JPH03180197A - 微生物処理による光学活性ジクロロプロパノールの製法 - Google Patents
微生物処理による光学活性ジクロロプロパノールの製法Info
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- UHVMMEOXYDMDKI-JKYCWFKZSA-L zinc;1-(5-cyanopyridin-2-yl)-3-[(1s,2s)-2-(6-fluoro-2-hydroxy-3-propanoylphenyl)cyclopropyl]urea;diacetate Chemical compound [Zn+2].CC([O-])=O.CC([O-])=O.CCC(=O)C1=CC=C(F)C([C@H]2[C@H](C2)NC(=O)NC=2N=CC(=CC=2)C#N)=C1O UHVMMEOXYDMDKI-JKYCWFKZSA-L 0.000 description 1
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明はラセミ休2,3−ジクロロー1−プロパノール
の微生物処理による光学活性R−(+)−2,3−ジク
ロロ−1−プロパノールの分取法に関する。
の微生物処理による光学活性R−(+)−2,3−ジク
ロロ−1−プロパノールの分取法に関する。
(従来の技術〉
2.3−ジクロロ−1−プロパノール(以下、本化合物
をβ−DC口と略称する。〉は、下記構造式(I> α にて表わされる物質であり、そして光学活性β−DCH
は光学活性エピクロルヒドリンと共に各種の医薬、農薬
等の中間原料として重要なものである口 しかしながら、従来、光学活性β−DC口を得るには合
成法によってつくられたラセミ体β−DC口から光学活
性体を分離する方法、例えば、β−DC口の水酸基を無
水酢酸でアセチル化して1−アセトキシ−2,3−ジク
ロロプロパンとした後リパーゼを作用させる方法等の、
他の誘導体を経由して行う複雑で純度の低い製法しか知
られていなかった。
をβ−DC口と略称する。〉は、下記構造式(I> α にて表わされる物質であり、そして光学活性β−DCH
は光学活性エピクロルヒドリンと共に各種の医薬、農薬
等の中間原料として重要なものである口 しかしながら、従来、光学活性β−DC口を得るには合
成法によってつくられたラセミ体β−DC口から光学活
性体を分離する方法、例えば、β−DC口の水酸基を無
水酢酸でアセチル化して1−アセトキシ−2,3−ジク
ロロプロパンとした後リパーゼを作用させる方法等の、
他の誘導体を経由して行う複雑で純度の低い製法しか知
られていなかった。
(発明が解決しようとする課題)
本発明者は既にラセミ体β−DCHとR−(十)−β−
DCH資化性菌とを接触させて高純度な光学活性S−(
−)−β−DC口を得る方法(特開昭61−13219
6号公報)を開発したが、これらとは逆の光学異性体、
すなわちR−(+)−β−DC口の簡便な製造方法は知
られていない。
DCH資化性菌とを接触させて高純度な光学活性S−(
−)−β−DC口を得る方法(特開昭61−13219
6号公報)を開発したが、これらとは逆の光学異性体、
すなわちR−(+)−β−DC口の簡便な製造方法は知
られていない。
この課題を解決したのが本発明である。
(課題を解決するための手段〉
本発明者は微生物処理により上記光学活性R−(+〉−
β−DC口を簡便に、また高純度に製造し得ることを見
出し本発明を完成させた。
β−DC口を簡便に、また高純度に製造し得ることを見
出し本発明を完成させた。
すなわち本発明は、5−(−)−2,3−ジクロロ−1
−プロパノール資化能を有するアルカリゲネス属に属す
る細菌、又はその培養菌体を、培地中でラセミ体2,3
−ジクロロ−1−プロパノールと作用せしめてR−(十
)−2,3−ジクロロ−1−プロパノールを分取するこ
とを特徴とする微生物処理による光学活性ジクロロプロ
パツールの製法である。
−プロパノール資化能を有するアルカリゲネス属に属す
る細菌、又はその培養菌体を、培地中でラセミ体2,3
−ジクロロ−1−プロパノールと作用せしめてR−(十
)−2,3−ジクロロ−1−プロパノールを分取するこ
とを特徴とする微生物処理による光学活性ジクロロプロ
パツールの製法である。
本発明者が土壌中より分離採取して本発明において用い
た微生物の菌学的性質は表1に示すとおりである。
た微生物の菌学的性質は表1に示すとおりである。
表
形態
■細胞の形及び大きさ
■細胞の多形性
■運動性の有無
■胞子の有無
■ダラム染色性
■抗酸性
各培地における生育状態
■肉汁寒天平板培養(30℃。
イ〉コロニー形状の遅速
口)コロニーの形状
ハ〉コロニー表面の形状
二〉コロニーの隆起状態
ホ〉コロニーの周縁
へ)コロニーの内容
ト)コロニーの色調
チ〉コロニーの透明度
り)コロニーの光沢
ヌ)可溶性色素の生成
■肉汁寒天斜面培養(30℃。
イ〉生育の良否
口)コロニーの形
ハ)コロニーのIli面の隆起状態
二)コロニーの光沢
ホ)コロニー表面の形状
へ)コロニーの透明度
ト)コロニーの色
■肉汁液体培II(30℃。
イ)生育性状
口〉濁度
3日閤培10
普通 直径的3〜4−一
円形
平滑
凸円状
金縁
均質
乳白色
半透明
詞兄
無
3日間培り
生育良好、糸状
平滑
扁平状
詞兄
平滑
半透明
乳白色
3日間培養〉
桿菌、0.4〜G、6 x 1.8〜2.2 am無
有、周鞭毛
無
陰性
無
膜状
わずかに濁る
なし
なし
ゼラチンを液化せず
無変化
ハ)ガス発生
ホ)培地の着色
■肉汁ゼラチン穿刺培養
■リドマス・ミルク
C0生理学的試験
1 硝酸塩の還元
2 MRテスト
3 VPテスト
4 インドール生産
511m化水素の生成
6 デンプンの加水分解
1 脱窒反応
8 クエン酸の利用
9 無機窒素源の利用
10 色素の生成
11 ウレアーゼ
12 オキシダーゼ
13 カタラーゼ +14 生
育の範囲 pH5,0〜9.0.1
度20〜45℃15 91素に対する態度
好気性160−Fテスト(Hugh Leifson
法による)17Il!1類からの酸及びガスの生成の有
無糖 類 酸 (1)D−グルコース −(2)D−
ガラクトース (3)ショ糖 (4)トレハロース (5)デンプン (6)グリセリン 18 アルギニンジヒドロラーゼ 19 PHBの蓄積 ガ + + + + + 特に生成しない 以上の結果をもとにパージエイズ・マニュアル・オブ・
システマテイツク・バタテリオロジイ(Bergey’
s Manual of Systematic Ba
cteriology)第1巻の記載に基づき帰属同定
を行うと本国はアルカリゲネス属の特徴を有する。本発
明者は本国をアルカリゲネス(^lcaligenes
) sp、 DS −に−338と命名した(以下、本
国をDS−に−338株という)。なお本国は工業技術
院微生物工業技術研究所に微工研菌奇第11114号(
FERM P−11114>として寄託されている。
育の範囲 pH5,0〜9.0.1
度20〜45℃15 91素に対する態度
好気性160−Fテスト(Hugh Leifson
法による)17Il!1類からの酸及びガスの生成の有
無糖 類 酸 (1)D−グルコース −(2)D−
ガラクトース (3)ショ糖 (4)トレハロース (5)デンプン (6)グリセリン 18 アルギニンジヒドロラーゼ 19 PHBの蓄積 ガ + + + + + 特に生成しない 以上の結果をもとにパージエイズ・マニュアル・オブ・
システマテイツク・バタテリオロジイ(Bergey’
s Manual of Systematic Ba
cteriology)第1巻の記載に基づき帰属同定
を行うと本国はアルカリゲネス属の特徴を有する。本発
明者は本国をアルカリゲネス(^lcaligenes
) sp、 DS −に−338と命名した(以下、本
国をDS−に−338株という)。なお本国は工業技術
院微生物工業技術研究所に微工研菌奇第11114号(
FERM P−11114>として寄託されている。
本発明においては、上記DS−に一338株、その変種
、変異株ばかりでなく、アルカリゲネス属に属しS−(
−)−2,3−ジクロロ−1−プロパノール資化能を有
する細菌であればすべて使用することができる。
、変異株ばかりでなく、アルカリゲネス属に属しS−(
−)−2,3−ジクロロ−1−プロパノール資化能を有
する細菌であればすべて使用することができる。
本発明は上記細菌によって上記ラセミ体β−00口の光
学活性化を行うものである。本発明においては上記細菌
又はその培養菌体を用いてもよいし、或いはこれらを固
定化させても実施できるが、上記細菌の培養方法ならび
に固定化方法は通常よく用いられる方法でよい。すなわ
ち培養方法は、上記細菌をブイヨン培地、あるいは加糖
ブイヨン培地等、炭素源、窒素源、有機栄養源、無機栄
養源を含む栄養培地中で培養せしめ、よく生育させてお
き、これから得られる培養物あるいは培養菌体を用いれ
ばよい。炭素源としてはグリセリン等の炭水化物、ある
いはクエン酸、マレイン酸。
学活性化を行うものである。本発明においては上記細菌
又はその培養菌体を用いてもよいし、或いはこれらを固
定化させても実施できるが、上記細菌の培養方法ならび
に固定化方法は通常よく用いられる方法でよい。すなわ
ち培養方法は、上記細菌をブイヨン培地、あるいは加糖
ブイヨン培地等、炭素源、窒素源、有機栄養源、無機栄
養源を含む栄養培地中で培養せしめ、よく生育させてお
き、これから得られる培養物あるいは培養菌体を用いれ
ばよい。炭素源としてはグリセリン等の炭水化物、ある
いはクエン酸、マレイン酸。
リンゴ酸等の有機酸及びその塩類を、窒素源としては硫
酸アンモニウム、@化アンモニウム、硝酸アンモニウム
、リン酸アンモニウム等の無機態窒素、及びペプトン、
カゼイン、酵母エキス、肉エキス等の有機態窒素を用い
ることができる。その他の無機塩類としてはリン酸塩、
マグネシウム塩。
酸アンモニウム、@化アンモニウム、硝酸アンモニウム
、リン酸アンモニウム等の無機態窒素、及びペプトン、
カゼイン、酵母エキス、肉エキス等の有機態窒素を用い
ることができる。その他の無機塩類としてはリン酸塩、
マグネシウム塩。
カリ塩、鉄塩、亜鉛塩、銅塩等が用いられる。その培養
条件は通常、温度的20〜45℃、好ましくは25〜3
7℃、pH約5〜9、好ましくはpH6,0〜7.5で
振盪あるいは通気撹拌等の手段で好気的に行ね・れる。
条件は通常、温度的20〜45℃、好ましくは25〜3
7℃、pH約5〜9、好ましくはpH6,0〜7.5で
振盪あるいは通気撹拌等の手段で好気的に行ね・れる。
また、固定化方法は例えばアクリルアミド、に−カラギ
ーナン、寒天、ゼラチン、アルギン酸ナトリウム等を用
いて生菌体を包括する方法でよく、固定化後、適当な大
きざ、形状に破砕して用いればよい。
ーナン、寒天、ゼラチン、アルギン酸ナトリウム等を用
いて生菌体を包括する方法でよく、固定化後、適当な大
きざ、形状に破砕して用いればよい。
上記細菌とラセミ体β−00口との反応はラセミ体β−
DCHを含有する培地、例えば合成培地中で上記細菌又
はその培養菌体、或いはこれらの固定化物を撹拌しよく
接触させればよく、その接触時間は通常半日〜10日で
ありβ−DC口の濃度は培地巾約0.1〜0.6容量%
程度であればよい。
DCHを含有する培地、例えば合成培地中で上記細菌又
はその培養菌体、或いはこれらの固定化物を撹拌しよく
接触させればよく、その接触時間は通常半日〜10日で
ありβ−DC口の濃度は培地巾約0.1〜0.6容量%
程度であればよい。
反応終了後、反応液をとり出して濾過し、培養菌体と上
清液、或いは固定化物と上清液とを分離し、上清液中に
残存するR−(+)−β−DCHを活性炭カラム処理、
エーテル抽出、減圧蒸留等の操作によって分取する。
清液、或いは固定化物と上清液とを分離し、上清液中に
残存するR−(+)−β−DCHを活性炭カラム処理、
エーテル抽出、減圧蒸留等の操作によって分取する。
また本発明方法において固定化させた菌体を使用すれば
遠心分離等の操作が容易になり、ざらに固定化物はくり
返し使用できる。
遠心分離等の操作が容易になり、ざらに固定化物はくり
返し使用できる。
(実施例〉
以下実施例により具体的に説明する。例中%は特に記さ
ない限り重量基準である。
ない限り重量基準である。
実施例1
酵母エキス1.0%、グリセリン2.0%、ポリペプト
ン1.0%、 pH7,0の培地20j1を30.1!
容ジャーファーメンタ−に入れ、常法どおり加熱滅菌後
、DS−に−838株を接種し、次の条件下で24時間
培養した。
ン1.0%、 pH7,0の培地20j1を30.1!
容ジャーファーメンタ−に入れ、常法どおり加熱滅菌後
、DS−に−838株を接種し、次の条件下で24時間
培養した。
温度 30℃
1)H初発pH7,0
通気m 204! /min
撹拌回転数 300 r、p、m。
培養終了後、微生物菌体と培養濾液とを遠心分離機を用
いて分離し生菌体600(I+を得た。続いて、生菌体
は、以下に示す合成培地にけlνだくさせ101容とし
た後、常法どおりアクリルアミドで固定化した。固定化
物は、□キサーで0.5〜imm角の大きざに破砕し合
成培地でよく洗浄した。
いて分離し生菌体600(I+を得た。続いて、生菌体
は、以下に示す合成培地にけlνだくさせ101容とし
た後、常法どおりアクリルアミドで固定化した。固定化
物は、□キサーで0.5〜imm角の大きざに破砕し合
成培地でよく洗浄した。
合成培地の成分
硫酸アンモニウム 0.05重量%硝酸アンモニ
ウム o、os nリン酸水素第2カリウム
0.1〃 リン酸第1ナトリウム 0.2〃 リン酸第2ナトリウム 0.1〃 硫酸マグネシウム 0.05 11硫酸鉄、硫酸
銅、硫酸マンガン 微量pH初発pH6,8 次に、このようにして調製した固定化物は100R容ジ
ャーファーメンタ−の中に入れ合成培地とともに80.
1!とする。そしてざらに、ラセミ体β−DCHを32
0d、炭酸カルシウム160gを加え、以下の条件下で
攪拌した。
ウム o、os nリン酸水素第2カリウム
0.1〃 リン酸第1ナトリウム 0.2〃 リン酸第2ナトリウム 0.1〃 硫酸マグネシウム 0.05 11硫酸鉄、硫酸
銅、硫酸マンガン 微量pH初発pH6,8 次に、このようにして調製した固定化物は100R容ジ
ャーファーメンタ−の中に入れ合成培地とともに80.
1!とする。そしてざらに、ラセミ体β−DCHを32
0d、炭酸カルシウム160gを加え、以下の条件下で
攪拌した。
温度 30℃
通気量401! /lll1n
回転数 30Or、l)劃。
反応開始後72時間後に上滑液と固定化物とを濾別し、
この液から残存するβ−00口を活性炭カラム、エーテ
ル抽出、減圧蒸留によって分取し152gを採取した。
この液から残存するβ−00口を活性炭カラム、エーテ
ル抽出、減圧蒸留によって分取し152gを採取した。
本物質の同定は次の方法で行った。
1)ガスクロマトグラフィーによる同定カラム担体PE
G−20MP、5%、60〜80メツシユを用いて市販
β−DC口と比較した結果、その保持時間は全く同じで
あった。純度98.2%以上。
G−20MP、5%、60〜80メツシユを用いて市販
β−DC口と比較した結果、その保持時間は全く同じで
あった。純度98.2%以上。
2)IR(赤外吸収スペクトル)による同定第1図に示
したチャートのように、その吸収パターンは市販β−D
C口と全く同一であった。
したチャートのように、その吸収パターンは市販β−D
C口と全く同一であった。
以上から本物質は明らかにβ−DC日である事が判明し
た。又本物質がR−(+)−β−00口である事の確認
は以下の方法によった。
た。又本物質がR−(+)−β−00口である事の確認
は以下の方法によった。
1〉旋光度の測定
市販β−DCt−1及び本物質の比旋光度は次の如くで
ある。
ある。
市販β−DCト1
〔αB=o、o° C=1. ジクロロメタン本物質
〔α〕萱=+10.4°C=1. ジクロロメタン2
)R−(+)−α−メトキシ−α−トリフルオロメチル
フェニルアセテートエステルの調製ならびに高速液体ク
ロマトグラフィーによる分析R−(+)−α−メトキシ
−α−トリフルオロメチルフェニルアセテートクロライ
ドを市販β−DC日ならびに本物質に反応せしめ、その
エステル誘導体を調製した後、液体クロマトグラフィー
での分析結果は次のようであった。
)R−(+)−α−メトキシ−α−トリフルオロメチル
フェニルアセテートエステルの調製ならびに高速液体ク
ロマトグラフィーによる分析R−(+)−α−メトキシ
−α−トリフルオロメチルフェニルアセテートクロライ
ドを市販β−DC日ならびに本物質に反応せしめ、その
エステル誘導体を調製した後、液体クロマトグラフィー
での分析結果は次のようであった。
分析条件
カラム担体
ZORBAXODS
4.6mmX25CIII (nu pont社製)メ
タノール:水=65 : 35 (V/V )w/mt
n 260nmにおける吸光度 溶出液 溶出量 検出法 分析結果 市販β−DC日 保持時間50.5分及び52.0分に 同一面積をもつ2つのピーク を与えた。
タノール:水=65 : 35 (V/V )w/mt
n 260nmにおける吸光度 溶出液 溶出量 検出法 分析結果 市販β−DC日 保持時間50.5分及び52.0分に 同一面積をもつ2つのピーク を与えた。
本 物 質 保持時間52.0分にのみピークを
与え50.5分にはピークを与 えなかった。
与え50.5分にはピークを与 えなかった。
3〉ジクロロプロピル−N−フェニルカルバメート市販
β−DC日、及び本物質1gとフェニルイソシアネート
0.9gを乾燥アセトン30d, トリエチルアミン0
.3−に加え、約3時間加熱還流し、そのジクロロプロ
ピル−N−フェニルカルバメートを11製した後、その
比旋光度を測定した。
β−DC日、及び本物質1gとフェニルイソシアネート
0.9gを乾燥アセトン30d, トリエチルアミン0
.3−に加え、約3時間加熱還流し、そのジクロロプロ
ピル−N−フェニルカルバメートを11製した後、その
比旋光度を測定した。
市販β−DC口
〔α)g=o.o” C=1, メタノール本物
質 〔α〕管= 千16. 4° C=1, メタノール
以上の結果から本物質は、R− (十)−β−00口で
あり、その光学純度は99%以上であることが判った。
質 〔α〕管= 千16. 4° C=1, メタノール
以上の結果から本物質は、R− (十)−β−00口で
あり、その光学純度は99%以上であることが判った。
実施例2
実施例1と同様に酵母エキス1。0%,ポリペプトン1
.0%,グリセリン2.0%, pH 7.0の培地2
1を51容ジV−ファーメンタ−に入れ常法どおり、加
熱滅菌後、DS−に−338株を接種し、実施例1と同
じ条件下で24時間培養した。
.0%,グリセリン2.0%, pH 7.0の培地2
1を51容ジV−ファーメンタ−に入れ常法どおり、加
熱滅菌後、DS−に−338株を接種し、実施例1と同
じ条件下で24時間培養した。
次にi oo.o容ジV−ファーメンタ−に実施例1に
示した合成培地8ON及び炭酸カルシウム160g。
示した合成培地8ON及び炭酸カルシウム160g。
ラセA(本βーDCロ32M,ポリペプトン40(Jを
入れ、加熱滅菌のあと、常法どおり上記培養物を接種し
温度30℃1通気140.1! /win 、回転数3
00rpmの条件下で培養しながら反応させた。
入れ、加熱滅菌のあと、常法どおり上記培養物を接種し
温度30℃1通気140.1! /win 、回転数3
00rpmの条件下で培養しながら反応させた。
反応開始後48時間後に反応液は、遠心処理機にて、上
清液と菌体、沈澱物とに分離し、上清液から残存するβ
−DC口を、実施例1と同様に分取し、R−(十)−β
−DC)(148oを得た。
清液と菌体、沈澱物とに分離し、上清液から残存するβ
−DC口を、実施例1と同様に分取し、R−(十)−β
−DC)(148oを得た。
得られたR−(+)−β−DC口の比旋光度は[α]″
g=+10.4° (C=1.0 、ジクロロメタン)
であり、実施例1と同様に分析した結果、光学純度は9
9%以上であった。
g=+10.4° (C=1.0 、ジクロロメタン)
であり、実施例1と同様に分析した結果、光学純度は9
9%以上であった。
(発明の効果〉
本発明によれば土壌中より分離したアルカリゲネス属に
属する細菌を利用してラセミ体2.3−ジクロロ−1−
プロパノールより簡便に且つ高純度に光学活性なR−(
+)−2,3−ジクロロ−1−プロパノールを得ること
ができる。
属する細菌を利用してラセミ体2.3−ジクロロ−1−
プロパノールより簡便に且つ高純度に光学活性なR−(
+)−2,3−ジクロロ−1−プロパノールを得ること
ができる。
第1図は実施例1により得られたR−(+)−2,3−
ジクロロ−1−プロパノールおよび市販品の同物質の赤
外線吸収スペクトルである。 は市販β−DC口を、−m−はR−(+)−β−DC口
を示す。
ジクロロ−1−プロパノールおよび市販品の同物質の赤
外線吸収スペクトルである。 は市販β−DC口を、−m−はR−(+)−β−DC口
を示す。
Claims (2)
- (1)S−(−)−2,3−ジクロロ−1−プロパノー
ル資化能を有するアルカリゲネス属に属する細菌、又は
その培養菌体を、培地中でラセミ体2,3−ジクロロ−
1−プロパノールと作用せしめてR−(+)−2,3−
ジクロロ−1−プロパノールを分取することを特徴とす
る微生物処理による光学活性ジクロロプロパノールの製
法。 - (2)S−(−)−2,3−ジクロロ−1−プロパノー
ル資化能を有するアルカリゲネス属に属する細菌、又は
その培養菌体を固定化して使用する特許請求の範囲第1
項記載の製法。
Priority Applications (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP31930589A JPH03180197A (ja) | 1989-12-08 | 1989-12-08 | 微生物処理による光学活性ジクロロプロパノールの製法 |
EP90313340A EP0431970B1 (en) | 1989-12-08 | 1990-12-07 | Process for producing optically active R-(+)-2, 3,-dichloro-1-propanol using microorganism |
US07/623,555 US5177007A (en) | 1989-12-08 | 1990-12-07 | Process for producing optically active r-(+)-2,3-dichloro-1-propanol using microorganism |
DE69022187T DE69022187T2 (de) | 1989-12-08 | 1990-12-07 | Verfahren zur Herstellung von optisch aktivem R-(+)-2,3-Dichloro-1-propanol unter Verwendung von Mikroorganismen. |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP31930589A JPH03180197A (ja) | 1989-12-08 | 1989-12-08 | 微生物処理による光学活性ジクロロプロパノールの製法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH03180197A true JPH03180197A (ja) | 1991-08-06 |
JPH0539B2 JPH0539B2 (ja) | 1993-01-05 |
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Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
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JP31930589A Granted JPH03180197A (ja) | 1989-12-08 | 1989-12-08 | 微生物処理による光学活性ジクロロプロパノールの製法 |
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Country | Link |
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JP (1) | JPH03180197A (ja) |
-
1989
- 1989-12-08 JP JP31930589A patent/JPH03180197A/ja active Granted
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Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0539B2 (ja) | 1993-01-05 |
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