JPH02242674A - 新規ハンタンウイルス rok 84/105菌株、そのウイルスワクチン及びその製造方法 - Google Patents
新規ハンタンウイルス rok 84/105菌株、そのウイルスワクチン及びその製造方法Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
[産業上の利用分野]
本発明は腎症候群出血熱の病原体である新規ハンタンウ
ィルス菌株及び腎症候群出血熱の予防に卓越した効果を
有するハンタンウィルスワクチンに関する。
ィルス菌株及び腎症候群出血熱の予防に卓越した効果を
有するハンタンウィルスワクチンに関する。
[従来の技術]
現在地球上にウィルスに因る流行性出血熱の種類は10
余種が存在し、その伝播経路に従ってモスキードボン(
mosquttoborne )、チックボン(tic
kborne )及びチュノチック(zoonotic
)に分類しているが、本発明のハンタンウィルス菌株
から起因する韓国型流行性出血熱はチュノチックに属す
る。
余種が存在し、その伝播経路に従ってモスキードボン(
mosquttoborne )、チックボン(tic
kborne )及びチュノチック(zoonotic
)に分類しているが、本発明のハンタンウィルス菌株
から起因する韓国型流行性出血熱はチュノチックに属す
る。
この韓国型流行性出血熱の病原体は未だ分離されていな
いが、鼠のどの種が宿主であり、どこにどんな病原体を
有するかは証明されてはいないものの、鼠と関連あると
のことは知られている。 流行性出血熱の自然系宿主に
対しては多くの予測等があったが証明されたものはなか
った。しかし、日本の浅沼等は背筋鼠に寄生する毛ダニ
(Trombicularmit)の乳液を人体に接種
して疾病を引き起こすことから、毛ダニが宿主及び媒介
であると推定した。
いが、鼠のどの種が宿主であり、どこにどんな病原体を
有するかは証明されてはいないものの、鼠と関連あると
のことは知られている。 流行性出血熱の自然系宿主に
対しては多くの予測等があったが証明されたものはなか
った。しかし、日本の浅沼等は背筋鼠に寄生する毛ダニ
(Trombicularmit)の乳液を人体に接種
して疾病を引き起こすことから、毛ダニが宿主及び媒介
であると推定した。
本発明者等は、韓国型流行性出血熱の流行地域である東
豆用(韓国京畿道北部地名)で採集した背筋鼠(江皿聾
■区田us coreae )の肺及び腎臓組織から病
原体を分離することに成功・した。そして、得られた病
原体がウィルスであることを確認し、これをハンタンウ
ィルス(Hantaan Virus)と命名した。
豆用(韓国京畿道北部地名)で採集した背筋鼠(江皿聾
■区田us coreae )の肺及び腎臓組織から病
原体を分離することに成功・した。そして、得られた病
原体がウィルスであることを確認し、これをハンタンウ
ィルス(Hantaan Virus)と命名した。
ウィルスに起因する出血熱患者は韓国ばかりでなく世界
各地において多発しており、その症状もまた韓国型流行
性出血熱と類似していることが明らかにされた。
各地において多発しており、その症状もまた韓国型流行
性出血熱と類似していることが明らかにされた。
本発明者らはソ連の出血熱賛症性腎炎
(Hemorrhagic nephrosoneph
ritis ) 、フィンランドの流行性腎臓炎(Ne
phropatj、aepidemica )及び日本
の流行性出血熱(Epidea+ic hemorrh
agjc fever)患者の血清に上記ビールスに対
する蛍光抗体があることを証明し、これら疾病がハンタ
ンウィルス又はこれと抗原的に類似のウィルスに依り発
生されることが証明された。従って、1982年世界保
健機Fil(WHO)はこれら疾病の名称を腎症候出血
熱(Hea+orrhagic fever with
renal 5yndroa+e)と統一して称するこ
とに決定した。
ritis ) 、フィンランドの流行性腎臓炎(Ne
phropatj、aepidemica )及び日本
の流行性出血熱(Epidea+ic hemorrh
agjc fever)患者の血清に上記ビールスに対
する蛍光抗体があることを証明し、これら疾病がハンタ
ンウィルス又はこれと抗原的に類似のウィルスに依り発
生されることが証明された。従って、1982年世界保
健機Fil(WHO)はこれら疾病の名称を腎症候出血
熱(Hea+orrhagic fever with
renal 5yndroa+e)と統一して称するこ
とに決定した。
[発明が解決しようとする課題]
前記ハンタンウィルスに感染した患者の大部分は、3〜
5日間の、上部呼吸系の感染症、例えば咳、咽喉痛及び
鼻症を伴なった38〜40℃の発熱、俄な悪汗、頭痛、
神経衰弱及び筋肉痛の症状を呈し、次いで、病状の進行
に伴ない、甚だしい呼吸困難、胸部疼痛及び血痰の症状
を呈する。 稀ではあるが甚だしい場合には特異の顔面
出血斑が皮膚又は結膜にあられれて呼吸感染ウィルス疾
病のため死亡に至ることもある。
5日間の、上部呼吸系の感染症、例えば咳、咽喉痛及び
鼻症を伴なった38〜40℃の発熱、俄な悪汗、頭痛、
神経衰弱及び筋肉痛の症状を呈し、次いで、病状の進行
に伴ない、甚だしい呼吸困難、胸部疼痛及び血痰の症状
を呈する。 稀ではあるが甚だしい場合には特異の顔面
出血斑が皮膚又は結膜にあられれて呼吸感染ウィルス疾
病のため死亡に至ることもある。
一方、前記のように韓国型流行性出血熱等の疾病ウィル
スは発見されたが、その予防及び治療薬としては満足す
べき結果は得られていない。その上、ワクチンの製造に
あたり、ウィルスの毒性の問題のため、人体に安全なワ
クチンの製造が非常に困難であるという問題がある。
スは発見されたが、その予防及び治療薬としては満足す
べき結果は得られていない。その上、ワクチンの製造に
あたり、ウィルスの毒性の問題のため、人体に安全なワ
クチンの製造が非常に困難であるという問題がある。
従って、腎症候群出血熱のウィルス感染を防ぐ薬剤を提
供し、腎症候群出血熱の感染防御及び治療のための技術
を開発することが望まれていた。
供し、腎症候群出血熱の感染防御及び治療のための技術
を開発することが望まれていた。
[課題を解決するための手段]
本発明者は、このような現状において、上記ウィルス疾
病を根絶すべく、鋭意研究を重ねた結果、上記疾病を誘
発する新規病原体を見出し、更に、この病原体からの感
染を阻止若しくは抑制するための予防ワクチンを発明す
るに至った。
病を根絶すべく、鋭意研究を重ねた結果、上記疾病を誘
発する新規病原体を見出し、更に、この病原体からの感
染を阻止若しくは抑制するための予防ワクチンを発明す
るに至った。
従って、本発明の目的は、ハンタンウィルス菌株を利用
したハンタンウィルスワクチンの大量生産に適切な、経
済的かつ効率的な方法を提供するものである。
したハンタンウィルスワクチンの大量生産に適切な、経
済的かつ効率的な方法を提供するものである。
本発明のまた他の目的は、上記方法において実質的に利
用される新規のハンタンウィルス菌株を提供するもので
ある。
用される新規のハンタンウィルス菌株を提供するもので
ある。
本発明者は1984年流行性出血熱症状で入院した患者
(韓国京畿道波州で服務する軍人)の血清を発病3日目
に採取し、これをVerOEe細胞で4回継代培養して
ウィルスを分離することに成功した。
(韓国京畿道波州で服務する軍人)の血清を発病3日目
に採取し、これをVerOEe細胞で4回継代培養して
ウィルスを分離することに成功した。
このウィルスを韓国種菌協会(KFCC)に1988年
11月9日付で寄託した所、本発明の菌株が病原性菌株
であるので寄託が拒否された(本発明の菌株をハンタン
ウィルスROK 84/105と命名し、これをハン
タンウィルスワクチンのシード(seed)として使用
した)。なお、工業技術院微生物工業研究所(微工研、
FERM)においても本ウィルスは病原性であるとして
受託を拒否することは明確であるので、微工研に対して
も寄託は行なっていない。 しかしながら、特許法施行
規則27条の3の条件を満たす場合は、出願人において
本発明のウィルスを分譲する用意がある。
11月9日付で寄託した所、本発明の菌株が病原性菌株
であるので寄託が拒否された(本発明の菌株をハンタン
ウィルスROK 84/105と命名し、これをハン
タンウィルスワクチンのシード(seed)として使用
した)。なお、工業技術院微生物工業研究所(微工研、
FERM)においても本ウィルスは病原性であるとして
受託を拒否することは明確であるので、微工研に対して
も寄託は行なっていない。 しかしながら、特許法施行
規則27条の3の条件を満たす場合は、出願人において
本発明のウィルスを分譲する用意がある。
−S的に人体に適用されるワクチンは、人体由来の菌株
を使用することが望ましく、かつ人体より採取された血
液中のハンタンウィルスはマウスかラットの脳でよく増
殖されるばかりでなく、ワクチンの製造に必要な抗原を
多量に保有するためにマウスかラットを利用して上記目
的を達成するのに適合している。
を使用することが望ましく、かつ人体より採取された血
液中のハンタンウィルスはマウスかラットの脳でよく増
殖されるばかりでなく、ワクチンの製造に必要な抗原を
多量に保有するためにマウスかラットを利用して上記目
的を達成するのに適合している。
本発明のウィルス菌株は分類学上からはブンヤウイリタ
x (Bunyaviridae)科のハンタウイルス
属()lanta virus genus)の4種の
形、即ちハンタンウィルス(Ilantaan Vlr
us)(原型76−118)、ソウルウィルス(Seo
ul Virus) (原型8O−39)、プロスペ
クトヒルウィルス(Prospect HillVi
rus) 、ブマラウイルス(Pumala Viru
s)中よりハンタンウィルスに属し、腎症候出血熱患者
の血液から採取してマウスかラットの脳で増殖されるよ
う適用させたものである。
x (Bunyaviridae)科のハンタウイルス
属()lanta virus genus)の4種の
形、即ちハンタンウィルス(Ilantaan Vlr
us)(原型76−118)、ソウルウィルス(Seo
ul Virus) (原型8O−39)、プロスペ
クトヒルウィルス(Prospect HillVi
rus) 、ブマラウイルス(Pumala Viru
s)中よりハンタンウィルスに属し、腎症候出血熱患者
の血液から採取してマウスかラットの脳で増殖されるよ
う適用させたものである。
本発明者らに依って本ウィルスの成長、増殖および分離
が最初になされたのであるが、該ウィルスの分離のため
に使用された細胞はVero E6であって、ATC
C(寄託番号:C1008,CRL1586)とアメリ
カ陸軍伝染病研究所で分譲を受けて組織培養培地で増殖
して使用した。
が最初になされたのであるが、該ウィルスの分離のため
に使用された細胞はVero E6であって、ATC
C(寄託番号:C1008,CRL1586)とアメリ
カ陸軍伝染病研究所で分譲を受けて組織培養培地で増殖
して使用した。
組織培養培地はイーグル(Eagle)培地95%およ
びウシ胎児血清(Fe2)5%であり、組織培養細胞に
ウィルスで感染された患者の血液を加えた後、36℃の
Co2インキュベーターで培養させ、ウィルス増殖を間
接蛍光抗体法で確認した。 −次代代においてはウィル
スの増殖はなく、4次代代においては、ウィルス抗原が
細胞の円形質(Pt’0tO−plast)内で蛍光斑
点を示すことを確認した。
びウシ胎児血清(Fe2)5%であり、組織培養細胞に
ウィルスで感染された患者の血液を加えた後、36℃の
Co2インキュベーターで培養させ、ウィルス増殖を間
接蛍光抗体法で確認した。 −次代代においてはウィル
スの増殖はなく、4次代代においては、ウィルス抗原が
細胞の円形質(Pt’0tO−plast)内で蛍光斑
点を示すことを確認した。
該ウィルスを哺乳マウスと哺乳ラットの脳に接種しウィ
ルスの増殖の有無を検査した。
ルスの増殖の有無を検査した。
この結果、該ウィルスは噴孔マウスと哺乳ラットの脳に
おいてのみ特異的に増殖することを確認した。
おいてのみ特異的に増殖することを確認した。
本発明者によって、本発明のハンタンウイルスROK8
4/105菌株を哺乳マウスと哺乳ラットの脳で大量生
産される方法が確立され、またその抽出、精製法が最初
に確立された。 本発明によれば、ハンタンウィルスR
OK84/105菌株を4℃(7)温度、pH762の
条件下で安定化させ、安定化されたウィルスを鼠の脳に
接種、培養し、pH 7,2,20%燐酸塩緩衝液で脳乳剤を製造すれば、酵
素結合免疫分析法(ELISA法)による抗原の力価と
して8,192Unit以上との結果を得た。
4/105菌株を哺乳マウスと哺乳ラットの脳で大量生
産される方法が確立され、またその抽出、精製法が最初
に確立された。 本発明によれば、ハンタンウィルスR
OK84/105菌株を4℃(7)温度、pH762の
条件下で安定化させ、安定化されたウィルスを鼠の脳に
接種、培養し、pH 7,2,20%燐酸塩緩衝液で脳乳剤を製造すれば、酵
素結合免疫分析法(ELISA法)による抗原の力価と
して8,192Unit以上との結果を得た。
本発明のハンタンウィルスROK 84/105菌株
の収車は、他のハンタウイルス菌株、例えば、パンタン
ウィルスフ6−118菌株より遥かに高かった。
の収車は、他のハンタウイルス菌株、例えば、パンタン
ウィルスフ6−118菌株より遥かに高かった。
前述した条件で本発明者はハンタンウィルス増殖に対し
て広範囲な研究をした結果、本発明のハンタンウィルス
ROK 84/105菌株がハンタンウィルスワクチ
ンの製造に必要な十分な量の抗原を提供し得るシードで
あり、抗体の形成が卓越であることを発見した。
て広範囲な研究をした結果、本発明のハンタンウィルス
ROK 84/105菌株がハンタンウィルスワクチ
ンの製造に必要な十分な量の抗原を提供し得るシードで
あり、抗体の形成が卓越であることを発見した。
本発明に依るウィルス菌株は、背筋鼠から分離されたハ
ンタンウィルス原型(prot。
ンタンウィルス原型(prot。
type)76−118よりは人体から分離されたとの
点番こおいて人体に適用されるワクチンを製造するのに
より適合している。
点番こおいて人体に適用されるワクチンを製造するのに
より適合している。
本発明のハンタンウィルスROK84/105菌株は下
記の物理化学的性状即ちブンヤビリタx (8unny
aviridae)の特性を有する。
記の物理化学的性状即ちブンヤビリタx (8unny
aviridae)の特性を有する。
A、ピッオン粒子
球形又は楕円形、直径約95nm、RNAB、エンベロ
ープ リポ蛋白のエンベロープで囲まれており、5〜10nm
の大きさの多数の繊維状物(fiber )が突出(p
rojecting ) している。
ープ リポ蛋白のエンベロープで囲まれており、5〜10nm
の大きさの多数の繊維状物(fiber )が突出(p
rojecting ) している。
C,Wl造
■単一螺旋
■3分節(three−segment )■陰性反応
RNAゲノム(Negative−sence RNA
Genomes )■総分子ffi:4.5X106 ■3個のウィラルニュクレオカブシド (three viral nucleo capsi
d)02個のウィルス特異糖蛋白(two virus
specified glyco protein
)D、ウィルス増殖 感染細胞の細胞質(cytoplasm )E、特性 本発明の新規ウィルスであるハンタンウイルスROK8
4/105m株は公知のパンタンウィルスフ6−118
菌株との下記のような相異なる特性を示す。
RNAゲノム(Negative−sence RNA
Genomes )■総分子ffi:4.5X106 ■3個のウィラルニュクレオカブシド (three viral nucleo capsi
d)02個のウィルス特異糖蛋白(two virus
specified glyco protein
)D、ウィルス増殖 感染細胞の細胞質(cytoplasm )E、特性 本発明の新規ウィルスであるハンタンウイルスROK8
4/105m株は公知のパンタンウィルスフ6−118
菌株との下記のような相異なる特性を示す。
■ウィルスの力価がVero Ees細胞で10 =
・2/ m 1である。
・2/ m 1である。
■ウィルスの力価が哺乳マウス脳で
109・” / m 1である。
■ウィルスの力価が哺乳ラットの脳で
10””/mlである。
以上のとおり該ウィルスは鼠での病原性が強くウィルス
接種佳7〜12日間に鼠が死亡する。
接種佳7〜12日間に鼠が死亡する。
■前記ウィルスはICRffili乳マウスに接種すれ
ばウィルスの増殖が他のウィル スより早く起こり、抗体がウィルス接 種?&5日月よりあられれ10日頃には2.000以上
に達する。
ばウィルスの増殖が他のウィル スより早く起こり、抗体がウィルス接 種?&5日月よりあられれ10日頃には2.000以上
に達する。
■該つィルスをSDラットに接種すればウィルス接種7
日後に抗体が検出し得 る。
日後に抗体が検出し得 る。
■該つィルスをVero Ee細胞で培養すれば他の
ウィルスに比べて大きなサ イズである0 、 3 c+a内外のプラークを観察し
得る。
ウィルスに比べて大きなサ イズである0 、 3 c+a内外のプラークを観察し
得る。
本発明は新規ウィルスを培養、増殖、分離、および不活
化して製造したハンタンウィルスワクチンを提供する。
化して製造したハンタンウィルスワクチンを提供する。
即ち、本発明のハンタンウィルスワクチンは、好ましく
は1日齢の哺乳マウス又はラットに人体より分離したハ
ンタンウィルスROK 84/105菌株をシードと
して接種し、約10日間飼育した徨、完全に麻痺をおこ
したマウスの頭部を切開して脳を採取しこれをエチルア
ルコールとプロタミンスルフエイト溶液で処理した後、
更にN製、不活化し補助剤を添加して製造される。
は1日齢の哺乳マウス又はラットに人体より分離したハ
ンタンウィルスROK 84/105菌株をシードと
して接種し、約10日間飼育した徨、完全に麻痺をおこ
したマウスの頭部を切開して脳を採取しこれをエチルア
ルコールとプロタミンスルフエイト溶液で処理した後、
更にN製、不活化し補助剤を添加して製造される。
本発明のワクチンを製造するためにシードウィルスの増
殖が必要である。 このような目的のため、シードウィ
ルスは、好ましくは1.0%ウシ血清アルブミン(BS
A)を含有したBSS (BalancedSalt
Soltion)溶液(pH7,6)で希釈して使用さ
れる。 希釈されたウィルス液は4℃で保存使用しうる
が、長期間保存時には一60℃で保存して使用すること
が望ましい。
殖が必要である。 このような目的のため、シードウィ
ルスは、好ましくは1.0%ウシ血清アルブミン(BS
A)を含有したBSS (BalancedSalt
Soltion)溶液(pH7,6)で希釈して使用さ
れる。 希釈されたウィルス液は4℃で保存使用しうる
が、長期間保存時には一60℃で保存して使用すること
が望ましい。
前記ハンタンウィルス希釈液を哺乳マウス又は哺乳ラッ
トの脳に接種させた。 10日間飼育したマウスの平均
脳重量は0.262gであり、20%脳懸濁液の抗原の
力価は、8.192であった。 10日間飼育されたラ
ットの平均脳重量は0.718gであったし、脳懸濁液
の抗原の力価は8,192であった。
トの脳に接種させた。 10日間飼育したマウスの平均
脳重量は0.262gであり、20%脳懸濁液の抗原の
力価は、8.192であった。 10日間飼育されたラ
ットの平均脳重量は0.718gであったし、脳懸濁液
の抗原の力価は8,192であった。
本発明においてシードウィルスの増殖はマウスだけでな
く、ラットにおいても良好であるが、ラットで増殖され
る方がより曹ましい。
く、ラットにおいても良好であるが、ラットで増殖され
る方がより曹ましい。
ウィルスが増殖されたマウスは8日目から麻痺を引き起
こし、10日頃には死亡するに至るが、ワクチンは死亡
直前の脳を採取して重量を計った後、下記組成の希釈液
(PBS、pH7,2)で20%(W/v)溶液とし、
細胞粉砕機で十分に粉砕し、4℃、3000rpmで2
0分間遠沈して上層液を回収することにより製造される
。
こし、10日頃には死亡するに至るが、ワクチンは死亡
直前の脳を採取して重量を計った後、下記組成の希釈液
(PBS、pH7,2)で20%(W/v)溶液とし、
細胞粉砕機で十分に粉砕し、4℃、3000rpmで2
0分間遠沈して上層液を回収することにより製造される
。
(組成)
塩化ナトリウム 8.5g燐酸ナトリウ
ム(1塩基)・2 H2O0,4g 燐酸ナトリウム(2塩基)・12H202,54g 蒸留水 17にとなる量(pH=7
.2) 回収された上層液に30〜40%の冷エタノールを同量
添加し、40℃で16〜20時間放置して蛋白質を沈澱
させた。 前記40%冷エタノールの組成はPBS:エ
タノールが6:4である。
ム(1塩基)・2 H2O0,4g 燐酸ナトリウム(2塩基)・12H202,54g 蒸留水 17にとなる量(pH=7
.2) 回収された上層液に30〜40%の冷エタノールを同量
添加し、40℃で16〜20時間放置して蛋白質を沈澱
させた。 前記40%冷エタノールの組成はPBS:エ
タノールが6:4である。
前記溶液を300Orpmで30分間遠心分離して沈澱
物を回収し、該沈澱物に上記において最初使用した量と
同量の希釈液[PBS (pH7,2)]を加えて希釈
した。次いで、混合機で混合してウィルスを抽出した陵
、5000ppmで30分間遠心分離させて上層液を回
収し、上層液に0.1〜0.5mg/m1となるようプ
ロタミンスルフエイト水溶液を加えて1〜2時間【こ亘
って撹拌させ、5000rpmで30分間遠心分離して
上層液を中間原料として回収する。
物を回収し、該沈澱物に上記において最初使用した量と
同量の希釈液[PBS (pH7,2)]を加えて希釈
した。次いで、混合機で混合してウィルスを抽出した陵
、5000ppmで30分間遠心分離させて上層液を回
収し、上層液に0.1〜0.5mg/m1となるようプ
ロタミンスルフエイト水溶液を加えて1〜2時間【こ亘
って撹拌させ、5000rpmで30分間遠心分離して
上層液を中間原料として回収する。
上記中間原料を通常の方法、例えば、ホルムアルデヒド
で処理するか又は熱処理して不活化させ、水酸化アルミ
ニウムゲルを500m g / m 1となるよう添加
して所望のワクチンを得た。
で処理するか又は熱処理して不活化させ、水酸化アルミ
ニウムゲルを500m g / m 1となるよう添加
して所望のワクチンを得た。
上記不活化工程において、ホルムアルデヒドを使用する
場合には0.01〜0.05%の懸濁液の濃度で15日
間処理することが望ましく、熱処理する場合には60℃
で30分間処理することが望ましい。 前者の工程では
4℃以下の温度を維持させることが望ましい。
場合には0.01〜0.05%の懸濁液の濃度で15日
間処理することが望ましく、熱処理する場合には60℃
で30分間処理することが望ましい。 前者の工程では
4℃以下の温度を維持させることが望ましい。
[実施例]
以下に、実施例を挙げ、本発明をさらに詳しく説明する
が、本発明はなんらこれら実施例に制約されるものでは
ない。
が、本発明はなんらこれら実施例に制約されるものでは
ない。
実施例 1
ハンタンウィルスワクチン:
(1)ハンタンウィルスの製造
1日齢の哺乳マウスにハンタンウィルスROK 84
/104菌株を接種し、約10日間飼育した徨、完全に
麻痺を引き起したマウスの頭部を切開し脳を採取した。
/104菌株を接種し、約10日間飼育した徨、完全に
麻痺を引き起したマウスの頭部を切開し脳を採取した。
採取した脳の重量に対して4倍量の燐酸塩1iyj、養
液(pH7,2)を添加して乳化させ、3000rpm
で20分間遠心分離し、上層液をウィルス液として取得
した。該ウィルス液の感染性を知るために致死率を測定
した。 この結果、該ウィルスの致死率(LDso)は
10−9・6 B 、 、、、 lであった。なお、測
定方法は次の通りであった。
液(pH7,2)を添加して乳化させ、3000rpm
で20分間遠心分離し、上層液をウィルス液として取得
した。該ウィルス液の感染性を知るために致死率を測定
した。 この結果、該ウィルスの致死率(LDso)は
10−9・6 B 、 、、、 lであった。なお、測
定方法は次の通りであった。
■ 1日齢の哺乳マウスを選択した。
■ウィルス液を緩衝希釈液で10−2乃至10−9に段
階希釈する。
階希釈する。
■各段階のウィルス希釈液を、適当数の哺乳マウスに各
々0.02 m lづつ接種する。
々0.02 m lづつ接種する。
■接種後20日間観察し、症状が現われてへい死するマ
ウスの数を記録する。
ウスの数を記録する。
■へい死したマウスの数が接種したマウスの1/2とな
る希釈液温度を求める。
る希釈液温度を求める。
■希釈液の濃度を求めてリードアンドミュンヒ法(Re
ad and Muench)に依りLD、。を求める
。
ad and Muench)に依りLD、。を求める
。
その結果を下記第1表及び第2表に示した。
(以下余白)
第 2 表
マウスの致死率(LDsa)
In対数
(匹)
(匹)
総致死数 4生存数 致 死 車
(匹) (匹) 比率
%
−29078078/78100
−3 13 0 69
0 69/69100−5 15 0
39 0 39/39100−6
12 1 24 1
24/25 96−7 5 8
12 9 12/21 57−
8 3 6 7 15
7/22 32−9 4 19
4 34 4/38 11
*ウィルス希釈倍数は、10を底とする対数の指数で示
した。従って、−2及び−3は各々ウィルスを100倍
及び1000倍に希釈したことをN味する。
0 69/69100−5 15 0
39 0 39/39100−6
12 1 24 1
24/25 96−7 5 8
12 9 12/21 57−
8 3 6 7 15
7/22 32−9 4 19
4 34 4/38 11
*ウィルス希釈倍数は、10を底とする対数の指数で示
した。従って、−2及び−3は各々ウィルスを100倍
及び1000倍に希釈したことをN味する。
第2表から、L I)5o= 10−”・口e/ m
1である。
1である。
前記ウィルス抗原の力価は、8,192u n i t
70 、1m lであった。なお、その力価は次の方
法で測定した。
70 、1m lであった。なお、その力価は次の方
法で測定した。
測定は、プレートとしてポリビニルボトム96を、4I
il希釈液としてシグマ・ダイアゴノステックス社製の
コーティング緩衝液(PBS)を、緩衝液として洗浄緩
衛液(PBS+0.1%TWEEN 20) 、希釈緩
衝液(F’BS+0.1%TWEEN 20 + 2
、5%Ravine 5eru@+ 0 、1%thi
merosal )を各々使用するE、IA法により行
なった。
il希釈液としてシグマ・ダイアゴノステックス社製の
コーティング緩衝液(PBS)を、緩衝液として洗浄緩
衛液(PBS+0.1%TWEEN 20) 、希釈緩
衝液(F’BS+0.1%TWEEN 20 + 2
、5%Ravine 5eru@+ 0 、1%thi
merosal )を各々使用するE、IA法により行
なった。
■プレートのコーティングは緬羊由来抗ヒト免疫グロブ
リンM (Goat Antihulan IgM)を
希釈緩衝液で500倍希釈してプレートウェル当910
0μmづつ加え、40℃で16〜20時間反応させた。
リンM (Goat Antihulan IgM)を
希釈緩衝液で500倍希釈してプレートウェル当910
0μmづつ加え、40℃で16〜20時間反応させた。
緬羊由来抗ヒト免疫グロブリンM抗体はTago社製
で、総蛋白量は、1.15mg/mlであった。
で、総蛋白量は、1.15mg/mlであった。
■前記プレートを洗浄緩衝液で3回洗浄し、人体から分
離された陽性血清を最終EIA力価16unitとなる
ように希釈してプレートウェル当9100μmづつ加え
た復、37℃のインキュベーターで1時間反応させた。
離された陽性血清を最終EIA力価16unitとなる
ように希釈してプレートウェル当9100μmづつ加え
た復、37℃のインキュベーターで1時間反応させた。
■プレートを洗浄緩衝液で3回洗浄した後、ウィルス液
を2倍段階希釈してプレートウェル当9100μlづつ
加えた後、37℃のインキュベーターで1時間反応させ
る。
を2倍段階希釈してプレートウェル当9100μlづつ
加えた後、37℃のインキュベーターで1時間反応させ
る。
■上記■のプレートを洗浄1i!1gB液で3回洗浄し
、ラビットのアンチーハンタンウィルス抗体を希釈緩衝
液で3000倍希釈して、プレートウェル当9100μ
lづつ加えた復、37℃のインキュベーターで1時間反
応させた。 この時のラビットアンチーハンタンウィル
ス抗体のEIA力価は4であった。
、ラビットのアンチーハンタンウィルス抗体を希釈緩衝
液で3000倍希釈して、プレートウェル当9100μ
lづつ加えた復、37℃のインキュベーターで1時間反
応させた。 この時のラビットアンチーハンタンウィル
ス抗体のEIA力価は4であった。
■■のプレートを洗浄緩衝液で3回洗浄し、酵素コンジ
ュゲートアンチ−ラビットを希釈緩衝液で1000倍希
釈してプレートウェル当9100μmづつ加えた(麦、
37℃のインキュベーターで1時間反応させる。 この
酵素コンジュゲートとしては、KPL社製で、蛋白含量
が0.1mgであり、ペルオキシダーゼで標識され、ア
フィニティで精製された緬羊由来ヒトエgM抗体 (p
eroxidaselabeled affinity
purified antibody t。
ュゲートアンチ−ラビットを希釈緩衝液で1000倍希
釈してプレートウェル当9100μmづつ加えた(麦、
37℃のインキュベーターで1時間反応させる。 この
酵素コンジュゲートとしては、KPL社製で、蛋白含量
が0.1mgであり、ペルオキシダーゼで標識され、ア
フィニティで精製された緬羊由来ヒトエgM抗体 (p
eroxidaselabeled affinity
purified antibody t。
huo+an rgM goat)を使用した。
■前記プレートを洗浄緩衝液で洗浄し、基質をプレート
ウェル当9100μmづつ加えた後、37℃のインキュ
ベーターで30分間反応させる。使用した基質はABT
Sであって、過酸化酵素基質溶液A (2,2−azi
no−dl−3−ethyl−benzthiazol
e 5ulfonate)と過酸化酵素基質溶液B(過
酸化水素)を1=1で混合して得たものである。
ウェル当9100μmづつ加えた後、37℃のインキュ
ベーターで30分間反応させる。使用した基質はABT
Sであって、過酸化酵素基質溶液A (2,2−azi
no−dl−3−ethyl−benzthiazol
e 5ulfonate)と過酸化酵素基質溶液B(過
酸化水素)を1=1で混合して得たものである。
■上記■で得たプレートを肉眼または
ELISA判読機を使用して405〜415nmで判読
した。
した。
■限界値(threshold value )は、公
知の対照陰性血清値の算術平均値に標準偏差の3倍値を
合算したものである。
知の対照陰性血清値の算術平均値に標準偏差の3倍値を
合算したものである。
その結果、ウィルスの力価は8,192であった。
(2)エタノール処理
前記ウィルス液を各種エタノール濃度で処理して最適濃
度を選択した。すなわち、各々15%、20%、30%
、40%の濃度エタノールで処理し、4℃で16〜20
時間放置した徨、12.00Orpmで30分間遠心分
離して上層液と沈澱物のEIA力価を算出してその結果
を第3表に示した。
度を選択した。すなわち、各々15%、20%、30%
、40%の濃度エタノールで処理し、4℃で16〜20
時間放置した徨、12.00Orpmで30分間遠心分
離して上層液と沈澱物のEIA力価を算出してその結果
を第3表に示した。
各種エタノール濃度におけるEIA力価濃度
沈澱物
上層液
15%
20%
30%
40%
1.024
1.024
1.024
1.024
エタノール処理後、60℃で30分間不活化させ、ラッ
トに接種し抗原性を比較検査して第4表に示した。
トに接種し抗原性を比較検査して第4表に示した。
第 5 表
エタノール処理後、60℃で30分間熱処理して不活化
後、ラットに接種したときの免疫蛍光抗体価 濃度 14日 21日 28日 15% 32 64 64
20% 128 256 512
30% 512 1024 204840
% 512 512 256上記第
3〜5表より、30%エタノール潰度が抗原の回収率と
抗体型成立とが最も優秀であった。従って、ウィルス液
は30%エタノール濃度で処理することが望ましい。
後、ラットに接種したときの免疫蛍光抗体価 濃度 14日 21日 28日 15% 32 64 64
20% 128 256 512
30% 512 1024 204840
% 512 512 256上記第
3〜5表より、30%エタノール潰度が抗原の回収率と
抗体型成立とが最も優秀であった。従って、ウィルス液
は30%エタノール濃度で処理することが望ましい。
(3)プロタミンスルフェート処理
上記エタノール処理ウィルス液を種々のプロタミンスル
フェート濃度で処理して最適濃度を選択した。 すなわ
ち、エタノール処理が絆わったウィルス液を、各々0.
1mg/m1.0 、2 m g / m l、0 、
3 m g / m 1.0 、4 m g / m
1.0.7mg/ml、1.0m g / m 1 濃
度のプロタミンスルフェートで処理した後、4℃で2時
間放置し、30分間18、OOOrpmで遠心分離し、
上層液のEIA力価を検査した。 その結果を第1図に
示した。
フェート濃度で処理して最適濃度を選択した。 すなわ
ち、エタノール処理が絆わったウィルス液を、各々0.
1mg/m1.0 、2 m g / m l、0 、
3 m g / m 1.0 、4 m g / m
1.0.7mg/ml、1.0m g / m 1 濃
度のプロタミンスルフェートで処理した後、4℃で2時
間放置し、30分間18、OOOrpmで遠心分離し、
上層液のEIA力価を検査した。 その結果を第1図に
示した。
(4)不活化工程
上記ウィルス液を0.05%ホルマリン溶液で処理して
、処理期間に伴なう致死率(LDlao>の変化と感染
率(IDao)を観察した。
、処理期間に伴なう致死率(LDlao>の変化と感染
率(IDao)を観察した。
1日齢の哺乳マウスを使用してホルマリン処理直後およ
び4日経過後、7日経過後、9日経過後、10日経過後
のウィルス液を10倍段階希釈してマウスに接種した。
び4日経過後、7日経過後、9日経過後、10日経過後
のウィルス液を10倍段階希釈してマウスに接種した。
これに伴なうマウス致死率は次の第6表の濃度希釈倍数
を使用し、その結果、マウスの致死率は第2図に、感染
率は第3図に示した。
を使用し、その結果、マウスの致死率は第2図に、感染
率は第3図に示した。
第2図及び第3図より、本発明のハンタンウイルスを0
.05%のホルマリンで10日以上不活化させた時感染
がなかった。また、本発明のハンタンウィルスを0.0
5%のホルマリンで14日間不活化させ、ラットに接種
した時の抗原性を比較検討し、その結果を第7表に示し
た。
.05%のホルマリンで10日以上不活化させた時感染
がなかった。また、本発明のハンタンウィルスを0.0
5%のホルマリンで14日間不活化させ、ラットに接種
した時の抗原性を比較検討し、その結果を第7表に示し
た。
第 7 表
ROK 84/105 (MBVl 株をラットにti
ff117)tftff性t1 種 実験動物 投与経路 実験番号 免疫蛍光抗体21
日 28日 10K 847105(IIBY)
1 256 256ホル
マリン SDラット 0.5■l/Ill
3 64 12814日間処理
4 128 25
6上記第6〜7表から知りえるように、本発明のハンタ
ンウィルスROK 84/105をホルマリンで10
日以上不活化させ、マウスの脳に接種したとき、へい死
したマウスは1匹もなかった。また、投与30日8にそ
のマウスの脳組織のウィルス感染の有無を間接免疫蛍光
法でi=した結果、ウィルスの感染は確認しえなかった
。
ff117)tftff性t1 種 実験動物 投与経路 実験番号 免疫蛍光抗体21
日 28日 10K 847105(IIBY)
1 256 256ホル
マリン SDラット 0.5■l/Ill
3 64 12814日間処理
4 128 25
6上記第6〜7表から知りえるように、本発明のハンタ
ンウィルスROK 84/105をホルマリンで10
日以上不活化させ、マウスの脳に接種したとき、へい死
したマウスは1匹もなかった。また、投与30日8にそ
のマウスの脳組織のウィルス感染の有無を間接免疫蛍光
法でi=した結果、ウィルスの感染は確認しえなかった
。
従って、本発明のハンタンウィルスROK84/105
は完全に不活化したことをW1認した。
は完全に不活化したことをW1認した。
(5)補助剤処理工程
ホルマリンで不活化した本発明のハンタンウイルスRO
K 84/105に、補助剤として水酸化アルミニウ
ムゲルを添加し、4℃で15日間静置した。これをラッ
トに0.5ml/匹を筋肉接種してEIA力価を測定し
た。
K 84/105に、補助剤として水酸化アルミニウ
ムゲルを添加し、4℃で15日間静置した。これをラッ
トに0.5ml/匹を筋肉接種してEIA力価を測定し
た。
その結果を次の第8表、第9表及び第4図、第5図に示
した。
した。
(以下余白)
補助剤処理後のEIA力価
水酸化アルミニウムゲル
(250mg/ml)
水酸化アルミニウムゲル
(50[1mg/m1)
2.048
2.048
1.024
以
上記第8〜9表及び第3〜4図とから、抗体の生成のた
めには本発明のハンタンウィルスROK 84/10
5を補助剤としてアルミニウムゲル500mg/mlで
処理することが最も満足の行く方法であることを知りえ
る。
めには本発明のハンタンウィルスROK 84/10
5を補助剤としてアルミニウムゲル500mg/mlで
処理することが最も満足の行く方法であることを知りえ
る。
第 10 表
試験例 1゜
ハンタンウィルスワクチンの動物実験:(1)ラットに
おける投与量決定実験 上記実施例1において製造されたハンタンウイルスワク
チンを各種の力価(EIAAntigen Titer
)でラットに接種して最適量を決定した。
おける投与量決定実験 上記実施例1において製造されたハンタンウイルスワク
チンを各種の力価(EIAAntigen Titer
)でラットに接種して最適量を決定した。
ラットを本発明のハンタンウィルスワクチンで免疫した
後、一定期量刑抗体生成程度を間接免疫蛍光抗体法によ
りW1認した。 ハンタンウィルスワクチンをSDラッ
トに筋肉注射した。 抗体反応の結果を第10表に示し
た。
後、一定期量刑抗体生成程度を間接免疫蛍光抗体法によ
りW1認した。 ハンタンウィルスワクチンをSDラッ
トに筋肉注射した。 抗体反応の結果を第10表に示し
た。
上記第10表から、本発明のワクチンを512 EI
A力価以上接種した場合に抗体が生成されることを確認
した。
A力価以上接種した場合に抗体が生成されることを確認
した。
(2)抗体の増幅(Booster )実験本発明ワク
チンはラットに一次接種後、ケ月程度まで抗体の生成が
増加し、その後抗体の生成が減少することを見出した。
チンはラットに一次接種後、ケ月程度まで抗体の生成が
増加し、その後抗体の生成が減少することを見出した。
約45〜60日の間に二次接種すれば抗体の生成が顕
著に増加する。 その結果を第5図に示した。
著に増加する。 その結果を第5図に示した。
(3)ハンタンウィルスワクチンの安全性試験
本発明のワクチンの安全性を検査するために、哺乳マウ
スの脳に本発明のワクチンを0.2mlづつ接種し、マ
ウスの健康状態を30日間観察した。4 接種30日後
にマウスの頭部を切開して脳を採取し、これを−30℃
のクリオスタット(Cryostat )で0.4μm
に切断して組織切片を作る。
スの脳に本発明のワクチンを0.2mlづつ接種し、マ
ウスの健康状態を30日間観察した。4 接種30日後
にマウスの頭部を切開して脳を採取し、これを−30℃
のクリオスタット(Cryostat )で0.4μm
に切断して組織切片を作る。
アセトンで固定した後、16ユニツト/滴の出血熱意者
の血清を一次反応させ、次いでFITC結合抗ヒトガン
マグロブリン 8ユニット/滴を加えて二次反応させ、
ウィルスの増殖を蛍光顕微鏡で観察した。 その結果、
脳内におけるウィルス増殖が確認されなかった。このマ
ウスの脳を更に乳化して20%溶液にした徨、哺乳マウ
スの脳に接種し、上記と同様な方法で検査した。
の血清を一次反応させ、次いでFITC結合抗ヒトガン
マグロブリン 8ユニット/滴を加えて二次反応させ、
ウィルスの増殖を蛍光顕微鏡で観察した。 その結果、
脳内におけるウィルス増殖が確認されなかった。このマ
ウスの脳を更に乳化して20%溶液にした徨、哺乳マウ
スの脳に接種し、上記と同様な方法で検査した。
その結果、ウィルスの増殖は確認されず、マウス麻痺も
惹き起こさなかった。
惹き起こさなかった。
従って、本発明のハンタンウィルスワクチンは完全に不
活化されたことを確認し、無毒が証明された。
活化されたことを確認し、無毒が証明された。
第1図は、本発明の実施例1中、プロタミンスルフェー
ト処理量による上層液のEIA力価を示す図面である。 第2図は、ハンタンウィルスのホルマリン処理期間によ
るマウスの致死率(LD5゜)を示す図面である。 第3図は、ハンタンウィルスのホルマリン処理期間によ
るマウスの感染率(ID50)を示す図面である。 第4図は、補助剤量による免疫蛍光体(1F)の生成曲
線を示す図面である。 第5図は、水酸化アルミニウムゲルで吸着させたROK 84/10 (MBV) を接 種したラッ トの水酸化アルミニウムの量によ る免疫蛍光抗体生成曲線を示す図面である。 以 上 出 願 人 株式会社 緑 十 字 第 図 (0,05% ホルマリンと混合したハンタンワイルスワクナンノ第 図 プロタミンスルフェート量 第 図 手続補 (自発) 平成2年2月7日 6、補正の対象 明細書の「発明の詳細な説明」の掴
ト処理量による上層液のEIA力価を示す図面である。 第2図は、ハンタンウィルスのホルマリン処理期間によ
るマウスの致死率(LD5゜)を示す図面である。 第3図は、ハンタンウィルスのホルマリン処理期間によ
るマウスの感染率(ID50)を示す図面である。 第4図は、補助剤量による免疫蛍光体(1F)の生成曲
線を示す図面である。 第5図は、水酸化アルミニウムゲルで吸着させたROK 84/10 (MBV) を接 種したラッ トの水酸化アルミニウムの量によ る免疫蛍光抗体生成曲線を示す図面である。 以 上 出 願 人 株式会社 緑 十 字 第 図 (0,05% ホルマリンと混合したハンタンワイルスワクナンノ第 図 プロタミンスルフェート量 第 図 手続補 (自発) 平成2年2月7日 6、補正の対象 明細書の「発明の詳細な説明」の掴
Claims (9)
- (1)下記の特性を有するハンタンウィルスROK84
/105菌株 A、ビリオン粒子 球形又は楕円形、直径約95nm、 RNA B、エンベロープ リポ蛋白のエンベロープで囲まれてお り、5〜10nmの大きさの多数の繊 維状物が突出されている。 C、構造 [1]単一螺旋 [2]3個の分節 [3]陰性反応RNAゲノム [4]全分子量:4.5×10^6 [5]3個のウィラルニュクレオカプシド [6]2個のウィルス特異糖蛋白 D、ウィルス増殖 感染細胞の細胞質 E、特性 本発明の新規ウィルスであるハンタン ウィルスROK84/105株は公 知のハンタンウィルス76−118 株とは下記のような相異なる特性を示 す。 [1]ウィルスの力価がVeroE_6細 胞で10^7^.^2/mlである。 [2]ウィルスの力価が哺乳マウス脳で 100^9^.^8/mlである。 [3]ウィルスの力価が哺乳ラットの脳で 100^9^.^3/mlである。 以上のようにこのウィルスは鼠に対 する病原性が強くウィルス接種後7〜 12日の間に鼠が死亡する。 [4]このウィルスはICR哺乳マウスに 接種すればウィルスの増殖が他のウィ ルスより速く起こり、抗体がウィルス 接種後5日目よりあらわれ、10日頃 には2,000以上に達する。 [5]このウィルスをSDラットに接種す ればウィルス接種後7日に抗体が検出 される。 [6]このウィルスをVeroE_6細胞 で培養すれば他のウィルスに比べて大 きいサイズである0.3cm内外のプラ ークを観察し得る。 - (2)ハンタンウィルスROK84/ 105菌株をマウスあるいはラットに接 種して増殖させた後、マウスあるいはラ ットの組織を採取し、この組織をエチル アルコールとプロタミンスルフェート溶 液で処理して精製、不活化させ、更に補 助剤を添加することにより製造されるハ ンタンウィルスワクチン。
- (3)エチルアルコール処理が30〜40%濃度のエチ
ルアルコール溶液でおこなわ れる請求項第2項記載のハンタンウィル スワクチン。 - (4)プロタミンスルフェート処理が0.1〜0.5m
g/ml濃度のプロタミンスルフェートの溶液でおこな
われる請求項第2項 記載のワクチン。 - (5)不活化が、0.01〜0.05%となるようなホ
ルマリンの添加および4℃での 10日以上の放置によりおこなわれる請 求項第2項記載のワクチン。 - (6)不活化が、60℃での30分間の熱処理によりお
こなわれる請求項第2項記載 のワクチン。 - (7)マウスあるいはラットとして1日齢の哺乳マウス
あるいは哺乳ラットを使用す る請求項第2項記載のワクチン。 - (8)ハンタンウィルスROK84/ 105菌株をマウスあるいはラットに接 種して増殖させ、次いでマウスあるいは ラットの組織を採取し、この組織をエチ ルアルコールとプロタミンスルフェート 溶液で処理して精製し、更に不活化させ ることを特徴とするハンタンウィルスワ クチンの製造法。
- (9)不活化後、更に補助剤を添加することを特徴とす
る請求項第8項記載のハンタ ンウィルスワクチンの製造法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
KR1019880015199A KR900007952B1 (ko) | 1988-11-18 | 1988-11-18 | 신규의 한탄바이러스 rok84/105 균주 및 이를 이용한 한탄바이러스 백신의 제조방법 |
KR15199/1988 | 1988-11-18 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH02242674A true JPH02242674A (ja) | 1990-09-27 |
JPH0553475B2 JPH0553475B2 (ja) | 1993-08-10 |
Family
ID=19279386
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP1296309A Granted JPH02242674A (ja) | 1988-11-18 | 1989-11-16 | 新規ハンタンウイルス rok 84/105菌株、そのウイルスワクチン及びその製造方法 |
Country Status (5)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US5183658A (ja) |
JP (1) | JPH02242674A (ja) |
KR (1) | KR900007952B1 (ja) |
HU (1) | HU206050B (ja) |
YU (1) | YU219189A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH0622758A (ja) * | 1992-03-27 | 1994-02-01 | Mogam Biotechnol Res Inst | 新規な新症候出血熱ワクチンおよびその製造方法 |
Families Citing this family (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
AU7179094A (en) * | 1993-06-24 | 1995-01-17 | United States Of America, As Represented By The Secretary, Department Of Health And Human Services | Nucleic acids of a novel hantavirus and reagents for detection and prevention of infection |
WO1997027302A1 (fr) * | 1996-01-25 | 1997-07-31 | Cheil Jedang Corporation | Vaccin contenant une proteine du capside nucleique du virus d'origine humaine dit 'hantaan', exprimee par escherichia coli |
US20020077276A1 (en) * | 1999-04-27 | 2002-06-20 | Fredeking Terry M. | Compositions and methods for treating hemorrhagic virus infections and other disorders |
SE0100011D0 (sv) * | 2001-01-03 | 2001-01-03 | Eurocine Ab Karolinska Inst Sc | Virus vaccine formulation |
PL212483B1 (pl) * | 2002-09-27 | 2012-10-31 | Powderject Res Ltd | Sposób wytwarzania czasteczek, czasteczki odpowiednie do dostarczania, pojemnik, urzadzenie do dostarczania czasteczek i zastosowanie tych czasteczek |
-
1988
- 1988-11-18 KR KR1019880015199A patent/KR900007952B1/ko not_active IP Right Cessation
-
1989
- 1989-11-16 JP JP1296309A patent/JPH02242674A/ja active Granted
- 1989-11-16 US US07/438,327 patent/US5183658A/en not_active Expired - Lifetime
- 1989-11-17 YU YU219189A patent/YU219189A/sh unknown
- 1989-11-17 HU HU895956A patent/HU206050B/hu not_active IP Right Cessation
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JP2527525B2 (ja) * | 1992-03-27 | 1996-08-28 | 財團法人 牧岩生命工學研究所 | 新規な新症候出血熱ワクチンおよびその製造方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
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