JPS6036498A - ペプチド類を溶解する方法 - Google Patents
ペプチド類を溶解する方法Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は非水性溶剤および非水性/水性混合溶剤中にペ
グチド類を溶解する方法に関する。
グチド類を溶解する方法に関する。
Kグチド類は、力/l/ g ニル基とアミ7基との結
合体であるペグチド結合によって互に連結した2個また
は2個よ)も多いアミノ酸からなる生物的または人工的
な化合物である。本特許出願において、ペゾチドという
用語は≠個またはそれよりも多いアミノ酸を含むオリゴ
9ペグチド、高級な月?1)ベゾチドおよび蛋白質を指
し、一方(ゾチド類という用語は、さらに酵素およびそ
れに関連する物質、すなわちオリがベゾチド鎖および/
またはポリにプチド鎖を含む化合物、のようなシフ0チ
ドの誘導体も包含している。
合体であるペグチド結合によって互に連結した2個また
は2個よ)も多いアミノ酸からなる生物的または人工的
な化合物である。本特許出願において、ペゾチドという
用語は≠個またはそれよりも多いアミノ酸を含むオリゴ
9ペグチド、高級な月?1)ベゾチドおよび蛋白質を指
し、一方(ゾチド類という用語は、さらに酵素およびそ
れに関連する物質、すなわちオリがベゾチド鎖および/
またはポリにプチド鎖を含む化合物、のようなシフ0チ
ドの誘導体も包含している。
出願人はメタノールおよびエタノールのような非水性溶
剤にベゾチド類を溶解することを試みたが、多くの場合
有望な結果は得られなかった。ところが、ある濃度のク
ラウン−エーテル(er(1’n−ether )が存
在する場合には、非水性溶剤および非水性/水性溶剤中
にそれらの被グチド類を首尾よく溶解できることがここ
に発見された。
剤にベゾチド類を溶解することを試みたが、多くの場合
有望な結果は得られなかった。ところが、ある濃度のク
ラウン−エーテル(er(1’n−ether )が存
在する場合には、非水性溶剤および非水性/水性溶剤中
にそれらの被グチド類を首尾よく溶解できることがここ
に発見された。
本出願において、クラウン−エーテルという用語は、静
電的な相互作用を経てアルカリ陽イオンおよびアルカリ
土類陽イオンのような金属イオンと錯体を形成すること
ができる高度に選択的な錯化剤を意味している。環状ク
ラウン−エーテル、ジアザ−クラウン−エーテル、非環
状クラウン−エーテルおよびクリプタンド(crypt
and )のような幾つかの型のクラウン−エーテルは
J、 Chem。
電的な相互作用を経てアルカリ陽イオンおよびアルカリ
土類陽イオンのような金属イオンと錯体を形成すること
ができる高度に選択的な錯化剤を意味している。環状ク
ラウン−エーテル、ジアザ−クラウン−エーテル、非環
状クラウン−エーテルおよびクリプタンド(crypt
and )のような幾つかの型のクラウン−エーテルは
J、 Chem。
Soc、 Perkin Trans、 I + /
9I2年第、23jター、231,3頁から公知であシ
、そしてそれらはすべてポリエーテルであるか、または
酸素原子のうちの/個丑たは1個以上が窒素原子および
/または別のへテロ原子によって置換されているポリエ
ーテルである。
9I2年第、23jター、231,3頁から公知であシ
、そしてそれらはすべてポリエーテルであるか、または
酸素原子のうちの/個丑たは1個以上が窒素原子および
/または別のへテロ原子によって置換されているポリエ
ーテルである。
クラウン−エーテルが非水性溶剤および/または非水性
/水性混合溶剤からなる溶剤系において大きな蛋白質分
子でさえ溶液にすることができると思われる事実は、急
速に膨張しつつある生物工学の分野において広範囲に使
用できる可能性上句り開いている。
/水性混合溶剤からなる溶剤系において大きな蛋白質分
子でさえ溶液にすることができると思われる事実は、急
速に膨張しつつある生物工学の分野において広範囲に使
用できる可能性上句り開いている。
それゆえ、本発明は/ 0−100.000の範囲にあ
るクラウン−エーテル/(プチドモル比または平均モル
比のクラウン−エーテルまたはクラウン−エーテル混合
物の存在下において非水性媒体および/または非水性/
水性混合媒体中にペゾチドを溶解する方法を提供する。
るクラウン−エーテル/(プチドモル比または平均モル
比のクラウン−エーテルまたはクラウン−エーテル混合
物の存在下において非水性媒体および/または非水性/
水性混合媒体中にペゾチドを溶解する方法を提供する。
好ましくはクラウン−エーテル/ペゾチドのモル比また
は平均モル比はjθ−30,000の範囲にある。
は平均モル比はjθ−30,000の範囲にある。
好ましくは非水性媒体は水素結合性の溶剤である。さら
に非水性媒体は好ましくは、2j’Cにおいて20−7
00の範囲にある誘電率を有する。適当な誘電率を有す
る好ましい溶剤はメタノール、エタノールおよびジメチ
ルスルホキシドからなる群から選ばれる。非水性媒体ま
たは非水性/水性混合媒体は、好適には上記の水素結合
性の溶剤に加えて、例えば酢酸エチル、アセトンおよび
クロロホルムのような水素結合性でない溶剤を含むこと
ができる。
に非水性媒体は好ましくは、2j’Cにおいて20−7
00の範囲にある誘電率を有する。適当な誘電率を有す
る好ましい溶剤はメタノール、エタノールおよびジメチ
ルスルホキシドからなる群から選ばれる。非水性媒体ま
たは非水性/水性混合媒体は、好適には上記の水素結合
性の溶剤に加えて、例えば酢酸エチル、アセトンおよび
クロロホルムのような水素結合性でない溶剤を含むこと
ができる。
好適なりラウン−エーテルおよびすべて本発明の範囲内
にらると考えられるクラウン−関連性の大環状化合物、
クリプタンドおよび非環式マルチデンテート(acyc
llc multldentate )のようなりラウ
ン−エーテルに関連した化合物はChemicalRe
vlew++ /り7り年第77巻、第5号、第3に9
−4’45頁(/り7り年アメリカン ケミカル ソサ
イアテイ)に記載された高分子配位子の群および米国特
許第v/j乙乙と3号に記載された大環状化合物から選
ぶことができる。本方法におりて好ましく使用されるク
ラウン−エーテルは7.2=クラウン−≠、/j−クラ
ウン−j17ど−クラウンー乙、2/−クラウン−7、
ノペンゾー/g−クラウンー乙およびクリプタンドC,
2,2,2”Jからなる群から選ばれる。クラウン−エ
ーテルの存在下におじで非水性の有機汚剤に容易に溶解
するゆえに好ましいペプチド類は、ミオグロビン(くじ
らの筋肉)、うし血清アルブミン、うしインシーリン、
チトクロームC(うまの心臓)、コレステロールエステ
ラーゼ(微生物)、パパイン、リパーゼ(リゾプスアル
ヒズスへアセチルエステ2〜ゼおよびヒストン類からな
る群から選ばれる。
にらると考えられるクラウン−関連性の大環状化合物、
クリプタンドおよび非環式マルチデンテート(acyc
llc multldentate )のようなりラウ
ン−エーテルに関連した化合物はChemicalRe
vlew++ /り7り年第77巻、第5号、第3に9
−4’45頁(/り7り年アメリカン ケミカル ソサ
イアテイ)に記載された高分子配位子の群および米国特
許第v/j乙乙と3号に記載された大環状化合物から選
ぶことができる。本方法におりて好ましく使用されるク
ラウン−エーテルは7.2=クラウン−≠、/j−クラ
ウン−j17ど−クラウンー乙、2/−クラウン−7、
ノペンゾー/g−クラウンー乙およびクリプタンドC,
2,2,2”Jからなる群から選ばれる。クラウン−エ
ーテルの存在下におじで非水性の有機汚剤に容易に溶解
するゆえに好ましいペプチド類は、ミオグロビン(くじ
らの筋肉)、うし血清アルブミン、うしインシーリン、
チトクロームC(うまの心臓)、コレステロールエステ
ラーゼ(微生物)、パパイン、リパーゼ(リゾプスアル
ヒズスへアセチルエステ2〜ゼおよびヒストン類からな
る群から選ばれる。
ペプチド類が実質的に金属塩を含まないときに最良の結
果が得られるようである。したがってペプチド類が金属
塩を実質的に含まないのが好ましい。本発明はさらに本
方法を使用して製造された7種または2種以上のペプチ
ドクラウンーエーテル錯体を含む非水性溶液および非水
性/水性溶液に関する。
果が得られるようである。したがってペプチド類が金属
塩を実質的に含まないのが好ましい。本発明はさらに本
方法を使用して製造された7種または2種以上のペプチ
ドクラウンーエーテル錯体を含む非水性溶液および非水
性/水性溶液に関する。
非水性媒体および非水性/水性媒体中への(プチド類の
溶解は、好ましくはペプチド類にクラウン−エーテルを
化学的に結合させることによって遂行することができ、
この方法もまた当然本発明の範囲内にあると考えられる
。本発明が、特に非水性溶液および非水性/水性溶液中
にペプチド類、殊に蛋白質が溶解できることが必須の利
用のための生物工学の分野において可能な利用の全範囲
を提供することが理解されるであろう。例えば分別沈澱
および/または分別結晶、クロマトグラフィー法および
電気泳動法を使用することができる有機溶剤または水と
有機溶剤との混合物中に蛋白質または酵素を溶解するこ
とができるならば、蛋白質と酵素の精製および分離は一
層首尾よく遂行することかできる。
溶解は、好ましくはペプチド類にクラウン−エーテルを
化学的に結合させることによって遂行することができ、
この方法もまた当然本発明の範囲内にあると考えられる
。本発明が、特に非水性溶液および非水性/水性溶液中
にペプチド類、殊に蛋白質が溶解できることが必須の利
用のための生物工学の分野において可能な利用の全範囲
を提供することが理解されるであろう。例えば分別沈澱
および/または分別結晶、クロマトグラフィー法および
電気泳動法を使用することができる有機溶剤または水と
有機溶剤との混合物中に蛋白質または酵素を溶解するこ
とができるならば、蛋白質と酵素の精製および分離は一
層首尾よく遂行することかできる。
その他の潜在的な利用は、例えば重合体のクラウンエー
テルおよび重合体と結合したクラウンエーテルの使用を
含む蛋白質および酵素の固定方法、有機溶剤および水を
有機溶剤との混合物中の酵素の活性の変性および最適化
、および酵素を含む溶剤混合物から酵素活性の回収にお
いて見出される。
テルおよび重合体と結合したクラウンエーテルの使用を
含む蛋白質および酵素の固定方法、有機溶剤および水を
有機溶剤との混合物中の酵素の活性の変性および最適化
、および酵素を含む溶剤混合物から酵素活性の回収にお
いて見出される。
さらに、酵素−クラウンエーテル錯体は好ましくは洗浄
剤として使用できる一方、ペプチド−クラウンエーテル
錯体は好ましくは薄膜材料として使用することができる
。
剤として使用できる一方、ペプチド−クラウンエーテル
錯体は好ましくは薄膜材料として使用することができる
。
本発明はここに以下の実施例を参照してさらに詳細に説
明される。
明される。
実施例I ペプチド類の溶解
次の表には或種のクラウンエーテルの存在下においてメ
タノール、エタノールまたは・ジメチルスルホキシドに
溶解する(プチド類が示されている。
タノール、エタノールまたは・ジメチルスルホキシドに
溶解する(プチド類が示されている。
(以下余白)
実施例■
α−キモトリプシンはメタノールに全く溶けないが、チ
トクロームCは比較的低濃度のクラウンエーテルととも
にメタノールに容易に溶解する。
トクロームCは比較的低濃度のクラウンエーテルととも
にメタノールに容易に溶解する。
したがって、メタノール(2ml )中でチトクローム
Cとα−キモトリプシン(各々70■、それぞれ乙/×
/θ および≠×10 (リモル)との混合物を/f−
クラウン−乙(2どダ、0.//ミリモル)で処理した
。溶解しなかった蛋白質(α−キモ) IJプシン)か
ら赤色溶液を戸別し、そして水、ついで緩衝液(トリス
、pHZ−ダ、0.10M)で透析した。分離したもの
の純度を確かめるために導電集中法(1soeloct
ria focusing )を使用してp液と濾過さ
れた蛋白質部分の両方を試験した(結果は第2表に示さ
れる)。
Cとα−キモトリプシン(各々70■、それぞれ乙/×
/θ および≠×10 (リモル)との混合物を/f−
クラウン−乙(2どダ、0.//ミリモル)で処理した
。溶解しなかった蛋白質(α−キモ) IJプシン)か
ら赤色溶液を戸別し、そして水、ついで緩衝液(トリス
、pHZ−ダ、0.10M)で透析した。分離したもの
の純度を確かめるために導電集中法(1soeloct
ria focusing )を使用してp液と濾過さ
れた蛋白質部分の両方を試験した(結果は第2表に示さ
れる)。
α−キモトリプシンはメタノールに不溶性であるか、チ
トクロームCはBSAよりも低濃度のクラウンエーテル
によってメタノール中に溶解する。
トクロームCはBSAよりも低濃度のクラウンエーテル
によってメタノール中に溶解する。
メタノール(,2d)中でチトクロームC,BSAおよ
びα−キモトリプシン(各々10キ、それぞれ乙/X#
) 、/、≠×10 および≠×/θ 之り1モル)の
混合物を/と一りラウンー乙(!0yrq、0.774
9モル)で処理し、生成した赤色溶液を濾過してから水
、ついで緩衝液(トリス、PllZ、5″、θrO/
M )で透析してクラウンエーテルと水を除去した。導
電集中法を使用して可溶性部分と不溶性部分の両方を試
験した(結果を第2表に示す)。
びα−キモトリプシン(各々10キ、それぞれ乙/X#
) 、/、≠×10 および≠×/θ 之り1モル)の
混合物を/と一りラウンー乙(!0yrq、0.774
9モル)で処理し、生成した赤色溶液を濾過してから水
、ついで緩衝液(トリス、PllZ、5″、θrO/
M )で透析してクラウンエーテルと水を除去した。導
電集中法を使用して可溶性部分と不溶性部分の両方を試
験した(結果を第2表に示す)。
(以下余白)
いずれの場合も涙液は一成分のチトクロームCしか含ん
でいなかった。不溶性の部分は一層少ない可溶性蛋白質
を含み、0−7℃において添加剤として硫酸アンモニウ
ムを使用するとさらに高い収率が得られる。
でいなかった。不溶性の部分は一層少ない可溶性蛋白質
を含み、0−7℃において添加剤として硫酸アンモニウ
ムを使用するとさらに高い収率が得られる。
実施例III
使用
チトクロームCのような蛋白質、およびクラウンエーテ
ルと安定剤としての硫酸アンモニウムを含むうじのイン
シュリンをメタノール溶液から結晶質複合物として各々
得ることができた。例えば、/♂−クラウンーt(3s
〜、0.27ミリモル)と硫酸アンモニウム(A;Om
y、0.31ミリモル)を含むメタノール(10ml)
溶液でチトクロームC(20〜、/、乙×70= ミリ
モル)を処理した。
ルと安定剤としての硫酸アンモニウムを含むうじのイン
シュリンをメタノール溶液から結晶質複合物として各々
得ることができた。例えば、/♂−クラウンーt(3s
〜、0.27ミリモル)と硫酸アンモニウム(A;Om
y、0.31ミリモル)を含むメタノール(10ml)
溶液でチトクロームC(20〜、/、乙×70= ミリ
モル)を処理した。
沈澱用の共溶剤として酢酸エチルを含む外側の管内に、
可溶化した蛋白質溶液を≠℃において貯蔵した。/週間
後に濾過できる結晶質物質が生成し、これは水溶性であ
ることがわかった。蛋白質の分析はその固体物質が20
重量係の蛋白質を含むことを示していた。円偏光二色性
(CD )および紫外線/可視光線の分光学はもとのま
まの蛋白質の存在を示しだ。うじのインシーリンを含む
結晶質物、質はメタノールCjml)中にうじのインシ
ュリン(j■、と1r×70= ミリモル)、/に一り
ラウンー乙(3oomq、i、i≠ミリモル)および硫
酸アンモニウム(300■、2.3ミリモル)および沈
澱用溶剤として酢酸エチルを含む溶液から得ることがで
きた。DCスペクトルは予め処理した蛋白質(22!;
’−200nmにおいて負の縞)のそれと同様であった
。
可溶化した蛋白質溶液を≠℃において貯蔵した。/週間
後に濾過できる結晶質物質が生成し、これは水溶性であ
ることがわかった。蛋白質の分析はその固体物質が20
重量係の蛋白質を含むことを示していた。円偏光二色性
(CD )および紫外線/可視光線の分光学はもとのま
まの蛋白質の存在を示しだ。うじのインシーリンを含む
結晶質物、質はメタノールCjml)中にうじのインシ
ュリン(j■、と1r×70= ミリモル)、/に一り
ラウンー乙(3oomq、i、i≠ミリモル)および硫
酸アンモニウム(300■、2.3ミリモル)および沈
澱用溶剤として酢酸エチルを含む溶液から得ることがで
きた。DCスペクトルは予め処理した蛋白質(22!;
’−200nmにおいて負の縞)のそれと同様であった
。
実施例■
蛋白質(例えばチトクロームC)と酵素(例えばα−キ
モトリプシン)のための固定化支持材料として% Me
rck−8chuchardtから得られ、かつメリフ
ィールド(MERRIFIELD )重合体と結合した
アリール−クリプタンド〔λ、、2./)を含む、重合
体と結合したクリプタンドKRYPTOFIX 22/
B重合体)を使用することができる。弘℃において緩衝
液の中に約0.グー≠X10”−’ミlJモルの蛋白質
(酵素)を重合体物質と共に/ g −200時間単に
野濁させることによって、蛋白質(酵素)を温和な条件
下(さらに別の化学的な変性を必要とし々い)で固定す
ることができた。固定化した酵素物質を戸別し、そして
評価に先立って徹底的に(約30m1の緩衝液)洗浄し
た。α−キモトリゾシンの場合、+℃において0.00
/ N塩酸(ml)の中にt、to=yの蛋白質と3
−00■の重合体を/乙時間懸濁させた。
モトリプシン)のための固定化支持材料として% Me
rck−8chuchardtから得られ、かつメリフ
ィールド(MERRIFIELD )重合体と結合した
アリール−クリプタンド〔λ、、2./)を含む、重合
体と結合したクリプタンドKRYPTOFIX 22/
B重合体)を使用することができる。弘℃において緩衝
液の中に約0.グー≠X10”−’ミlJモルの蛋白質
(酵素)を重合体物質と共に/ g −200時間単に
野濁させることによって、蛋白質(酵素)を温和な条件
下(さらに別の化学的な変性を必要とし々い)で固定す
ることができた。固定化した酵素物質を戸別し、そして
評価に先立って徹底的に(約30m1の緩衝液)洗浄し
た。α−キモトリゾシンの場合、+℃において0.00
/ N塩酸(ml)の中にt、to=yの蛋白質と3
−00■の重合体を/乙時間懸濁させた。
チトクロームの場合、≠℃において/ mlのトリス緩
衝液((7,0/ M −、p11Z!; )の中にj
η(0,41!−×io= ミリモル)の蛋白質と/j
■の支持体を200時間懸濁させた。クリプタンドを含
まないMERRIFIELD重合体について得られた結
果とともに、酵素活性および蛋白質の負荷量を第3表に
一覧で示す。
衝液((7,0/ M −、p11Z!; )の中にj
η(0,41!−×io= ミリモル)の蛋白質と/j
■の支持体を200時間懸濁させた。クリプタンドを含
まないMERRIFIELD重合体について得られた結
果とともに、酵素活性および蛋白質の負荷量を第3表に
一覧で示す。
(以下余白)
実施例■
こと
酵素の活性を有機媒体から水溶液に戻すことによってク
ラウンエーテル/蛋白質の錯体化現象の可逆性を示すこ
とができる。錯化剤と溶剤から酵素を分離する−ために
使用される透析およびrル濾過のような簡単でしかも穏
かに操作できる方法を使用することによって酵素の活性
を回収することができる。必要ならば、クラウンエーテ
ルの錯化能力を邪魔しないで蛋白質を不可逆的な変性か
ら守る安定剤(例えば硫酸アンモニウム)を使用するこ
ともできる。温度が重要であって、操作中に≠℃よりも
低く保つべきものと考えられる。
ラウンエーテル/蛋白質の錯体化現象の可逆性を示すこ
とができる。錯化剤と溶剤から酵素を分離する−ために
使用される透析およびrル濾過のような簡単でしかも穏
かに操作できる方法を使用することによって酵素の活性
を回収することができる。必要ならば、クラウンエーテ
ルの錯化能力を邪魔しないで蛋白質を不可逆的な変性か
ら守る安定剤(例えば硫酸アンモニウム)を使用するこ
ともできる。温度が重要であって、操作中に≠℃よりも
低く保つべきものと考えられる。
下記の2種の酵素を試験した。
コレステロールエステラーゼ−こh は有m 溶剤/ク
ラウンエーテル混合物中に溶解する。
ラウンエーテル混合物中に溶解する。
α−キモトリプシン−これはメタノールとクラウンエー
テルとの混合物に溶けないが、最初に酵素の濃厚水溶液
を調製すれば、その後蛋白質の沈澱を起こさずにクラウ
ンエーテルを含むメタノールを添加することができる(
メタノール:水の比、す♂!:/j)。
テルとの混合物に溶けないが、最初に酵素の濃厚水溶液
を調製すれば、その後蛋白質の沈澱を起こさずにクラウ
ンエーテルを含むメタノールを添加することができる(
メタノール:水の比、す♂!:/j)。
典型的な実験において、硫酸アンモニウム溶液中の懸濁
物の形にある微生物のステロール−エステルアシルヒド
ロラーゼから得られた約0.1.1−0.4キ、10−
/jU(U=i911A年(7)−’+−IJ/ガー・
マンハイムのカタログで定義されたのと同じ基質である
オレイン酸コレステロールに対する酵素の比活性度の単
位)のコレステロールエステラーゼ(ペーリンガー・マ
ンハイムH)fc、0−≠℃において/♂−クラクンー
乙(0,/−0,31−10,4’−7,7ミリモル)
を含むメタノール溶液(2−乙ゴ)中に溶かした。その
混合物を水に対して透析してから(/乙時間)、短いセ
ファデックス(5ephadex ) G 2 J−カ
ラム(空隙容積f ml )全通し、燐酸ナトリウム緩
衝液(pH乙、2.0.7M)で溶離させた。ラウリー
法(H,O,LowryXN、H。
物の形にある微生物のステロール−エステルアシルヒド
ロラーゼから得られた約0.1.1−0.4キ、10−
/jU(U=i911A年(7)−’+−IJ/ガー・
マンハイムのカタログで定義されたのと同じ基質である
オレイン酸コレステロールに対する酵素の比活性度の単
位)のコレステロールエステラーゼ(ペーリンガー・マ
ンハイムH)fc、0−≠℃において/♂−クラクンー
乙(0,/−0,31−10,4’−7,7ミリモル)
を含むメタノール溶液(2−乙ゴ)中に溶かした。その
混合物を水に対して透析してから(/乙時間)、短いセ
ファデックス(5ephadex ) G 2 J−カ
ラム(空隙容積f ml )全通し、燐酸ナトリウム緩
衝液(pH乙、2.0.7M)で溶離させた。ラウリー
法(H,O,LowryXN、H。
Rosenbrough % A、L、 Farrおよ
びR,J、 Randell著、J、 B[ol、 C
hom、 、第1り3号、7757年、第2乙!頁)に
よって蛋白質の評価を測定した。タウロコール酸ナトリ
ウムと3.3%のイソフ0ロバノールを含む燐酸塩緩衝
液(37℃においてpl(J、 j 、 0.0!;M
)中の基質としてセチルアルコール(/、 7.2 m
M )とオレイン酸(,2,37mM)を使用して、溶
離された試料を酵素活性について評価した。クロロホル
ム(2rnl )への抽出(酵素混合物51′mlから
分割したθ、jmfりおよび気液クロマトグラフィーに
よる検出(長さlフィート、内径2fiの3%SE充填
カラム、100−21rO℃の間で70°/分の速さで
計画された、3Qml/分で導入される担体ガスの窒素
を使用して、水素炎イオン化検出器を有するVaria
n 37θ0型がスクロマトグラフにおいて実施)によ
って、エステラーゼ活性の生成物であるオレイン酸セチ
ルを監視した。
びR,J、 Randell著、J、 B[ol、 C
hom、 、第1り3号、7757年、第2乙!頁)に
よって蛋白質の評価を測定した。タウロコール酸ナトリ
ウムと3.3%のイソフ0ロバノールを含む燐酸塩緩衝
液(37℃においてpl(J、 j 、 0.0!;M
)中の基質としてセチルアルコール(/、 7.2 m
M )とオレイン酸(,2,37mM)を使用して、溶
離された試料を酵素活性について評価した。クロロホル
ム(2rnl )への抽出(酵素混合物51′mlから
分割したθ、jmfりおよび気液クロマトグラフィーに
よる検出(長さlフィート、内径2fiの3%SE充填
カラム、100−21rO℃の間で70°/分の速さで
計画された、3Qml/分で導入される担体ガスの窒素
を使用して、水素炎イオン化検出器を有するVaria
n 37θ0型がスクロマトグラフにおいて実施)によ
って、エステラーゼ活性の生成物であるオレイン酸セチ
ルを監視した。
コレステロールエステラーゼ活性の/オレイン酸セチル
単位は、評価の条件下において毎分/μモルのオレイン
酸セチルを合成するのに必要な酵素の量(■)として定
義される。酵素活性の結果を第弘表に要約する。
単位は、評価の条件下において毎分/μモルのオレイン
酸セチルを合成するのに必要な酵素の量(■)として定
義される。酵素活性の結果を第弘表に要約する。
(以下余白)
方法
7g−クラウン−2(θ、りM)を含み、そして場合に
よシ活性点を保護するために酵素抑制剤であるインドー
ル(0,0341M )を含むメタノールjmlの溶液
でα−キモトvプシンの濃厚液(うしの)臂ンクレアー
ゼ、Sigma Chemica1社製、0.00/M
塩酸中〜/、 2 mM、 0.7りml)を≠o℃に
おいて注意深く(ゆっくシと添加)処理することによっ
て手順を遂行する。ついで繰返し透析しくo、θ0/N
塩酸で約5回)てから溶離剤θr00/N塩酸および3
X41Ocrttの寸法の5ephadex G2jカ
ラムを使用するダルp過によって酵素混合物を精製した
。
よシ活性点を保護するために酵素抑制剤であるインドー
ル(0,0341M )を含むメタノールjmlの溶液
でα−キモトvプシンの濃厚液(うしの)臂ンクレアー
ゼ、Sigma Chemica1社製、0.00/M
塩酸中〜/、 2 mM、 0.7りml)を≠o℃に
おいて注意深く(ゆっくシと添加)処理することによっ
て手順を遂行する。ついで繰返し透析しくo、θ0/N
塩酸で約5回)てから溶離剤θr00/N塩酸および3
X41Ocrttの寸法の5ephadex G2jカ
ラムを使用するダルp過によって酵素混合物を精製した
。
0.7Mのトリス−HCl緩衝液(PH7,f 、塩化
カルシウム0.7Mを含む)中で調製したN−ベンゾイ
ル−L−チロシンエチルエステル(BTFI:E)’i
使用する分光光度法(/L?7θ年Academic
Preas発行、G、 E、 Pearlmannおよ
びり、 Lorand編、Enzymology s第
x■巻に記載された方法)を用いて、酵素試料および対
応する対照物を活性について評価した。活性点の滴定剤
として!−ヒドロキシーα−トルエンスルホン酸スルト
ンを使用して活性点のモル濃度を測定した。α−キモト
リプシン活性の/ BTEE単位は評価の条件下におい
て毎分BTBE/μモルを加水分解するのに必要な量に
基いて定義した。
カルシウム0.7Mを含む)中で調製したN−ベンゾイ
ル−L−チロシンエチルエステル(BTFI:E)’i
使用する分光光度法(/L?7θ年Academic
Preas発行、G、 E、 Pearlmannおよ
びり、 Lorand編、Enzymology s第
x■巻に記載された方法)を用いて、酵素試料および対
応する対照物を活性について評価した。活性点の滴定剤
として!−ヒドロキシーα−トルエンスルホン酸スルト
ンを使用して活性点のモル濃度を測定した。α−キモト
リプシン活性の/ BTEE単位は評価の条件下におい
て毎分BTBE/μモルを加水分解するのに必要な量に
基いて定義した。
メタノール水溶液中における溶解後のα−キモトリプシ
ン活性の結果を第5表に要約する。
ン活性の結果を第5表に要約する。
(以下余白)
Claims (9)
- (1) 10−100.000の範囲にあるクラウン−
エーテル/ベグチドモル比または平均モル比のクラウン
−エーテルまたはクラウン−エーテル混合物の存在下に
おいて、非水性媒体または非水性/水性媒体に一!ノチ
ド類を溶解する方法。 - (2)クラクン−エーテル/ペプチドのモル比または平
均モル比が夕θ−30,000の範囲にある、特許請求
の範囲第(1)項記載の方法。 - (3)非水性媒体が水素結合性の溶剤である、特許請求
の範囲第(1)項または第(2)項記載の方法。 - (4)非水性媒体が2に℃において、2o−io。 の範囲にある誘1率を有する、特許請求の範囲第(1)
項ないし第(3)項のいずれか7つに記・戒の方法。 - (5) 溶剤がメタノール、エタノールおよびジメチル
スルホキシドからなる群から選ばれる、特許請求の範囲
第(1)項ないし第(4)項のいずれか7つに記載の方
法。 - (6) /種または2種以上のクラウン−エーテルが7
2−クラウン−≠、/j−クラウン−j1/f−クラウ
ン−乙、2/−クラウン−7、ジペンゾ−/f−クラウ
ン−乙およびクリプタンドC2,,2,2〕からなる群
から選ばれる、特許請求の範囲第(1)項ないし第(5
)項のいずれか7つに記載の方法。 - (7) −′!デチドがミオグロビン、うし血清アルジ
ミン、ウシインシュリン、チトクロームC1コレステロ
ールエステラーゼ、i!ノ?イン、リノンーゼ、アセチ
ルエステラーゼおよびヒストン類からなる群から選ばれ
る、特許請求の範囲第(1)項ないし第(6)項のいず
れか7つに記載の方法。 - (8)(ノチド(類)が金属塩を実質的に含まない、特
許請求の範囲第(1)項ないし第(7)項のいずれか7
つに記載の方法。 - (9) クラウンエーテルがペプチド類と化学的に結合
している、特許請求の範囲第(1)項ないし第(8)項
のいずれか7つに記載の方法。 01 特許請求の範囲第(1)項ないし@(9)項のい
ずれか7つに記載の方法によって製造されたときの7種
または2種以上のペグチドークラウンエーテル錯体を含
む非水性溶液。 ◇心 特許請求の範囲第(1)項ないし第(9)項のい
ずれか7つに記載の方法を使用して蛋白質および/また
は酵素を精製および分離する方法。 α→ 特許請求の範囲第(1)項ないし第(9)項のい
ずれか7つに記載の方法を使用して酵素の活性を変性お
よび最適化する方法。 θ埠 特許請求の範囲第(1)項ないし第(9)項のい
ずれか7つに記載の方法を使用して酵素を含む溶剤混合
物から酵素活性を回収する方法。 04 ペゾチドークラウンエーテル錯体と薄膜材料とし
て使用する方法。 q→ 酵素−クラウンエーテル錯体を洗浄剤として使用
する方法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
GB838317697A GB8317697D0 (en) | 1983-06-29 | 1983-06-29 | Dissolution of peptides in non-aqueous and mixed non-aqueous/aqueous solvents |
GB8317697 | 1983-06-29 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6036498A true JPS6036498A (ja) | 1985-02-25 |
JPH0585559B2 JPH0585559B2 (ja) | 1993-12-07 |
Family
ID=10545005
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP59132157A Granted JPS6036498A (ja) | 1983-06-29 | 1984-06-28 | ペプチド類を溶解する方法 |
Country Status (10)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4532212A (ja) |
EP (1) | EP0136728B1 (ja) |
JP (1) | JPS6036498A (ja) |
AT (1) | ATE26986T1 (ja) |
AU (1) | AU569896B2 (ja) |
CA (1) | CA1228041A (ja) |
DE (1) | DE3463509D1 (ja) |
DK (1) | DK165411C (ja) |
GB (1) | GB8317697D0 (ja) |
NZ (1) | NZ208701A (ja) |
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE3440988A1 (de) * | 1984-11-09 | 1986-07-10 | Hoechst Ag, 6230 Frankfurt | Verfahren zur spaltung von peptiden und proteinen an der methionyl-bindung |
FR2652581B1 (fr) * | 1989-10-02 | 1991-12-13 | Rhone Poulenc Chimie | Procede de solubilisation de peptides et procede de synthese de peptides. |
JPH11502256A (ja) * | 1995-12-29 | 1999-02-23 | ザ、プロクター、エンド、ギャンブル、カンパニー | 固定化酵素を含有する洗剤組成物 |
EP0874893A2 (en) * | 1995-12-29 | 1998-11-04 | The Procter & Gamble Company | Detergent compositions comprising immobilized enzymes |
WO1998028394A1 (en) * | 1996-12-20 | 1998-07-02 | The Procter & Gamble Company | Detergent compositions comprising cholesterol esterase |
DE69718064T2 (de) * | 1997-07-09 | 2003-11-13 | The Procter & Gamble Company, Cincinnati | Cytochrome enthaltende reinigungszusammensetzungen |
US6492316B1 (en) | 1997-07-09 | 2002-12-10 | The Procter & Gamble Company | Cleaning compositions comprising a cytochrome |
NL1017258C2 (nl) * | 2001-02-01 | 2002-08-02 | Univ Delft Tech | Werkwijze voor het maken van vernette enzymaggregaten. |
SE0104462D0 (sv) | 2001-12-29 | 2001-12-29 | Carlbiotech Ltd As | Peptide purifcation (Peptidrening) |
US7060478B2 (en) * | 2004-03-12 | 2006-06-13 | Min-Hsiung Lee | Process for preparing lysozyme |
BR112012012945A2 (pt) * | 2009-11-25 | 2020-12-29 | Arisgen Sa | Composição de liberação mucosal, seu método de produção, complexo de peptídeo pré-formado, kit e uso de um agente ativo de peptídeo |
EP3256168A4 (en) * | 2015-02-10 | 2018-10-31 | Carnegie Mellon University | Non-aqueous enzyme-polymer conjugate solutions and related methods |
US11472894B2 (en) | 2018-07-23 | 2022-10-18 | Carnegie Mellon University | Enzyme-assisted ATRP procedures |
US12053529B2 (en) | 2018-08-01 | 2024-08-06 | Carnegie Mellon University | Amino-reactive positively charged ATRP initiators that maintain their positive charge during synthesis of biomacro-initiators |
Family Cites Families (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4156683A (en) * | 1973-03-26 | 1979-05-29 | Schering Corporation | Complexes of macrocyclic compounds |
-
1983
- 1983-06-29 GB GB838317697A patent/GB8317697D0/en active Pending
-
1984
- 1984-06-07 CA CA000456128A patent/CA1228041A/en not_active Expired
- 1984-06-26 US US06/624,570 patent/US4532212A/en not_active Expired - Fee Related
- 1984-06-27 EP EP84200933A patent/EP0136728B1/en not_active Expired
- 1984-06-27 AT AT84200933T patent/ATE26986T1/de active
- 1984-06-27 DE DE8484200933T patent/DE3463509D1/de not_active Expired
- 1984-06-28 DK DK316984A patent/DK165411C/da not_active IP Right Cessation
- 1984-06-28 AU AU29976/84A patent/AU569896B2/en not_active Ceased
- 1984-06-28 NZ NZ208701A patent/NZ208701A/en unknown
- 1984-06-28 JP JP59132157A patent/JPS6036498A/ja active Granted
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---|---|
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GB8317697D0 (en) | 1983-08-03 |
NZ208701A (en) | 1987-10-30 |
EP0136728A3 (en) | 1985-09-25 |
DK165411B (da) | 1992-11-23 |
JPH0585559B2 (ja) | 1993-12-07 |
EP0136728A2 (en) | 1985-04-10 |
DE3463509D1 (en) | 1987-06-11 |
ATE26986T1 (de) | 1987-05-15 |
AU569896B2 (en) | 1988-02-25 |
DK316984A (da) | 1984-12-30 |
US4532212A (en) | 1985-07-30 |
EP0136728B1 (en) | 1987-05-06 |
DK316984D0 (da) | 1984-06-28 |
DK165411C (da) | 1993-04-13 |
AU2997684A (en) | 1985-01-03 |
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