JPH06181655A - ヒマラヤザクラの増殖法 - Google Patents
ヒマラヤザクラの増殖法Info
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- JPH06181655A JPH06181655A JP29265392A JP29265392A JPH06181655A JP H06181655 A JPH06181655 A JP H06181655A JP 29265392 A JP29265392 A JP 29265392A JP 29265392 A JP29265392 A JP 29265392A JP H06181655 A JPH06181655 A JP H06181655A
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- Japan
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- rooting
- shoots
- plant
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- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
Abstract
(57)【要約】
【構成】 外植体として茎頂を摘出し外植体からシュー
トを誘導させる第１ステップ、得られたシュートから多
芽体を誘導して増殖を行い、ロゼット化した茎葉を伸長
させる第２ステップ、シュートを発根させて馴化可能な
植物体に育てる第３ステップ、得られた発根個体を外部
環境に対して馴化植物体に育成する第４ステップよりな
るヒマラヤザクラ（Prunus cerasoides D.Don ）の苗
木生産において、第３ステップで植物生長調整物質とし
てピロガロールおよびフロログリシノールを用いること
を特徴とするヒマラヤザクラの増殖法である。 【効果】 ヒマラヤザクラを増殖するに当たり、組織培
養技術を用いることによって、同一の遺伝形質を有する
優良な個体を極めて容易にかつ短時日に大量作出するこ
とができ、もってヒマラヤザクラを園芸品種の一つとし
て育成することができる。
トを誘導させる第１ステップ、得られたシュートから多
芽体を誘導して増殖を行い、ロゼット化した茎葉を伸長
させる第２ステップ、シュートを発根させて馴化可能な
植物体に育てる第３ステップ、得られた発根個体を外部
環境に対して馴化植物体に育成する第４ステップよりな
るヒマラヤザクラ（Prunus cerasoides D.Don ）の苗
木生産において、第３ステップで植物生長調整物質とし
てピロガロールおよびフロログリシノールを用いること
を特徴とするヒマラヤザクラの増殖法である。 【効果】 ヒマラヤザクラを増殖するに当たり、組織培
養技術を用いることによって、同一の遺伝形質を有する
優良な個体を極めて容易にかつ短時日に大量作出するこ
とができ、もってヒマラヤザクラを園芸品種の一つとし
て育成することができる。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は組織培養技術を利用して
ヒマラヤザクラをクローン増殖する方法に関するもので
ある。
ヒマラヤザクラをクローン増殖する方法に関するもので
ある。
【０００２】
【従来の技術】従来、ヒマラヤザクラの繁殖は、主とし
て種子繁殖によって行われており、つぎ木、さし木など
による栄養繁殖による増殖は、種の特性として困難であ
るとされていた。
て種子繁殖によって行われており、つぎ木、さし木など
による栄養繁殖による増殖は、種の特性として困難であ
るとされていた。
【０００３】ヒマラヤザクラに関する報文は少なく、国
内では本種を紹介した以下の数件の報文があるのみであ
る。
内では本種を紹介した以下の数件の報文があるのみであ
る。
【０００４】1) 本田正次、林弥栄：１９７４年，「日
本のサクラ」，３０６頁，誠文堂 2) 染郷正孝：１９９０年，「サクラとコナラの研究物
語（Ｉ）林木の育種９−１３」 3) 朝日新聞社：１９９０年，「世界の花（Ｉ）」
本のサクラ」，３０６頁，誠文堂 2) 染郷正孝：１９９０年，「サクラとコナラの研究物
語（Ｉ）林木の育種９−１３」 3) 朝日新聞社：１９９０年，「世界の花（Ｉ）」
【０００５】
【発明が解決しようとする課題】ヒマラヤザクラ（P.
cerasoides D.Don ）は、ブータンからネパール地方に
かけて分布し、11〜12月開花の秋咲き性である。花はソ
メイヨシノに劣らない形態で美しい。
cerasoides D.Don ）は、ブータンからネパール地方に
かけて分布し、11〜12月開花の秋咲き性である。花はソ
メイヨシノに劣らない形態で美しい。
【０００６】本種は、主に種子繁殖によって増殖され、
園芸品種として趣向されることもなく、現在に至ってい
る。また、つぎ木、さし木などの栄養繁殖による増殖も
困難が予想され、優良個体のクローンによる大規模な種
苗生産ができない状況である。
園芸品種として趣向されることもなく、現在に至ってい
る。また、つぎ木、さし木などの栄養繁殖による増殖も
困難が予想され、優良個体のクローンによる大規模な種
苗生産ができない状況である。
【０００７】本発明は、上記の如き実情に鑑み、組織培
養法を用いて同一の遺伝形質を有する優良な個体を大量
に作る技術を確立し、もってヒマラヤザクラを園芸品種
の一つとして育成することを企図したものである。
養法を用いて同一の遺伝形質を有する優良な個体を大量
に作る技術を確立し、もってヒマラヤザクラを園芸品種
の一つとして育成することを企図したものである。
【０００８】
【課題を解決するための手段】本発明によるヒマラヤザ
クラの増殖法は、外植体として茎頂を摘出し外植体から
シュートを誘導させる第１ステップ、得られたシュート
から多芽体を誘導して増殖を行い、ロゼット化した茎葉
を伸長させる第２ステップ、シュートを発根させて馴化
可能な植物体に育てる第３ステップ、得られた発根個体
を外部環境に対して馴化植物体に育成する第４ステップ
よりなるヒマラヤザクラ（Prunus cera soides D.Don
）の苗木生産において、第３ステップで植物生長調整
物質としてピロガロールまたはフロログルシノールを用
いることを特徴とするものである。
クラの増殖法は、外植体として茎頂を摘出し外植体から
シュートを誘導させる第１ステップ、得られたシュート
から多芽体を誘導して増殖を行い、ロゼット化した茎葉
を伸長させる第２ステップ、シュートを発根させて馴化
可能な植物体に育てる第３ステップ、得られた発根個体
を外部環境に対して馴化植物体に育成する第４ステップ
よりなるヒマラヤザクラ（Prunus cera soides D.Don
）の苗木生産において、第３ステップで植物生長調整
物質としてピロガロールまたはフロログルシノールを用
いることを特徴とするものである。
【０００９】第３ステップでは好ましくは暗所処理を行
う。
う。
【００１０】特に好ましくは、第３ステップで、ＷＰ培
地にピロガロールを添加し暗所処理を行う発根誘導工程
と、暗所処理後にバーミキュライト培地にシュートを移
植し、発根を行う発根形成工程とを行う。
地にピロガロールを添加し暗所処理を行う発根誘導工程
と、暗所処理後にバーミキュライト培地にシュートを移
植し、発根を行う発根形成工程とを行う。
【００１１】
【実施例】つぎに、本発明を具体的に説明するために、
本発明の一例を示す実施例を示す。
本発明の一例を示す実施例を示す。
【００１２】ステップ１（茎頂摘出と外植体からのシュ
ートの誘導） ヒマラヤザクラの側枝（径３０mm）を長さ３０cm程度に
切断し、水を入れたバケツ（水深は約１０cm）内に側枝
切断片の下端を浸漬した。こうして、潜伏芽を萌芽させ
て得たシュートの茎頂（０．２〜０．３mm）を外植体と
して摘出した。材料、実験器具などの殺菌工程は２％ア
ンチフォルミン液を用いて常法に従って行った。
ートの誘導） ヒマラヤザクラの側枝（径３０mm）を長さ３０cm程度に
切断し、水を入れたバケツ（水深は約１０cm）内に側枝
切断片の下端を浸漬した。こうして、潜伏芽を萌芽させ
て得たシュートの茎頂（０．２〜０．３mm）を外植体と
して摘出した。材料、実験器具などの殺菌工程は２％ア
ンチフォルミン液を用いて常法に従って行った。
【００１３】培地組成が植物の成長に及ぼす影響を知る
ため、イオン濃度がそれぞれ異なるガンボルグ（Gambor
g)培地（Ｂ−５）とムラシゲ・スクーグ(Murashige and
Skoog) 培地（ＭＳ）に、植物ホルモンとして表１に示
した濃度のベンジルアデニン（ＢＡ）を添加し、これら
培地を用いてシュートの培養を行った。培地はいずれも
ショ糖を２０ｇ／リットル、寒天を７ｇ／リットル添加
して、ｐＨを５．８に調整したものである。培養条件は
温度２５℃、照度３４００Lux 、１６時間日長（明所条
件１６時間、暗所条件８時間）とした。
ため、イオン濃度がそれぞれ異なるガンボルグ（Gambor
g)培地（Ｂ−５）とムラシゲ・スクーグ(Murashige and
Skoog) 培地（ＭＳ）に、植物ホルモンとして表１に示
した濃度のベンジルアデニン（ＢＡ）を添加し、これら
培地を用いてシュートの培養を行った。培地はいずれも
ショ糖を２０ｇ／リットル、寒天を７ｇ／リットル添加
して、ｐＨを５．８に調整したものである。培養条件は
温度２５℃、照度３４００Lux 、１６時間日長（明所条
件１６時間、暗所条件８時間）とした。
【００１４】
【表１】 ＊資料１参照 上記培養の結果を表２および表３に示す。培地組成が茎
頂の生育に及ぼす影響として、Ｂ−５培地では正常なシ
ュートと茎葉の伸長が見られ、ＭＳ培地ではシュート及
び茎葉の伸長は見られずにカルス化や枯死した個体が多
く見られた。ＢＡが茎頂の生育に及ぼす影響として、Ｂ
−５培地ではＢＡ濃度が多くなるのに従って基部カルス
の肥大化が見られ、展開葉数は逆に低下する傾向があっ
た。
頂の生育に及ぼす影響として、Ｂ−５培地では正常なシ
ュートと茎葉の伸長が見られ、ＭＳ培地ではシュート及
び茎葉の伸長は見られずにカルス化や枯死した個体が多
く見られた。ＢＡが茎頂の生育に及ぼす影響として、Ｂ
−５培地ではＢＡ濃度が多くなるのに従って基部カルス
の肥大化が見られ、展開葉数は逆に低下する傾向があっ
た。
【００１５】
【表２】
【表３】 両培地のすべての培養個体はロゼット化すなわちシュー
トが伸長せずに矮縮する傾向がみられ、茎葉の伸長を促
す植物ホルモンの添加が必要と思われる。
トが伸長せずに矮縮する傾向がみられ、茎葉の伸長を促
す植物ホルモンの添加が必要と思われる。
【００１６】以上の結果から茎頂摘出および外植体から
のシュートの誘導には、無機塩濃度が高いＭＳ培地では
カルス化が生じる傾向が強く茎頂の培養に適さない。そ
こで、無機塩濃度の低いＢ−５などの培地を用いた方が
よいものと考察される。また、添加する植物ホルモン・
サイトカイニン（例えばＢＡ）の適切な濃度は両培地で
の培養結果から０．５〜１．０ｍｇ／リットルであると
考えられる。
のシュートの誘導には、無機塩濃度が高いＭＳ培地では
カルス化が生じる傾向が強く茎頂の培養に適さない。そ
こで、無機塩濃度の低いＢ−５などの培地を用いた方が
よいものと考察される。また、添加する植物ホルモン・
サイトカイニン（例えばＢＡ）の適切な濃度は両培地で
の培養結果から０．５〜１．０ｍｇ／リットルであると
考えられる。
【００１７】ステップ２（シュートの増殖と伸長） このステップは、ステップ１で得られたシュートより多
芽体を誘導して増殖を行い、ロゼット化した茎葉を伸長
させる工程である。
芽体を誘導して増殖を行い、ロゼット化した茎葉を伸長
させる工程である。
【００１８】茎頂培養によって得た個体を表４に示す培
地にて継代培養し、多芽体の誘導とシュート伸長の実験
を試みた。
地にて継代培養し、多芽体の誘導とシュート伸長の実験
を試みた。
【００１９】
【表４】 ＊資料１参照 なお、新たに木本植物の培養に多く利用されているＷＰ
（Woody plant medium1984 ： Lloyd and McCown ）を
対照培地として用いた。
（Woody plant medium1984 ： Lloyd and McCown ）を
対照培地として用いた。
【００２０】実験結果を表５に示す。
【００２１】
【表５】 表中の（ ）は最大数値を示す 表５から、シュート数増加の最適培地はＷＰ培地であ
り、シュート数は１回の継代培養で平均８．４３本／２
８日得られることが判明した。
り、シュート数は１回の継代培養で平均８．４３本／２
８日得られることが判明した。
【００２２】また、ロゼット化を打破するためシュート
伸長促進剤としてジベレリン（ＧＡ3 ）を添加し、その
効果を調べた。結果はＧＡ3 を添加したすべての培養条
件でシュートの伸長が見られた。しかし、本実験では添
加量の水準差に対するシュートの伸長差はみられなかっ
た。
伸長促進剤としてジベレリン（ＧＡ3 ）を添加し、その
効果を調べた。結果はＧＡ3 を添加したすべての培養条
件でシュートの伸長が見られた。しかし、本実験では添
加量の水準差に対するシュートの伸長差はみられなかっ
た。
【００２３】なお、ＧＡ3 を異なる濃度で添加した場
合、Ｂ−５培地では濃度が高くなるに従い、シュート数
の増加と基部カルスの増殖促進効果がみられ、ＷＰ培地
ではＧＡ3 濃度はシュート数や基部カルスの肥大化に関
係なく一定であった。しかし、ＷＰ培地ではガラス化
（Vitrification ）した個体の発生がみられた。
合、Ｂ−５培地では濃度が高くなるに従い、シュート数
の増加と基部カルスの増殖促進効果がみられ、ＷＰ培地
ではＧＡ3 濃度はシュート数や基部カルスの肥大化に関
係なく一定であった。しかし、ＷＰ培地ではガラス化
（Vitrification ）した個体の発生がみられた。
【００２４】各培地を用いて培養した個体の生長活性を
肉眼観察により評価すると、Ｂ−５培地に比べＷＰ培地
を用いて得た個体が優れていた。
肉眼観察により評価すると、Ｂ−５培地に比べＷＰ培地
を用いて得た個体が優れていた。
【００２５】培養特性については、培養結果の優れてい
たＷＰ培地について検討した。その結果を表６に示す。
特性として１バッチの培養でシュート伸長量の対数増殖
期は２８日でピークに達し、それ以降は定常にて推移す
ることが判明した。また日数が２８日を経過するとエチ
レンガスなどの発生によりシュート先端部から枯死する
個体がみられた。
たＷＰ培地について検討した。その結果を表６に示す。
特性として１バッチの培養でシュート伸長量の対数増殖
期は２８日でピークに達し、それ以降は定常にて推移す
ることが判明した。また日数が２８日を経過するとエチ
レンガスなどの発生によりシュート先端部から枯死する
個体がみられた。
【００２６】シュート数の増殖量は対数増殖期のピーク
となる２８日で平均８．４３本（No. ３培地）得られる
ことから、４回の継代培養を順調に行えば約５０００本
のシュートが得られることになり、この方法は極めて効
率が高い増殖法と言える。
となる２８日で平均８．４３本（No. ３培地）得られる
ことから、４回の継代培養を順調に行えば約５０００本
のシュートが得られることになり、この方法は極めて効
率が高い増殖法と言える。
【００２７】
【表６】 WPM ；Woody plant medium BA ；Benzyladenine ＧＡ3 ；Gibberellic acidステップ３ （シュートからの発根） このステップは、ステップ２で得たシュートを発根させ
て馴化可能な植物体に育てる工程である。
て馴化可能な植物体に育てる工程である。
【００２８】インドール酪酸（ＩＢＡ）を０．１ｍｇ／
リットル添加したＷＰ培地を基本培地として、シュート
に暗所処理を行う実験区を設定し、シュートに発根処理
を施した。暗所処理後は、ホルモンフリーのＷＰ培地に
移植した。この結果を表７に示す。
リットル添加したＷＰ培地を基本培地として、シュート
に暗所処理を行う実験区を設定し、シュートに発根処理
を施した。暗所処理後は、ホルモンフリーのＷＰ培地に
移植した。この結果を表７に示す。
【００２９】
【表７】 表７から明らかなように、暗所処理を行うことにより発
根率が高まる傾向がみられ、特に７日間処理が良好であ
り、発根率は３３．３％であった。この結果より、暗所
処理は、発根率の向上に有効な方法であることが判っ
た。
根率が高まる傾向がみられ、特に７日間処理が良好であ
り、発根率は３３．３％であった。この結果より、暗所
処理は、発根率の向上に有効な方法であることが判っ
た。
【００３０】さらに発根率を高めるため、７日間暗所処
理に用いる植物生長調整物質の種類を検討した。植物生
長調整物質としては、インドール酪酸（ＩＢＡ）、ナフ
タレン酢酸（ＮＡＡ）、ピロガロールおよびフロログル
シノールの４種類を用い、上記と同じ処理により発根率
を調べた。この結果を表８に示す。
理に用いる植物生長調整物質の種類を検討した。植物生
長調整物質としては、インドール酪酸（ＩＢＡ）、ナフ
タレン酢酸（ＮＡＡ）、ピロガロールおよびフロログル
シノールの４種類を用い、上記と同じ処理により発根率
を調べた。この結果を表８に示す。
【００３１】
【表８】 表８から４種類の植物生長調整物質の中で最も効果がみ
られたものは、ピロガロールであり、５０％の発根率を
示した。また、ピロガロールまたはフロログルシノール
を用いた場合には、シュートの基部にカルス形成がみら
れず、根の生長も良好であった。オーキシンであるＩＢ
ＡとＮＡＡは、シュートの基部がカルス化する傾向が強
く、根が枯死するなどの生長不良が多くみられた。この
結果より、ピロガロールやフロログルシノールなどのポ
リフェノール物質を暗所処理の過程において培地に添加
することにより、発根率が高められる効果があることを
見出した。
られたものは、ピロガロールであり、５０％の発根率を
示した。また、ピロガロールまたはフロログルシノール
を用いた場合には、シュートの基部にカルス形成がみら
れず、根の生長も良好であった。オーキシンであるＩＢ
ＡとＮＡＡは、シュートの基部がカルス化する傾向が強
く、根が枯死するなどの生長不良が多くみられた。この
結果より、ピロガロールやフロログルシノールなどのポ
リフェノール物質を暗所処理の過程において培地に添加
することにより、発根率が高められる効果があることを
見出した。
【００３２】つぎに、発根率および根の伸長が良好であ
ったピロガロールを用いて、その添加濃度の検討を行っ
た。その結果を表９に示す。
ったピロガロールを用いて、その添加濃度の検討を行っ
た。その結果を表９に示す。
【００３３】
【表９】 表９に見られるように、最も良好な発根率は５０ｍｇ／
リットル添加区における７０．６％であり、次に良好な
発根率は７５ｍｇ／リットル添加区における５０．０％
であった。この結果より、ピロガロールの適切な添加濃
度は５０〜７５ｍｇ／リットルの範囲であることが判
る。
リットル添加区における７０．６％であり、次に良好な
発根率は７５ｍｇ／リットル添加区における５０．０％
であった。この結果より、ピロガロールの適切な添加濃
度は５０〜７５ｍｇ／リットルの範囲であることが判
る。
【００３４】つぎに、暗所処理後の移植培地の種類につ
いて検討を行い、発根率向上を試みた。培地として、ホ
ルモン無添加のＷＰ培地と、蒸溜水を含むバーミキュラ
イト培地を用い、暗所処理７日後のシュートをこれらの
培地に移植した。その結果表１０に示す。
いて検討を行い、発根率向上を試みた。培地として、ホ
ルモン無添加のＷＰ培地と、蒸溜水を含むバーミキュラ
イト培地を用い、暗所処理７日後のシュートをこれらの
培地に移植した。その結果表１０に示す。
【表１０】 暗所処理後の移植培地として、蒸溜水を含むバーミキュ
ライト培地は９２％の発根率を示し、ホルモン無添加の
ＷＰ培地より優れた結果を示した。
ライト培地は９２％の発根率を示し、ホルモン無添加の
ＷＰ培地より優れた結果を示した。
【００３５】以上の結果、ステップ３の発根工程は、Ｗ
Ｐ培地にピロガロールを添加し暗所処理を行う発根誘導
工程と、暗所処理後にバーミキュライト培地にシュート
を移植し、発根を行う発根形成工程の２つの工程を行う
ことにより、多数の発根個体が得られ、馴化可能な根が
形成できることが明らかとなった。
Ｐ培地にピロガロールを添加し暗所処理を行う発根誘導
工程と、暗所処理後にバーミキュライト培地にシュート
を移植し、発根を行う発根形成工程の２つの工程を行う
ことにより、多数の発根個体が得られ、馴化可能な根が
形成できることが明らかとなった。
【００３６】
【表１１】 ステップ４（試験管内から外部環境への馴化） このステップは、ステップ３で得られた発根個体を外部
環境に対して馴化植物体に育成する工程である。
環境に対して馴化植物体に育成する工程である。
【００３７】すなわち、バーミキュライト培地に移植後
発根個体が得られた時点で、バーミキュライトとピート
モスとパーライトを容量比で１：１：１の割合で混合し
た培土入りのポットに幼植物体を移植してミスト下に置
き、徐々に潅水回数を減らすことにより、２週間後には
馴化が完了し、全数着床し、健全個体が得られた。
発根個体が得られた時点で、バーミキュライトとピート
モスとパーライトを容量比で１：１：１の割合で混合し
た培土入りのポットに幼植物体を移植してミスト下に置
き、徐々に潅水回数を減らすことにより、２週間後には
馴化が完了し、全数着床し、健全個体が得られた。
【００３８】
【発明の効果】従来、つぎ木、さし木などの栄養繁殖法
による増殖が困難であったヒマラヤザクラを増殖するに
当たり、組織培養技術を用いることによって、同一の遺
伝形質を有する優良な個体を極めて容易にかつ短時日に
大量作出することができ、もってヒマラヤザクラを園芸
品種の一つとして育成することができる。
による増殖が困難であったヒマラヤザクラを増殖するに
当たり、組織培養技術を用いることによって、同一の遺
伝形質を有する優良な個体を極めて容易にかつ短時日に
大量作出することができ、もってヒマラヤザクラを園芸
品種の一つとして育成することができる。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 染郷 正孝 茨城県牛久市牛久町2606−24 (72)発明者 山岸 善忠 広島県三原市須波西町765−676 (72)発明者 大澤 重義 大阪府高槻市安岡寺町１−４−18 (72)発明者 馬田 立己 福岡県浮羽郡田主丸町大字地徳3558−１
Claims (3)
- 【請求項１】 外植体として茎頂を摘出し外植体からシ
ュートを誘導させる第１ステップ、得られたシュートか
ら多芽体を誘導して増殖を行い、ロゼット化した茎葉を
伸長させる第２ステップ、シュートを発根させて馴化可
能な植物体に育てる第３ステップ、得られた発根個体を
外部環境に対して馴化植物体に育成する第４ステップよ
りなるヒマラヤザクラ（Prunus cerasoides D.Don ）
の苗木生産において、第３ステップで植物生長調整物質
としてピロガロールまたはフロログルシノールを用いる
ことを特徴とするヒマラヤザクラの増殖法。 - 【請求項２】第３ステップで暗所処理を行う請求項１記
載の方法。 - 【請求項３】第３ステップで、ＷＰ培地にピロガロール
を添加し暗所処理を行う発根誘導工程と、暗所処理後に
バーミキュライト培地にシュートを移植し、発根を行う
発根形成工程とを行う請求項１記載の方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP29265392A JPH06181655A (ja) | 1992-10-30 | 1992-10-30 | ヒマラヤザクラの増殖法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP29265392A JPH06181655A (ja) | 1992-10-30 | 1992-10-30 | ヒマラヤザクラの増殖法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH06181655A true JPH06181655A (ja) | 1994-07-05 |
Family
ID=17784570
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP29265392A Pending JPH06181655A (ja) | 1992-10-30 | 1992-10-30 | ヒマラヤザクラの増殖法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH06181655A (ja) |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4916502A (en) * | 1987-02-25 | 1990-04-10 | Mitsubishi Denki Kabushiki Kaisha | Semiconductor device to be coupled with a control circuit by a photocoupler |
| CN103155867A (zh) * | 2011-12-10 | 2013-06-19 | 天水市果树研究所 | 大樱桃砧木g-7快速繁殖方法 |
| CN104012406A (zh) * | 2014-04-04 | 2014-09-03 | 大连大学 | 甜樱桃品种晚红珠的离体再生方法 |
| CN106538392A (zh) * | 2016-12-08 | 2017-03-29 | 上海杉植物科技有限公司 | 一种白樱花组织培养与快速繁殖方法 |
-
1992
- 1992-10-30 JP JP29265392A patent/JPH06181655A/ja active Pending
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
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