DE69724613T2 - Antimikrobielle Mittel gegen eukaryotische Mikroorganismen und Verfahren zur Unterdrückung des Wachstums von eukaryotischen Mikroorganismen unter Verwendung solcher Mittel - Google Patents

Antimikrobielle Mittel gegen eukaryotische Mikroorganismen und Verfahren zur Unterdrückung des Wachstums von eukaryotischen Mikroorganismen unter Verwendung solcher Mittel Download PDF

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Description

  • GEBIET DER ERFINDUNG:
  • Die vorliegende Erfindung betrifft den Schutz vor Infektionen mit eukaryotischen Mikroorganismen.
  • HINTERGRUND DER ERFINDUNG:
  • Chemisch synthetisierte antimikrobielle Mittel, die das Wachstum von eukaryotischen Mikroorganismen unterdrücken, sind allgemein bekannt, diese Mittel werden aber hinsichtlich ihrer Sicherheit als kritisch angesehen. Es ist ebenfalls bekannt, dass einige von Mikroorganismen hergestellte Antibiotika das Wachstum von eukaryotischen Mikroorganismen unterdrücken. Diese Mittel können aber aufgrund von gesetzlichen Einschränkungen nicht der Nahrung, Kosmetika und industriellen Chemikalien zugesetzt werden. Extrakte von verschiedenen Gewürzen oder Knoblauch wurden als welche mit antimikrobieller Aktivität identifiziert, sie haben allerdings selbst bei niedrigen Dosen einen besonderen Duft und sind daher in ihrer Anwendung beschränkt.
  • ZUSAMMENFASSUNG DER ERFINDUNG:
  • Diese Erfindung betrifft sichere antimikrobielle Mittel, die aus natürlichen Quellen stammen und in der Lage sind, das Wachstum von eukaryotischen Mikroorganismen zu unterdrücken, diese können zu Nahrungsmitteln, Kosmetika, Pharmazeutika und industriellen Chemikalien zugegeben werden.
  • Als ein Ergebnis von Untersuchungen zu natürlichen Quellen, die in der Lage sind, das Wachstum von Hefen und Pilzen zu unterdrücken, wurde gefunden, dass von prokaryotischen erhaltene DNA das Wachstum von eukaryotischen Mikroorganismen signifikant unterdrücken kann. Es wird angenommen, dass ein Unterschied in den funktionellen Rollen der aus prokaryotischen Mikroorganismen extrahierten DNA und der aus eukaryotischen Mikroorganismen aufgrund des Unterschieds der Methylierung und der Häufigkeit von CG-Dinukleotidsegenzen in beiden Mikroorganismen besteht, und dass dieser Unterschied in Beziehung zu einer der Selbstschutzfunktionen von prokaryotischen Mikroorganismen gegenüber eukaryotischen Mikroorganismen steht.
  • In einem Aspekt ist diese Erfindung auf antimikrobielle Mittel gerichtet, die wirksam gegenüber eukaryotischen Mikroorganismen sind; bei diesen ist mindestens ein Hauptbestandteil des antimikrobiellen Mittels eine DNA, extrahiert aus prokaryotischen Mikroorganismen, und ein anderes Verfahren als die Behandlung von menschlichen oder tierischen Organismen zur Unterdrückung des Wachstums von eukaryotischen Mikroorganismen durch den Zusatz des erfindungsgemässen antimikrobiellen Mittels.
  • Andere Aspekte der Erfindung sind in den Ansprüchen dargestellt, auf diese wird Bezug genommen.
  • AUSFÜHRLICHE BESCHREIBUNG DER ERFINDUNG:
  • In der vorliegenden Erfindung schliessen die prokaryotischen Mikroorganismen alle gram-positiven und gram-negativen Bakterien ein.
  • Gram-positive Bakterien schliessen ein die Gattung Bacillus, wie B. subtilis, B. cereus, B. megaterum, B. mesentericus, B. licheniformis, B. sphaericus, B. alvei, B. natto und B. circulans; Milchsäurebakterien, wie Lactobacillus plantarum, L. acidophilus, L. brevi, L. casei, L. delbrueckii, L. fermentum und L. helveticus, und Lactococcus lactis, Leuconostoc mesenteroides, L. dextranicum, Pediococcus pentosaceus, P. acidilactici, Streptococcus faecium und Str. faecalis; und Cocci, wie Micrococcus luteus, M. flavus, M. roseus, Staphylococcus aureus und S. epidermidis.
  • Gram-negative Bakterien schliessen ein: Aeromonas hydrophila, Alcaligenes faecalis, Enterobacter cloacae, Klebsiella pneumoniae, Escherichia coli, Proteus vulgaris, Pseudomonas aeruginosa, Ps. fluorescens, Ps. aureofaciens, Salmonella typhimurium, Sal. enteritidis, Serratia arcescens und Vibrio.
  • Wenn ein Nahrungsmittel vor dem Verderben oder dem Vermischen mit einem Mycotoxin geschützt werden soll, kann erfindungsgemäss DNA von Milchsäurebakterien oder B. natto, eine Spezies von B. subtilis, oder DNA von Escherichia coli verwendet werden.
  • DNA von prokaryotischen Mikroorganismen kann erfindungsgemäss ebenfalls zum Schutz von anderen Materialien als Nahrungsmitteln, Pflanzen und Lebewesen vor eukaryotischen Mikroorganismen verwendet werden.
  • Die Erfindung kann verwendet werden, um Nahrungsmittel vor dem Verderben zu schützen und Früchte vor Verschimmeln oder Enzymen, hergestellt von den Eukaryoten. Eukaryotische Mikroorganismen, gegen die die vorliegende Erfindung wirksam ist, schliessen solche ein, die Mycotoxine herstellen, wie Aflatoxin, Ochratoxin, Sterigmatocystin, Penicillium toxin und Fusarium toxin. Erkrankungen durch Eumycetes, die erfindungsgemäss behandelt werden können, schliessen Infektionen durch z.B. Trychophyton und Candida, Pflanzenpathologie und Fischpathologie ein. Schimmelpilze in Häusern, Möbeln, der Küche, dem Bad und auf Böden können erfindungsgemäss behandelt werden.
  • Prokaryotische DNA, die durch Restriktionsenzyme abgebaut wurde, kann ebenfalls verwendet werden und die Grösse der DNA ist bevorzugt mindestens 1.000 Basen, um den wachstumsunterdrückenden Effekt aufzuzeigen. Es ist ebenfalls vorteilhaft für die DNA, eine grosse Zahl an CG-Dinukleotidsequenzen im Molekül zu enthalten. CG-Dinukleotidsequenz bedeutet, dass C und G aufeinanderfolgende Basen in der Nukleotidsequenz der prokaryotischen DNA sind.
  • Es ist bevorzugt, dass die prokaryotische DNA CG-Dinukleotidsequenzen einschliesst, die mit mindestens 2-facher, bevorzugter mindestens 17-facher Häufigkeit als in der DNA von eukaryotischen Mikroorganismen vorkommt.
  • Beispiele für eukaryotische Mikroorganismen, die gemäss der vorliegenden Erfindung behandelt werden können, sind Hefen, wie Saccharomyces cerevisiae und Candida albicans, und filamentöse Pilze, wie Aspergillus niger und Aspergillus fumigatus.
  • BEISPIEL 1
  • Als Beispiel zur Extraktion von DNA aus prokaryotischen Mikroorganismen wird Bacillus natto, IFO 3336, in einem 500 ml-Erlenmeyer-Kolben, enthaltend 200 ml L-Broth-Medium (0,1% Glucose, 0,5% Hefeextrakt, 1,0% Pepton und 0,5 NaCl, pH 7,2) bei 30°C für 30 Stunden kultiviert. Die Zellen wurde mittels Zentrifugation geerntet (8.000 U/min, 10 Minuten) und zweimal mit 0,85% Salzlösung gewaschen. Die Zellsuspension in 40 ml destilliertem Wasser wurde mit 20 mg Lysozym bei 37°C für 20 Minuten inkubiert und anschliessend auf 65°C erhitzt, um die Zellen aufzubrechen. Kaltes Ethanol (–20°C) wurde graduell zu der Suspension gegeben und ca. 500 mg unlösliche DNA wurden durch Aufwickeln der DNA auf einen Glasstab erhalten. Die erhaltene DNA wurde mit 70%, 80% bzw. 90 Ethanollösungen gewaschen und im Vakuum getrocknet. So wurde hochaufgereinigte DNA als eine Lösung, enthaltend 2 mg DNA pro ml destilliertem Wasser, hergestellt.
  • Wenn Saccharomyces cerevisiae in einem SD-Medium in Anwesenheit von 1 mg/ml DNA pro Hefekultur (2,0% Glucose und 0,67% aminosäurefreie Stickstoffquelle für Hefe) in Anwesenheit der erhaltenen DNA, wie beschrieben, bei 30°C für 24 Stunden kultiviert wurde, war das Wachstum der Hefen komplett unterdrückt. Das Wachstum von Saccharomyces cerevisiae war allerdings nicht in einem Medium in Abwesenheit von prokaryotischer DNA unterdrückt.
  • BEISPIEL 2
  • (A) Herstellung der DNA:
  • Prokaryotische Mikroorganismen, Bacillus natto (IFO 3336) und Escherichia coli K-12 (IFO 14410), wurden in einem 500 ml-Erlenmeyer-Kolben, enthaltend 200 ml L-Broth-Kulturmedium (0,1% Glucose, 0,5% Hefeextrakt, 1,0% Pepton und 0,5% NaCl, pH 7,2) bei 30°C inkubiert. Nach 30 Stunden wurden die Zellen von jedem Bakterium geerntet und mit 0,85% Salzlösung zweimal gewaschen und anschliessend wurden die Zellen in 40 ml destilliertem Wasser suspendiert. Nach Zugabe von 20 mg Lysozym zu der Suspension wurde die Temperatur auf 65°C erhöht, um die Zellen abzubauen. 500 mg DNA, unlöslich gemacht durch graduelle Zugabe von –20°C Ethanol, wurden durch Aufwickeln auf einen Glasstab erhalten.
  • (B) Tests zur Unterdrückung des Hefewachstums:
  • Die aus dem jeweiligen Bakterienstamm erhaltene DNA, wie oben beschrieben, wurde mit einer Ethanollösung, deren Konzentration von 70 über 80 auf 90% erhöht wurde, gewaschen und im Vakuum getrocknet. Somit wurde eine hochaufgereinigte DNA als Lösung, enthaltend 2 mg DNA pro ml destilliertem Wasser, erhalten.
  • Hefe, Saccharomyces cerevisiae FT-1 (Journal of Fermentation and Bioengineering, 70, 275, 1990), die von K. Kimura erhalten wurde, wurde in 5 ml SD-Medium (2,0% Glucose und 0,67% Hefestickstoffquelle, aminosäurefrei) bei 30°C für 24 Stunden kultiviert. Die von jedem Bakterienstamm erhaltene DNA wurde zu den 4 Flaschen, enthaltend 100 ml SD-Medium, zugegeben. Die Endkonzentration der DNA in jeder Flasche war 0, 0,2, 0,4, 0,6 bzw. 0,8 mg/ml. Diese Medien, enthaltend verschiedene Konzentrationen der DNA, wurden mit 0,1 ml des Hefestamms, der wie oben beschrieben kultiviert wurde, angeimpft.
  • Jedes SD-Medium, enthaltend die DNA, wurde bei 30°C für 24 Stunden auf einem Schüttler kultiviert und die in dem Medium gewachsenen Hefezellen wurden geerntet und mit 0,85% Salzlösung gewaschen. Die Zellen wurden in 10-, 100- bzw. 1.000-fachem Volumen von 0,85% Salzlösung suspendiert und 0,1 ml jeder dieser Zellsuspensionen wurden auf ein YDP-Agarplattenmedium aufplattiert (2 Glucose, 2% Pepton, 1% Hefeextrakt und 1,5% Agar, pH 5,0). Nach Kultivierung für 1 bis 2 Tage bei 30°C wurde die Zahl der auf dem Plattenmedium gewachsenen Kolonien gezählt. Die Ergebnisse sind in den Tabellen 1 und 2 dargestellt.
  • TABELLE 1 DNA von Bacillus natto
    Figure 00070001
  • TABELLE 2 DNA von E. coli R-12
    Figure 00070002
  • Diese Ergebnisse zeigen, dass die Zugabe von mehr als 0,4 mg/ml DNA von B. natto oder E. coli K-12 deutlich das Wachstum der Hefen unterdrückt.
  • BEISPIEL 3
  • (A) Herstellung der DNA:
  • 2 ml einer Lösung von E. coli DNA (10 mg), hergestellt wie in Beispiel 2 beschrieben, wurden in 4 Teströhrchen gegeben und ein dreifaches Volumen an kaltem Ethanol (–20°C) wurde zugegeben. Nach 24 Stunden bei –20°C wurde die DNA durch Zentrifugation bei 1.000 U/min für 10 Minuten zentrifugiert und der Überstand wurde verworfen. Die präzipitierte DNA wurde im Vakuum getrocknet.
  • 2 ml der Reaktionsmischung für das Restriktionsenzym EcoRI (alle hier verwendeten Enzyme waren von Takara Shuzo Co., Ltd., Japan), enthaltend 50 mmol Tris-HCl, pH 7,5, 10 mM MgCl2, 1 mM Dithiothreitol und 100 mM Natriumchlorid, wurden in ein Teströhrchen gegossen, um die DNA aufzulösen. 2 ml-Mengen einer Reaktionsmischung für HindIII, enthaltend 10 mM Tris-HCl, pH 7,5, 10 mM MgCl2, 1 mM Dithiothreitol und 50 mM Natriumchlorid, wurden in zwei Teströhrchen gegeben, um die DNA aufzulösen. Anschliessend wurden 10.000 Einheiten eines jeden Restriktionsenzyms zu den Teströhrchen gegeben und bei 37°C für 2 Stunden inkubiert.
  • Zu einem der Teströhrchen, die mit HindIII reagiert wurden, wurde das 2-fache Volumen an eiskaltem Ethanol (–20°C) wieder hinzugegeben und die Mischung wurde bei –20°C für 1 Tag gehalten. Nach Zentrifugation bei 10.000 U/min für 10 Minuten wurde die DNA präzipitiert und im Vakuum getrocknet. Die Reaktionsmischung für die DNase (100 mM Natriumacetat, pH 5,0 und 0,5 mM MgSO4) wurde zu der gelösten DNA gegeben und anschliessend wurde die Lösung mit 1.000 Einheiten DNase I bei 15°C für 2 Stunden inkubiert. Die molekulare Grösse der DNA, abgebaut durch diese Restriktionsenzyme, war ca. 2 bis 3.000 Basen im Durchschnitt.
  • (B) Tests zur Unterdrückung des Hefewachstums:
  • Hefe, Saccharomyces cerevisiae FT-1 (J. of Fermentation and Bioengineering 70, 275, 1990) wurde in 5 ml SD-Medium (2,0% Glucose und 0,67% Hefestickstoffquelle, aminosäurefrei) bei 30°C für 24 Stunden kultiviert. Die hergestellte DNA-Lösung, wie oben beschrieben, wurde zu 100 ml SD-Medium gegeben, darin war die Konzentration an DNA 0,5 mg/ml und die vorkultivierten Hefen wurden in einem Massstab von 1 : 1.000 angeimpft.
  • Die Zahl der Hefezellen wurde durch spektrofotometrische Messung bei 610 nm der optischen Dichte unter Verwendung eines HITACHI Spektrofotometers, U-1100, gemessen, nachdem die Hefen für 24 Stunden auf einem Schüttler inkubiert worden waren. Tabelle 3 zeigt die Unterdrückung des Wachstums der Hefen durch die DNA, abgebaute mit dem jeweiligen Enzym.
  • TABELLE 3
    Figure 00090001
  • Diese Ergebnisse zeigen, dass die durch das Restriktionsenzym abgebaute DNA eine schwächere wachstumsunterdrückende Aktivität aufzeigt. Allerdings war die Aktivität von DNA, abgebaut durch sowohl EcoRI als auch DNase, grösser als ohne DNA.
  • Die Daten von Tabelle 3–1 wurden in der gleichen Weise wie in Tabelle 3 erhalten und zeigen, dass der antimikrobielle Effekt durch CG-Dinukleotidsequenzen erzielt werden kann.
  • TABELLE 3–1
    Figure 00100001
  • BEISPIEL 4
  • Tests zur Unterdrückung des Wachstums von filamentösen Pilzen:
  • Nach Zugabe der DNA, erhalten von E. coli und von B. natto, zu 5 ml SD-Medium (2,0% Glucose, 0,67 Hefestickstoffquelle, aminosäurefrei, pH 5,2), worin die Endkonzentration der DNA 0,2 mg/ml betrug, wurde ein filamentöser Pilz, Aspergillus niger (IFO 4034), vorkultiviert im SD-Agarmedium, mit einer Animpfschlaufe in das SD-Medium, enthaltend die DNA, angeimpft und bei 30°C für 12, 24, 36 bzw. 48 Stunden auf einem Schüttler kultiviert.
  • Das Mycel von A. niger wurden nach Filtration des Kulturmediums durch ein Filterpapier (Advantec Nr. 5) erhalten und das Nassgewicht (g) des Mycels, das nicht durch das Papier ging, wurde mit einer Elektrowaage, TOP FX-320, bestimmt.
  • Tabelle 4 zeigt die Wachstumsunterdrückung für jede DNA.
  • TABELLE 4
    Figure 00110001
  • Diese Ergebnisse zeigen, dass jede DNA-Probe das Wachstum der Pilze bei 48-stündiger Kultivierung im Gegensatz zu keiner Zugabe von DNA unterdrückt.
  • BEISPIEL 5
  • Konservierungstest für eine Sosse für Grillfleisch:
  • 2 Vol.-% Wasser wurden zu einer kommerziell erhältlichen Sosse für Grillfleisch, hergestellt von Ebara-Shokuhin Co., Ltd., Japan, gegeben (die Konzentration an NaCl war nach Zugabe des Wassers 7,3%) und weiterhin wurden 0,02 oder 0,04% der aus B. natto hergestellten DNA zu der Sosse gegeben. Um die konservierenden Wirkungen der DNA zu testen, wurde die Sosse während der angegebenen Zeit auf 30°C gehalten. Die Ergebnisse sind in Tabelle 5 gezeigt. TABELLE 5
    Figure 00120001
  • -:
    keine Veränderung;
    +,
    ++: erhöhtes Gasvolumen
  • Es stellte sich heraus, dass die Zugabe von 0,02 bis 0,04% DNA die Sosse vor Hefen schützt. + zeigt ein leicht erhöhtes Volumen, ++ zeigt ein sichtbares erhöhtes Volumen.
  • BEISPIEL 6
  • Eine kommerziell erhältliche Nudelsuppe (hergestellt von Ninben Co., Ltd., Japan) wurde mit einem 3-fachen Volumen Wasser verdünnt (die Konzentration an NaCl war 2,8% nach der Verdünnung). Die von E. coli hergestellte DNA (beschrieben in Beispiel 2) wurde zu der Suppe auf ein Niveau von 0,01% bzw. 0,04% gegeben. Die Ergebnisse sind in Tabelle 6 gezeigt. TABELLE 6
    Figure 00120002
  • -:
    keine Veränderung;
    +:
    Trübung;
    ++:
    Trübung und erhöhtes Volumen
  • Die DNA zeigte eine konservierende Wirkung auf die Nudelsuppe.
  • BEISPIEL 7
  • Tests zur Hemmung des Wachstums von pathogenen eukaryotischen Mikroorganismen:
  • Die minimal hemmende Konzentration (MIC) von B. natto DNA und E. coli DNA gegenüber Human-pathogenen eukaryotischen Mikroorganismen wurde wie in Tabelle 7 gezeigt bestimmt.
  • TABELLE 7
    Figure 00130001
  • Verwendetes Medium: Kartoffeldextrosemedium Kultivierungsbedingungen: 25°C, 1 bis 3 Wochen (filamentöse Pilze) 48 Stunden (Hefen)
  • Es zeigte sich, dass die DNA das Wachstum von typischen Human-pathogenen eukaryotischen Mikroorganismen bei Konzentrationen von 0,02 bis 0,04% hemmen kann.
  • In der gleichen Weise wie in Beispiel 7 wurden Tests zur Hemmung des Wachstums von Aflatoxin-produzierenden eukaryotischen Mikroorganismen durchgeführt und die Ergebnisse sind in Tabelle 7–1 gezeigt.
  • TABELLE 7–1
    Figure 00140001
  • BEISPIEL 8
  • Die hemmende Wirkung der DNA auf das Wachstum von Pflanzen-pathogenen und Fisch-pathogenen eukaryotischen Mikroorganismen wurde untersucht und ist in Tabelle 8 dargestellt.
  • TABELLE 8
    Figure 00140002
  • Verwendetes Medium: Kartoffeldextrosemedium Kultivierungsbedingungen: 25°C, 7 Tage (Pilze) 48 Stunden (Hefen)
  • Die DNA hemmte das Wachstum von typischen Pflanzenpathogenen eukaryotischen Mikroorganismen bei einem Niveau von 0,02 bis 0,03%.
  • BEISPIEL 9
  • Anwendung für Kosmetika (Konservierungstest für Haartonikum vom Milchlotionstyp):
  • Ein Haartonikum vom Milchlotionstyp wurde unter Verwendung der nachstehend beschriebenen Komponenten hergestellt. Es wurde in einem offenen System hergestellt, da eine mikrobielle Infektion aus der Luft erwartet wurde.
    (A) gereinigtes Jojobaöl 10,8
    Benzylnicotinoat 2
    Lanolin 2
    Isopropylmyristat 2,5
    Polyoxyethylencetylalkohol 1,8
    Sorbitanmonostearat 0,8
    (B) Triethanolamin 1
    Glycerin 4
    entionisiertes Wasser 75
    Duftstoffe geeignete Menge
  • Die Ölphase (A) bzw. die wässrige Phase (B) wurden auf 85°C erwärmt. Anschliessend wurden (A) und (B) vermischt und gerührt, um bei der gleichen Temperatur ein Emulgat zu bekommen. Nachdem die Mischung auf Normaltemperatur heruntergekühlt worden war, wurde ein Haartonikum hergestellt.
  • Das hergestellte Haartonikum wurde in eine Flasche mit 0,03% DNA gegossen. Die Flasche wurde verschlossen und bei 37°C für Konservierungstests aufbewahrt. 0,1% Ethyl-p-hydroxybenzoat wurde zu dem Haartonikum als Kontrolle anstelle der DNA gegeben. Die Ergebnisse sind in Tabelle 9 gezeigt. TABELLE 9
    Figure 00160001
  • +:
    Pilze traten auf
  • Die Ergebnisse zeigen, dass die Zugabe von 0,03% DNA zum Schutz eines Haartonikums vom Milchlotionstyp gegenüber Pilzinfektionen wirksam war.

Claims (31)

  1. Verfahren zur Unterdrückung des Wachstums von eukaryotischen Mikroorganismen, umfassend den Schritt des In-Kontakt-Bringens dieses eukaryotischen Mikroorganismus mit einem DNA-Extrakt eines prokaryotischen Mikroorganismus.
  2. Verfahren gemäss Anspruch 1, wobei der DNA-Extrakt eine Nukleotidsequenz von mindestens 1.000 Basen hat.
  3. Verfahren gemäss Anspruch 1 oder 2, wobei der prokaryotische Mikroorganismus ausgewählt ist aus gram-positiven Bakterien und gram-negativen Bakterien.
  4. Verfahren gemäss Anspruch 1 oder 2, wobei der prokaryotische Mikroorganismus ausgewählt ist aus Escherichia coli, Bacillusbakterien, Lactobacillus, Pseudomonasbakterien und Sphingomonasbakterien.
  5. Verfahren gemäss Anspruch 4, wobei der prokaryotische Mikroorganismus Bacillus natto ist.
  6. Verfahren gemäss Anspruch 4, wobei der prokaryotische Mikroorganismus Lactobacillus acidophilus ist.
  7. Verfahren gemäss einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei der eukaryotische Mikroorganismus ausgewählt ist aus Hefen und filamentösen Pilzen.
  8. Verfahren gemäss Anspruch 7, wobei der eukaryotische Mikroorganismus ausgewählt ist aus Saccharomyces cerevisiae, Candida albicans, Aspergillus niger und Aspergillus fumigatus.
  9. Verfahren gemäss einem der vorherigen Ansprüche, wobei die Sequenz CG mit einer durchschnittlichen Frequenz von mindestens einmal pro 17 Basen in dem DNA-Extrakt auftritt.
  10. Verfahren gemäss Anspruch 9, wobei diese durchschnittliche Frequenz mindestens einmal pro 2 Basen ist.
  11. Verfahren gemäss einem der vorherigen Ansprüche, wobei der eukaryotische Mikroorganismus in einem Nahrungsmittel enthalten ist.
  12. Verfahren gemäss einem der Ansprüche 1 bis 10, wobei der eukaryotische Mikroorganismus in einem kosmetischen Produkt enthalten ist.
  13. Verfahren gemäss einem der Ansprüche 11 oder 12, wobei der eukaryotische Mikroorganismus ein Humanpathogener Mikroorganismus ist.
  14. Verfahren gemäss einem der Ansprüche 1 bis 10, wobei der eukaryotische Mikroorganismus auf einer Pflanze ist.
  15. Verfahren gemäss Anspruch 14, wobei der eukaryotische Mikroorganismus ein Pflanzen-pathogener Mikroorganismus ist.
  16. Zusammensetzung mit antimikrobieller Aktivität und umfassend einen prokaryotischen DNA-Extrakt und einen pharmakologisch annehmbaren Träger.
  17. Zusammensetzung gemäss Anspruch 16, wobei der Träger ein pharmazeutisch annehmbarer für Menschen ist.
  18. Zusammensetzung gemäss Anspruch 16, wobei der Träger ein pharmazeutisch annehmbarer für nicht-humane Tiere ist.
  19. Zusammensetzung gemäss Anspruch 18, wobei der Träger ein pharmakologisch annehmbarer für Fische ist.
  20. Zusammensetzung gemäss Anspruch 16, wobei der Träger ein pharmakologisch annehmbarer gegenüber Pflanzen ist.
  21. Kosmetisches Produkt, umfassend einen prokaryotischen DNA-Extrakt als antimikrobielles Mittel.
  22. Nahrungsmittelprodukt, umfassend einen prokaryotischen DNA-Extrakt als antimikrobielles Mittel.
  23. Zusammensetzung gemäss einem der Ansprüche 16 bis 20 oder ein Produkt gemäss Anspruch 21 oder 22, wobei der DNA-Extrakt eine Nukleotidsequenz, enthaltend mindestens 1.000 Basen, hat.
  24. Zusammensetzung gemäss einem der Ansprüche 16 bis 20 oder ein Produkt gemäss Anspruch 21 oder 22, wobei der prokaryotische Mikroorganismus ausgewählt ist aus gram-positiven oder gram-negativen Bakterien.
  25. Zusammensetzung gemäss einem der Ansprüche 16 bis 20 oder ein Produkt gemäss Anspruch 21 oder 22, wobei der prokaryotische Mikroorganismus ausgewählt ist aus Escherichia coli, Bacillusbakterien, Lactobacillusbakterien, Pseudomonasbakterien und Sphingomonasbakterien.
  26. Zusammensetzung oder Produkt gemäss Anspruch 25, wobei der prokaryotische Mikroorganismus Bacillus natto ist.
  27. Zusammensetzung oder Produkt gemäss Anspruch 25, wobei der prokaryotische Mikroorganismus Lactobacillus acidophilus ist.
  28. Zusammensetzung gemäss einem der Ansprüche 16 bis 20 oder ein Produkt gemäss Anspruch 21 oder 22, wobei die Sequenz CG in einer durchschnittlichen Häufigkeit von mindestens einmal pro 17 Basen in dem DNA-Extrakt auftritt.
  29. Zusammensetzung oder Produkt gemäss Anspruch 28, wobei die durchschnittliche Häufigkeit mindestens einmal pro 2 Basen ist.
  30. Prokaryotischer DNA-Extrakt zur Verwendung als antimikrobielles Mittel für Menschen oder nicht-menschliche Tiere.
  31. Verwendung eines prokaryotischen DNA-Extrakts zur Herstellung eines antimikrobiellen Mittels für Menschen oder nicht-menschliche Tiere.
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