JPH03130098A - 核酸の検出法及びび検出試薬 - Google Patents
核酸の検出法及びび検出試薬Info
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Landscapes
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
[産業上の利用分野コ
本発明は核酸の検出法及び試薬に関する。
[従来の技術]
最近遺伝子工学の進歩に伴い、特定の塩基配列を持つ核
酸の検出を行な一5頻度が増加している。
酸の検出を行な一5頻度が増加している。
従来の核酸の検出法は、核酸を制限酵素で切断し、寒天
或はポリアクリルアミドのゲルを用いた電気泳動で分画
し、これをニトロセルロース等の吸着膜に物理的又は電
気的に転写し、かかる転写物を一本鎖に変性して、放射
性同位元素で標識された一本鎖核酸と交雑させ、これを
オートラジオグラフィーにて検出する方法が知られてい
る。或は、核酸に対する抗体による免疫学的検出法等が
知られている。
或はポリアクリルアミドのゲルを用いた電気泳動で分画
し、これをニトロセルロース等の吸着膜に物理的又は電
気的に転写し、かかる転写物を一本鎖に変性して、放射
性同位元素で標識された一本鎖核酸と交雑させ、これを
オートラジオグラフィーにて検出する方法が知られてい
る。或は、核酸に対する抗体による免疫学的検出法等が
知られている。
[発明が解決しようとする課題]
しかしながら従来の検出法は試料核酸の膜への吸着、ゲ
ルの調製、電気泳動、膜への転写及びオートラジオグラ
フィー等の操作が煩雑且つ時間がかかり、自動化に不適
であり、安全性の点でも問題がある。
ルの調製、電気泳動、膜への転写及びオートラジオグラ
フィー等の操作が煩雑且つ時間がかかり、自動化に不適
であり、安全性の点でも問題がある。
[課題を解決するための手段]
本発明者らは上記問題点に鑑みて、交雑させた核酸を極
めて迅速、安全且つ特異的に検出でき、自動化が可能な
方法及び試薬を開発すべく鋭意検討した結果、本発明に
到達した。即ち本発明は一本鎖核酸と、試料中の相補的
な一本鎖核酸を交雑し、特定の核酸を検出する方法にお
いて、−末鎖核酸を支持体に固定化し、交雑して二本鎖
となった核酸を、標識物質で標識された結合性物質を用
いて検出することを特徴とする核酸の検出法及び支持体
に固定化した一本鎖核酸及び交雑して二本鎖となった核
酸と特異的に反応する、標識物質で5識された結合性物
質を含有してなる請求項1〜6項のいずれかに記載の検
出法に使用される核酸の検出試薬。
めて迅速、安全且つ特異的に検出でき、自動化が可能な
方法及び試薬を開発すべく鋭意検討した結果、本発明に
到達した。即ち本発明は一本鎖核酸と、試料中の相補的
な一本鎖核酸を交雑し、特定の核酸を検出する方法にお
いて、−末鎖核酸を支持体に固定化し、交雑して二本鎖
となった核酸を、標識物質で標識された結合性物質を用
いて検出することを特徴とする核酸の検出法及び支持体
に固定化した一本鎖核酸及び交雑して二本鎖となった核
酸と特異的に反応する、標識物質で5識された結合性物
質を含有してなる請求項1〜6項のいずれかに記載の検
出法に使用される核酸の検出試薬。
この明細書において使用する「核酸」なる語は一本鎖及
び二本鎖の両方を指すものとし、必要な場合はそのどち
らかを明記するものとする。またこの「核酸」なる語は
塩基数の大小は問わず、1以上の塩基数を有する核酸を
全て含むものとする。
び二本鎖の両方を指すものとし、必要な場合はそのどち
らかを明記するものとする。またこの「核酸」なる語は
塩基数の大小は問わず、1以上の塩基数を有する核酸を
全て含むものとする。
更にここで使用した「核酸」の中には核酸の単位成分で
あるヌクレオチドが天然に存在するものの他人工的に修
飾されたものも含むものとする。
あるヌクレオチドが天然に存在するものの他人工的に修
飾されたものも含むものとする。
また「−末鎖核酸」なる語は文字通り一本鎖核酸そのも
のと鎖長の異なる一本鎖核酸同士が交雑してできた一本
鎖核酸部分を含むものとする。
のと鎖長の異なる一本鎖核酸同士が交雑してできた一本
鎖核酸部分を含むものとする。
本発明における一本鎖核酸としては測定しようとする特
定の核酸の塩基配列と相補の配列を持つ核酸が挙げられ
る。
定の核酸の塩基配列と相補の配列を持つ核酸が挙げられ
る。
デオキンリボ核酸(DNA)の場合、天然の二本鎖核酸
を一本鎖に分離・精製してもよく、又化学的方法、即ち
アデニン、グアニン、ントシン及びチミンの4種のヌク
レオチドを順番に結合してぃく方法で合成してもよい。
を一本鎖に分離・精製してもよく、又化学的方法、即ち
アデニン、グアニン、ントシン及びチミンの4種のヌク
レオチドを順番に結合してぃく方法で合成してもよい。
好ましくは純度及び大量生産が容易であることから化学
的方法での調製である。
的方法での調製である。
又リボ核酸(RNA)の場合は一本鎖核酸をそのまま使
用できる。
用できる。
一本鎖核酸の塩基数は、通常1〜10000であり、精
度及び感度の点で長い方が好ましいが、一定の塩基数、
例えば約500塩基以上では余り変化がない。
度及び感度の点で長い方が好ましいが、一定の塩基数、
例えば約500塩基以上では余り変化がない。
好ましくは相補鎖が認識でき、且つ精度及び感度を確保
できる5〜+00塩基である。
できる5〜+00塩基である。
又、−末鎖核酸は、予め支持体に固定させて使用される
。支持体としては、ケイ酸質無機担体[ガラス(ポーラ
ス、ツヤ2肖しガラス等)、シリカゲル、ベントナイト
等]、磁性体、及び有機担体にトロセルロース、ナイロ
ン、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリスチレン、ポ
リ塩化ビニル、ポリフッ化ビニリデン、シリコーン、ポ
リウレタン等の合成樹脂、デキストラン、濾紙等)が挙
げられる。好ましくは保持能力の点でガラス、ニトロセ
ルロース、ポリフッ化ビニリデン、ナイロンである。特
に調製のしやすさ及び価格の点でガラスである。ガラス
を支持体として用いる場合、ガラス表面の面積が大きい
方が一本鎖核酸の固定化率をより高める事が出来ること
から、ガラス表面をサンドブラスト等の処理で凹凸をつ
けることが好ましい。
。支持体としては、ケイ酸質無機担体[ガラス(ポーラ
ス、ツヤ2肖しガラス等)、シリカゲル、ベントナイト
等]、磁性体、及び有機担体にトロセルロース、ナイロ
ン、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリスチレン、ポ
リ塩化ビニル、ポリフッ化ビニリデン、シリコーン、ポ
リウレタン等の合成樹脂、デキストラン、濾紙等)が挙
げられる。好ましくは保持能力の点でガラス、ニトロセ
ルロース、ポリフッ化ビニリデン、ナイロンである。特
に調製のしやすさ及び価格の点でガラスである。ガラス
を支持体として用いる場合、ガラス表面の面積が大きい
方が一本鎖核酸の固定化率をより高める事が出来ること
から、ガラス表面をサンドブラスト等の処理で凹凸をつ
けることが好ましい。
固定化方法としては物理吸着による方法及び化学結合に
よる方法が挙げられる。物理吸着による方法としては、
具体的には吸着させようとする一本鎖核酸を含む溶液(
例えば、10μg/mlの核酸を含むリン酸緩衝液等)
を所定の支持体と接触させることが挙げられる。必要に
応じて、反応後吸着を、より強固なものにするために支
持体を加熱(例えば、80’CX120分等)しても構
わない。又一方、化学結合による方法としては、具体的
にはアミノ基やカルボキシル基のような官能基が予め導
入された支持体及び−末鎖核酸とを二官能性架橋剤(例
えば、グルタルアルデヒド等)又は二官能性活性化剤(
例えば、水溶性カルボジイミド、カルボジイミダゾール
、N−ヒドロキシサクンニミド、ビス(スルフォサクシ
ニミヂル)サブストレート、ジスルフィドサクシニミヂ
ルタータレート等)により共有結合させる方法が挙げら
れる。これらのうち好ましくは、−末鎖核酸の結合強度
及び安定性が高まること及びハイブリダイゼーション時
の反応性が良くなることから化学結合による方法である
。
よる方法が挙げられる。物理吸着による方法としては、
具体的には吸着させようとする一本鎖核酸を含む溶液(
例えば、10μg/mlの核酸を含むリン酸緩衝液等)
を所定の支持体と接触させることが挙げられる。必要に
応じて、反応後吸着を、より強固なものにするために支
持体を加熱(例えば、80’CX120分等)しても構
わない。又一方、化学結合による方法としては、具体的
にはアミノ基やカルボキシル基のような官能基が予め導
入された支持体及び−末鎖核酸とを二官能性架橋剤(例
えば、グルタルアルデヒド等)又は二官能性活性化剤(
例えば、水溶性カルボジイミド、カルボジイミダゾール
、N−ヒドロキシサクンニミド、ビス(スルフォサクシ
ニミヂル)サブストレート、ジスルフィドサクシニミヂ
ルタータレート等)により共有結合させる方法が挙げら
れる。これらのうち好ましくは、−末鎖核酸の結合強度
及び安定性が高まること及びハイブリダイゼーション時
の反応性が良くなることから化学結合による方法である
。
又、共有結合に際して、支持体表面と一本鎖核酸の結合
部位(末端塩基)迄の距離はある程度保つ方がハイブリ
ダイゼーション時の反応性が良好となり、結果的には感
度アップにつながることから好ましい。即ち、架橋剤又
は活性化剤を用いて支持体と一本鎖核酸を結合する場合
、支持体の表面及び−末鎖核酸の結合部位の少なくとも
いずれか一方に予め導入された官能基部分が、ある程度
の分子長(例えば、lnm等)以上をもつように化合物
(例えば、炭素数3以上のポリメチレン基、炭素数4以
上のポリエーテル基等)が挿入されていることが好まし
い。
部位(末端塩基)迄の距離はある程度保つ方がハイブリ
ダイゼーション時の反応性が良好となり、結果的には感
度アップにつながることから好ましい。即ち、架橋剤又
は活性化剤を用いて支持体と一本鎖核酸を結合する場合
、支持体の表面及び−末鎖核酸の結合部位の少なくとも
いずれか一方に予め導入された官能基部分が、ある程度
の分子長(例えば、lnm等)以上をもつように化合物
(例えば、炭素数3以上のポリメチレン基、炭素数4以
上のポリエーテル基等)が挿入されていることが好まし
い。
また、ここでいう−末鎖核酸の種類は一つの対象物を検
出するために一種類でもよく、また複数の対象物を同時
に検出するために二種類以上であってもよい。例えば細
菌、ウィルス、リケッチア、原虫、スピロヘータ等の外
来性の病原性物質に起因する疾病及び/又は核酸の塩基
配列の変異、即ち塩基の置換、挿入、欠落、転位等に起
因する遺伝性疾病に特異的な一本鎖核酸の中で任意の対
象物を数種選択することができる。さらに同一種の疾病
であっても数種類の異なる塩基配列が存在する場合、即
ち細菌やウィルスの変異株等もその対象物とすることが
できる。具体的には、病原性物質として赤痢菌、ジフテ
リア菌、ボツリヌス菌、サルモネラ菌等の細菌類、アデ
ノウィルス科ヒトアデノウィルス種、オルトミクンウィ
ルス科インフルエンザウィルス種、バボーバウィルス科
ヒトパピローマウィルス種等のウィルス類が、又遺伝性
疾病として家族性高コレステロール血症、■型高脂血症
、サラセミア、血友病、糖尿病、癌等が夫々挙げられる
がこれらに限られるものではない。
出するために一種類でもよく、また複数の対象物を同時
に検出するために二種類以上であってもよい。例えば細
菌、ウィルス、リケッチア、原虫、スピロヘータ等の外
来性の病原性物質に起因する疾病及び/又は核酸の塩基
配列の変異、即ち塩基の置換、挿入、欠落、転位等に起
因する遺伝性疾病に特異的な一本鎖核酸の中で任意の対
象物を数種選択することができる。さらに同一種の疾病
であっても数種類の異なる塩基配列が存在する場合、即
ち細菌やウィルスの変異株等もその対象物とすることが
できる。具体的には、病原性物質として赤痢菌、ジフテ
リア菌、ボツリヌス菌、サルモネラ菌等の細菌類、アデ
ノウィルス科ヒトアデノウィルス種、オルトミクンウィ
ルス科インフルエンザウィルス種、バボーバウィルス科
ヒトパピローマウィルス種等のウィルス類が、又遺伝性
疾病として家族性高コレステロール血症、■型高脂血症
、サラセミア、血友病、糖尿病、癌等が夫々挙げられる
がこれらに限られるものではない。
試料中の相補的な一本鎖核酸において核酸としては天然
に存在する二本鎖核酸に関連し、微生物、ウィルス、魚
類、鳥類、植物、動物、特に哺乳動物(ヒトを含む)に
由来する核酸が挙げられる。
に存在する二本鎖核酸に関連し、微生物、ウィルス、魚
類、鳥類、植物、動物、特に哺乳動物(ヒトを含む)に
由来する核酸が挙げられる。
ウィルスには一本鎖核酸からなるウィルスと二本鎖核酸
からなるウィルスがあり、これらは混在していてもよく
、各々単独に存在していても良い。
からなるウィルスがあり、これらは混在していてもよく
、各々単独に存在していても良い。
ここで用いる試料には種々の検体が存在することから、
−末鎖核酸と相補的な核酸以外に相補的でない核酸も含
まれる。また相補的でない核酸以外は存在しない場合も
ある。
−末鎖核酸と相補的な核酸以外に相補的でない核酸も含
まれる。また相補的でない核酸以外は存在しない場合も
ある。
これらの核酸は通常、細胞から抽出し、制限酵素(例え
ば、EcoRl、旧ndIIr 、PstI 、Bgl
I等)での化学的手段又は超音波等の物理的手段によ
って処理することで核酸を断片化する。制限酵素による
調製法は通常0〜I 、 OM −NaClを含む10
0IIM100II緩衝液(pH7,5)に核酸試料0
.1〜100μg及び制限酵素0.1− +00unl
tsを加え、2(1〜45℃、10−120分で加温振
盪することで行うことができる。これらの方法は、例え
ばトム・マニアチス著、モレキュラー・クローニング、
コールド・スフリング・ハーバ一番ラボラトリ−(To
m Nan1atls 、MOLECULARCLON
ING、Co1d Spring Harbor
Laboratory)p+04,1982に詳述し
である。また天然の核酸の量が少ない場合には種々の核
酸合成酵素を用い、試験管内で予め核酸量を検出に耐え
る迄増幅させておくこともできる。
ば、EcoRl、旧ndIIr 、PstI 、Bgl
I等)での化学的手段又は超音波等の物理的手段によ
って処理することで核酸を断片化する。制限酵素による
調製法は通常0〜I 、 OM −NaClを含む10
0IIM100II緩衝液(pH7,5)に核酸試料0
.1〜100μg及び制限酵素0.1− +00unl
tsを加え、2(1〜45℃、10−120分で加温振
盪することで行うことができる。これらの方法は、例え
ばトム・マニアチス著、モレキュラー・クローニング、
コールド・スフリング・ハーバ一番ラボラトリ−(To
m Nan1atls 、MOLECULARCLON
ING、Co1d Spring Harbor
Laboratory)p+04,1982に詳述し
である。また天然の核酸の量が少ない場合には種々の核
酸合成酵素を用い、試験管内で予め核酸量を検出に耐え
る迄増幅させておくこともできる。
相補的な一本鎖核酸を調製する方法としては断片化され
た核酸を加熱またはアルカリで変性させることが挙げら
れる。具体的には加熱の場合は約11i0−150℃、
約1〜30分、好ましくは約80〜+00’C。
た核酸を加熱またはアルカリで変性させることが挙げら
れる。具体的には加熱の場合は約11i0−150℃、
約1〜30分、好ましくは約80〜+00’C。
約10〜20分で、アルカリ変性の場合は水酸化ナトリ
ウムを含む水溶液等を適量添加し、常温で約1〜30分
程度放置し、最後に中性に戻す方法が挙げられるが、こ
れらに限定されるものではない。
ウムを含む水溶液等を適量添加し、常温で約1〜30分
程度放置し、最後に中性に戻す方法が挙げられるが、こ
れらに限定されるものではない。
交雑させる方法としては、上記試料と一本鎖核酸と混合
し、通常25〜80°C程度で約109〜10時間、振
盪する方法が挙げられる。又、これらの方法は市販され
ている試薬キット(ラビッド ハイブリダイゼーション
システム「マルチプライム」アマ−ジャム・ジャパン
製)を用いて行なえば更に容易である。
し、通常25〜80°C程度で約109〜10時間、振
盪する方法が挙げられる。又、これらの方法は市販され
ている試薬キット(ラビッド ハイブリダイゼーション
システム「マルチプライム」アマ−ジャム・ジャパン
製)を用いて行なえば更に容易である。
交雑して二本鎖となった核酸と反応する結合性物質とし
ては交雑物の分子内、特に水素結合で結合した鏡開に特
異的に取り込まれる物質、例えば臭化エチジウム、二沃
化プロピジウム等の化学試薬又は蛋白、例えば抗体、二
本鎖核酸結合蛋白等が挙げられる。好ましくは物質の安
全性、生成した化合物の安定性の点で蛋白で、特に好ま
しくは抗体である。系内にある余分な核酸は分解等の処
理を経ずに直接抗体と反応させることから本抗体は交雑
物に対して特異性が高い必要がある。従って抗体として
はポリクローナル抗体及びモノクローナル抗体が挙げら
れるが、この点で好ましくはモノクローナル抗体である
。
ては交雑物の分子内、特に水素結合で結合した鏡開に特
異的に取り込まれる物質、例えば臭化エチジウム、二沃
化プロピジウム等の化学試薬又は蛋白、例えば抗体、二
本鎖核酸結合蛋白等が挙げられる。好ましくは物質の安
全性、生成した化合物の安定性の点で蛋白で、特に好ま
しくは抗体である。系内にある余分な核酸は分解等の処
理を経ずに直接抗体と反応させることから本抗体は交雑
物に対して特異性が高い必要がある。従って抗体として
はポリクローナル抗体及びモノクローナル抗体が挙げら
れるが、この点で好ましくはモノクローナル抗体である
。
モノクローナル抗体は通常の方法で以て調製される。即
ち、まずモノクローナル抗体を産生ずる融合細胞を調製
する。免疫動物(例えば、マウス、ラット、ウサギ等)
の腹腔内に天然または合成の核酸を注入して感作し、約
1〜2月後膵臓細胞またはリンパ節細胞を調製し、これ
と骨髄腫細胞とをPEG−4000等の融合促進剤の存
在下混合し、数分間室温放置する。次にこれらの細胞か
ら融合細胞のみをIIAT培地で選択し、選択された細
胞を限界希釈法で単一化してモノクローナル抗体を産生
ずる融合細胞を得る。続いてこの融合細胞を培養し、上
浦液から通常の方法で精製するか、またはこの融合細胞
をマウスの腹腔内に投与し、腹水腫瘍として成長させた
後、腹水を採取し、精製することにより目的とするモノ
クローナル抗体を得る。精製は市販の調製済みカラムを
用いて容易に行うことができる。これらの方法は、例え
ば日本生化学全編「続生化学実験講座5−免疫生化学研
究法」1〜84、東京化学同人に詳述されている。
ち、まずモノクローナル抗体を産生ずる融合細胞を調製
する。免疫動物(例えば、マウス、ラット、ウサギ等)
の腹腔内に天然または合成の核酸を注入して感作し、約
1〜2月後膵臓細胞またはリンパ節細胞を調製し、これ
と骨髄腫細胞とをPEG−4000等の融合促進剤の存
在下混合し、数分間室温放置する。次にこれらの細胞か
ら融合細胞のみをIIAT培地で選択し、選択された細
胞を限界希釈法で単一化してモノクローナル抗体を産生
ずる融合細胞を得る。続いてこの融合細胞を培養し、上
浦液から通常の方法で精製するか、またはこの融合細胞
をマウスの腹腔内に投与し、腹水腫瘍として成長させた
後、腹水を採取し、精製することにより目的とするモノ
クローナル抗体を得る。精製は市販の調製済みカラムを
用いて容易に行うことができる。これらの方法は、例え
ば日本生化学全編「続生化学実験講座5−免疫生化学研
究法」1〜84、東京化学同人に詳述されている。
抗体を標識する標識物質としては放射性同位元素、蛍光
物質、発光物質、酵素及びこれらを間接的に結合しうる
化合物からなる群より選ばれた物質が挙げられる。具体
的な標識物質としては放射性同位元素として[32Pコ
、[36Sコ、[3H]及び[”C]等、蛍光物質とし
てフルオレセインインチオシアネー) (FITC)、
テトラメチルローダミンイソチオシアネート(RITC
:)、アクリジンオレンジ、フルオレセイン及びエチジ
ウムブロマイド等、発光物質としてルミノール及びルシ
フェリン等、酵素としてペルオキシダーゼ、アルカリフ
ォスファターゼ、β−ガラクトシダーゼ及びグルコース
オキシダーゼ等、そして間接的に結合し得る化合物とし
てビオチン(アビジンが結合し得る)及び抗体(抗原及
び2次抗体が結合し得る)等がそれぞれ挙げられるがこ
れらに限られるものではない。好ましくは安全性の点で
放射性同位元素を除く標識物質である。
物質、発光物質、酵素及びこれらを間接的に結合しうる
化合物からなる群より選ばれた物質が挙げられる。具体
的な標識物質としては放射性同位元素として[32Pコ
、[36Sコ、[3H]及び[”C]等、蛍光物質とし
てフルオレセインインチオシアネー) (FITC)、
テトラメチルローダミンイソチオシアネート(RITC
:)、アクリジンオレンジ、フルオレセイン及びエチジ
ウムブロマイド等、発光物質としてルミノール及びルシ
フェリン等、酵素としてペルオキシダーゼ、アルカリフ
ォスファターゼ、β−ガラクトシダーゼ及びグルコース
オキシダーゼ等、そして間接的に結合し得る化合物とし
てビオチン(アビジンが結合し得る)及び抗体(抗原及
び2次抗体が結合し得る)等がそれぞれ挙げられるがこ
れらに限られるものではない。好ましくは安全性の点で
放射性同位元素を除く標識物質である。
標識化の方法は、例えば日本生化学全編「続生化学実験
講座5−免疫生化学研究法」102〜112、東京化学
同人に記載の方法で容易に行われる。
講座5−免疫生化学研究法」102〜112、東京化学
同人に記載の方法で容易に行われる。
核酸に対する結合性物質で検出する方法としては通常の
免疫測定法(エンザイムイムノアツセイまたはラジオイ
ムノアッセイ)と同様の方法が挙げられる。即ち交雑す
る核酸に対して予め標識された抗体で検出する方法、ま
たは核酸と結合した抗体に対する標識二次抗体で検出す
る方法等が挙げられる。例えば特願昭Ei3−2624
79号、特願昭6328H71号、特願平1−02[1
379号各公報に詳述された方法である。
免疫測定法(エンザイムイムノアツセイまたはラジオイ
ムノアッセイ)と同様の方法が挙げられる。即ち交雑す
る核酸に対して予め標識された抗体で検出する方法、ま
たは核酸と結合した抗体に対する標識二次抗体で検出す
る方法等が挙げられる。例えば特願昭Ei3−2624
79号、特願昭6328H71号、特願平1−02[1
379号各公報に詳述された方法である。
本発明の検出試薬は必須構成成分以外に、この検出試薬
の使用を便ならしめるために、種々の補助剤を包含させ
ることができる。例えば、固体を溶解させる溶解剤、反
応途中で不用な構成成分を除去するための洗浄剤、標準
物質が酵素である場合には、その酵素活性を測定するた
めの基質及び酵素反応を停止するための反応停止剤等を
任意の組合せで包含させることができる。
の使用を便ならしめるために、種々の補助剤を包含させ
ることができる。例えば、固体を溶解させる溶解剤、反
応途中で不用な構成成分を除去するための洗浄剤、標準
物質が酵素である場合には、その酵素活性を測定するた
めの基質及び酵素反応を停止するための反応停止剤等を
任意の組合せで包含させることができる。
[実施例]
以下実施例及び比較例により本発明を更に説明するが本
発明はこれに限定されるものではない。
発明はこれに限定されるものではない。
実施例1 特定の核酸の検出
l)試料中の相補的な一本鎖核酸の調製市販のpBR3
22(宝酒造製)と制限酵素Bgl ITOYOBO製
、 pBR322を3断片に切断する)( とからメーカー推薦の反応条件で完全消化し、フェノー
ル抽出、エタノール沈殿等の通常の操作を経て精製し、
更に精製したものを100℃、10分で熱変性し、濃度
を100μg/ifに調整したものを核酸試薬(A)と
して以下の検討に用いた。
22(宝酒造製)と制限酵素Bgl ITOYOBO製
、 pBR322を3断片に切断する)( とからメーカー推薦の反応条件で完全消化し、フェノー
ル抽出、エタノール沈殿等の通常の操作を経て精製し、
更に精製したものを100℃、10分で熱変性し、濃度
を100μg/ifに調整したものを核酸試薬(A)と
して以下の検討に用いた。
2)固定化した一本鎖核酸の調製
一本鎖核酸は市販のpBR322PrimerH(宝酒
造製、塩基数16でpBR322と相補な塩基配列をも
つ)を用いた。0.1Mの炭酸緩衝液(pH9,8)に
溶解した0、1μg/ml−Pr1merH300μm
をガラスビーズと混合し、2時間室温で振盪した。次に
0.01%Tween含有0.02M燐酸緩衝液(pi
(7,5) (0,01%Tveen−PBS)の5
00μlで2回洗浄し、PBSに溶解したI%BSAを
加え、37°C,10分加温振盪したものを固定化した
一本鎖核酸試薬(B)として以下の検出に用いた。
造製、塩基数16でpBR322と相補な塩基配列をも
つ)を用いた。0.1Mの炭酸緩衝液(pH9,8)に
溶解した0、1μg/ml−Pr1merH300μm
をガラスビーズと混合し、2時間室温で振盪した。次に
0.01%Tween含有0.02M燐酸緩衝液(pi
(7,5) (0,01%Tveen−PBS)の5
00μlで2回洗浄し、PBSに溶解したI%BSAを
加え、37°C,10分加温振盪したものを固定化した
一本鎖核酸試薬(B)として以下の検出に用いた。
3)抗核酸モノクローナル抗体の調製
核酸に対するモノクローナル抗体は文献[オスカー・ニ
ス・フランクフルト; エクスペリメンタル セル リ
サーチ(Oskar S、 Frankfurt;Ex
pertmental Ce1l Re5ea
rch)Vol、170,369−380.1987コ
に記載の方法を改良して調製した。
ス・フランクフルト; エクスペリメンタル セル リ
サーチ(Oskar S、 Frankfurt;Ex
pertmental Ce1l Re5ea
rch)Vol、170,369−380.1987コ
に記載の方法を改良して調製した。
簡単には、牛胸腺DNA (タイプ11 シグマケミ
カル社製)をSlヌクレース(宝酒造製)で消化し、メ
チル化牛血清アルブミンと結合し、これを免疫物質とし
た。この200μgをフロイントの完全アジュバントと
ともにBALB/Cマウスの腹腔内に投与し免疫した。
カル社製)をSlヌクレース(宝酒造製)で消化し、メ
チル化牛血清アルブミンと結合し、これを免疫物質とし
た。この200μgをフロイントの完全アジュバントと
ともにBALB/Cマウスの腹腔内に投与し免疫した。
3,5.7週後に同量の免疫物質をそれぞれ再度腹腔内
に投与し、更に2週後同量の免疫物質で強化免疫した。
に投与し、更に2週後同量の免疫物質で強化免疫した。
3日後に膵臓を摘出し、牌細胞を採取した。RPMI培
地にて洗浄したのち、牌細胞全量を2XIO?個のマウ
スミエローマ細胞(P3−NSI/1−Ag4.1)と
混ぜ、37°Cの42.5%のポリエチレングリコール
1540及び7,5%ジメチルスルフオキシドを含むR
PM111740培地1ml中で1培地1含l中た。融
合細胞を洗浄し、HAT培地(ヒポキサンチン、アミノ
プテリン、チミジン、10%牛脂児血清(BSA)を含
むRPMl+640培地)で懸濁させ、マイクロプレー
ト上に分注し、2週間培養した。増殖した細胞の抗体活
性を測定し、目的のIgGクラスの抗体活性を示す細胞
を2個得、これらの細胞をそれぞれマウスの腹腔内に投
与し、腹水を採取した。更にアフィ・ゲル。プロティン
A MAPSキット(バイオラッド社製)を用いて精製
単離し、抗体NO,I、 NO,2として以下の検討
に用いた。
地にて洗浄したのち、牌細胞全量を2XIO?個のマウ
スミエローマ細胞(P3−NSI/1−Ag4.1)と
混ぜ、37°Cの42.5%のポリエチレングリコール
1540及び7,5%ジメチルスルフオキシドを含むR
PM111740培地1ml中で1培地1含l中た。融
合細胞を洗浄し、HAT培地(ヒポキサンチン、アミノ
プテリン、チミジン、10%牛脂児血清(BSA)を含
むRPMl+640培地)で懸濁させ、マイクロプレー
ト上に分注し、2週間培養した。増殖した細胞の抗体活
性を測定し、目的のIgGクラスの抗体活性を示す細胞
を2個得、これらの細胞をそれぞれマウスの腹腔内に投
与し、腹水を採取した。更にアフィ・ゲル。プロティン
A MAPSキット(バイオラッド社製)を用いて精製
単離し、抗体NO,I、 NO,2として以下の検討
に用いた。
4)標識抗体の調製
上記抗体NO,lを文献[ニス・ヨシタケ、エム・イマ
ガワ、イー・イシカワ、エトール; ジェイ・バイオケ
ム(S、YO5ITAKE、M、IMAGAWA、E、
l5IKA1fA etal: J、Blochem
、)、vol、92(+982) 1413−14
24コ に記載の方法によってペルオキシダーゼ(PO
D’)と結合し、標識抗体を得た。これを1%牛血清ア
ルブミン(BSA)含有緩衝液でIOμg/ll1lに
希釈したものを標識抗体試薬(C)として以下に使用し
た。
ガワ、イー・イシカワ、エトール; ジェイ・バイオケ
ム(S、YO5ITAKE、M、IMAGAWA、E、
l5IKA1fA etal: J、Blochem
、)、vol、92(+982) 1413−14
24コ に記載の方法によってペルオキシダーゼ(PO
D’)と結合し、標識抗体を得た。これを1%牛血清ア
ルブミン(BSA)含有緩衝液でIOμg/ll1lに
希釈したものを標識抗体試薬(C)として以下に使用し
た。
5)交雑
予め、95℃、5分で加熱し、直ちに氷上で冷却た(A
)の0.5.10及び20μIを含むPBS500μm
と(B)を混合し、60°C×2時間加温振盪で交雑さ
せ、次いで0.01%tveen−PBS (sooμ
lX2回)でガラスビーズを洗浄した。
)の0.5.10及び20μIを含むPBS500μm
と(B)を混合し、60°C×2時間加温振盪で交雑さ
せ、次いで0.01%tveen−PBS (sooμ
lX2回)でガラスビーズを洗浄した。
B)検出
5)で得た反応物に(C)を100μl及びPBS40
0μmを添加し、37’CX60分加温振盪した後、生
理食塩水にて洗浄した。これに基質溶液(過酸化水素含
有オルトフェニレンジアミン溶液)500μlを加え、
37°C×30分加温振盪した後、3mlの1.5N硫
酸で反応を停止した。この液の492r+mの吸光度を
測定し、ガラスビーズに結合した酵素の活性を測定した
。
0μmを添加し、37’CX60分加温振盪した後、生
理食塩水にて洗浄した。これに基質溶液(過酸化水素含
有オルトフェニレンジアミン溶液)500μlを加え、
37°C×30分加温振盪した後、3mlの1.5N硫
酸で反応を停止した。この液の492r+mの吸光度を
測定し、ガラスビーズに結合した酵素の活性を測定した
。
第一図に本検出法による核酸の検出結果を示した。
比較例1
実施例1の標識抗体を調製する方法において抗体が市販
の抗核酸抗体(ケミコン・インターナショナル社製)で
あること以外は実施例1と同様に行ない、検出した。
の抗核酸抗体(ケミコン・インターナショナル社製)で
あること以外は実施例1と同様に行ない、検出した。
第一図に比較例1による検出結果を示した。
この結果、交雑した核酸のみが特異的、安全且つ迅速に
検出されることがわかる。
検出されることがわかる。
実施例2
本発明の検出試薬は以下の試薬を別々の容器に充填した
後密栓して製造した。
後密栓して製造した。
■)核酸試薬(A) 1.2a12
)固定化した一本鎖核酸試薬(B) 100個3)標
識抗体試薬(C) 12n+14 PB
S 12h150.01%
Tveen−PBS 12h18生理食
塩水 100h13基質溶液
GO+a110硫酸(1,5N)
35hl実施例3 複数の特定の核酸
の検出 l)試料中の相補的な一本鎖核酸の調製市販のpBR3
22DNA及びM13!11)19RFDNA (いず
れも宝酒造製)を夫々制限酵素HlndIII (宝酒
造製)でメーカー推薦の反応条件で完全消化し、フェノ
ール抽出、エタノール沈殿等の通常の操作を経て精製し
、更に精製したものを100℃、10分で熱変性し、各
試料を混合し、最終的に夫々の濃度を100μg/+a
lに調整したものを核酸試薬(E)として以下の検討に
用いた。
)固定化した一本鎖核酸試薬(B) 100個3)標
識抗体試薬(C) 12n+14 PB
S 12h150.01%
Tveen−PBS 12h18生理食
塩水 100h13基質溶液
GO+a110硫酸(1,5N)
35hl実施例3 複数の特定の核酸
の検出 l)試料中の相補的な一本鎖核酸の調製市販のpBR3
22DNA及びM13!11)19RFDNA (いず
れも宝酒造製)を夫々制限酵素HlndIII (宝酒
造製)でメーカー推薦の反応条件で完全消化し、フェノ
ール抽出、エタノール沈殿等の通常の操作を経て精製し
、更に精製したものを100℃、10分で熱変性し、各
試料を混合し、最終的に夫々の濃度を100μg/+a
lに調整したものを核酸試薬(E)として以下の検討に
用いた。
2)固定化した一本鎖核酸の調製
一本鎖核酸は市販のpBR322Prlmer[I (
’宝酒造製、塩基数IBでpBR322と相補な塩基配
列をもつ)及びM13pPr1merM3 (宝酒造製
、塩基数!7でM13mp19RFDNAと相補な塩基
配列をもつ)を用いた。0.1Mの炭酸緩衝液(pH9
,8)に溶解したそれぞれのPrlmerを各0.1μ
g/m lになるよう混合し、その300μmをガラス
ビーズと混合し、2時間室温で振盪した。次に0.01
%Tveen含有0.02M燐酸緩衝液(pH7,5)
(0,01%Tween−PBS)のsooμlで
2回洗浄し、PBSに溶解した1%BSAを加え、37
℃、10分加温振盪したものを固定化した一本鎖核酸試
薬(F)として以下の検出に用いた。
’宝酒造製、塩基数IBでpBR322と相補な塩基配
列をもつ)及びM13pPr1merM3 (宝酒造製
、塩基数!7でM13mp19RFDNAと相補な塩基
配列をもつ)を用いた。0.1Mの炭酸緩衝液(pH9
,8)に溶解したそれぞれのPrlmerを各0.1μ
g/m lになるよう混合し、その300μmをガラス
ビーズと混合し、2時間室温で振盪した。次に0.01
%Tveen含有0.02M燐酸緩衝液(pH7,5)
(0,01%Tween−PBS)のsooμlで
2回洗浄し、PBSに溶解した1%BSAを加え、37
℃、10分加温振盪したものを固定化した一本鎖核酸試
薬(F)として以下の検出に用いた。
又実施例1で使用した(B)も併用して用いた。
3)抗咳酸モノクローナル抗体の調製
実施例1に同じ。
4)標識抗体の調製
実施例1に同じ。
5)交雑
予め、35℃、5分で加熱し、直ちに氷上で冷却した(
E)の0.5.10及び20μlを含むPBS500μ
lと(B)又は(F)とを混合し、60℃×2時間加温
FM盪で交雑させ、次いで0.O1%tveen−PB
S (500u I X 2回)でガラスビーズを洗浄
した。
E)の0.5.10及び20μlを含むPBS500μ
lと(B)又は(F)とを混合し、60℃×2時間加温
FM盪で交雑させ、次いで0.O1%tveen−PB
S (500u I X 2回)でガラスビーズを洗浄
した。
6)検出
実施例1に同じ。
第二図に本検出法による核酸の検出結果を示した。
比較例2
実施例3の標識抗体を調製する方法において抗体が市販
の抗咳酸抗体(ケミコン・インターナショナル社製)で
あること以外は実施例3と同様に行ない、検出した。
の抗咳酸抗体(ケミコン・インターナショナル社製)で
あること以外は実施例3と同様に行ない、検出した。
第二図に比較例2による検出結果を示した。
この結果、交雑した核酸のみが特異的、安全且つ迅速に
検出されることがわかる。
検出されることがわかる。
実施例4
本発明の検出試薬は以下の試薬を別々の容器に充填した
後密栓して製造した。
後密栓して製造した。
l核酸試薬(E) 2.4m12)
固定化した一本鎖核酸試薬(F) roo個3固定化
した一本鎖核酸試薬(B) +oo個4標識抗体試薬
(C) 24m1S PBS
240m160.01%Tween
−PBS 240I1117生理食塩水
2000m18)基質溶液
120m19)硫酸(1,5N)
70hl実施例5 特定の核酸の検出 l)試料中の相補的な一本鎖核酸の調製実施例1に同じ
。
固定化した一本鎖核酸試薬(F) roo個3固定化
した一本鎖核酸試薬(B) +oo個4標識抗体試薬
(C) 24m1S PBS
240m160.01%Tween
−PBS 240I1117生理食塩水
2000m18)基質溶液
120m19)硫酸(1,5N)
70hl実施例5 特定の核酸の検出 l)試料中の相補的な一本鎖核酸の調製実施例1に同じ
。
2)固定化した一本鎖核酸の調製
まず、−木調核酸は市販のpBR322Prlmerl
lと同様の塩基配列を有するオリゴヌクレオチドの5″
末端ヒドロキシル基をカルボジイミダゾール及びヘキサ
メチレンジアミンにてアミノアルキルたものを入手した
。又、支持体としてはγ−アミノプロピルシランにて予
め表面上をアミノ化処理した外径Gmmのスリガラスビ
ーズを使用し、これとジサクシニミジルサブストレー)
(DSS)及び上記のアミノアルキル化ヌクレオチドを
混合し、室温、24時間反応させた。次にこの反応物の
ヌクレオチド濃度を0.1Ng/mlに調節し、実施例
1同様の処理をしたものを固定化した一本鎖核酸試薬(
G)とし、以下の検出に用いた。
lと同様の塩基配列を有するオリゴヌクレオチドの5″
末端ヒドロキシル基をカルボジイミダゾール及びヘキサ
メチレンジアミンにてアミノアルキルたものを入手した
。又、支持体としてはγ−アミノプロピルシランにて予
め表面上をアミノ化処理した外径Gmmのスリガラスビ
ーズを使用し、これとジサクシニミジルサブストレー)
(DSS)及び上記のアミノアルキル化ヌクレオチドを
混合し、室温、24時間反応させた。次にこの反応物の
ヌクレオチド濃度を0.1Ng/mlに調節し、実施例
1同様の処理をしたものを固定化した一本鎖核酸試薬(
G)とし、以下の検出に用いた。
3)抗咳酸モノクローナル抗体の調製
実施例1に同じ。
4)標識抗体の調製
実施例1に同じ。
5)交雑
予め、95°C,5分で加熱し、直ちに氷上で冷却した
(A)の0.5.10及び20μlを含むPBS500
μIと(G)とを脛合し、60°CX2時間加温振盪で
交雑させ、次いで0.OI%tveen−PBS (5
00μm×2回)でガラスビーズを洗浄した。
(A)の0.5.10及び20μlを含むPBS500
μIと(G)とを脛合し、60°CX2時間加温振盪で
交雑させ、次いで0.OI%tveen−PBS (5
00μm×2回)でガラスビーズを洗浄した。
6)検出
5)で得た反応物に(C)を100μ■及びPBS40
0μmを添加し、37”CX60分加温振盪した後、生
理食塩水にて洗浄した。これに基質溶液(過酸化水素含
有オルトフェニレンジアミン溶液)500μlを加え、
37’CX30分加温振盪した後、3Illの1.5N
硫酸で反応を停止した。この液の492nmの吸光度を
測定し、ガラスビーズに結合した酵素の活性を測定した
。
0μmを添加し、37”CX60分加温振盪した後、生
理食塩水にて洗浄した。これに基質溶液(過酸化水素含
有オルトフェニレンジアミン溶液)500μlを加え、
37’CX30分加温振盪した後、3Illの1.5N
硫酸で反応を停止した。この液の492nmの吸光度を
測定し、ガラスビーズに結合した酵素の活性を測定した
。
第三図に本検出法による核酸の検出結果を示した。
比較例3
実施例5の標識抗体を調製する方法において抗体が市販
の抗咳酸抗体(ケミコン・インターナショナル社製)で
あること以外は実施例5と同様に行ない、検出した。
の抗咳酸抗体(ケミコン・インターナショナル社製)で
あること以外は実施例5と同様に行ない、検出した。
第三図に比較例1による検出結果を示した。
この結果支持体及び−末鎖核酸間に一定の分子長がある
ことで感度良く、且つ酵素処理により一本鎖核酸と相補
な核酸のみが特異的、安全且つ迅速に検出されることが
わかる。
ことで感度良く、且つ酵素処理により一本鎖核酸と相補
な核酸のみが特異的、安全且つ迅速に検出されることが
わかる。
実施例6
本発明の検出試薬は以下の試薬を別々の容器に充填した
後密栓して製造した。
後密栓して製造した。
I)核酸試薬(A) 1.2111
2)固定化した一本鎖核酸試薬(G) 100個3標
識抗体試薬(C) 12114 PBS
120m150.01%T
ween−PBS 12h18生理食塩
水 1000m19基質溶岐
60m110硫酸(1,5N)
350m1[発明の効果] 本発明の検出法及び検出試薬によれば、従来の検出法に
比べ特異性が高く、迅速で且つ安全な測定が可能となる
。
2)固定化した一本鎖核酸試薬(G) 100個3標
識抗体試薬(C) 12114 PBS
120m150.01%T
ween−PBS 12h18生理食塩
水 1000m19基質溶岐
60m110硫酸(1,5N)
350m1[発明の効果] 本発明の検出法及び検出試薬によれば、従来の検出法に
比べ特異性が高く、迅速で且つ安全な測定が可能となる
。
従来の検出法においては対象とする核酸を固定し、−木
調核酸を32pのような放射性同位元素を標識物質とし
て用いる場合、検出感度としては大変高感度であるが、
操作上の手間及び安全性の点では問題が多い。本発明は
これらの欠点を大きく改良するための方法を提供するも
のである。
調核酸を32pのような放射性同位元素を標識物質とし
て用いる場合、検出感度としては大変高感度であるが、
操作上の手間及び安全性の点では問題が多い。本発明は
これらの欠点を大きく改良するための方法を提供するも
のである。
また−木調核酸を複数使用する場合には変異株を持つウ
ィルスや細菌を同一検査試薬で測定できることや、多種
の疾病の同時検出を可能にした点が特徴である。一般に
ウィルスや細菌は種々の外的要因により容易に変異株を
形成し、しばしばその診断・治療を困難にする。例えば
パピローマウィルス或はインフルエンザウィルスは多種
の変異株を有し、後者は特に毎年その採種を替え、流行
す る。従って一種の核酸しか検出出来ない試薬の場合、そ
の診断を誤ることにも成りかねない。本発明の検査法に
よるとこの誤りを無くすことができ、マススクリーニン
グに大変都合がよい。
ィルスや細菌を同一検査試薬で測定できることや、多種
の疾病の同時検出を可能にした点が特徴である。一般に
ウィルスや細菌は種々の外的要因により容易に変異株を
形成し、しばしばその診断・治療を困難にする。例えば
パピローマウィルス或はインフルエンザウィルスは多種
の変異株を有し、後者は特に毎年その採種を替え、流行
す る。従って一種の核酸しか検出出来ない試薬の場合、そ
の診断を誤ることにも成りかねない。本発明の検査法に
よるとこの誤りを無くすことができ、マススクリーニン
グに大変都合がよい。
以上の点から、本発明は特に高感度、高精度の測定が要
求される血清またはその他の体液中に極@量存在する目
的の核酸又は食品中の生物汚染に由来する核酸を特異的
に検出でき、且つこれらの検出時間を著しく短縮できる
ものである。本発明の主用途である臨床検査及び食品製
造への適用にほこの点特に好ましい。
求される血清またはその他の体液中に極@量存在する目
的の核酸又は食品中の生物汚染に由来する核酸を特異的
に検出でき、且つこれらの検出時間を著しく短縮できる
ものである。本発明の主用途である臨床検査及び食品製
造への適用にほこの点特に好ましい。
第一図は実施例1及び比較例1の核酸の検出結果を、第
二図は実施例3及び比較例2の核酸の検出結果を、第三
図は実施例5及び比較例3の核酸の検出結果を夫々示し
たグラフである。 図面 (A)μm 第二図 ロー0 : 比較g112で(B)を用いた場合 第三図 (A)μl
二図は実施例3及び比較例2の核酸の検出結果を、第三
図は実施例5及び比較例3の核酸の検出結果を夫々示し
たグラフである。 図面 (A)μm 第二図 ロー0 : 比較g112で(B)を用いた場合 第三図 (A)μl
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、一本鎖核酸と、試料中の相補的な一本鎖核酸を交雑
し、特定の核酸を検出する方法において、一本鎖核酸を
支持体に固定化し、交雑して二本鎖となった核酸を、標
識物質で標識された結合性物質を用いて検出することを
特徴とする核酸の検出法。 2、支持体がガラスビーズである請求項1記載の検出法
。 3、結合性物質が交雑物に特異的な蛋白である請求項1
または2記載の検出法。 4、蛋白が抗体である請求項3記載の検出法。 5、抗体がIgGである請求項4記載の検出法。 6、標識物質が酵素である請求項1〜5項のいずれか記
載の検出法。 7、支持体に固定化した一本鎖核酸及び交雑して二本鎖
となった核酸と反応する、標識物質で標識された結合性
物質を含有してなる請求項1〜6項のいずれかに記載の
検出法に使用される核酸の検出試薬。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
EP19900112479 EP0405592A3 (en) | 1989-06-30 | 1990-06-29 | A method for detection of nucleic acid and reagents for their detection |
Applications Claiming Priority (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1-170686 | 1989-06-30 | ||
JP17068689 | 1989-06-30 | ||
JP1-193131 | 1989-07-26 | ||
JP19313189 | 1989-07-26 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH03130098A true JPH03130098A (ja) | 1991-06-03 |
Family
ID=26493613
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP22377489A Pending JPH03130098A (ja) | 1989-06-30 | 1989-08-30 | 核酸の検出法及びび検出試薬 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH03130098A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2007189963A (ja) * | 2006-01-20 | 2007-08-02 | Toppan Printing Co Ltd | 収容基板及び収容基板の製造方法 |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS6072828A (ja) * | 1983-08-19 | 1985-04-24 | シタス パロ アルト コ−ポレイシヨン | Dnaの二本鎖構造に特異的なモノクロ−ナル抗体及び該抗体を使用する測定方法 |
JPS60151559A (ja) * | 1983-12-12 | 1985-08-09 | マイルス・インコーポレーテッド | 挿入複合体に対する抗体を使用する核酸ハイブリダイゼーシヨン分析 |
JPS61293400A (ja) * | 1985-06-21 | 1986-12-24 | マイルズ ラボラトリ−ス インコ−ポレ−テッド | ポリヌクレオチド配列の測定方法 |
-
1989
- 1989-08-30 JP JP22377489A patent/JPH03130098A/ja active Pending
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS6072828A (ja) * | 1983-08-19 | 1985-04-24 | シタス パロ アルト コ−ポレイシヨン | Dnaの二本鎖構造に特異的なモノクロ−ナル抗体及び該抗体を使用する測定方法 |
JPS60151559A (ja) * | 1983-12-12 | 1985-08-09 | マイルス・インコーポレーテッド | 挿入複合体に対する抗体を使用する核酸ハイブリダイゼーシヨン分析 |
JPS61293400A (ja) * | 1985-06-21 | 1986-12-24 | マイルズ ラボラトリ−ス インコ−ポレ−テッド | ポリヌクレオチド配列の測定方法 |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2007189963A (ja) * | 2006-01-20 | 2007-08-02 | Toppan Printing Co Ltd | 収容基板及び収容基板の製造方法 |
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