JPH11267421A - 血液浄化材料 - Google Patents
血液浄化材料Info
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- JPH11267421A JPH11267421A JP10072329A JP7232998A JPH11267421A JP H11267421 A JPH11267421 A JP H11267421A JP 10072329 A JP10072329 A JP 10072329A JP 7232998 A JP7232998 A JP 7232998A JP H11267421 A JPH11267421 A JP H11267421A
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Abstract
(57)【要約】
【課題】血液中に含まれる病因物質およびその関連物質
の少なくとも一部を除去する材料の提供。 【解決手段】遊離のアミノ基、および抗凝固活性物質が
存在する基材表面を持ち、目詰まりすることなく、血液
中の病因物質の少なくとも一部を除去して血液を浄化す
ることを特徴とする血液浄化材料。
の少なくとも一部を除去する材料の提供。 【解決手段】遊離のアミノ基、および抗凝固活性物質が
存在する基材表面を持ち、目詰まりすることなく、血液
中の病因物質の少なくとも一部を除去して血液を浄化す
ることを特徴とする血液浄化材料。
Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】本発明は、血液凝固の問題な
く、血液のｐＨの変動を抑え、血液中に含まれる病因物
質およびその関連物質の少なくとも一部を除去する材料
に関する。
く、血液のｐＨの変動を抑え、血液中に含まれる病因物
質およびその関連物質の少なくとも一部を除去する材料
に関する。
【０００２】
【従来の技術】血液中の病因物質としてウイルスや感染
細胞およびＬＤＬ（Low-Density Lipoprotein)やエンド
トキシン等多くの物が挙げられ、これらを除去する手段
が開発されている。これら多くの手段は、特開平３−１
２３６３０号に記載されているようなカチオン性化合物
を表面に有する材料や特開平２−３６８７８号のように
表面に-COOH や-SO3H 等を有し、表面のｐＨが２．５〜
６．９また７．４〜１０．５である材料、すなわち表面
が弱酸性または弱塩基性を示す固体物質からなるものが
挙げられている。これらの技術に共通する問題として材
料と血液が接触した際の血液蛋白質の変性により、血液
凝固の危険性があることが挙げられる。実際に特開平２
−３６８７８号に記載されている方法では、血液を除去
剤に接触させると血液のｐＨが変化することが確認され
ており、血液成分蛋白質の変性等が生じ、必ずしも血液
にとって好ましい条件ではなかった。該表面を塩形成す
るなどの方法で中性にし、血液凝固は防止できるが、特
開平２−３６８７８号においては、表面に存在するアニ
オン性官能基が塩を形成している場合には、病因物質の
除去ができないことが報告されている。
細胞およびＬＤＬ（Low-Density Lipoprotein)やエンド
トキシン等多くの物が挙げられ、これらを除去する手段
が開発されている。これら多くの手段は、特開平３−１
２３６３０号に記載されているようなカチオン性化合物
を表面に有する材料や特開平２−３６８７８号のように
表面に-COOH や-SO3H 等を有し、表面のｐＨが２．５〜
６．９また７．４〜１０．５である材料、すなわち表面
が弱酸性または弱塩基性を示す固体物質からなるものが
挙げられている。これらの技術に共通する問題として材
料と血液が接触した際の血液蛋白質の変性により、血液
凝固の危険性があることが挙げられる。実際に特開平２
−３６８７８号に記載されている方法では、血液を除去
剤に接触させると血液のｐＨが変化することが確認され
ており、血液成分蛋白質の変性等が生じ、必ずしも血液
にとって好ましい条件ではなかった。該表面を塩形成す
るなどの方法で中性にし、血液凝固は防止できるが、特
開平２−３６８７８号においては、表面に存在するアニ
オン性官能基が塩を形成している場合には、病因物質の
除去ができないことが報告されている。
【０００３】
【発明が解決しようとする課題】本発明は、病因物質お
よびその関連物質を血液凝固の危険性が無く、選択的に
除去する材料を提供しようとする。
よびその関連物質を血液凝固の危険性が無く、選択的に
除去する材料を提供しようとする。
【０００４】
【課題を解決するための手段】すなわち、本発明は、以
下の血液浄化材料を提供する。 （１）遊離のアミノ基、および抗凝固活性物質が存在す
る基材表面を持ち、血液中の病因物質の少なくとも一部
を除去して血液を浄化することを特徴とする血液浄化材
料。 （２）前記遊離のアミノ基の量が０．１×１０-4ｅｑ／
ｇ超である（１）に記載の血液浄化材料。 （３）前記病因物質が、ウイルス、ウイルス構成物質、
感染細胞、および生体産生物質である（１）または
（２）に記載の血液浄化材料。 （４）前記抗凝固活性物質がヘパリンである（１）〜
（３）のいずれかに記載の血液浄化材料。 （５）前記基材が平均孔径０．１〜１０μｍの多孔質膜
であり、該多孔質膜表面にポリアミン化合物を固定化し
たことを特徴とする（１）〜（４）のいずれかに記載の
血液浄化材料。 （６）前記基材が平均粒径２５〜３００μｍの多孔質ビ
ーズであり、該多孔質表面にポリアミン化合物を固定化
したことを特徴とする（１）〜（４）のいずれかに記載
の血液浄化材料。 （７）前記基材が繊維径が平均１００μｍ以下の不織布
であり、該不織布表面にポリアミン化合物を固定化した
ことを特徴とする（１）〜（４）のいずれかに記載の血
液浄化材料。 本発明により、併せて、本発明の血液浄化材料を用いる
血液中のウイルス感染価を検出限界以下にする方法も提
供される。
下の血液浄化材料を提供する。 （１）遊離のアミノ基、および抗凝固活性物質が存在す
る基材表面を持ち、血液中の病因物質の少なくとも一部
を除去して血液を浄化することを特徴とする血液浄化材
料。 （２）前記遊離のアミノ基の量が０．１×１０-4ｅｑ／
ｇ超である（１）に記載の血液浄化材料。 （３）前記病因物質が、ウイルス、ウイルス構成物質、
感染細胞、および生体産生物質である（１）または
（２）に記載の血液浄化材料。 （４）前記抗凝固活性物質がヘパリンである（１）〜
（３）のいずれかに記載の血液浄化材料。 （５）前記基材が平均孔径０．１〜１０μｍの多孔質膜
であり、該多孔質膜表面にポリアミン化合物を固定化し
たことを特徴とする（１）〜（４）のいずれかに記載の
血液浄化材料。 （６）前記基材が平均粒径２５〜３００μｍの多孔質ビ
ーズであり、該多孔質表面にポリアミン化合物を固定化
したことを特徴とする（１）〜（４）のいずれかに記載
の血液浄化材料。 （７）前記基材が繊維径が平均１００μｍ以下の不織布
であり、該不織布表面にポリアミン化合物を固定化した
ことを特徴とする（１）〜（４）のいずれかに記載の血
液浄化材料。 本発明により、併せて、本発明の血液浄化材料を用いる
血液中のウイルス感染価を検出限界以下にする方法も提
供される。
【０００５】
【発明の実施の形態】以下に本発明を詳細に説明する。
本発明の血液浄化材料は、基材表面に遊離のアミノ基と
抗凝固活性物質を有する。血液中の病因物質の少なくと
も一部を除去するとは、血液中のウイルスやこれらの感
染細胞およびこれらから生成される生理活性物質等の病
因物質を基材が除去する構造を有する場合をいい、多孔
質材、ビーズ、不織布等のように基材そのものの形状が
血液中の病因物質のフィルターとして働く。本発明の血
液浄化材料は、上述のフィルター構造に加えて、遊離の
アミノ基を基材表面に有することにより、病因物質を吸
着または不活性化させる機構を有する。
本発明の血液浄化材料は、基材表面に遊離のアミノ基と
抗凝固活性物質を有する。血液中の病因物質の少なくと
も一部を除去するとは、血液中のウイルスやこれらの感
染細胞およびこれらから生成される生理活性物質等の病
因物質を基材が除去する構造を有する場合をいい、多孔
質材、ビーズ、不織布等のように基材そのものの形状が
血液中の病因物質のフィルターとして働く。本発明の血
液浄化材料は、上述のフィルター構造に加えて、遊離の
アミノ基を基材表面に有することにより、病因物質を吸
着または不活性化させる機構を有する。
【０００６】血液浄化材料表面の遊離のアミノ基とは、
抗凝固活性物質と塩を形成していない遊離の状態で残存
するアミノ基を指す。アミノ基としては、１級、２級、
3 級、4 級のアミノ基を例示でき、アミノ基を有するポ
リアミン化合物のアミノ基もこれらに含まれる。アミノ
基は、分子内に複数のアミノ基を有するポリアミン化合
物によって基材表面に固定される。ポリアミン化合物
は、特に限定されないが、アジリジン化合物等のアルキ
レンイミン化合物や１級、２級アミノ基を分子内に有す
る重合体または共重合体が例示される。アジリジン化合
物とは、１分子中にアジリジン基を少なくとも１個含有
する化合物を構成成分とする重合体または共重合体であ
り、このアジリジン基は、アルキル基やその外の置換基
で置換されていても構わない。アルキレンイミン化合物
として、好ましくは、エチレンイミン、プロピレンイミ
ン、ブチレンイミン、Ｎ―ヒドロキシエチルエチレンイ
ミン、Ｎ−アミノエチルエチレンイミン等のモノマー単
位を含んだ重合体、共重合体が挙げられる。また、１
級、２級アミノ基を分子内に有する重合体や共重合体と
してアリルアミン、ビニルアミン等のモノマー構成単位
を持つ重合体や共重合体が好適例として挙げられる。ポ
リアミン化合物として、特に好ましいのは、ポリエチレ
ンイミンおよびポリプロピレンイミンである。
抗凝固活性物質と塩を形成していない遊離の状態で残存
するアミノ基を指す。アミノ基としては、１級、２級、
3 級、4 級のアミノ基を例示でき、アミノ基を有するポ
リアミン化合物のアミノ基もこれらに含まれる。アミノ
基は、分子内に複数のアミノ基を有するポリアミン化合
物によって基材表面に固定される。ポリアミン化合物
は、特に限定されないが、アジリジン化合物等のアルキ
レンイミン化合物や１級、２級アミノ基を分子内に有す
る重合体または共重合体が例示される。アジリジン化合
物とは、１分子中にアジリジン基を少なくとも１個含有
する化合物を構成成分とする重合体または共重合体であ
り、このアジリジン基は、アルキル基やその外の置換基
で置換されていても構わない。アルキレンイミン化合物
として、好ましくは、エチレンイミン、プロピレンイミ
ン、ブチレンイミン、Ｎ―ヒドロキシエチルエチレンイ
ミン、Ｎ−アミノエチルエチレンイミン等のモノマー単
位を含んだ重合体、共重合体が挙げられる。また、１
級、２級アミノ基を分子内に有する重合体や共重合体と
してアリルアミン、ビニルアミン等のモノマー構成単位
を持つ重合体や共重合体が好適例として挙げられる。ポ
リアミン化合物として、特に好ましいのは、ポリエチレ
ンイミンおよびポリプロピレンイミンである。
【０００７】本発明の血液浄化材料の表面に存在する抗
凝固活性物質と結合していない遊離のアミノ基量は、過
塩素酸による非水逆滴定によって求められる。固定され
る遊離のアミノ基の存在量は、除去される病因物質およ
びその関連物質の量に影響し、用途によって選択される
が、０．１×１０-4ｅｑ／ｇ超であり、好ましくは０．
１×１０-4超〜３×１０-4ｅｑ／ｇである。０．１×１
０-4ｅｑ／ｇ以下だと病因物質の除去効果が十分でな
い。３×１０-4ｅｑ／ｇを超えるとそれ以上効果は向上
しない。
凝固活性物質と結合していない遊離のアミノ基量は、過
塩素酸による非水逆滴定によって求められる。固定され
る遊離のアミノ基の存在量は、除去される病因物質およ
びその関連物質の量に影響し、用途によって選択される
が、０．１×１０-4ｅｑ／ｇ超であり、好ましくは０．
１×１０-4超〜３×１０-4ｅｑ／ｇである。０．１×１
０-4ｅｑ／ｇ以下だと病因物質の除去効果が十分でな
い。３×１０-4ｅｑ／ｇを超えるとそれ以上効果は向上
しない。
【０００８】抗凝固活性物質としては、抗凝固活性を有
する化合物であれば、特に限定されないが、ヘパリン、
フサン、ＦＯＹ（gabexate mesilate)、アルガトロバ
ン、クエン酸等が好適例として挙げられ、好ましくはヘ
パリンである。抗凝固活性物質は、徐放されるか、該材
料表面に存在したままで抗凝固活性を発現する。例えば
抗凝固活性物質としてヘパリンを使用する場合は、血液
浄化材料の表面に存在する抗凝固活性物質の量は好まし
くはテストチームヘパリン（第一化学薬品）を使用し、
求めたヘパリン活性で０．１×１０-2〜２．０×１０-2
Ｕ／ｃｍ2 ｍｏｌ／ｇ、より好ましくは０．０５×１０
-2×１．０×１０-2Ｕ／ｃｍ2 ｍｏｌ／ｇである。
する化合物であれば、特に限定されないが、ヘパリン、
フサン、ＦＯＹ（gabexate mesilate)、アルガトロバ
ン、クエン酸等が好適例として挙げられ、好ましくはヘ
パリンである。抗凝固活性物質は、徐放されるか、該材
料表面に存在したままで抗凝固活性を発現する。例えば
抗凝固活性物質としてヘパリンを使用する場合は、血液
浄化材料の表面に存在する抗凝固活性物質の量は好まし
くはテストチームヘパリン（第一化学薬品）を使用し、
求めたヘパリン活性で０．１×１０-2〜２．０×１０-2
Ｕ／ｃｍ2 ｍｏｌ／ｇ、より好ましくは０．０５×１０
-2×１．０×１０-2Ｕ／ｃｍ2 ｍｏｌ／ｇである。
【０００９】アミノ基と抗凝固活性物質は、互いに塩を
形成していなくてもよいが、塩を形成していることが好
ましい。本発明では抗凝固活性物質と塩を形成していな
い遊離のアミノ基が存在する。抗凝固活性物質と塩を形
成していないアミノ基すなわち、アミノ基が遊離の状態
で残存している場合は、アミノ基は単独で−COOH、−SO
3HやHCl などと塩を形成するのが好ましい。塩を形成し
ていると、血液のｐＨ変化を抑えることができるからで
ある。遊離のアミノ基と抗凝固活性物質は血液に触れた
ときにそれぞれの機能を発揮すると考えられる。
形成していなくてもよいが、塩を形成していることが好
ましい。本発明では抗凝固活性物質と塩を形成していな
い遊離のアミノ基が存在する。抗凝固活性物質と塩を形
成していないアミノ基すなわち、アミノ基が遊離の状態
で残存している場合は、アミノ基は単独で−COOH、−SO
3HやHCl などと塩を形成するのが好ましい。塩を形成し
ていると、血液のｐＨ変化を抑えることができるからで
ある。遊離のアミノ基と抗凝固活性物質は血液に触れた
ときにそれぞれの機能を発揮すると考えられる。
【００１０】本発明の血液浄化材料の基材は、特に限定
されないが、セルロースやその誘導体など天然高分子系
材料、ポリオレフィン、ポリアミド、ポリウレタン、ポ
リエステル、ポリサルホン、ポリアクリロニトリル、ま
たはポリフッ化ビニリデン等の高分子からなり、多孔質
体や網目状構造をとるものが例示される。好ましくは、
ポリプロピレンからなるものが挙げられる。
されないが、セルロースやその誘導体など天然高分子系
材料、ポリオレフィン、ポリアミド、ポリウレタン、ポ
リエステル、ポリサルホン、ポリアクリロニトリル、ま
たはポリフッ化ビニリデン等の高分子からなり、多孔質
体や網目状構造をとるものが例示される。好ましくは、
ポリプロピレンからなるものが挙げられる。
【００１１】本発明の血液浄化材料の基材が、多孔質膜
である場合は、その平均孔径は、ASTM-F316 に準拠した
パームポロメーター（ポーラスマテリアル社製）を用い
て求めた値で、０．１〜１０μｍであるのが好ましい。
孔径が０．１μｍ未満だと十分なろ過量が得られず、目
詰まりを起こしやすく、１０μｍを超えると除去能力が
低下するからである。また、本発明の血液浄化材料から
なる多孔質膜に対する透水量は、２５±２℃、０．７kg
/cm2の圧力下で、１０ml/min/m2/mmHg以上であること
が、ろ過圧を低くできるため好ましい。
である場合は、その平均孔径は、ASTM-F316 に準拠した
パームポロメーター（ポーラスマテリアル社製）を用い
て求めた値で、０．１〜１０μｍであるのが好ましい。
孔径が０．１μｍ未満だと十分なろ過量が得られず、目
詰まりを起こしやすく、１０μｍを超えると除去能力が
低下するからである。また、本発明の血液浄化材料から
なる多孔質膜に対する透水量は、２５±２℃、０．７kg
/cm2の圧力下で、１０ml/min/m2/mmHg以上であること
が、ろ過圧を低くできるため好ましい。
【００１２】血液浄化材料の該基材が多孔質ビーズであ
る場合、平均粒径２５〜３００μｍの多孔質ビーズであ
ることが好ましい。多孔質ビーズの平均粒子径が２５μ
ｍより小さいと、ろ過圧が高くなり、好ましくない。ま
た、３００μｍを超えると体積当たりの表面積が小さく
なり、十分なアミノ基を固定できない。さらに、該多孔
質表面にエポキシ基やシアノジェンハライド基、ホルミ
ル基、カルボキシル基、酸クロライド等の官能基があっ
てもよい。
る場合、平均粒径２５〜３００μｍの多孔質ビーズであ
ることが好ましい。多孔質ビーズの平均粒子径が２５μ
ｍより小さいと、ろ過圧が高くなり、好ましくない。ま
た、３００μｍを超えると体積当たりの表面積が小さく
なり、十分なアミノ基を固定できない。さらに、該多孔
質表面にエポキシ基やシアノジェンハライド基、ホルミ
ル基、カルボキシル基、酸クロライド等の官能基があっ
てもよい。
【００１３】本発明の血液浄化材料の基材が、不織布で
ある場合は、その繊維径が平均１００μｍ以下で、目付
量が５０〜２５０ｇ／ｍ2 であることが好ましい。繊維
径が平均１００μｍを超えると基材の表面積確保が困難
となり、該基材表面にポリアミン化合物を固定化するこ
とが困難となる。また、不織布はモノフィラメントでも
マルチフィラメントでもよい。さらに、異形フィラメン
トでも多孔質フィラメントでもよい。
ある場合は、その繊維径が平均１００μｍ以下で、目付
量が５０〜２５０ｇ／ｍ2 であることが好ましい。繊維
径が平均１００μｍを超えると基材の表面積確保が困難
となり、該基材表面にポリアミン化合物を固定化するこ
とが困難となる。また、不織布はモノフィラメントでも
マルチフィラメントでもよい。さらに、異形フィラメン
トでも多孔質フィラメントでもよい。
【００１４】アミノ基の血液浄化材料表面への固定法
は、血液と接触しても溶出しなければ、どのような方法
でも良く、特に限定されないが、例えば、コーティング
やプラズマグラフト法、基材上に存在するエポキシ基、
シアノジェンハライド基、ホルミル基、カルボキシル
基、または酸クロライド等よって表面に固定されてもよ
いく、カルボジイミドの様なカップリング剤を介して固
定されてもよい。
は、血液と接触しても溶出しなければ、どのような方法
でも良く、特に限定されないが、例えば、コーティング
やプラズマグラフト法、基材上に存在するエポキシ基、
シアノジェンハライド基、ホルミル基、カルボキシル
基、または酸クロライド等よって表面に固定されてもよ
いく、カルボジイミドの様なカップリング剤を介して固
定されてもよい。
【００１５】抗凝固活性物質は、溶媒に溶解後、塗布、
スピンコーティング、ディッピング、噴霧などの被覆方
法により医療器具の表面に被覆される。
スピンコーティング、ディッピング、噴霧などの被覆方
法により医療器具の表面に被覆される。
【００１６】一例を挙げると、ポリオレフィン、塩ビ等
の樹脂材料をプラズマ処理し、その後アクリレート基、
グリシジル基等を有する有機化合物ガスと接触させて、
これらの基を表面にグラフト重合し、これをポリアミン
化合物水溶液に浸漬してアミノ基を表面に固定し、また
はアミノ基を気相重合して固定し、さらにヘパリン水溶
液に浸漬してアミノ基とヘパリンのＮ−硫酸基とを結合
させる。
の樹脂材料をプラズマ処理し、その後アクリレート基、
グリシジル基等を有する有機化合物ガスと接触させて、
これらの基を表面にグラフト重合し、これをポリアミン
化合物水溶液に浸漬してアミノ基を表面に固定し、また
はアミノ基を気相重合して固定し、さらにヘパリン水溶
液に浸漬してアミノ基とヘパリンのＮ−硫酸基とを結合
させる。
【００１７】本発明の血液浄化材料は、病因物質および
その関連物質の不活化もしくは除去に使用でき、血液中
のウイルス感染価、すなわち非感染細胞を血液添加培地
で培養した後、娘ウイルス検出が検出されるか否かによ
り求められる感染価を検出限界以下にすることができ
る。ここで感染価とは娘ＨＩＶが検出された血漿の希釈
倍率であるが、詳細は実施例に記す。血液中の病因物質
には、その関連物質も含まれ、ウイルス、ウイルス構成
物、感染細胞、および生体産生物質等が挙げられる。よ
り具体的にはＨＩＶ、ＨＣＶ、ＨＢＶ等のウイルスやこ
れらの感染細胞およびＬＤＬ (Low-Density Lipoprotei
n)やエンドトキシン等多くの物質が例示される。また、
その関連物質とは、例えば、ＨＩＶを例に挙げるなら
ば、ＨＩＶ感染細胞、ＨＩＶを構成する蛋白質、それら
と生体成分との複合体もしくは、ＨＩＶに感染して生成
されるＩＬ−１，ＩＬ−６，ＴＮＦなどのサイトカイン
等を例示できる。
その関連物質の不活化もしくは除去に使用でき、血液中
のウイルス感染価、すなわち非感染細胞を血液添加培地
で培養した後、娘ウイルス検出が検出されるか否かによ
り求められる感染価を検出限界以下にすることができ
る。ここで感染価とは娘ＨＩＶが検出された血漿の希釈
倍率であるが、詳細は実施例に記す。血液中の病因物質
には、その関連物質も含まれ、ウイルス、ウイルス構成
物、感染細胞、および生体産生物質等が挙げられる。よ
り具体的にはＨＩＶ、ＨＣＶ、ＨＢＶ等のウイルスやこ
れらの感染細胞およびＬＤＬ (Low-Density Lipoprotei
n)やエンドトキシン等多くの物質が例示される。また、
その関連物質とは、例えば、ＨＩＶを例に挙げるなら
ば、ＨＩＶ感染細胞、ＨＩＶを構成する蛋白質、それら
と生体成分との複合体もしくは、ＨＩＶに感染して生成
されるＩＬ−１，ＩＬ−６，ＴＮＦなどのサイトカイン
等を例示できる。
【００１８】本発明の血液浄化材料は、血漿のように多
くの蛋白質を含む溶液からも病因物質および関連物質を
選択的に除去することを特徴とする。ＨＩＶを例に挙げ
ると、ＡＩＤＳ治療には、ウイルス負荷の低減、ウイル
ス再感染の阻止、ウイルス複製の阻止が重要とされるの
で、本発明の血液浄化材料をＨＩＶ感染者の治療に利用
することができる。ＨＩＶ血症となった患者の体液から
ＨＩＶやその関連物質を除去することは、ウイルス負荷
の低減やウイルス再感染の阻止に役立ち、患者のＱＯＬ
の改善や病態進行の抑制に効果が現れる可能性がある。
くの蛋白質を含む溶液からも病因物質および関連物質を
選択的に除去することを特徴とする。ＨＩＶを例に挙げ
ると、ＡＩＤＳ治療には、ウイルス負荷の低減、ウイル
ス再感染の阻止、ウイルス複製の阻止が重要とされるの
で、本発明の血液浄化材料をＨＩＶ感染者の治療に利用
することができる。ＨＩＶ血症となった患者の体液から
ＨＩＶやその関連物質を除去することは、ウイルス負荷
の低減やウイルス再感染の阻止に役立ち、患者のＱＯＬ
の改善や病態進行の抑制に効果が現れる可能性がある。
【００１９】本発明の血液浄化材料は、吸着機能を有す
る断片膜、人工透析器、献血装置、治療器、血液製剤製
造用途などに組み合わせて利用できる。
る断片膜、人工透析器、献血装置、治療器、血液製剤製
造用途などに組み合わせて利用できる。
【００２０】
【実施例】まず、病因物質としてＨＩＶを例に実施例を
示すが、ＨＩＶおよびその関連物質除去性能は以下に示
すＨＩＶ感染価の希釈倍率であらわす。濾過前後の血漿
を１０％ＦＣＳを含むRPMI1640を用いて２倍希釈づつの
多段階希釈を行い、これにヒトリンパ球を加え、培養
し、感染成立の有無をＨＩＶ抗原（ｐ２４抗原）の検出
で確認し、感染が確認された希釈倍率の値を感染価とす
る。この測定では、希釈倍率が高いほど、ＨＩＶの量が
多く、検出されなければ、ＨＩＶは存在しない（The Ne
w England Journal of Medicine,324,954-960(1991))。
示すが、ＨＩＶおよびその関連物質除去性能は以下に示
すＨＩＶ感染価の希釈倍率であらわす。濾過前後の血漿
を１０％ＦＣＳを含むRPMI1640を用いて２倍希釈づつの
多段階希釈を行い、これにヒトリンパ球を加え、培養
し、感染成立の有無をＨＩＶ抗原（ｐ２４抗原）の検出
で確認し、感染が確認された希釈倍率の値を感染価とす
る。この測定では、希釈倍率が高いほど、ＨＩＶの量が
多く、検出されなければ、ＨＩＶは存在しない（The Ne
w England Journal of Medicine,324,954-960(1991))。
【００２１】（実施例１）平均孔径０．４５μｍ、膜厚
８０μｍのポリプロピレン製多孔質膜にアルゴンプラズ
マ（１００Ｗ、０．１Ｔｏｒｒ、１５秒間) を照射した
後、２−メトキシエチルアクリレートガス（１．０Ｔｏ
ｒｒ）に３分間、さらに、グリシジルメタクリレートガ
ス（０．７Ｔｏｒｒ) に３分間接触させて表面グラフト
重合を行い、表面にエポキシ基を有する親水性多孔質膜
を得た。続いて、０．３ｗｔ％のポリエチレンイミン
（分子量70,000）と０．０１ｗｔ％のピリジンを含む水
溶液に１０秒間浸漬、さらに、９０℃、１０分間固定化
を行い、膜表面にポリエチレンイミンを固定化した。膜
はその後８時間水洗した。
８０μｍのポリプロピレン製多孔質膜にアルゴンプラズ
マ（１００Ｗ、０．１Ｔｏｒｒ、１５秒間) を照射した
後、２−メトキシエチルアクリレートガス（１．０Ｔｏ
ｒｒ）に３分間、さらに、グリシジルメタクリレートガ
ス（０．７Ｔｏｒｒ) に３分間接触させて表面グラフト
重合を行い、表面にエポキシ基を有する親水性多孔質膜
を得た。続いて、０．３ｗｔ％のポリエチレンイミン
（分子量70,000）と０．０１ｗｔ％のピリジンを含む水
溶液に１０秒間浸漬、さらに、９０℃、１０分間固定化
を行い、膜表面にポリエチレンイミンを固定化した。膜
はその後８時間水洗した。
【００２２】この膜を３０分間、５Ｕ／ｍｌのヘパリン
生理食塩水溶液に浸漬した後、ニュークリポア製スイン
ロックフィルターホルダー（φ２５mm）にセットし、Ｈ
ＩＶ陽性の患者から採血したヒト血漿３ｍｌを非加圧濾
過した。濾過前後のＨＩＶ感染価を測定し、結果を表１
に示した。
生理食塩水溶液に浸漬した後、ニュークリポア製スイン
ロックフィルターホルダー（φ２５mm）にセットし、Ｈ
ＩＶ陽性の患者から採血したヒト血漿３ｍｌを非加圧濾
過した。濾過前後のＨＩＶ感染価を測定し、結果を表１
に示した。
【００２３】（実施例２）繊維径１μｍ、平均孔径５．
２μｍ、透水量６３８ｍｌ／ｍｉｎ／ｍ2 （０．７kg/c
m2) のポリプロピレン製不織布（東燃タピルス製）に実
施例１と同様な方法で表面グラフト重合を行い、表面に
エポキシ基を有する親水性不織布を得た。続いて、０．
３ｗｔ％のポリエチレンイミン（分子量70,000）と０．
０１ｗｔ％のピリジンを含む水溶液に１０秒間浸漬、さ
らに、９０℃、１０分間固定化を行い、不織布表面にポ
リエチレンイミンを固定化した。さらにホルダーに不織
布をセットする前に３０分間、５Ｕ／ｍｌのヘパリン生
理食塩水溶液に浸漬した。この不織布を３枚重ねて実施
例１と同様な方法で濾過前後のＨＩＶ感染価を測定し、
結果を表１に示した。
２μｍ、透水量６３８ｍｌ／ｍｉｎ／ｍ2 （０．７kg/c
m2) のポリプロピレン製不織布（東燃タピルス製）に実
施例１と同様な方法で表面グラフト重合を行い、表面に
エポキシ基を有する親水性不織布を得た。続いて、０．
３ｗｔ％のポリエチレンイミン（分子量70,000）と０．
０１ｗｔ％のピリジンを含む水溶液に１０秒間浸漬、さ
らに、９０℃、１０分間固定化を行い、不織布表面にポ
リエチレンイミンを固定化した。さらにホルダーに不織
布をセットする前に３０分間、５Ｕ／ｍｌのヘパリン生
理食塩水溶液に浸漬した。この不織布を３枚重ねて実施
例１と同様な方法で濾過前後のＨＩＶ感染価を測定し、
結果を表１に示した。
【００２４】（実施例３）平均粒子径２５０μｍのエポ
キシ活性化セルロースビーズを１ｗｔ％のポリエチレン
イミン（分子量70,000）と０．０１ｗｔ％のピリジンを
含む水溶液に浸漬し、６０℃、８時間固定化を行い、ビ
ーズ表面にポリエチレンイミンを固定化した。さらにビ
ーズを３０分間、５Ｕ／ｍｌのヘパリン生理食塩水溶液
に浸漬した。このビーズ０．２ｍｌをφ０．２ｃｍ×長
さ１ｃｍのクロマト管に充填し、ＨＩＶ陽性の患者から
採血したヒト血漿３ｍｌを濾過し、濾過前後のＨＩＶ感
染価を測定し、結果を表１に示した。なお、実施例１〜
３では病因物質のみが選択的に除去され、血液特性の変
化はなかった。
キシ活性化セルロースビーズを１ｗｔ％のポリエチレン
イミン（分子量70,000）と０．０１ｗｔ％のピリジンを
含む水溶液に浸漬し、６０℃、８時間固定化を行い、ビ
ーズ表面にポリエチレンイミンを固定化した。さらにビ
ーズを３０分間、５Ｕ／ｍｌのヘパリン生理食塩水溶液
に浸漬した。このビーズ０．２ｍｌをφ０．２ｃｍ×長
さ１ｃｍのクロマト管に充填し、ＨＩＶ陽性の患者から
採血したヒト血漿３ｍｌを濾過し、濾過前後のＨＩＶ感
染価を測定し、結果を表１に示した。なお、実施例１〜
３では病因物質のみが選択的に除去され、血液特性の変
化はなかった。
【００２５】（比較例１）平均孔径０．０８μｍ、膜厚
８０μｍのポリプロピレン製多孔質膜にも実施例１と同
様な方法で表面グラフト重合を行い、表面にエポキシ基
を有する多孔質膜を得、さらに同様な方法でポリエチレ
ンイミンを固定化したが、ヘパリン溶液には浸漬しなか
った。この膜をニュークリポア製スインロックフィルタ
ーホルダー（φ２５mm）にセットし、ＨＩＶ陽性の患者
から採血したヒト血漿３ｍｌを非加圧下で濾過し、濾過
前後のＨＩＶ感染価を測定し、表１に示した。平均孔径
０．０８μｍの多孔質膜の場合では、目詰まりを起こ
し、血漿が濾過途中で流れなくなった。
８０μｍのポリプロピレン製多孔質膜にも実施例１と同
様な方法で表面グラフト重合を行い、表面にエポキシ基
を有する多孔質膜を得、さらに同様な方法でポリエチレ
ンイミンを固定化したが、ヘパリン溶液には浸漬しなか
った。この膜をニュークリポア製スインロックフィルタ
ーホルダー（φ２５mm）にセットし、ＨＩＶ陽性の患者
から採血したヒト血漿３ｍｌを非加圧下で濾過し、濾過
前後のＨＩＶ感染価を測定し、表１に示した。平均孔径
０．０８μｍの多孔質膜の場合では、目詰まりを起こ
し、血漿が濾過途中で流れなくなった。
【００２６】（比較例２）平均粒子径２０μｍのエポキ
シ活性化セルロースビーズを１ｗｔ％のポリエチレンイ
ミン（分子量70,000）と０．０１ｗｔ％のピリジンを含
む水溶液に浸漬し、６０℃、８時間固定化を行い、ビー
ズ表面にポリエチレンイミンを固定化した。さらにヘパ
リン溶液に実施例３と同じ方法で浸漬した。このビーズ
０．２ｍｌをφ０．２ｃｍ×長さ１ｃｍのクロマト管に
充填し、ＨＩＶ陽性の患者から採血したヒト血漿３ｍｌ
を濾過した。平均粒径２０μｍの多孔質ビーズの場合で
は、目詰まりを起こし、血漿が濾過途中で流れなくなっ
た。
シ活性化セルロースビーズを１ｗｔ％のポリエチレンイ
ミン（分子量70,000）と０．０１ｗｔ％のピリジンを含
む水溶液に浸漬し、６０℃、８時間固定化を行い、ビー
ズ表面にポリエチレンイミンを固定化した。さらにヘパ
リン溶液に実施例３と同じ方法で浸漬した。このビーズ
０．２ｍｌをφ０．２ｃｍ×長さ１ｃｍのクロマト管に
充填し、ＨＩＶ陽性の患者から採血したヒト血漿３ｍｌ
を濾過した。平均粒径２０μｍの多孔質ビーズの場合で
は、目詰まりを起こし、血漿が濾過途中で流れなくなっ
た。
【００２７】（比較例３、４）平均孔径０．４５μｍ、
膜厚８０μｍのポリプロピレン製多孔質膜にアルゴンプ
ラズマ（１００Ｗ、０．１Ｔｏｒｒ、１５秒間) を照射
した後、２−メトキシエチルアクリレートガス（１．０
Ｔｏｒｒ) に３分間接触させて表面グラフト重合を行
い、親水性多孔質膜を得た（比較例３）。同様に繊維径
１μｍ、平均孔径５．２μｍ、透水量６３８ｍｌ／ｍｉ
ｎ／ｃｍ 2 （０．７kg/cm2) のポリプロピレン製不織布
（東燃タピルス製）に比較例３と同様な方法で表面グラ
フト重合を行い、親水性不織布を得た（比較例４）。こ
れらの膜をニュークリポア製スインロックフィルターホ
ルダー（φ２５ｍｍ）にセットし、ＨＩＶ陽性の患者か
ら採血したヒト血漿３ｍｌを非加圧下で濾過し、濾過前
後のＨＩＶ感染価を測定し、結果を表１に示した。
膜厚８０μｍのポリプロピレン製多孔質膜にアルゴンプ
ラズマ（１００Ｗ、０．１Ｔｏｒｒ、１５秒間) を照射
した後、２−メトキシエチルアクリレートガス（１．０
Ｔｏｒｒ) に３分間接触させて表面グラフト重合を行
い、親水性多孔質膜を得た（比較例３）。同様に繊維径
１μｍ、平均孔径５．２μｍ、透水量６３８ｍｌ／ｍｉ
ｎ／ｃｍ 2 （０．７kg/cm2) のポリプロピレン製不織布
（東燃タピルス製）に比較例３と同様な方法で表面グラ
フト重合を行い、親水性不織布を得た（比較例４）。こ
れらの膜をニュークリポア製スインロックフィルターホ
ルダー（φ２５ｍｍ）にセットし、ＨＩＶ陽性の患者か
ら採血したヒト血漿３ｍｌを非加圧下で濾過し、濾過前
後のＨＩＶ感染価を測定し、結果を表１に示した。
【００２８】（比較例５）表面処理していない平均粒子
径２５０μｍのセルロースビーズを０．２ｍｌをφ０．
２ｃｍ×長さ１ｃｍのクロマト管に充填し、ＨＩＶ陽性
の患者から採血したヒト血漿３ｍｌを非加圧下で濾過
し、濾過前後のＨＩＶ感染価を測定し、結果を表１に示
した。
径２５０μｍのセルロースビーズを０．２ｍｌをφ０．
２ｃｍ×長さ１ｃｍのクロマト管に充填し、ＨＩＶ陽性
の患者から採血したヒト血漿３ｍｌを非加圧下で濾過
し、濾過前後のＨＩＶ感染価を測定し、結果を表１に示
した。
【００２９】（比較例６〜８）ヘパリンを固定（浸漬）
しないで実施例１〜３と同様な実験を行なった。３例
共、３０分ほどすると、ろ液の血漿が白濁して一部凝固
した。
しないで実施例１〜３と同様な実験を行なった。３例
共、３０分ほどすると、ろ液の血漿が白濁して一部凝固
した。
【００３０】（比較例９）実施例１と同一の平均孔径
０．４５μｍ、膜厚８０μｍのポリプロピレン製多孔質
膜にアルゴンプラズマ（１００Ｗ、０．１Ｔｏｒｒ、１
５秒間) を照射した後、２−メトキシエチルアクリレー
トガス（１．０Ｔｏｒｒ) に３分間、グリシジルメタク
リレートガス（０．７Ｔｏｒｒ) に３分間接触させて表
面グラフト重合を行い、表面にエポキシ基を有する親水
性多孔質膜を得た。続いて、０．０５ｗｔ％のポリエチ
レンイミン（分子量70,000）と０．０１ｗｔ％のピリジ
ンを含む水溶液に１０秒間浸漬、さらに、９０℃、１０
分間固定化を行い、膜表面にポリエチレンイミンを固定
化した。固定化されたアミン量は、０．１×１０-4ｅｑ
／ｇであった。実施例１と同様な方法でＨＩＶ陽性の患
者から採血したヒト血漿３ｍｌを非加圧下で濾過し、濾
過前後のＨＩＶ感染価を測定し、結果を表１に示した。
０．４５μｍ、膜厚８０μｍのポリプロピレン製多孔質
膜にアルゴンプラズマ（１００Ｗ、０．１Ｔｏｒｒ、１
５秒間) を照射した後、２−メトキシエチルアクリレー
トガス（１．０Ｔｏｒｒ) に３分間、グリシジルメタク
リレートガス（０．７Ｔｏｒｒ) に３分間接触させて表
面グラフト重合を行い、表面にエポキシ基を有する親水
性多孔質膜を得た。続いて、０．０５ｗｔ％のポリエチ
レンイミン（分子量70,000）と０．０１ｗｔ％のピリジ
ンを含む水溶液に１０秒間浸漬、さらに、９０℃、１０
分間固定化を行い、膜表面にポリエチレンイミンを固定
化した。固定化されたアミン量は、０．１×１０-4ｅｑ
／ｇであった。実施例１と同様な方法でＨＩＶ陽性の患
者から採血したヒト血漿３ｍｌを非加圧下で濾過し、濾
過前後のＨＩＶ感染価を測定し、結果を表１に示した。
【００３１】（比較例１０）平均孔径０．４５μｍ、膜
厚８０μのポリプロピレン製多孔質膜表面に実施例１と
同様な方法で２−メトキシエチルアクリレートおよびグ
リシジルメタクリレートを重合させ、表面にエポキシ基
を有する親水性多孔質膜を得た。さらにこの膜をヘパリ
ン濃度０．５ｇ／ｍｌ、ｐＨ１１に調整したヘパリン水
溶液に５０℃、８時間浸漬し、ヘパリンを固定した。過
剰のヘパリンは、８時間水洗して除いた。テストチーム
ヘパリン（第一化学薬品）によって固定されたヘパリン
の活性を求めたところ、６×１０-2Ｕ／ｃｍ2 であっ
た。ヘパリンが固定された膜はニュークリポア製スイン
ロックフィルターホルダー（φ２５ｍｍ）にセットし
た。実施例１と同様にＨＩＶ陽性患者から採血したヒト
血漿３ｍｌを非加圧濾過し、濾過前後のＨＩＶ感染価を
測定した。
厚８０μのポリプロピレン製多孔質膜表面に実施例１と
同様な方法で２−メトキシエチルアクリレートおよびグ
リシジルメタクリレートを重合させ、表面にエポキシ基
を有する親水性多孔質膜を得た。さらにこの膜をヘパリ
ン濃度０．５ｇ／ｍｌ、ｐＨ１１に調整したヘパリン水
溶液に５０℃、８時間浸漬し、ヘパリンを固定した。過
剰のヘパリンは、８時間水洗して除いた。テストチーム
ヘパリン（第一化学薬品）によって固定されたヘパリン
の活性を求めたところ、６×１０-2Ｕ／ｃｍ2 であっ
た。ヘパリンが固定された膜はニュークリポア製スイン
ロックフィルターホルダー（φ２５ｍｍ）にセットし
た。実施例１と同様にＨＩＶ陽性患者から採血したヒト
血漿３ｍｌを非加圧濾過し、濾過前後のＨＩＶ感染価を
測定した。
【００３２】 −：データなし
【００３３】以下の実施例においては病因物質としてエ
ンドトキシンを例に挙げて本発明をさらに詳細に説明す
る。 実施例Ａ 実施例１と同様な方法で膜表面にポリエチレンイミンを
固定した。この膜を用いてエンドトキシンの除去を行な
った。この膜をφ２５ｍｍに打ち抜き、さらに３０分
間、５Ｕ／ｍｌのヘパリン生理食塩水溶液に浸漬した
後、ニュークリポア製スインロックフィルターホルダー
にセットした。一方、エンドトキシン（Ｅ．ｃｏｌｉ
０１１１：Ｂ４）は、健康なボランティアから採血、分
離したヒト血漿に１０００ｐｇ／ｍｌになるように添加
した。このエンドトキシン添加血漿３ｍｌを先述のホル
ダーにセットした膜に濾過した。濾過前後のエンドトキ
シン量をエンドスペシー（生化学工業製）を用いて測定
し、結果を表２に示した。
ンドトキシンを例に挙げて本発明をさらに詳細に説明す
る。 実施例Ａ 実施例１と同様な方法で膜表面にポリエチレンイミンを
固定した。この膜を用いてエンドトキシンの除去を行な
った。この膜をφ２５ｍｍに打ち抜き、さらに３０分
間、５Ｕ／ｍｌのヘパリン生理食塩水溶液に浸漬した
後、ニュークリポア製スインロックフィルターホルダー
にセットした。一方、エンドトキシン（Ｅ．ｃｏｌｉ
０１１１：Ｂ４）は、健康なボランティアから採血、分
離したヒト血漿に１０００ｐｇ／ｍｌになるように添加
した。このエンドトキシン添加血漿３ｍｌを先述のホル
ダーにセットした膜に濾過した。濾過前後のエンドトキ
シン量をエンドスペシー（生化学工業製）を用いて測定
し、結果を表２に示した。
【００３４】実施例Ｂ 繊維径１μｍ、平均孔径５．２μｍ、透水量６３８ｍｌ
／ｍｉｎ／ｍ2 （０．７ｋｇ／ｃｍ2 ）のポリプロピレ
ン製不織布（東燃タピルス製）に実施例１と同様な方法
で不織布表面にポリエチレンイミンを固定化した。さら
に、この不織布を３枚重ねて実施例Ａと同様に３０分
間、５Ｕ／ｍｌのヘパリン生理食塩水溶液に浸漬した
後、濾過前後のエンドトキシン量をエンドスペシー（生
化学工業製）を用いて測定し、結果を表２に示した。
／ｍｉｎ／ｍ2 （０．７ｋｇ／ｃｍ2 ）のポリプロピレ
ン製不織布（東燃タピルス製）に実施例１と同様な方法
で不織布表面にポリエチレンイミンを固定化した。さら
に、この不織布を３枚重ねて実施例Ａと同様に３０分
間、５Ｕ／ｍｌのヘパリン生理食塩水溶液に浸漬した
後、濾過前後のエンドトキシン量をエンドスペシー（生
化学工業製）を用いて測定し、結果を表２に示した。
【００３５】実施例Ｃ 平均粒子径２５０μｍのエポキシ活性化セルロースビー
ズに実施例３と同様な方法でビーズ表面にポリエチレン
イミンを固定化した。さらにビーズを３０分間、５Ｕ／
ｍｌのヘパリン生理食塩水溶液に浸漬した。このビーズ
０．２ｍｌをφ０．２ｃｍ×長さ１ｃｍのクロマト管に
充填し、実施例Ａと同様なエンドトキシン添加血漿３ｍ
ｌを濾過し、濾過前後のエンドトキシン量をエンドスペ
シー（生化学工業製）を用いて測定し、結果を表２に示
した。
ズに実施例３と同様な方法でビーズ表面にポリエチレン
イミンを固定化した。さらにビーズを３０分間、５Ｕ／
ｍｌのヘパリン生理食塩水溶液に浸漬した。このビーズ
０．２ｍｌをφ０．２ｃｍ×長さ１ｃｍのクロマト管に
充填し、実施例Ａと同様なエンドトキシン添加血漿３ｍ
ｌを濾過し、濾過前後のエンドトキシン量をエンドスペ
シー（生化学工業製）を用いて測定し、結果を表２に示
した。
【００３６】比較例Ｄ，Ｅ 平均孔径０．４５μｍ、膜厚８０μｍのポリプロピレン
製多孔質膜にアルゴンプラズマ（１００Ｗ、０．１Ｔｏ
ｒｒ、１５秒間）を照射した後、２−メトキシエチルア
クリレートガス（１．０Ｔｏｒｒ）に３分間接触させて
表面グラフト重合を行い、親水性多孔質膜を得た（比較
例Ｄ：比較例３と同一）。同様に繊維径１μｍ、平均孔
径５．２μｍ、透水量６３８ｍｌ／ｍｉｎ／ｃｍ
2 （０．７ｋｇ／ｃｍ2 ）のポリプロピレン製不織布
（東燃タピルス製）に比較例４と同様な方法で表面グラ
フト重合を行い、親水性不織布を得た。これらの膜をニ
ュークリポア製スインロックフィルターホルダー（φ２
５ｍｍ）にセットし、実施例Ａと同様なエンドトキシン
添加血漿３ｍｌを濾過し、濾過前後のエンドトキシン量
をエンドスペシー（生化学工業製）を用いて測定し、結
果を表２に示した。
製多孔質膜にアルゴンプラズマ（１００Ｗ、０．１Ｔｏ
ｒｒ、１５秒間）を照射した後、２−メトキシエチルア
クリレートガス（１．０Ｔｏｒｒ）に３分間接触させて
表面グラフト重合を行い、親水性多孔質膜を得た（比較
例Ｄ：比較例３と同一）。同様に繊維径１μｍ、平均孔
径５．２μｍ、透水量６３８ｍｌ／ｍｉｎ／ｃｍ
2 （０．７ｋｇ／ｃｍ2 ）のポリプロピレン製不織布
（東燃タピルス製）に比較例４と同様な方法で表面グラ
フト重合を行い、親水性不織布を得た。これらの膜をニ
ュークリポア製スインロックフィルターホルダー（φ２
５ｍｍ）にセットし、実施例Ａと同様なエンドトキシン
添加血漿３ｍｌを濾過し、濾過前後のエンドトキシン量
をエンドスペシー（生化学工業製）を用いて測定し、結
果を表２に示した。
【００３７】比較例Ｆ 未処理の平均粒子径２５０μｍのセルロースビーズ０．
２ｍｌをφ０．２ｃｍ×長さ１ｃｍのクロマト管に充填
し、実施例Ａと同様なエンドトキシン添加血漿３ｍｌを
濾過し、濾過前後のエンドトキシン量をエンドスペシー
（生化学工業製）を用いて測定し、結果を表２に示し
た。
２ｍｌをφ０．２ｃｍ×長さ１ｃｍのクロマト管に充填
し、実施例Ａと同様なエンドトキシン添加血漿３ｍｌを
濾過し、濾過前後のエンドトキシン量をエンドスペシー
（生化学工業製）を用いて測定し、結果を表２に示し
た。
【００３８】
【００３９】
【発明の効果】本発明によれば、血液凝固の問題なく、
血液のｐＨの変動を抑え、血液中に含まれる病因物質お
よびその関連物質の少なくとも一部を除去できる。
血液のｐＨの変動を抑え、血液中に含まれる病因物質お
よびその関連物質の少なくとも一部を除去できる。
Claims (6)
- 【請求項１】遊離のアミノ基、および抗凝固活性物質が
存在する基材表面を持ち、血液中の病因物質の少なくと
も一部を除去して血液を浄化することを特徴とする血液
浄化材料。 - 【請求項２】前記基材表面の遊離のアミノ基の量が０．
１×１０-4ｅｑ／ｇ超である請求項１に記載の血液浄化
材料。 - 【請求項３】前記病因物質が、ウイルス、ウイルス構成
物質、感染細胞、および生体産生物質である請求項１ま
たは２に記載の血液浄化材料。 - 【請求項４】前記基材が平均孔径０．１〜１０μｍの多
孔質膜であり、該多孔質膜表面にポリアミン化合物を固
定化したことを特徴とする請求項１〜４のいずれかに記
載の血液浄化材料。 - 【請求項５】前記基材が平均粒径２５〜３００μｍ の
多孔質ビーズであり、該多孔質表面にポリアミン化合物
を固定化したことを特徴とする請求項１〜４のいずれか
に記載の血液浄化材料。 - 【請求項６】前記基材が繊維径が平均１００μｍ以下の
不織布であり、該不織布表面にポリアミン化合物を固定
化したことを特徴とする請求項１〜４のいずれかに記載
の血液浄化材料。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP10072329A JPH11267421A (ja) | 1998-03-20 | 1998-03-20 | 血液浄化材料 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP10072329A JPH11267421A (ja) | 1998-03-20 | 1998-03-20 | 血液浄化材料 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH11267421A true JPH11267421A (ja) | 1999-10-05 |
Family
ID=13486151
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP10072329A Withdrawn JPH11267421A (ja) | 1998-03-20 | 1998-03-20 | 血液浄化材料 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH11267421A (ja) |
Cited By (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2002113097A (ja) * | 2000-05-23 | 2002-04-16 | Toray Ind Inc | 吸着材および体外循環用カラム |
| WO2004052270A1 (ja) * | 2002-12-12 | 2004-06-24 | Asahi Kasei Kabushiki Kaisha | ウイルス除去バッグ及びそれを用いたウイルス除去方法 |
| JP2007202634A (ja) * | 2006-01-31 | 2007-08-16 | Toray Ind Inc | 吸着器 |
| JP2011139805A (ja) * | 2010-01-07 | 2011-07-21 | Pharmit Co Ltd | 生体内塩基性物質を利用した体液浄化装置 |
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| JP2012503087A (ja) * | 2008-09-19 | 2012-02-02 | スリーエム イノベイティブ プロパティズ カンパニー | リガンドグラフト官能化基材 |
| WO2012057185A1 (ja) * | 2010-10-27 | 2012-05-03 | 東レ株式会社 | 血液成分吸着用担体及び血液成分吸着カラム |
-
1998
- 1998-03-20 JP JP10072329A patent/JPH11267421A/ja not_active Withdrawn
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