である
。(図−4参照) (4) 熱安定性: 0.1Mリン酸緩衝液(pH6,0)中、1時間の熱処
理によシ活性は、約50係低下し友。
(5) 精製方法:
本酵素は、培養り過液から硫安65チ飽和で沈澱物とし
て回収後、DIAE −S@phad@x A −2
5カラムクロマトグラフイー(0,01M )!Jス
ーHCtバッファ、pi17.5)を行ない食塩濃度0
.2Mで溶出される両分を集める。そして脱塩後CM
−8・ph鳳d@x C−25カラムクロマトグラフイ
ー(0,01M酢酸バッフイー、pm(6,0)を行っ
て未吸着画分を集め、再度DEAE−8sphad@x
A −25カラムクロマトグラフイー(0〜0.25M
のリニアグラディエンド)により活性画分を集める。次
いでG−10(1”ルロ過クロマトグラフィーにより、
はぼ均一な酵素タン/4り質を得る。
て回収後、DIAE −S@phad@x A −2
5カラムクロマトグラフイー(0,01M )!Jス
ーHCtバッファ、pi17.5)を行ない食塩濃度0
.2Mで溶出される両分を集める。そして脱塩後CM
−8・ph鳳d@x C−25カラムクロマトグラフイ
ー(0,01M酢酸バッフイー、pm(6,0)を行っ
て未吸着画分を集め、再度DEAE−8sphad@x
A −25カラムクロマトグラフイー(0〜0.25M
のリニアグラディエンド)により活性画分を集める。次
いでG−10(1”ルロ過クロマトグラフィーにより、
はぼ均一な酵素タン/4り質を得る。
(6)分子量:
セファデックスG−100fルクaマドグラフイーによ
る分子量は約27,000と推定された。
る分子量は約27,000と推定された。
次にエンド型β−1,3−グルカナーゼを用いてラミナ
リオリゴ掘を製造する方法について1説明する。
リオリゴ掘を製造する方法について1説明する。
!−1.3−グルコシル糖化合物をa間約0.1〜約3
0重投チ、−2〜−410、好ましくは一5〜ptt
7の水酷液又は緩衝液にて懸濁し、エンド型β−1,3
−グルカナーゼをIL当り100〜200単位添加し、
反応温度20℃〜70℃、好ましくは40℃〜60℃で
15分〜24時間、好ましくは2時間〜8時間攪拌しな
がら反応させる。尚ここで言うエンド型β−1,3グル
カナーゼ活性の1重位とは、0.OIMのリン酸バッフ
ァー(pH6,0)にカードラン1重ft%を懸濁させ
、それに適量の酵素を加えて水でs、 o IRtとし
、45℃で反応させる。この条件で1時間に1mgのグ
ルコースに相当する還元力を生成する酵素量を言う。
0重投チ、−2〜−410、好ましくは一5〜ptt
7の水酷液又は緩衝液にて懸濁し、エンド型β−1,3
−グルカナーゼをIL当り100〜200単位添加し、
反応温度20℃〜70℃、好ましくは40℃〜60℃で
15分〜24時間、好ましくは2時間〜8時間攪拌しな
がら反応させる。尚ここで言うエンド型β−1,3グル
カナーゼ活性の1重位とは、0.OIMのリン酸バッフ
ァー(pH6,0)にカードラン1重ft%を懸濁させ
、それに適量の酵素を加えて水でs、 o IRtとし
、45℃で反応させる。この条件で1時間に1mgのグ
ルコースに相当する還元力を生成する酵素量を言う。
反応後、未分解のβ−1,3−グルコシル糖化合物は、
プ7ナーにて口過又は遠心分離にて除き、上清は冷蔵庫
内又は0〜10℃の条件下で少なくとも一昼夜放置する
と、G6以上の可溶性ラミナリオリゴ糖は大部分が白色
沈殿物として取り出すことができる。
プ7ナーにて口過又は遠心分離にて除き、上清は冷蔵庫
内又は0〜10℃の条件下で少なくとも一昼夜放置する
と、G6以上の可溶性ラミナリオリゴ糖は大部分が白色
沈殿物として取り出すことができる。
こうして得らnた上清を濃縮乾固又は凍結乾燥すると0
2〜G5のラミナリオリゴ糖の白色粉床を得ることがで
きる。又、目的に応じて活性炭カラムにより6塘を単離
することももちろん任意に行いうる。
2〜G5のラミナリオリゴ糖の白色粉床を得ることがで
きる。又、目的に応じて活性炭カラムにより6塘を単離
することももちろん任意に行いうる。
(発明の効果)
本発明のラミナリオリゴ糖は、ビフィズス菌に対して以
下に述べる試験結果が示すように、ラミナリビオース、
ラミナリトリオース及びラミナリテトラオースといった
ラミナリオリゴ糖の単独はもちろんのこと、それらを含
有したラミナリオリコ9抛組酸物においても優れた増殖
促進効果を示すものである。
下に述べる試験結果が示すように、ラミナリビオース、
ラミナリトリオース及びラミナリテトラオースといった
ラミナリオリゴ糖の単独はもちろんのこと、それらを含
有したラミナリオリコ9抛組酸物においても優れた増殖
促進効果を示すものである。
とくにラミナリトリオース、ラミナリテトラオースは大
腸萌等有害菌に対しては資化され難く、ビフィドバクテ
リウム菌に選択的なW源として極めて有効である。
腸萌等有害菌に対しては資化され難く、ビフィドバクテ
リウム菌に選択的なW源として極めて有効である。
しかもラミナリオリゴ糖は、グルコースがβ−1,3で
直鎖的に結合し友ものである為、その構造上人体内で分
解又は消化吸収されてその効力を失うことなく腸内に到
達し、腸内のビフィズス菌に対して増殖効果を示すもの
と考えられる。
直鎖的に結合し友ものである為、その構造上人体内で分
解又は消化吸収されてその効力を失うことなく腸内に到
達し、腸内のビフィズス菌に対して増殖効果を示すもの
と考えられる。
従って、飲食物(乳酸飲料、お菓子類)、薬剤、健康食
品等に添加して用いることにより、ビフィドバクテリウ
ム遍の高濃度維持が可能となる。
品等に添加して用いることにより、ビフィドバクテリウ
ム遍の高濃度維持が可能となる。
尚、本発明によるラミナリオリゴ糖のビフィドバクテリ
ウム菌に対する増殖促進効果は、ビフィドバクテリウム
菌の種類とほとんど関係なく、例えば、ビフィドバクテ
リウム・プリーベ、同ビフィダム、同インファンティス
、同アドレスセンチイス等、すべての人腸内定着ビフィ
ドバクテリウム函で共通して優れた増殖効果を示すもの
である。
ウム菌に対する増殖促進効果は、ビフィドバクテリウム
菌の種類とほとんど関係なく、例えば、ビフィドバクテ
リウム・プリーベ、同ビフィダム、同インファンティス
、同アドレスセンチイス等、すべての人腸内定着ビフィ
ドバクテリウム函で共通して優れた増殖効果を示すもの
である。
次に具体的な実施例を示して詳しく説明する。
文中〔チ〕は重量基準であるものとする。
実施例1
■エンド型β−1,3グルカナーゼの調製ストレプトマ
イセス・sp、DIC−108(微工研菌沓第6593
号)を酵母エキス0.2 W/マチ、ポリペブト70.
2 v/v %、MgSO4・7H200,IW/マチ
、K2HPO40,2W/v%、からなる培地35tに
植画し、同時に別殺菌したカードラン350gを加えて
70 L Jarにて35℃で40時間通気攪拌培養し
た。得られた培養液231を遠心分離してその上清液を
硫安0.65飽和で塩析し、エンド型β−1,3グルカ
ナーゼ活性を含有した粗酵素標品(1)を得た。
イセス・sp、DIC−108(微工研菌沓第6593
号)を酵母エキス0.2 W/マチ、ポリペブト70.
2 v/v %、MgSO4・7H200,IW/マチ
、K2HPO40,2W/v%、からなる培地35tに
植画し、同時に別殺菌したカードラン350gを加えて
70 L Jarにて35℃で40時間通気攪拌培養し
た。得られた培養液231を遠心分離してその上清液を
硫安0.65飽和で塩析し、エンド型β−1,3グルカ
ナーゼ活性を含有した粗酵素標品(1)を得た。
粗酵素(I)を0.01M酢酸バッファー(pH5,0
)にて溶解した(この時タンノリ1度を51119/I
lj以下に調製する)溶液を役付三角フラスコに入れト
ルエン−滴を加えて、45℃のウォーターパス中で一昼
夜放置した。熱処理した酵素浴液中にはエキソ型β−1
,3−グルカナーゼ活性は全く見られず、エンド型β−
1,3−グルカナーゼ(II)が約25,000単位得
られた。
)にて溶解した(この時タンノリ1度を51119/I
lj以下に調製する)溶液を役付三角フラスコに入れト
ルエン−滴を加えて、45℃のウォーターパス中で一昼
夜放置した。熱処理した酵素浴液中にはエキソ型β−1
,3−グルカナーゼ活性は全く見られず、エンド型β−
1,3−グルカナーゼ(II)が約25,000単位得
られた。
■ラミナリオリゴ糖の調製
カードラン50.9を0.01Mリン酸バッファー(p
l’16.0)1.OAにて懸濁させ、実施例1の■で
得られた酵素(II)を200単位側えて45℃で2時
間分解反応を行なった。
l’16.0)1.OAにて懸濁させ、実施例1の■で
得られた酵素(II)を200単位側えて45℃で2時
間分解反応を行なった。
分解反応後の組成物を高速液体クロマトグラフィー(H
PLC)にて分析したところ、G213.71G 2
0.5チ、G11.0チ、G548.9%、G62.8
%、G、 2.8%その他0.3 %のラミナリオリコ
9糖組酸物(冊(図−5参照)が得られた。
PLC)にて分析したところ、G213.71G 2
0.5チ、G11.0チ、G548.9%、G62.8
%、G、 2.8%その他0.3 %のラミナリオリコ
9糖組酸物(冊(図−5参照)が得られた。
尚、HPLCによるラミナリオリゴ糖の分析は分離条件
で行なりた・
実施例2
実施例1の■と全く同じ反応条件で、分解時間を8時間
行なった後、反応液は活性炭カラム(Vot。
行なった後、反応液は活性炭カラム(Vot。
1.0001114)を通加させた。カラムを水5tに
て水洗後、50*EtoH10Aで脱着させ、脱着液を
エバポレーターにてa縮径、凍結乾燥させた。得られた
白色粉末1tI(PLCにて分析したところ、0248
.71 G、 48.9 %その他2.4 % カらな
るラミナリオリゴ1!(IV)(図−6参照)が得られ
た。
て水洗後、50*EtoH10Aで脱着させ、脱着液を
エバポレーターにてa縮径、凍結乾燥させた。得られた
白色粉末1tI(PLCにて分析したところ、0248
.71 G、 48.9 %その他2.4 % カらな
るラミナリオリゴ1!(IV)(図−6参照)が得られ
た。
試験例1
供試菌株としてビフィドバクテリウム属菌ではビフィド
バクテリウム ブレーベ(Blfldobaeterl
umbr・マe)、ビフィドバクテリウム ピッイブラ
ム(B、 blfidum ) ATCC15696、
ビフイドパクテリウムアドレスセンチイス(B、 ad
oleseent1g’) ATCC157031!−
用いた。比較歯株としてはラクトバシルス カゼイ(L
aetobaelllus canal ) 、ストレ
プトコッカスフェカリス(Str@ptococcus
fa@cal1g)、大腸菌としてEmch@rla
hla call JC−:2、E、collIFO−
12734、及びE、 eol l IFO−3543
を用いた。
バクテリウム ブレーベ(Blfldobaeterl
umbr・マe)、ビフィドバクテリウム ピッイブラ
ム(B、 blfidum ) ATCC15696、
ビフイドパクテリウムアドレスセンチイス(B、 ad
oleseent1g’) ATCC157031!−
用いた。比較歯株としてはラクトバシルス カゼイ(L
aetobaelllus canal ) 、ストレ
プトコッカスフェカリス(Str@ptococcus
fa@cal1g)、大腸菌としてEmch@rla
hla call JC−:2、E、collIFO−
12734、及びE、 eol l IFO−3543
を用いた。
試験方法としては矢沢らの方法(Chem、 Phar
m。
m。
Bull、 26(11)3306−3311(′78
) )に準じて行なった。
) )に準じて行なった。
既ち、6菌に対するそれぞれの2信置度の培地を高圧滅
菌し、別に高圧滅菌した糖溶液を同容量加え、静置培養
にて37℃で1〜4日間培誉した。
菌し、別に高圧滅菌した糖溶液を同容量加え、静置培養
にて37℃で1〜4日間培誉した。
その培養液をよく混相し、650nmKおける吸光度(
濁度)を測定した。
濁度)を測定した。
結果を表−1に示した。
試験に用いたラミナリオリゴ糖(mはとくに大腸菌に対
して資化され難く、糖濃度を高めることにより、ビフィ
ズス菌に対する増殖促進効果は大きくなった。
して資化され難く、糖濃度を高めることにより、ビフィ
ズス菌に対する増殖促進効果は大きくなった。
試験例2
ラミナリオリゴ糖(2)及び(財)よシ各オリが糖を単
離し、前記したビフィドバクテリウム菌の混合物と大腸
菌の利用性について検討した。
離し、前記したビフィドバクテリウム菌の混合物と大腸
菌の利用性について検討した。
図−7に示したように、ラミナリトリオースが最も大腸
菌を増殖させないで、ビフィドバクテリウム菌を増殖さ
せることができる、即ち選択性に優れたラミナリオリゴ
糖であり、ビフィドバクテリウム菌の増殖物質として優
れたものであることが認められた。
菌を増殖させないで、ビフィドバクテリウム菌を増殖さ
せることができる、即ち選択性に優れたラミナリオリゴ
糖であり、ビフィドバクテリウム菌の増殖物質として優
れたものであることが認められた。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、ラミナリオリゴ糖を有効成分とするビフィドバクテ
リウム菌の増殖促進組成物。 2、微生物が生産するエンド型β−1,3−グルカナー
ゼによりβ−1,3−グルコシル糖化合物を処理するこ
とを特徴としたビフィドバクテリウム菌増殖促進組成物
の製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP423486A JPS62163685A (ja) | 1986-01-14 | 1986-01-14 | ビフイドバクテリウム菌増殖促進組成物及びその製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP423486A JPS62163685A (ja) | 1986-01-14 | 1986-01-14 | ビフイドバクテリウム菌増殖促進組成物及びその製造法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS62163685A true JPS62163685A (ja) | 1987-07-20 |
Family
ID=11578866
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP423486A Pending JPS62163685A (ja) | 1986-01-14 | 1986-01-14 | ビフイドバクテリウム菌増殖促進組成物及びその製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS62163685A (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2002098433A1 (fr) * | 2001-06-01 | 2002-12-12 | Ajinomoto Co., Inc. | Medicaments pour les maladies intestinales |
CN106755012A (zh) * | 2015-11-25 | 2017-05-31 | 中国科学院大连化学物理研究所 | 一种内切β-1,3-葡聚糖酶编码基因及其酶和制备方法与应用 |
-
1986
- 1986-01-14 JP JP423486A patent/JPS62163685A/ja active Pending
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2002098433A1 (fr) * | 2001-06-01 | 2002-12-12 | Ajinomoto Co., Inc. | Medicaments pour les maladies intestinales |
CN106755012A (zh) * | 2015-11-25 | 2017-05-31 | 中国科学院大连化学物理研究所 | 一种内切β-1,3-葡聚糖酶编码基因及其酶和制备方法与应用 |
CN106755012B (zh) * | 2015-11-25 | 2020-06-30 | 中国科学院大连化学物理研究所 | 一种内切β-1,3-葡聚糖酶编码基因及其酶和制备方法与应用 |
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