JPH0584071A - ウイルス捕捉方法およびウイルス回収方法 - Google Patents
ウイルス捕捉方法およびウイルス回収方法Info
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- JPH0584071A JPH0584071A JP24972691A JP24972691A JPH0584071A JP H0584071 A JPH0584071 A JP H0584071A JP 24972691 A JP24972691 A JP 24972691A JP 24972691 A JP24972691 A JP 24972691A JP H0584071 A JPH0584071 A JP H0584071A
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- Treatment Of Liquids With Adsorbents In General (AREA)
- Water Treatment By Sorption (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
Abstract
(57)【要約】
【構成】 アニオン性基を分子内に有する単量体を１構
成成分とした重合体を基材表面の少なくとも一部に保持
させてなるウイルス捕捉体に流体を通過させることで、
該流体中のウイルスを除去できる。 【効果】 流体中よりポリオウイルス等のウイルスを除
去し、安全な飲料水及び精密な理化学用水が確保でき
る。
成成分とした重合体を基材表面の少なくとも一部に保持
させてなるウイルス捕捉体に流体を通過させることで、
該流体中のウイルスを除去できる。 【効果】 流体中よりポリオウイルス等のウイルスを除
去し、安全な飲料水及び精密な理化学用水が確保でき
る。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、流体中に存在するウイ
ルスを容易にかつ高率で捕捉または除去する方法、なら
びにウイルスを濃縮回収する方法に関するものである。
ルスを容易にかつ高率で捕捉または除去する方法、なら
びにウイルスを濃縮回収する方法に関するものである。
【０００２】
【従来の技術】我々の生活を取り巻く生活環境水中に
は、活水処理が完全になされず排出された下水あるいは
漏洩等により人、動物や細菌類などに由来する各種ウイ
ルスが存在する。特に、上下水道が完備されていない地
域や発展途上国では、飲料水中に存在するウイルスや細
菌による疾患のため、多くの人々が苦しんでいる。ま
た、先進国においても、古い建築物や高層ビルの給水塔
・給水管の汚染、下水の上水への混入、浄水システムの
事故等により、生活用水への危険性が指摘されるように
なっている。
は、活水処理が完全になされず排出された下水あるいは
漏洩等により人、動物や細菌類などに由来する各種ウイ
ルスが存在する。特に、上下水道が完備されていない地
域や発展途上国では、飲料水中に存在するウイルスや細
菌による疾患のため、多くの人々が苦しんでいる。ま
た、先進国においても、古い建築物や高層ビルの給水塔
・給水管の汚染、下水の上水への混入、浄水システムの
事故等により、生活用水への危険性が指摘されるように
なっている。
【０００３】さらには、大量迅速処理が要求される現在
の浄水施設や上水設備では、ウイルスの水道水中への混
入が懸念されており、今後ますますウイルス感染の危険
性が高くなると考えられる。
の浄水施設や上水設備では、ウイルスの水道水中への混
入が懸念されており、今後ますますウイルス感染の危険
性が高くなると考えられる。
【０００４】近年、飲料用水汚染が国内外で大きな問題
となっており、我が国においても家庭用浄水器等が急速
な勢いで普及している。しかしながら、現在ある家庭用
浄水器等は、水道水中に含まれる悪臭物質や細菌を除去
し、美味しい水を供給することを目的としたものが多
く、ウイルスについてあまり留意されていない。
となっており、我が国においても家庭用浄水器等が急速
な勢いで普及している。しかしながら、現在ある家庭用
浄水器等は、水道水中に含まれる悪臭物質や細菌を除去
し、美味しい水を供給することを目的としたものが多
く、ウイルスについてあまり留意されていない。
【０００５】活性炭も水中に存在する有機物や塩素の除
去には効果を発揮するがウイルス除去性能は低い。
去には効果を発揮するがウイルス除去性能は低い。
【０００６】ウイルスを捕捉する方法として、含窒素複
素環を分子内に有する単量体を構成成分とした重合体を
基材表面に保持させた濾材を用いる方法（平成１年特許
願２５７７０４号）が提唱されており、多種多様のウイ
ルスを迅速かつ強固に吸着することができる。
素環を分子内に有する単量体を構成成分とした重合体を
基材表面に保持させた濾材を用いる方法（平成１年特許
願２５７７０４号）が提唱されており、多種多様のウイ
ルスを迅速かつ強固に吸着することができる。
【０００７】しかしながら、最近の本発明者等の研究に
よると、ポリオウイルスのあるタイプが上記の方法では
捕捉できないことが明らかとなった。
よると、ポリオウイルスのあるタイプが上記の方法では
捕捉できないことが明らかとなった。
【０００８】ポリオウイルスの捕捉法としては、ソブシ
ー（Ｍ．Ｋ．ＳＯＢＳＥＹ）やグラス（Ｊ．Ｓ．ＧＬＡ
ＳＳ）による研究（アプライド・アンド・エンバイロメ
ンタル・マイクロバイオロジー（Applied and Environm
ental Microbiology），Ｖｏｌ．４０，Ｎｏ．２，Ｐ２
０１−２１０，１９８０、同誌Ｖｏｌ．４７，Ｎｏ．
５，Ｐ９５６−９６０，１９８４）があるが、９０％以
上の確率での捕捉はできておらず、特に通常の水道水の
ｐＨ領域（ｐＨ５〜８）における捕捉率は５０％を下回
っており、特に期待できるものではなかった。
ー（Ｍ．Ｋ．ＳＯＢＳＥＹ）やグラス（Ｊ．Ｓ．ＧＬＡ
ＳＳ）による研究（アプライド・アンド・エンバイロメ
ンタル・マイクロバイオロジー（Applied and Environm
ental Microbiology），Ｖｏｌ．４０，Ｎｏ．２，Ｐ２
０１−２１０，１９８０、同誌Ｖｏｌ．４７，Ｎｏ．
５，Ｐ９５６−９６０，１９８４）があるが、９０％以
上の確率での捕捉はできておらず、特に通常の水道水の
ｐＨ領域（ｐＨ５〜８）における捕捉率は５０％を下回
っており、特に期待できるものではなかった。
【０００９】
【発明が解決しようとする課題】本発明は、ポリオウイ
ルス等の従来の方法では捕捉が困難であるウイルスを捕
捉する方法を提供することを目的とする。
ルス等の従来の方法では捕捉が困難であるウイルスを捕
捉する方法を提供することを目的とする。
【００１０】また、ウイルス感染の可能性が少ない安全
な飲料水や生活用水を得ることを目的とする。
な飲料水や生活用水を得ることを目的とする。
【００１１】
【課題を解決するための手段】本発明者らは、上記の課
題を解決する為に鋭意研究を行った結果、下記の本発明
により解決できることを見いだした。
題を解決する為に鋭意研究を行った結果、下記の本発明
により解決できることを見いだした。
【００１２】 ウイルスを含有する流体よりウイルス
を捕捉する方法において、アニオン性基を分子内に有す
る単量体を１構成成分とした重合体を基材の少なくとも
一部に保持させてなるウイルス捕捉体に、該ウイルスを
含有する流体を通過させ、該ウイルスを該ウイルス捕捉
体に吸着させることを特徴とするウイルス捕捉方法。
を捕捉する方法において、アニオン性基を分子内に有す
る単量体を１構成成分とした重合体を基材の少なくとも
一部に保持させてなるウイルス捕捉体に、該ウイルスを
含有する流体を通過させ、該ウイルスを該ウイルス捕捉
体に吸着させることを特徴とするウイルス捕捉方法。
【００１３】 前記基材が、空孔率２０〜９０％、通
水量１０ｍｌ／ｍｉｎ／ｍ2／ｍｍＨｇ以上、湿潤時の
寸法変化率が１０％以下の特性を有する膜型多孔質体で
ある上記記載のウイルス捕捉方法。
水量１０ｍｌ／ｍｉｎ／ｍ2／ｍｍＨｇ以上、湿潤時の
寸法変化率が１０％以下の特性を有する膜型多孔質体で
ある上記記載のウイルス捕捉方法。
【００１４】 前記基材が、多数の交差するフィラメ
ントより形成され該多数のフィラメントの直径がすべて
１００μｍ以下で、湿潤時の寸法変化率が１０％以下の
特性を有する膜型フィルターである上記記載のウイル
ス捕捉方法。
ントより形成され該多数のフィラメントの直径がすべて
１００μｍ以下で、湿潤時の寸法変化率が１０％以下の
特性を有する膜型フィルターである上記記載のウイル
ス捕捉方法。
【００１５】 前記アニオン性基を分子内に有する単
量体が、アニオン性基部位に、−ＣＯＯＨまたは−ＣＯ
ＯＭ（Ｍは、金属元素を示す。）を有する分子である上
記記載のウイルス捕捉方法。
量体が、アニオン性基部位に、−ＣＯＯＨまたは−ＣＯ
ＯＭ（Ｍは、金属元素を示す。）を有する分子である上
記記載のウイルス捕捉方法。
【００１６】 上記記載のウイルス捕捉体に、前記
ウイルスを含有する流体を通過させてウイルスを吸着さ
せた後、該ウイルスを含有する流動体より高いｐＨを有
する誘出液を通過させて吸着されたウイルスを回収する
ウイルス回収方法。
ウイルスを含有する流体を通過させてウイルスを吸着さ
せた後、該ウイルスを含有する流動体より高いｐＨを有
する誘出液を通過させて吸着されたウイルスを回収する
ウイルス回収方法。
【００１７】 流体よりウイルスを捕捉する方法にお
いて、アニオン性基を分子内に有する単量体を１構成成
分とした重合体を基材表面の少なくとも一部に保持させ
てなるウイルス捕捉体と、カチオン性基を分子内に有す
る単量体を１構成成分とした重合体を基材表面の少なく
とも一部に保持させてなるウイルス捕捉体に、該ウイル
スを含有する流体を通過させることにより、ウイルスを
該ウイルス捕捉体に吸着させることを特徴とするウイル
ス捕捉方法。
いて、アニオン性基を分子内に有する単量体を１構成成
分とした重合体を基材表面の少なくとも一部に保持させ
てなるウイルス捕捉体と、カチオン性基を分子内に有す
る単量体を１構成成分とした重合体を基材表面の少なく
とも一部に保持させてなるウイルス捕捉体に、該ウイル
スを含有する流体を通過させることにより、ウイルスを
該ウイルス捕捉体に吸着させることを特徴とするウイル
ス捕捉方法。
【００１８】 前記基材が、空孔率２０〜９０％、通
水量１０ｍｌ／ｍｉｎ／ｍ2／ｍｍＨｇ以上、湿潤時の
寸法変化率が１０％以下の特性を有する膜型多孔質体で
ある上記のウイルス捕捉方法。
水量１０ｍｌ／ｍｉｎ／ｍ2／ｍｍＨｇ以上、湿潤時の
寸法変化率が１０％以下の特性を有する膜型多孔質体で
ある上記のウイルス捕捉方法。
【００１９】 前記基材が、多数の交差するフィラメ
ントより形成され該多数のフィラメントの直径がすべて
１００μｍ以下で、湿潤時の寸法変化率が１０％以下の
特性を有する膜型フィルターである上記記載のウイル
ス捕捉方法。
ントより形成され該多数のフィラメントの直径がすべて
１００μｍ以下で、湿潤時の寸法変化率が１０％以下の
特性を有する膜型フィルターである上記記載のウイル
ス捕捉方法。
【００２０】本発明によるウイルスを捕捉する方法によ
ると、アニオン性基を分子内に有する単量体を１構成成
分とした重合体を基材の少なくとも一部に保持させてな
る濾材からなるウイルス捕捉体により、流動体中のポリ
オウイルス等の従来の方法では捕捉が困難であったウイ
ルスの捕捉が可能となり、また、含窒素複素環を分子内
に有する単量体を構成成分とした重合体を基材表面に保
持させた濾材を用いる方法（平成１年特許願２５７７０
４号）等の従来の方法と組み合わせることにより、ウイ
ルス捕捉率を従来の方法によるものより向上させること
ができる。
ると、アニオン性基を分子内に有する単量体を１構成成
分とした重合体を基材の少なくとも一部に保持させてな
る濾材からなるウイルス捕捉体により、流動体中のポリ
オウイルス等の従来の方法では捕捉が困難であったウイ
ルスの捕捉が可能となり、また、含窒素複素環を分子内
に有する単量体を構成成分とした重合体を基材表面に保
持させた濾材を用いる方法（平成１年特許願２５７７０
４号）等の従来の方法と組み合わせることにより、ウイ
ルス捕捉率を従来の方法によるものより向上させること
ができる。
【００２１】また、ポリオウイルスに対する捕捉率も、
従来の方法では捕捉率の悪かった通常の水道水等のｐＨ
５〜８の領域における捕捉率を、９０％以上に向上させ
ることができる。
従来の方法では捕捉率の悪かった通常の水道水等のｐＨ
５〜８の領域における捕捉率を、９０％以上に向上させ
ることができる。
【００２２】また、ポリオウイルスを含んでいた流動体
より高いｐＨを示す流動体を流すことにより、ウイルス
捕捉体に吸着したウイルスを回収できる。この時のｐＨ
８以上の流動体を流すことが好ましく、特に好ましいの
はｐＨ９〜１１の範囲である。
より高いｐＨを示す流動体を流すことにより、ウイルス
捕捉体に吸着したウイルスを回収できる。この時のｐＨ
８以上の流動体を流すことが好ましく、特に好ましいの
はｐＨ９〜１１の範囲である。
【００２３】本発明に使用するウイルス捕捉体の基材に
多孔質膜形状を使用する場合は、その最大孔径が０．１
〜１０．０μｍ、より好ましくは０．２〜２．０μｍ、
膜厚１０〜１０００μｍ、より好ましくは２０〜２００
μｍ、空孔率２０〜９０％、より好ましくは４０〜８０
％、通水量が１０ｍｌ／ｍｉｎ・ｍ2・ｍｍＨｇ以上、
より好ましくは１００ｍｌ／ｍｉｎ・ｍ2・ｍｍＨｇ以
上であることが望ましい。
多孔質膜形状を使用する場合は、その最大孔径が０．１
〜１０．０μｍ、より好ましくは０．２〜２．０μｍ、
膜厚１０〜１０００μｍ、より好ましくは２０〜２００
μｍ、空孔率２０〜９０％、より好ましくは４０〜８０
％、通水量が１０ｍｌ／ｍｉｎ・ｍ2・ｍｍＨｇ以上、
より好ましくは１００ｍｌ／ｍｉｎ・ｍ2・ｍｍＨｇ以
上であることが望ましい。
【００２４】多孔質体としては、平膜状、中空糸膜状な
どの膜状形状、スポンジ形状などのフィルター形状が好
ましい。
どの膜状形状、スポンジ形状などのフィルター形状が好
ましい。
【００２５】その際最大孔径が０．１μｍ以下である
と、充分な流動体の透過速度が得られなくなり、１０．
０μｍ以上であるとウイルスの捕捉率が低くなる。好ま
しくは０．２〜２．０μｍである。
と、充分な流動体の透過速度が得られなくなり、１０．
０μｍ以上であるとウイルスの捕捉率が低くなる。好ま
しくは０．２〜２．０μｍである。
【００２６】また、空孔率が２０％以下であると、充分
な流動体の透過速度が得られなくなり、９０％以上にな
ると物理的に弱くなる。
な流動体の透過速度が得られなくなり、９０％以上にな
ると物理的に弱くなる。
【００２７】さらに、通水量が１０ｍｌ／ｍｉｎ・ｍ2
・ｍｍＨｇ以上、より好ましくは１００ｍｌ／ｍｉｎ・
ｍ2・ｍｍＨｇ以上であることが低圧で濾過できるため
好ましい。
・ｍｍＨｇ以上、より好ましくは１００ｍｌ／ｍｉｎ・
ｍ2・ｍｍＨｇ以上であることが低圧で濾過できるため
好ましい。
【００２８】また、本発明に使用するウイルス捕捉体の
基材に直径１００μｍ以下の多数の交差するフィラメン
トを使用すると、通水量に優れ、さらに迅速かつ吸着能
力に優れ、さらに直径が３０μｍ以下のフィラメントよ
りなるフィルター材であると、濾材の表面積を大きくで
きウイルス捕捉性を高めることができる。
基材に直径１００μｍ以下の多数の交差するフィラメン
トを使用すると、通水量に優れ、さらに迅速かつ吸着能
力に優れ、さらに直径が３０μｍ以下のフィラメントよ
りなるフィルター材であると、濾材の表面積を大きくで
きウイルス捕捉性を高めることができる。
【００２９】その際使用するはフィラメントは、モノフ
ィラメントであってもマルチフィラメントのどちらでも
良い。
ィラメントであってもマルチフィラメントのどちらでも
良い。
【００３０】また、各ウイルス捕捉体に用いる基材は、
少なくとも一部にアニオン性基を分子内に有する単量体
を１構成成分とした重合体保持させると、アニオン性基
を有する重合体は親水力が強いため水分で膨張して寸法
変化が生じるためと、孔径の縮小化を少なくし透水速度
を大きく保たせるために湿潤時の寸法変化率が１０％以
下であることが好ましい。
少なくとも一部にアニオン性基を分子内に有する単量体
を１構成成分とした重合体保持させると、アニオン性基
を有する重合体は親水力が強いため水分で膨張して寸法
変化が生じるためと、孔径の縮小化を少なくし透水速度
を大きく保たせるために湿潤時の寸法変化率が１０％以
下であることが好ましい。
【００３１】以上のことより、本発明のウイルス捕捉体
に用いる基材としては、ポリフッ化ビニリデン、セルロ
ース誘導体、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリメチ
ルメタクリレート、ポリカーボネート、ポリウレタン、
ポリ塩化ビニル、ポリ臭化ビニル、ポリエチレンテレフ
タレート、ポリアミド、ポロテトラフルオロエチレン、
ポリ塩化ビニリデン、ポリスルホン等の熱可塑性樹脂や
これらの共重合体あるいはこれらのブレンド物などを用
いることが好ましい。
に用いる基材としては、ポリフッ化ビニリデン、セルロ
ース誘導体、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリメチ
ルメタクリレート、ポリカーボネート、ポリウレタン、
ポリ塩化ビニル、ポリ臭化ビニル、ポリエチレンテレフ
タレート、ポリアミド、ポロテトラフルオロエチレン、
ポリ塩化ビニリデン、ポリスルホン等の熱可塑性樹脂や
これらの共重合体あるいはこれらのブレンド物などを用
いることが好ましい。
【００３２】このうち、特に、機械的強度、耐薬品性に
優れたポリオレフィンおよび一部もしくは全ての水素が
ハロゲンで置換されたポリオレフィンを主成分としてい
る基材が好ましい。
優れたポリオレフィンおよび一部もしくは全ての水素が
ハロゲンで置換されたポリオレフィンを主成分としてい
る基材が好ましい。
【００３３】本発明に用いるアニオン性基を分子内に有
する単量体としては、分子内にカルボキシル基、スルホ
ン酸基、リン酸基などのアニオン化能を有する官能基を
持つ単量体のアクリル酸、メタクリル酸、スチレンスル
ホン酸、エチレンスルホン酸、ビニルリン酸などを用い
ることができるが、ウイルスの回収を考えた場合には、
特に、−ＣＯＯＨまたは−ＣＯＯＭ（Ｍは、金属元素を
示す。）部位を分子内に有する単量体であるメタクリル
酸、アクリル酸等が好ましい。
する単量体としては、分子内にカルボキシル基、スルホ
ン酸基、リン酸基などのアニオン化能を有する官能基を
持つ単量体のアクリル酸、メタクリル酸、スチレンスル
ホン酸、エチレンスルホン酸、ビニルリン酸などを用い
ることができるが、ウイルスの回収を考えた場合には、
特に、−ＣＯＯＨまたは−ＣＯＯＭ（Ｍは、金属元素を
示す。）部位を分子内に有する単量体であるメタクリル
酸、アクリル酸等が好ましい。
【００３４】また、アニオン性基を分子内に有する単量
体を１構成成分とする重合体とは、アニオン性単量体を
含む高分子を１構成成分とする重合体であれば特に限定
する必要はなく、他の単量体とのコポリマーや金属、フ
ィラー、セラミックなどを含有していてもよい。
体を１構成成分とする重合体とは、アニオン性単量体を
含む高分子を１構成成分とする重合体であれば特に限定
する必要はなく、他の単量体とのコポリマーや金属、フ
ィラー、セラミックなどを含有していてもよい。
【００３５】本発明に用いるカチオン性基を分子内に有
する単量体としては、分子内に１級アミン、２級アミ
ン、３級アミン、４級アンモニウム塩などのカチオン化
能を有する官能基を持つ単量体で、ビニルピリジン、ビ
ニルピリジニウム、アリルアミン、ｐ−アミノスチレ
ン、Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノエチルアクリレート、エチ
レンイミン、ビニルトリメチルアンモニウム、Ｎ−ビニ
ル−２，３−ジメチルイミダゾリウム、オキシエチル−
１−メチルピリジニウム、Ｎ−アクリルアミドプロピル
−３−トリメチルアンモニウム、２−ヒドロキシ−３−
メタクロイロキシプロピルトリメチルアンモニウム、
Ｎ，Ｎ−ジメチル−３，５−メチレンピペリジウム、２
−アクリロキシエチルジメチルスルホニウム、グリシジ
ルトリブチルホスホニウムなどがある。
する単量体としては、分子内に１級アミン、２級アミ
ン、３級アミン、４級アンモニウム塩などのカチオン化
能を有する官能基を持つ単量体で、ビニルピリジン、ビ
ニルピリジニウム、アリルアミン、ｐ−アミノスチレ
ン、Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノエチルアクリレート、エチ
レンイミン、ビニルトリメチルアンモニウム、Ｎ−ビニ
ル−２，３−ジメチルイミダゾリウム、オキシエチル−
１−メチルピリジニウム、Ｎ−アクリルアミドプロピル
−３−トリメチルアンモニウム、２−ヒドロキシ−３−
メタクロイロキシプロピルトリメチルアンモニウム、
Ｎ，Ｎ−ジメチル−３，５−メチレンピペリジウム、２
−アクリロキシエチルジメチルスルホニウム、グリシジ
ルトリブチルホスホニウムなどがある。
【００３６】好ましいカチオン性単量体としては、ウイ
ルスや微生物を迅速かつ強固に捕捉できるピリジニウム
構造を分子内に有する単量体がよい。
ルスや微生物を迅速かつ強固に捕捉できるピリジニウム
構造を分子内に有する単量体がよい。
【００３７】また、カチオン性基を分子内に有する単量
体を１構成成分とする重合体とは、カチオン性単量体を
含む高分子を構成成分とする重合体であればよく、他の
単量体とのコポリマーや金属、フィラー、セラミックな
どを含有していてもよい。
体を１構成成分とする重合体とは、カチオン性単量体を
含む高分子を構成成分とする重合体であればよく、他の
単量体とのコポリマーや金属、フィラー、セラミックな
どを含有していてもよい。
【００３８】また、前記カチオン性基を分子内に有する
単量体を１構成成分とする重合体は、該捕捉体の一部に
存在していればよいが、全表面に存在あるいは濾材自体
がこのような重合体により構成されていてもよい。
単量体を１構成成分とする重合体は、該捕捉体の一部に
存在していればよいが、全表面に存在あるいは濾材自体
がこのような重合体により構成されていてもよい。
【００３９】また、本発明において、アニオン性基を分
子内に有する単量体を１構成成分とする重合体とカチオ
ン性基を分子内に有する単量体を１構成成分とする重合
体とを同時に用いる場合のウイルス捕捉体は、一方の面
にアニオン性基を保持させ他方の面にカチオン性基を保
持させた１枚の膜体でもよく、また、別々に作成した２
種類の膜体を積層して用いてもよい。
子内に有する単量体を１構成成分とする重合体とカチオ
ン性基を分子内に有する単量体を１構成成分とする重合
体とを同時に用いる場合のウイルス捕捉体は、一方の面
にアニオン性基を保持させ他方の面にカチオン性基を保
持させた１枚の膜体でもよく、また、別々に作成した２
種類の膜体を積層して用いてもよい。
【００４０】上記に示した各単量体の基材への保持方法
としては、コーティング法や反応性基を利用してのグラ
フト重合法、架橋不溶化法、あるいは光反応、紫外線、
電子線、γ線を利用した架橋重合法などの公知の方法を
使用することができる。
としては、コーティング法や反応性基を利用してのグラ
フト重合法、架橋不溶化法、あるいは光反応、紫外線、
電子線、γ線を利用した架橋重合法などの公知の方法を
使用することができる。
【００４１】なかでも、前記各単量体がグラフト重合可
能な重合開始点を少なくとも一部の表面に有する高分子
基材にガス状で供給されて表面グラフト重合される方法
が特に好ましい。
能な重合開始点を少なくとも一部の表面に有する高分子
基材にガス状で供給されて表面グラフト重合される方法
が特に好ましい。
【００４２】グラフト重合可能な重合開始点とは、単量
体が分子内に二重結合を有しかつラジカル重合可能なも
のであれば、高分子ラジカルを膜表面に生成させればよ
い。高分子ラジカルの生成法としては、電子線、ガンマ
線、紫外線、プラズマ、オゾン、ラジカル生成剤（水素
引抜剤）等があるが、プラズマを用いる方法が該単量体
をガス状で供給し、固体−気相重合により表面グラフト
重合を進行させ、ドライプロセスでウイルス捕捉体を製
造することが可能となるので好ましい。
体が分子内に二重結合を有しかつラジカル重合可能なも
のであれば、高分子ラジカルを膜表面に生成させればよ
い。高分子ラジカルの生成法としては、電子線、ガンマ
線、紫外線、プラズマ、オゾン、ラジカル生成剤（水素
引抜剤）等があるが、プラズマを用いる方法が該単量体
をガス状で供給し、固体−気相重合により表面グラフト
重合を進行させ、ドライプロセスでウイルス捕捉体を製
造することが可能となるので好ましい。
【００４３】さらに、このようなプラズマグラフト法を
用いて化学的に結合させると、基材表面に結合されたグ
ラフト鎖は、水溶液中において溶解したような状態で存
在することとなり、架橋不溶化法などにより固定化され
たものと比べてウイルス捕捉能力が高くなるために好ま
しい。
用いて化学的に結合させると、基材表面に結合されたグ
ラフト鎖は、水溶液中において溶解したような状態で存
在することとなり、架橋不溶化法などにより固定化され
たものと比べてウイルス捕捉能力が高くなるために好ま
しい。
【００４４】なお、本明細書中の通水量は、０．７（ｋ
ｇｆ／ｃｍ2）の圧力下で測定した値であり、空孔率は
下記の式１で表される値である。
ｇｆ／ｃｍ2）の圧力下で測定した値であり、空孔率は
下記の式１で表される値である。
【００４５】
【式１】 空孔率（％）＝空孔部の体積／（空孔部の体積＋捕捉体
実質部の体積）×１００ また、フィラメントの直径は、走査型電子顕微鏡で観察
したフィラメントの直径と短径の平均値のことであり、
異形フィラメントであっても多孔質フィラメントであっ
てもよい。
実質部の体積）×１００ また、フィラメントの直径は、走査型電子顕微鏡で観察
したフィラメントの直径と短径の平均値のことであり、
異形フィラメントであっても多孔質フィラメントであっ
てもよい。
【００４６】ウイルスの定量は、プラーク（溶菌斑）法
により行った。すなわち、検体を宿主細胞もしくは宿主
細菌と接触させた後、ウイルスに感染することにより生
成するプラーク（溶菌斑）数を測定することにより求め
た。
により行った。すなわち、検体を宿主細胞もしくは宿主
細菌と接触させた後、ウイルスに感染することにより生
成するプラーク（溶菌斑）数を測定することにより求め
た。
【００４７】ウイルス捕捉率は、下記の式２により算出
した。
した。
【００４８】
【式２】 ウイルス捕捉率（％）＝（１−生存ウイルス数／原液中
のウイルス数）×１００ 湿潤時の寸法変化率は、５ｃｍ×１ｃｍの短冊状に切断
した試料を、２５±１℃の蒸留水に１時間浸漬した後、
長軸方向の寸法変化を下記の式３で表した値である。
のウイルス数）×１００ 湿潤時の寸法変化率は、５ｃｍ×１ｃｍの短冊状に切断
した試料を、２５±１℃の蒸留水に１時間浸漬した後、
長軸方向の寸法変化を下記の式３で表した値である。
【００４９】
【式３】 寸法変化率（％）＝（浸漬後の長さ（ｃｍ）−５）／５
×１００ 以下、実施例を示し本発明のウイルス捕捉方法について
詳細に説明する。
×１００ 以下、実施例を示し本発明のウイルス捕捉方法について
詳細に説明する。
【００５０】
（実施例１）メルトフローインデックスが３０及び０．
３のポリプロピレン混合物（混合重量比 １００：４
０）１００重量部当たり、４００重量部の流動パラフィ
ン（数平均分子量３２４）及び０．３重量部の結晶核形
成剤としての１，３，２，４−ビス（ｐ−エチルベンジ
リデン）ソルビトールを二軸型押出機により溶融混練し
ペレット化した。
３のポリプロピレン混合物（混合重量比 １００：４
０）１００重量部当たり、４００重量部の流動パラフィ
ン（数平均分子量３２４）及び０．３重量部の結晶核形
成剤としての１，３，２，４−ビス（ｐ−エチルベンジ
リデン）ソルビトールを二軸型押出機により溶融混練し
ペレット化した。
【００５１】このペレットを上記押出機を用いて１５０
〜２００℃で溶融し、スリット幅０．６ｍｍのＴダイス
より空気中に押し出して、Ｔダイス直下に置かれた冷却
液槽のガイドローラーの回転によってポリエチレングリ
コールよりなる冷却固化液中に導き、冷却固化した後巻
き取った。
〜２００℃で溶融し、スリット幅０．６ｍｍのＴダイス
より空気中に押し出して、Ｔダイス直下に置かれた冷却
液槽のガイドローラーの回転によってポリエチレングリ
コールよりなる冷却固化液中に導き、冷却固化した後巻
き取った。
【００５２】巻き取ったフィルム状物を一定長に切断
し、縦横両方向を固定し、１，１，２−トリクロロ−
１，２，２−トリフルオロエタン中に１０分間×４回
（合計４０分）浸漬して流動パラフィンの抽出を行い、
次いで１３５℃の空気中で２分間熱処理し、最大孔径
０．８μｍ、空孔率６９％、膜厚１２０μｍのポリプロ
ピレンフィルターを得た。
し、縦横両方向を固定し、１，１，２−トリクロロ−
１，２，２−トリフルオロエタン中に１０分間×４回
（合計４０分）浸漬して流動パラフィンの抽出を行い、
次いで１３５℃の空気中で２分間熱処理し、最大孔径
０．８μｍ、空孔率６９％、膜厚１２０μｍのポリプロ
ピレンフィルターを得た。
【００５３】このようにして得られたポリプロピレンフ
ィルターに、アルゴンプラズマ（１００Ｗ，０．１Ｔｏ
ｒｒ、１５秒間）を照射した後、メタクリル酸を１．８
Ｔｏｒｒで２分間接触させて表面グラフト重合を行い、
−ＣＯＯＨ基を表面に有する空孔率６７％、通水量９７
（ｍｌ／ｍｉｎ／ｍ2／ｍｍＨｇ）、寸法変化率１％以
下のウイルス捕捉体（ａ）を得た。
ィルターに、アルゴンプラズマ（１００Ｗ，０．１Ｔｏ
ｒｒ、１５秒間）を照射した後、メタクリル酸を１．８
Ｔｏｒｒで２分間接触させて表面グラフト重合を行い、
−ＣＯＯＨ基を表面に有する空孔率６７％、通水量９７
（ｍｌ／ｍｉｎ／ｍ2／ｍｍＨｇ）、寸法変化率１％以
下のウイルス捕捉体（ａ）を得た。
【００５４】得られたウイルス捕捉体（ａ）をφ２５に
打ち抜き、ニュークリポア製スウインロックフィルター
ホルダーを用いて、ポリオウイルス ｔｙｐｅ １ Ｌ
ｓｃ２ａｂ株を約１０4ＰＦＵ含むリン酸緩衝液（各
ｐＨ５．４，ｐＨ６．６，ｐＨ８．０）１０ｍｌを濾過
し、ウイルス捕捉率を測定したところ、ｐＨ５．４の時
９９．８％、ｐＨ６．６の時９８．８％、ｐＨ８．０の
時９７．８％であった。
打ち抜き、ニュークリポア製スウインロックフィルター
ホルダーを用いて、ポリオウイルス ｔｙｐｅ １ Ｌ
ｓｃ２ａｂ株を約１０4ＰＦＵ含むリン酸緩衝液（各
ｐＨ５．４，ｐＨ６．６，ｐＨ８．０）１０ｍｌを濾過
し、ウイルス捕捉率を測定したところ、ｐＨ５．４の時
９９．８％、ｐＨ６．６の時９８．８％、ｐＨ８．０の
時９７．８％であった。
【００５５】（実施例２）フィラメント径が約１０μ
ｍ、厚さ５００μｍのポリプロピレン不織布（東燃石油
化学（株）製）に、アルゴンプラズマ（３００Ｗ、０．
１Ｔｏｒｒ、３０秒間）を照射した後、メタクリル酸を
１．８Ｔｏｒｒで５分間接触させ表面グラフトを行い、
−ＣＯＯＨ基を表面に有し、寸法変化率１％以下の不織
布状ウイルス捕捉体（ｂ）を得た。
ｍ、厚さ５００μｍのポリプロピレン不織布（東燃石油
化学（株）製）に、アルゴンプラズマ（３００Ｗ、０．
１Ｔｏｒｒ、３０秒間）を照射した後、メタクリル酸を
１．８Ｔｏｒｒで５分間接触させ表面グラフトを行い、
−ＣＯＯＨ基を表面に有し、寸法変化率１％以下の不織
布状ウイルス捕捉体（ｂ）を得た。
【００５６】得られたウイルス捕捉体（ｂ）をφ２５に
打ち抜き３枚重ね、ニュークリポア製スウインロックフ
ィルターホルダーを用いて、ポリオウイルス ｔｙｐｅ
１Ｌｓｃ ２ａｂ株を約１０4ＰＦＵ含むリン酸緩衝
液（ｐＨ６．６）１０ｍｌを濾過し、ウイルス捕捉率を
測定したところ、９９％であった。
打ち抜き３枚重ね、ニュークリポア製スウインロックフ
ィルターホルダーを用いて、ポリオウイルス ｔｙｐｅ
１Ｌｓｃ ２ａｂ株を約１０4ＰＦＵ含むリン酸緩衝
液（ｐＨ６．６）１０ｍｌを濾過し、ウイルス捕捉率を
測定したところ、９９％であった。
【００５７】（実施例３）実施例１で基材として用いた
ポリプロピレンフィルターに、アルゴンンプラズマ（１
００Ｗ、０．１Ｔｏｒｒ、１５秒間）を照射した後、メ
タクリル酸を１．８Ｔｏｒｒで２分間接触させ表面グラ
フト重合させた後、未反応のメタクリル酸を減圧除去
し、続いてメトキシエチルアクリレートを供給して、
０．９Ｔｏｒｒで３分間、表面グラフト重合させウイル
ス捕捉体（ｃ）を得た。
ポリプロピレンフィルターに、アルゴンンプラズマ（１
００Ｗ、０．１Ｔｏｒｒ、１５秒間）を照射した後、メ
タクリル酸を１．８Ｔｏｒｒで２分間接触させ表面グラ
フト重合させた後、未反応のメタクリル酸を減圧除去
し、続いてメトキシエチルアクリレートを供給して、
０．９Ｔｏｒｒで３分間、表面グラフト重合させウイル
ス捕捉体（ｃ）を得た。
【００５８】得られたウイルス捕捉体（ｃ）をメタノー
ルで充分洗浄した後、φ２５に打ち抜き、ニュークリポ
ア製スフィンロックホルダーを用いて、ポリオウイルス
ｔｙｐｅ １ Ｌｓｃ ２ａｂ株を約１０4ＰＦＵ含
むリン酸緩衝液（ｐＨ５．４）１０ｍｌを濾過し、ウイ
ルス捕捉率を測定したところ、９９．５％であった。
ルで充分洗浄した後、φ２５に打ち抜き、ニュークリポ
ア製スフィンロックホルダーを用いて、ポリオウイルス
ｔｙｐｅ １ Ｌｓｃ ２ａｂ株を約１０4ＰＦＵ含
むリン酸緩衝液（ｐＨ５．４）１０ｍｌを濾過し、ウイ
ルス捕捉率を測定したところ、９９．５％であった。
【００５９】続いて吸着したウイルスを回収するため、
ｐＨ８．０のリン酸緩衝液１０ｍｌを誘出液として加圧
濾過し、濾過液よりウイルス捕捉体（ｃ）に吸着してい
たウイルスの回収率を求めたところ１００％であった。
ｐＨ８．０のリン酸緩衝液１０ｍｌを誘出液として加圧
濾過し、濾過液よりウイルス捕捉体（ｃ）に吸着してい
たウイルスの回収率を求めたところ１００％であった。
【００６０】（実施例４）実施例１で基材として用いた
ポリプロピレンフィルターに、アルゴンンプラズマ（１
００Ｗ、０．１Ｔｏｒｒ、１５秒間）を照射した後、ビ
ニルピリジンを０．８Ｔｏｒｒで５分間接触させ表面グ
ラフト重合させた後、０．１モルのベンジルクロライド
を含むメタノール中で５５℃で３時間、４級化反応を行
うことにより、ピリジニウム構造を表面に有し、湿潤時
の寸法変化率１％以下のウイルス捕捉体（ｄ）を得た。
ポリプロピレンフィルターに、アルゴンンプラズマ（１
００Ｗ、０．１Ｔｏｒｒ、１５秒間）を照射した後、ビ
ニルピリジンを０．８Ｔｏｒｒで５分間接触させ表面グ
ラフト重合させた後、０．１モルのベンジルクロライド
を含むメタノール中で５５℃で３時間、４級化反応を行
うことにより、ピリジニウム構造を表面に有し、湿潤時
の寸法変化率１％以下のウイルス捕捉体（ｄ）を得た。
【００６１】得られたウイルス捕捉体（ｄ）と実施例１
で作製したウイルス捕捉体（ａ）とをφ２５に打ち抜
き、２枚重ね周辺部を１６０℃で熱融着することにより
アニオン性基を分子内に有する単量体を１構成成分とし
た重合体よりなる表面とカチオン性基を分子内に有する
単量体を１構成成分とした重合体よりなる表面とを有す
る空孔率６７％、通水量３８（ｍｌ／ｍｉｎ／ｍ2／ｍ
ｍＨｇ）、寸法変化率１％以下のウイルス捕捉体（ｅ）
を得た。
で作製したウイルス捕捉体（ａ）とをφ２５に打ち抜
き、２枚重ね周辺部を１６０℃で熱融着することにより
アニオン性基を分子内に有する単量体を１構成成分とし
た重合体よりなる表面とカチオン性基を分子内に有する
単量体を１構成成分とした重合体よりなる表面とを有す
る空孔率６７％、通水量３８（ｍｌ／ｍｉｎ／ｍ2／ｍ
ｍＨｇ）、寸法変化率１％以下のウイルス捕捉体（ｅ）
を得た。
【００６２】得られたウイルス捕捉体（ｅ）をニューク
リポア製スフィンロックホルダーを用いて、ヘルペスウ
イルス ｔｙｐｅ Ｉ Ｈ．Ｆ．株を約１０4ＰＦＵ含
むリン酸緩衝液（ｐＨ７．３５〜７．６０）１０ｍｌを
濾過し、ウイルス捕捉率を測定したところ、捕捉率は１
００％であった。
リポア製スフィンロックホルダーを用いて、ヘルペスウ
イルス ｔｙｐｅ Ｉ Ｈ．Ｆ．株を約１０4ＰＦＵ含
むリン酸緩衝液（ｐＨ７．３５〜７．６０）１０ｍｌを
濾過し、ウイルス捕捉率を測定したところ、捕捉率は１
００％であった。
【００６３】また、ポリオウイルス ｔｙｐｅ １ Ｌ
ｓｃ ２ａｂ株を約１０4ＰＦＵ含むリン酸緩衝液（ｐ
Ｈ７．３５〜７．６０）１０ｍｌを濾過し、ウイルス捕
捉率を測定したところ、捕捉率は９９．９％であった。
ｓｃ ２ａｂ株を約１０4ＰＦＵ含むリン酸緩衝液（ｐ
Ｈ７．３５〜７．６０）１０ｍｌを濾過し、ウイルス捕
捉率を測定したところ、捕捉率は９９．９％であった。
【００６４】細菌に感染するウイルス（バクテリオファ
ージ）Ｔ７、Ｔ４、φ×１７４の３種類についても同様
に捕捉率を測定したところ、いずれの場合にも９９．９
％以上の捕捉率が得られた。
ージ）Ｔ７、Ｔ４、φ×１７４の３種類についても同様
に捕捉率を測定したところ、いずれの場合にも９９．９
％以上の捕捉率が得られた。
【００６５】（比較例）実施例１で基材として用いたポ
リプロピレンフィルターに、アルゴンンプラズマ（１０
０Ｗ、０．１Ｔｏｒｒ、１５秒間）を照射した後、ビニ
ルピリジンを０．８Ｔｏｒｒで５分間接触させ表面グラ
フト重合させた後、０．１モルのベンジルクロライドを
含むメタノール中で５５℃で３時間、４級化反応を行う
ことにより、ピリジニウム構造を表面に有する空孔率９
７％、通水量７２（ｍｌ／ｍｉｎ／ｍ2／ｍｍＨｇ）、
寸法変化率１％以下のウイルス捕捉体（ｆ）を得た。
リプロピレンフィルターに、アルゴンンプラズマ（１０
０Ｗ、０．１Ｔｏｒｒ、１５秒間）を照射した後、ビニ
ルピリジンを０．８Ｔｏｒｒで５分間接触させ表面グラ
フト重合させた後、０．１モルのベンジルクロライドを
含むメタノール中で５５℃で３時間、４級化反応を行う
ことにより、ピリジニウム構造を表面に有する空孔率９
７％、通水量７２（ｍｌ／ｍｉｎ／ｍ2／ｍｍＨｇ）、
寸法変化率１％以下のウイルス捕捉体（ｆ）を得た。
【００６６】得られたウイルス捕捉体（ｆ）をφ２５に
打ち抜き、ニュークリポア製スウインンロックフィルタ
ーホルダーを用いて、ヘルペスウイルス ｔｙｐｅ Ｉ
Ｈ．Ｆ．株を約１０4ＰＦＵ含むリン酸緩衝液（ｐＨ
７．３５〜７．６０）１０ｍｌを濾過し、ウイルス捕捉
率を測定したところ、捕捉率は１００％であった。
打ち抜き、ニュークリポア製スウインンロックフィルタ
ーホルダーを用いて、ヘルペスウイルス ｔｙｐｅ Ｉ
Ｈ．Ｆ．株を約１０4ＰＦＵ含むリン酸緩衝液（ｐＨ
７．３５〜７．６０）１０ｍｌを濾過し、ウイルス捕捉
率を測定したところ、捕捉率は１００％であった。
【００６７】しかしながら、ポリオウイルス ｔｙｐｅ
１ Ｌｓｃ ２ａｂ株を約１０4ＰＦＵ含むリン酸緩
衝液（ｐＨ７．３５〜７．６０）１０ｍｌを濾過し、ウ
イルス捕捉率を測定したところ、捕捉率は０％であっ
た。
１ Ｌｓｃ ２ａｂ株を約１０4ＰＦＵ含むリン酸緩
衝液（ｐＨ７．３５〜７．６０）１０ｍｌを濾過し、ウ
イルス捕捉率を測定したところ、捕捉率は０％であっ
た。
【００６８】
【発明の効果】本発明によるウイルスを捕捉する方法
は、実施例１〜４に示すように、アニオン性基を分子内
に有する単量体を１構成成分とした重合体を基材表面の
少なくとも一部に保持させてなるウイルス捕捉体によ
り、ポリオウイルス ｔｙｐｅ １Ｌｓｃ ２ａｂ株の
従来の方法では捕捉が困難であったウイルスの捕捉が可
能となった。
は、実施例１〜４に示すように、アニオン性基を分子内
に有する単量体を１構成成分とした重合体を基材表面の
少なくとも一部に保持させてなるウイルス捕捉体によ
り、ポリオウイルス ｔｙｐｅ １Ｌｓｃ ２ａｂ株の
従来の方法では捕捉が困難であったウイルスの捕捉が可
能となった。
【００６９】また、従来の方法ではポリオウイルスの捕
捉率が悪かったｐＨ４〜９の領域における流動体からの
捕捉率を、９０％以上に向上させることができる。
捉率が悪かったｐＨ４〜９の領域における流動体からの
捕捉率を、９０％以上に向上させることができる。
【００７０】さらに、カチオン性基を分子内に有する単
量体を１構成成分とした重合体を基材表面の少なくとも
一部に保持させてなるウイルス捕捉体を併用すること
で、その効果は向上する。
量体を１構成成分とした重合体を基材表面の少なくとも
一部に保持させてなるウイルス捕捉体を併用すること
で、その効果は向上する。
【００７１】そのため、浄水器等を組み合わせることに
より、通常家庭でも安全な飲料水や生活用水が確保でき
る。
より、通常家庭でも安全な飲料水や生活用水が確保でき
る。
【００７２】さらに、カチオン性基を分子内に有する単
量体を１構成成分とした重合体を基材表面の少なくとも
一部に保持させてなるウイルス捕捉体を併用すること
で、その効果は向上する。
量体を１構成成分とした重合体を基材表面の少なくとも
一部に保持させてなるウイルス捕捉体を併用すること
で、その効果は向上する。
【００７３】また、ポリオウイルスを含んでいた流動体
より高いｐＨを示す流動体を流すことにより、ウイルス
捕捉体に吸着したウイルスを除去でき、ウイルスの収集
または、ウイルス捕捉体の再利用が可能となる。
より高いｐＨを示す流動体を流すことにより、ウイルス
捕捉体に吸着したウイルスを除去でき、ウイルスの収集
または、ウイルス捕捉体の再利用が可能となる。
Claims (8)
- 【請求項１】 ウイルスを含有する流体よりウイルスを
捕捉する方法において、アニオン性基を分子内に有する
単量体を１構成成分とした重合体を基材の少なくとも一
部に保持させてなるウイルス捕捉体に、該ウイルスを含
有する流体を通過させ、該ウイルスを該ウイルス捕捉体
に吸着させることを特徴とするウイルス捕捉方法。 - 【請求項２】 前記基材が、空孔率２０〜９０％、通水
量１０ｍｌ／ｍｉｎ／ｍ2／ｍｍＨｇ以上、湿潤時の寸
法変化率が１０％以下の特性を有する膜型多孔質体であ
る請求項１記載のウイルス捕捉方法。 - 【請求項３】 前記基材が、多数の交差するフィラメン
トより形成され該多数のフィラメントの直径がすべて１
００μｍ以下で、湿潤時の寸法変化率が１０％以下の特
性を有する膜型フィルターである請求項１記載のウイル
ス捕捉方法。 - 【請求項４】 前記アニオン性基を分子内に有する単量
体が、アニオン性基部位に、−ＣＯＯＨまたは−ＣＯＯ
Ｍ（Ｍは、金属元素を示す。）を有する分子である請求
項１記載のウイルス捕捉方法。 - 【請求項５】 請求項１記載のウイルス捕捉体に、前記
ウイルスを含有する流体を通過させてウイルスを吸着さ
せた後、該ウイルスを含有する流体より高いｐＨを有す
る誘出液を通過させることにより吸着された該ウイルス
を回収するウイルス回収方法。 - 【請求項６】 流体よりウイルスを捕捉する方法におい
て、アニオン性基を分子内に有する単量体を１構成成分
とした重合体を基材表面の少なくとも一部に保持させて
なるウイルス捕捉体と、カチオン性基を分子内に有する
単量体を１構成成分とした重合体を基材表面の少なくと
も一部に保持させてなるウイルス捕捉体に、該ウイルス
を含有する流体を通過させ、該ウイルスを該ウイルス捕
捉体に吸着させることを特徴とするウイルス捕捉方法。 - 【請求項７】 前記基材が、空孔率２０〜９０％、通水
量１０ｍｌ／ｍｉｎ／ｍ2／ｍｍＨｇ以上、湿潤時の寸
法変化率が１０％以下の特性を有する膜型多孔質体であ
る請求項６記載のウイルス捕捉方法。 - 【請求項８】 前記基材が、多数の交差するフィラメン
トより形成され該多数のフィラメントの直径がすべて１
００μｍ以下で、湿潤時の寸法変化率が１０％以下の特
性を有する膜型フィルターである請求項６記載のウイル
ス捕捉方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP24972691A JPH0584071A (ja) | 1991-09-27 | 1991-09-27 | ウイルス捕捉方法およびウイルス回収方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP24972691A JPH0584071A (ja) | 1991-09-27 | 1991-09-27 | ウイルス捕捉方法およびウイルス回収方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0584071A true JPH0584071A (ja) | 1993-04-06 |
Family
ID=17197290
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP24972691A Pending JPH0584071A (ja) | 1991-09-27 | 1991-09-27 | ウイルス捕捉方法およびウイルス回収方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0584071A (ja) |
Cited By (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5523004A (en) * | 1992-12-04 | 1996-06-04 | Terumo Kabushiki Kaisha | Method for treatment of blood using a blood bag |
| JP2006333850A (ja) * | 2005-06-06 | 2006-12-14 | Asahi Kasei Corp | 生物粒子分離用基材 |
| US7393239B2 (en) | 2002-08-01 | 2008-07-01 | Ddk Ltd. | Electrical connector for flexible printed circuit boards |
| US7435122B2 (en) | 2004-10-18 | 2008-10-14 | Ddk Ltd. | Connector |
| JP2009125071A (ja) * | 2007-11-19 | 2009-06-11 | Millipore Corp | 膜イオン交換クロマトグラフィーのための媒体 |
| JP2012005487A (ja) * | 2004-06-09 | 2012-01-12 | Pathogen Removal & Diagnostic Technologies Inc | サンプルから標的因子を除去するためのデバイス及び方法 |
-
1991
- 1991-09-27 JP JP24972691A patent/JPH0584071A/ja active Pending
Cited By (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5523004A (en) * | 1992-12-04 | 1996-06-04 | Terumo Kabushiki Kaisha | Method for treatment of blood using a blood bag |
| US7393239B2 (en) | 2002-08-01 | 2008-07-01 | Ddk Ltd. | Electrical connector for flexible printed circuit boards |
| US7648386B2 (en) | 2002-08-01 | 2010-01-19 | Ddk, Ltd. | Miniaturized connector for flexible printed circuit board |
| JP2012005487A (ja) * | 2004-06-09 | 2012-01-12 | Pathogen Removal & Diagnostic Technologies Inc | サンプルから標的因子を除去するためのデバイス及び方法 |
| US7435122B2 (en) | 2004-10-18 | 2008-10-14 | Ddk Ltd. | Connector |
| JP2006333850A (ja) * | 2005-06-06 | 2006-12-14 | Asahi Kasei Corp | 生物粒子分離用基材 |
| JP2009125071A (ja) * | 2007-11-19 | 2009-06-11 | Millipore Corp | 膜イオン交換クロマトグラフィーのための媒体 |
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