JPH1179922A - 真核微生物用抗菌剤およびそれを用いる真核微生物の増殖抑制方法 - Google Patents
真核微生物用抗菌剤およびそれを用いる真核微生物の増殖抑制方法Info
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- JPH1179922A JPH1179922A JP9254190A JP25419097A JPH1179922A JP H1179922 A JPH1179922 A JP H1179922A JP 9254190 A JP9254190 A JP 9254190A JP 25419097 A JP25419097 A JP 25419097A JP H1179922 A JPH1179922 A JP H1179922A
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Abstract
(57)【要約】
【課題】 特有の味やにおいを有しない安全な、真核微
生物に対する抗菌剤を提供する 【解決手段】 バチルス ナットー、Ecoliのよう
な原核微生物より抽出されたDNAを主成分とする、食
品、人体または植物体の酵母やカビの真核微生物に対す
る抗菌剤およびこれを用いる真核微生物の増殖抑制方
法。
生物に対する抗菌剤を提供する 【解決手段】 バチルス ナットー、Ecoliのよう
な原核微生物より抽出されたDNAを主成分とする、食
品、人体または植物体の酵母やカビの真核微生物に対す
る抗菌剤およびこれを用いる真核微生物の増殖抑制方
法。
Description
【0001】
【発明の属する技術分野】本発明は真核微生物による汚
染防止に関する。
染防止に関する。
【0002】
【従来の技術】酵母等の真核微生物の増殖を抑制する抗
菌物質は、化学合成品ではたくさん知られているが安全
性の面で問題のあるものが多い。微生物が産出する抗生
物質には真核微生物の増殖を抑制するものが知られてい
るが、食品や化粧品、工業薬品などには用いることがで
きない。他に天然物由来の抗菌物質としては、香辛料よ
りの抽出物やニンニク抽出液等が知られているが、いず
れの物質もわずかな量で特有のにおいを有し、利用範囲
は限られていた。
菌物質は、化学合成品ではたくさん知られているが安全
性の面で問題のあるものが多い。微生物が産出する抗生
物質には真核微生物の増殖を抑制するものが知られてい
るが、食品や化粧品、工業薬品などには用いることがで
きない。他に天然物由来の抗菌物質としては、香辛料よ
りの抽出物やニンニク抽出液等が知られているが、いず
れの物質もわずかな量で特有のにおいを有し、利用範囲
は限られていた。
【0003】
【発明が解決しようとする課題】本発明は前記問題点に
鑑み、天然物由来で安全な真核微生物の増殖を抑制する
抗菌剤として、食品、化粧品、医薬品、工業薬品の分野
に利用可能な物質を見出すことを課題とする。
鑑み、天然物由来で安全な真核微生物の増殖を抑制する
抗菌剤として、食品、化粧品、医薬品、工業薬品の分野
に利用可能な物質を見出すことを課題とする。
【0004】
【課題を解決するための手段】本発明においては、前記
課題を解決するため天然物より各種物質を抽出して酵母
の生育を阻害する効果を見出そうとして様々な物質を検
討した上で、長年食されて安全であると知られている納
豆菌などの原核微生物から抽出されるDNAと真核微生
物のDNAとでは、原核微生物のDNAはDNAのメチ
ル化割合の少なさやCpGジヌクレオチドの配列頻度の
多さから、なんらかの機能的な役割の相違があり、原核
微生物の自己防衛機能となんらかの関係があるのではな
いかと考え、原核微生物のDNAを加えたところ、真核
微生物の生育を強く阻害するのを見出した。
課題を解決するため天然物より各種物質を抽出して酵母
の生育を阻害する効果を見出そうとして様々な物質を検
討した上で、長年食されて安全であると知られている納
豆菌などの原核微生物から抽出されるDNAと真核微生
物のDNAとでは、原核微生物のDNAはDNAのメチ
ル化割合の少なさやCpGジヌクレオチドの配列頻度の
多さから、なんらかの機能的な役割の相違があり、原核
微生物の自己防衛機能となんらかの関係があるのではな
いかと考え、原核微生物のDNAを加えたところ、真核
微生物の生育を強く阻害するのを見出した。
【0005】すなわち、本発明は原核微生物の細胞より
抽出されたDNAを主成分とする、真核微生物用抗菌剤
および該DNAを添加する真核微生物の増殖抑制方法で
ある。
抽出されたDNAを主成分とする、真核微生物用抗菌剤
および該DNAを添加する真核微生物の増殖抑制方法で
ある。
【0006】
【発明の実施の形態】以下、本発明を詳細に説明する。
本発明において、原核微生物としては、例えば、納豆菌
として知られているバチルス ナットー、大腸菌(E.
coli)、ラクトバチルス・アシドフィルス等の細菌
を挙げることができる。制限酵素などで分解したDNA
も用いることができるがDNAの大きさとしては約2k
base(核酸塩基)以上であることが前記増殖抑制効
果の点から好ましい。また、同様な効果の点から、Cp
Gジヌクレオチド配列を多く含むものが好ましい。な
お、CpGジヌクレオチド配列とは核酸の配列でCの次
にGが並んでおり、これらをp(リン酸)で結合させて
いる配列をいう。
本発明において、原核微生物としては、例えば、納豆菌
として知られているバチルス ナットー、大腸菌(E.
coli)、ラクトバチルス・アシドフィルス等の細菌
を挙げることができる。制限酵素などで分解したDNA
も用いることができるがDNAの大きさとしては約2k
base(核酸塩基)以上であることが前記増殖抑制効
果の点から好ましい。また、同様な効果の点から、Cp
Gジヌクレオチド配列を多く含むものが好ましい。な
お、CpGジヌクレオチド配列とは核酸の配列でCの次
にGが並んでおり、これらをp(リン酸)で結合させて
いる配列をいう。
【0007】また、真核微生物としては、例えばサッカ
ロミセス セレビシェ、カンジダ・アルビカンスのよう
な酵母、アスペルギルス・ニガー、アスペルギルス・フ
ミガタスのようなカビを挙げることができる。
ロミセス セレビシェ、カンジダ・アルビカンスのよう
な酵母、アスペルギルス・ニガー、アスペルギルス・フ
ミガタスのようなカビを挙げることができる。
【0008】原核微生物DNAの抽出方法としては、例
えばバチルス ナットー(IFO 3336)を200mlの
L−ブロース培養液(0.1%グルコース、0.5%イ
ーストエクストラクト、1.0%ペプトン、0.5%食
塩、pH7.2)を含む500ml坂口フラスコで30
℃で30時間培養し、遠心分離器(8000rpm、1
0分)にて集菌し、2回、0.85%生理食塩水で洗浄
後、40ml蒸留水で菌を懸濁して20mgリゾチーム
を添加して37℃、20分放置してから65℃に温度を
上昇させて菌体を破壊させ、−20℃に冷却されたエタ
ノールを徐々に添加して不溶化してくるDNAをガラス
棒で巻き取ると500mgのDNAを得ることができ
る。得られたDNAを70%エタノールから、80%エ
タノール、90%エタノールの溶液へと次第に濃度を上
昇させたエタノール溶液で洗浄したのち、真空下で乾燥
させ、蒸留水で2mg/mlになるように溶解させると
高純度のDNA溶液が得られる。
えばバチルス ナットー(IFO 3336)を200mlの
L−ブロース培養液(0.1%グルコース、0.5%イ
ーストエクストラクト、1.0%ペプトン、0.5%食
塩、pH7.2)を含む500ml坂口フラスコで30
℃で30時間培養し、遠心分離器(8000rpm、1
0分)にて集菌し、2回、0.85%生理食塩水で洗浄
後、40ml蒸留水で菌を懸濁して20mgリゾチーム
を添加して37℃、20分放置してから65℃に温度を
上昇させて菌体を破壊させ、−20℃に冷却されたエタ
ノールを徐々に添加して不溶化してくるDNAをガラス
棒で巻き取ると500mgのDNAを得ることができ
る。得られたDNAを70%エタノールから、80%エ
タノール、90%エタノールの溶液へと次第に濃度を上
昇させたエタノール溶液で洗浄したのち、真空下で乾燥
させ、蒸留水で2mg/mlになるように溶解させると
高純度のDNA溶液が得られる。
【0009】得られたDNAを添加した酵母用培養液S
D(2.0%グルコース、0.67%イーストナイトロ
ジェンベース アミノ酸フリー)で酵母サッカロミセス
セレビシェを30℃、24時間培養するとDNAを添
加しない場合と比較して完全に酵母の生育は抑制され
る。
D(2.0%グルコース、0.67%イーストナイトロ
ジェンベース アミノ酸フリー)で酵母サッカロミセス
セレビシェを30℃、24時間培養するとDNAを添
加しない場合と比較して完全に酵母の生育は抑制され
る。
【0010】
【実施例】以下に実施例を挙げて本発明をさらに詳細に
説明するが、本発明はこれら実施例に限定されるもので
はない。
説明するが、本発明はこれら実施例に限定されるもので
はない。
【0011】実施例1 a.DNAの調製 原核微生物バチルス ナットー(IFO 3336)、
大腸菌エスシェルヒアコリー K−12(IFO144
10)のそれぞれを200mlのL−ブロース培養液
(0.1%グルコース、0.5%イーストエクストラク
ト、1.0ペプトン、0.5%食塩、pH7.2)を含
む500ml坂口フラスコで30℃で30時間培養し、
遠心分離(8000rpm、10分)にて集菌し、2回
それぞれの菌を0.85%生理食塩水で洗浄後、40m
l蒸留水で菌を懸濁して、20mgリゾチームを添加し
て37℃、20分放置してから65℃に温度を上昇させ
て菌体を破壊し、−20℃に冷却したエタノールを徐々
に添加して不溶化してくるDNAをガラス棒で巻取り、
それぞれの菌のDNAが共に500mg得られた。
大腸菌エスシェルヒアコリー K−12(IFO144
10)のそれぞれを200mlのL−ブロース培養液
(0.1%グルコース、0.5%イーストエクストラク
ト、1.0ペプトン、0.5%食塩、pH7.2)を含
む500ml坂口フラスコで30℃で30時間培養し、
遠心分離(8000rpm、10分)にて集菌し、2回
それぞれの菌を0.85%生理食塩水で洗浄後、40m
l蒸留水で菌を懸濁して、20mgリゾチームを添加し
て37℃、20分放置してから65℃に温度を上昇させ
て菌体を破壊し、−20℃に冷却したエタノールを徐々
に添加して不溶化してくるDNAをガラス棒で巻取り、
それぞれの菌のDNAが共に500mg得られた。
【0012】b.酵母の生育抑制試験 それぞれのDNAを70%エタノールから、80%エタ
ノール、90%エタノールの溶液へと次第に濃度を上昇
させたエタノール溶液で洗浄させたのち、真空下で完全
に乾燥させたのち、蒸留水で2mg/mlになるように
溶解させ、DNA溶液とした。
ノール、90%エタノールの溶液へと次第に濃度を上昇
させたエタノール溶液で洗浄させたのち、真空下で完全
に乾燥させたのち、蒸留水で2mg/mlになるように
溶解させ、DNA溶液とした。
【0013】酵母サッカロミセス セレビシェ FT−
1(ジャーナル オブ ファメンテーション アンド
バイオエンジニアリング、70巻 275頁 1990
年)を5mlSD培地(2.0%グルコース、0.67
%イーストナイトロジェンベース アミノ酸フリー)に
30℃、24時間前培養し、同じ培養液SD培地100
mlにそれぞれの菌よりのDNA溶液を0.2、0.
4、0.6、0.8mg/mlの濃度になるよう添加
し、それぞれの菌よりの各濃度のDNAを添加されたS
D培地に前培養した酵母菌を1/1000になるように
添加した。それぞれのDNAを含むSD培養液を30
℃、24時間、振盪培養し、0.85%生理食塩水で洗
浄後、各菌をさらに0.85%生理食塩水で10倍量、
100倍量、1000倍量と希釈してそれぞれの菌液
0.1mlをYPD(2%グルコース、2%ペプトン、
1%イーストエクストラクト、1.5%寒天、pH5.
0)プレートに塗布して30℃で1〜2日培養し、それ
ぞれのプレートより出現したコロニーを計測した。酵母
数を表1、2に示す。
1(ジャーナル オブ ファメンテーション アンド
バイオエンジニアリング、70巻 275頁 1990
年)を5mlSD培地(2.0%グルコース、0.67
%イーストナイトロジェンベース アミノ酸フリー)に
30℃、24時間前培養し、同じ培養液SD培地100
mlにそれぞれの菌よりのDNA溶液を0.2、0.
4、0.6、0.8mg/mlの濃度になるよう添加
し、それぞれの菌よりの各濃度のDNAを添加されたS
D培地に前培養した酵母菌を1/1000になるように
添加した。それぞれのDNAを含むSD培養液を30
℃、24時間、振盪培養し、0.85%生理食塩水で洗
浄後、各菌をさらに0.85%生理食塩水で10倍量、
100倍量、1000倍量と希釈してそれぞれの菌液
0.1mlをYPD(2%グルコース、2%ペプトン、
1%イーストエクストラクト、1.5%寒天、pH5.
0)プレートに塗布して30℃で1〜2日培養し、それ
ぞれのプレートより出現したコロニーを計測した。酵母
数を表1、2に示す。
【0014】
【表1】
【0015】
【表2】
【0016】この結果、バチルス ナットDNA、大腸
菌K−12DNAのいずれを添加しても0.4mg/m
l以上になると強力に酵母の生育を抑制した。
菌K−12DNAのいずれを添加しても0.4mg/m
l以上になると強力に酵母の生育を抑制した。
【0017】実施例2 a.DNAの調製 実施例1で調製された大腸菌DNAが10mgになるよ
うに4つの試験管にそれぞれ2mlとり、3倍量の−2
0℃に冷却されたエタノールを加えて一昼夜−20℃で
放置後、遠心分離器で10000rpm、10分行い、
DNAを沈殿させて上清をすててDNAを真空下で乾燥
させた。1つ目の試験管に制限酵素EcoR1(すべて
タカラ酒造(株)製)用反応液(50mM Tris−
HClpH7.5、10mM MgCl2 、1mM D
ithiothretol、100mM NaCl)2
ml加えて溶解させ、2本の試験管には制限酵素Hin
dIII 用の反応液(10mM Tris−HCl pH
7.5、10mM MgCl2 、1mM Dithio
thretol、50mM NaCl)2ml加えて溶
解させて、それぞれの制限酵素を1万U添加し、37℃
で2時間反応させたのち、制限酵素Hin dIII で反
応させた2本の試験管のうち1本だけは再び−20℃冷
エタノールを2倍量加え、一昼夜−20℃で放置後遠心
分離で10000rpm、10分行い、DNAを沈殿さ
せて上清を捨てた後真空下で完全に乾燥させ、さらにD
NaseIの酵素反応を行わせるためにDNaseI反
応液(100mM 酢酸ナトリウム、pH5.0、0.
5mM MgSO4 )2ml加えて溶解させたのち、D
Nase Iを1000U 25℃で2時間反応させ
た。なお、制限酵素で切断されたDNAは平均約2〜3
kbaseであった。
うに4つの試験管にそれぞれ2mlとり、3倍量の−2
0℃に冷却されたエタノールを加えて一昼夜−20℃で
放置後、遠心分離器で10000rpm、10分行い、
DNAを沈殿させて上清をすててDNAを真空下で乾燥
させた。1つ目の試験管に制限酵素EcoR1(すべて
タカラ酒造(株)製)用反応液(50mM Tris−
HClpH7.5、10mM MgCl2 、1mM D
ithiothretol、100mM NaCl)2
ml加えて溶解させ、2本の試験管には制限酵素Hin
dIII 用の反応液(10mM Tris−HCl pH
7.5、10mM MgCl2 、1mM Dithio
thretol、50mM NaCl)2ml加えて溶
解させて、それぞれの制限酵素を1万U添加し、37℃
で2時間反応させたのち、制限酵素Hin dIII で反
応させた2本の試験管のうち1本だけは再び−20℃冷
エタノールを2倍量加え、一昼夜−20℃で放置後遠心
分離で10000rpm、10分行い、DNAを沈殿さ
せて上清を捨てた後真空下で完全に乾燥させ、さらにD
NaseIの酵素反応を行わせるためにDNaseI反
応液(100mM 酢酸ナトリウム、pH5.0、0.
5mM MgSO4 )2ml加えて溶解させたのち、D
Nase Iを1000U 25℃で2時間反応させ
た。なお、制限酵素で切断されたDNAは平均約2〜3
kbaseであった。
【0018】b.酵母の生育抑制試験 酵母サッカロミセス セレビシェ FT−1(ジャーナ
ル オブ ファメンテーション アンド バイオエンジ
ニアリング、70巻 275頁 1990年)を5m
l、SD培地(2.0%グルコース、0.67%イース
トナイトロジェンベース アミノ酸フリー)に30℃、
24時間前培養し、同じ培養液SD培地100mlにそ
れぞれの切断されたDNA溶液を0.4mg/mlの濃
度になるよう添加し、前培養した酵母菌を1/1000
になるように添加した。
ル オブ ファメンテーション アンド バイオエンジ
ニアリング、70巻 275頁 1990年)を5m
l、SD培地(2.0%グルコース、0.67%イース
トナイトロジェンベース アミノ酸フリー)に30℃、
24時間前培養し、同じ培養液SD培地100mlにそ
れぞれの切断されたDNA溶液を0.4mg/mlの濃
度になるよう添加し、前培養した酵母菌を1/1000
になるように添加した。
【0019】SD培養液を30℃、24時間振盪培養
し、24時間後での菌の生育を日立スペクトロフォトメ
ーターU−1100を用いて610nmの波長で吸光度
を測定することにより、菌数を測定した。それぞれの酵
素により切断されたDNAの酵母生育阻害を表3に示
す。
し、24時間後での菌の生育を日立スペクトロフォトメ
ーターU−1100を用いて610nmの波長で吸光度
を測定することにより、菌数を測定した。それぞれの酵
素により切断されたDNAの酵母生育阻害を表3に示
す。
【0020】
【表3】
【0021】以上の結果、制限酵素で切断されたDNA
は次第に生育阻害効果は弱くなり、Hin dIII およ
びDNaseでさらにDNAより小さく切断されたDN
Aによる生育阻害は無添加の場合より効果があった。
は次第に生育阻害効果は弱くなり、Hin dIII およ
びDNaseでさらにDNAより小さく切断されたDN
Aによる生育阻害は無添加の場合より効果があった。
【0022】実施例3 カビの生育抑制試験 実施例1で調製された大腸菌DNAおよびバチルス ナ
ットーDNAのいずれのDNAも0.2mg/mlにな
るようにそれぞれ5mlのSD培地(2.0グルコー
ス、0.67%イーストナイトロジェンベース アミノ
酸フリー、pH5.2)に添加したのち、あらかじめS
D寒天培地で培養されたカビ アスペルギルス ニガー
(IFO 4034)の菌糸を白金耳で取って加え、3
0℃で12時間、24時間、36時間、48時間振盪培
養した。かびの生育は各時間でのSD培地をフィルター
ペーパー(アドバンテック No.5)で濾過しえない
菌体の重さを乾燥させずそのまま電子天秤(TOP F
X−320)で計測した。それぞれのDNAによるカビ
の生育を表4に示す。
ットーDNAのいずれのDNAも0.2mg/mlにな
るようにそれぞれ5mlのSD培地(2.0グルコー
ス、0.67%イーストナイトロジェンベース アミノ
酸フリー、pH5.2)に添加したのち、あらかじめS
D寒天培地で培養されたカビ アスペルギルス ニガー
(IFO 4034)の菌糸を白金耳で取って加え、3
0℃で12時間、24時間、36時間、48時間振盪培
養した。かびの生育は各時間でのSD培地をフィルター
ペーパー(アドバンテック No.5)で濾過しえない
菌体の重さを乾燥させずそのまま電子天秤(TOP F
X−320)で計測した。それぞれのDNAによるカビ
の生育を表4に示す。
【0023】
【表4】 以上の結果、いずれのDNAにおいても無添加の場合と
比較すると、48時間までカビの生育を強く抑制してい
た。
比較すると、48時間までカビの生育を強く抑制してい
た。
【0024】実施例4 焼肉のたれの保存試験 市販の焼肉のタレ(エバラ食品製)に水を2%量加えて
(加水後の食塩濃度7.3%)、実施例1で得られたバ
チルス ナットー由来のDNAを0.02%、0.04
%の濃度になるようにそのタレに加え、30℃にて保存
試験を行った。結果を表5に示す。
(加水後の食塩濃度7.3%)、実施例1で得られたバ
チルス ナットー由来のDNAを0.02%、0.04
%の濃度になるようにそのタレに加え、30℃にて保存
試験を行った。結果を表5に示す。
【0025】
【表5】 注)−は無変化、+、++はふくれが生じたことを示す。 DNAは0.02〜0.04%の添加でタレのふくれに対して効果があった。
【0026】実施例5 めんつゆの保存試験 市販のめんつゆ((株)にんべん製)を3倍希釈し(食
塩濃度2.8%)、実施例1で得られたEcoliのD
NAを0.01%、0.04%加え、30℃で保存試験
を行った。結果を表6に示す。
塩濃度2.8%)、実施例1で得られたEcoliのD
NAを0.01%、0.04%加え、30℃で保存試験
を行った。結果を表6に示す。
【0027】
【表6】 注)−は無変化、+はにごりが、++はにごり、ふくれが生じたことを示す。 DNAはめんつゆに対して保存効果が認められた。
【0028】実施例6 病原性真菌の生育抑制試験 実施例1で得られた納豆菌のDNAと大腸菌のDNAを
用い、ヒトの病原性真菌に対する最小発育阻止濃度
(%)(MIC)を測定した。結果を表7に示す。
用い、ヒトの病原性真菌に対する最小発育阻止濃度
(%)(MIC)を測定した。結果を表7に示す。
【0029】
【表7】 培地:ポテトデキストローズ培地 培養条件:25℃、1〜3週間(カビ)、48時間(酵
母) DNAは代表的な病原性真菌に対して0.02〜0.0
4%で発育を阻止した。
母) DNAは代表的な病原性真菌に対して0.02〜0.0
4%で発育を阻止した。
【0030】実施例7 実施例6と同様にして植物病原真菌に対する効果を調べ
た。結果を表8に示す。
た。結果を表8に示す。
【0031】
【表8】 培地:ポテトデキストローズ培地 培養条件:25℃、7日間(カビ)、48時間(酵母) DNAは代表的な植物病原真菌に対して0.02〜0.
03%で発育を阻止した。
03%で発育を阻止した。
【0032】実施例8 化粧品への応用(乳液タイプ養毛料の保存試験) 下記の処方で乳液タイプ養毛料を製造した。空中落下菌
で汚染されるように開放系で製造した。 前記油相(A)、水相(B)をそれぞれ85℃に加熱
し、同温度で両成分を攪拌しながら混合乳化し、常温ま
で冷却し、養毛料を得た。
で汚染されるように開放系で製造した。 前記油相(A)、水相(B)をそれぞれ85℃に加熱
し、同温度で両成分を攪拌しながら混合乳化し、常温ま
で冷却し、養毛料を得た。
【0033】対照にはエチルパラベン0.1%添加群を
おき、試験群には大腸菌DNAを0.03%添加してビ
ンに詰め、シール後、37℃にて保存試験を行った。結
果は表9のとおりであった。
おき、試験群には大腸菌DNAを0.03%添加してビ
ンに詰め、シール後、37℃にて保存試験を行った。結
果は表9のとおりであった。
【0034】
【表9】 注)+はカビの発生を示す。 DNAの0.03%の添加で乳化タイプ養毛料の防カビ
効果があった。
効果があった。
【0035】
【発明の効果】本発明によれば、例えば食品、医薬品、
化粧品、農薬、工業薬品など広範な分野で真核微生物に
対する抗菌性を発揮することができる。特に、原核微生
物のDNAとして長年食品として安全な微生物として摂
食されている納豆菌よりのDNAを添加すれば、特有の
味や匂いも有さず、より強力に真核微生物による食品等
の汚染を防止することができる。
化粧品、農薬、工業薬品など広範な分野で真核微生物に
対する抗菌性を発揮することができる。特に、原核微生
物のDNAとして長年食品として安全な微生物として摂
食されている納豆菌よりのDNAを添加すれば、特有の
味や匂いも有さず、より強力に真核微生物による食品等
の汚染を防止することができる。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 FI A61K 35/74 ADZ A61K 35/74 ADZD // A23L 1/22 A23L 1/22 D A61K 7/06 A61K 7/06 31/70 ADZ 31/70 ADZ (72)発明者 橋本 渉 京都府宇治市五ケ庄 京都大学食糧科学研 究所内 (72)発明者 村田 幸作 京都府宇治市五ケ庄 京都大学食糧科学研 究所内
Claims (4)
- 【請求項1】 原核微生物の細胞より抽出されたDNA
を主成分とする、真核微生物用抗菌剤。 - 【請求項2】 DNAの大きさが約2kbase以上で
ある請求項1記載の抗菌剤。 - 【請求項3】 DNAがCpGジヌクレオチド配列を多
く含む請求項1または2記載の抗菌剤。 - 【請求項4】 原核微生物の細胞より抽出されたDNA
を添加する、真核微生物の増殖抑制方法。
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AT413540B (de) * | 2001-12-20 | 2006-03-15 | Erber Ag | Mikroorganismus, welcher ochratoxine sowie ochratoxine und zearalenone entgiftet, sowie verfahren und verwendung hiefür |
AT501359B1 (de) * | 2004-11-16 | 2007-10-15 | Erber Ag | Verfahren und mikroorganismus zur entgiftung von fumonisinen sowie verwendung und futtermittelzusatz |
KR100959251B1 (ko) | 2007-11-20 | 2010-05-26 | 한국생명공학연구원 | 세균의 유전물질을 포함하는 식물 병원균에 대한 저항성을증가시키기 위한 조성물, 방법 및 상기 방법에 의해 제조된식물체 |
JP2014083210A (ja) * | 2012-10-23 | 2014-05-12 | Heiwa Mannequin Co Ltd | 表示器 |
KR101700625B1 (ko) * | 2014-11-26 | 2017-02-13 | 대한민국 | 페디오코커스 펜토사세우스 kcc-23 및 이를 포함하는 조성물 |
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DE3410348A1 (de) * | 1984-03-21 | 1985-10-03 | Helmut Dr. Bozen Schwienbacher | Verfahren zur bekaempfung von fischmykosen und mittel zur durchfuehrung des verfahrens |
DE3830616A1 (de) * | 1988-09-09 | 1990-03-15 | Ruetgerswerke Ag | Prophylaktikum fuer fische |
JPH04169506A (ja) * | 1990-10-31 | 1992-06-17 | Pentel Kk | 植物成長保進剤 |
IL110463A0 (en) * | 1993-08-13 | 1994-10-21 | Du Pont | In situ extraction of microbial DNA |
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- 1997-12-24 DE DE69724613T patent/DE69724613T2/de not_active Expired - Fee Related
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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CN111616979A (zh) * | 2019-02-28 | 2020-09-04 | 科丝美诗株式会社 | 一种包括核酸片段的混合物的组合物及其用途 |
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