JPH08503941A

JPH08503941A - 永続性抗菌剤

Info

Publication number: JPH08503941A
Application number: JP6513133A
Authority: JP
Inventors: ローニック、カール・エフ
Original assignee: ミネソタ・マイニング・アンド・マニュファクチュアリング・カンパニー
Priority date: 1992-12-01
Filing date: 1993-10-28
Publication date: 1996-04-30
Anticipated expiration: 2021-12-27
Also published as: EP0671882B1; NZ257762A; NO952163L; DE69319921D1; DE69319921T2; BR9307554A; CA2146549A1; JP3863913B2; TW266147B; KR100317145B1; KR950703853A; NO952163D0; AU682832B2; US5643971A; CN1083693C; EP0671882A1; CN1256287A; CA2146549C; MX9307319A; US5821271A

Abstract

(57)【要約】本発明には、吸水性物品中に分散し得るか、または代わりにその中に形成され得る金属錯体を含み、そしてそれはスポンジ内に位置する１種以上の金属イオン、遷移金属イオンとキレート化した少なくとも１つのキレート化ポリマーおよび遷移金属イオンとキレート化した少なくとも１つの増強剤を含む。

Description

【発明の詳細な説明】永続性抗菌剤（技術分野）本発明は抗菌剤に関する。特に、本発明は抗菌剤を含有するスポンジに関する。（背景技術）スポンジは、吸収特性を有する、軽い繊維結合構造である。それらは、ポリマー、例えばウレタン類およびセルロースを包含する種々の異なる材料から多くの異なる方法で製造され得る。好ましいスポンジは、その優れた水収着性のために、セルローススポンジである。これらスポンジは、硫酸ナトリウム結晶をビスコースセルロース内に分散することにより作製する。一旦ビスコースセルロースと混合すると、硫酸ナトリウム結晶が、ビスコースセルロースを加熱することによりスポンジ外へ溶出され、その間にビスコースセルロースが再生または不溶状態に凝固する。再生したら、ビスコースセルローススポンジを水洗する。他のスポンジより優れた水収着性を示すが、セルローススポンジはこの特徴によるいくつかの欠点を有する。１つの欠点としては、スポンジが、好ましくない微生物、例えばバクテリアおよび菌類（fungi）を含む水分を吸収し得ることである。これら微生物は、スポンジ内の湿潤環境下で増殖および急速に繁殖し、スポンジ強度および結合性（integrity）に損失を生じることによりスポンジを劣化し得る。加えて、その微生物はスポンジ使用者にとって不愉快な臭気を発し得る。更に、これら微生物の多くは病原体であり、それにより健康および安全性の問題を生じる。病原微生物、例えばグラム陰性菌、グラム陽性菌、酵母菌および菌類はすべてスポンジ内で発見された。そのような問題は特に、消毒および伝染病の防止が最も重大である食品サービスおよび医療産業では重要である。例えば食品サービス産業では、サルモネラ・コレレスイス（salmonella choleraesuis）が、スポンジに接触した表面からスポンジに移送され得る。そのサルモネラ・コレレスイスはスポンジ内で繁殖し、その他の表面に移送され得、それにより伝染の機会が増加する。スポンジを抗菌剤、例えば殺生剤で処理することにより、セルローススポンジ内のこれらの好ましくない微生物の増殖を抑制または防止する多くの試みがなされた。例えば、米国特許第3,018,192号（ヘネマン（Hennemann）等）には、４級アンモニウム化合物と、アルカリ金属塩またはカルボキシメチルセルロースのどちらかとの反応生成物の殺生剤としての使用が開示されている。米国特許第3,594,221号（バルドウィン（Baldwin））には、繊維状材料を殺菌剤、例えば４級アンモニウム化合物で処理する他の方法が開示されている。この方法では、最初に繊維状材料に酸またはアルカリ金属モンモリロナイトクレーを含浸する。一旦クレーで含浸し、その材料を殺菌剤で浸出させる。スポンジおよび他のセルロースをベースとした製品内での微生物の増殖を防止するその他の試みが、欧州特許第358,572号（コリン（Collin））に開示されている。コリンは殺生物特性を多孔性のセルロースをベースとした生品に付与する後再生（post-regeneraive）処理を開示している。セルロースをベースとした生品は、水性殺生剤、例えば４級アンモニウム化合物またはオリゴマーポリアルケン-2-グアニド塩を含む溶液で含浸させる。また、その溶液にはバインダー、例えばアクリルラテックス、ブタジエン-スチレンラテックスまたはビニルラテックスを含有する。含浸後、第２の溶液をセルロースをベースとした生成物に接触させる。この第２の溶液は殺生剤をセルロースをベースとした生成物の多孔性表面上に沈殿し、加えてバインダーを凝固する。異なる殺生スポンジ処理が、米国特許第3,586,520号（ディロン（Dillon））に開示されている。ディロンは、ジチオカルバミド酸ジアルキル金属が着色スポンジの殺生剤として使用し得ることを示している。抗菌剤で処理した多くのセルローススポンジは殺生物活性を示すが、多くのそのようなセルローススポンジは１以上の次のような欠点を有する。いくつかの処理により、通常、スポンジの製造に用いられる、そのビスコースのキサントゲン化、再生および/または次の水洗プロセスに強い衝撃を与える。逆に、その製造方法は、それを有効でなくす処理に作用してもよい。いくつかの抗菌性処理はスポンジの触感、色、可撓性、テキスチャーまたは水収着性に悪影響を与える。他のスポンジでは、その製品寿命の間にそのスポンジが経験する非常に多くの洗浄により、殺生物活性が長続きしない。尚、他のスポンジは環境および人間の両方に有害である恐れがある。従って、長期間抗菌活性を保持し得る吸水物品に分散または形成され得る抗菌剤が望まれている。また、長期間抗菌活性を保持すると同時に、多くの不都合な人間および環境への有害作用を排除する抗菌剤が望まれている。加えて、スポンジ物品の触感、色、可撓性またはテキスチャーに悪影響を与えず、また、一般にスポンジの製造に用いられるキサントゲン化、再生、ビスコースまたは水洗プロセスに強い影響を与えない抗菌性処理が要求されている。（発明の要旨）本発明には、抗菌活性を示し、吸水性多孔質物品内に分散または形成され得る金属錯体を含む。その金属錯体には、１種以上のキレートポリマー、少なくとも１種の遷移金属イオン、および少なくとも１種の抗菌性増強剤（potentiator）を含む。本発明の有用な態様には、吸水性多孔質物品、例えば永続性抗菌活性を有し、人間および環境への有害作用が最少であるスポンジを含む。本発明の多孔性物品は抗菌性錯体により不都合に作用されず、また、その錯体の抗菌活性に不都合に作用しない。また、本発明には、本発明の吸水性物品の製造方法を含む。（発明の詳細な説明）本発明の抗菌剤には、１種以上のキレートポリマー、少なくとも１種の遷移金属イオンおよび抗菌性増強剤を含む。この薬剤は、ポリマーまたは吸水性物品、例えばスポンジ内に分散または形成され得る。遷移金属イオンは、元素周期律表のＩＢ〜VIIIＢ族に分類される金属のイオンである。金属元素は、電子の不完全な内環（inner ring）を有する、または一価以上の状態で存在し得ることにより一般に特徴付けられる。その遷移金属は水溶液中にカチオンとして存在し、一般にキレート剤または配位子として表される他の化学種とイオン/共有結合を形成し得る。好適な金属イオンの例として、２〜８の配位数を有するものが挙げられる。好適な遷移金属イオンには、亜鉛、ジルコニウム、銅およびアルミニウムを含む。本発明の遷移金属は、キレートポリマーとして表される配位子と配位結合を形成する。キレートポリマーは電子をイオン性遷移金属イオンに供与すると理論付けられる。好適なキレートポリマーには、極めて接近して電子を供与する官能基を有するポリマーを含む。本発明に使用し得るキレートポリマーの例として、それらに限定されないが、ポリグルコースアミン、エチレンアクリル酸コポリマー、ポリカルボン酸類またはポリアミン類が挙げられる。好ましいポリマーには、ヒドロキシル基および/またはアミン基を有し得るものを含む。特に好ましいキレートポリマーはグルコースアミンキトサンである。キトサンは、多糖キチン［ β-（1,4）-ポリ-N-アセチル-Ｄグルコースアミン］、エビおよびカニ産業の豊富な天然副産物の脱アセチル化（deacetylated）誘導体である。キレートポリマーを用いたキレート化に加えて、また、遷移金属イオンを増強剤にキレート化する。本適用の目的に対して、増強剤は遷移金属イオンにキレート化し得る抗菌剤として定義される。増強剤の選択がその金属イオンの配位化合物に依存することに注目すべきである。その金属イオンが増強剤によって完全に分散し得るなら、キレートポリマー中の錯体の永続性を妥協しなければならず、従って、そのような増強剤の使用は永続性目的には望ましくない。好適な増強剤には、それらに限定されないが、ジチオカルバミド酸アルキル類、チアゾール類、イミダゾール類およびピリチオン類が挙げられる。好適なジチオカルバミド酸アルキル類は、そのカルバメートの各アルキル基が約８個以下の炭素を有するものである。そのアルキル基は直鎖状であっても分岐状であってもよい。代表的なジチオカルバメートには、ジチオカルバミド酸ジメチル、ジチオカルバミド酸ジエチル、ジチオカルバミド酸ジプロピル、ジチオカルバミド酸ジブチル、ジチオカルバミド酸メチルエチル、ジチオカルバミド酸メチルブチル、ジチオカルバミド酸ジヘキシル、ジチオカルバミド酸ジオクチル等が挙げられる。を有する５員複素環式化合物である。好適なイミダゾールの例として、2-（4-チオアゾリル）ベンズイミダゾールがある。チアゾール類は窒素および硫黄をそれぞれ１および３の位置に含む５員環である。好適なチアゾールの例として、2-メルカプトベンゾチアゾールがある。を有するピリチオンである。ピリチオン類は、オリン（Olin）社から商品名オマジン（OMADINE）で亜鉛またはナトリウム塩として市販されている。要すれば、天然または合成補強繊維を、本発明の物品に加えてもよい。好適な天然補強繊維には、綿、亜麻、大麻、ラミー、レーヨン、バーラップ、ショディ綿、リンターおよびパルプ繊維が挙げられる。合成繊維の代表的な例として、ポリエステル、ナイロンおよびアクリル繊維が挙げられる。特定の目的のために、その混合物に添加剤を加えてもよい。例えば、顔料、顔料固着剤および加工助剤を加えてもよい。本発明のスポンジは、ビスコースセルロースから製造したセルローススポンジであってもよい。そのビスコースセルロースを、従来のビスコース技術により作製してもよい。簡単に言えば、そのビスコースセルロースは通常、木材パルプのシルケット加工および細断により作製し、二硫化炭素でキサントゲン化し、水稀釈し、最後にその混合物を混合する。ビスコースセルロース作製後、一般にグラウバー塩（Glauber's Salt）と表わされる、硫酸ナトリウム十水和物の結晶をビスコースセルロースに加える。キレートポリマー、および要すれば、補強繊維および/または添加剤を加える。繊維金属イオンを、必要ではないが、この時に単独または増強剤と組合せて、その混合物に加えてもよい。成分を混合後、その混合物を伝導または高周波加熱により約100℃に制御して加熱する。そのような加熱処理により、硫酸ナトリウムを溶出すると同時に、そのセルロースを凝固および再生する。次いで、その硫酸ナトリウムを、多孔性構造を残す得られた再生スポンジから排出および洗い落とす。最後に、前述のように添加しないなら、その増強剤または遷移金属イオンを増強剤と組合せてその物品に導入する。本発明のスポンジには、約10〜約90重量％、より好ましくは約20〜約80重量％のビスコースセルロースを含有し得る。添加するなら、補強繊維には、90重量％以下、好ましくは20〜80重量％のスポンジを含有してもよい。キレートポリマーの量は、加えたビスコースセルロースの量に依存する。一般に、そのキレートポリマーには、約0.01〜約50重量％のビスコースセルロースを含有する。より好ましくは、そのキレートポリマーには、約0.1〜約20重量％のビスコースセルロースを含有する。その遷移金属イオンには、約0.1〜約50重量％のキレートポリマーを含有してもよく、より好ましくは約１〜約30重量％のキレートポリマーを含有すべきである。増強剤の極限量は、使用者がスポンジに付与しようとする抗菌活性の量に依存する。しかし、その増強剤の最大キレート化量を、遷移金属イオンの配位数および/または重量％により決定し、それにより選択的に、スポンジ中に存在する遷移金属イオン１モル当たり１〜４モルの増強剤の範囲内にある。以下の実施例を列挙し本発明を説明するが、本発明の範囲を限定するものではない。（実施例）ビスコーススポンジ製造方法中の金属-キトサン錯体の直接性先駆物質1a〜1g キトサンを、ワシントン州レッドモンド（Redmond）のバンソン・ケミカル（V anson Chemical）社から、以下の表に示した２種の異なるグレードのものを購入した。脱イオン（DI）水89.5ミリリットル中に硫酸亜鉛七水和物5.5gを溶解することにより、硫酸亜鉛溶液を調製した。脱イオン水90.1ミリリットル中に硫酸銅八水和物4.9gを溶解することにより、硫酸銅溶液を調製した。キトサン約５gを各金属塩溶液に加え、約30分間攪拌しキトサンを分散させ、得られたキトサン-金属錯体を吸引濾過した。各キトサン-金属の濾過ケークを：ａ)フィルター上で100ミリリットルの水道水で洗浄し；ｂ)150ミリリットルの1.5％ＮaＯＨ溶液でスラリーにし、45分間煮沸し、濾過し、100ミリリットルの脱イオン水で洗浄し；およびｃ)フィルター上で0.3％の次亜塩素酸ナトリウム溶液（水で１：15に稀釈した家庭用漂白剤）で洗浄し、500ミリリットルの脱イオン水で洗浄した。上記ａ、ｂ、ｃの各段階の後、濾過ケーク試料を次の分析用に採取した。以下の表IIでは、キトサン-金属錯体の各試料を、キトサンのグレード、金属イオンおよびプロセス段階に従って分類した。次いで、濾過ケーク試料をオーブン中70〜76℃で（２時間）乾燥した。その試料の金属および硫黄含量を、その試料を酢酸で温浸した後、誘導結合プラズマ（ Inductively Coupled Plasma）（ICP）分析により決定した。そのICP分析を、カリフォルニア州バレンシア（Valencia)のフィソン・インスツルメンツ（Fison I nstruments）から市販の3580型ICPアトミック・エミッション・スペクトロメーター（Atomic Emisson Spectrometer）を用いて行った。金属含量の確認分析を、その試料を硝酸および硫酸で温浸することにより行った。その試料の金属分析試験結果を表IIIに示した。その試験結果により、キトサン-金属錯体がビスコース処理に対して安定であることを示す。これを、理論収量を実収量と比較することにより示した。理論収量の予測を以下の段落に示した。キトサングルコースアミン繰返し単位は、C2位置のアミン基以外は、セルロース繰返し単位と同様である。従って、グルコースアミン繰返し単位の分子量157 を用いて、キレート化物質の理論％を、金属イオンのグルコースアミン単位に対する仮定モル比により予測しうる。例えば、分子量「ｗ」を有する金属Ｍのモル比「ｒ」に対して、全繰返し単位がキレート化に有効であり、Ｗがキレート化合物（例えば、ＺnまたはＺnＳＯ₄）の分子量と仮定すると、キトサン中の理論％金属を式：％＝100％ｒＷ/（157＋ｒＷ）から計算し得る。しかし、キトサン特有の特徴は、それを調製する方法の結果としての脱アセチル化度である。キトサンは、低（約75％）〜高（約90％）の脱アセチル化度を有し得る。脱アセチル化度「Ｄ」は本質的に、-ＮＨ₂基を有する繰返し単位の百分率である。逆に、100- Ｄは-ＮＨＣＯＣＨ₃基を有する繰返し単位の百分率である。-ＮＨ₂基を有する繰返し単位のみがキレート化に関与する場合、理論金属％を予測する式は：％＝100％ｒＤＷ/［Ｄ157＋（1-Ｄ）187.2＋ｒＤＷ］となる。従って、金属：Ｄ＝92.3％のグレードVNS-462のキトサンを有するグルコースアミンのモル比１：１に対して、銅または亜鉛に対する理論％金属は、付随する硫酸イオンまたは他のイオンが存在しないと仮定しての約27％から、硫酸イオンが存在すると仮定しての19％までの範囲である。表IIIに示した試験結果により10〜13%の範囲の金属含量を示し、それにより可能な最大キレート化に対して約50％の有効性を示した。更に、その金属分析結果により、その試料の銅および亜鉛の両方の金属含量が苛性アルカリ煮沸プロセスおよび漂白剤洗浄プロセスの間に比較的一定である限りは、キトサン-金属錯体はビスコーススポンジ法に安定であることを示している。キトサン-ピリチオンおよびキトサン-金属-ピリチオン錯体の相対的永続性比較例2a、先駆物質2b〜2cおよび実施例2d キトサンのキレート化を、所望のキレート化剤の溶液中でスラリー化することにより便利に行った。以下に、比較例2a、先駆物質2b〜2cおよび実施例2dの調製を示した。ａ．比較例2a（キトサン-ピリチオン錯体）の調製：キトサンスラリーを、VNS-4611gを脱イオン水50g中で攪拌することにより調製した。ピリチオン酸（PA）をセパラブルフラスコ中で、ナトリウムオマジン（「オマジン（Omadine）」はコネチカット州チェシア（Cheshire）のオリン（Olin ）社の登録商標）として市販の40％ナトリウムピリチオン（NaP）溶液2.61gを脱イオン水22.4gと混合し、攪拌し、続いて１％塩酸25.28gを加えた。この方法により、NaPの99％を酸性化した。PA溶液をキトサンスラリーに加え、その混合物を30分間攪拌し、キトサンピリチオン錯体を濾過した。このプロセスを更に４回繰返し、キトサン-ピリチオン錯体の５つの濾過ケークを得た。ｂ．先駆物質2b〜2c（金属-キトサン錯体）の調製： VNS-4611gを、脱イオン水98.4gに溶解したＣｕＳＯ₄・５Ｈ₂Ｏ1.59gを含む溶液中で攪拌することにより調製した。そのスラリーを30分間攪拌後、キトサン- 銅錯体を濾過して除去した。同様に、ＺｎＳＯ₄・７Ｈ₂Ｏ1.83gおよび脱イオン水98.2gから成る溶液中でスラリー化したVNS-4611gから、キトサン-亜鉛錯体を調製した。全部で、３つのキトサン-銅濾過ケーク（先駆物質2b）および６つのキトサン-亜鉛濾過ケーク（先駆物質2c）このようにして調製した。ｃ．実施例2d（キトサン-ジンクピリチオン錯体）の調製次に、３種の上記のように調製したキトサン-亜鉛濾過ケークを、脱イオン水4 00ミリリットルで（フィルター上で）洗浄した。次いで、各濾過ケークを脱イオン水98.2g中の40％NaP4.75gから成る溶液中でスラリー化した。これは、亜鉛イオンによるキトサン/グルコースアミン基の100％配位であると仮定すると、ピリチオン：亜鉛の２：１モル比許容度に相当する。30分間攪拌後、キトサン-ジンクピリチオン錯体を濾過した。これらキトサン錯体の永続性を、これら錯体を、例えば家庭用スポンジまたは拭い取り（wiping）物品に予想されるような通常の最終使用条件にさらすことにより評価した。各濾過ケークを、表IVに示した水、漂白剤または洗浄剤で洗浄した。次いで、そのケークのICP分析による金属含量を、先駆物質1a〜1gに示したように試験した。その試験結果を表IVに示した。その試験結果により、キトサン-ピリチオン酸錯体は最小限、水洗に耐え得ること、および漂白剤または洗浄剤による洗浄にはほとんど耐え得ないことを示し、それは観察された後記洗浄後の硫黄含量の２％以上〜１％以下の減少を基礎とした。銅および亜鉛は、その11〜15％の範囲の比較的一定量を残存し、それはそれらがその洗浄処理に明白に耐え得ることを示す。漂白による、あるいはピリチオンの消失の結果としての硫黄含量の減少を表すが、ピリチオン配位子の消費量に依存して、ジンクピリチオン処理は洗浄に対する良好な耐性を示す。また、亜鉛量は亜鉛キレート化ケークに比例して、理論的予測と一致する元の量の60〜70 ％に減少した。例えば、水洗亜鉛ケークをジンクピリチオンケークと比較すると、11.5％から6.5％の亜鉛の減少により、理論と一致して約40％の再生を表す。測定した亜鉛：硫黄の重量比と緊密に一致するこの測定値により、そのピリチオンが二重に配位したジンクピリチオンの形として存在し得ることが提案される。案外、そのデータにより、キトサンへとキレート化する間も十分に配位したジンクピリチオンは洗浄に対して安定である。例えば、ジンクピリチオンは、亜鉛１モルにキレート化したピリチオン２モルとして自然に生じることが知られている。この場合の亜鉛は配位数４を有し、ピリチオンは二歯（bidentate）である。これら結果により、初期のデータにより提案されたように、亜鉛がキトサンの２つの繰返し単位と相互に作用するかどうかを示しており、その時ピリチオンは一歯の形態で亜鉛と相互に作用する。亜鉛のキトサンおよびピリチオンとの相互作用のバランスニより、完全な錯体が一般洗浄に対する安定性を示すことが明らかである。これにより、亜鉛のピリチオンとの相互作用がその明らかな一歯挙動により弱くなるかどうか、または、亜鉛のピリチオンとの相互作用がキトサンから亜鉛が消失するだけ十分に強くなるかどうかは予想できない。どちらの場合にも、ピリチオンまたはジンクピリチオンのどちらかが、例えばキトサン-ピリチオン錯体の場合に観察されたように、スポンジから容易に洗い出される。また、ピリチオン：グルコースアミンのモル比１：１、ピリチオン１モル当たりの１モル硫黄をベースとして硫黄：キトサンの重量比0.2：１に対して顕著であることも予想される。キトサン-ピリチオン錯体の上記結果により、測定した硫黄：キトサンの初期比0.027が洗浄剤洗浄の後、１オーダー低下することを示す。従って、キトサン- ピリチオンの場合に、キレート化の有効性は最良で最大の約14％であり、永続性はキトサン-金属またはキトサン-亜鉛の場合に関しては低い。表IVのデータから、スポンジ製品の抗菌剤としてキトサン-ピリチオン錯体を用いることは、活性成分が一般洗浄条件に耐え得ないため不適当であると予想し得る。以下の実施例および先駆物質において、前述のようなキトサンおよびキトサン錯体を含有するセルローススポンジを製造し、その錯体の永続性および抗菌剤有効性を評価した。（先駆物質３）セルローススポンジブロックおよび先駆物質３の試料を以下の方法で作製した。セルローススポンジを、セルロース約10％を含有するビスコース溶液（ブリティシュコロンビア州バンクーバー（Vancouver）のウェスタン・パルプ（Western Pulp）から市販のヘムロックパルプから調製）14kgおよびグラウバー塩（Glaub er's Salt）63.6kgを、ステンレス鋼製反応釜中で攪拌しながら混合することにより作製した。ステープル長さ＜12mmのセルロース繊維0.53kg（ニューヨーク州トナワンダ（Tonawanda）のインターナショナル・フィラー（International Fil ler）から市販のソルカ・フロック（Solka Floc））およびステープル長さ12mm のレーヨン繊維0.3kg（テネシー州ジョンソンシティー（Johnson City）のミニファイバー（Minifiber）社から市販）を反応釜（英国のウィンクワース・マシナリー（Winkworth Machinery）から市販の21Z型万能シグマブレードミキサー）に加えた。全材料を反応釜に加えて、更に30分間混合を続ける。その混合物の総体積は約76リットルであった。その混合物を、底の排出コックおよび２本の鋼電極（一方はタンクの反対側の端にある）を有する約51cm×51cｍ×46cmの角形ガラス繊維タンクに注入した。その電極を交流電源に接続し、十分な電圧を電極に印加し、その混合物を交流10 0Vで95℃以上の温度に合計30分間加熱し、ビスコース混合物からセルロースを再生した。再生プロセス中に遊離した塩溶液をタンク底から排出し、セルローススポンジブロックをタンクから除去し、熱水道水（約55℃）で30分間洗浄した。次いで、そのブロックを水、0.3％漂白剤溶液（次亜塩素酸ナトリウム）および再度水で洗浄した。その後、洗浄中に完全に絞った後、過剰の洗浄処理剤（rinsate ）を除去し、約51cm×51cm×46cm寸法のスポンジブロックを得た。そのスポンジブロックを約９cm×16cm×３cmのスポンジ試料に切断した。（比較例Ａ）スポンジブロックを、最後の水洗後にそのブロックを絞って過剰の水を除去し、0.3％のアルキルベンジルジメチルアンモニウムクロリド（ADBAC）を含有する溶液に浸漬させた以外は、先駆物質３に記載の方法に従って作製した。また、そのADBACは、Ｃ₁₂40％、Ｃ₁₄50％、Ｃ₁₆10％のアルキル基分布を有する一般に用いられる塩化４級アンモニウム消毒剤であり、マクアット（MAQUAT）MC1412（イリノイ州アーリントン・ハイツ（Arlington Hts.）のメイソン・ケミカル（Maso n Chemical）から）として市販されている。（先駆物質４〜９）先駆物質４〜９のスポンジブロックを、再生前にキトサン-金属錯体をビスコース混合物に加えた以外は先駆物質３の方法に従って作製した。そのキトサン- 金属錯体を、表Ｖに示したキトサンおよび金属硫化物の量を用いる先駆物質１に記載の方法に従って調製した。表Ｖに示した金属分析結果により、そのキトサンに関連する亜鉛の量は存在するキトサンの重量をベースとして約10％であり、先駆物質１に示したキトサン-金属濾過ケーク試料のものと同様の結果であった。これにより、金属含量によりビスコース再生プロセス、および次いで水および漂白剤洗浄に耐え得ることが確認される。全試験試料に対して、亜鉛20〜30ppmのバックグラウンド量が示された。同様の結果が、キトサンおよび銅を含むスポンジブロックに対して得られた。（先駆物質10、11および12並びに比較例Ｂ）先駆物質10〜12および比較例Ｂを、それぞれ先駆物質６、７および８並びに比較例Ａに記載の方法に従って作製した。対応する試料を65℃の水道流水に約２秒間浸漬し、次いで、ショアーＡ硬度20〜25のゴムロールを有する２本ロールのクリアランス０の絞り機を通過させた。スポンジ試料を含浸および絞るこの方法を、試料毎に合計10回繰り返した。各試料のおよびICP分析により得られた、残留亜鉛または銅含有量を表VIに示した。表VIの金属含有量を対応する表Ｖの先駆物質と比較することにより、多数回の水洗後のキトサンにより結合される金属の実質的比率を示す。（比較例13）キトサン１％を含有し、亜鉛を含まないスポンジ試料を、先駆物質４に示した方法に従って調製した。これら試料を、ナトリウムピリチオン溶液（40％）3.2g を水1758gで稀釈した：ピリチオン酸（PA）で処理した。十分攪拌しながら、徐々に加えることにより、この溶液に１％硫酸溶液42gを加え、約1800ミリリットルの稀釈ピリチオン酸（PA）を得た。次いで、そのスポンジを本明細書中で「増強化（potentiation）処理」として後述の処理を行った。先駆物質４に従って作製したスポンジをプラスチック袋に入れ、PA溶液を加え、その袋を密封した。そのスポンジを数回絞り、約５分間静置した。その絞りおよび静置（squeeze-and-rest）増強化法を、合計約30分間繰り返した。次いで、スポンジ試料に、先駆物質10〜12に記載の絞りおよび静置サイクルを 10回行った。その試験結果を表VIに示した。（実施例14）キトサン10％を含有し、亜鉛を含まないスポンジ試料を、先駆物質５に示した方法に従って調製した。これら試料を、40％ナトリウムピリチオン溶液29.9g、稀釈水1385gおよび１％硫酸からPA溶液を調製した以外は、比較例13に記載の増強化処理を行った。次いで、その試料に、先駆物質10〜12に記載の洗浄および絞りサイクルを行った。その試験結果を表VIに示した。（実施例15）キトサン１％を含有し、亜鉛を含むスポンジ試料を、先駆物質７に示した方法に従って調製した。その試料を、比較例13に記載のナトリウムピリチオン溶液（ NaP）で処理した。そのNaP溶液は、脱イオン水1797gで稀釈した40％ナトリウムピリチオン溶液6.3gから成る。その試料に、先駆物質10〜12に記載の洗浄および絞りサイクルを10回行った。その試験結果を表VIに示した。（実施例16）キトサン10％を含有し、亜鉛を含むスポンジ試料を、先駆物質９に示した方法に従って調製した。これら試料を、NaPが40％ナトリウムピリチオン溶液59.8gおよび脱イオン水1744gから成る以外は、比較例15に記載のようにして、PAの代わりにNaPで処理した。次いで、その試料に、先駆物質10〜12に記載の洗浄および絞りサイクルを10回行った。その試験結果を表VIに示した。（実施例17）キトサン１％を含有するが、ビスコース混合物に加えた亜鉛を含まない先駆物質４に示した方法に従って調製したスポンジ試料を、以下のように（比較例13に記載のプラスチック袋法を用いて、先駆物質４からの６種のスポンジ試料を、脱イオン水1800ミリリットルに溶解したＺｎＳＯ₄・７Ｈ₂Ｏ2.4gから成る硫酸亜鉛溶液約1800ミリリットルの入ったプラスチック袋に入れた。）最初に硫酸亜鉛溶液で処理し、次いでNaPで処理した。この後、スポンジ試料を絞り、増強化処理方法に従って30分間浸漬し、それらをクリアランス０の絞り機により一度絞った。次いで、再度増強化処理方法を用いて、実施例15に記載のようにNaPで処理した。次いで、その試料に、先駆物質10〜12に記載の洗浄および絞りサイクルを10 回行った。（実施例18）キトサン10％を含有するが、亜鉛を含まない先駆物質５に示した方法に従って調製したスポンジ試料を、以下のように（比較例13に記載のプラスチック袋増強化方法を用いて、先駆物質５からの６種のスポンジ試料を、脱イオン水1800ミリリットルに溶解したＺｎＳＯ₄・７Ｈ₂Ｏ23.1gから成る硫酸亜鉛溶液約1800ミリリットルの入ったプラスチック袋に入れた。）最初に硫酸亜鉛溶液で処理し、次いでNaPで処理した。この後、スポンジ試料を絞り、増強化処理方法に従って30 分間浸漬し、それらをクリアランス０の絞り機により一度絞った。次いで、再度増強化処理方法を用いて、実施例16に記載のようにNaPで処理した。次いで、その試料に、先駆物質10〜12に記載の洗浄および絞りサイクルを10回行った。（比較例19、20）比較例19および20のスポンジ試料を、それぞれ先駆物質４および５に記載の方法に従って作製した。次いで、その試料を水道水で繰り返し洗浄し、十分に絞り過剰の水を除去し、比較例13に記載のプラスチック袋増強化技術により硫酸銅溶液で処理した。比較例19のスポンジ試料を、先駆物質４の方法に従って作製した洗浄先駆物質スポンジ試料を（約1800ミリリットルの脱イオン水にＣｕＳＯ₄・５Ｈ₂Ｏ2.1gを溶解することにより調製した）硫酸銅溶液で処理することにより作製した。次いで、これらスポンジ試料に、先駆物質10〜12に記載の洗浄および絞りサイクルを 10回行った。同様に、比較例20のスポンジ試料を、先駆物質５の方法に従って作製した洗浄先駆物質スポンジ試料を、ＣｕＳＯ₄・５Ｈ₂Ｏ20gおよび脱イオン水約1800ミリリットルから調製した硫酸銅溶液で処理することにより作製した。次いで、これらスポンジ試料に、洗浄および絞りサイクルを10回行った。先駆物質11および12および実施例15、16、17および18および比較例19および20 の比較により、金属含有量は一般にキトサン含量の約10％であり、キトサン含量に比例し、それは先駆物質１にみられるものと一致した。そのスポンジの亜鉛含量は、再生前（実施例15、16）または再生後（実施例17、18）に亜鉛を導入したそれら試料の亜鉛含量の10％以内であることは興味深い。（抗菌活性試験方法）スポンジ試料を、後述の「防腐剤有効性（PE）」を測定することにより、抗菌活性に関して評価した。スポンジ試料を約９cm×３cm×1.5cmのストリップに切断した。各ストリップに、３ミリリットルの接種剤をスポンジストリップに吸収させることにより、10⁶コロニー形成単位（CFU）のバクテリアまたは10⁵CFUの菌類を接種した。バクテリアは、シュードモナス・アエルギノサ（Pseudomonas aeruginosa）（ ATCC15442）、スタフィロコッカス・アウレアス（Staphylococcus aureus）（AT CC 6538）およびエシェリッカ・コリ（Eschericha coli）（ATCC 8739）の組から選択された。菌類は、アスペルギルス・ナイゲル（Aspergillus niger）（ATC C 9642）、カンジタ・アルビカンス（Candita albicans）（ATCC 10231）およびシャエトミウム・グロボサム（Chaetomium globosum）（ATCC 6205）の組から選択された。接種ストリップを個々に、滅菌した、密封プラスチック袋に入れ、室温で保管した。未接種試料を同様に、標準試料として保管した。菌類と未接種試料を14日間保管する一方、接種バクテリアを７日間保管した。スポンジストリップ毎の微生物の増殖を以下の方法により決定した。各スポンジストリップを「ストマッカー（stomacher）」ラボラトリーブレンダー（英国のテックマー（Tekmer）；バクスター・サイエンティフィック（Baxter Scienti fic）社から市販、カタログ番号H3493-2)に入れ、レシーン・ブロス（Letheen b roth）100ミリリットルを加え、その試料を１分間処理した。その液体のアリコートを取り出し、レシーン（Letheen）寒天の入った注ぎプレートを培養するのに用いた。そのプレートをバクテリアでは32℃で48時間、菌類および未接種試料では25℃で７日間保温培養した。標準プレート計数技術を用いて、元の接種物に対するCFU数を決定した。接種物数と試料の差を決定した。その試験結果を、この差の対数として示した。これら処理を、U.S.ファーマコピーア（Pharmacopeia）、第XXII巻、1990年に開示の標準に従って評価した。３以上の対数減少（微生物個体数の減少99.9％に相当する）は「高」活性と考えられる。対数減少1.0〜3.0が「適切活性」と考えられる。前記のスポンジ試料のPE試験結果を表VIIに示した。先駆物質10〜12および実施例13〜20からのスポンジ試料のストリップを、直後活性および長期抗菌活性の両方に関して評価した。直後活性を接種30秒以内の試料を分析することにより決定した。その結果を表VIIおよびVIIIに「直後活性（I mmed.）」として示した。長期活性に関して、菌類を接種した試料は14日間保管後分析したのに対して、バクテリアを接種した試料を７日間保管後分析した。これら結果を表VIIおよびVIIIに「長期活性（Fin.）」として示した。洗浄後の処理スポンジ試料の抗菌活性（実施例21）キトサンおよび亜鉛を含有する12種のスポンジ試料を先駆物質７に記載の方法に従って作製した。これら試料を、比較例13に記載の増強化法により、脱イオン水3544gで希釈した40％NaP63.1gを含有するNaP溶液を用いて処理した。そのスポンジ試料を、合計10回繰り返し、温水道水に浸漬し、手で絞った。次いで、その試料に、先駆物質10〜12のような洗浄および絞りのサイクルを10回行った。次いで、これら処理スポンジ試料の内の４種を、中水位（約15ガロン）、高温洗い、温濯ぎおよび「標準」攪拌速度で家庭用洗濯機により洗浄した。「タイド（Tide）」粉末洗浄剤約68gを洗浄サイクルに加えた。次いで、これらスポンジに洗浄剤を加えない以外は前述のように最終洗浄サイクルを行った。この最終サイクルでは、スポンジから洗浄剤の除去を行う。これら試料を「2X」洗浄サイクルとして、PE試験結果を示した表VIIIに示した。前記のように作製した第２の組の４つのスポンジ試料を、４回の洗浄サイクル（洗浄剤を含む）を行って、続いて洗浄剤なしの第５回目のサイクルを行う以外は、前記のように洗浄した。これら試料は「5X」洗浄として表VIIIに示した。前記のように作製した第３の組の４つのスポンジは洗浄せず、「OX」洗浄として表示した。（比較例22）キトサンを含み、金属を含まない12のスポンジ試料を、先駆物質５に記載の方法に従って作製した。これら試料を、比較例13に記載のように、脱イオン水3056 gで希釈した40％NaP溶液59.8gを含有するPA溶液を用いて処理し、それに攪拌しながら脱イオン水500gで希釈した98％硫酸7.95gを含有する溶液を加えた。次いで、これらスポンジを、実施例21に記載のように濯ぎおよび洗浄した。次いで、これらスポンジ試料によりPE試験を行い、その結果を表VIIIに示した。（比較例23）スポンジ試料を、比較例Ａに記載のように調製した。これら試料に、実施例21 の濯ぎおよび洗浄方法を行った。これら試料にはそれら製法からの４級消毒剤を含む。次いで、これら試料によりPE試験を行い、その結果を表VIIIに示した。表VIIIのデータにより、洗浄およびその結果通常の家庭用使用に対する、４級消毒剤およびピリチオン酸（PA）スポンジ処理の永続性の不足を示した。４級消毒剤のバクテリアに対する効力を、洗浄によりかなり低減した。洗浄前のスポンジ試料のPA処理は、２つのバクテリアを除い全てに対して非常に有効であった。しかし、洗浄後、スポンジ試料は天然生物を繁殖させ、従って、接種生物の存在を読み取れなくする。表VIIIの全スポンジ試料を同時および別々に濯ぎおよび洗浄したことにより、PA処理スポンジが特に生化学的攻撃を受けやすく、水抽出性の４級アンモニウム消毒剤で処理したキトサンを含有しないスポンジに匹敵するもの以上にそうであることを示す。キトサン自体は生分解性であり、抗菌剤の不存在下で、本質的にまたは加えて、生物の好適な食物源となる。実施例21のジンクピリチオンスポンジがキトサン１％を含有するのに対して、比較例22のピリチオン酸スポンジ試料はビスコースセルロースの10％のキトサンを含有する。OX洗浄の多くの場合、これらは同等に接種に対して有効である。しかし、２種の重要なグラム陰性種、E.コリ（coli）およびPs.アエルギノサ（aer uginosa）に対して、キトサン含有スポンジのジンクピリチオン処理は、PA処理よりかなり優れている。また、10％では、特に乾燥スポンジでは、キトサンは脆い傾向があり、粒状物質としてスポンジ内で目立つ。美的には、スポンジ内に破砕性粒子が存在することは好ましくなく、従ってキトサン１％でのジンクピリチオン処理はより好ましい。また、この処理により、洗浄サイクル２回を行った後、評価した生物すべてに対して高活性（＞３の対数減少）となり、洗浄サイクル５回を行った後でもC.アルビカンス（albicans）およびC.グロボサム（globosum ）に対して優れた活性を示した。後者の生物は、セルロース分解性活性を有し、スポンジ内での増殖が可能であれば、時間が経てばスポンジ構造の物理的分解に寄与し得る。（比較例24A〜Dおよび実施例24E〜R）以下の実施例および比較例により、ビスコースの再生、特に通常のスポンジ製造方法に関するキトサン-ジンクピリチオン錯体の永続性を説明した。未処理キトサンVNS-461を、比較例24Aとした。300ccのフラスコ中で、ＺｎＳＯ₄・７Ｈ₂ Ｏ1 5.6gを脱イオン水162gに溶解した。その亜鉛塩を完全に溶解後、VNS-461グレードのキトサン8.5gを加え、１時間攪拌した。得られた亜鉛ケークを真空濾過し、フィルター上で脱イオン水1000ccで水洗した。このケークの1/17を取り除き、50 ℃で３時間乾燥し、比較例24Bとした。残りの亜鉛ケークを、1.5％ＮａＯＨ脱イオン水溶液50ccの入った丸底フラスコに加え、全還流しながら１時間煮沸した。そのケークを排出し、真空濾過し、フィルター上で脱イオン水2000ccで水洗した。このケークの1/16を取り除き、50℃で３時間乾燥し、比較例24Cとした。残りのケークを、0.3％漂白剤3000ccの入ったフラスコに加え、30分間攪拌した。このケークを真空濾過し、脱イオン水2000ccで水洗した。このケークの1/15を取り除き、50℃で３時間乾燥し、比較例24Dとした。次いで、残りのケークを、ナトリウムピリチオン（NaP）溶液（40％）33.2gおよび脱イオン水133gの入ったフラスコにそのケークを加えることにより、ピリチオンで増強化した。このスラリーを30分間攪拌し、真空濾過し、フィルター上で脱イオン水1000ccで水洗した。次いで、そのケークを14等分し、そのうちの１つを50℃で３時間乾燥し、比較例24 Eとした。残りの13等分したものを真空フィルター上で、表IXに記載の種々の溶液および量により洗浄し、50℃で３時間乾燥した。また、表IXには、その乾燥試料の硝酸蒸解をもちいるICPによるＺｎおよびＳの分析結果を示した。表IXのデータにより、ジンクピリチオンは、これら通常の洗浄に耐え得ることを示した。（比較例25A〜Dおよび実施例25E〜H）ジンクピリチオンは鉄の存在により、遊離ピリチオンの有効量の鉄によるキレート化の結果として、変色を受けやすい。キトサン-ジンクピリチオン錯体は、硬水状態で考えられる高い鉄（10ppm）またはＣａおよびＭｇイオン（300ppm）濃度のものに対して、ピリチオンの損失を受けやすいという関係以外に、以下の実験を行った。300ccのフラスコ中で、ＺｎＳ０₄・７Ｈ₂Ｏ6.4gを脱イオン水67g に溶解した。その亜鉛塩を完全に溶解後、VNS-461グレードのキトサン3.5gを加え、１時間攪拌した。その未処理キトサンを比較例25Aとした。得られた亜鉛ケークを真空濾過し、フィルター上で脱イオン水1000ccで水洗した。このケークの 1/17を取り除き、50℃で３時間乾燥し、比較例25Bとした。残りの亜鉛ケークを、1.5％ＮａＯＨ脱イオン水溶液50ccの入った丸底フラスコに加え、全還流しながら１時間煮沸した。そのケークを排出し、真空濾過し、フィルター上で脱イオン水2000ccで水洗した。このケークの1/16を取り除き、50℃で３時間乾燥し、比較例25Cとした。残りのケークを、0.3％漂白剤3000ccの入ったフラスコに加え、 30分間攪拌した。このケークを真空濾過し、脱イオン水2000ccで水洗した。このケークの1/15を取り除き、50℃で３時間乾燥し、比較例25Dとした。次いで、残りのケークを、ナトリウムピリチオン（NaP）溶液（40％）9.5gおよび脱イオン水38gの入ったフラスコにそのケークを加えることにより、ピリチオンで増強化した。このスラリーを30分間攪拌し、真空濾過し、フィルター上で脱イオン水10 00ccで水洗した。次いで、そのケークを４等分し、そのうちの１つを50℃で３時間乾燥し、比較例25Eとした。残りの３等分したものを真空フィルター上で、表Ｘに記載のような硬水溶液により洗浄し、50℃で３時間乾燥した。また、表Ｘには、先駆物質1a〜gのように、その乾燥試料の硝酸蒸解を用いるICPによるＺｎおよびＳの分析結果を示した。表Ｘに示した結果により、水、鉄またはＣａおよびＭｇのいずれかの洗浄に対する、硫黄または亜鉛どちらかの有意な損失がなく、従ってピリチオン部分の損失がないことを示した。その結果により更に、その活性錯体の永続性を示した。（比較例26Aおよび実施例26B〜F） 1000ccのフラスコ中で、ＺｎＳＯ₄・７Ｈ₂Ｏ33gを脱イオン水342gに溶解した。その亜鉛塩を完全に溶解後、VNS-461グレードのキトサン18gを加え、１時間攪拌した。得られた亜鉛ケークを真空濾過し、フィルター上で脱イオン水1000ccで洗浄した。この湿潤ケーク約４gを取り除き、50℃で３時間乾燥し、比較例26Aとした。次いで、残りのケークを、ナトリウムピリチオン（NaP）溶液（40％）76g および脱イオン水304gの入ったフラスコにそのケークを加えることにより、ピリチオンで増強化した。このスラリーを30分間攪拌し、真空濾過した。この湿潤ケーク約４gを取り除き、50℃で３時間乾燥し、比較例26Bとした。次いで、そのケークを７等分し、フィルター上で表XIに記載のような熱水および２種のクリーニング溶液により洗浄した。次いで、そのケークを50℃で３時間乾燥した。その後、そのケークの金属含有量を、先駆物質1a〜gに記載のICP分析により試験した。これら結果により、活性キトサン-ピリチオン錯体の永続性を示している。（比較例27Aおよび実施例27B〜F）亜鉛ケークの増強化用のナトリウムピリチオンを用いる代わりに、ナトリウムメルカプトベンゾチアゾール（NaMBT）溶液（50％）77gを希釈水304gと用いた以外は、実施例26に従って、キトサン-ジンク-メルカプトベンゾチアゾール錯体を調製し、クリーニング溶液で洗浄した（ナトリウムメルカプトベンゾチアゾールはコネチカット州ノーウォーク（Norwalk）のR.T.バンダービルト（Vanderbilt ）社からナキャット（NACAT）として市販されている。）。得られたケークは、キトサン-亜鉛錯体を用いたNaMBTのキレート化により、鮮黄色に変化することに注目すべきである。試料性状および金属分析結果を表XIIに示し、その結果により、キトサン-ジンク-ピリチオンの場合に匹敵するこの活性の永続性を示している。（比較例28Aおよび実施例28B〜F）亜鉛ケークの増強化用のナトリウムピリチオンを用いる代わりに、ナトリウムジメチルジチオカルバメート（NaDMDTC）溶液（30％）100gを希釈水304gと用いた以外は、実施例26に従って、キトサン-ジンク-メルカプトベンゾチアゾール錯体を調製し、クリーニング溶液で洗浄した（NaDMDTCはコネチカット州ノーウォーク（Norwalk）のR.T.バンダービルト（Vanderbilt）社からバンサイド（Vanci de）51として市販されている。）。得られたケークは、キトサン-亜鉛錯体を用いたNaDMDTCのキレート化により、元の淡褐色のキトサンケークに関してより白っぽく変化することに注目すべきである。試料性状および金属分析結果を表XIII に示し、その結果により、キトサン-ジンク-ピリチオンの場合に匹敵するこの活性の永続性を示している。（比較例29）以下の例により、亜鉛イオンの予備キレート化に続いて抗菌剤を用いた増強化し、活性最終キトサン錯体に永続性を付与することの有用性を示している。実施例26、27および28に記載のキトサン-亜鉛-増強剤錯体に匹敵するものとして、キトサン-ピリチオン錯体を調製した。ナトリウムピリチオン（NaP）溶液を、脱イオン水1292g中でNaP溶液（40％）42gを攪拌することにより調製した。この溶液に、脱イオン水266.6gにより希釈したＨ₂ＳＯ₄5.4gから成る２重量％硫酸272gを加えた。その酸溶液を、30分間かけてよく攪拌しながら徐々に加えた。この得られたピリチオン酸（PA）溶液にVNS-461キトサン16gを加え、１時間攪拌した。次いで、このスラリーを真空濾過し、湿潤ケーク４gを取り除き、50℃で３時間乾燥した。この乾燥ケークを比較例29Bとした（注：ナンバーリングの一貫性に関して、比較例29Aには示されていなかった）。比較例29Bに相当する残りの湿潤ケークを、次いで、水およびクリーニング溶液を用いて実施例26に記載の方法により洗浄した。試料性状および硫黄分析結果を表XIVに示した。表XIVに示した結果により、錯体をスピック・アンド・スパン（Spic and Span ）クリーニング溶液で洗浄した際の、硫黄およびそれによりピリチオンのかなりの損失を示している。従って、キトサン-ピリチオン錯体は、実施例26、27および28のキトサン-ジンクピリチオン錯体に比較して、永続性がかなり劣ることがわかった。次いで、すべて熱水4000ccによる洗浄を行った試料29D、28D、27Dおよび26Dを、未処理キトサンVNS-461および試料26A、27Aおよび28Aと比較して、ポテト・デキストローゼ・アガール・プレート（Potato Dextrose Agar Plate）法による抗菌活性試験を行った。この活性試験方法をいかに示した。バルチモア・バイオロジカル・ラボラトリーズ（Baltimore Biological Laboratories）からポテト・デキストローゼ・アガールとして市販のカビ増殖用寒天（mold growth agar）を脱水粉末として供給した。これをカビ類の培養に用いるために、その製造者による説明書毎に再水和した。再水和後、その培養基を121℃および15psiで15分間、オートクレーブ滅菌した。キトサン試料の活性を試験するために、各キトサン試料0.225gを滅菌ペトリプレートの底に加え、溶融ポテト・デキストローゼ・アガール（PDA）22.5ccを加えた。これは、PDA活性混合物中の約１重量％の試料量となった。そのキトサンおよび処理キトサン試料を、そのプレートの手動循環器の回転による溶液の渦によりその寒天中に分散した。次いで、これら懸濁液をそのプレート内の、室温でそのベンチトップに被覆した位置に固化させた。標準プレートをPDA自体を用いて作製した。単一プレートを試料26A、27Aおよび28Aから調製したキトサン-亜鉛錯体プレートを除いて、全プレートを同一試料から３種に調製した。次いで、そのプレートをASTM G21-90により、カビ胞子で接種した。用いたカビ類には以下の：アスペルギルス・ナイゲル（Aspergillus niger）、グリオクラディウム・バイレンス（Gliocladium virens）、オーレオバシディウム・プルランス（Aureobasidium pullulans）、シャエトミウム・グロボサム（C haetomium globosum）およびペニシリウム・フニクロサム（Penicillium funicu losum）を含む。これらカビ類の胞子をホスフェート緩衝液培地内に、最終カビ濃度106胞子/ccと同数で分散した。次いで、胞子を圧縮空気噴霧器によって、調製したプレートに供給した。そのプレートが湿潤するまで噴霧を続けた。次いで、そのプレートを28℃および相対湿度 95％で保温培養し、カビ増殖に関して毎日確認した。結果を表XVに示し、増殖の観察された日を記録した。表XVの結果により、ピリチオン、メルカプトベンゾチアゾールまたはジメチルジチオカルバメートのいずれかのキトサン-亜鉛増強剤錯体は、キトサン-亜鉛およびキトサン-ピリチオンを含むすべてのその他試料がこの期間内に不良となるのに対して、試験期間を越えてもカビ増殖を抑制する。以下の３つの実施例および比較例において、永続性抗菌活性を有するセルローススポンジの調製におけるキトサン−亜鉛−ピリチオン錯体の使用をさらに実証する。（比較例30A〜D）ニューヨーク州トナワンダ（Tonawanda）のＯ−セル（Cel）−Ｏ社より市販されている（顔料化されていない）ホワイトセルローススポンジを得た。比較例Ａで説明したように、３個のスポンジを４級アンモニウム溶液で洗浄し、前駆物質３において説明したスポンジ試料と同一の寸法とした。比較例30Aでは３個のこのようなスポンジを用いた。他の３個のスポンジをとり、以下のようにしてさらに洗浄した。個々のスポンジに55℃の熱水道水をかけてスポンジを膨潤させ、その後、20〜25ショア・ゲージＡ硬度のゴムロールを有するクリアランス０の絞り機中で絞った。この膨潤および絞り操作を合計20回繰り返した。ついで、このスポンジ試料をプラスチック袋中に密封した。これを比較例30Bとした。さらに３個のスポンジをとり、比較例30Bにおけるのと同様の膨潤および洗浄操作を20回繰り返し、そして、家の供給における最大流量で55℃の水が流れ込む大型ビーカー中に浸し、そしてクリアランス０の絞り機中で絞った。この操作を合計30回繰り返してスポンジを得、これをクリアランス０の絞り機中で合計50回繰り返して絞った。これらのスポンジ試料も袋中に密封した。これらを比較例30Cとした。さらに３個のスポンジをとり、熱水に浸してクリアランス０の絞り機中で絞る50 回の繰り返しを追加すること以外は比較例30Cと同様にして、これらを濯いだ。したがって、これらのスポンジはクリアランス０の絞り機中で合計100回繰り返して絞られた。ついで、これらのスポンジ試料をプラスチック袋中に密封した。これらを比較例30Dとした。（実施例31A〜D）存在するビスコースセルロースに対して１％で加えられた亜鉛を有する前駆物質７において説明した操作により、スポンジのブロックを調製した。前駆物質３で説明したように、このブロックからスポンジ試料をカットした。12個のこれらのスポンジ試料をプラスチック袋に入れ、比較例13で説明した増強化処理を用いてピリチオンナトリウムで増強化した。これは、スポンジを有する袋に希釈ピリチオンナトリウム溶液（この溶液は53gのピリチオンナトリウム溶液（40％）および2827gの蒸留水からなる。）を加えることにより行った。活性をスポンジ全体に均一に分散させ、スポンジ中でキトサン−亜鉛錯体のキレート化が生じるように、これらのスポンジについて、比較例13で説明した絞りおよび静置操作を30 分行った。ＮａＰ溶液をスポンジの袋に添加すると、すぐに、処理溶液の紫がかった変色が観察された。これは、ピリチオンナトリウムとスポンジ中の有効な鉄（これはスポンジ中60〜100ppmと測定された。）との反応によると考えられる。ピリチオンナトリウムおよびピリチオン亜鉛化合物が過剰なレベルの鉄で汚染された場合にこの変色現象を示し、数ppm程度の鉄でも強い変色を示しうることは当業者に周知である。この変色は約10分後に消えたが、おそらくスポンジ中における、優先するピリチオンと亜鉛とのキレート化による。ついで、スポンジ試料を手で絞ることにより過剰の溶液を除去した。ついで、３個のスポンジ試料をプラスチック袋に密封した。これを実施例31Aと呼ぶ。スポンジ試料を、比較例30 において説明した、20、50および100回繰り返しの洗浄および絞り操作により濯いだ。これらを、それぞれ実施例31B、31Cおよび31Dとした。（実施例32A〜D）スポンジにおいて本質的なピリチオンと鉄との相互作用による、実施例31において観察された一時的な変色に鑑み、実施例32では、ピリチオンの用途における鉄変色を防止するために、酸化亜鉛（ＺｎＯ）を用いてスポンジ試料を調製した。スポンジブロックを調製し、その後、カットされたスポンジを、スポンジブロックの再生の前にビスコース混合物に11gのＺｎＯ分散体（50％）を添加すること以外は実施例31で説明した操作により処理し、そして洗浄した。ＺｎＯ分散体は、ペン（Penn）・カラー・コーポレーション、ドイルズタウン（Doyles Town ）、ＰＡ、より得た。このブロック由来のカットされたスポンジが、実施例31で説明したように、初期にピリチオンナトリウム溶液で濡れていた場合は、処理溶液またはスポンジの変色は観察されなかった。この増強化操作にわたってこのスポンジは本来の白色の外観を保った。処理溶液も処理の間にわたり紫がからなかった。このスポンジを手で絞り、洗浄無し、及び実施例31に記載の20、50および100回洗浄処理の後にプラスチック袋中に密封した。これらのスポンジ試料をそれぞれ実施例32A、および32B、32C、および32Dとした。ついで、この実施例由来のスポンジおよび比較例30および実施例31以外の試料を含めて、前述のようにして、シュードモナス・アエルギノサに対する活性のためのＰＥ抗菌試験に供した。この試験の結果は表ＸＶＩに示す。これは、同様に処理された市販の試料、比較例30A、30B、30Cおよび30Dと比較して、キトサン− 亜鉛−ピリチオンスポンジの活性の優れた永続性を示す。ＰＥ抗菌性試験に加えて、本実施例由来のスポンジおよび比較例30および実施例31由来の試料を、菌類増殖に対する活性のための試験に供した。これらのスポンジはカビ抵抗性のためのＡＳＴＭ法Ｇ２１−９０により試験した。２組のカビを用いた。１組はＡＳＴＭ法により指定された標準生物であり、他の組は使用後のスポンジから隔離培養した８種類のカビである。使用後のスポンジは、ニューヨーク州トナワンダのＯ−セル−Ｏスポンジ製造工場からこのスポンジを購入し、家庭で使用している個人から回収した。これらの使用後のスポンジはその購入の日から30日以内の使用で、そして家庭環境において種々のクリーニング薬品と共に種々の使用を行ったものとした。菌類のスポア（spore）はＰＤＡにおける純粋な培地中で増殖した隔離培養されたカビから収穫され、アスペルギルス・ナイゲル、３種の未確定アスペルギルス種、スタキボトリス（Stachybotrys）種、２種の未確定ペニシリウム（Penicillium）種、およびアルタナリア（Alternari a）種が含まれる。ＡＳＴＭ指定種には、アスペルギルス・ナイゲル、ペニシリウム・フニクロサム、シャエトミウム・グロボサム、オーレオバシディウム・プルランス、およびクリオクラディウム・バイレンス（Cliocladium virens）が含まれる。スポンジ試料は2.54cmの正方形片にカットし、そしてペトリ皿中の最小塩寒天（Ｍ９）中に２重にして置いた。このＭ９寒天は増殖に必要な必須ミネラルイオンは含むが、炭素源は含まない。スポンジが寒天中に置かれると、これは、接種後のプレート上に見られるいずれかのカビの増殖のための唯一の炭素源となる。カビのサスペンションは、無菌Ｍ９ブロス中に50μｌの10⁸スポア／mlサスペンションを置くことにより調製される。このＡＳＴＭ法のために、同数のスポアがブレンドされ、ＡＳＴＭ指定生物および隔離培養物の両方について５×10⁵スポア／mlの最終合計スポア濃度を得た。比較例29に説明したポテト・デキストローゼ・アガール活性試験のための操作により、スポンジの表面が湿潤するまでスプレー接種を行った。このプレートを閉じ、相対湿度95％において28℃で28日間保温培養した。このプレートは臭気の発生および顕微鏡による視覚的な増殖を毎日確認した。これらの試験の結果を表XVIIに示す。これらの結果は、接種後のカビの増殖による不良までの日数、接種後の臭気の発生による不良までの日数、および28日の試験期間後の試料の最終ＡＳＴＭ評価を示す。この結果より、一般に、臭気の発生は増殖の視覚的な検出（不良）より約１日先行して認められる。したがって、視覚的な検出は臭気の発生の良好な指標と考えられる。評価系は以下の通りである。ＡＳＴＭ評価意味０カビの増殖は認められない１カビの増殖により試料の１〜10％が被覆２試料の10〜30％が被覆３試料の30〜60％が被覆４試料の＞60％が被覆（総合的な試料不良）表XVIIの結果は、洗浄なしのケースについても、４級アンモニウム処理スポンジ上に成長した（flourished）ＡＳＴＭおよび隔離培養カビを示す。ＡＳＴＭカビはキトサン−亜鉛−ピリチオンスポンジ上に限定された増殖のみ示したが、隔離培養されたカビはすべての洗浄ケースについて等しく増殖しなかった。ＺｎＯを含有するスポンジについての結果は、ＺｎＯを用いない場合と同様のカビに対抗する活性を示す。しかしながら、中間の50回スポンジ洗浄処理においてＺｎＯ含有スポンジについて活性の幾らかの上昇が見られる。この結果は、市販されているスポンジの通常用いられる４級アンモニウム処理と比較してキトサン−亜鉛 −ピリチオン処理の優れた活性および永続性を確認する。（実施例33）実施例31に説明した操作によりスポンジブロックを調製した。ピリチオンナトリウムを用いる代わりにＮＡＣＡＰを用いてスポンジの増強化を行うこと以外は実施例31に説明したのと同様にして、スポンジ試料をカットし、処理した。この場合は、949gのＤＩ水で希釈された21.3gのナトリウムメルカプトベンゾチアゾール溶液（50％）からなる溶液を添加することにより、プラスチック袋中における４個のスポンジの増強化を行った。これらのスポンジはＮａＮＢＴ溶液と接触することにより強く黄色に着色し、スポンジ中におけるメルカプトベンゾチアゾールとキトサン−亜鉛錯体とのキレート化を示した。ついで、比較例30に記載した洗浄処理をスポンジに施した。黄色の着色は100回の洗浄まで保たれ、これはスポンジ中のキトサン−亜鉛−メルカプトベンゾチアゾール錯体がこのような洗浄に耐え得ることを示す。実施例34 実施例31に説明したように調製したスポンジブロックからスポンジ試料をとり、ピリチオンナトリウムを用いる代わりに、ナトリウムジメチルジチオカルバメート（アクアトリート（Aquatreat）ＳＤＭとして市販、アルコ（Alco）化学社、チャタヌーガ（Chattanooga)、ＴＮ）を用いてスポンジの増強化を行うこと以外は実施例33で説明したように処理した。この場合、948gのＤＩ水で希釈した２０．２gのナトリウムジメチルジチオカルバメート溶液（40％）からなる溶液の添加によりプラスチック袋中の４個のスポンジの増強化を行った。これらのスポンジは増強化溶液との接触においてスポンジの変色を示さなかった。ついでスポンジを比較例30で説明した洗浄処理に供した。100回の洗浄の後にも外観は変化しなかった。総括すれば、抗菌剤を含有する新規かつ予測できない抗菌組成物および物品が開示された。ここでは特定の態様および実施例が開示されているけれども、これらは説明および例示のためのものであり、本発明はこれらにより限定されないことを意識に留めるべきである。以下の請求の範囲に規定されるように、本発明の視野には、当業者の技術を越えた確実な改変が存在すると考えられる。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁶ 識別記号庁内整理番号ＦＩＡ０１Ｎ 43/78 １０１ 9155−4Ｈ 47/14 Ａ 9155−4Ｈ 59/06 59/16 Ｚ 9155−4Ｈ 59/20 Ｚ 9155−4ＨＣ０８Ｊ 9/26 １０１ 7310−4ＦＣ０８Ｌ 1/24 ＬＡＳ 8215−4Ｊ 5/08 ＬＡＸ 8215−4Ｊ 33/02 ＬＨＲ 8619−4ＪＤ０６Ｍ 15/03 7199−3Ｂ

Claims

【特許請求の範囲】１．ａ．少なくとも１つのキレート化ポリマー；ｂ．該キレート化ポリマーとキレート化した１つ以上の遷移金属イオン；およびｃ．該遷移金属イオンとキレート化した少なくとも１つの増強剤；を含む金属錯体。２．ａ．スポンジ；ｂ．少なくとも１つのキレート化ポリマー、該キレート化ポリマーとキレート化した１つ以上の遷移金属イオンおよび該遷移金属イオンとキレート化した少なくとも１つの増強剤を含有し、該スポンジ内の微生物の増殖を抑制する、該スポンジ内に分散した有効量の少なくとも１つの金属錯体；を含む吸水多孔性物品。３．該スポンジが再生セルロース材料から成る請求項２記載の物品。４．該遷移金属イオンが亜鉛、ジルコニウム、銅およびアルミニウムから成る群から選択される請求項２記載の物品。５．該キレート化ポリマーがポリグルコースアミン類、ポリカルボン酸類、ポリアミン類およびエチレンアクリル酸コポリマーから成る群から選択される請求項２記載の物品。６．該キレート化ポリマーがキトサンである請求項５記載の物品。７．該増強剤がイミダゾール類、ピリチオン類、チアゾール類およびアルキルジチオカルバメート類から成る群から選択される請求項２記載の物品。８．更に補強繊維を含む請求項２記載の物品。９．ａ．ビスコースセルロースを硫酸ナトリウムと混合すること；ｂ．少なくとも１つの遷移金属イオンおよび少なくとも１つのキレート化ポリマーを、該ビスコースセルロース/硫酸ナトリウム混合物に加えること；ｃ．該混合物を熱処理して該混合物を再生すること；ｄ．該再生混合物に増強剤を加えて、該スポンジを作製すること；の段階から成る吸水スポンジの製造方法。 10．ａ．少なくとも１種の繊維；ｂ．少なくとも１つのキレート化ポリマー、該キレート化ポリマーとキレート化した１つ以上の遷移金属イオンおよび該遷移金属イオンとキレート化した少なくとも１つの増強剤を含有し、微生物の増殖を抑制する、該繊維内に分散した有効量の少なくとも１つの金属錯体；を含む繊維物品。