JPH05276970A - 微生物によるキシロシルフラクトシド高含有糖液の 製造方法 - Google Patents
微生物によるキシロシルフラクトシド高含有糖液の 製造方法Info
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- JPH05276970A JPH05276970A JP5978291A JP5978291A JPH05276970A JP H05276970 A JPH05276970 A JP H05276970A JP 5978291 A JP5978291 A JP 5978291A JP 5978291 A JP5978291 A JP 5978291A JP H05276970 A JPH05276970 A JP H05276970A
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- xylose
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
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Abstract
(57)【要約】
【目的】微生物を作用させることによりキシロシルフラ
クトシドの含有率が高い糖液を得ることを目的とする。 【構成】スクロースとキシロースにβ−フラクトフラノ
シダーゼあるいはレバンシュークラーゼを作用させてキ
シロシルフラクトシドを生産する際に、グルコースおよ
びフラクトースは資化できるが、キシロシルフラクトシ
ドおよびキシロース、スクロースは資化できないキャン
ディダ（Ｃａｎｄｉｄａ）属あるいはフィチア（Ｐｉｃ
ｈｉａ）属に属する微生物のうち、少なくとも一株を作
用させて、副生するグルコースとフラクトースを消費さ
せる。
クトシドの含有率が高い糖液を得ることを目的とする。 【構成】スクロースとキシロースにβ−フラクトフラノ
シダーゼあるいはレバンシュークラーゼを作用させてキ
シロシルフラクトシドを生産する際に、グルコースおよ
びフラクトースは資化できるが、キシロシルフラクトシ
ドおよびキシロース、スクロースは資化できないキャン
ディダ（Ｃａｎｄｉｄａ）属あるいはフィチア（Ｐｉｃ
ｈｉａ）属に属する微生物のうち、少なくとも一株を作
用させて、副生するグルコースとフラクトースを消費さ
せる。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、抗う蝕性低カロリー甘
味料として有名なキシロシルフラクトシド（０−α−D
−キシロピラノシル−（１−２）−β−D−フラクトフ
ラノシド、キシロスクロース）の製造方法、より詳しく
は、微生物を利用してキシロシルフラクトシド高含有糖
液を得るその製造方法に関する。
味料として有名なキシロシルフラクトシド（０−α−D
−キシロピラノシル−（１−２）−β−D−フラクトフ
ラノシド、キシロスクロース）の製造方法、より詳しく
は、微生物を利用してキシロシルフラクトシド高含有糖
液を得るその製造方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】キシロシルフラクトシドは、キシロース
残基とフラクトース残基からなる二糖類で、抗う蝕性の
糖やヒトの有用腸内細菌であるビフィズス菌増殖物質と
して有効であり、また構成糖のキシロースは消化吸収さ
れにくい糖であるため、低カロリー甘味料としても期待
されている。
残基とフラクトース残基からなる二糖類で、抗う蝕性の
糖やヒトの有用腸内細菌であるビフィズス菌増殖物質と
して有効であり、また構成糖のキシロースは消化吸収さ
れにくい糖であるため、低カロリー甘味料としても期待
されている。
【０００３】現在、バチルス・サブチリス（Ｂａｃｉｌ
ｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ）のレバンシュークラーゼ
（Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，９０，５２１−５２６（１９
８１））、（特開昭５５−１１８３６９号）を用いキシ
ロースとスクロースからキシロシルフラクトシドを合成
する方法等が報告されている。
ｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ）のレバンシュークラーゼ
（Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，９０，５２１−５２６（１９
８１））、（特開昭５５−１１８３６９号）を用いキシ
ロースとスクロースからキシロシルフラクトシドを合成
する方法等が報告されている。
【０００４】また、ペニシリウム・フレクエンタンス
（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ ｆｒｅｑｕｅｎｔａｎｓ）
（バイオインダストリー，５，２６９−２７５（１９８
８））や、アースロバクター（Ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅ
ｒ ｓｐ．ｋ−１）（Ａｇｒｉｃ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅ
ｍ．，５４，９１３−９１９（１９９０））のβ−フラ
クトフラノシダーゼを用いてキシロースとスクロースか
らキシロシルフラクトシドを合成する方法等が報告され
ている。
（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ ｆｒｅｑｕｅｎｔａｎｓ）
（バイオインダストリー，５，２６９−２７５（１９８
８））や、アースロバクター（Ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅ
ｒ ｓｐ．ｋ−１）（Ａｇｒｉｃ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅ
ｍ．，５４，９１３−９１９（１９９０））のβ−フラ
クトフラノシダーゼを用いてキシロースとスクロースか
らキシロシルフラクトシドを合成する方法等が報告され
ている。
【０００５】しかし、これらの方法ではキシロシルフラ
クトシド以外に数種類以上のオリゴ糖が生成し、また収
率が低いためキシロシルフラクトシドのみを分離するこ
とは極めて難しく、実用性に乏しい。
クトシド以外に数種類以上のオリゴ糖が生成し、また収
率が低いためキシロシルフラクトシドのみを分離するこ
とは極めて難しく、実用性に乏しい。
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】本発明者らは、微生物
によるキシロシルフラクトシドの製造を目的として微生
物の検索を行ったところ、バチルス属の微生物が生成す
るβ−フラクトフラノシダーゼが高いフラクトース残基
転移能を有し、キシロシルフラクトシドを大量に生成す
ることをさきに見いだした。
によるキシロシルフラクトシドの製造を目的として微生
物の検索を行ったところ、バチルス属の微生物が生成す
るβ−フラクトフラノシダーゼが高いフラクトース残基
転移能を有し、キシロシルフラクトシドを大量に生成す
ることをさきに見いだした。
【０００７】しかしながら、この方法を用いてもキシロ
シルフラクトシドの収率は約３５％であり、反応液中に
は原料であるスクロースとキシロースやスクロースの分
解物であるグルコースやフラクトースが残存している。
シルフラクトシドの収率は約３５％であり、反応液中に
は原料であるスクロースとキシロースやスクロースの分
解物であるグルコースやフラクトースが残存している。
【０００８】また、反応液中にスクロースの分解物であ
るグルコースが蓄積するとキシロシルフラクトシドの生
成速度も減少してくる。
るグルコースが蓄積するとキシロシルフラクトシドの生
成速度も減少してくる。
【０００９】キシロシルフラクトシド以外の反応液中の
糖類を除去する方法としては、活性炭による吸着作用や
ゲル濾過などの分子ふるいを利用したカラムクロマトグ
ラフィーあるいはイオン交換樹脂カラムクロマトグラフ
ィーなどによる方法が知られている。しかし、これらの
カラムクロマトグラフィーによる方法は、高価なエタノ
ールを多量に使用したり、また大量処理ができないなど
のデメリットがあり、工業的生産には適してない。
糖類を除去する方法としては、活性炭による吸着作用や
ゲル濾過などの分子ふるいを利用したカラムクロマトグ
ラフィーあるいはイオン交換樹脂カラムクロマトグラフ
ィーなどによる方法が知られている。しかし、これらの
カラムクロマトグラフィーによる方法は、高価なエタノ
ールを多量に使用したり、また大量処理ができないなど
のデメリットがあり、工業的生産には適してない。
【００１０】
【課題を解決するための手段】本発明者らは、スクロー
スとキシロースを原料として発酵法あるいは酵素法によ
りキシロシルフラクトシドを製造する際に、微生物を作
用させてキシロシルフラクトシドの含有率を高める方法
を確立するため、グルコース及びフラクトースを資化で
きるが、生成物であるキシロシルフラクトシドと原料の
キシロースおよびスクロースを資化できない微生物の検
索を行った。
スとキシロースを原料として発酵法あるいは酵素法によ
りキシロシルフラクトシドを製造する際に、微生物を作
用させてキシロシルフラクトシドの含有率を高める方法
を確立するため、グルコース及びフラクトースを資化で
きるが、生成物であるキシロシルフラクトシドと原料の
キシロースおよびスクロースを資化できない微生物の検
索を行った。
【００１１】その結果、キャンディダ（Ｃａｎｄｉｄ
ａ）属あるいはフィチア（Ｐｉｃｈｉａ）属に属する微
生物が有効であることを見いだし、本発明にいたった。
ａ）属あるいはフィチア（Ｐｉｃｈｉａ）属に属する微
生物が有効であることを見いだし、本発明にいたった。
【００１２】すなわち、本発明に係るキシロシルフラク
トシドの製造方法は、キシロシルフラクトシドの製造を
行うにあたり、キャンディダ（Ｃａｎｄｉｄａ）属ある
いはフィチア（Ｐｉｃｈｉａ）属に属する微生物を作用
させ、グルコース、フラクトースを資化させることによ
りキシロシルフラクトシドの含有率を安価に高めること
を特徴とする。
トシドの製造方法は、キシロシルフラクトシドの製造を
行うにあたり、キャンディダ（Ｃａｎｄｉｄａ）属ある
いはフィチア（Ｐｉｃｈｉａ）属に属する微生物を作用
させ、グルコース、フラクトースを資化させることによ
りキシロシルフラクトシドの含有率を安価に高めること
を特徴とする。
【００１３】以下本発明について詳述する。使用する微生物 本発明において使用する微生物はキャンディダ（Ｃａｎ
ｄｉｄａ）属あるいはフィチア（Ｐｉｃｈｉａ）属に属
する微生物で、グルコースおよびフラクトースを資化で
きるが、生成物であるキシロシルフラクトシドと原料の
キシロースおよびスクロースを資化できない微生物であ
れば特に限定されない。
ｄｉｄａ）属あるいはフィチア（Ｐｉｃｈｉａ）属に属
する微生物で、グルコースおよびフラクトースを資化で
きるが、生成物であるキシロシルフラクトシドと原料の
キシロースおよびスクロースを資化できない微生物であ
れば特に限定されない。
【００１４】例えばキャンディダ・キャンタレリー（Ｃ
ａｎｄｉｄａ ｃａｎｔａｒｅｌｌｉｉ）ＩＦＯ−１
２６１株、キャンディダ・カラワイエウイー（Ｃａｎｄ
ｉｄａ ｋａｒａｗａｉｅｗｉｉ）ＩＦＯ−１０２８６
株、フィチア・アカシアエ（Ｐｉｃｈｉａ ａｃａｓｉ
ａｅ）ＩＦＯ−１６８１株、フィチア・ディスポーラ
（Ｐｉｃｈｉａ ｄｉｓｐｏｒａ）ＩＦＯ−００３５株
などはグルコースとフラクトースを資化するが、キシロ
ース、スクロース、キシロシルフラクトシドを資化しな
い微生物であり、本発明には有効に利用できる。
ａｎｄｉｄａ ｃａｎｔａｒｅｌｌｉｉ）ＩＦＯ−１
２６１株、キャンディダ・カラワイエウイー（Ｃａｎｄ
ｉｄａ ｋａｒａｗａｉｅｗｉｉ）ＩＦＯ−１０２８６
株、フィチア・アカシアエ（Ｐｉｃｈｉａ ａｃａｓｉ
ａｅ）ＩＦＯ−１６８１株、フィチア・ディスポーラ
（Ｐｉｃｈｉａ ｄｉｓｐｏｒａ）ＩＦＯ−００３５株
などはグルコースとフラクトースを資化するが、キシロ
ース、スクロース、キシロシルフラクトシドを資化しな
い微生物であり、本発明には有効に利用できる。
【００１５】これらの微生物自体は公知のものではある
が、これらの微生物の本発明における作用は本発明者ら
が初めて見いだしたものである。
が、これらの微生物の本発明における作用は本発明者ら
が初めて見いだしたものである。
【００１６】本発明で用いる上記微生物の培養方法とし
ては、公知の微生物培養方法が採用できる。例えば、培
地のｐＨは４〜８、培養温度は２０〜４０℃、培養期間
１〜４日間の範囲で、撹拌培養、静置培養のどちらでも
培養できる。微生物を作用させる方法 本発明において微生物を作用させる方法としては、スク
ロースとキシロースにバチルス・メガテリウム（Ｂａｃ
ｉｌｌｕｓ ｍｅｇａｔｅｒｉｕｍ）ＩＦＯ−１３４９
８株などのβ−フラクトフラノシダーゼを作用させてキ
シロシルフラクトシドを生産する際に、前記微生物の
内、少なくとも一株の生菌体を同時に加え、副生するグ
ルコースを消費させながら反応を行ってキシロシルフラ
クトシドを高収率で生産させ、キシロシルフラクトシド
高含有糖液を得る。反応は３０〜４０℃、ｐＨ５〜８
で、１２〜２４時間行う。
ては、公知の微生物培養方法が採用できる。例えば、培
地のｐＨは４〜８、培養温度は２０〜４０℃、培養期間
１〜４日間の範囲で、撹拌培養、静置培養のどちらでも
培養できる。微生物を作用させる方法 本発明において微生物を作用させる方法としては、スク
ロースとキシロースにバチルス・メガテリウム（Ｂａｃ
ｉｌｌｕｓ ｍｅｇａｔｅｒｉｕｍ）ＩＦＯ−１３４９
８株などのβ−フラクトフラノシダーゼを作用させてキ
シロシルフラクトシドを生産する際に、前記微生物の
内、少なくとも一株の生菌体を同時に加え、副生するグ
ルコースを消費させながら反応を行ってキシロシルフラ
クトシドを高収率で生産させ、キシロシルフラクトシド
高含有糖液を得る。反応は３０〜４０℃、ｐＨ５〜８
で、１２〜２４時間行う。
【００１７】この方法では反応液中からキシロースを除
去することはできないが、スクロースのフラクトース残
基がキシロースに転移する際に副生するグルースが反応
系よりただちに除去されるため、フラクトース残基がキ
シロースだけに転移し、生成物であるキシロシルフラク
トシドの収率が向上する。また、キシロシルフラクトシ
ド以外の転移生成物が少なく効率よくキシロシルフラク
トシドが生成される。
去することはできないが、スクロースのフラクトース残
基がキシロースに転移する際に副生するグルースが反応
系よりただちに除去されるため、フラクトース残基がキ
シロースだけに転移し、生成物であるキシロシルフラク
トシドの収率が向上する。また、キシロシルフラクトシ
ド以外の転移生成物が少なく効率よくキシロシルフラク
トシドが生成される。
【００１８】
＜実施例１＞ 菌体の製造 （ＭＹ培地） 麦芽エキス ３ｇ 酵母エキス ３ｇ ペプトン ５ｇ ブドウ糖 １０ｇ 水 １０００ml 上記組成の培地２ｌ（２リットル）を小型ジャーファー
メンターに入れ、あらかじめ同培地で前培養しておいた
キャンディダ・キャンタレリー（Ｃａｎｄｉｄａ ｃａ
ｎｔａｒｅｌｌｉｉ）ＩＦＯ−１２６１株、またはキャ
ンディダ・カラワイエウイー（Ｃａｎｄｉｄａ ｋａｒ
ａｗａｉｅｗｉｉ）ＩＦＯ−１０２８６株、フィチア・
アカシアエ（Ｐｉｃｈｉａ ａｃａｓｉａｅ）ＩＦＯ−
１６８１株、フィチア・ディスポーラ（Ｐｉｃｈｉａ
ｄｉｓｐｏｒａ）ＩＦＯ−００３５株の培養液５０mlを
接種し、３０℃で１６時間通気培養を行った。培養終了
後、２ｌ（２リットル）の培養液から遠心分離（８００
０ｒｐｍ，１０分間）して菌体を回収した。回収した菌
体を蒸留水で２回洗浄後、それぞれ湿重量３５．４ｇ，
４７．２ｇ，４８．５ｇ，５３．５ｇの菌体を得た。
メンターに入れ、あらかじめ同培地で前培養しておいた
キャンディダ・キャンタレリー（Ｃａｎｄｉｄａ ｃａ
ｎｔａｒｅｌｌｉｉ）ＩＦＯ−１２６１株、またはキャ
ンディダ・カラワイエウイー（Ｃａｎｄｉｄａ ｋａｒ
ａｗａｉｅｗｉｉ）ＩＦＯ−１０２８６株、フィチア・
アカシアエ（Ｐｉｃｈｉａ ａｃａｓｉａｅ）ＩＦＯ−
１６８１株、フィチア・ディスポーラ（Ｐｉｃｈｉａ
ｄｉｓｐｏｒａ）ＩＦＯ−００３５株の培養液５０mlを
接種し、３０℃で１６時間通気培養を行った。培養終了
後、２ｌ（２リットル）の培養液から遠心分離（８００
０ｒｐｍ，１０分間）して菌体を回収した。回収した菌
体を蒸留水で２回洗浄後、それぞれ湿重量３５．４ｇ，
４７．２ｇ，４８．５ｇ，５３．５ｇの菌体を得た。
【００１９】＜実施例２＞ 酵素反応によるキシロシ
ルフラクトシドの生成（１） スクロース３００ｇとキシロース１５０ｇを３０ｍＭリ
ン酸緩衝液（ｐＨ６．０）に溶解して１ｌ（１リット
ル）とした。これにバチルス・メガテリウムＩＦＯ−１
３４９８株の精製β−フラクトフラノシダーゼ１００ユ
ニットとキャンディダ・キャンタレリー（Ｃａｎｄｉｄ
ａ ｃａｎｔａｒｅｌｌｉｉ）ＩＦＯ−１２６１株の湿
菌体２５ｇを加えて３０℃で１６時間反応させた。反応
終了後、遠心分離（８０００ｒｐｍ，１０分間）により
菌体を除去し、上澄み液を得た。
ルフラクトシドの生成（１） スクロース３００ｇとキシロース１５０ｇを３０ｍＭリ
ン酸緩衝液（ｐＨ６．０）に溶解して１ｌ（１リット
ル）とした。これにバチルス・メガテリウムＩＦＯ−１
３４９８株の精製β−フラクトフラノシダーゼ１００ユ
ニットとキャンディダ・キャンタレリー（Ｃａｎｄｉｄ
ａ ｃａｎｔａｒｅｌｌｉｉ）ＩＦＯ−１２６１株の湿
菌体２５ｇを加えて３０℃で１６時間反応させた。反応
終了後、遠心分離（８０００ｒｐｍ，１０分間）により
菌体を除去し、上澄み液を得た。
【００２０】高速液体クロマトグラフィーにより生成し
たキシロシルフラクトシドを定量したところ、２３０ｇ
のキシロシルフラクトシドが生成し、反応液中の全糖量
の７５％を占め、グルコースとフラクトースはほとんど
認められなかった。
たキシロシルフラクトシドを定量したところ、２３０ｇ
のキシロシルフラクトシドが生成し、反応液中の全糖量
の７５％を占め、グルコースとフラクトースはほとんど
認められなかった。
【００２１】＜実施例３＞ 酵素反応によるキシロシ
ルフラクトシドの生成（２） スクロース３００ｇとキシロース１５０ｇを３０ｍＭリ
ン酸緩衝液（ｐＨ６．０）に溶解して１ｌ（１リット
ル）とした。これにバチルス・メガテリウムＩＦＯ−１
３４９８株の精製β−フラクトフラノシダーゼ１００ユ
ニットとフィチア・アカシアエ（Ｐｉｃｈｉａ ａｃａ
ｓｉａｅ）ＩＦＯ−１６８１株の湿菌体２５ｇを加えて
３０℃で１６時間反応させた。反応終了後、遠心分離
（８０００ｒｐｍ，１０分間）により菌体を除去し、上
澄み液を得た。
ルフラクトシドの生成（２） スクロース３００ｇとキシロース１５０ｇを３０ｍＭリ
ン酸緩衝液（ｐＨ６．０）に溶解して１ｌ（１リット
ル）とした。これにバチルス・メガテリウムＩＦＯ−１
３４９８株の精製β−フラクトフラノシダーゼ１００ユ
ニットとフィチア・アカシアエ（Ｐｉｃｈｉａ ａｃａ
ｓｉａｅ）ＩＦＯ−１６８１株の湿菌体２５ｇを加えて
３０℃で１６時間反応させた。反応終了後、遠心分離
（８０００ｒｐｍ，１０分間）により菌体を除去し、上
澄み液を得た。
【００２２】高速液体クロマトグラフィーにより生成し
たキシロシルフラクトシドを定量したところ、２２５ｇ
のキシロシルフラクトシドが生成し、反応液中の全糖量
の７３％を占め、グルコースとフラクトースはほとんど
認められなかった。
たキシロシルフラクトシドを定量したところ、２２５ｇ
のキシロシルフラクトシドが生成し、反応液中の全糖量
の７３％を占め、グルコースとフラクトースはほとんど
認められなかった。
【００２３】＜実施例４＞ 菌体反応によるキシロシ
ルフラクトシドの生成 スクロース２００ｇとキシロース１００ｇを３０ｍＭリ
ン酸緩衝液（ｐＨ６．０）に溶解して１ｌ（１リット
ル）とした。これにβ−フラクトフラノシダーゼを有す
るバチルス・メガテリウムＩＦＯ−１３４９８株の湿菌
体２９ｇとキャンディダ・カラワイエウイー（Ｃａｎｄ
ｉｄａ ｋａｒａｗａｉｅｗｉｉ）ＩＦＯ−１０２８６
株の湿菌体２５ｇを加えて３０℃で１６時間反応させ
た。反応終了後、遠心分離（８０００ｒｐｍ，１０分
間）により菌体を除去し、上澄み液を得た。
ルフラクトシドの生成 スクロース２００ｇとキシロース１００ｇを３０ｍＭリ
ン酸緩衝液（ｐＨ６．０）に溶解して１ｌ（１リット
ル）とした。これにβ−フラクトフラノシダーゼを有す
るバチルス・メガテリウムＩＦＯ−１３４９８株の湿菌
体２９ｇとキャンディダ・カラワイエウイー（Ｃａｎｄ
ｉｄａ ｋａｒａｗａｉｅｗｉｉ）ＩＦＯ−１０２８６
株の湿菌体２５ｇを加えて３０℃で１６時間反応させ
た。反応終了後、遠心分離（８０００ｒｐｍ，１０分
間）により菌体を除去し、上澄み液を得た。
【００２４】高速液体クロマトグラフィーにより生成し
たキシロシルフラクトシドを定量したところ、１５６ｇ
のキシロシルフラクトシドが生成し、反応液中の全糖量
の７６％を占め、グルコースとフラクトースはほとんど
認められなかった。
たキシロシルフラクトシドを定量したところ、１５６ｇ
のキシロシルフラクトシドが生成し、反応液中の全糖量
の７６％を占め、グルコースとフラクトースはほとんど
認められなかった。
【００２５】＜実施例５＞ 培養によるキシロシルフ
ラクトシドの生成 キシロース ５０ｇ スクロース １００ｇ 酵母エキス １ｇ ＫＨ2ＰＯ4 ２ｇ Ｎａ2ＨＰＯ4・１２Ｈ2Ｏ ８ｇ 水 １０００ml ｐＨ ７．０ 上記組成の培地２ｌ（２リットル）を小型ジャーファー
メンターに入れ、別に前培養しておいたバチルス・メガ
テリウムＩＦＯ−１３４９８株の培養液５０mlとフィチ
ア・ディスポーラ（Ｐｉｃｈｉａ ｄｉｓｐｏｒａ）Ｉ
ＦＯ−００３５株の湿菌体３５ｇを加え、３０℃で１８
時間通気培養を行った。培養液２ｌ（２リットル）を遠
心分離（１５０００ｒｐｍ）により菌体を除去し、上澄
み液を得た。
ラクトシドの生成 キシロース ５０ｇ スクロース １００ｇ 酵母エキス １ｇ ＫＨ2ＰＯ4 ２ｇ Ｎａ2ＨＰＯ4・１２Ｈ2Ｏ ８ｇ 水 １０００ml ｐＨ ７．０ 上記組成の培地２ｌ（２リットル）を小型ジャーファー
メンターに入れ、別に前培養しておいたバチルス・メガ
テリウムＩＦＯ−１３４９８株の培養液５０mlとフィチ
ア・ディスポーラ（Ｐｉｃｈｉａ ｄｉｓｐｏｒａ）Ｉ
ＦＯ−００３５株の湿菌体３５ｇを加え、３０℃で１８
時間通気培養を行った。培養液２ｌ（２リットル）を遠
心分離（１５０００ｒｐｍ）により菌体を除去し、上澄
み液を得た。
【００２６】高速液体クロマトグラフィーにより生成し
たキシロシルフラクトシドを定量したところ、１３８ｇ
のキシロシルフラクトシドが生成し、反応液中の全糖量
の７１％を占め、グルコースとフラクトースはほとんど
認められなかった。
たキシロシルフラクトシドを定量したところ、１３８ｇ
のキシロシルフラクトシドが生成し、反応液中の全糖量
の７１％を占め、グルコースとフラクトースはほとんど
認められなかった。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.5 識別記号 庁内整理番号 ＦＩ 技術表示箇所 Ｃ１２Ｒ 1:84） (72)発明者 福嶋 孝之 東京都江東区豊洲４−９−11 日新製糖株 式会社研究部内 (72)発明者 辻田 良彦 東京都江東区豊洲４−９−11 日新製糖株 式会社研究部内
Claims (1)
- 【請求項１】スクロースとキシロースにβ−フラクトフ
ラノシダーゼあるいはレバンシュークラーゼを作用させ
てキシロシルフラクトシドを生産する際に、グルコース
およびフラクトースは資化できるが、キシロシルフラク
トシドおよびキシロース、スクロースは資化できないキ
ャンディダ（Ｃａｎｄｉｄａ）属あるいはフィチア（Ｐ
ｉｃｈｉａ）属に属する微生物のうち、少なくとも一株
を作用させて、副生するグルコースとフラクトースを消
費させることにより反応液中のキシロシルフラクトシド
の含有率を高めることを特徴とするキシロシルフラクト
シドの製造方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP5978291A JPH05276970A (ja) | 1991-03-01 | 1991-03-01 | 微生物によるキシロシルフラクトシド高含有糖液の 製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP5978291A JPH05276970A (ja) | 1991-03-01 | 1991-03-01 | 微生物によるキシロシルフラクトシド高含有糖液の 製造方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH05276970A true JPH05276970A (ja) | 1993-10-26 |
Family
ID=13123210
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP5978291A Pending JPH05276970A (ja) | 1991-03-01 | 1991-03-01 | 微生物によるキシロシルフラクトシド高含有糖液の 製造方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH05276970A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6383769B1 (en) * | 1996-06-10 | 2002-05-07 | Kabushiki Kaisha Hayashibara Seibutsu Kagaku Kenkyujo | Polypeptides having β-fructofuranosidase activity |
| US6762046B2 (en) | 1996-06-10 | 2004-07-13 | Kabushiki Kaisha Hayashibara Seibutsu Kagaku Kenkyujo | Polypeptide having β-fructofuranosidase activity |
-
1991
- 1991-03-01 JP JP5978291A patent/JPH05276970A/ja active Pending
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6383769B1 (en) * | 1996-06-10 | 2002-05-07 | Kabushiki Kaisha Hayashibara Seibutsu Kagaku Kenkyujo | Polypeptides having β-fructofuranosidase activity |
| US6762046B2 (en) | 1996-06-10 | 2004-07-13 | Kabushiki Kaisha Hayashibara Seibutsu Kagaku Kenkyujo | Polypeptide having β-fructofuranosidase activity |
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