JPH11194128A - 免疫測定用担体及びそれを用いた免疫測定用固相の調製方法 - Google Patents
免疫測定用担体及びそれを用いた免疫測定用固相の調製方法Info
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- JPH11194128A JPH11194128A JP36801897A JP36801897A JPH11194128A JP H11194128 A JPH11194128 A JP H11194128A JP 36801897 A JP36801897 A JP 36801897A JP 36801897 A JP36801897 A JP 36801897A JP H11194128 A JPH11194128 A JP H11194128A
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Abstract
(57)【要約】
【課題】 マイクロプレートのウェルに、抗原や抗体等
の免疫活性物質を効率良く固相化することを可能にする
こと。 【解決手段】 マイクロプレートのウェルを、該マイク
ロプレートの材料を溶解しない水溶性有機溶媒で処理し
た後、乾燥させて成る免疫測定用担体を提供した。
の免疫活性物質を効率良く固相化することを可能にする
こと。 【解決手段】 マイクロプレートのウェルを、該マイク
ロプレートの材料を溶解しない水溶性有機溶媒で処理し
た後、乾燥させて成る免疫測定用担体を提供した。
Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】免疫測定法にはラテックス粒
子を用いその凝集の度合から測定を行うものや、ガラス
ビーズ等にリガンドを固相化して生理活性物質を反応さ
せ、これに対する抗体に酵素や放射性物質を標識したも
のを用いる酵素免疫測定（ＥＩＡ）法や放射免疫測定
（ＲＩＡ）法等がある。ＥＩＡ法やＲＩＡ法ではそれぞ
れ酵素に対する基質から発色の度合を測定したり、ガン
マカウンタで放射線の強度を測定する。測定感度は、Ｒ
ＩＡ法＞ＥＩＡ法＞ラテックス凝集法の順番となる。し
かし、測定に要する反応時間は測定感度の逆の順位とな
る。
子を用いその凝集の度合から測定を行うものや、ガラス
ビーズ等にリガンドを固相化して生理活性物質を反応さ
せ、これに対する抗体に酵素や放射性物質を標識したも
のを用いる酵素免疫測定（ＥＩＡ）法や放射免疫測定
（ＲＩＡ）法等がある。ＥＩＡ法やＲＩＡ法ではそれぞ
れ酵素に対する基質から発色の度合を測定したり、ガン
マカウンタで放射線の強度を測定する。測定感度は、Ｒ
ＩＡ法＞ＥＩＡ法＞ラテックス凝集法の順番となる。し
かし、測定に要する反応時間は測定感度の逆の順位とな
る。
【０００２】従来、ＥＩＡ法はガラスビーズ等を担体と
して用いているが、独立した反応容器が必要であり、Ｂ
Ｆ分離の際にも数ｍｌの洗浄液が必要なことから操作性
に問題があった。そこで登場したのが９６個のウェルを
備えたマイクロプレートだった。マイクロプレートは現
在、免疫測定の分野で非常に広く用いられており、通
常、ポリスチレンでできている。ポリスチレンは抗体等
をよく吸着するのでポリスチレン製のマイクロプレート
のウェルは、免疫測定用担体として優れている。例え
ば、ガラスビーズの場合には１μｇ／ｍｌの濃度の抗原
液を固相化するのに１ｍｌ程度の抗原液が必要である
が、マイクロプレートでは１００μｌ程度でよい。
して用いているが、独立した反応容器が必要であり、Ｂ
Ｆ分離の際にも数ｍｌの洗浄液が必要なことから操作性
に問題があった。そこで登場したのが９６個のウェルを
備えたマイクロプレートだった。マイクロプレートは現
在、免疫測定の分野で非常に広く用いられており、通
常、ポリスチレンでできている。ポリスチレンは抗体等
をよく吸着するのでポリスチレン製のマイクロプレート
のウェルは、免疫測定用担体として優れている。例え
ば、ガラスビーズの場合には１μｇ／ｍｌの濃度の抗原
液を固相化するのに１ｍｌ程度の抗原液が必要である
が、マイクロプレートでは１００μｌ程度でよい。
【０００３】
【発明が解決しようとする課題】しかしながら、ポリス
チレン製のマイクロプレートといえども、固相化に必要
とするリガンドの量に対し、実際に固相化されたリガン
ドは添加量の数パーセントから数１０パーセントでしか
ない。従って、固相化効率を向上させることが望まれて
おり、もしこれが向上すれば、測定感度を向上させるこ
とができるか、あるいは、測定時間を短縮することがで
きる。
チレン製のマイクロプレートといえども、固相化に必要
とするリガンドの量に対し、実際に固相化されたリガン
ドは添加量の数パーセントから数１０パーセントでしか
ない。従って、固相化効率を向上させることが望まれて
おり、もしこれが向上すれば、測定感度を向上させるこ
とができるか、あるいは、測定時間を短縮することがで
きる。
【０００４】従って、本発明の目的は、マイクロプレー
トのウェルに、抗原や抗体等の免疫活性物質を効率良く
固相化することを可能にすることである。
トのウェルに、抗原や抗体等の免疫活性物質を効率良く
固相化することを可能にすることである。
【０００５】
【課題を解決するための手段】本願発明者らは、鋭意研
究の結果、マイクロプレートのウェルを、水溶性有機溶
媒で処理した後、乾燥させることにより、抗体や抗原等
の固相化効率が有意に向上することを見出し、本発明を
完成した。
究の結果、マイクロプレートのウェルを、水溶性有機溶
媒で処理した後、乾燥させることにより、抗体や抗原等
の固相化効率が有意に向上することを見出し、本発明を
完成した。
【０００６】すなわち、本発明は、マイクロプレートの
ウェルを、該マイクロプレートの材料を溶解しない水溶
性有機溶媒で処理した後、乾燥させて成る免疫測定用担
体を提供する。また、本発明は、上記本発明の免疫測定
用担体と、免疫活性物質とを接触させて該免疫活性物質
を前記免疫測定用担体に固相化することから成る、免疫
測定用固相の調製方法を提供する。
ウェルを、該マイクロプレートの材料を溶解しない水溶
性有機溶媒で処理した後、乾燥させて成る免疫測定用担
体を提供する。また、本発明は、上記本発明の免疫測定
用担体と、免疫活性物質とを接触させて該免疫活性物質
を前記免疫測定用担体に固相化することから成る、免疫
測定用固相の調製方法を提供する。
【０００７】
【発明の実施の形態】本発明に用いられるマイクロプレ
ートは、特に限定されず、市販のものであってよい。特
に、ポリスチレン製のものが抗原や抗体等の吸着性に優
れているので好ましい。ポリスチレン製のマイクロプレ
ートは広く市販されているので、それらを利用すること
ができる。γ線を照射したマイクロプレートも利用する
ことができる。
ートは、特に限定されず、市販のものであってよい。特
に、ポリスチレン製のものが抗原や抗体等の吸着性に優
れているので好ましい。ポリスチレン製のマイクロプレ
ートは広く市販されているので、それらを利用すること
ができる。γ線を照射したマイクロプレートも利用する
ことができる。
【０００８】本発明で言う「水溶性有機溶媒」とは、水
を１０v/v ％以上溶解することができる有機溶媒を意味
し、好ましくは水を２０v/v ％以上溶解することができ
る有機溶媒である。なお、水溶性有機溶媒は、マイクロ
プレートの材料を溶解するものであってはならない。本
発明に用いることができる水溶性有機溶媒の好ましい例
として、メタノール、エタノール、プロパノール（n-,i
so- ）、ブタノール（n-, sec-, tert-)、のような炭素
数１〜４の脂肪族アルコールを挙げることができるが、
これらに限定されるものではなく、上記した「水溶性有
機溶媒」の定義に当てはまり、かつ、マイクロプレート
の材料を溶解しないものはいずれも用いることができ
る。また、複数の有機溶媒を混合して用いることも可能
である。これらのうち、プロパノール、２−プロパノー
ルが最も好ましい。なお、これらの水溶性有機溶媒は、
水を全く含まない状態で使用するのが最も好ましいが、
水をさらに１０ｖ／ｖ％以上溶解することができるので
あれば、水を含んでいてもよい。もっとも、水の量は少
ないほど好ましく、２０ｖ／ｖ％以下が好ましく、さら
に好ましくは１０ｖ／ｖ％以下である。
を１０v/v ％以上溶解することができる有機溶媒を意味
し、好ましくは水を２０v/v ％以上溶解することができ
る有機溶媒である。なお、水溶性有機溶媒は、マイクロ
プレートの材料を溶解するものであってはならない。本
発明に用いることができる水溶性有機溶媒の好ましい例
として、メタノール、エタノール、プロパノール（n-,i
so- ）、ブタノール（n-, sec-, tert-)、のような炭素
数１〜４の脂肪族アルコールを挙げることができるが、
これらに限定されるものではなく、上記した「水溶性有
機溶媒」の定義に当てはまり、かつ、マイクロプレート
の材料を溶解しないものはいずれも用いることができ
る。また、複数の有機溶媒を混合して用いることも可能
である。これらのうち、プロパノール、２−プロパノー
ルが最も好ましい。なお、これらの水溶性有機溶媒は、
水を全く含まない状態で使用するのが最も好ましいが、
水をさらに１０ｖ／ｖ％以上溶解することができるので
あれば、水を含んでいてもよい。もっとも、水の量は少
ないほど好ましく、２０ｖ／ｖ％以下が好ましく、さら
に好ましくは１０ｖ／ｖ％以下である。
【０００９】水溶性有機溶媒による処理は、マイクロプ
レートのウェルに水溶性有機溶媒を入れることにより、
あるいは、マイクロプレートを水溶性有機溶媒中に浸漬
したりすることにより行うことができる。処理は、水溶
性有機溶媒が液体である状態を維持できるいずれの温度
でも行うことができ、従って、室温で行うのが最も簡便
である。
レートのウェルに水溶性有機溶媒を入れることにより、
あるいは、マイクロプレートを水溶性有機溶媒中に浸漬
したりすることにより行うことができる。処理は、水溶
性有機溶媒が液体である状態を維持できるいずれの温度
でも行うことができ、従って、室温で行うのが最も簡便
である。
【００１０】処理後、マイクロプレートのウェルを乾燥
させる。乾燥は、水溶性有機溶媒の除去が達成されれば
よく、通常、室温ないし１２０℃で３０秒ないし２０分
間程度、好ましくは３０秒ないし１０分間程度行うこと
ができる。また、乾燥は乾燥機内で行ってもよいが、乾
燥時間を１０分間以下にするのであれば、室内で行って
もよい。
させる。乾燥は、水溶性有機溶媒の除去が達成されれば
よく、通常、室温ないし１２０℃で３０秒ないし２０分
間程度、好ましくは３０秒ないし１０分間程度行うこと
ができる。また、乾燥は乾燥機内で行ってもよいが、乾
燥時間を１０分間以下にするのであれば、室内で行って
もよい。
【００１１】乾燥後、直ちに免疫活性物質を固相化す
る。乾燥後の担体を空気中に放置すると、空気中の水分
が再度担体表面に付着するので、できるだけ速やかに固
相化処理に移ることが好ましく、室内に放置する場合、
水性有機溶媒による処理から固相化処理までの時間は１
０分間以下が好ましく、さらに好ましくは５分間以下で
ある。なお、担体にリガンドを結合させる直前に水溶性
有機溶媒処理を行うことが好ましいが、水溶性有機溶媒
で処理したマイクロプレートを乾燥器内や真空包装内に
収容して湿気を遮断することにより、保存や輸送が可能
である。また、水溶性有機溶媒中に浸漬した状態で保存
や輸送を行うことも可能である。
る。乾燥後の担体を空気中に放置すると、空気中の水分
が再度担体表面に付着するので、できるだけ速やかに固
相化処理に移ることが好ましく、室内に放置する場合、
水性有機溶媒による処理から固相化処理までの時間は１
０分間以下が好ましく、さらに好ましくは５分間以下で
ある。なお、担体にリガンドを結合させる直前に水溶性
有機溶媒処理を行うことが好ましいが、水溶性有機溶媒
で処理したマイクロプレートを乾燥器内や真空包装内に
収容して湿気を遮断することにより、保存や輸送が可能
である。また、水溶性有機溶媒中に浸漬した状態で保存
や輸送を行うことも可能である。
【００１２】担体に固相化される免疫活性物質（本明細
書において「リガンド」ということがある）は、抗原抗
体反応を行うことができるあらゆる物質を意味し、抗原
及び抗体のみならず、それらの断片、例えばハプテンや
抗体のFab フラグメント、F(ab')2 フラグメント等をも
包含する。また、固相化は、リガンドを緩衝液中に溶解
した溶液と担体とを接触させることにより行うことがで
きる。この場合、固相化反応は、従来と同様、室温で１
５分間〜２時間程度、４℃なら一夜程度で行うことがで
きる。また、固相化に用いるリガンド溶液の濃度は、リ
ガンドの種類や測定すべき検体中の物質の種類や濃度に
応じて適宜選択することが可能であるが、通常０．５〜
２００μｇ／ｍｌ程度である。
書において「リガンド」ということがある）は、抗原抗
体反応を行うことができるあらゆる物質を意味し、抗原
及び抗体のみならず、それらの断片、例えばハプテンや
抗体のFab フラグメント、F(ab')2 フラグメント等をも
包含する。また、固相化は、リガンドを緩衝液中に溶解
した溶液と担体とを接触させることにより行うことがで
きる。この場合、固相化反応は、従来と同様、室温で１
５分間〜２時間程度、４℃なら一夜程度で行うことがで
きる。また、固相化に用いるリガンド溶液の濃度は、リ
ガンドの種類や測定すべき検体中の物質の種類や濃度に
応じて適宜選択することが可能であるが、通常０．５〜
２００μｇ／ｍｌ程度である。
【００１３】本発明の免疫測定用担体は、固相担体を用
いて行う免疫測定を行う方法のいずれにも用いることが
でき、これを用いた免疫測定方法自体は基本的に従来と
同様である。すなわち、本発明の免疫測定用担体には、
上記のようにリガンドを固相化する。このようなリガン
ドを本発明の免疫測定用担体に固相化したものは従来と
同様、例えばサンドイッチ法等に用いることができる。
いて行う免疫測定を行う方法のいずれにも用いることが
でき、これを用いた免疫測定方法自体は基本的に従来と
同様である。すなわち、本発明の免疫測定用担体には、
上記のようにリガンドを固相化する。このようなリガン
ドを本発明の免疫測定用担体に固相化したものは従来と
同様、例えばサンドイッチ法等に用いることができる。
【００１４】サンドイッチ法に用いる場合、従来と同
様、リガンドを固相化した本発明の担体を、カゼインや
ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）等のタンパク質でブロッ
キング後、検体と反応させる。次いで、担体を洗浄後、
第２抗体を反応させ、洗浄後、固相に残っている第２抗
体を測定する。第２抗体の測定は、予め第２抗体を酵
素、蛍光色素、ビオチン、放射性物質等で標識してお
き、これらの標識を検出することにより行うことができ
る。なお、本発明の免疫測定用担体は、サンドイッチ法
に限らず、リガンドを固相化して用いるあらゆる免疫測
定に利用可能である。
様、リガンドを固相化した本発明の担体を、カゼインや
ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）等のタンパク質でブロッ
キング後、検体と反応させる。次いで、担体を洗浄後、
第２抗体を反応させ、洗浄後、固相に残っている第２抗
体を測定する。第２抗体の測定は、予め第２抗体を酵
素、蛍光色素、ビオチン、放射性物質等で標識してお
き、これらの標識を検出することにより行うことができ
る。なお、本発明の免疫測定用担体は、サンドイッチ法
に限らず、リガンドを固相化して用いるあらゆる免疫測
定に利用可能である。
【００１５】下記実施例に具体的に示されるように、マ
イクロプレートのウェルを水溶性有機溶媒で処理するこ
とにより、免疫測定の感度が有意に上昇し、従って、同
じ測定条件で同程度の感度を達成するのに必要なリガン
ドの量を有意に減少させることができる。リガンドは高
価であるので、リガンドの量を減少できることは大きな
利点である。
イクロプレートのウェルを水溶性有機溶媒で処理するこ
とにより、免疫測定の感度が有意に上昇し、従って、同
じ測定条件で同程度の感度を達成するのに必要なリガン
ドの量を有意に減少させることができる。リガンドは高
価であるので、リガンドの量を減少できることは大きな
利点である。
【００１６】水溶性有機溶媒による処理を行うことによ
り、なぜ免疫測定の感度が向上するのかは確認されてい
ないが、おそらく有機溶媒が蒸発する際に、マイクロプ
レートのウェルの表面に付着している水が分離レベルで
除去されるために、固相化できるリガンドの量が増大す
ることに起因すると推測される。
り、なぜ免疫測定の感度が向上するのかは確認されてい
ないが、おそらく有機溶媒が蒸発する際に、マイクロプ
レートのウェルの表面に付着している水が分離レベルで
除去されるために、固相化できるリガンドの量が増大す
ることに起因すると推測される。
【００１７】
【実施例】以下、実施例により、本発明をより具体的に
説明する。もっとも、本発明は下記実施例に限定される
ものではない。
説明する。もっとも、本発明は下記実施例に限定される
ものではない。
【００１８】実施例１ (1) マイクロプレートの処理 市販のポリスチレン製マイクロプレート（ＮＵＮＣ社製
４６８６６７マキシソープ）の各ウェルに１００μｌの
２−プロパノールを８連ピペットで滴下した。室温で５
分間放置し、２−プロパノールを蒸発させた。蒸発の完
了は、２−プロパノール臭を感じないことから確認し
た。
４６８６６７マキシソープ）の各ウェルに１００μｌの
２−プロパノールを８連ピペットで滴下した。室温で５
分間放置し、２−プロパノールを蒸発させた。蒸発の完
了は、２−プロパノール臭を感じないことから確認し
た。
【００１９】(2) 抗体固相の確認 ペルオキシダーゼ標識抗ヒトＩｇＧ抗体（ジャクソン社
製）を下記表１に示す抗体量となるように０．０１Ｍ
ＰＢＳ ｐＨ７で希釈して、上記マイクロプレートの各
ウェルに１００μｌ添加した。室温で１時間固相化後、
各ウェルを３００μｌの０．０５％ Tween20（商品名）
0.01M PBS pH7 で４回洗浄してＢＦ分離をした。
製）を下記表１に示す抗体量となるように０．０１Ｍ
ＰＢＳ ｐＨ７で希釈して、上記マイクロプレートの各
ウェルに１００μｌ添加した。室温で１時間固相化後、
各ウェルを３００μｌの０．０５％ Tween20（商品名）
0.01M PBS pH7 で４回洗浄してＢＦ分離をした。
【００２０】ペルオキシダーゼに対する基質であるテト
ラメチルベンジジン（ＴＭＢ）の溶液２００μｌを添
加、室温で５分間反応させ、２Ｎ硫酸を１００μｌ添加
して酵素反応を停止した。市販のマイクロプレートリー
ダー（日本インターメッドマイクロプレートリーダーＮ
Ｊ２００１）を用いて４５０ｎｍでの吸光度を測定し
た。結果を下記表１に示す。
ラメチルベンジジン（ＴＭＢ）の溶液２００μｌを添
加、室温で５分間反応させ、２Ｎ硫酸を１００μｌ添加
して酵素反応を停止した。市販のマイクロプレートリー
ダー（日本インターメッドマイクロプレートリーダーＮ
Ｊ２００１）を用いて４５０ｎｍでの吸光度を測定し
た。結果を下記表１に示す。
【００２１】比較例１ 実施例１において、２−プロパノールによる処理を行わ
ないことを除き、実施例１と同じ処理を行った。結果を
下記表１に示す。
ないことを除き、実施例１と同じ処理を行った。結果を
下記表１に示す。
【００２２】
【表１】
【００２３】表１に示されるように、２−プロパノール
で処理したウェルを用いた場合には、２−プロパノール
で処理しなかったウェルを用いた場合よりも有意に測定
感度が向上した。
で処理したウェルを用いた場合には、２−プロパノール
で処理しなかったウェルを用いた場合よりも有意に測定
感度が向上した。
【００２４】実施例２ (1) 市販のポリスチレン製マイクロプレート（ＮＵ
ＮＣ社製４６８６６７マキシソープ）の各ウェルに６０
μｌの２−プロパノールを８連ピペットで滴下した。室
温で１０分間放置し、２−プロパノールを蒸発させた。
蒸発の完了は、２−プロパノール臭を感じないことから
確認した。
ＮＣ社製４６８６６７マキシソープ）の各ウェルに６０
μｌの２−プロパノールを８連ピペットで滴下した。室
温で１０分間放置し、２−プロパノールを蒸発させた。
蒸発の完了は、２−プロパノール臭を感じないことから
確認した。
【００２５】(2) Ｃ型肝炎ウイルス（ＨＣＶ）コアペ
プチド抗原の固相化 上記マイクロプレートの各ウェルにアミノ酸４０個で合
成したＨＣＶコアペプチドを０．０１Ｍ ＰＢＳ ｐＨ
７で１μｇ／ｍｌの濃度の調製、１００μｌを各ウェル
へ加えて固相化した。固相化は室温で１時間行った。３
００μｌの０．０５％ Tween20（商品名）0.01M PBS pH
7 で３回洗浄し、２００μｌの０．０１％ゼラチン0.01
M PBS pH7 を室温で１時間反応させ、ブロッキングし
た。
プチド抗原の固相化 上記マイクロプレートの各ウェルにアミノ酸４０個で合
成したＨＣＶコアペプチドを０．０１Ｍ ＰＢＳ ｐＨ
７で１μｇ／ｍｌの濃度の調製、１００μｌを各ウェル
へ加えて固相化した。固相化は室温で１時間行った。３
００μｌの０．０５％ Tween20（商品名）0.01M PBS pH
7 で３回洗浄し、２００μｌの０．０１％ゼラチン0.01
M PBS pH7 を室温で１時間反応させ、ブロッキングし
た。
【００２６】(3) ＨＣＶコア抗体の測定 他の手法でＨＣＶコアが陽性及び陰性を示した血清を用
いて測定を行った。血清サンプルは、１０％ヤギ血清１
％ＢＳＡ０．０５％Tween 20 0.01M PBS pH7で５０倍に
希釈した。希釈した血清サンプルは各ウェルは１００μ
ｌ添加した。室温で３０分間反応後、３００μｌの０．
０５％ Tween20（商品名）0.01M PBS pH7 で５回洗浄し
た。さらに、ＴＭＢ基質溶液を１００μｌ添加して室温
で１５分間反応後、２Ｎ硫酸を１００μｌ添加した。市
販のマイクロプレートリーダー（日本インターメッドマ
イクロプレートリーダーＮＪ２００１）を用いて４９０
ｎｍでの吸光度を測定した。その結果、陰性サンプルで
は吸光度は０．２１５であり、陽性サンプルでは吸光度
は１．５６８であった。
いて測定を行った。血清サンプルは、１０％ヤギ血清１
％ＢＳＡ０．０５％Tween 20 0.01M PBS pH7で５０倍に
希釈した。希釈した血清サンプルは各ウェルは１００μ
ｌ添加した。室温で３０分間反応後、３００μｌの０．
０５％ Tween20（商品名）0.01M PBS pH7 で５回洗浄し
た。さらに、ＴＭＢ基質溶液を１００μｌ添加して室温
で１５分間反応後、２Ｎ硫酸を１００μｌ添加した。市
販のマイクロプレートリーダー（日本インターメッドマ
イクロプレートリーダーＮＪ２００１）を用いて４９０
ｎｍでの吸光度を測定した。その結果、陰性サンプルで
は吸光度は０．２１５であり、陽性サンプルでは吸光度
は１．５６８であった。
【００２７】比較例２ ２−プロパノールでウェルを処理しないことを除き、実
施例２と全く同じ操作を行った。
施例２と全く同じ操作を行った。
【００２８】その結果、陰性サンプルでは吸光度は０．
２１４であり、陽性サンプルでは吸光度は１．３５６で
あった。
２１４であり、陽性サンプルでは吸光度は１．３５６で
あった。
【００２９】実施例２と比較例２の比較から、本発明に
よれば、測定感度が約１６％向上した。
よれば、測定感度が約１６％向上した。
【００３０】
【発明の効果】本発明によれば、従来のマイクロプレー
トよりも固相化効率の優れたマイクロプレートから成る
免疫測定用担体が提供された。本発明の免疫測定用担体
を用いることにより、免疫測定の感度を有意に向上させ
ることができる。
トよりも固相化効率の優れたマイクロプレートから成る
免疫測定用担体が提供された。本発明の免疫測定用担体
を用いることにより、免疫測定の感度を有意に向上させ
ることができる。
Claims (5)
- 【請求項１】 マイクロプレートのウェルを、該マイク
ロプレートの材料を溶解しない水溶性有機溶媒で処理し
た後、乾燥させて成る免疫測定用担体。 - 【請求項２】 前記水溶性有機溶媒は、炭素数１〜４の
脂肪族アルコールである請求項１記載の免疫測定用担
体。 - 【請求項３】 前記水溶性有機溶媒はプロパノールであ
る請求項２記載の免疫測定用担体。 - 【請求項４】 前記マイクロプレートは、ポリスチレン
から成る請求項１ないし３のいずれか１項に記載の免疫
測定用担体。 - 【請求項５】 請求項１ないし４のいずれか１項に記載
の免疫測定用担体と、免疫活性物質とを接触させて該免
疫活性物質を前記免疫測定用担体に固相化することから
成る、免疫測定用固相の調製方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP36801897A JPH11194128A (ja) | 1997-12-27 | 1997-12-27 | 免疫測定用担体及びそれを用いた免疫測定用固相の調製方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP36801897A JPH11194128A (ja) | 1997-12-27 | 1997-12-27 | 免疫測定用担体及びそれを用いた免疫測定用固相の調製方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH11194128A true JPH11194128A (ja) | 1999-07-21 |
Family
ID=18490771
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP36801897A Pending JPH11194128A (ja) | 1997-12-27 | 1997-12-27 | 免疫測定用担体及びそれを用いた免疫測定用固相の調製方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH11194128A (ja) |
-
1997
- 1997-12-27 JP JP36801897A patent/JPH11194128A/ja active Pending
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