JPH0648948B2 - バレイショ小塊茎の生産法 - Google Patents
バレイショ小塊茎の生産法Info
- Publication number
- JPH0648948B2 JPH0648948B2 JP1166733A JP16673389A JPH0648948B2 JP H0648948 B2 JPH0648948 B2 JP H0648948B2 JP 1166733 A JP1166733 A JP 1166733A JP 16673389 A JP16673389 A JP 16673389A JP H0648948 B2 JPH0648948 B2 JP H0648948B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- medium
- culture
- plant
- culturing
- production method
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
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Landscapes
- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
【発明の詳細な説明】 イ．産業上の利用分野 本発明は、組織培養法によるバレイショの小塊茎の製造
法に関するものである。より詳しくは、バレイショの植
物体を成長点培養、多芽体培養、節培養などの組織培養
技術により植物体の頂芽および腋芽を増殖して得た無菌
植物体に低温かつ短日処理条件下で光照射して頂芽ある
いは腋芽を塊茎化誘導し、低温かつ暗黒条件下で小塊茎
を形成・肥大させる３つの工程からなる方法に関する。
この塊茎は、培養容器から取り出して長期間保存可能で
あり、かつまた萌芽およびその後の生育は良好である。
この方法により、バレイショの交配育種によって得た新
品種あるいは海外より導入によって得た品種の無病優良
種苗を、短期間のうちに安価でかつ遺伝的に均一な状態
で大量に増殖することが可能となる。
法に関するものである。より詳しくは、バレイショの植
物体を成長点培養、多芽体培養、節培養などの組織培養
技術により植物体の頂芽および腋芽を増殖して得た無菌
植物体に低温かつ短日処理条件下で光照射して頂芽ある
いは腋芽を塊茎化誘導し、低温かつ暗黒条件下で小塊茎
を形成・肥大させる３つの工程からなる方法に関する。
この塊茎は、培養容器から取り出して長期間保存可能で
あり、かつまた萌芽およびその後の生育は良好である。
この方法により、バレイショの交配育種によって得た新
品種あるいは海外より導入によって得た品種の無病優良
種苗を、短期間のうちに安価でかつ遺伝的に均一な状態
で大量に増殖することが可能となる。
ロ．従来技術 組織培養法を利用してバレイショ小塊茎を形成させる場
合の条件に関する研究は数多くある。それらの研究で
は、Murashige とSkoog の倍地等の各種の植物組織培養
用培地に炭素源や植物成長制御物質を添加した培地が利
用されている。また、培養する環境条件についても調べ
られている。環境条件としては温度、照度、日長時間な
どが調べられている。例えば、WangとHuは無菌植物体を
増殖する工程をオーキシン類であるナフタレン酢酸を
0.005mg／およびショ糖を30ｇ／含むMurashige とS
koog の培地を用いて1000lux 、１日当りの照明時間が1
6時間、25℃の条件下で培養し、塊茎を形成させるため
の工程を80ｇ／のショ糖を含むMurashige とSkoog の
培地を用いて100lux、１日当りの照明時間が８時間、20
℃の条件下で培養している。培養期間は全部で３〜４ヶ
月要する。
合の条件に関する研究は数多くある。それらの研究で
は、Murashige とSkoog の倍地等の各種の植物組織培養
用培地に炭素源や植物成長制御物質を添加した培地が利
用されている。また、培養する環境条件についても調べ
られている。環境条件としては温度、照度、日長時間な
どが調べられている。例えば、WangとHuは無菌植物体を
増殖する工程をオーキシン類であるナフタレン酢酸を
0.005mg／およびショ糖を30ｇ／含むMurashige とS
koog の培地を用いて1000lux 、１日当りの照明時間が1
6時間、25℃の条件下で培養し、塊茎を形成させるため
の工程を80ｇ／のショ糖を含むMurashige とSkoog の
培地を用いて100lux、１日当りの照明時間が８時間、20
℃の条件下で培養している。培養期間は全部で３〜４ヶ
月要する。
ハ．発明が解決しようとする問題点 従来の組織培養法によるバレイショ小塊茎の生産法の多
くは、実用技術として利用するためには培養方法を改良
して生産効率ならびに技術の安定化を達成することが必
要である。本発明は上記従来技術の欠点を解決するため
のものであり、その目的とするところは、気候、土壌、
季節などに関係なく短期間で植物組織培養法により効率
よくバレイショの新品種や導入品種の急速普及に用いる
ための小塊茎を生産することである。
くは、実用技術として利用するためには培養方法を改良
して生産効率ならびに技術の安定化を達成することが必
要である。本発明は上記従来技術の欠点を解決するため
のものであり、その目的とするところは、気候、土壌、
季節などに関係なく短期間で植物組織培養法により効率
よくバレイショの新品種や導入品種の急速普及に用いる
ための小塊茎を生産することである。
ニ．問題点を解決するための手段 本発明者らは、以上の問題点の解決を目的として、組織
培養によるバレイショ小塊茎の生産法について詳細な検
討を行った結果、培養工程を３つ、すなわち無菌植物体
の増殖工程、該植物体の塊茎化誘導工程、および塊茎形
成・肥大工程、に分けそれぞれ適切な培養環境条件下で
培養することにより以上の問題点が著しく改善すること
を見い出し、本発明を完成した。従来、無菌植物体の増
殖工程と該植物体の塊茎化誘導工程の２つを組み合せた
方法は知られているが、上記の３つの工程を組み合わせ
た方法は知られていない。
培養によるバレイショ小塊茎の生産法について詳細な検
討を行った結果、培養工程を３つ、すなわち無菌植物体
の増殖工程、該植物体の塊茎化誘導工程、および塊茎形
成・肥大工程、に分けそれぞれ適切な培養環境条件下で
培養することにより以上の問題点が著しく改善すること
を見い出し、本発明を完成した。従来、無菌植物体の増
殖工程と該植物体の塊茎化誘導工程の２つを組み合せた
方法は知られているが、上記の３つの工程を組み合わせ
た方法は知られていない。
以上の本発明を詳細に説明する。
本発明は次の３つの工程からなる組織培養法によるバレ
イショ小塊茎の生産法である。
イショ小塊茎の生産法である。
＜工程Ａ：無菌植物体の増殖＞ バレイショの塊茎、茎頂、茎などあるいはそれらを切断
した組織切片を、例えばエチルアルコール、次亜塩素酸
ナトリウムなどを用いて殺菌処理したのち、無菌水でよ
く洗う。このようにして表面殺菌した植物体あるいは組
織切片を、滅菌した固体培地あるいは液体培地に培地１
〜100ml当り１個の割合で置床する。固体培地あるいは
液体培地としては通常植物の組織培養に用いられる培地
であればいかなるものも使用できる。たとえばWhite，
Ｂ５，Murashige とSkoog、LinsmaierとSkoog の培地な
ど、あるいはこれらを基本培地としてこれらに種々の改
変を加えたものなどが用いられる。固体状にするために
は寒天、アガロース、ジェランガムなどが用いられる。
ショ糖は0.5〜10％の濃度で添加する。またオーキシン
類とサイトカイニン類などの植物成長制御物質の濃度を
種々に組み合わせて培地に添加することが多い。これら
の植物成長制御物質の添加量は、植物成長制御物質の種
類、植物の部位、培養段階などによってそれぞれ異なる
が、一般に0.01〜10mg／程度でよい。培地のpHは4.0
〜7.0が好適である。照明は1000〜100000lux の照度で
行うとよい。後述の工程ＢおよびＣにおいても上記培
地、植物成長制御物質は適宜用いられる。置床後、20〜
30℃で１〜20週間植え付けた組織切片より植物体が発達
してくる。以上のようにしてバレイショの無菌植物体の
培養系が確立される。ついで該植物体を頂芽あるいは腋
芽を含むようして節毎に分割し、成長点培養を行った培
養条件と同様にして培養する。この無菌植物体の分割と
芽を含む節の培養を繰り返すことにより無限に無菌植物
体を増殖することが可能である。
した組織切片を、例えばエチルアルコール、次亜塩素酸
ナトリウムなどを用いて殺菌処理したのち、無菌水でよ
く洗う。このようにして表面殺菌した植物体あるいは組
織切片を、滅菌した固体培地あるいは液体培地に培地１
〜100ml当り１個の割合で置床する。固体培地あるいは
液体培地としては通常植物の組織培養に用いられる培地
であればいかなるものも使用できる。たとえばWhite，
Ｂ５，Murashige とSkoog、LinsmaierとSkoog の培地な
ど、あるいはこれらを基本培地としてこれらに種々の改
変を加えたものなどが用いられる。固体状にするために
は寒天、アガロース、ジェランガムなどが用いられる。
ショ糖は0.5〜10％の濃度で添加する。またオーキシン
類とサイトカイニン類などの植物成長制御物質の濃度を
種々に組み合わせて培地に添加することが多い。これら
の植物成長制御物質の添加量は、植物成長制御物質の種
類、植物の部位、培養段階などによってそれぞれ異なる
が、一般に0.01〜10mg／程度でよい。培地のpHは4.0
〜7.0が好適である。照明は1000〜100000lux の照度で
行うとよい。後述の工程ＢおよびＣにおいても上記培
地、植物成長制御物質は適宜用いられる。置床後、20〜
30℃で１〜20週間植え付けた組織切片より植物体が発達
してくる。以上のようにしてバレイショの無菌植物体の
培養系が確立される。ついで該植物体を頂芽あるいは腋
芽を含むようして節毎に分割し、成長点培養を行った培
養条件と同様にして培養する。この無菌植物体の分割と
芽を含む節の培養を繰り返すことにより無限に無菌植物
体を増殖することが可能である。
＜工程Ｂ：頂芽あるいは腋芽の塊茎化誘導＞ 工程Ａで増殖した無菌植物体を工程Ｂでの低温・短日処
理を行うことにより効率よく小塊茎が生産できる。植物
体を頂芽あるいは腋芽を含むようにして節毎に分割する
かあるいはそのままの状態で、滅菌した固体培地あるい
は液体培地に培地１〜100 ml当り１個の割合で置床す
る。固体培地あるいは液体培地としては通常植物の組織
培養に用いられる培地であればいかなるものも使用でき
る。たとえばWhite，Ｂ５，Murashige とSkoog、Linsma
ier とSkoog の培地など、あるいはこれらを基本培地と
してこれらに種々の改変を加えたものなどが用いられ
る。固体状にするためには寒天、アガロース、ジェラン
ガムなどが用いられる。ショ糖は 0.5〜10％の濃度で添
加する。１日当りの照明時間が1000〜100000lux の照度
で12時間以下の照明時間でかつ培養温度が10〜30℃でか
つまた培養期間が１〜７週間育てることが大きな特徴で
ある。
理を行うことにより効率よく小塊茎が生産できる。植物
体を頂芽あるいは腋芽を含むようにして節毎に分割する
かあるいはそのままの状態で、滅菌した固体培地あるい
は液体培地に培地１〜100 ml当り１個の割合で置床す
る。固体培地あるいは液体培地としては通常植物の組織
培養に用いられる培地であればいかなるものも使用でき
る。たとえばWhite，Ｂ５，Murashige とSkoog、Linsma
ier とSkoog の培地など、あるいはこれらを基本培地と
してこれらに種々の改変を加えたものなどが用いられ
る。固体状にするためには寒天、アガロース、ジェラン
ガムなどが用いられる。ショ糖は 0.5〜10％の濃度で添
加する。１日当りの照明時間が1000〜100000lux の照度
で12時間以下の照明時間でかつ培養温度が10〜30℃でか
つまた培養期間が１〜７週間育てることが大きな特徴で
ある。
＜工程Ｃ：小塊茎形成・肥大＞ 工程Ｂで短日・低温処理をした植物体を頂芽あるいは腋
芽を含むようにして節毎に分割するかあるいはそのまま
の状態で、滅菌した固体培地あるいは液体培地に培地１
〜100 ml当り１個の割合で置床する。固体培地あるいは
液体培地としては通常植物の組織培養に用いられる培地
であればいかなるものも使用できる。たとえばWhite，
Ｂ５，Murashige とSkoog、Linsmaier とSkoogの培地な
ど、あるいはこれらを基本培地としてこれらに種々の改
変を加えたものなどが用いられる。固体状にするために
は寒天、アガロース、ジェランガムなどが用いられる。
ショ糖は３〜14％の濃度で添加する。光は必要でない。
10〜30℃の温度条件のもとで培養する。３週間ほどする
と植物体の頂芽および各腋芽の塊茎化が確認できる。
芽を含むようにして節毎に分割するかあるいはそのまま
の状態で、滅菌した固体培地あるいは液体培地に培地１
〜100 ml当り１個の割合で置床する。固体培地あるいは
液体培地としては通常植物の組織培養に用いられる培地
であればいかなるものも使用できる。たとえばWhite，
Ｂ５，Murashige とSkoog、Linsmaier とSkoogの培地な
ど、あるいはこれらを基本培地としてこれらに種々の改
変を加えたものなどが用いられる。固体状にするために
は寒天、アガロース、ジェランガムなどが用いられる。
ショ糖は３〜14％の濃度で添加する。光は必要でない。
10〜30℃の温度条件のもとで培養する。３週間ほどする
と植物体の頂芽および各腋芽の塊茎化が確認できる。
ホ．実施例 次に実施例について説明する。
実施例 １ バレイショの品種男爵いもの塊茎を園芸用バット内のバ
ーミキュライトの中に伏せ込み、温室内で育て芽を萌芽
させる。萌芽した芽を５cm程度の長さにして10％次亜塩
素酸ナトリウム溶液（有効塩素量１％）に15分間浸して
表面殺菌したのち、滅菌蒸留水で３回洗浄する。解剖顕
微鏡下で幼葉をピンセットで外し成長点部を露出させ
る。メスにより成長点を高さ 0.5mmの切片に切り取り、
下記第１表の組成を有する寒天培地５mlを含む内径16mm
高さ 130mmの試験管に試験管１本当り１個置床し、アル
ミホイルで栓をしたのち、25℃、5000lux の24時間連続
照明下で培養する。
ーミキュライトの中に伏せ込み、温室内で育て芽を萌芽
させる。萌芽した芽を５cm程度の長さにして10％次亜塩
素酸ナトリウム溶液（有効塩素量１％）に15分間浸して
表面殺菌したのち、滅菌蒸留水で３回洗浄する。解剖顕
微鏡下で幼葉をピンセットで外し成長点部を露出させ
る。メスにより成長点を高さ 0.5mmの切片に切り取り、
下記第１表の組成を有する寒天培地５mlを含む内径16mm
高さ 130mmの試験管に試験管１本当り１個置床し、アル
ミホイルで栓をしたのち、25℃、5000lux の24時間連続
照明下で培養する。
上記成分を蒸留水に溶かして１リットルとし、pHを5.8
に調整し、オートクレーブを用いて蒸気殺菌したものを
培地として使用した。
に調整し、オートクレーブを用いて蒸気殺菌したものを
培地として使用した。
この培養によって成長点は１ヶ月程で幼植物体に発達し
た。さらに１ヶ月後、幼植物体は10枚程度の葉を有する
状態になったので１節毎に切り離し、直径90mm高さ 100
mmの培養瓶を用いて50mlの前記の培地に植え換えた。こ
の植物体の分割と植え換えを繰り返して行うことにより
植物体を増殖した。塊茎化誘導工程は直径90mmの培養瓶
を用いて第１表に記載した培地で３週間育てた５植物体
を照度が1000lux で１日当りの照明時間が８時間、温度
が20℃の環境条件にある培養室に搬入し２週間育てた。
小塊茎の形成・肥大は、第１表の培地組成のショ糖濃度
を60ｇ／に変更し、液体培地50mlを入れた 300mlの三
角フラスコに、幼植物を移植し、３週間培養した。培養
は20℃暗所で行った。一方、従来法と比較するためにWa
ngとHuの方法に準じて実験を行った。すなわち、無菌植
物体を増殖する工程を第１表に記載した培地から寒天を
除いた液体培地50mlを用いて育てた５植物体を1000lux
、１日当りの照明時間が16時間、25℃の条件下で３週
間培養し、塊茎を形成させるための工程を80ｇ／のシ
ョ糖を含む第１表に記載した培地から寒天を除いた液体
培地50mlを用いて100lux、１日当りの照明時間が８時
間、20℃の条件下で13週間培養した。最初の３つの工程
からなる小塊茎の生産は２度繰り返した。第２表に示し
たように、明らかに本発明法による方が得られた小塊茎
数が多くかつWangとHuの方法に比べて塊茎の大きさのバ
ラツキが小さかった。以上のようにして得られた小塊茎
を三角フラスコより取り出して流水で液体培地を除去す
るために洗浄した後、３℃の冷蔵庫内に貯蔵した。３ヶ
月後、呉羽化学社製の園芸用合成培土とピートモスを等
容積ずつ混合した培地に塊茎を植え付け温室内で栽培し
た。１週間内に萌芽がみられ、２週間内には 100％発芽
した。
た。さらに１ヶ月後、幼植物体は10枚程度の葉を有する
状態になったので１節毎に切り離し、直径90mm高さ 100
mmの培養瓶を用いて50mlの前記の培地に植え換えた。こ
の植物体の分割と植え換えを繰り返して行うことにより
植物体を増殖した。塊茎化誘導工程は直径90mmの培養瓶
を用いて第１表に記載した培地で３週間育てた５植物体
を照度が1000lux で１日当りの照明時間が８時間、温度
が20℃の環境条件にある培養室に搬入し２週間育てた。
小塊茎の形成・肥大は、第１表の培地組成のショ糖濃度
を60ｇ／に変更し、液体培地50mlを入れた 300mlの三
角フラスコに、幼植物を移植し、３週間培養した。培養
は20℃暗所で行った。一方、従来法と比較するためにWa
ngとHuの方法に準じて実験を行った。すなわち、無菌植
物体を増殖する工程を第１表に記載した培地から寒天を
除いた液体培地50mlを用いて育てた５植物体を1000lux
、１日当りの照明時間が16時間、25℃の条件下で３週
間培養し、塊茎を形成させるための工程を80ｇ／のシ
ョ糖を含む第１表に記載した培地から寒天を除いた液体
培地50mlを用いて100lux、１日当りの照明時間が８時
間、20℃の条件下で13週間培養した。最初の３つの工程
からなる小塊茎の生産は２度繰り返した。第２表に示し
たように、明らかに本発明法による方が得られた小塊茎
数が多くかつWangとHuの方法に比べて塊茎の大きさのバ
ラツキが小さかった。以上のようにして得られた小塊茎
を三角フラスコより取り出して流水で液体培地を除去す
るために洗浄した後、３℃の冷蔵庫内に貯蔵した。３ヶ
月後、呉羽化学社製の園芸用合成培土とピートモスを等
容積ずつ混合した培地に塊茎を植え付け温室内で栽培し
た。１週間内に萌芽がみられ、２週間内には 100％発芽
した。
実施例 ２ 実施例１と同様にしてバレイショ品種メイクイーン、ホ
ッカイコガネ、農林１号、ツニカ、紅丸、ハツフブキ、
ユキジロ、トヨシロ、ワセシロの幼植物を組織培養によ
って育てた。植物体を塊茎化誘導するために節培養開始
後４週間目の植物体を照度が5000lux で１日当りの照明
時間が10時間、温度が18℃の環境条件にある培養室に搬
入し育てた。塊茎の形成・肥大は第１表の培地組成のう
ちショ糖濃度を50ｇ／にした液体培地に移植し調べ
た。３週間後、全てのバレイショ品種で小塊茎の着生が
１植物体当り３〜９個認められた。
ッカイコガネ、農林１号、ツニカ、紅丸、ハツフブキ、
ユキジロ、トヨシロ、ワセシロの幼植物を組織培養によ
って育てた。植物体を塊茎化誘導するために節培養開始
後４週間目の植物体を照度が5000lux で１日当りの照明
時間が10時間、温度が18℃の環境条件にある培養室に搬
入し育てた。塊茎の形成・肥大は第１表の培地組成のう
ちショ糖濃度を50ｇ／にした液体培地に移植し調べ
た。３週間後、全てのバレイショ品種で小塊茎の着生が
１植物体当り３〜９個認められた。
ヘ．発明の効果 本発明によれば、季節、天候、土壌などの自然条件に左
右されず、かつ施肥、薬剤散布、給水等の栽培管理も不
要であり、なおかつ広い土地を必要とすることなく効率
よくバレイショの均質で天然品と同等に萌芽しうる小塊
茎が生産可能である。本発明は、短期間のうちに新しく
育成した品種や海外から導入した品種を普及させるため
に、バレイショの小塊茎を原々種として遺伝的に均質な
状態でかつ大量かつ急速に生産することを可能にする。
右されず、かつ施肥、薬剤散布、給水等の栽培管理も不
要であり、なおかつ広い土地を必要とすることなく効率
よくバレイショの均質で天然品と同等に萌芽しうる小塊
茎が生産可能である。本発明は、短期間のうちに新しく
育成した品種や海外から導入した品種を普及させるため
に、バレイショの小塊茎を原々種として遺伝的に均質な
状態でかつ大量かつ急速に生産することを可能にする。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (56)参考文献 Ｄｏｎｎａ．Ｈ．Ｍｉｔｔｅｎ 「Ｍｏ ｒｐｈｏｌｏｇｉｃａｌ ａｎｄ ｐｈｙ ｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｏｍｐａｒｉｓ ｏｎｓ ｏｆ ｍｉｃｒｏｔｕｂｅｒｓ ｔｏ ｆｉｅｌｄ ｔｕｂｅｒｓ」 Ｕ. Ｓ．Ｄｅｐｅｒｔｍｅｎｔ ｏｆ ｃｏｍ ｍｅｒｃｅ ｎａｔｉｏｎａｌ ｔｅｃｈ ｎｉｃａｌ ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｓ ｅｒｖｉｃｅ社 1986年７月28日発行１− 27ページ
Claims (4)
- 【請求項１】バレイショ（Solanum tuberosum L.）を組
織培養し、茎葉を有する無菌植物体を増殖する工程、低
温かつ短日条件下で光照射して該植物体を培養し、該植
物体の頂芽あるいは腋芽を塊茎化する状態に誘導する工
程、および塊茎化誘導した植物体の頂芽あるいは腋芽を
暗黒かつ低温条件下で塊茎化する工程からなるバレイシ
ョ小塊茎の生産法。 - 【請求項２】無菌植物体を増殖する工程の照明条件が10
00〜100000lux の照度下で１日当り６〜24時間照明であ
りかつ培養温度条件が20〜30℃である特許請求の範囲第
１項に記載の生産方法。 - 【請求項３】頂芽あるいは腋芽が塊茎化しうる状態に誘
導する工程の照明条件が1000〜100000lux の照度下で１
日当り12時間以下の照明でありかつ培養温度が10〜30℃
で、かつまた培養期間が１〜７週間である特許請求の範
囲第１項記載の生産方法。 - 【請求項４】頂芽あるいは腋芽を塊茎化させる工程の温
度条件が10〜30℃でかつ暗黒条件下で培養することを特
徴とする特許請求の範囲第１項に記載の生産方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1166733A JPH0648948B2 (ja) | 1989-06-30 | 1989-06-30 | バレイショ小塊茎の生産法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1166733A JPH0648948B2 (ja) | 1989-06-30 | 1989-06-30 | バレイショ小塊茎の生産法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0335738A JPH0335738A (ja) | 1991-02-15 |
| JPH0648948B2 true JPH0648948B2 (ja) | 1994-06-29 |
Family
ID=15836742
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP1166733A Expired - Lifetime JPH0648948B2 (ja) | 1989-06-30 | 1989-06-30 | バレイショ小塊茎の生産法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0648948B2 (ja) |
Families Citing this family (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5498541A (en) * | 1993-11-30 | 1996-03-12 | Japan Tobacco Inc. | Method for producing potato microtubers |
| US5854066A (en) * | 1995-04-03 | 1998-12-29 | Japan Tobacco Inc. | Method for producing potato microtubers |
| KR100614533B1 (ko) * | 2004-02-18 | 2006-08-22 | (주)넥스젠 | 감자의 컴팩트 슈트 유도 방법 |
| CN112400397B (zh) * | 2020-07-15 | 2022-02-11 | 贵州大学 | 基于根茎的多花黄精育苗方法 |
| CN115777535A (zh) * | 2022-11-30 | 2023-03-14 | 宁夏农林科学院农业生物技术研究中心（宁夏农业生物技术重点实验室） | 一种马铃薯试管薯的结薯诱导方法 |
-
1989
- 1989-06-30 JP JP1166733A patent/JPH0648948B2/ja not_active Expired - Lifetime
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| Ｄｏｎｎａ．Ｈ．Ｍｉｔｔｅｎ「ＭｏｒｐｈｏｌｏｇｉｃａｌａｎｄｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌＣｏｍｐａｒｉｓｏｎｓｏｆｍｉｃｒｏｔｕｂｅｒｓｔｏｆｉｅｌｄｔｕｂｅｒｓ」Ｕ．Ｓ．Ｄｅｐｅｒｔｍｅｎｔｏｆｃｏｍｍｅｒｃｅｎａｔｉｏｎａｌｔｅｃｈｎｉｃａｌｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎｓｅｒｖｉｃｅ社１９８６年７月２８日発行１−２７ページ |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0335738A (ja) | 1991-02-15 |
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