JPH09224475A

JPH09224475A - 植物の栽培方法

Info

Publication number: JPH09224475A
Application number: JP8092871A
Authority: JP
Inventors: Masami Mochizuki; 正己望月; Hiroshi Matsunaka; 洋松中; Keiko Urabe; 恵子浦部
Original assignee: Idemitsu Kosan Co Ltd
Current assignee: Idemitsu Kosan Co Ltd
Priority date: 1995-12-20
Filing date: 1996-04-15
Publication date: 1997-09-02

Abstract

(57)【要約】【課題】土壌病害、特に青枯病を継続して防除しつつ
健康な植物を栽培する方法を提供する。【解決手段】シュードモナス・フルオレセンス、シュ
ードモナス・プチダ等のシュードモナス属細菌を含む微
生物資材で、好ましくは１０⁵〜１０¹²ｃｆｕ／ｍｌの
菌体濃度で植物を処理し、その植物を台木に用いて接ぎ
木栽培を行うことにより土壌病害を防除しつつ植物の栽
培を行う。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】

【発明の属する技術分野】本発明は、植物の栽培方法に
関し、詳しくは、土壌病害を防除しつつ植物を栽培する
栽培方法、及びその方法に用いられる接ぎ木栽培用の台
木の製造方法に関する。

【０００２】

【従来の技術】農作物等の植物を栽培する際に、土壌病
害を防ぐために様々な病害防除方法がとられてきた。こ
のような方法として、殺菌剤、燻蒸剤もしくは蒸気など
による土壌消毒が行われてきた。しかし、これらの殺菌
剤等は、使用者を危険にさらすだけでなく、環境汚染を
引き起こす原因となる場合もある。また、土壌消毒の効
果は土壌の表層部に留まるため、土壌病害が存在する土
壌深層部には消毒効果が及ばず、土壌病害が発生する可
能性が高い状態で植物を栽培せざるを得ない。さらに、
土壌消毒によって土壌中の微生物が非選択的に殺菌され
てしまうため、土壌中の微生物相が変化してしまい、土
壌病害発生をかえって助長してしまう場合がある。

【０００３】以上のような問題から、植物そのものの病
害抵抗性を強化することが必要となっており、土壌病害
に対する抵抗性品種の開発や、土壌病害抵抗性能を有す
る植物を台木として利用する接ぎ木栽培方法が開発され
ている。しかし、栽培しようとする植物や、接ぎ木の台
木として使用される植物の土壌病害抵抗性能の向上は、
その植物の品種改良等によるものがほとんどであり、土
壌病害抵抗性能が向上した植物が実用化されるまでには
多くの時間を必要とする。したがって、土壌病害防除対
策が遅れるといった問題がある。

【０００４】また、上記の接ぎ木栽培方法は、土壌病害
を防除しながら植物を栽培する方法として一般的に知ら
れており、実用化されているが、この方法は台木とする
植物の土壌病害抵抗性能を利用して土壌病害を防除しよ
うとするものであり、台木の土壌病害抵抗性能が経時的
に低下したり、新しい病原菌のレースの出現により土壌
病害抵抗性能が消失する等、長期間の病害防除効果の継
続を望めない場合がある。

【０００５】一方、農業分野での有用微生物の利用につ
いて、多くの研究や報告がなされており、これらの有用
微生物を利用した微生物資材の開発が試みられている。
その多くは、土壌病害の生物的防除に関係するものであ
り、特に、土壌病害に対する有用微生物の拮抗性能は重
要な機能として考えられており、この拮抗性能を利用し
た微生物資材の開発や拮抗作用のメカニズム等の研究が
多くなされている。中でもシュードモナス属細菌は土壌
病害に対する拮抗作用が高く、この細菌を植物体に接種
することにより土壌病害に対する防除を図る微生物資材
の開発が行われている（特開平７−１６３３３４号）
が、病原菌密度の高い土壌病害の多発圃場では十分な効
果が得られないなど、実用化にはまだ解決しなければな
らない問題もある。

【０００６】

【発明が解決しようとする課題】以上のように、従来の
土壌病害防除方法はそれぞれに問題点があり、満足でき
るものではなかった。特に、トマト、ナス、ピーマン等
のナス科植物では土壌病害の一つである青枯病により多
大な被害を被ることがあり、青枯病を防除しつつ健康な
作物を栽培する方法が強く求められていた。

【０００７】本発明は、上記観点からなされたものであ
り、土壌病害、特に青枯病を継続して防除しつつ健康な
植物を栽培する方法を提供することを課題とする。

【０００８】

【課題を解決するための手段】本発明者らは、上記課題
を解決するために鋭意研究を重ねた結果、接ぎ木に用い
られる台木にシュードモナス属細菌を感染させることに
より、土壌病害抵抗性能を長期間にわたって保持する台
木を得ることができることを見出し、本発明を完成させ
るに至った。

【０００９】すなわち本発明は、植物の接ぎ木栽培に用
いる台木をシュードモナス属細菌を含む微生物資材で処
理し、前記植物を栽培することによって土壌病害を防除
することを特徴とする植物の栽培方法である。

【００１０】本発明はその態様として、上記栽培方法に
おいて、接ぎ木に先だって台木を微生物資材で処理する
ことを特徴とする方法を提供する。本発明の方法におい
て、前記土壌病害としては、青枯病が挙げられる。ま
た、本発明の方法を適用する植物としてはナス科植物が
挙げられる。

【００１１】また、本発明の方法に使用するシュードモ
ナス属細菌は、植物の土壌病害に対して拮抗作用を有す
るものであれば特に限定されるものではないが、好まし
くは、シュードモナス・フルオレセンスおよびシュード
モナス・プチダ等が挙げられる。また、シュードモナス
・フルオレセンスのうちでも特に好ましい菌株として、
トマトの根より分離されたシュードモナス・フルオレセ
ンスＦＥＲＭＰ−１５０６３株を、また、シュードモ
ナス・プチダのうちでも特に好ましい菌株として、トマ
トの根より分離されたシュードモナス・プチダＦＥＲＭ
Ｐ−１５０６４株を例示することができる。

【００１２】本発明の方法において、微生物資材による
台木の処理の具体的手段としては、台木の根部または一
部を切断した根部を微生物懸濁液に浸漬する方法が挙げ
られる。

【００１３】台木を微生物資材で処理する際のシュード
モナス属細菌の菌体濃度は、１０⁵〜１０¹²ｃｆｕ／ｍ
ｌであることが好ましい。本発明はまた、接ぎ木栽培の
台木として用いられる植物を、シュードモナス属細菌を
含む微生物資材で処理することを特徴とする、土壌病害
抵抗性を有する台木の製造方法を提供する。

【００１４】

【発明の実施の形態】以下、本発明の実施の形態を具体
的に説明する。

【００１５】＜１＞本発明を適用し得る植物本発明の植物の栽培方法においては、接ぎ木栽培に用い
られる台木をシュードモナス属細菌を含む微生物資材で
処理することによって、その台木に継続して土壌病害抵
抗性を保持させることができる。土壌病害は、通常、植
物の根部から感染するので、台木が土壌病害抵抗性を有
していれば、接ぎ木栽培に使用する穂木として用いられ
る植物が土壌病害抵抗性を有していなくても、接ぎ木す
ることによって土壌病害を防除することができる。

【００１６】台木として用いられる植物は、栽培しよう
とする植物すなわち穂木と癒合させることができる植物
であればよい。台木として好ましい植物は、本来的に、
すなわちその植物固有の性質として、土壌病害抵抗性を
有しているものである。このような土壌病害抵抗性を有
する植物品種は、一般に、栽培中にその抵抗性が経時的
に低下したり、新しい病原菌のレースの出現により抵抗
性が消失したりするが、台木をシュードモナス属細菌を
含む微生物資材で処理すると、その台木に継続して土壌
病害抵抗性を保持させることができる。また、本来的に
土壌病害抵抗性を有していない植物であっても、これを
シュードモナス属細菌を含む微生物資材で処理すると、
土壌病害抵抗性をある程度獲得することができる場合が
ある。したがって、土壌病害抵抗性を有していないが、
穂木として用いる植物よりも優れた性質を有する植物を
台木として利用することも、有用であると期待される。

【００１７】穂木に用いられる植物は、好ましくはナス
科植物、例えばトマト、ナス、ピーマン等であるが、他
の科に属する植物にも本発明は適用され得る。上記のナ
ス科植物は、土壌病害として青枯病が問題となることが
多いが、本発明の方法は青枯病を有効に防除することが
できる。

【００１８】ナス科植物の青枯病抵抗性の品種として具
体的には、トマトについては桃太郎Ｔ９３、ＬＳ８９、
ヘルパーＭ、興津１０１号、影武者等の品種が挙げられ
る。ナスについては、赤ナス、トムバム・ビガー、トレ
ロ、カレヘンなどの品種が挙げられる。

【００１９】＜２＞本発明に用いる微生物資材次に、微生物資材について説明する。本発明に用いられ
る微生物資材は、シュードモナス属細菌を含むものであ
る。シュードモナス属細菌としては、植物に感染し、そ
の植物の土壌病害抵抗性を強化するものであればよい。
シュードモナス属細菌として、好ましくはシュードモナ
ス・フルオレセンス（Pseudomonas fluorescens）、シ
ュードモナス・プチダ（Pseudomonas putida）等が挙げ
られる。また、シュードモナス・フルオレセンスのうち
でも特に好ましい菌株としてシュードモナス・フルオレ
センスＦＥＲＭＰ−１５０６３株を、また、シュード
モナス・プチダのうちでも特に好ましい菌株としてシュ
ードモナス・プチダＦＥＲＭＰ−１５０６４株を例示
することができる。

【００２０】これら２つの菌株は、後述の実施例に示す
様にしてそれぞれトマトの根より分離された菌株であっ
て、菌学的には以下の表１〜表３に示す性質を有するも
のである。これらの菌学的諸性質を、バージェイズ・マ
ニュアル・オブ・システマティック・バクテリオロジー
（Bergey's Manual of Systematic Bacteriology Vol.
1,[P.H.A.Sneath, N.S.Mair, M.E.Sharpe and J.G.Holt
(1986)Williams & Wilkins]）に従って調べた結果、そ
れぞれシュードモナス・フルオレセンス、シュードモナ
ス・プチダに属する新規菌株であると同定された。ま
た、これら菌株は、平成７年７月２６日に通商産業省工
業技術院生命工学工業技術研究所（郵便番号３０５日
本国茨城県つくば市東一丁目１番３号）に、上記受託番
号ＦＥＲＭＰ−１５０６３、ＦＥＲＭＰ−１５０６４
として寄託されている。

【００２１】なお、表２、表３中のＮＤは、その試験項
目に関して試験を行わなかったことを示している。

【００２２】

【表１】

【００２３】＊：コロニー形態は、ＹＰＡ培地（１Ｌの
脱イオン水にイーストエキス５ｇ、ペプトン１０ｇ、寒
天１５ｇを添加し、ｐＨを７に調整して作製）を用いて
３０℃で得られたコロニーの形態を観察したものであ
る。

【００２４】

【表２】

【００２５】＊：生理学的性質１はＡＰＩ社の同定キッ
トを用いて実施した。同定試験条件は３０℃、４８時間
であった。

【００２６】

【表３】

【００２７】＊１：生理学的性質２はＡＰＩ社の同定キ
ットを用いて実施した。同定試験条件は３０℃、７日間
であった。＊２：ＰＷＳはペプトンシュークロース水を表す。

【００２８】シュードモナス属細菌の培養は、通常の培
養方法に準じて行えばよい。培養に用いる培地は、例え
ば、イーストエキス・ペプトン培地、ジャガイモ半合成
培地等シュードモナス属細菌の培養が可能な培地を用い
る。培養条件も、シュードモナス属細菌の培養が可能で
あれば特に制限されず、通常、温度１０〜３８℃で、好
気性条件下で培養は行われる。

【００２９】上記のようにして培養したシュードモナス
属細菌の培養物は、そのまま、あるいは菌体を濃縮した
後に、必要に応じて担体等と混合して微生物資材とする
ことができる。担体としては、通常微生物資材に用いら
れる有機質の素材または無機質の素材を用いることがで
きる。また、通常微生物資材に用いられる他の成分を適
宜配合してもよい。微生物資材に含ませるシュードモナ
ス属細菌は、単独でも、２種以上の混合物であってもよ
い。微生物資材の剤型、調製方法は特に制限されない。

【００３０】微生物資材中のシュードモナス属細菌の含
有量は、特に制限されないが、微生物資材で台木を処理
する際に、菌体濃度が好ましくは１０⁵〜１０¹²ｃｆｕ
／ｍｌ、より好ましくは１０⁷〜１０¹²ｃｆｕ／ｍｌの
範囲の菌体懸濁液を調製することができるものであるこ
とが望ましい。尚、「ｃｆｕ」は、コロニー形成単位
（菌体懸濁液の希釈液を寒天培地にまいたときに形成さ
れるコロニー数）を示す。

【００３１】＜３＞本発明の植物の栽培方法及び台木の
製造方法本発明の方法においては、接ぎ木栽培に用いる台木を、
上記の微生物資材で処理する。微生物資材で台木を処理
する方法としては、微生物資材中のシュードモナス属細
菌が台木に感染することができればよく、例えば、微生
物資材を水で希釈するなどしてシュードモナス属細菌懸
濁液を調製し、この懸濁液に植物を浸漬する、懸濁液を
台木に注射する、懸濁液を台木が植えられている培土に
潅注する等の方法が挙げられる。

【００３２】上記の処理方法の中では、微生物懸濁液に
台木を浸漬する方法が好ましい。具体的には、例えば、
台木の根部をそのまま、あるいは根部の一部をカッター
等で切断して、シュードモナス属細菌懸濁液に浸漬す
る。この場合、好ましい浸漬時間は１秒〜１２時間であ
り、特に好ましくは１分〜６０分である。また、その際
の微生物資材の温度は特に制限はないが、好ましくは２
０〜３５℃である。

【００３３】台木をシュードモナス属細菌懸濁液に浸漬
する際の菌体濃度は、栽培する植物等によっても異なる
が、通常、好ましくは１０⁵〜１０¹²ｃｆｕ／ｍｌであ
り、特に好ましくは１０⁷〜１０¹²ｃｆｕ／ｍｌであ
る。このような範囲の菌体濃度となるように、前記微生
物資材に水等を加えて微生物懸濁液を調製すればよい。

【００３４】尚、接ぎ木に先だって台木を微生物資材で
処理した後に、その台木に穂木を接ぎ木して得られた接
ぎ木を栽培することが好ましいが、接ぎ木した後に台木
部を微生物資材で処理しても、土壌病害抵抗性向上効果
が得られることが期待できる。

【００３５】以上のように台木を処理することにより、
土壌病害、特に青枯病に対する抵抗性能を継続して保持
する台木を得ることができる。その結果、穂木として用
いられる植物が土壌病害抵抗性を有していなくても、長
期間土壌病害を防除しつつ、植物を栽培することが可能
となる。

【００３６】

【実施例】以下に、本発明の実施例を説明する。

【００３７】

【製造例】シュードモナス属細菌の取得温室で栽培中のトマトの根を掘り出し、よく水洗した。
水洗したトマトの根を長さ約１ｃｍに切断し、滅菌済み
の乳鉢に入れて殺菌水を加えてすりつぶして懸濁液を作
製した。得られた懸濁液をＹＰＡ培地の表面に塗沫し、
２８℃で培養した。培養後、ＹＰＡ培地の表面に形成さ
れた細菌コロニーから、トマトに感染させた際の青枯病
に対する防除能力を指標として、２種類の細菌を単離し
た。単離したそれぞれの細菌を無菌水に懸濁させ、得ら
れた細菌懸濁液を新たにＹＰＡ培地の表面に塗沫し、２
８℃で培養した。これを３回繰り返し行い、それぞれの
純化株を得た。得られた純化株の菌学的、生理学的性質
を調べたところ、一方はシュードモナス・フルオレセン
スの新規菌株であり、他方はシュードモナス・プチダの
新規菌株であると判明した。これらは、通商産業省工業
技術院生命工学工業技術研究所（郵便番号３０５日本
国茨城県つくば市東一丁目１番３号）に、それぞれ順に
ＦＥＲＭＰ−１５０６３、ＦＥＲＭＰ−１５０６４の
受託番号で寄託されている。

【００３８】なお、上記で用いたＹＰＡ培地は、１Ｌの
脱イオン水に、バクト・イーストエキス（ディフコ社
製）５ｇ、バクト・ペプテン（ディフコ社製）１０ｇ、
Noble寒天（ディフコ社製）１５ｇを加えて調製し、ｐ
Ｈ７に調整した培地であった。

【００３９】

【実施例１】トマトの青枯病抵抗性品種（桃太郎Ｔ９
３、ＬＳ８９及びヘルパーＭ）の種子を、それぞれ培養
土の苗床に播種し、発芽させ、本葉が２〜３枚展開する
まで温室にて育苗した。

【００４０】上記製造例で得られた、シュードモナス・
フルオレセンス（ＦＥＲＭＰ−１５０６３）、及びシ
ュードモナス・プチダ（ＦＥＲＭＰ−１５０６４）
を、各々ジャガイモ半合成培地に接種し、２８℃で４８
時間培養した。各々の培養物に滅菌水を加えて菌体濃度
がそれぞれ１０9^ｃｆｕ／ｍｌになるように調製した。

【００４１】育苗した各々の品種のトマト苗を苗床から
取り出し、根部を水洗し、上記のようにして調製した菌
体懸濁液に１２分間浸漬した。その後、培養土を入れた
ポット（１／５０００ａワグネルポット）に苗を定植
し、温室にて栽培した。定植後５日目に、青枯病菌が１
０⁷ｃｆｕ／ｍｌになるように滅菌水を加えて調製した
病原菌懸濁液を株あたり５ｍｌ潅注した。尚、試験例１
〜試験例３ではシュードモナス・フルオレセンスの菌体
懸濁液を、試験例４〜試験例６ではシュードモナス・プ
チダの菌体懸濁液を用いた。

【００４２】また、比較例１〜比較例３として、同様に
して育苗したトマト苗を苗床から取り出し、根部を水洗
した後、培養土を入れたポット（１／５０００ａワグネ
ルポット）に定植し、温室にて栽培した。

【００４３】定植後５日目に、各試験例及び比較例のト
マト苗に、青枯病菌が１０⁷ｃｆｕ／ｍｌになるように
滅菌水を加えて調製した病原菌懸濁液を、株あたり５ｍ
ｌ潅注した。

【００４４】尚、いずれの場合においても、温室内室温
は２５℃以上３５℃以下になるように調節した。各々の
トマト苗について、病原菌接種後の地上部の青枯病の発
病状況を経時的に観察し、数１式によって発病株率を求
めた。結果を表４に示す。

【００４５】

【数１】発病率(％) ＝１００×(発病した株数)／(定
植した株数)

【００４６】

【表４】

【００４７】この結果から明らかなように、各試験例で
はシュードモナス属細菌をトマトに感染させることによ
って、比較例に比べて青枯病に対する抵抗性能を長期間
保持することができる。

【００４８】

【実施例２】トマトの青枯病抵抗性品種（興津１０１
号、影武者）およびナスの青枯病抵抗性品種（赤ナス、
トムバム・ビガー）の種子を、それぞれ培養土の苗床に
播種し、発芽させ、本葉が２〜３枚展開するまで温室に
て育苗した。

【００４９】育苗した各々の品種のトマト苗またはナス
苗を苗床から取り出し、根部を水洗した後、根部の一部
をカッターナイフで切断し、実施例１と同様にして調製
したシュードモナス属細菌懸濁液に８分間浸漬した。そ
の後、培養土を入れたポット（１／５０００ａワグネル
ポット）に苗を定植し、温室にて栽培した。尚、試験例
７〜試験例１０ではシュードモナス・フルオレセンスの
菌体懸濁液を、試験例１１〜試験例１４ではシュードモ
ナス・プチダの菌体懸濁液を用いた。

【００５０】また、比較例１〜比較例３として、同様に
して育苗したトマト苗を苗床から取り出し、根部を水洗
した後、培養土を入れたポット（１／５０００ａワグネ
ルポット）に定植し、温室にて栽培した。

【００５１】また、比較例４〜７として、試験例と同様
にして育苗したトマト苗およびナス苗を苗床から取り出
し、根部を水洗した後、根部の一部をカッターナイフで
切断した苗を培養土を入れたポット（１／５０００ａワ
グネルポット）に定植し、温室にて栽培した。

【００５２】定植後７日目に、トマトには青枯病菌、ナ
スにはナス青枯病菌の病原菌懸濁液（菌体濃度を１０⁸
ｃｆｕ／ｍｌに調製）を株あたりに１０ｍｌ潅注した。
いずれの場合においても、温室内室温は２５℃以上３５
℃以下になるように調節した。

【００５３】各々のトマト苗及びナス苗について、病原
菌接種後の地上部の青枯病の発病状況を経時的に観察し
た。観察時の発病の程度を下記発病度により表し、数２
式によって平均発病度を求めた。結果を表５に示す。〔発病度〕０：無病１：１／４発病２：１／２発病３：３／４発病４：枯死

【００５４】

【数２】平均発病度(％) ＝ 100×(4×n₄+3×n₃+2×n₂+
1×n₁)／4×(n₄+n₃+n₂+n₁+n₀) ｎ₄：発病度４の株数、ｎ₃：発病度３の株数、ｎ₂：発
病度２の株数ｎ₁：発病度１の株数、ｎ₀：発病度０の株数

【００５５】

【表５】

【００５６】本実施例においても、各試験例ではシュー
ドモナス属細菌をトマト及びナスに感染させることによ
って、比較例に比べて青枯病に対する抵抗性能を長期間
保持することができることが明らかである。

【００５７】

【発明の効果】本発明によれば、土壌病害、特に青枯病
を継続して防除しつつ、健康な植物を栽培することがで
きる。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁶ 識別記号庁内整理番号ＦＩ技術表示箇所 (Ｃ１２Ｎ 1/20 Ｃ１２Ｒ 1:40）

Claims

【特許請求の範囲】

【請求項１】植物の接ぎ木栽培に用いる台木をシュー
ドモナス属細菌を含む微生物資材で処理し、前記植物を
栽培することによって土壌病害を防除することを特徴と
する植物の栽培方法。
【請求項２】接ぎ木に先だって台木を微生物資材で処
理することを特徴とする請求項１の方法。
【請求項３】前記土壌病害が青枯病である請求項１記
載の方法。
【請求項４】前記植物がナス科植物である請求項１記
載の方法。
【請求項５】シュードモナス属細菌が、シュードモナ
ス・フルオレセンスおよびシュードモナス・プチダから
選ばれる請求項１記載の方法。
【請求項６】シュードモナス属細菌が、シュードモナ
ス・フルオレセンスＦＥＲＭＰ−１５０６３株および
シュードモナス・プチダＦＥＲＭＰ−１５０６４株か
ら選ばれる請求項１記載の方法。
【請求項７】微生物資材による台木の処理を、台木の
根部または一部を切断した根部を微生物懸濁液に浸漬す
ることにより行うことを特徴とする請求項１記載の方
法。
【請求項８】台木を微生物資材で処理する際のシュー
ドモナス属細菌の菌体濃度が１０⁵〜１０¹²ｃｆｕ／ｍ
ｌである請求項１記載の方法。
【請求項９】接ぎ木栽培の台木として用いられる植物
を、シュードモナス属細菌を含む微生物資材で処理する
ことを特徴とする、土壌病害抵抗性を有する台木の製造
方法。