JPH02195892A - 新規化合物リューアラシン - Google Patents
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は、新規化合物り豆−アラジン
(Leualacin)、その製造法およびそれを有効
成分とするカルシウム拮抗剤に関する。
成分とするカルシウム拮抗剤に関する。
(従来の技術)
心筋または血管平滑筋細胞が電気的に興奮する際、膜電
位依存性のCa 2 + 4オンの流入が起こるが、ジ
ヒドロピリジン感受性カルシウムチャンネルは、骨格筋
や心筋の細胞表層に位置し、細胞内へのカルシウムイオ
ンの流入を調節する役割を果たしている。
位依存性のCa 2 + 4オンの流入が起こるが、ジ
ヒドロピリジン感受性カルシウムチャンネルは、骨格筋
や心筋の細胞表層に位置し、細胞内へのカルシウムイオ
ンの流入を調節する役割を果たしている。
ベラパミル「商品名「ワラソン」:エーザイ(株)製]
等の既存のカルシウムブロッカ−は、3H−ニトレンジ
ピンの細胞膜カルシウムチャンネルへの結合を阻害する
ことが明らかにされている。
等の既存のカルシウムブロッカ−は、3H−ニトレンジ
ピンの細胞膜カルシウムチャンネルへの結合を阻害する
ことが明らかにされている。
従ってニトレンジピンの細胞膜カルシウムチャンネルへ
の結合を阻害する物質はカルシウムブロッカ−として有
用である。
の結合を阻害する物質はカルシウムブロッカ−として有
用である。
カルシウムブロッカ−は、カルシウムチャンネルをブロ
ックすることで細胞内カルシウム濃度の上昇をおさえ、
冠動脈スパスムの防止、血管拡張作用がある。そしてカ
ルシウムブロッカ−1即ち、カルシウム拮抗剤は、例え
ば狭心症、高血圧症などの治療薬として有用であること
が知られている。
ックすることで細胞内カルシウム濃度の上昇をおさえ、
冠動脈スパスムの防止、血管拡張作用がある。そしてカ
ルシウムブロッカ−1即ち、カルシウム拮抗剤は、例え
ば狭心症、高血圧症などの治療薬として有用であること
が知られている。
カルシウム拮抗作用を有する薬物として従来、ニフェジ
ピン[商品名「アダラード」:バイエル薬品(株)製]
、ジルチアゼム[商品名「ヘルベツサー」:田辺製薬(
株)製]、ベラパミルし商品名「ワラソン」:エーザイ
(株)製]などが知られており実用に供されている。し
かしながらこれらはいずれも化学合成品であり天然物で
カルシウム拮抗作用を有するものとしては藻から単離さ
れた環状ペプチドのシトネミンA [”Scytone
min A”Journal of Organic
CllemiC11e、 53J1298−1307
゜(1988) ]が知られているにすぎず、更にこれ
は未だ実用に供されていない。
ピン[商品名「アダラード」:バイエル薬品(株)製]
、ジルチアゼム[商品名「ヘルベツサー」:田辺製薬(
株)製]、ベラパミルし商品名「ワラソン」:エーザイ
(株)製]などが知られており実用に供されている。し
かしながらこれらはいずれも化学合成品であり天然物で
カルシウム拮抗作用を有するものとしては藻から単離さ
れた環状ペプチドのシトネミンA [”Scytone
min A”Journal of Organic
CllemiC11e、 53J1298−1307
゜(1988) ]が知られているにすぎず、更にこれ
は未だ実用に供されていない。
(発明が解決しようとする課題〉
本発明者らは、土壌より分離したハプシドスポラ属に属
する5ANK 17182株の培養物から、カルシウム
拮抗作用を有する新規化合物リューアラシンが生産され
ることを見出して本発明を完成した。
する5ANK 17182株の培養物から、カルシウム
拮抗作用を有する新規化合物リューアラシンが生産され
ることを見出して本発明を完成した。
(課題を解決しようとする手段)
本発明のリューアラシン[化学名:11−ベンジル−2
,5,8−トリイソブチル−10−メチル−1,7−シ
オキサー4.10.13−1〜リアザシクロヘキサデカ
ン−3,6,9,12,16−ベントン(11−ben
zyl−2、5,8−triisobutyl−10−
methyl−1,7−dioxa−4,10゜13−
triazacyclohexadecane−3,6
,9,12,16−penton) ]は下記の構造式
および性状を有する。
,5,8−トリイソブチル−10−メチル−1,7−シ
オキサー4.10.13−1〜リアザシクロヘキサデカ
ン−3,6,9,12,16−ベントン(11−ben
zyl−2、5,8−triisobutyl−10−
methyl−1,7−dioxa−4,10゜13−
triazacyclohexadecane−3,6
,9,12,16−penton) ]は下記の構造式
および性状を有する。
1)構造式
2)物質の性状:中性、脂溶性
3)融点: 140℃
4)比旋光度:[α]o 102°(cl、14、M
eOH)5)元素分析: 実測値 C64,65% 88.33% N7.21%
計算値 C64,90% 88.26% N7.32%
6)分子量: 573 (質量分析法により測定)
7)分子式: C31H47N307(高分解能質量
分析スペクトル法により測定)8)紫外線吸収スペクト
ル: メタノール中で測定した紫外線吸収スペクトルは、第1
図に示す通りである。
eOH)5)元素分析: 実測値 C64,65% 88.33% N7.21%
計算値 C64,90% 88.26% N7.32%
6)分子量: 573 (質量分析法により測定)
7)分子式: C31H47N307(高分解能質量
分析スペクトル法により測定)8)紫外線吸収スペクト
ル: メタノール中で測定した紫外線吸収スペクトルは、第1
図に示す通りである。
9)赤外線吸収スペクトル:
臭化カリウム(KBr )錠剤法で測定した赤外線吸収
スペクトルは、第2図に示す通りである。
スペクトルは、第2図に示す通りである。
10) ”C−NMRスペクトル:
重クロロホルム中、内部基準にテトラメチルシランを使
用して測定した核磁気共鳴スペクトル(125MHz)
は、第3図に示す通りである。実験条件で重クロロホル
ムの中央のシグナルは77、 lppmに発現した。ま
たマススペクトルデータと一致して31個の炭素が観察
された。
用して測定した核磁気共鳴スペクトル(125MHz)
は、第3図に示す通りである。実験条件で重クロロホル
ムの中央のシグナルは77、 lppmに発現した。ま
たマススペクトルデータと一致して31個の炭素が観察
された。
11) ’H−NMRスペクトル:
重クロロホルム中、内部基準にテトラメチルシランを使
用して測定した核磁気共嶋スペクトル(270λ(Hz
)は、第4図に示す通りである。
用して測定した核磁気共嶋スペクトル(270λ(Hz
)は、第4図に示す通りである。
12)溶解性:
メタノール、アセトン、クロロホルム、酢酸エチルに可
溶、水に不溶。
溶、水に不溶。
13)高速液体クロマトグラフィー:
分離カラム;ラジアルパック・ツバパックカートリッジ
C18、粒子径4μm。
C18、粒子径4μm。
カラムサイズ8 mm X 10 cm(ウォーターズ
社製) 移動相;アセトニトリル:水=7:3 流速; 2 m17分 検出波長;UV210nm カラム温度25℃のとき5,7分にピークを観測するこ
とが出来た。
社製) 移動相;アセトニトリル:水=7:3 流速; 2 m17分 検出波長;UV210nm カラム温度25℃のとき5,7分にピークを観測するこ
とが出来た。
14)酸加水分解:
酸加水分解によりアミノ酸としてロイシン、N−メチル
フェニルアラニン、β−アラニン及びロイシン酸を与え
る。
フェニルアラニン、β−アラニン及びロイシン酸を与え
る。
本発明のリューアラシンは種々の異性体を有する。前記
式においては、これらの異性体およびこれらの異性体の
混合物がすべて単一の式で示されている。従って、本発
明においてはこれらの異性体およびこれらの異性体の混
合物をもすべて含むものである。
式においては、これらの異性体およびこれらの異性体の
混合物がすべて単一の式で示されている。従って、本発
明においてはこれらの異性体およびこれらの異性体の混
合物をもすべて含むものである。
リューアラシンの生産菌である5ANK 17182
株の菌学的性状は次の通りである。
株の菌学的性状は次の通りである。
1)形態学的特徴
本発明の、リューアラシンを生産する上記5ANK 1
7182株はネパール王国、マニガオンの土壌より分離
された子のう菌の一種でその菌学的性質は次の通りであ
る。
7182株はネパール王国、マニガオンの土壌より分離
された子のう菌の一種でその菌学的性質は次の通りであ
る。
ワイツマン寒天培地上における生育は遅く25℃、7日
間でコロニーの直径は15 mm、14日間で35 m
mに達する。コロニーは平坦で泊色(White、 1
−1−A)乃至淡黄白色(Yellowishwhit
e、 1−2−A)である。コロニーの裏面も無色乃至
淡黄白色である。
間でコロニーの直径は15 mm、14日間で35 m
mに達する。コロニーは平坦で泊色(White、 1
−1−A)乃至淡黄白色(Yellowishwhit
e、 1−2−A)である。コロニーの裏面も無色乃至
淡黄白色である。
子のう果は、暗褐色でコロニーの中央部にわずかに形成
される。
される。
子のう果は、表在性で球形ないし亜球形で口孔はなく、
暗褐色でその径は250−400μmである。
暗褐色でその径は250−400μmである。
子のうは、8胞子性で球形ないし亜球形、半透明、消失
性でその径は8−15μmである。
性でその径は8−15μmである。
子のう胞子は球形で、表面は網目状であり、暗褐色で発
芽孔は認められずその径は4−6μmである。
芽孔は認められずその径は4−6μmである。
アナモルフは、アクレモニウム(Acremonium
)で分生子はフィアライドの先端に球状にかたまって形
成される。
)で分生子はフィアライドの先端に球状にかたまって形
成される。
分生子は無色、半透明で楕円形ないし長円形で3.5−
10.Ox 2.0−3゜5μmである。
10.Ox 2.0−3゜5μmである。
以上の諸形状から既知菌株のそれらと比較検討したとこ
ろ、D、 Mal 1och及びR,F、 Ca1rl
著[CanadianJournal of Bota
ny、 48.1815−1825 (1970)]に
記載されているハブシドスポーイ上」ξLプ刀ノ、とよ
く一致した。従って本菌を公知菌ハブシドス本プ不にぎ
jう刃区マロツクエツトケイン(Ha 5idos o
ra kコ幻山tris Malloch et C,
tin)と同定し、保存番号として5ANK 1718
2 (w、工研条寄第2511号、 FERl、(B
P−2511)を付与した。なお色の表示は、A、 K
ornerup及びJ、 H,Wanscher著「λ
イethuen f(andbook of colo
ur、第3版、1978年、Eyre Methuen
、 London発行コに従って行なった。
ろ、D、 Mal 1och及びR,F、 Ca1rl
著[CanadianJournal of Bota
ny、 48.1815−1825 (1970)]に
記載されているハブシドスポーイ上」ξLプ刀ノ、とよ
く一致した。従って本菌を公知菌ハブシドス本プ不にぎ
jう刃区マロツクエツトケイン(Ha 5idos o
ra kコ幻山tris Malloch et C,
tin)と同定し、保存番号として5ANK 1718
2 (w、工研条寄第2511号、 FERl、(B
P−2511)を付与した。なお色の表示は、A、 K
ornerup及びJ、 H,Wanscher著「λ
イethuen f(andbook of colo
ur、第3版、1978年、Eyre Methuen
、 London発行コに従って行なった。
以上、リューアラシンの生産菌について説明したが、カ
ビの諸性質は一定したものではなく、自然的、人工的に
容易に変化することは周知の通りであり、本発明で使用
しうる菌株はハプシドスボラ属に属するリューアラシン
を生産する全ての菌株を包含するものである。
ビの諸性質は一定したものではなく、自然的、人工的に
容易に変化することは周知の通りであり、本発明で使用
しうる菌株はハプシドスボラ属に属するリューアラシン
を生産する全ての菌株を包含するものである。
本発明の新規化合物リューアラシンを得るため、これら
の微生物の培養は他の発酵生成物を生産するために用い
られるような培地中で行う。このような培地中には、微
生物が資化出来る炭素源、窒素源および無機塩を含有す
る。
の微生物の培養は他の発酵生成物を生産するために用い
られるような培地中で行う。このような培地中には、微
生物が資化出来る炭素源、窒素源および無機塩を含有す
る。
一般に74炭素源としてグルコース、フラクトース、マ
ルトース、シュークロース、マンニトール、グリセロー
ル、デキストリン、オート麦、ライ麦、トウモロコシデ
ンプン、ジャガイモ、トウモロコシ粉−ζ大豆粉、綿実
油、糖蜜、クエン酸、酒石酸などを単一に、あるいは併
用して用いる事が出来る。一般には、培地量の1−10
重量%で変量する。
ルトース、シュークロース、マンニトール、グリセロー
ル、デキストリン、オート麦、ライ麦、トウモロコシデ
ンプン、ジャガイモ、トウモロコシ粉−ζ大豆粉、綿実
油、糖蜜、クエン酸、酒石酸などを単一に、あるいは併
用して用いる事が出来る。一般には、培地量の1−10
重量%で変量する。
窒素源としては、一般に蛋白質を含有する物質を発酵工
程に用いる。適当な窒素源としては、大豆粉、フスマ、
落花生粉、綿実油、綿実粉、カゼイン加水分解物、ファ
ーマミン、魚粉、コーンスチープリカー、ペプトン、肉
エキス、イースト、イーストエキス、マルトエキス、硝
酸ナトリウム、硝酸アンモニウム、硫酸アンモニウム等
である。
程に用いる。適当な窒素源としては、大豆粉、フスマ、
落花生粉、綿実油、綿実粉、カゼイン加水分解物、ファ
ーマミン、魚粉、コーンスチープリカー、ペプトン、肉
エキス、イースト、イーストエキス、マルトエキス、硝
酸ナトリウム、硝酸アンモニウム、硫酸アンモニウム等
である。
窒素源は、単一または併用して培地量の0.2−6重量
%の範囲で用いる。
%の範囲で用いる。
培地中に取り入れる栄養無機塩は、ナトリウム、アンモ
ニウム、カルシウム、フォスフェート、サルフェート、
クロライド、カーボネート等のイオンを得ることの出来
る通常の塩類である。また、カリウム、カルシウム、コ
バルト、マンガン、鉄、マグネシウム等の微量の金属も
含む。液体培養に際しては、シリコン油、植物油、界面
活性剤等が消泡剤として使用される。
ニウム、カルシウム、フォスフェート、サルフェート、
クロライド、カーボネート等のイオンを得ることの出来
る通常の塩類である。また、カリウム、カルシウム、コ
バルト、マンガン、鉄、マグネシウム等の微量の金属も
含む。液体培養に際しては、シリコン油、植物油、界面
活性剤等が消泡剤として使用される。
へA乞基囚ボラS口とぞ互プ丈みマロツクエツトケイン
(ヒ胆U坦匹ユヒE良山m国MaH。
(ヒ胆U坦匹ユヒE良山m国MaH。
ch et Ca1n)SANK 17182株を培養
しリューアラシンを生産する培地のPE(は、5.0−
8.0に変化出来る。
しリューアラシンを生産する培地のPE(は、5.0−
8.0に変化出来る。
菌の生育温度は15℃から35℃までであるが22℃か
ら35℃の範囲が生育良好であり更にリューアラシンの
生産には、22℃から28℃が好適である。
ら35℃の範囲が生育良好であり更にリューアラシンの
生産には、22℃から28℃が好適である。
リューアラシンは、好気的に培養して得られるが通常用
いられる好気的培養法、例えば固体培養法、振とう培養
法、通気攪拌培養法等が用いられる。小規模な培養にお
いては、26℃で数日聞損どう培養を行うのが良好であ
る。培養は、バッフル(水流調節壁)のついた三角フラ
スコ中で、1−2段階の種の発育工程により開始する。
いられる好気的培養法、例えば固体培養法、振とう培養
法、通気攪拌培養法等が用いられる。小規模な培養にお
いては、26℃で数日聞損どう培養を行うのが良好であ
る。培養は、バッフル(水流調節壁)のついた三角フラ
スコ中で、1−2段階の種の発育工程により開始する。
種発育段階の培地は、炭素源および窒素源を併用出来る
。
。
種フラスコは定温インキュベーター中で26℃、7日間
振とうするか、または充分に成長するまで振どうする。
振とうするか、または充分に成長するまで振どうする。
成長した種は第二の種培地、または生産培地に接種する
のに用いる。中間の発育工程を用いる場合には、本質的
に同様の方法で成長させ、生産培地に接種するためにそ
れを部分的に用いる。
のに用いる。中間の発育工程を用いる場合には、本質的
に同様の方法で成長させ、生産培地に接種するためにそ
れを部分的に用いる。
接種したフラスコを一定温度で数日聞損とうし、インキ
ュベーションが終わったらフラスコの含有物を遠心分離
またはろ過する。大量培養の場合には、攪拌機、通気装
置を付けた適当なタンクで培養するのが好ましい。この
方法によれば、栄養培地をタンクの中で作成出来る。栄
養培地を125℃まで加熱して滅菌し、冷却後、滅菌培
地にあらかじめ成長させてあった種を接種する。培養は
26℃で通気攪拌して行う。この方法は、多量の化合物
を得るのに適している。
ュベーションが終わったらフラスコの含有物を遠心分離
またはろ過する。大量培養の場合には、攪拌機、通気装
置を付けた適当なタンクで培養するのが好ましい。この
方法によれば、栄養培地をタンクの中で作成出来る。栄
養培地を125℃まで加熱して滅菌し、冷却後、滅菌培
地にあらかじめ成長させてあった種を接種する。培養は
26℃で通気攪拌して行う。この方法は、多量の化合物
を得るのに適している。
培養の経過に伴って生産されるリューアラシンの量の経
時変化は、ラジオリガンドパインディング(Radio
ligand binding)検定法すなわち、G、
A。
時変化は、ラジオリガンドパインディング(Radio
ligand binding)検定法すなわち、G、
A。
WeilandとR,E、 Oswaldの方法[Jo
urnal ofBiological Chemis
try、 260 8456−8464(1985)]
を用いて、3トニトレンジピンのミクロゾームへの結合
を阻害する活性で測定出来る。また、高速液体クロマト
グラフィーを用い測定することができる。通常は、72
時間から150時間の培養でリューアラシンの生産量は
最高値に達する。
urnal ofBiological Chemis
try、 260 8456−8464(1985)]
を用いて、3トニトレンジピンのミクロゾームへの結合
を阻害する活性で測定出来る。また、高速液体クロマト
グラフィーを用い測定することができる。通常は、72
時間から150時間の培養でリューアラシンの生産量は
最高値に達する。
培養終了後、培養液中の液体部分及び菌体内に存在する
リューアラシンは、菌体、その他の固形部分を珪藻土を
ろ過動剤とする、ろ過操作または遠心分離によって分別
し、そのろ液または上清中および菌体中に存在するリュ
ーアラシンを、その物理化学的性状を利用し抽出精製す
ることにより得られる。例えば、ろ液または、上清中に
存在するリューアラシンは、中性pH条件下で水と混和
しない有機溶剤、例えば酢酸エチル、n−ヘキサン、ク
ロロホルム、塩化エチレン、塩化メチレンなどの単独ま
たは、それらの組み合わせにより抽出精製することがで
きる。あるいは吸着剤として、例えば活性炭または吸着
用樹脂であるアンバーライトXAD−2,XAD−4(
ローム・アンド・ハース社製)等や、ダイヤイオンHP
−10,HP−20,CHP−20P、HP−50(三
菱化成(株)製)等が使用される。リューアラシンを含
む液を上記のごとき吸着剤の層を通過させて不純物を吸
着させて取り除くか、またはりューアラシンを吸着させ
た後、メタノール水、アセトン水、n−ブタノール水な
どを用いて溶出させることにより得られる。また、菌体
内に存在するリューアラシンは、50−90’/;の含
水アセトンまたは含水メタノールにより抽出し有機溶媒
を除去した後、ろ液と同様な抽出精製操作を行なうこと
により得られる。
リューアラシンは、菌体、その他の固形部分を珪藻土を
ろ過動剤とする、ろ過操作または遠心分離によって分別
し、そのろ液または上清中および菌体中に存在するリュ
ーアラシンを、その物理化学的性状を利用し抽出精製す
ることにより得られる。例えば、ろ液または、上清中に
存在するリューアラシンは、中性pH条件下で水と混和
しない有機溶剤、例えば酢酸エチル、n−ヘキサン、ク
ロロホルム、塩化エチレン、塩化メチレンなどの単独ま
たは、それらの組み合わせにより抽出精製することがで
きる。あるいは吸着剤として、例えば活性炭または吸着
用樹脂であるアンバーライトXAD−2,XAD−4(
ローム・アンド・ハース社製)等や、ダイヤイオンHP
−10,HP−20,CHP−20P、HP−50(三
菱化成(株)製)等が使用される。リューアラシンを含
む液を上記のごとき吸着剤の層を通過させて不純物を吸
着させて取り除くか、またはりューアラシンを吸着させ
た後、メタノール水、アセトン水、n−ブタノール水な
どを用いて溶出させることにより得られる。また、菌体
内に存在するリューアラシンは、50−90’/;の含
水アセトンまたは含水メタノールにより抽出し有機溶媒
を除去した後、ろ液と同様な抽出精製操作を行なうこと
により得られる。
このようにして得られたリューアラシンは、更にシリカ
ゲル、フロリジルのような担体を用いた吸着カラムクロ
マトグラフィー、セファデックスLH−20(ファルマ
シア社製)などを用いた分配カラムクロマトグラフィー
、および順相、逆相カラムを用いた高速液体クロマトグ
ラフィー等で精製することが出来る。
ゲル、フロリジルのような担体を用いた吸着カラムクロ
マトグラフィー、セファデックスLH−20(ファルマ
シア社製)などを用いた分配カラムクロマトグラフィー
、および順相、逆相カラムを用いた高速液体クロマトグ
ラフィー等で精製することが出来る。
本発明のリューアラシンは、文献未載の新規化合物であ
り、動物(例、ヒト、イヌ、ネコ、ウサギ等)に対して
カルシウム拮抗作用を示し、例えば高血圧、不整脈、心
不全、狭心症等の予防、治療剤として有用である。
り、動物(例、ヒト、イヌ、ネコ、ウサギ等)に対して
カルシウム拮抗作用を示し、例えば高血圧、不整脈、心
不全、狭心症等の予防、治療剤として有用である。
本発明のリューアラシンを医薬として用いる場合、常法
に従ってそれ自体または適宜の薬学的に許容される担体
、賦形剤、希釈剤と混合し、粉末、顆粒、錠剤、カプセ
ル剤、注射剤などの形態で経口的または非経口的に安全
に投与することが出来る。投与量は対象疾患、投与経路
および投与回数などにより異なるが、例えば成人に対し
ては1日0.01gから2gを、症状に応じて1回また
は数回に分けて投与するのが好ましい。
に従ってそれ自体または適宜の薬学的に許容される担体
、賦形剤、希釈剤と混合し、粉末、顆粒、錠剤、カプセ
ル剤、注射剤などの形態で経口的または非経口的に安全
に投与することが出来る。投与量は対象疾患、投与経路
および投与回数などにより異なるが、例えば成人に対し
ては1日0.01gから2gを、症状に応じて1回また
は数回に分けて投与するのが好ましい。
次に実施例をあげて本発明を更に具体的に説明する。
エツトケイン5ANK 17182株を、無菌的に、滅
菌した後述の組成の培地100 mlを含むバッフルの
付いた500 mlの三角フラスコ(種フラスコ)に−
白金耳接種した。次いでこれを26°Cで7日間、20
Orpm(7amの回転半径)のロータリー振とう機で
培養した。
菌した後述の組成の培地100 mlを含むバッフルの
付いた500 mlの三角フラスコ(種フラスコ)に−
白金耳接種した。次いでこれを26°Cで7日間、20
Orpm(7amの回転半径)のロータリー振とう機で
培養した。
培地組成
シュークロース 20 gジャガイ
モ 100gカサ゛ミノ酸 (ヒリ
ミンフリー)10gリン酸−カリウム
5g硫酸マグネシウム(7水相物) 2.5g
イオン交換水 1000 m1種培養
と同じ組成の培地を、各々100 mlずつバックルの
ついた500 mlの三角フラスコ20本に入れ、滅菌
後、種フラスコから2 mlずつ成長菌を取って接種し
た。この20本の三角フラスコを種培養と同じ条件で7
日聞損とう培養した。
モ 100gカサ゛ミノ酸 (ヒリ
ミンフリー)10gリン酸−カリウム
5g硫酸マグネシウム(7水相物) 2.5g
イオン交換水 1000 m1種培養
と同じ組成の培地を、各々100 mlずつバックルの
ついた500 mlの三角フラスコ20本に入れ、滅菌
後、種フラスコから2 mlずつ成長菌を取って接種し
た。この20本の三角フラスコを種培養と同じ条件で7
日聞損とう培養した。
11阜阻
培養液全体物を、3000 rpm、20分間遠心分離
した。沈でん物を抽出のためにとっておいた。1゜7L
の上清をpE(7,0に調整し分液ロートに入れ、2L
の酢酸エチルで2回抽出した。得られた酢酸エチル層を
3Lの飽和食塩水で洗浄し、さらに無水硫酸ナトリウム
で乾燥した後、ロータリーエバポレーターで、減圧上濃
縮、乾固して273 mgの油状物を得た。菌体を含む
前述の沈でん物は、アセトン300 mlを加え、1時
間攪拌しながら抽出した。得られた抽出液をろ過し、ろ
液よりロータリーエバポレーターで、減圧下アセトンを
留去した。残留物に水を加え1000 mlとした後、
カセイソーダでpH7,0に調整し酢酸エチル1000
tnlで2回抽出した。得られた酢酸エチル層を2L
の飽和食塩水で洗浄し、さらに無水硫酸ナトリウムで乾
燥した後、ロータリーエバポレーターで減圧下、濃縮乾
固して391 mgの油状物を得た。培養ろ液から得ら
れた油状物273 mgと、菌体部分から得られた39
1 mgの油状物の合わせて664mgを、n−ヘキサ
ン/酢酸エチル=4:6に溶解しておき、あらかじめn
−ヘキサジ/酢酸エチル=4:6で平衡化しておいなシ
リカゲルカラム(ローパーカラム、Art、 1040
1 Lichroprep 5i60、サイズB、メル
ク社製)に付し精製した。流速10 m17分で検出器
として示差屈折計を用い、検出されたすべてのピークを
それぞれ分取した。それぞれを、ロータリーエバポレー
ターで減圧下濃縮乾固した。得られた各分画を、後述の
試験例1.のラジオリガンドパインディング検定法で活
性を検定したところ、30分から37分の分画100
mgに活性があり、IC5O値が1.38μg/m 1
の非常に有効なカルシウムブロッカ−の存在を示した。
した。沈でん物を抽出のためにとっておいた。1゜7L
の上清をpE(7,0に調整し分液ロートに入れ、2L
の酢酸エチルで2回抽出した。得られた酢酸エチル層を
3Lの飽和食塩水で洗浄し、さらに無水硫酸ナトリウム
で乾燥した後、ロータリーエバポレーターで、減圧上濃
縮、乾固して273 mgの油状物を得た。菌体を含む
前述の沈でん物は、アセトン300 mlを加え、1時
間攪拌しながら抽出した。得られた抽出液をろ過し、ろ
液よりロータリーエバポレーターで、減圧下アセトンを
留去した。残留物に水を加え1000 mlとした後、
カセイソーダでpH7,0に調整し酢酸エチル1000
tnlで2回抽出した。得られた酢酸エチル層を2L
の飽和食塩水で洗浄し、さらに無水硫酸ナトリウムで乾
燥した後、ロータリーエバポレーターで減圧下、濃縮乾
固して391 mgの油状物を得た。培養ろ液から得ら
れた油状物273 mgと、菌体部分から得られた39
1 mgの油状物の合わせて664mgを、n−ヘキサ
ン/酢酸エチル=4:6に溶解しておき、あらかじめn
−ヘキサジ/酢酸エチル=4:6で平衡化しておいなシ
リカゲルカラム(ローパーカラム、Art、 1040
1 Lichroprep 5i60、サイズB、メル
ク社製)に付し精製した。流速10 m17分で検出器
として示差屈折計を用い、検出されたすべてのピークを
それぞれ分取した。それぞれを、ロータリーエバポレー
ターで減圧下濃縮乾固した。得られた各分画を、後述の
試験例1.のラジオリガンドパインディング検定法で活
性を検定したところ、30分から37分の分画100
mgに活性があり、IC5O値が1.38μg/m 1
の非常に有効なカルシウムブロッカ−の存在を示した。
活性のあるこの分画の一部を、高速液体クロマトグラフ
ィー(分離カラム;ラジアルパック・ツバパックカート
リッジC18、粒子径4μm、カラムサイズ8 mm
X 10 am(ウォーターズ社製)、移動相ニアセト
ニトリル:水=7:3、流速; 2ml/分、検出波
長; UV 210 nm、カラム温度;25℃)に
付すと、5.7分に末端に紫外部吸収を持つピークが単
一に見られた。次いで、得られた活性分画を逆相液体ク
ロマトグラフィーに付して精製した。即ち、逆相カラム
の、センシューパックODS F[−5251(20m
m i、d、 X 250 mm、センシュー科学(株
)製〉にアセl−ニトリル200μlに溶かした全量を
注入した。60%アセトニトリル/水を流速7.0ml
/分で展開溶出し、示差屈折計を用いて検出し28分に
現れるピーク画分を集め、ロータリーエバポレーターで
減圧下、濃縮、乾固して純粋なリューアラシンの白色粉
末を70 rng得た。
ィー(分離カラム;ラジアルパック・ツバパックカート
リッジC18、粒子径4μm、カラムサイズ8 mm
X 10 am(ウォーターズ社製)、移動相ニアセト
ニトリル:水=7:3、流速; 2ml/分、検出波
長; UV 210 nm、カラム温度;25℃)に
付すと、5.7分に末端に紫外部吸収を持つピークが単
一に見られた。次いで、得られた活性分画を逆相液体ク
ロマトグラフィーに付して精製した。即ち、逆相カラム
の、センシューパックODS F[−5251(20m
m i、d、 X 250 mm、センシュー科学(株
)製〉にアセl−ニトリル200μlに溶かした全量を
注入した。60%アセトニトリル/水を流速7.0ml
/分で展開溶出し、示差屈折計を用いて検出し28分に
現れるピーク画分を集め、ロータリーエバポレーターで
減圧下、濃縮、乾固して純粋なリューアラシンの白色粉
末を70 rng得た。
この粉末を更に結晶化のためアセトンとn−ヘキサンの
混合溶媒を用いて結晶とし40 mgの無色2.113
−ベンジル−2R5S 8Sリユーアラジンを得るた
めのハZ乞凡み水プ不に壬工之丈久マロツクエツトケイ
ン5ANK17182株を用いる大量培養を行なった。
混合溶媒を用いて結晶とし40 mgの無色2.113
−ベンジル−2R5S 8Sリユーアラジンを得るた
めのハZ乞凡み水プ不に壬工之丈久マロツクエツトケイ
ン5ANK17182株を用いる大量培養を行なった。
培養工程に用いる種培養培地は以下の組成を有する。
培地組成
シュークロース
ジャガイモ
カザミノ酸(ビタミンフリー)
リン酸−カリウム
硫酸マグネシウム(7水和物)
消泡剤(CB−442>
イオン交換水
pF[無調整
0 g
00g
0 g
5g
2.5g
0.2g
1000 ml
500 mlのバッフルのついた三角フラスコに、10
0 mlの培地を入れ、微生物を接種する前に120℃
で20分間加熱滅菌し、無菌的にへ1ン且ム託プnゼλ
孟丈入マロツクエツトケイン 5ANK 17182株を接種した後、26℃で7日間
200rpmのロータリーシェーカーで振とう培養した
。2基の30 Lステンレス製ジャーファーメンタ−中
に、各々15 Lずつの種培養と同一の組成の培地を入
れ、これを120℃で30分間加熱殺菌した。
0 mlの培地を入れ、微生物を接種する前に120℃
で20分間加熱滅菌し、無菌的にへ1ン且ム託プnゼλ
孟丈入マロツクエツトケイン 5ANK 17182株を接種した後、26℃で7日間
200rpmのロータリーシェーカーで振とう培養した
。2基の30 Lステンレス製ジャーファーメンタ−中
に、各々15 Lずつの種培養と同一の組成の培地を入
れ、これを120℃で30分間加熱殺菌した。
次いでこれに上述の種培養液を200 ml入れ、26
℃で6日間、7.5L/分の空気流量で溶存酸素濃度を
0.3−0.5 ppmに保つため攪拌速度を1100
−300rpの範囲で自動的にコントロールし通気攪拌
培養した。
℃で6日間、7.5L/分の空気流量で溶存酸素濃度を
0.3−0.5 ppmに保つため攪拌速度を1100
−300rpの範囲で自動的にコントロールし通気攪拌
培養した。
旦月」弘
前述の5ANK 17182株の培養全体物15L中に
、約3 Kgのろ適用のセライトを加え、混合物をフィ
ルタープレスを通じてろ過し、菌体区分とる液に分けた
。菌体区分8 Kgに、35 Lのアセトンを加え室温
下で1時間攪拌し抽出した。得られた抽出液をろ過し菌
体と抽出ろ液に分けた。菌体区分にもう一度80%アセ
トンを15 L加え1時間攪拌し抽出した後、ろ過し、
抽出ろ液を得、さきのろ液及び抽出ろ液と合せた。これ
をロータリーエバポレーターで減圧下、アセトンを留去
し水溶液10 Lを得た。得られた水溶液をpE[6,
5に調節した後10 Lの酢酸エチルで2回抽出し、1
8 Lの酢酸エチル層を得た。酢酸エチル層を15 L
の飽和食塩水で洗浄し、800gの無水硫酸ナトリウム
で乾燥後、ロータリーエバポレーターで減圧下、濃縮乾
固して油状物21.2gを得た。あらかじめ、n−ヘキ
サン/酢酸エチル=4:6で平衡化しであるシリカゲル
カラム(ローバーカラム、Art、 10402Lic
hroprep 5i60、サイズC、メルク社製)に
、この油状物を、同じ組成の溶媒80 mlに溶かし、
4回に分けてカラムに付した。各回とも同一溶媒で展開
しカラムに接続した示差屈折計が示す35分から50分
のピークを分取した。この画分について実施例1.と同
様にして高速液体クロマトグラフィーにより成分の純度
をモニタリングしさらにラジオリガンドパインディング
検定法によっても活性を確認した。次いで両分をロータ
リーエバポレーターで減圧下、濃縮乾固して合計1.8
gの油状物を得た。次いで、得られた油状物を逆相液体
クロマトグラフィーに付して精製した。即ち、逆相カラ
ム(7)、センシューパックODS F[−5251(
20mm i、d。
、約3 Kgのろ適用のセライトを加え、混合物をフィ
ルタープレスを通じてろ過し、菌体区分とる液に分けた
。菌体区分8 Kgに、35 Lのアセトンを加え室温
下で1時間攪拌し抽出した。得られた抽出液をろ過し菌
体と抽出ろ液に分けた。菌体区分にもう一度80%アセ
トンを15 L加え1時間攪拌し抽出した後、ろ過し、
抽出ろ液を得、さきのろ液及び抽出ろ液と合せた。これ
をロータリーエバポレーターで減圧下、アセトンを留去
し水溶液10 Lを得た。得られた水溶液をpE[6,
5に調節した後10 Lの酢酸エチルで2回抽出し、1
8 Lの酢酸エチル層を得た。酢酸エチル層を15 L
の飽和食塩水で洗浄し、800gの無水硫酸ナトリウム
で乾燥後、ロータリーエバポレーターで減圧下、濃縮乾
固して油状物21.2gを得た。あらかじめ、n−ヘキ
サン/酢酸エチル=4:6で平衡化しであるシリカゲル
カラム(ローバーカラム、Art、 10402Lic
hroprep 5i60、サイズC、メルク社製)に
、この油状物を、同じ組成の溶媒80 mlに溶かし、
4回に分けてカラムに付した。各回とも同一溶媒で展開
しカラムに接続した示差屈折計が示す35分から50分
のピークを分取した。この画分について実施例1.と同
様にして高速液体クロマトグラフィーにより成分の純度
をモニタリングしさらにラジオリガンドパインディング
検定法によっても活性を確認した。次いで両分をロータ
リーエバポレーターで減圧下、濃縮乾固して合計1.8
gの油状物を得た。次いで、得られた油状物を逆相液体
クロマトグラフィーに付して精製した。即ち、逆相カラ
ム(7)、センシューパックODS F[−5251(
20mm i、d。
X 250 mm、センシュー科学(株)製)に、アセ
トニトリル8 mlに溶かした油状物を、10回に分け
て注入した。60%アセトニトリル/水を流速7.0m
l/分で展開、溶出し、示差屈折計を用いて検出し、2
8分に現れるピークの両分を集め、ロータリーエバポレ
ーターで減圧下、濃縮、乾固して純粋なリューアラシン
を無色油状物として、1.66g得た。
トニトリル8 mlに溶かした油状物を、10回に分け
て注入した。60%アセトニトリル/水を流速7.0m
l/分で展開、溶出し、示差屈折計を用いて検出し、2
8分に現れるピークの両分を集め、ロータリーエバポレ
ーターで減圧下、濃縮、乾固して純粋なリューアラシン
を無色油状物として、1.66g得た。
この油状物を更に結晶化のため、アセトンとn−ヘキサ
ンの混合溶媒を用いて結晶とし、800 mgの無色針
状結晶を得た。
ンの混合溶媒を用いて結晶とし、800 mgの無色針
状結晶を得た。
(実施例の効果)
=1.−ジ 1 ン′バ ンーイン
ラジオリガンドパインディング(Radiol iga
r+dbinding)検定法、即ち、G、 A、 W
eilandとR,E。
r+dbinding)検定法、即ち、G、 A、 W
eilandとR,E。
Oswaldの方法[Journal of Biol
ogical Chemistry。
ogical Chemistry。
ハ几8456−8464 (1985)]の変法を用い
て、3■−ニトレンジピン(nitrendipine
)のミクロゾームへの結合を阻害する活性で測定した。
て、3■−ニトレンジピン(nitrendipine
)のミクロゾームへの結合を阻害する活性で測定した。
即ち、豚の心臓(Porcin heart)より調製
したミクロゾーム画分15−20 μg、3H−ニトレ
ンジピン(MEN−DuPont社製、比活性88.
I Ci/mλ()200 pM、50mM Na0H
−f(EPES緩衝液(pF(7,4)、0.55;エ
タノールからなる1mlの反応溶液中で25°C130
分の反応を行なわせた。リューアラシンはエタノール溶
液を調製し、それを順次希釈して反応液中のエタノール
濃度が0.5%となるように添加した。なおこのとき非
放射性の二1〜レンジピンを1gM添加したものの結果
をバックグラウンド値とした。反応終了後、セルハーベ
スタ(M−24型、ブランデル社製)を用いてグラスフ
ァイバーろ紙(GF/C)上でろ過および洗浄を行ない
、グラスファイバーをバイアルに入れ、0PTI−FL
UOR(パラカード社製)をシンチレータ−として加え
放射能(dpm )を求めた。その結果、リューアラシ
ンの50%阻害濃度は、0.99μg/m lと強い阻
害作用を示した。
したミクロゾーム画分15−20 μg、3H−ニトレ
ンジピン(MEN−DuPont社製、比活性88.
I Ci/mλ()200 pM、50mM Na0H
−f(EPES緩衝液(pF(7,4)、0.55;エ
タノールからなる1mlの反応溶液中で25°C130
分の反応を行なわせた。リューアラシンはエタノール溶
液を調製し、それを順次希釈して反応液中のエタノール
濃度が0.5%となるように添加した。なおこのとき非
放射性の二1〜レンジピンを1gM添加したものの結果
をバックグラウンド値とした。反応終了後、セルハーベ
スタ(M−24型、ブランデル社製)を用いてグラスフ
ァイバーろ紙(GF/C)上でろ過および洗浄を行ない
、グラスファイバーをバイアルに入れ、0PTI−FL
UOR(パラカード社製)をシンチレータ−として加え
放射能(dpm )を求めた。その結果、リューアラシ
ンの50%阻害濃度は、0.99μg/m lと強い阻
害作用を示した。
: 2. に ルシ ム
盲腸紐によるカルシウム拮抗作用を、
M、Spedding[Naunyn−3chmied
eberg’s ArchPharmacol、 IL
8..234−240 (1982)]の方法に従って
測定した。即ち、体重250−300 gの雄性モルモ
ットを、ベンドパルビタール麻酔下に腹部を切開し直ち
に盲腸より紐をはぎとった。これを混合ガス(95%酸
素、5%炭酸ガス)で通気飽和したタイロード液に移し
た。盲腸紐を6−7 mmの長さに切り、次いでカルシ
ウムを除去したタイロード液20 mlの入ったマグヌ
ス槽内に懸垂した。この状態で1時間放置して標本を安
定させてから、30mM、100mM、300mMの塩
化カルシウム溶液をそれぞれ0.2mlずつ3分間隔で
累積注入し、標本の収縮高を測定した。測定後、標本を
カルシウムを除去したタイロード液で2回洗浄し30分
間放置した。次いで標本にリューアラシン溶液を添加し
て30分間インキュベートした後同様に、30mM、1
00mλ(,300mMの塩化カルシウム溶液をそれぞ
れ0.2mlずつ3分間隔で累積注入して標本の収縮高
を測定した。塩化カルシウム溶液単独の収縮高からリュ
ーアラシン溶液処理の収縮高を引き、この値を塩化カル
シウム溶液単独の収縮高で割り拮抗率を算出した。
eberg’s ArchPharmacol、 IL
8..234−240 (1982)]の方法に従って
測定した。即ち、体重250−300 gの雄性モルモ
ットを、ベンドパルビタール麻酔下に腹部を切開し直ち
に盲腸より紐をはぎとった。これを混合ガス(95%酸
素、5%炭酸ガス)で通気飽和したタイロード液に移し
た。盲腸紐を6−7 mmの長さに切り、次いでカルシ
ウムを除去したタイロード液20 mlの入ったマグヌ
ス槽内に懸垂した。この状態で1時間放置して標本を安
定させてから、30mM、100mM、300mMの塩
化カルシウム溶液をそれぞれ0.2mlずつ3分間隔で
累積注入し、標本の収縮高を測定した。測定後、標本を
カルシウムを除去したタイロード液で2回洗浄し30分
間放置した。次いで標本にリューアラシン溶液を添加し
て30分間インキュベートした後同様に、30mM、1
00mλ(,300mMの塩化カルシウム溶液をそれぞ
れ0.2mlずつ3分間隔で累積注入して標本の収縮高
を測定した。塩化カルシウム溶液単独の収縮高からリュ
ーアラシン溶液処理の収縮高を引き、この値を塩化カル
シウム溶液単独の収縮高で割り拮抗率を算出した。
試験結果を次に示す
リューアラシン濃度
g/ml
拮抗率
(%)
10〜6
以上から明らかな如く、リューアラシンは優れたカルシ
ウム拮抗作用を示した。
ウム拮抗作用を示した。
;!3.古
自然発症高血圧ラット(以下5HR)にリューアラシン
を静脈内投与して抗高血圧作用を試験した。
を静脈内投与して抗高血圧作用を試験した。
即ち、生後15週令の雄性SHRをソジウムベントバル
ビタール(50mg/kg、腹腔的投与)で麻酔し、股
動脈にポリエチレンカニユーレを挿入した。動物のカニ
ユーレの他端を血圧測定装置に接続し麻酔状態で血圧及
び心拍数を直接法により測定した。
ビタール(50mg/kg、腹腔的投与)で麻酔し、股
動脈にポリエチレンカニユーレを挿入した。動物のカニ
ユーレの他端を血圧測定装置に接続し麻酔状態で血圧及
び心拍数を直接法により測定した。
血圧測定装置は、Laffanらの装置[Laffan
P、 J、 。
P、 J、 。
Peterson A、、 Hitch S、W、、
and Jeunelot C,、Cardiovas
cular Res、、 6.319−324 (19
72)]を、改良したものを使用した。リューアラシン
は、エタノールに溶解したものを生理食塩水で希釈して
股静脈より投与した。リューアラシン投与は、リューア
ラシン投与前1時間コントロールの血圧および心拍数を
観察しそれらが安定した時に行なった。
and Jeunelot C,、Cardiovas
cular Res、、 6.319−324 (19
72)]を、改良したものを使用した。リューアラシン
は、エタノールに溶解したものを生理食塩水で希釈して
股静脈より投与した。リューアラシン投与は、リューア
ラシン投与前1時間コントロールの血圧および心拍数を
観察しそれらが安定した時に行なった。
投与量
血圧降下(mmHg )
100 μg/kg
300 μg/kg
以上のように、リューアラシンは優れた抗高血圧作用を
示した。
示した。
X竪医生−二住朗住
マウスに、リューアラシンを200 mg/kg経口投
与したが毒性は認められなかった。
与したが毒性は認められなかった。
次に製剤例を示す。
!’1.j: プセル1
処方
リューアラシン 30 mg乳糖
170 mgトウモロコシ澱
粉 148.8 mgステアリン酸マグネ
シウム 1.2mg上記処方の粉末を混合し、3
0メツシユのふるいを通した後、この粉末350 mg
をゼラチンカプセルに入れ、カプセル剤とした。
170 mgトウモロコシ澱
粉 148.8 mgステアリン酸マグネ
シウム 1.2mg上記処方の粉末を混合し、3
0メツシユのふるいを通した後、この粉末350 mg
をゼラチンカプセルに入れ、カプセル剤とした。
(発明の効果)
以上から、本発明のリューアラシンは顕著なカルシウム
拮抗作用を示し例えば血圧降下剤として有用である。
拮抗作用を示し例えば血圧降下剤として有用である。
第1図は、リューアラシンの紫外線吸収スペクトルを示
す。第2図は、同物質の赤外線吸収スペクトルを示す。 第3図および第4図は、同物質のそれぞれ、13C−N
MRスペクトルおよび’I(−NMRスペクトルを示す
。
す。第2図は、同物質の赤外線吸収スペクトルを示す。 第3図および第4図は、同物質のそれぞれ、13C−N
MRスペクトルおよび’I(−NMRスペクトルを示す
。
Claims (4)
- (1)式 ▲数式、化学式、表等があります▼ で示されるリューアラシン。
- (2)ハプシドスポラ属に属するリューアラシン生産菌
を培養し、その培養物より請求項(1)記載のリューア
ラシンを採取することを特徴とする請求項(1)記載の
リューアラシンの製造法。 - (3)請求項(2)において、ハプシドスポラ属に属す
るリューアラシン生産菌が¥ハプシドスポラ¥¥イレギ
ユリス¥マロックエットケイン SANK17182株(微工研条寄第2511号、FE
RMBP−2511)である製造法。 - (4)請求項(1)記載のリューアラシンを有効成分と
するカルシウム拮抗剤。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP22756289A JPH02195892A (ja) | 1988-09-05 | 1989-09-04 | 新規化合物リューアラシン |
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP22196088 | 1988-09-05 | ||
JP63-221960 | 1988-09-05 | ||
JP22756289A JPH02195892A (ja) | 1988-09-05 | 1989-09-04 | 新規化合物リューアラシン |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH02195892A true JPH02195892A (ja) | 1990-08-02 |
Family
ID=26524598
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP22756289A Pending JPH02195892A (ja) | 1988-09-05 | 1989-09-04 | 新規化合物リューアラシン |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH02195892A (ja) |
-
1989
- 1989-09-04 JP JP22756289A patent/JPH02195892A/ja active Pending
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