JPH0586959B2 - - Google Patents
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Compounds Of Unknown Constitution (AREA)
Description
本発明は新抗生物質ムレイドマイシン
(Mureidomycin)AおよびC、その製造法およ
びそれを有効成分とする抗菌剤に関するものであ
る。本発明者らは、土壊から分離したストレプト
ミセス属に属するSANK60486株が、主としてグ
ラム陰性細菌特にシユウドモナス スペシーズ
(Pseudomonas sp.)に対して有効な新抗生物質
ムレイドマイシンAおよびCを生産することを見
出した。 本発明の抗生物質ムレイドマイシンAおよびC
はその諸性状より新規抗生物質と同定された。 抗生物質ムレイドマイシンAおよびCはグラム
陰性細菌、特にシユウドモナス スペシーズに対
して強い抗菌力を示すことから、ヒトおよび動物
のこれらの細菌に起因する疾病の予防および治療
に用いられる。 抗菌物質ムレイドマイシンAおよびCを生産す
るSANK60486株の菌学的性状は次の通りであ
る。 1 形態学的特徴 一般的に基生菌糸は寒天培地上で分岐してよく
伸長し気菌糸は単純分岐である。胞子鎖の形態は
多くのものは直〜曲線状を示す。1胞子鎖上に形
成される胞子数は多くの場合、約10〜50個または
それ以上が観察される。胞子の形は楕円状であ
り、その大きさは0.5〜0.8μm×0.7〜1.1μmであ
り、その表面は平滑状を示す。また気菌糸の車軸
分岐、菌核、胞子のうなどの特殊器管は観察され
なかつた。 2 各種培養基上の諸性質 各種培養基上で28℃、14日間培養後の性状は第
1表に示す通りである。色調の表示は日本色彩研
究所版“標準色票”のカラーチツプ・ナンバーを
表わす。
(Mureidomycin)AおよびC、その製造法およ
びそれを有効成分とする抗菌剤に関するものであ
る。本発明者らは、土壊から分離したストレプト
ミセス属に属するSANK60486株が、主としてグ
ラム陰性細菌特にシユウドモナス スペシーズ
(Pseudomonas sp.)に対して有効な新抗生物質
ムレイドマイシンAおよびCを生産することを見
出した。 本発明の抗生物質ムレイドマイシンAおよびC
はその諸性状より新規抗生物質と同定された。 抗生物質ムレイドマイシンAおよびCはグラム
陰性細菌、特にシユウドモナス スペシーズに対
して強い抗菌力を示すことから、ヒトおよび動物
のこれらの細菌に起因する疾病の予防および治療
に用いられる。 抗菌物質ムレイドマイシンAおよびCを生産す
るSANK60486株の菌学的性状は次の通りであ
る。 1 形態学的特徴 一般的に基生菌糸は寒天培地上で分岐してよく
伸長し気菌糸は単純分岐である。胞子鎖の形態は
多くのものは直〜曲線状を示す。1胞子鎖上に形
成される胞子数は多くの場合、約10〜50個または
それ以上が観察される。胞子の形は楕円状であ
り、その大きさは0.5〜0.8μm×0.7〜1.1μmであ
り、その表面は平滑状を示す。また気菌糸の車軸
分岐、菌核、胞子のうなどの特殊器管は観察され
なかつた。 2 各種培養基上の諸性質 各種培養基上で28℃、14日間培養後の性状は第
1表に示す通りである。色調の表示は日本色彩研
究所版“標準色票”のカラーチツプ・ナンバーを
表わす。
【表】
【表】
可溶性色素
3 生理学的性質 SANK 60486株の生理学的性質は第2表に示
す通りである。
3 生理学的性質 SANK 60486株の生理学的性質は第2表に示
す通りである。
【表】
【表】
またプリドハム・ゴトリーブ寒天培地(ISP
9)を使用して、28℃、14日間培養後に観察した
SANK 60486株の炭素源の資化性は第3表に示
す通りである。
9)を使用して、28℃、14日間培養後に観察した
SANK 60486株の炭素源の資化性は第3表に示
す通りである。
【表】
+:利用する、−:利用しない
4 菌体成分について SANK 60486株の細胞壁はビー・ベツカーら
の方法[B.Becker et al.、アプライドマイクロ
バイオロジー(Applied Microbiology)、12巻、
421〜423頁、1964年]に従い検討した結果、L,
L−ジアミノピメリン酸およびグリシンが検出さ
れたことから、フラビドレンスSANK 60486
(Streptomyces flavidovirens SANK 60486)
(微工研菌寄第8636号)と同定された。 なお、SANK 60486株の同定は、ISP[ジ・イ
ンターナシヨナル・スプレプトミセス・プロジエ
クト(The International Streptomyces
Project)]基準、バージエーズ・マニユアル
(Bergey′s Manual of Determinative
Bacteriology)第8版、エス・エイ・ワツクス
マン(S.A.Waksman)著[ジ・アクチノミセテ
ス(The Actinomycetes)]および放線菌に関
する最近の文献によつて行つた。 以上、抗生物質ムレイドマイシンAおよびCの
生産菌について説明したが、放射菌の諸性質は一
定したものでなく、自然的、人工的に容易に変化
することは周知のとおりであり、本発明で使用し
うる菌株はストレプトミセス属に属する、抗生物
質ムレイドマイシンAおよびCを生産するすべて
の菌株を包含するものである。 本発明における培養は一般放線菌における培養
方法に準じて行われ、液体培地中での振盪培養あ
るいは通気攪拌培養によるのが好ましい。培地成
分としては、たとえば炭素源としてブドウ糖、マ
ルトース、シユクロース、マンニツト、糖蜜、グ
リセリン、デキストリン、澱粉、大豆油、綿実油
などが、窒素源として大豆粉、落花生粉、綿実
粉、フアーマミン、魚粉、コーン・スチープ・リ
カー、ペプトン、肉エキス、イースト、イースト
エキス、硝酸ソーダ、硝酸アンモニウム、硫酸ア
ンモニウムなどが、また、無機塩として食塩、燐
酸塩、炭酸カルシウム、微量金属塩などが必要に
応じて適宜添加される。液体培養に際してはシリ
コン油、植物油、界面活性剤等が消泡剤として適
宜使用される。 培地のHzは中性付近、培養温度は20℃から37
℃、特に22℃前後が好ましい。 培養の経過に伴つて生産される抗生物質ムレイ
ドマイシンAおよびCの力価の経時変化は、シユ
ウドモナス・エルギノーサSANK70579を被検菌
としたペーパーデイスク(東洋科学産業(株)製、直
径8mm、thik)検定法により測定される。通常72
〜96時間の培養で抗生物質ムレイドマイシンAお
よびCの生産量は最高値に達する。 主として培養液中の液体部分に存在する抗生物
質ムレイドマイシンAおよびCは、培養終了後、
菌体その他の固形部分をけいそう土等を濾過助剤
とする濾過操作、あるいは遠心分離によつて除去
し、その濾液または上清中から抽出、精製するこ
とによつて得られる。 抗生物質ムレイドマイシンAおよびCはその物
理学的性状を利用することによつて、分離、採
取、精製される。すなわち、溶媒抽出;イオン交
換、例えばダウエツクスSBR−P(ダウケミカル
社製)などの陰イオン交換樹脂、ダウエツクス
50W(ダウケミカル社製)、IRC−50、CG−50な
どの陽イオン交換樹脂;吸着剤として活性炭、ア
ンバーライトXAD−2、XAD−4、XAD−7
等(ローム・アンド・ハース社製)やダイヤイオ
ンHP10、HP20、CHP20P、HP50(三菱化成工
業(株)製)等による非イオン性吸着樹脂等の樹脂、
シリカゲル、アルミナ等による処理も適宜使用さ
れる。またアビセル(旭化成工業(株)製)などのセ
ルロース、セフアデツクスLH−20(フアルマシ
ア社製)などを用いた分配カラムクロマトグラフ
イー:セフアデツクスG−10、G−25、G−50、
G−100(フアスマシア社製)やトヨパール(生化
学工業社製)などを用いたゲル濾過法;また結晶
化;再結晶等の手段も有効でありこれらの手段を
単独または任意の順序で組み合わせ、また反復し
て用いて分離、採取、精製を行う。 抗生物質ムレイドマイシンAおよびCはまた培
養条件によつては培養液中の菌体部分に存在す
る。この場合は、アルコール類、アセトン等の親
水性有機溶媒によつて抽出し、抽出液より溶媒を
除去し、次いで水溶液としたのち、培養濾液から
と同様の方法で抽出精製することができる。 このようにして得られた抗生物質ムレイドマイ
シンAおよびCは下記のような理化学的および生
物学的性状を有する。 1 抗生物質ムレイドマイシンA。 (1) 物質の性状:両性水溶性、白色粉末。 (2) 比旋光度[α]25 D=40.9゜(c 0.69、50%
メタノール) (3) 元素分析値(%):C、49.73;H、5.65;
N、12.08;S、3.40 (4) 分子量:840(高分解能質量分析FAB−
MASS:841.31798(QM+)) (5) 分子式:C38H48N8O12S1 (6) 酸加水分解: ウラシル、m−チロシン、2−アミノ−3
−メチルアミノ酪酸 (7) 紫外線吸収スパクトル:λnaxnm(E1% 1cm) 中性、260nm(348);0.01 NHCl、258nm
(358);0.01NNaOH、240nm(499)、265nm
(330sh)および295nm(78sh) 第1図AおよびBに示す通りである。 (8) 赤外線吸収スペクトル:νKBr naxcm-1 KBrデイスクで測定した赤外線吸収スペ
クトルは第2図に示す通りである。 (9) 核磁気共鳴スペクトル(δ:ppm) ジメチルスルフオキシド中、外部基準に
TMS(テトラメチルシラン)を使用して測定
した核磁気共鳴スペクトル(400 MHz)は第
3図に示す通りである(配座異性体を含む)。 (10) 溶解性: 水、メタノールに可溶、アセトンに難溶、
酢酸エチル、クロロホルム、ベンゼンに不
溶。 (11) 呈色反応: ニンヒドリン、硫酸、ヨード、塩化第二
鉄、バイエル反応に陽性。 (12) 薄層クロマトグラフイー: Rf値;0.36 吸着剤;シリカゲルプレート(メルク社製
Kieselgel 60 F254) 展開溶媒;n−ブタノール:n−プロパノ
ール:水(4:2:1) (13) 高速液体クロマトグラフイー: カラム;アクアシルSS372−N(センシユ
ウ科学社製) 展開溶媒;クロロホルム:i−プロパノー
ル:メタノール:水(200:100:100:40) 保持時間;3.92分 (14) 抗菌力: 一般グラム陽性、グラム陰性細菌に対する
抗生物質ムレイドマイシンAの最小阻止濃度
(MIC)はミユーラーヒントン寒天培地(デ
イフコ社製)を用いた寒天培地希釈法によつ
て測定した。その結果は第4表に示すとおり
である。 (15) 毒性 マウスに400mg/Kgを静脈内投与したが毒
性は認められなかつた。 (16) 構造式
4 菌体成分について SANK 60486株の細胞壁はビー・ベツカーら
の方法[B.Becker et al.、アプライドマイクロ
バイオロジー(Applied Microbiology)、12巻、
421〜423頁、1964年]に従い検討した結果、L,
L−ジアミノピメリン酸およびグリシンが検出さ
れたことから、フラビドレンスSANK 60486
(Streptomyces flavidovirens SANK 60486)
(微工研菌寄第8636号)と同定された。 なお、SANK 60486株の同定は、ISP[ジ・イ
ンターナシヨナル・スプレプトミセス・プロジエ
クト(The International Streptomyces
Project)]基準、バージエーズ・マニユアル
(Bergey′s Manual of Determinative
Bacteriology)第8版、エス・エイ・ワツクス
マン(S.A.Waksman)著[ジ・アクチノミセテ
ス(The Actinomycetes)]および放線菌に関
する最近の文献によつて行つた。 以上、抗生物質ムレイドマイシンAおよびCの
生産菌について説明したが、放射菌の諸性質は一
定したものでなく、自然的、人工的に容易に変化
することは周知のとおりであり、本発明で使用し
うる菌株はストレプトミセス属に属する、抗生物
質ムレイドマイシンAおよびCを生産するすべて
の菌株を包含するものである。 本発明における培養は一般放線菌における培養
方法に準じて行われ、液体培地中での振盪培養あ
るいは通気攪拌培養によるのが好ましい。培地成
分としては、たとえば炭素源としてブドウ糖、マ
ルトース、シユクロース、マンニツト、糖蜜、グ
リセリン、デキストリン、澱粉、大豆油、綿実油
などが、窒素源として大豆粉、落花生粉、綿実
粉、フアーマミン、魚粉、コーン・スチープ・リ
カー、ペプトン、肉エキス、イースト、イースト
エキス、硝酸ソーダ、硝酸アンモニウム、硫酸ア
ンモニウムなどが、また、無機塩として食塩、燐
酸塩、炭酸カルシウム、微量金属塩などが必要に
応じて適宜添加される。液体培養に際してはシリ
コン油、植物油、界面活性剤等が消泡剤として適
宜使用される。 培地のHzは中性付近、培養温度は20℃から37
℃、特に22℃前後が好ましい。 培養の経過に伴つて生産される抗生物質ムレイ
ドマイシンAおよびCの力価の経時変化は、シユ
ウドモナス・エルギノーサSANK70579を被検菌
としたペーパーデイスク(東洋科学産業(株)製、直
径8mm、thik)検定法により測定される。通常72
〜96時間の培養で抗生物質ムレイドマイシンAお
よびCの生産量は最高値に達する。 主として培養液中の液体部分に存在する抗生物
質ムレイドマイシンAおよびCは、培養終了後、
菌体その他の固形部分をけいそう土等を濾過助剤
とする濾過操作、あるいは遠心分離によつて除去
し、その濾液または上清中から抽出、精製するこ
とによつて得られる。 抗生物質ムレイドマイシンAおよびCはその物
理学的性状を利用することによつて、分離、採
取、精製される。すなわち、溶媒抽出;イオン交
換、例えばダウエツクスSBR−P(ダウケミカル
社製)などの陰イオン交換樹脂、ダウエツクス
50W(ダウケミカル社製)、IRC−50、CG−50な
どの陽イオン交換樹脂;吸着剤として活性炭、ア
ンバーライトXAD−2、XAD−4、XAD−7
等(ローム・アンド・ハース社製)やダイヤイオ
ンHP10、HP20、CHP20P、HP50(三菱化成工
業(株)製)等による非イオン性吸着樹脂等の樹脂、
シリカゲル、アルミナ等による処理も適宜使用さ
れる。またアビセル(旭化成工業(株)製)などのセ
ルロース、セフアデツクスLH−20(フアルマシ
ア社製)などを用いた分配カラムクロマトグラフ
イー:セフアデツクスG−10、G−25、G−50、
G−100(フアスマシア社製)やトヨパール(生化
学工業社製)などを用いたゲル濾過法;また結晶
化;再結晶等の手段も有効でありこれらの手段を
単独または任意の順序で組み合わせ、また反復し
て用いて分離、採取、精製を行う。 抗生物質ムレイドマイシンAおよびCはまた培
養条件によつては培養液中の菌体部分に存在す
る。この場合は、アルコール類、アセトン等の親
水性有機溶媒によつて抽出し、抽出液より溶媒を
除去し、次いで水溶液としたのち、培養濾液から
と同様の方法で抽出精製することができる。 このようにして得られた抗生物質ムレイドマイ
シンAおよびCは下記のような理化学的および生
物学的性状を有する。 1 抗生物質ムレイドマイシンA。 (1) 物質の性状:両性水溶性、白色粉末。 (2) 比旋光度[α]25 D=40.9゜(c 0.69、50%
メタノール) (3) 元素分析値(%):C、49.73;H、5.65;
N、12.08;S、3.40 (4) 分子量:840(高分解能質量分析FAB−
MASS:841.31798(QM+)) (5) 分子式:C38H48N8O12S1 (6) 酸加水分解: ウラシル、m−チロシン、2−アミノ−3
−メチルアミノ酪酸 (7) 紫外線吸収スパクトル:λnaxnm(E1% 1cm) 中性、260nm(348);0.01 NHCl、258nm
(358);0.01NNaOH、240nm(499)、265nm
(330sh)および295nm(78sh) 第1図AおよびBに示す通りである。 (8) 赤外線吸収スペクトル:νKBr naxcm-1 KBrデイスクで測定した赤外線吸収スペ
クトルは第2図に示す通りである。 (9) 核磁気共鳴スペクトル(δ:ppm) ジメチルスルフオキシド中、外部基準に
TMS(テトラメチルシラン)を使用して測定
した核磁気共鳴スペクトル(400 MHz)は第
3図に示す通りである(配座異性体を含む)。 (10) 溶解性: 水、メタノールに可溶、アセトンに難溶、
酢酸エチル、クロロホルム、ベンゼンに不
溶。 (11) 呈色反応: ニンヒドリン、硫酸、ヨード、塩化第二
鉄、バイエル反応に陽性。 (12) 薄層クロマトグラフイー: Rf値;0.36 吸着剤;シリカゲルプレート(メルク社製
Kieselgel 60 F254) 展開溶媒;n−ブタノール:n−プロパノ
ール:水(4:2:1) (13) 高速液体クロマトグラフイー: カラム;アクアシルSS372−N(センシユ
ウ科学社製) 展開溶媒;クロロホルム:i−プロパノー
ル:メタノール:水(200:100:100:40) 保持時間;3.92分 (14) 抗菌力: 一般グラム陽性、グラム陰性細菌に対する
抗生物質ムレイドマイシンAの最小阻止濃度
(MIC)はミユーラーヒントン寒天培地(デ
イフコ社製)を用いた寒天培地希釈法によつ
て測定した。その結果は第4表に示すとおり
である。 (15) 毒性 マウスに400mg/Kgを静脈内投与したが毒
性は認められなかつた。 (16) 構造式
【化】
2 抗生物質ムレイドマイシンC。
(1) 物質の性状:両性水溶性、白色粉末。
(2) 比旋光度[α]25 D=+16.7゜(c 0.57、50
%メタノール水) (3) 元素分析値(%)C、49.44;H、5.50;
N、12.53;S、3.09 (4) 分子量:897(高分解能質量分析FAB−
MASS:898.33687(QM+) (5) 分子式:C40H51N9O13S1 (6) 酸加水分解: ウラシル、グリシン、m−チロシン、2−
アミノ−3−メチルアミノ酪酸 (7) 紫外線吸収スペクトル:λnaxnm(E1% 1cm) 中性、258nm(292);0.01NHCl、259nm
(312);0.01NNaOH、240nm(444)、265nm
(276sh)および295nm(72sh) 第4図AおよびBに示す通りである。 (8) 赤外線吸収スペクトル:νKBr naxcm-1 KBrデイスクで測定した赤外線吸収スペ
クトルは第5図に示す通りである。 (9) 核磁気共鳴スペクトル(δ:ppm) 重水中、外部基準にTMS(テトラメチルシ
ラン)を使用して測定した核磁気共鳴スペク
トル(270MHz)は第6図に示す通りである
(配座異性体を含む)。 (10) 溶解性: 水、メタノールに可溶、アセトンに難溶、
酢酸エチル、クロロホルム、ベンゼンに不
溶。 (11) 呈色反応: ニンヒドリン、硫酸、ヨード、塩化第二
鉄、バイエル反応に陽性。 (11) 薄層クロマトグラフイー: Rf値;0.29 吸着剤;シリカゲルプレート(メルク社製
Kieselgel 60 F254) 展開溶媒;n−ブタノール:n−プロパノ
ール:水(4:2:1) (13) 高速液体クロマトグラフイー: カラム;アクアシルSS372−N(センシユ
ウ科学社製) 展開溶媒;クロロホルム:i−プロパノー
ル:メタノール:水(200:100:100:40) 保持時間;6.29分 (14) 抗菌力: 一般グラム陽性、グラム陰性細菌に対する
抗生物質ムレイドマイシンCの最小阻止濃度
(MIC)はミユーラーヒントン寒天培地(デ
イフコ社製)を用いた寒天培地希釈法によつ
て測定した。その結果は第4表に示すとおり
である。 (15) 毒性 マウスに400mg/Kgを静脈内投与したが毒
性は認められなかつた。 (16) 構造式
%メタノール水) (3) 元素分析値(%)C、49.44;H、5.50;
N、12.53;S、3.09 (4) 分子量:897(高分解能質量分析FAB−
MASS:898.33687(QM+) (5) 分子式:C40H51N9O13S1 (6) 酸加水分解: ウラシル、グリシン、m−チロシン、2−
アミノ−3−メチルアミノ酪酸 (7) 紫外線吸収スペクトル:λnaxnm(E1% 1cm) 中性、258nm(292);0.01NHCl、259nm
(312);0.01NNaOH、240nm(444)、265nm
(276sh)および295nm(72sh) 第4図AおよびBに示す通りである。 (8) 赤外線吸収スペクトル:νKBr naxcm-1 KBrデイスクで測定した赤外線吸収スペ
クトルは第5図に示す通りである。 (9) 核磁気共鳴スペクトル(δ:ppm) 重水中、外部基準にTMS(テトラメチルシ
ラン)を使用して測定した核磁気共鳴スペク
トル(270MHz)は第6図に示す通りである
(配座異性体を含む)。 (10) 溶解性: 水、メタノールに可溶、アセトンに難溶、
酢酸エチル、クロロホルム、ベンゼンに不
溶。 (11) 呈色反応: ニンヒドリン、硫酸、ヨード、塩化第二
鉄、バイエル反応に陽性。 (11) 薄層クロマトグラフイー: Rf値;0.29 吸着剤;シリカゲルプレート(メルク社製
Kieselgel 60 F254) 展開溶媒;n−ブタノール:n−プロパノ
ール:水(4:2:1) (13) 高速液体クロマトグラフイー: カラム;アクアシルSS372−N(センシユ
ウ科学社製) 展開溶媒;クロロホルム:i−プロパノー
ル:メタノール:水(200:100:100:40) 保持時間;6.29分 (14) 抗菌力: 一般グラム陽性、グラム陰性細菌に対する
抗生物質ムレイドマイシンCの最小阻止濃度
(MIC)はミユーラーヒントン寒天培地(デ
イフコ社製)を用いた寒天培地希釈法によつ
て測定した。その結果は第4表に示すとおり
である。 (15) 毒性 マウスに400mg/Kgを静脈内投与したが毒
性は認められなかつた。 (16) 構造式
【化】
【表】
【表】
以上から、抗生物質ムレイドマイシンAおよび
Cはグラム陰性細菌、特にシユウドモナス属細菌
に有効である。 以上から、抗生物質ムレイドマイシンAおよび
Cは各種細菌感染症疾患を対照とする抗菌剤とし
て使用される。その投与形態としては皮下注射、
静脈内注射、筋肉注射、坐薬などによる非経口投
与法あるいは錠剤、カプセル剤、散剤、顆粒剤な
どによる経口投与法があげられる。投与量は対象
症患、投与経路および投与回数などによつて異な
るが、例えば成人に対して通常は1日0.1g〜10
gを1回または数回に分けて投与するのが好まし
い。 次に実施例、製剤例をあげて本発明を具体的に
説明する。 実施例 1 スプレプトミセス・フラビドビレンス
SANK60486株をA培地(グルコース:3%、生
イースト:1%、大豆粉:3%、CaCO3:0.4%、
MgSO4・7H2O:0.2%、ニツサン・デイスフオ
ームCB−442:0.01%、滅菌前PH7.2)80ml含む
500ml容三角フラスコに一白金耳付接種し、
220rpmの回転振盪培養機により22℃で84時間培
養した。この培養液25mlをA培地500mlを含む2
容三角フラスコ4本に接種して220rpmの回転
振盪培養機により22℃、24時間培養した。この培
養液750mlをA培地15を含む30容ジヤーフア
ーメンター2基に接種し、22℃、回転数;
150rpm、通気量15/分で96時間通気攪拌培養
した。この培養液30に濾過助剤としてセライト
545を加えて濾過すると、濾液30が得られた。
この濾液を3のアンバーライトXAD−2カラ
ムに吸着させ、15の精製水および12の15%メ
タノール水で順次洗浄した後、15の40%メタノ
ール水にて溶出した。得られた活性画分を減圧下
でメタノールを留去後、凍結乾燥すると粗粉末
17.4gが得られた。得られた粗粉末17gを3の
精製水に溶解しアンバーライトCG−50(H+)、
800mlのカラムを通過させ有効物質を吸着させた。
このカラムから有効物質を0.5Mのアンモニア水
で溶出した。活性画分3.5を集め、減圧下1.0
に濃縮した。濃縮液1.0を0.1Mの炭酸水素アン
モニウムで平衡化した400mlのDE−52(ワツトマ
ン社製)に通過吸着させ、0.2Mの炭酸水素アン
モニウムで溶出した。活性画分800mlを集め、ダ
イヤイオンHP20(三菱化成工業(株)社製)200mlに
吸着後50%アセトン500mlで有効物質を溶出した。
活性画分を濃縮し凍結乾燥することにより抗生物
質ムレイドマイシンAおよびCを含む粗粉末1.6
gを得た。この粗粉末1.5gを200mlの精製水に溶
解し0.05Mの炭酸水素アンモニウムで平衡化した
500mlのDE−52に吸着させ、0.05Mの同緩衝液で
洗浄後、0.1Mの同緩衝液で溶出し20mlごとに分
画した。活性画分としてフラクシヨン80から130
を集め、HP20カラムにて吸着、脱塩することに
より脱塩し、減圧濃縮、凍結乾燥し、抗生物質ム
レイドマイシンAおよびCを含む部分精製粉末
309mgを得た。部分精製粉末300mgを100gのシリ
カゲルカラムにかけ、n−ブタノール:n−プロ
パノール:水(8:4:1)より成る混合溶媒で
展開し、20mlごとに分画した。活性は2つのピー
クとして現われた。フラクシヨン13から36を集め
水を加えて濃縮後、凍結乾燥することにより抗生
物質ムレイドマイシンAを含む粗粉末33mgを得
た。また同様にしてフラクシヨン56から75より抗
生物質ムレイドマイシンCを含む粗粉末66mgを得
た。 実施例 2 実施例1で得た抗生物質ムレイドマイシンAを
含む粗粉末のうち30mgを30%メタノールで作成し
た1000mlのトヨパールカラムに吸着させ同溶媒で
展開し、10mlずつに分画した。活性画分としてフ
ラクシヨン50から70を集め、10mlのCG−50(H+
型)に吸着後、0.5Mのアンモニア水にて溶出し
た。活性画分を集め濃縮後、凍結乾燥することに
より抗生物質ムレイドマイシンA24mgを得た。 実施例 3 実施例1で得た抗生物質ムレイドマイシンCを
含む粗粉末のうち60mgを30%メタノールで作製し
た1000mlのトヨパールカラムに吸着させ同溶媒で
展開し、10mlずつ分画した。活性画分としてフラ
クシヨン65から85を集め、10mlのCG−50(H+型)
に吸着後、0.5Mのアンモニア水にて溶出した。
活性画分を集め濃縮後、凍結乾燥することにより
抗生物質ムレイドマイシンC49mgを得た。 次に製剤例について述べる。 製剤例 1 経口用カプセル剤 ムレイドマイシンA 100mg 乳 糖 100 トウモロコシ澱粉 148.5 ステアリン酸マグネシウム 1.5 350mg 上記処方の粉末を混合し、30メツシユのふるい
を通した後、この粉末350mgを2号ゼラチンカプ
セルに入れ、カプセル剤とした。 製造例 2 経口用カプセル剤 ムレイドマイシンC 100mg 乳 糖 100 トウモロコシ澱粉 148.5 ステアリン酸マグネシウム 1.5 350mg 上記処方の粉末を混合し、30メツシユのふるい
を通した後、この粉末350mgを2号ゼラチンカプ
セルに入れ、カプセル剤とした。 製剤例 3 注射剤 ムレイドマイシンA1.0gを1/15M燐酸緩衝
液(PH6.9)5.0mlに加えて溶解し、次いで5mlア
ンプルに封入し、常法に従つて滅菌し注射剤とし
た。 製剤例 4 注射剤 ムレイドマイシンC1.0gを1/15M燐酸緩衝液
(PH6.9)5.0mlに加えて溶解し、次いで5mlアン
プルに封入し、常法に従つて滅菌し注射剤とし
た。
Cはグラム陰性細菌、特にシユウドモナス属細菌
に有効である。 以上から、抗生物質ムレイドマイシンAおよび
Cは各種細菌感染症疾患を対照とする抗菌剤とし
て使用される。その投与形態としては皮下注射、
静脈内注射、筋肉注射、坐薬などによる非経口投
与法あるいは錠剤、カプセル剤、散剤、顆粒剤な
どによる経口投与法があげられる。投与量は対象
症患、投与経路および投与回数などによつて異な
るが、例えば成人に対して通常は1日0.1g〜10
gを1回または数回に分けて投与するのが好まし
い。 次に実施例、製剤例をあげて本発明を具体的に
説明する。 実施例 1 スプレプトミセス・フラビドビレンス
SANK60486株をA培地(グルコース:3%、生
イースト:1%、大豆粉:3%、CaCO3:0.4%、
MgSO4・7H2O:0.2%、ニツサン・デイスフオ
ームCB−442:0.01%、滅菌前PH7.2)80ml含む
500ml容三角フラスコに一白金耳付接種し、
220rpmの回転振盪培養機により22℃で84時間培
養した。この培養液25mlをA培地500mlを含む2
容三角フラスコ4本に接種して220rpmの回転
振盪培養機により22℃、24時間培養した。この培
養液750mlをA培地15を含む30容ジヤーフア
ーメンター2基に接種し、22℃、回転数;
150rpm、通気量15/分で96時間通気攪拌培養
した。この培養液30に濾過助剤としてセライト
545を加えて濾過すると、濾液30が得られた。
この濾液を3のアンバーライトXAD−2カラ
ムに吸着させ、15の精製水および12の15%メ
タノール水で順次洗浄した後、15の40%メタノ
ール水にて溶出した。得られた活性画分を減圧下
でメタノールを留去後、凍結乾燥すると粗粉末
17.4gが得られた。得られた粗粉末17gを3の
精製水に溶解しアンバーライトCG−50(H+)、
800mlのカラムを通過させ有効物質を吸着させた。
このカラムから有効物質を0.5Mのアンモニア水
で溶出した。活性画分3.5を集め、減圧下1.0
に濃縮した。濃縮液1.0を0.1Mの炭酸水素アン
モニウムで平衡化した400mlのDE−52(ワツトマ
ン社製)に通過吸着させ、0.2Mの炭酸水素アン
モニウムで溶出した。活性画分800mlを集め、ダ
イヤイオンHP20(三菱化成工業(株)社製)200mlに
吸着後50%アセトン500mlで有効物質を溶出した。
活性画分を濃縮し凍結乾燥することにより抗生物
質ムレイドマイシンAおよびCを含む粗粉末1.6
gを得た。この粗粉末1.5gを200mlの精製水に溶
解し0.05Mの炭酸水素アンモニウムで平衡化した
500mlのDE−52に吸着させ、0.05Mの同緩衝液で
洗浄後、0.1Mの同緩衝液で溶出し20mlごとに分
画した。活性画分としてフラクシヨン80から130
を集め、HP20カラムにて吸着、脱塩することに
より脱塩し、減圧濃縮、凍結乾燥し、抗生物質ム
レイドマイシンAおよびCを含む部分精製粉末
309mgを得た。部分精製粉末300mgを100gのシリ
カゲルカラムにかけ、n−ブタノール:n−プロ
パノール:水(8:4:1)より成る混合溶媒で
展開し、20mlごとに分画した。活性は2つのピー
クとして現われた。フラクシヨン13から36を集め
水を加えて濃縮後、凍結乾燥することにより抗生
物質ムレイドマイシンAを含む粗粉末33mgを得
た。また同様にしてフラクシヨン56から75より抗
生物質ムレイドマイシンCを含む粗粉末66mgを得
た。 実施例 2 実施例1で得た抗生物質ムレイドマイシンAを
含む粗粉末のうち30mgを30%メタノールで作成し
た1000mlのトヨパールカラムに吸着させ同溶媒で
展開し、10mlずつに分画した。活性画分としてフ
ラクシヨン50から70を集め、10mlのCG−50(H+
型)に吸着後、0.5Mのアンモニア水にて溶出し
た。活性画分を集め濃縮後、凍結乾燥することに
より抗生物質ムレイドマイシンA24mgを得た。 実施例 3 実施例1で得た抗生物質ムレイドマイシンCを
含む粗粉末のうち60mgを30%メタノールで作製し
た1000mlのトヨパールカラムに吸着させ同溶媒で
展開し、10mlずつ分画した。活性画分としてフラ
クシヨン65から85を集め、10mlのCG−50(H+型)
に吸着後、0.5Mのアンモニア水にて溶出した。
活性画分を集め濃縮後、凍結乾燥することにより
抗生物質ムレイドマイシンC49mgを得た。 次に製剤例について述べる。 製剤例 1 経口用カプセル剤 ムレイドマイシンA 100mg 乳 糖 100 トウモロコシ澱粉 148.5 ステアリン酸マグネシウム 1.5 350mg 上記処方の粉末を混合し、30メツシユのふるい
を通した後、この粉末350mgを2号ゼラチンカプ
セルに入れ、カプセル剤とした。 製造例 2 経口用カプセル剤 ムレイドマイシンC 100mg 乳 糖 100 トウモロコシ澱粉 148.5 ステアリン酸マグネシウム 1.5 350mg 上記処方の粉末を混合し、30メツシユのふるい
を通した後、この粉末350mgを2号ゼラチンカプ
セルに入れ、カプセル剤とした。 製剤例 3 注射剤 ムレイドマイシンA1.0gを1/15M燐酸緩衝
液(PH6.9)5.0mlに加えて溶解し、次いで5mlア
ンプルに封入し、常法に従つて滅菌し注射剤とし
た。 製剤例 4 注射剤 ムレイドマイシンC1.0gを1/15M燐酸緩衝液
(PH6.9)5.0mlに加えて溶解し、次いで5mlアン
プルに封入し、常法に従つて滅菌し注射剤とし
た。
第1図は抗生物質ムレイドマイシンAの紫外線
吸収スペクトルを示し、第2図は同物質の赤外線
吸収スペクトルを示し、第3図は同物質の核磁気
共鳴吸収スペクトルを示す。第4図は抗生物質ム
レイドマイシンCの紫外線吸収スペクトルを示
し、第5図は同物質の赤外線吸収スペクトルを示
し、第6図は同物質の核磁気共鳴吸収スペクトル
を示す。
吸収スペクトルを示し、第2図は同物質の赤外線
吸収スペクトルを示し、第3図は同物質の核磁気
共鳴吸収スペクトルを示す。第4図は抗生物質ム
レイドマイシンCの紫外線吸収スペクトルを示
し、第5図は同物質の赤外線吸収スペクトルを示
し、第6図は同物質の核磁気共鳴吸収スペクトル
を示す。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 以下の構造式を有する抗生物質ムレイドマイ
シンA。 【化】 2 以下の構造式を有する抗生物質ムレイドマイ
シンC。 【化】 3 スプレプトミセス属に属する抗生物質ムレイ
ドマイシンAおよびC生産菌を培養し、その培養
液より抗生物質ムレイドマイシンAおよび抗生物
質ムレイドマイシンCを採取することを特徴とす
る抗生物質ムレイドマイシンAおよびCの製造
法。 4 ストレプトミセス属に属する抗生物質ムレイ
ドマイシンAおよびC生産菌がストレプトミセ
ス・フラビドレンスSANK60486株
(Streptomyces flavidovirens SANK 60486)
(微工研菌寄第8636号)である特許請求の範囲第
3項記載の製造法。 5 抗生物質ムレイドマイシンおよび/または抗
生物質ムレイドマイシンCを有効成分とする抗菌
剤。
Priority Applications (9)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP61115639A JPS63211295A (ja) | 1986-05-20 | 1986-05-20 | 抗生物質ムレイドマイシンaおよびc |
CA000537527A CA1339467C (en) | 1986-05-20 | 1987-05-20 | New antibiotics called "mureidomycins a, b, c and d", a process for their preparation and their therapeutic use |
KR1019870005014A KR950013857B1 (ko) | 1986-05-20 | 1987-05-20 | 신규 항생물질 무레이도마이신 a, b, c 및 d 그의 제조 방법 및 치료학적 용도 |
EP87111942A EP0253413B1 (en) | 1986-05-20 | 1987-05-20 | New antibiotics called "mureidomycins a, b, c and d" a process for their preparation and their therapeutic use |
DE87111942T DE3787765T2 (de) | 1986-05-20 | 1987-05-20 | Antibiotika "Mureidomycine A,B,C und D" genannt, deren Verfahren zur Herstellung und deren Verwendung. |
ES87111942T ES2060587T3 (es) | 1986-05-20 | 1987-05-20 | Un procedimiento para producir los compuestos llamados mureidomicina a,b,c o d y sus sales y esteres. |
AT87111942T ATE95839T1 (de) | 1986-05-20 | 1987-05-20 | Antibiotika ''mureidomycine a,b,c und d'' genannt, deren verfahren zur herstellung und deren verwendung. |
US07/253,450 US5039663A (en) | 1986-05-20 | 1988-10-04 | Antibiotics called "mureidomycins A, B, C, and D" and their therapeutic use |
US07/660,414 US5213974A (en) | 1986-05-20 | 1991-02-22 | Fermentation process for preparing antibiotics mureidomycins A, B, C and D |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP61115639A JPS63211295A (ja) | 1986-05-20 | 1986-05-20 | 抗生物質ムレイドマイシンaおよびc |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS63211295A JPS63211295A (ja) | 1988-09-02 |
JPH0586959B2 true JPH0586959B2 (ja) | 1993-12-14 |
Family
ID=14667620
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP61115639A Granted JPS63211295A (ja) | 1986-05-20 | 1986-05-20 | 抗生物質ムレイドマイシンaおよびc |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS63211295A (ja) |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2014177404A (ja) * | 2011-06-30 | 2014-09-25 | Hokkaido Univ | 核酸抗生物質誘導体 |
-
1986
- 1986-05-20 JP JP61115639A patent/JPS63211295A/ja active Granted
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS63211295A (ja) | 1988-09-02 |
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