JPH0471487A - ウロキナーゼ前駆体の精製方法 - Google Patents
ウロキナーゼ前駆体の精製方法Info
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- JPH0471487A JPH0471487A JP18419690A JP18419690A JPH0471487A JP H0471487 A JPH0471487 A JP H0471487A JP 18419690 A JP18419690 A JP 18419690A JP 18419690 A JP18419690 A JP 18419690A JP H0471487 A JPH0471487 A JP H0471487A
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Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は、大腸菌で製造したウロキナーゼ前駆体の精製
法に関するものである。
法に関するものである。
(発明の背景)
ウロキナーゼ前駆体(以下、proL]Xと記載する)
は、血管内に生じた血栓を分解するプラスミンをその前
駆体であるプラスミノーゲンから誘導するウロキナーゼ
の前駆体である。従って、血栓症の治療薬として有用な
蛋白質である。
は、血管内に生じた血栓を分解するプラスミンをその前
駆体であるプラスミノーゲンから誘導するウロキナーゼ
の前駆体である。従って、血栓症の治療薬として有用な
蛋白質である。
従来、人の尿から精製されたウロキナーゼが血栓症の治
療薬として使用されて来たが、これを取得するには大量
の尿が必要であり、充分に供給することが難しかった。
療薬として使用されて来たが、これを取得するには大量
の尿が必要であり、充分に供給することが難しかった。
しかも、フィブリンに対する親和性が不十分であるため
、大量に使用すると出血等の副作用を示す恐れがある等
の課題もある。これに対してproUKは、遺伝子操作
の手法により組み換え微生物を使用して大量に製造し得
、かつ、フィブリンに対して高い親和性を有するため出
血等の副作用を示し難いといった特徴を有することから
、近年注目されるようになっている。
、大量に使用すると出血等の副作用を示す恐れがある等
の課題もある。これに対してproUKは、遺伝子操作
の手法により組み換え微生物を使用して大量に製造し得
、かつ、フィブリンに対して高い親和性を有するため出
血等の副作用を示し難いといった特徴を有することから
、近年注目されるようになっている。
proUKを微生物を使用して製造する方法は、例えば
特開昭59−51300号公報等に記載されている。
特開昭59−51300号公報等に記載されている。
このように微生物で製造されたproUKは、医薬品と
して期待される以上、微生物に由来する蛋白質、核酸、
脂質、パイロジエンと呼ばれる発熱性物質、蛋白質等の
夾雑物の混在がないように高純度に純化する必要がある
。
して期待される以上、微生物に由来する蛋白質、核酸、
脂質、パイロジエンと呼ばれる発熱性物質、蛋白質等の
夾雑物の混在がないように高純度に純化する必要がある
。
一般に酵素(蛋白質)を精製する方法として、液体クロ
マトグラフィーによる方法、塩析法、有機溶媒分画法、
遠心分離法等が知られているが、これらの方法には長所
、短所があり、−の方法を採用することで充分に精製が
完了するものではない。例えば液体クロマトグラフィー
による方法では、分子量がproUKと似通った夾雑物
(proLIXの分子量は、約513000である)の
分離は難しいであろうし、塩析法や有機溶媒分画法は大
量に存在する夾雑物の大部分を除去する、いわゆる粗精
製には適当であるものの、高純度のproUKを取得す
るのには適当ではない。遠心分離法においても、沈降係
数が同様の夾雑物の除去は難しい。
マトグラフィーによる方法、塩析法、有機溶媒分画法、
遠心分離法等が知られているが、これらの方法には長所
、短所があり、−の方法を採用することで充分に精製が
完了するものではない。例えば液体クロマトグラフィー
による方法では、分子量がproUKと似通った夾雑物
(proLIXの分子量は、約513000である)の
分離は難しいであろうし、塩析法や有機溶媒分画法は大
量に存在する夾雑物の大部分を除去する、いわゆる粗精
製には適当であるものの、高純度のproUKを取得す
るのには適当ではない。遠心分離法においても、沈降係
数が同様の夾雑物の除去は難しい。
本発明者らは、大腸菌で製造したproUKを含有する
溶液から前述の夾雑物を除去することを目的として、そ
れ自体単独で実施した場合にも高い純度を有する pr
oUKを取得でき、かつ、他の精製方法と組み合わせる
ことでより高純度のproUKを取得出来るような精製
法について研究を進めた結果、アルキル基を担持した高
分子ゲルを使用することで良好な結果が得られることを
見出だし、本発明を完成するに至った。
溶液から前述の夾雑物を除去することを目的として、そ
れ自体単独で実施した場合にも高い純度を有する pr
oUKを取得でき、かつ、他の精製方法と組み合わせる
ことでより高純度のproUKを取得出来るような精製
法について研究を進めた結果、アルキル基を担持した高
分子ゲルを使用することで良好な結果が得られることを
見出だし、本発明を完成するに至った。
(発明の構成)
大腸菌で製造したproUKを含有する溶液について前
述の目的を達成するためになされた本発明は、即ち、活
性を発現し得るウロキナーゼ前駆体及び大腸菌に由来す
る夾雑物を含有する試料溶液をアルキル基を担持した高
分子ゲルと接触させ、次いで当該ゲルをアルコール系有
機溶媒と接触させて当該有機溶媒中にウロキナーゼ前駆
体を取得することを特徴とするウロキナーゼ前駆体の精
製方法である。以下、本発明の詳細な説明する。
述の目的を達成するためになされた本発明は、即ち、活
性を発現し得るウロキナーゼ前駆体及び大腸菌に由来す
る夾雑物を含有する試料溶液をアルキル基を担持した高
分子ゲルと接触させ、次いで当該ゲルをアルコール系有
機溶媒と接触させて当該有機溶媒中にウロキナーゼ前駆
体を取得することを特徴とするウロキナーゼ前駆体の精
製方法である。以下、本発明の詳細な説明する。
大腸菌でproUKを製造した場合、proUKは活性
を発現し得ない高次構造に折り畳まれた形態で製造され
る(特開昭59−181321号公報等)。本発明にお
いて精製される proUKは、このような不活性のp
roUKから特開昭59−161321号、特開昭60
−500893号公報等に記載された方法に従って取得
されるものである。なお、proUKは、例えば特開昭
559−51300号公報等に記載された、天然型の一
次構造を有するものであっても良いし、例えば特開昭8
2−14688号公報等に記載された様な、−次構造中
に人工的な変異を有するものであっても良い。
を発現し得ない高次構造に折り畳まれた形態で製造され
る(特開昭59−181321号公報等)。本発明にお
いて精製される proUKは、このような不活性のp
roUKから特開昭59−161321号、特開昭60
−500893号公報等に記載された方法に従って取得
されるものである。なお、proUKは、例えば特開昭
559−51300号公報等に記載された、天然型の一
次構造を有するものであっても良いし、例えば特開昭8
2−14688号公報等に記載された様な、−次構造中
に人工的な変異を有するものであっても良い。
本発明における活性を発現し得るproUK及び大腸菌
に由来する夾雑物を含有する試料溶液は、前述した公報
等を参照することで取得することが可能である。−例を
記載すれば、特開昭59−51300号公報等に記載さ
れたproUKをコードする遺伝子を含むプラスミドを
構築し、大腸菌を形質転換して適当な培地で培養し活性
を発現し得ないproLIKを不溶性の凝集塊として内
部に蓄積した菌体を得、この菌体を適当な緩衝液等中で
破砕して不溶性画分にproUKを回収し、特開昭59
−161321号公報等に記載されたようにグアニジン
塩酸塩等の強力な変性剤を使用してproUKを可溶化
し、更に変性剤濃度を低下させれば良い。以上の操作の
一例において、例えば破砕の後に可溶性画分を除去する
ような操作、可溶化の後に不溶性画分を除去するような
操作又は活性化後に塩析、有機溶媒分画等の操作を行い
、それぞれの両分又は溶液中の夾雑物を部分的に除去し
て粗精製を行っておいても良い。
に由来する夾雑物を含有する試料溶液は、前述した公報
等を参照することで取得することが可能である。−例を
記載すれば、特開昭59−51300号公報等に記載さ
れたproUKをコードする遺伝子を含むプラスミドを
構築し、大腸菌を形質転換して適当な培地で培養し活性
を発現し得ないproLIKを不溶性の凝集塊として内
部に蓄積した菌体を得、この菌体を適当な緩衝液等中で
破砕して不溶性画分にproUKを回収し、特開昭59
−161321号公報等に記載されたようにグアニジン
塩酸塩等の強力な変性剤を使用してproUKを可溶化
し、更に変性剤濃度を低下させれば良い。以上の操作の
一例において、例えば破砕の後に可溶性画分を除去する
ような操作、可溶化の後に不溶性画分を除去するような
操作又は活性化後に塩析、有機溶媒分画等の操作を行い
、それぞれの両分又は溶液中の夾雑物を部分的に除去し
て粗精製を行っておいても良い。
粗精製を実施しておくことで、本発明で使用するゲルへ
の非特異的吸着等をより防止することが可能となり、同
時にゲルの劣化を防止出来るためである。
の非特異的吸着等をより防止することが可能となり、同
時にゲルの劣化を防止出来るためである。
大腸菌に由来する夾雑物とは、主に、核酸、細胞壁多糖
類(リポサツカロイド等は発熱を引き起こすことから、
発熱性物質(パイロジエン)と呼ばれる)、脂質又は蛋
白質等である。
類(リポサツカロイド等は発熱を引き起こすことから、
発熱性物質(パイロジエン)と呼ばれる)、脂質又は蛋
白質等である。
本発明で使用するゲルに担持されるアルキル基は、炭素
数が1から10程度のものであれば良い。
数が1から10程度のものであれば良い。
ゲルの基材は、例えばセルロースやアガロース等の天然
の高分子であっても良いし、とニルポリマー等の合成高
分子であってもさしつかえない。また、その機械的強度
を高めるために、人工的に架橋を施したものであっても
良い。更に、基材はproUK及び/又は夾雑物の非特
異的吸着を防止するため、親水性の高分子であるか、又
はその表面に親水基を導入されたものであることが好ま
しい。
の高分子であっても良いし、とニルポリマー等の合成高
分子であってもさしつかえない。また、その機械的強度
を高めるために、人工的に架橋を施したものであっても
良い。更に、基材はproUK及び/又は夾雑物の非特
異的吸着を防止するため、親水性の高分子であるか、又
はその表面に親水基を導入されたものであることが好ま
しい。
本発明では、好ましくはアルキル基を担持する高分子ゲ
ルをカラムに充填し、ゲルと試料溶液又はアルコール系
有機溶媒との接触等の操作を、このカラムへの溶液(溶
媒)の添加操作により実施すると良い。
ルをカラムに充填し、ゲルと試料溶液又はアルコール系
有機溶媒との接触等の操作を、このカラムへの溶液(溶
媒)の添加操作により実施すると良い。
前記したゲルと試料溶液の接触は、20℃から50℃の
温度範囲で実施すれば良い。50℃以上の温度でこの操
作を実施すると、proUKの熱変性による失活が生じ
るため好ましくなく、20℃以下では夾雑物がゲルへ吸
着し易くなるるためである。特に温度範囲を25℃から
40℃とすれば、proUKの失活や夾雑物の吸着等は
生じにくくなり、本発明をより効果的に実施することが
出来る。
温度範囲で実施すれば良い。50℃以上の温度でこの操
作を実施すると、proUKの熱変性による失活が生じ
るため好ましくなく、20℃以下では夾雑物がゲルへ吸
着し易くなるるためである。特に温度範囲を25℃から
40℃とすれば、proUKの失活や夾雑物の吸着等は
生じにくくなり、本発明をより効果的に実施することが
出来る。
試料溶液とゲルとを前記温度範囲で接触させることによ
り、proUKはゲル(アルキル基)に吸着する。次に
適当な緩衝液等をゲルに接触させれば、遊離した状態で
存在している夾雑物が除去されることになる。
り、proUKはゲル(アルキル基)に吸着する。次に
適当な緩衝液等をゲルに接触させれば、遊離した状態で
存在している夾雑物が除去されることになる。
以上の操作に続いて、proUKを吸着したゲルとアル
コール系有機溶媒を接触させる。本発明で使用するアル
コール系有機溶媒としては、例えばエチルアルコール、
プロピルアルコール、エチレングリコール等である。こ
れら有機溶媒は、例えば酢酸塩、燐酸塩、トリスヒドロ
キシアミノメタン、塩酸、グリシン、荷性ソーダ等の溶
液としてpH4−11に調節して使用する。これらアル
コール系有機溶媒を接触させることで、前記の操作でゲ
ルに吸着していた、除去されなかった夾雑物及びpro
UKが遊離する。従って、有機溶媒の接触は、溶液中の
有機溶媒濃度を徐々に高めていく、いわゆるグラデイエ
ンドによることが好ましい。濃度グラデイエンドの範囲
は、少なくとも0−1O%の範囲である。このように、
アルコール系有機溶媒をproUKを吸着したゲルと接
触させることでproUKをゲルから遊離させることが
出来るから、精製されたproUK画分を当該溶液中に
取得することが可能である。ここで、ゲルに吸着した夾
雑物であっても、有機溶媒グラデイエンドを付した適当
な溶液を添加していき、ゲルから遊離する遊離物を分別
回収すれば、ロー10%程度の濃度範囲で夾雑物画分、
proUK画分を得ることが出来る。
コール系有機溶媒を接触させる。本発明で使用するアル
コール系有機溶媒としては、例えばエチルアルコール、
プロピルアルコール、エチレングリコール等である。こ
れら有機溶媒は、例えば酢酸塩、燐酸塩、トリスヒドロ
キシアミノメタン、塩酸、グリシン、荷性ソーダ等の溶
液としてpH4−11に調節して使用する。これらアル
コール系有機溶媒を接触させることで、前記の操作でゲ
ルに吸着していた、除去されなかった夾雑物及びpro
UKが遊離する。従って、有機溶媒の接触は、溶液中の
有機溶媒濃度を徐々に高めていく、いわゆるグラデイエ
ンドによることが好ましい。濃度グラデイエンドの範囲
は、少なくとも0−1O%の範囲である。このように、
アルコール系有機溶媒をproUKを吸着したゲルと接
触させることでproUKをゲルから遊離させることが
出来るから、精製されたproUK画分を当該溶液中に
取得することが可能である。ここで、ゲルに吸着した夾
雑物であっても、有機溶媒グラデイエンドを付した適当
な溶液を添加していき、ゲルから遊離する遊離物を分別
回収すれば、ロー10%程度の濃度範囲で夾雑物画分、
proUK画分を得ることが出来る。
ところで、活性化操作がなされた直後の活性化後溶液を
試料溶液として本発明を実施する場合であって、試料溶
液中にグアニジン塩酸塩等の蛋白質変性剤が共存してい
る場合には、試料溶液とゲルを接触させるに先立って、
試料溶液に505MからIM程度となるように塩類を添
加し、夾雑物等の疎水性を低下させておくと良い。塩類
としては、例えば硫酸、燐酸、カルボン酸、塩素、硝酸
、炭酸等の陰イオンを生じるものや、ナトリウム、アン
モニウム、カリウム、マグネシウム等の陽イオンを使用
すれば良い。中でも、硫安、硫酸ソーダ、硫酸マグネシ
ウム等の水に対する溶解性が高いものや、2価以上の多
価の塩が良い。
試料溶液として本発明を実施する場合であって、試料溶
液中にグアニジン塩酸塩等の蛋白質変性剤が共存してい
る場合には、試料溶液とゲルを接触させるに先立って、
試料溶液に505MからIM程度となるように塩類を添
加し、夾雑物等の疎水性を低下させておくと良い。塩類
としては、例えば硫酸、燐酸、カルボン酸、塩素、硝酸
、炭酸等の陰イオンを生じるものや、ナトリウム、アン
モニウム、カリウム、マグネシウム等の陽イオンを使用
すれば良い。中でも、硫安、硫酸ソーダ、硫酸マグネシ
ウム等の水に対する溶解性が高いものや、2価以上の多
価の塩が良い。
(発明の効果)
大腸菌により製造されたproUKを血栓症の治療薬等
の医薬品として使用する場合には、大腸菌に由来する夾
雑物を除去する精製操作を実施することが必要である。
の医薬品として使用する場合には、大腸菌に由来する夾
雑物を除去する精製操作を実施することが必要である。
通常の液体クロマトグラフィ等の手法では、分子量の似
通った夾雑物が除去されないという事態が生じる恐れが
あるが、本発明の方法はゲルに担持されたアルキル基と
proU、にとの吸着を利用した精製法であることから
、このような事態が生じる恐れはない。
通った夾雑物が除去されないという事態が生じる恐れが
あるが、本発明の方法はゲルに担持されたアルキル基と
proU、にとの吸着を利用した精製法であることから
、このような事態が生じる恐れはない。
本発明は、活性を発現し得るproUK及び大腸菌に由
来する夾雑物を含有する試料溶液について、夾雑物のみ
を選択的に除去することが可能である。
来する夾雑物を含有する試料溶液について、夾雑物のみ
を選択的に除去することが可能である。
このため、本発明は単独の精製法としてもproUKの
精製に効果的であり、また、従来−・般に知られた例え
ば液体クロマトグラフィーによる精製法、塩析、有機溶
媒分画法、更にはproUKに対する基質等を用いたア
フィニティークロマトグラフィー法等と組み合わせるこ
とで、より高純度のproUKを取得することを可能と
するものである。
精製に効果的であり、また、従来−・般に知られた例え
ば液体クロマトグラフィーによる精製法、塩析、有機溶
媒分画法、更にはproUKに対する基質等を用いたア
フィニティークロマトグラフィー法等と組み合わせるこ
とで、より高純度のproUKを取得することを可能と
するものである。
なお、本発明で使用するカラムは、使用後に水と荷性ソ
ーダで交互に洗浄する等の簡便な操作を行うのみで繰り
返し使用することが出来る。
ーダで交互に洗浄する等の簡便な操作を行うのみで繰り
返し使用することが出来る。
(実施例)
以下に本発明を更に詳細に説明するために実施例を記載
するが、これら実施例は一例であって、本発明を限定す
るものではない。
するが、これら実施例は一例であって、本発明を限定す
るものではない。
なお、本実施例におけるproUKの活性は、proU
Kをプラスミンで処理してウロキナーゼに変換した後、
ウロキナーゼの人工基質であるPyrGIyArg ”
pNA (S−244,第一化学薬品(株)製、P
yrはピログルタミル基を示す)の加水分解活性を測定
し、市販のウロキナーゼ(ミドリ十字(株)製)と比較
して決定した。また、蛋白質濃度は、280n■の光吸
度を測定して決定した。
Kをプラスミンで処理してウロキナーゼに変換した後、
ウロキナーゼの人工基質であるPyrGIyArg ”
pNA (S−244,第一化学薬品(株)製、P
yrはピログルタミル基を示す)の加水分解活性を測定
し、市販のウロキナーゼ(ミドリ十字(株)製)と比較
して決定した。また、蛋白質濃度は、280n■の光吸
度を測定して決定した。
実施例 1゜
(試料溶液の調製)
proUKをコードする遺伝子を含むプラスミド(特開
昭59−51300号)で大腸菌(KY143B株)を
形質転換し、30℃条件下、グリセリンとカゼイン分解
物を含むm9培地で培養してproUKを発現させ、p
roUKを菌体内部に有する菌体を取得した。
昭59−51300号)で大腸菌(KY143B株)を
形質転換し、30℃条件下、グリセリンとカゼイン分解
物を含むm9培地で培養してproUKを発現させ、p
roUKを菌体内部に有する菌体を取得した。
湿重ffi 150gの菌体をTris−HCI緩衝液
(all 9.0)中でホモジナイズして破砕し、1.
5 Nの懸濁液を得た。この懸濁液に、1.5gの8M
グアニジン塩酸塩溶液を添加して不溶性画分中のpro
UKを可溶化し、続いて0.02+eM酸化型グルタチ
オン、0.2+eMの還元型グルタチオンを含むトリス
塩酸緩衝液(pif8.0)を添加してグアニジン塩酸
塩濃度を4倍希釈してproUKの活性化を行った。な
お、以上の操作は特開昭59−1131321号公報を
参照して行った。
(all 9.0)中でホモジナイズして破砕し、1.
5 Nの懸濁液を得た。この懸濁液に、1.5gの8M
グアニジン塩酸塩溶液を添加して不溶性画分中のpro
UKを可溶化し、続いて0.02+eM酸化型グルタチ
オン、0.2+eMの還元型グルタチオンを含むトリス
塩酸緩衝液(pif8.0)を添加してグアニジン塩酸
塩濃度を4倍希釈してproUKの活性化を行った。な
お、以上の操作は特開昭59−1131321号公報を
参照して行った。
取得された、活性を発現し得るproUKを含む試料溶
液について、その蛋白質濃度及びウロキナーゼ活性を測
定したところ、それぞれ0.75a+g/ml、300
010/+elであった。これらの値から溶液中の蛋白
質1■g当たりのウロキナーゼ活性(比活性)を求めた
ところ、約400107mgであった。
液について、その蛋白質濃度及びウロキナーゼ活性を測
定したところ、それぞれ0.75a+g/ml、300
010/+elであった。これらの値から溶液中の蛋白
質1■g当たりのウロキナーゼ活性(比活性)を求めた
ところ、約400107mgであった。
この溶液に対し、硫安を25%飽和となるように添加し
、生じた沈殿を分画分子ffi 30000の限外濾過
膜を使用して除去した後、更に硫安を60%飽和となる
ように添加し、同様の濾過膜を使用して沈殿を回収した
。
、生じた沈殿を分画分子ffi 30000の限外濾過
膜を使用して除去した後、更に硫安を60%飽和となる
ように添加し、同様の濾過膜を使用して沈殿を回収した
。
回収された沈殿の12 gを7%硫安(W/v)と0゜
5Mグアニジン塩酸を含む3601のリン酸緩衝液(p
H7,0)に溶解し、試料溶液とした。なお、当該試料
溶成の蛋白質濃度、ウロキナーゼ活性、比活性はそれぞ
れ2.Il++g/ml、920001U/ml 、3
2857IU/+tgであった。
5Mグアニジン塩酸を含む3601のリン酸緩衝液(p
H7,0)に溶解し、試料溶液とした。なお、当該試料
溶成の蛋白質濃度、ウロキナーゼ活性、比活性はそれぞ
れ2.Il++g/ml、920001U/ml 、3
2857IU/+tgであった。
(proUXの精製)
アルキル基を担持するゲルとして、ブチル基を担持した
市販のゲル(東ソー(株)製、ブチルトヨバール)を使
用した。ゲルを直径Q、9el長さlOc*のカラムに
充填し、室温(22℃)中で0.6M硫安を含む50v
M )リス塩酸緩衝液(pH8,5)により平衡化し、
前記のようにして調製した試料溶液を添加した。更に2
001の前記トリス塩酸緩衝液)を添加して遊離物を溶
出させた後、エタノール150mM トリス塩酸緩衝液
(pH8,5)をエタノール濃度が0−10%のグラデ
イエンドとなる様添加した。
市販のゲル(東ソー(株)製、ブチルトヨバール)を使
用した。ゲルを直径Q、9el長さlOc*のカラムに
充填し、室温(22℃)中で0.6M硫安を含む50v
M )リス塩酸緩衝液(pH8,5)により平衡化し、
前記のようにして調製した試料溶液を添加した。更に2
001の前記トリス塩酸緩衝液)を添加して遊離物を溶
出させた後、エタノール150mM トリス塩酸緩衝液
(pH8,5)をエタノール濃度が0−10%のグラデ
イエンドとなる様添加した。
その結果、約2%のエタノールによる溶出画分にはウロ
キナーゼ活性をほとんど有しない成分が、約6%のエタ
ノールによる溶出画分にはproUK画分が溶出した。
キナーゼ活性をほとんど有しない成分が、約6%のエタ
ノールによる溶出画分にはproUK画分が溶出した。
prolJK画分についての蛋白質濃度、ウロキナーゼ
活性、比活性はそれぞれ0.2gg/ml、17800
01U/1.890001U/+gであった。以上の結
果を表にまとめて示す。
活性、比活性はそれぞれ0.2gg/ml、17800
01U/1.890001U/+gであった。以上の結
果を表にまとめて示す。
なお、以上の操作は、流速2ml/m1nで行った。
表
味するものである。
Claims (1)
- (1)活性を発現し得るウロキナーゼ前駆体及び大腸菌
に由来する夾雑物を含有する試料溶液をアルキル基を担
持した高分子ゲルと接触させ、次いで当該ゲルをアルコ
ール系有機溶媒と接触させて当該有機溶媒中にウロキナ
ーゼ前駆体を取得することを特徴とするウロキナーゼ前
駆体の精製方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP18419690A JPH0471487A (ja) | 1990-07-13 | 1990-07-13 | ウロキナーゼ前駆体の精製方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP18419690A JPH0471487A (ja) | 1990-07-13 | 1990-07-13 | ウロキナーゼ前駆体の精製方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0471487A true JPH0471487A (ja) | 1992-03-06 |
Family
ID=16149038
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP18419690A Pending JPH0471487A (ja) | 1990-07-13 | 1990-07-13 | ウロキナーゼ前駆体の精製方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0471487A (ja) |
-
1990
- 1990-07-13 JP JP18419690A patent/JPH0471487A/ja active Pending
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