JPS60218324A - 生理活性物質spf−2及びその製法 - Google Patents
生理活性物質spf−2及びその製法Info
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- JPS60218324A JPS60218324A JP59072866A JP7286684A JPS60218324A JP S60218324 A JPS60218324 A JP S60218324A JP 59072866 A JP59072866 A JP 59072866A JP 7286684 A JP7286684 A JP 7286684A JP S60218324 A JPS60218324 A JP S60218324A
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- substance
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- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Compounds Of Unknown Constitution (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、新規な生理活性物質8PF−2及びその製法
に関するものである。
に関するものである。
更に詳細には、本発明は、抗腫瘍性物質としてきわめて
有望な生理活性物質5PF−2及びその製法に関するも
のである。
有望な生理活性物質5PF−2及びその製法に関するも
のである。
従来、溶連菌の生菌体を弱毒化して製剤化したもの′は
、すでに制癌剤として使用されている。
、すでに制癌剤として使用されている。
また、ストレプトコッカス・ピオゲネスの菌体を破砕抜
水または塩類溶液で有効成分を抽出し、有機溶媒を加え
て、抗腫瘍性成分を沈澱として、回収する方法(特公昭
3B−1647)、溶連菌を溶菌酵素、リゾチーム、セ
ルラーゼまたは蛋白質分解酵素によ、す、溶菌し、活性
画分を水溶性区分として分画する方法(英国特許第11
63865号)などが知られている。
水または塩類溶液で有効成分を抽出し、有機溶媒を加え
て、抗腫瘍性成分を沈澱として、回収する方法(特公昭
3B−1647)、溶連菌を溶菌酵素、リゾチーム、セ
ルラーゼまたは蛋白質分解酵素によ、す、溶菌し、活性
画分を水溶性区分として分画する方法(英国特許第11
63865号)などが知られている。
このように、ストレプトコツカス属細菌そのものもしく
はその菌体成分に抗腫瘍活性があることは広く知られて
いるのであるが、従来知られたものは、菌体もしくは水
可溶性もしくけ不溶性高分子細胞構成物質であるに過ぎ
なかった。菌体もしくは菌体内から有効成分を単離しよ
うとすれば、菌体を溶菌したり、機械的に破砕したシし
て全体を分画しなければならなかった。このような処理
によれば、精製は複雑となシ、有効成分の単離はきわめ
て困難であった。実際に分離し、有効成分として測定さ
れた例では分子量150,000の蛋白質が知られてい
る。(特公昭4B−46841’)本発明者らは、よシ
すぐれた抗腫瘍性有効成分を溶連菌にめて鋭意研究した
結果、全く新規な生理活性物質5PF−2を培養液中に
見出すに至ったのである。
はその菌体成分に抗腫瘍活性があることは広く知られて
いるのであるが、従来知られたものは、菌体もしくは水
可溶性もしくけ不溶性高分子細胞構成物質であるに過ぎ
なかった。菌体もしくは菌体内から有効成分を単離しよ
うとすれば、菌体を溶菌したり、機械的に破砕したシし
て全体を分画しなければならなかった。このような処理
によれば、精製は複雑となシ、有効成分の単離はきわめ
て困難であった。実際に分離し、有効成分として測定さ
れた例では分子量150,000の蛋白質が知られてい
る。(特公昭4B−46841’)本発明者らは、よシ
すぐれた抗腫瘍性有効成分を溶連菌にめて鋭意研究した
結果、全く新規な生理活性物質5PF−2を培養液中に
見出すに至ったのである。
本発明の生理活性物質5PF−2Fi培養培養中外に排
出され、培養液中に存在するようになるので、菌体を濾
過して除去し、培養F液を精製すればよいので、単離は
かなシ容易なものとなる。
出され、培養液中に存在するようになるので、菌体を濾
過して除去し、培養F液を精製すればよいので、単離は
かなシ容易なものとなる。
本発明の生理活性物質5PF−2は培養液中忙排出され
るとともに一分子量が約7,000〜25.000であ
ることKよって特長づけられる。
るとともに一分子量が約7,000〜25.000であ
ることKよって特長づけられる。
従来、溶連菌関連の生理活性物質で、培養液中に蓄積さ
れたものはなく、また分子量も敵方以下のものは知られ
ておらず、本発明の生理活性物質5PF−2は全く新規
な物質と認められる。
れたものはなく、また分子量も敵方以下のものは知られ
ておらず、本発明の生理活性物質5PF−2は全く新規
な物質と認められる。
また、本発明の生理活性物質5PF−4は、元素分析、
呈色反応等からペプチド性物質と認められるが、紫外線
吸収スはクトルで特異な吸収があシ、従来広く知られた
抗腫瘍活性物質などとも明らかに相違する物質であって
、物質として新規なものと認められるものである。
呈色反応等からペプチド性物質と認められるが、紫外線
吸収スはクトルで特異な吸収があシ、従来広く知られた
抗腫瘍活性物質などとも明らかに相違する物質であって
、物質として新規なものと認められるものである。
本発明は、ストレプトコツカス属に属する生理活性物質
5PF−2生産菌を培養し、培養物から生理活性物質5
PF−2を採取することを特徴とする生理活性物質5P
F−2の製法を包含するものである。
5PF−2生産菌を培養し、培養物から生理活性物質5
PF−2を採取することを特徴とする生理活性物質5P
F−2の製法を包含するものである。
本発明においては、ストレプトコツカス属に属する生理
活性物質5PF−2生産菌が広く使用さhるが、その−
例としてストレプトコッカス・ピオゲネス(5trep
tococcus pyogenes ) A T C
C21060があげられる。
活性物質5PF−2生産菌が広く使用さhるが、その−
例としてストレプトコッカス・ピオゲネス(5trep
tococcus pyogenes ) A T C
C21060があげられる。
培養液は、肉エキス培地、酵母エキス培地、プt、’4
ン・ハート・インフュージョン培地(BHI培地)等の
天然培地がよく用いられるが、ストレプトコツカス属細
菌が有効に生育する培地であれば炭素源、窒素源等含ん
だ一般培地も使用することができる。
ン・ハート・インフュージョン培地(BHI培地)等の
天然培地がよく用いられるが、ストレプトコツカス属細
菌が有効に生育する培地であれば炭素源、窒素源等含ん
だ一般培地も使用することができる。
培養はpH5,0〜8.0、好ましくは6.1〜Z2で
30〜40℃好ましくは65〜37℃であシ嫌気的に静
置培養をおこなうのが一般的であるが、その他攪拌培養
等の変法も採用することができる。
30〜40℃好ましくは65〜37℃であシ嫌気的に静
置培養をおこなうのが一般的であるが、その他攪拌培養
等の変法も採用することができる。
本発明においては、培養中の適当な時期にはニジリン又
はその関連物質を添加するととか、生理活性物質8PF
−2の取得忙重要な役割をはたすことになる。
はその関連物質を添加するととか、生理活性物質8PF
−2の取得忙重要な役割をはたすことになる。
ペニシリン又はその関連物質の添加時期は37℃の培養
で対数増殖期にかかつて後3〜20時間の間、特に5〜
10時間が好ましい。その後1時間乃至20時間好まし
くFi3〜15時間そのまま培養を続けることによって
、培養液中に生理活性物質5PF−2を多量蓄積させる
ことができる。
で対数増殖期にかかつて後3〜20時間の間、特に5〜
10時間が好ましい。その後1時間乃至20時間好まし
くFi3〜15時間そのまま培養を続けることによって
、培養液中に生理活性物質5PF−2を多量蓄積させる
ことができる。
ハニシリン又はその関連物質としてはすでに知られたペ
ニシリンと類似の作用をもつ関連物質であればいかなる
ものでもよいが、ペニシリンGが普通周込られる。添加
量はペニシリンGで100〜6000単位/ゴ、好まし
くは300〜1,500単位/d培養液程度で十分であ
る。
ニシリンと類似の作用をもつ関連物質であればいかなる
ものでもよいが、ペニシリンGが普通周込られる。添加
量はペニシリンGで100〜6000単位/ゴ、好まし
くは300〜1,500単位/d培養液程度で十分であ
る。
得られた培養液は、遠心分離によって菌体を除去し、涙
液に硫安を添加し50〜90俤飽和度の両分を分取して
得られた沈澱物を安定剤を加えた緩衝液に溶解する。
液に硫安を添加し50〜90俤飽和度の両分を分取して
得られた沈澱物を安定剤を加えた緩衝液に溶解する。
生理活性物質8PF−2含有液は凍結状態で又は凍結乾
燥して保存することができる。この物質は必要に応じて
イオン交換体あるいはゲル濾過剤と接触せしめてさらに
精製することができる。イオン交換体としてはイオン交
換樹脂、イオン交換セルローズ、イオン交換セファデッ
クス(ファルマシア社製)等が用いられ、ゲル沢過剤と
しては、 1トヨバー#HW50FまfcはHW−50
SF (東洋曹達(株)ff)、セファデックス(ファ
ルマシア社製)等が用いらり、る。またカルシウムホス
フェートゲルはそのままでも使用できるが、ハイトロキ
シルアパタイトの形で使用するのが便利である。前記の
ようにして得られた物質の水溶液をこれらのイオン交換
体又はゲル濾過剤を充填し九カラムに、適当な速度で通
過せしめるか、あるいはイオン交換体又はゲル濾過剤を
入れた一定容器中に一度にその水溶液を加えて、これら
の処理剤と有効物質を接触させる。溶出は適当な塩濃度
と…の緩衝液を用いて行なう。イオン変換体、ゲル濾過
剤又はカルシウムホスフェートゲルは2種以上組合わせ
て用りることもできる。たとえばDEARセファデック
スと接触させ、溶出した液を更にトヨパールHW50F
tたは508Fと接触させそして溶出を行なうと、更に
精製の効果を上げることができる。
燥して保存することができる。この物質は必要に応じて
イオン交換体あるいはゲル濾過剤と接触せしめてさらに
精製することができる。イオン交換体としてはイオン交
換樹脂、イオン交換セルローズ、イオン交換セファデッ
クス(ファルマシア社製)等が用いられ、ゲル沢過剤と
しては、 1トヨバー#HW50FまfcはHW−50
SF (東洋曹達(株)ff)、セファデックス(ファ
ルマシア社製)等が用いらり、る。またカルシウムホス
フェートゲルはそのままでも使用できるが、ハイトロキ
シルアパタイトの形で使用するのが便利である。前記の
ようにして得られた物質の水溶液をこれらのイオン交換
体又はゲル濾過剤を充填し九カラムに、適当な速度で通
過せしめるか、あるいはイオン交換体又はゲル濾過剤を
入れた一定容器中に一度にその水溶液を加えて、これら
の処理剤と有効物質を接触させる。溶出は適当な塩濃度
と…の緩衝液を用いて行なう。イオン変換体、ゲル濾過
剤又はカルシウムホスフェートゲルは2種以上組合わせ
て用りることもできる。たとえばDEARセファデック
スと接触させ、溶出した液を更にトヨパールHW50F
tたは508Fと接触させそして溶出を行なうと、更に
精製の効果を上げることができる。
実施例8で得られた本発明活性物質5PF−2はベゾチ
ド性物質で、凍結乾燥すると淡黄色の粉末となる。
ド性物質で、凍結乾燥すると淡黄色の粉末となる。
次に、生理活性物質5PF−2の理化学的性質を示す。
1、 元素分析
2 分子量
ゲル濾過法による測定では、分子量約
7.000〜25.000である。
3、分解点
本物質は160℃で褐変し、200℃になると黒色とな
り分解する。
り分解する。
4、比旋光度
〔α)=+30.7°(c=1.OD)5、紫外線吸収
スはクトル 本物質の0.2チの水溶液の紫外線吸収スペクトルは第
1図に示される。257nm。
スはクトル 本物質の0.2チの水溶液の紫外線吸収スペクトルは第
1図に示される。257nm。
265nm、275nm、280nm、287nm。
および525 nmに吸収がみらt、特徴的である。
6、赤外線吸収スペクトル
第2図に示される。
Z 溶剤に対する溶解性
水に可溶であるが、メタノール、エタノール、ニは一部
溶解し、n−ブタノール、インブタノール、n−プ四パ
ノール、n−ヘキサン、クロロホルム、アセトン、メチ
ルイソブチルケトン、エチルエーテル等の溶剤には難溶
又は不溶である。
溶解し、n−ブタノール、インブタノール、n−プ四パ
ノール、n−ヘキサン、クロロホルム、アセトン、メチ
ルイソブチルケトン、エチルエーテル等の溶剤には難溶
又は不溶である。
8、塩基性、酸性、中性の区別
本物質の1.0チ水溶液の声は6.5である。
9 物質の色
淡黄色粉末状である。
10、呈色反応
ニンヒドリン反応 十
ビュウレット反応 十
モーリッシュ反応 −
デイシエ反応 −
アンスロン反応 −
システィン硫酸反応 −
11、安定化
本物質はL−システィン、ジチオスレイトール(DTT
)、グリセロール、アルブミン、グロブリン、α−およ
びβ−サイクロデキストリン、(N)T4)2so4、
食塩等の添加によって安定化される。
)、グリセロール、アルブミン、グロブリン、α−およ
びβ−サイクロデキストリン、(N)T4)2so4、
食塩等の添加によって安定化される。
次に本発明の実施例を示す。
なお実施例における生理活性物質8PF−2の活性単位
の測定は鵜高法(Journal of Antibi
oticsvo135A10 1519〜1525 0
CT1982)によった。測定には高分子透過性大腸菌
変異株MP−2(FERM−P5452)(Agric
、Biol。
の測定は鵜高法(Journal of Antibi
oticsvo135A10 1519〜1525 0
CT1982)によった。測定には高分子透過性大腸菌
変異株MP−2(FERM−P5452)(Agric
、Biol。
Chem、43 371(1979)を使用してMP−
2姉対する抗菌活性を指標としてバイオ・アッセイする
。
2姉対する抗菌活性を指標としてバイオ・アッセイする
。
すなわち、バクト・アンチパイオチックメディアム3(
ディフコ社製品)1.75%、寒天1.6チよシ成る培
地(M、培地)を120℃、15分加熱殺菌し、20d
ずつシャーレに分注し、放冷してプレート培地を調製す
る。
ディフコ社製品)1.75%、寒天1.6チよシ成る培
地(M、培地)を120℃、15分加熱殺菌し、20d
ずつシャーレに分注し、放冷してプレート培地を調製す
る。
一方、ベゾトン0,5チ、肉エキx 0.5 %、Na
C10,3%、寒天0.8%よシ成る培地を120℃、
15分加熱殺菌する。その後42℃の恒温槽に保ち、培
地の温度が42℃になったらあらかじめ67℃で17時
間培養したMP−2菌を1d中に10番個の細胞が存在
する様に培地中に加える。ピペットによって2mlを採
取し、あらかじめ作製して置いたM、培地表面上に加え
、すはやく均一にひろげ同化させる。生理活性物質8P
F−2を含む被験液を適当に希釈して、その溶液0.D
5mJをペーパー・ディスク(直径8闘)(東洋濾紙)
にしみ込まぜる。このペーパー・ディスクを前記作製プ
レート上に置き、67℃で17時間培養し、生理活性物
質8PF−2によってできる阻止円の大きさを測定する
。阻止円の直径10xmを与える8PF−2の濃度を1
単位(1u)と定義する。
C10,3%、寒天0.8%よシ成る培地を120℃、
15分加熱殺菌する。その後42℃の恒温槽に保ち、培
地の温度が42℃になったらあらかじめ67℃で17時
間培養したMP−2菌を1d中に10番個の細胞が存在
する様に培地中に加える。ピペットによって2mlを採
取し、あらかじめ作製して置いたM、培地表面上に加え
、すはやく均一にひろげ同化させる。生理活性物質8P
F−2を含む被験液を適当に希釈して、その溶液0.D
5mJをペーパー・ディスク(直径8闘)(東洋濾紙)
にしみ込まぜる。このペーパー・ディスクを前記作製プ
レート上に置き、67℃で17時間培養し、生理活性物
質8PF−2によってできる阻止円の大きさを測定する
。阻止円の直径10xmを与える8PF−2の濃度を1
単位(1u)と定義する。
実施例1゜
次の組成の培地A、91を用いた。
肉エキス 1%
ポリはプトン 1q6
酵母エキス 0.25%
カザミノ酸 0.25%
NaCA! 0.196
pH=6.9
Streptococcus pyogenes AT
CC21060を(BHI培地100プに接種して67
℃、8時間静置培養によシ得られた前培養を培地All
に接種し、同一培養液条件で培養した後、培地Aに接種
し、101ジャーファーメンタ−を用いて67℃、11
.5 hr、300 rpmで攪拌しながら嫌気的に培
養後、ぼニジリン01000単位/ mlを添加し、更
に培養を5 hr li続する。得られた培養液を遠心
分離し、菌体を除去した。
CC21060を(BHI培地100プに接種して67
℃、8時間静置培養によシ得られた前培養を培地All
に接種し、同一培養液条件で培養した後、培地Aに接種
し、101ジャーファーメンタ−を用いて67℃、11
.5 hr、300 rpmで攪拌しながら嫌気的に培
養後、ぼニジリン01000単位/ mlを添加し、更
に培養を5 hr li続する。得られた培養液を遠心
分離し、菌体を除去した。
培養涙液には生理活性物質5PF−2が95単位/ゴ含
有されていた。
有されていた。
実施例2゜
次の組成の培地B、91を用いた。
肉エキス 1.0%
ポリペプトン 1.0%
酵母エキス 0.25%
NaCl 0.1%
pl(= 7.0
8treptococcus pyogenes AT
CC21060を実施例1と同材に前培養した培養液1
1を培地Bに接種し、10ノジヤーフアーメンターを用
いて37℃、11hr300rpmで攪拌しながら嫌気
的に培養後、はニジリン0800単位/meを添加し、
更に培養を5hr継続する。得られた培養液を遠心分離
し、菌体を除去した。
CC21060を実施例1と同材に前培養した培養液1
1を培地Bに接種し、10ノジヤーフアーメンターを用
いて37℃、11hr300rpmで攪拌しながら嫌気
的に培養後、はニジリン0800単位/meを添加し、
更に培養を5hr継続する。得られた培養液を遠心分離
し、菌体を除去した。
培養F液には生理活性物質8PF−2が105.6単位
/−含有されていた。
/−含有されていた。
実施例6゜
次の組成の培地C191を用いた。
肉エキス 1チ
ポリはプトン 1チ
酵母エキス 0.25チ
カザミノ酸 0.25%
NaCl 0.5%
pH=6.2
8treptocaccus py6genea AT
CC21060を実施例1と同様に前培養した培養液1
)を培地Cに接種し、10/ジャーファーメンタ−を用
いて37℃、14 hr 300rpm で攪拌し々が
ら嫌気的に培養後、ぼニジリン01000単位/lut
を添加し、更に培養を5hr継続する。得られた培養液
を遠心分離し菌体を除去した。
CC21060を実施例1と同様に前培養した培養液1
)を培地Cに接種し、10/ジャーファーメンタ−を用
いて37℃、14 hr 300rpm で攪拌し々が
ら嫌気的に培養後、ぼニジリン01000単位/lut
を添加し、更に培養を5hr継続する。得られた培養液
を遠心分離し菌体を除去した。
培養Piには生理活性物質8PF−2が89単位/ゴ含
有されていた。
有されていた。
実施例4゜
次の組成の培地り、91を用いた。
肉エキス 0.5チ
ポリペプトン 1.0チ
酵母エキス 0.25チ
カザミノ酸 0.25 %
NaC1O,5%
pH=6.5
8treptococcus pyogenes AT
CC21060を実施例1と同様に前培養した培養液1
1を培地りに接種し、10ノジヤーフアーメンターを用
いて37℃、15.5 hr 300 rpm で攪拌
しながらt、1 1魚釣に培養後、ペニシリンG1,2
00単位/dを添加し、更に培養を5hr継続する。得
られた培養液を遠心分離し、菌体を除去した。
CC21060を実施例1と同様に前培養した培養液1
1を培地りに接種し、10ノジヤーフアーメンターを用
いて37℃、15.5 hr 300 rpm で攪拌
しながらt、1 1魚釣に培養後、ペニシリンG1,2
00単位/dを添加し、更に培養を5hr継続する。得
られた培養液を遠心分離し、菌体を除去した。
培養ろ液には生理活性物質5PF−2が105.5単位
/d含有されていた。
/d含有されていた。
実施例5゜
次の組成の培地B、91を用いた。
酵母エキス 6.0%
…=6.5
Streptococcus pyogenei AT
CC21060を実施例1と同様に前培養した種培養液
11を培地Eに接種し、101ジャーファーメンタ−を
用いて37℃、15hr300rpmで攪拌しなから嫌
気的に培養後、ペニシリンG1.000単位/IILl
を添加し、更に培養を5hr継続する。得られた培養液
を遠心分離し、菌体を除去した。
CC21060を実施例1と同様に前培養した種培養液
11を培地Eに接種し、101ジャーファーメンタ−を
用いて37℃、15hr300rpmで攪拌しなから嫌
気的に培養後、ペニシリンG1.000単位/IILl
を添加し、更に培養を5hr継続する。得られた培養液
を遠心分離し、菌体を除去した。
培養p液には生理活性物質5PF−2が45.5単位/
d含有されていた。
d含有されていた。
実施例6゜
下記の培地F、91を用いた。
マルトース 0.3%
肉エキス 2.0チ
ポリペプトン 1.0%
酵母エキス 0.25チ
ーニア0
8treptococcus pyogenes AT
C’C21060を実施例1と同様にして前培養した培
養液11を培地F&C接種し、10ノジヤー7アーメン
ターで37℃、10.5hr500rpm攪拌しながら
嫌気的に培養後、ペニシリン01000単位/dを添加
し、更に培養を5hr継続する。得られた培養液を遠心
分離し、菌体を除去した。
C’C21060を実施例1と同様にして前培養した培
養液11を培地F&C接種し、10ノジヤー7アーメン
ターで37℃、10.5hr500rpm攪拌しながら
嫌気的に培養後、ペニシリン01000単位/dを添加
し、更に培養を5hr継続する。得られた培養液を遠心
分離し、菌体を除去した。
培養F液には生理活性物質5PF−2が67.5単位/
ml含有されていた。
ml含有されていた。
実施例2
下記の培地G、91を用すた。
肉エキス 1. [1%
ポリペプトン i、oチ
NaCl0.5 %
m=ZO
8treptococcus pyogenes AT
CC21060を実施例1と同様にして前培養した培養
液11を培地Gに接種し、10ノジヤーフアーメンター
を用いて37℃、15hr300rpmで攪拌しながら
嫌気的に培養後、ハエシリンG1000単位/1nlを
添加し、更に培養を5hr継続する。得られた培養液を
遠心分離し、菌体を除去した。
CC21060を実施例1と同様にして前培養した培養
液11を培地Gに接種し、10ノジヤーフアーメンター
を用いて37℃、15hr300rpmで攪拌しながら
嫌気的に培養後、ハエシリンG1000単位/1nlを
添加し、更に培養を5hr継続する。得られた培養液を
遠心分離し、菌体を除去した。
培養p液には生理活性物質8PF−2が100単位/m
l含有されていた。
l含有されていた。
実施例8゜
実施例3の培養で得た培養F液51I/′i生理活性物
質150X10’単位含有していた。
質150X10’単位含有していた。
培養F液には硫安を添加し50〜90%飽和度の両分を
分取して沈澱物を得た。この沈澱物は生理活性物質5P
F−2を126xlO’単位含有していた。
分取して沈澱物を得た。この沈澱物は生理活性物質5P
F−2を126xlO’単位含有していた。
この沈澱物全量を安定剤含有緩衝液300−に溶解し、
溶解液をDEAR−セルロースカラム(5x70cII
L)K加え、生理活性物質SPFを吸着させた。これに
0.3 M NaC1溶液を用いて段階的に溶出させ、
活性部分を分取する。得られた活性は115X104単
位であった。
溶解液をDEAR−セルロースカラム(5x70cII
L)K加え、生理活性物質SPFを吸着させた。これに
0.3 M NaC1溶液を用いて段階的に溶出させ、
活性部分を分取する。得られた活性は115X104単
位であった。
活性部分をDEAE−セファデックスA−25のカラム
(2,5X70cIrL)K:加え、活性部分全吸着さ
せ、これに燐酸緩衝液中の食塩濃度を直線的に上昇させ
つつ溶出を行い、活性部分を分取する。
(2,5X70cIrL)K:加え、活性部分全吸着さ
せ、これに燐酸緩衝液中の食塩濃度を直線的に上昇させ
つつ溶出を行い、活性部分を分取する。
得られた活性は85X10’単位であった。
更に1この溶出液を濃縮しゲル濾過材トヨバー#HW=
50Fのカラム(2,6Xl 0 Qcm)K加えて吸
着させ、次いで、1/100MIJン酸緩衝液(KHz
PO4−Na2HPO4)で溶出し、活性画分を分取し
、これを8PF−2とした。得られた5PF−2活性は
22.5X10’単位であった。
50Fのカラム(2,6Xl 0 Qcm)K加えて吸
着させ、次いで、1/100MIJン酸緩衝液(KHz
PO4−Na2HPO4)で溶出し、活性画分を分取し
、これを8PF−2とした。得られた5PF−2活性は
22.5X10’単位であった。
ここに得られた溶出液を凍結乾燥し生理活性物質SPF
′−2の淡黄色粉末750 mgを得た。
′−2の淡黄色粉末750 mgを得た。
第1図は生理活性物質5PF−20,2%水溶液の紫外
線吸収スペクトルを示し、第2図は同じ〈赤外線吸収ス
ペクトルを示す。 代理人 弁理士 戸 1)親 男
線吸収スペクトルを示し、第2図は同じ〈赤外線吸収ス
ペクトルを示す。 代理人 弁理士 戸 1)親 男
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 (11下記の理化学的性質を有する生理活性物質8PF
−2゜ 1、元素分析 C:53.64チ、H: 5.98チ、N:11.63
チ/ / / 48.57チ 5.02% 10.50チ2、分子量 ゲル濾過法による測定では、分子量約 7.000〜25,000である。 五 分解点 本物質は160℃で褐変し、200’Cになると黒色と
なシ分解する。 4、比旋光度 0 〔α)、=+30.7°(c=1.00)5、紫外線吸
収スペクトル 本物質の0.2%の水溶液の紫外線吸収スペクトルは第
1図に示される。・257nm、26jnm、273n
m、280nm。 2B’7nmおよび325 nmに吸収がみられ、特徴
的である。 6、赤外線吸収スはクトル 第2図に示される。 2 溶剤に対する溶解性 水に可溶であるが、メタノール、エタ ノール、には一部溶解しn−ブタノール、イソブタノー
ル、n−プロパツール、n−ヘキサン、クロロホルム、
アセトン、メチルインブチルケトン、エチルエーテル等
の溶剤には難溶又は不溶である。 8、塩基性、酸性、中性の区別 本物質の1.0チ水溶液のpHは6.5である。 9 物質の色 淡黄色粉末状である。 10、呈色反応 ニンヒドリン反応 十 ビュウレット反応 十 モーリッシュ反応 − デイシエ反応 − アンスロン反応 − システィン硫酸反応 − 11、安定化 本物質はL−システィン、ジチオスレ イトール(DTT)、グリセロール、アルブミン、グロ
ブリン、α−およびβ−サイクロデキストリン、(NH
4)2804、食塩等の添加によって安定化される。 (2)ストレプトコツカス属に属する生理活性物質8P
F−2生産菌を培養し、培養物から生理活性物質8PF
−2を採取することを特徴とする生理活性物質5PF−
2の製法。 (3)ストレプトコツカス属に属する生理活性物質8P
F−2生産菌を培養するに際し、培養中の適当な時期に
はニジリン又はその関連物質を添加して培養することを
特徴とする特許請求の範囲第2項に記載の生理活性物質
8PF−2の製法。
Priority Applications (10)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP59072866A JPS60218324A (ja) | 1984-04-13 | 1984-04-13 | 生理活性物質spf−2及びその製法 |
CA000459394A CA1237085A (en) | 1983-08-01 | 1984-07-20 | Spf-100 and process for the preparation thereof |
GB08418745A GB2146028B (en) | 1983-08-01 | 1984-07-23 | Spf-100 and process for the preparation thereof |
CH3684/84A CH663033A5 (fr) | 1983-08-01 | 1984-07-30 | Substance-melange dite ''spf-100'' et procede pour sa preparation. |
DE19843428017 DE3428017A1 (de) | 1983-08-01 | 1984-07-30 | Spf-100 und verfahren zu seiner herstellung |
KR1019840004559A KR850002276A (ko) | 1983-08-01 | 1984-07-31 | Spf-100의 제조방법 |
SE8403914A SE461532B (sv) | 1983-08-01 | 1984-07-31 | Cancermotverkande och immunaktiverande aemne (spf-100) |
FR8412119A FR2550223B1 (fr) | 1983-08-01 | 1984-07-31 | Spf-100 et procede de preparation |
NL8402388A NL8402388A (nl) | 1983-08-01 | 1984-07-31 | Geneesmiddel spf-100 en werkwijze voor de bereiding hiervan. |
US06/746,514 US4656037A (en) | 1983-08-01 | 1985-06-19 | SPF-100 and process for the preparation thereof |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP59072866A JPS60218324A (ja) | 1984-04-13 | 1984-04-13 | 生理活性物質spf−2及びその製法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS60218324A true JPS60218324A (ja) | 1985-11-01 |
JPH0155275B2 JPH0155275B2 (ja) | 1989-11-22 |
Family
ID=13501678
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP59072866A Granted JPS60218324A (ja) | 1983-08-01 | 1984-04-13 | 生理活性物質spf−2及びその製法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS60218324A (ja) |
-
1984
- 1984-04-13 JP JP59072866A patent/JPS60218324A/ja active Granted
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0155275B2 (ja) | 1989-11-22 |
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