JPH01104171A - α−1・6−グルコシダーゼの安定化法 - Google Patents
α−1・6−グルコシダーゼの安定化法Info
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- JPH01104171A JPH01104171A JP26230287A JP26230287A JPH01104171A JP H01104171 A JPH01104171 A JP H01104171A JP 26230287 A JP26230287 A JP 26230287A JP 26230287 A JP26230287 A JP 26230287A JP H01104171 A JPH01104171 A JP H01104171A
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- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明はα−1,6−グルコシダーゼの安′、l ”i
h法に関するものである。
h法に関するものである。
(従来技術)
α−1,6−グルコシダーゼは澱粉またはこの派生物中
の α−1,6−グルコシド結合あるいは(riよび)
プルランのα−1,6−グルコシド結合などを加水分解
する酵素の総称であり、その基質特異性の差からプルラ
ナーゼあるいはインアミラーゼと呼ばれる酵素がある。
の α−1,6−グルコシド結合あるいは(riよび)
プルランのα−1,6−グルコシド結合などを加水分解
する酵素の総称であり、その基質特異性の差からプルラ
ナーゼあるいはインアミラーゼと呼ばれる酵素がある。
α−1,6−グルコシダーゼはβ−アミラーゼと併用し
て、澱粉からマルトースを収量よく製造するのに使用し
たり、また、最近、酵素法による澱粉からのグルコース
の製造において、グルコアミラーゼと併用して、グルコ
ースを増収する目的に使用されている。
て、澱粉からマルトースを収量よく製造するのに使用し
たり、また、最近、酵素法による澱粉からのグルコース
の製造において、グルコアミラーゼと併用して、グルコ
ースを増収する目的に使用されている。
(発明が解決しようとする問題点)
α−1,6−グルフシダーゼは、バシルス属、クレプシ
ラ属、シュードモナス属など、種々の細菌や、ストレプ
トマイセス属などの放線菌により生産されることが知ら
れているが、一部の微生物の生産するものを除き、一般
に、耐酸性や耐熱性などの安定性に劣ることが問題であ
った。特に、本酵素をグルコアミラーゼと併用する場合
、グルコアミラーゼは、工業的には、pH4〜5、温度
約60°Cで2〜3日間使用されるため、このような酸
性と高温で長時間、活性を保持できるプルラナーゼは少
なく、これまで、バシルス・アンドプルリティカス(B
acillus acidopullulyticus
)のプルラナーゼが知られているのみである(特公昭6
2−25036 はか)。
ラ属、シュードモナス属など、種々の細菌や、ストレプ
トマイセス属などの放線菌により生産されることが知ら
れているが、一部の微生物の生産するものを除き、一般
に、耐酸性や耐熱性などの安定性に劣ることが問題であ
った。特に、本酵素をグルコアミラーゼと併用する場合
、グルコアミラーゼは、工業的には、pH4〜5、温度
約60°Cで2〜3日間使用されるため、このような酸
性と高温で長時間、活性を保持できるプルラナーゼは少
なく、これまで、バシルス・アンドプルリティカス(B
acillus acidopullulyticus
)のプルラナーゼが知られているのみである(特公昭6
2−25036 はか)。
(問題点を解決するための手段)
本発明者は、従来知られているα−1,6−グルコシダ
ーゼの安定化法について、鋭意、研究を行ってきた結果
、α−1,6−ゲルコジダー論を用いる反応を、アルミ
ニウム塩の存在下で行うと、該酵素の安定性が著しく向
上できることを認めた。本発明はこの知見に基づいてな
されたものである。
ーゼの安定化法について、鋭意、研究を行ってきた結果
、α−1,6−ゲルコジダー論を用いる反応を、アルミ
ニウム塩の存在下で行うと、該酵素の安定性が著しく向
上できることを認めた。本発明はこの知見に基づいてな
されたものである。
すなわち、本発明は、α−1,6−グルコシダーゼを用
いる反応を、アルミニウム塩の存在下で行うことを特徴
とする α−1,6−グルコシダーゼの安定化法に関す
るものである。
いる反応を、アルミニウム塩の存在下で行うことを特徴
とする α−1,6−グルコシダーゼの安定化法に関す
るものである。
以下に、本発明の内容を更に具体的に説明する。
本発明において使用されるアルミニウム塩としては、例
えば、塩化アルミニウム、硫酸アルミニウム、硫酸アル
ミニウムアンモニウム、硝酸アルミニウム、硫酸アルミ
ニウム カリウムなどの無機酸塩のほか、酢酸アルミニ
ウム、乳酸アルミニウムなどの有機酸塩など、通常、水
溶性の塩が挙げられる。しかし、アルミニウム塩は強い
酸性を示しくpH2〜4)、α−1,6−グルコシダー
ゼは直ちに失活するため、pHを低くとも4以上に、L
げる必要かある。しかし、pnを上げるとアルミニウム
塩は、分解して、水不溶性の水酸化アルミニウムを沈澱
するという問題がある。このため、該酵素に安定なpH
で、水溶性を維持できるアルミニウム溶液について検討
してきた結果、塩化アルミニウム、硫酸アルミニウム、
硫酸アルミニウムカリウム、硫酸アルミニウム アンモ
ニウムなどの水溶液または水懸濁液に、糖、グリセリン
、乳酸ナトリウムなどのいずれかを存在させて、pHを
調整するか、あるいは乳酸アルミニウムの溶液をpi調
整して使用するのが適当であることを認めた。
えば、塩化アルミニウム、硫酸アルミニウム、硫酸アル
ミニウムアンモニウム、硝酸アルミニウム、硫酸アルミ
ニウム カリウムなどの無機酸塩のほか、酢酸アルミニ
ウム、乳酸アルミニウムなどの有機酸塩など、通常、水
溶性の塩が挙げられる。しかし、アルミニウム塩は強い
酸性を示しくpH2〜4)、α−1,6−グルコシダー
ゼは直ちに失活するため、pHを低くとも4以上に、L
げる必要かある。しかし、pnを上げるとアルミニウム
塩は、分解して、水不溶性の水酸化アルミニウムを沈澱
するという問題がある。このため、該酵素に安定なpH
で、水溶性を維持できるアルミニウム溶液について検討
してきた結果、塩化アルミニウム、硫酸アルミニウム、
硫酸アルミニウムカリウム、硫酸アルミニウム アンモ
ニウムなどの水溶液または水懸濁液に、糖、グリセリン
、乳酸ナトリウムなどのいずれかを存在させて、pHを
調整するか、あるいは乳酸アルミニウムの溶液をpi調
整して使用するのが適当であることを認めた。
特に、乳酸アルミニウムを使用するときは、高濃度の溶
液を調製することができる。
液を調製することができる。
(発明の効果)
アルミニウム塩として、例えば、塩化アルミニウムや硫
酸アルミニウムアンモニウムを使用スる場合の濃度は、
通常、lXl0−’〜lXl0−’モル、望ましくは、
lX10−’〜5XIO−’モル程度であり、乳酸アル
ミニウムを使用する場合は、通常、IX 10−’ 〜
I X 10−’モル程度で顕著な効果を示す。すなわ
ち、使用する塩の種類や酵素の起源により、適宜、濃度
を変更する必要があるが、極めて薄い濃度で、しかも、
狭い濃度範囲において顕著な効果を示すことが認められ
た。例えば、5%プルランを基質として、pH4,5,
60℃で反応させたとき、多くのバシルス属や、クレブ
シラ属のプルラナーゼは1時間以内に失活するが、3X
10−3モル適当量のアルミニウム塩が共存したときは
、少なくとも3日間活性を保持した。
酸アルミニウムアンモニウムを使用スる場合の濃度は、
通常、lXl0−’〜lXl0−’モル、望ましくは、
lX10−’〜5XIO−’モル程度であり、乳酸アル
ミニウムを使用する場合は、通常、IX 10−’ 〜
I X 10−’モル程度で顕著な効果を示す。すなわ
ち、使用する塩の種類や酵素の起源により、適宜、濃度
を変更する必要があるが、極めて薄い濃度で、しかも、
狭い濃度範囲において顕著な効果を示すことが認められ
た。例えば、5%プルランを基質として、pH4,5,
60℃で反応させたとき、多くのバシルス属や、クレブ
シラ属のプルラナーゼは1時間以内に失活するが、3X
10−3モル適当量のアルミニウム塩が共存したときは
、少なくとも3日間活性を保持した。
アルミニウム塩は反応時に酵素と同時に添加してもよく
、また、あらかじめ、酵素剤に添加、処理してもよい。
、また、あらかじめ、酵素剤に添加、処理してもよい。
本発明はバシルス属、クレブシラ属、シュードモナス属
などの細菌、ストレプトマイセス属放線菌など、種々の
微生物の生産するα−1,6−グルコシダーゼに適用す
ることができる。例えば、クレブシラ・ニューモニア(
Klebsiella pneumo−niae)、バ
シルス・ズブチリス(Bacillussubtili
s)、バシルス・ステアロサーモフィラス(Bacil
lus stearothermophilus)、ノ
イシルス拳セレウス(Bacillus cereus
)、バシルス・セレウス・ヴアリエークス・ミコイデス
(Bacillus cereus−var、 nyc
oides)、ノ望シルスーアシドプルリテイカス(B
acillus acidopulluliticus
)、シュードモナス0アミロデラモサ(Pseudol
llonas amyloderamosa)などの生
産するα−1,6−グルコシダーゼなどが挙げられる。
などの細菌、ストレプトマイセス属放線菌など、種々の
微生物の生産するα−1,6−グルコシダーゼに適用す
ることができる。例えば、クレブシラ・ニューモニア(
Klebsiella pneumo−niae)、バ
シルス・ズブチリス(Bacillussubtili
s)、バシルス・ステアロサーモフィラス(Bacil
lus stearothermophilus)、ノ
イシルス拳セレウス(Bacillus cereus
)、バシルス・セレウス・ヴアリエークス・ミコイデス
(Bacillus cereus−var、 nyc
oides)、ノ望シルスーアシドプルリテイカス(B
acillus acidopulluliticus
)、シュードモナス0アミロデラモサ(Pseudol
llonas amyloderamosa)などの生
産するα−1,6−グルコシダーゼなどが挙げられる。
以下に、実施例により本発明の詳細な説明する実施例
1 クレブシラ・ニューモニア(Klebsiellapn
eumoniae)の生産するプルラナーゼ(英国、A
BM社製、商品名Pulluzyme) 0. 3 単
位に、プルランlO%、酢酸緩衝液(pH4,5)0.
1M。
1 クレブシラ・ニューモニア(Klebsiellapn
eumoniae)の生産するプルラナーゼ(英国、A
BM社製、商品名Pulluzyme) 0. 3 単
位に、プルランlO%、酢酸緩衝液(pH4,5)0.
1M。
塩化アルミニウム3X10−’Mになるように加え。
全量を水で21111とし、60℃で反応させた。対照
として、塩化アルミニウム無添加のものを同時に反応さ
せた。そして、経時的に一定量をとり、生成した還元糖
(マルトトリオース)をソモギー・ネルフン法によりグ
ルコースとして定量した。得られた結果を第1表に示す
。
として、塩化アルミニウム無添加のものを同時に反応さ
せた。そして、経時的に一定量をとり、生成した還元糖
(マルトトリオース)をソモギー・ネルフン法によりグ
ルコースとして定量した。得られた結果を第1表に示す
。
第 1 表
反応時間 還元糖量(mg/m1)(時)
対照 塩化アルミ添加1 1、08
2.073 1.11 3.305
1、10 3.8524 1
.11 6.644g 1.11
7.55表から明らかなように、この酵素は、塩化
アルミニウムが存在しないとき、pH4,5,60’C
という条件下では、1時間以内に失活するが、3×10
−4モル量の塩化アルミニウムが存在したときは、酵素
の安定性が著しく改善されるため、高い分解性を示した
。
対照 塩化アルミ添加1 1、08
2.073 1.11 3.305
1、10 3.8524 1
.11 6.644g 1.11
7.55表から明らかなように、この酵素は、塩化
アルミニウムが存在しないとき、pH4,5,60’C
という条件下では、1時間以内に失活するが、3×10
−4モル量の塩化アルミニウムが存在したときは、酵素
の安定性が著しく改善されるため、高い分解性を示した
。
ここで、α−1,6−グルコシダーゼ活性は以下のよう
にして測定した。
にして測定した。
0.1M酢酸緩衝液に溶解した2%プルラン液(pH5
,0)0.5mlに適当量の酵素液を加え、蒸留水で全
fi1mlとし、40°Cで反応させる。 この条件下
で、1分間に1マイクロモルのグルコースに相当する。
,0)0.5mlに適当量の酵素液を加え、蒸留水で全
fi1mlとし、40°Cで反応させる。 この条件下
で、1分間に1マイクロモルのグルコースに相当する。
・量元力を生成する酵素1tを1単位とした。
実施例2
コーン・ステイープ・リカー10%、乳!2%、燐酸二
力90.3%、硫酸マグネシウム(7水塩)0.1%、
硝酸ナトリウム0.25%、ツイーン600.3%、硫
酸銅5X10−5M、塩化マンガン2.5X10”@M
、塩化カルシウムIX10−’M、硫酸亜鉛lXl0−
’M、硫酸第一鉄lXl0−’Mからなる培地(pH7
,0)を、常法により殺菌後、バシルス・ズブチリスT
U (Bacillussubtilis TU) F
E RM −BP 684を接種し、30℃で4日間
振盪培養した。培養後、遠心分離して得た上澄を酵素液
として使用した。 該酵素の0.23単位をプルラン5
%、酢酸緩衝液(pH4,5)0.01M、塩化カルシ
ウム lXl0−’M1塩化アル化工ルミニウムlXl
0−4〜5X10に加え、全ff11m1で60℃で反
応させた。反応48時間目に生成した還元糖量をグルコ
ースとして定量した。a;結果は第2表に示す通りであ
った。
力90.3%、硫酸マグネシウム(7水塩)0.1%、
硝酸ナトリウム0.25%、ツイーン600.3%、硫
酸銅5X10−5M、塩化マンガン2.5X10”@M
、塩化カルシウムIX10−’M、硫酸亜鉛lXl0−
’M、硫酸第一鉄lXl0−’Mからなる培地(pH7
,0)を、常法により殺菌後、バシルス・ズブチリスT
U (Bacillussubtilis TU) F
E RM −BP 684を接種し、30℃で4日間
振盪培養した。培養後、遠心分離して得た上澄を酵素液
として使用した。 該酵素の0.23単位をプルラン5
%、酢酸緩衝液(pH4,5)0.01M、塩化カルシ
ウム lXl0−’M1塩化アル化工ルミニウムlXl
0−4〜5X10に加え、全ff11m1で60℃で反
応させた。反応48時間目に生成した還元糖量をグルコ
ースとして定量した。a;結果は第2表に示す通りであ
った。
表から唄≦かなように、塩化アルミニウムの存−一、−
:゛ 在により、プルラナーゼの安定性が著しく改善された。
:゛ 在により、プルラナーゼの安定性が著しく改善された。
第 2 表
塩化アルミニウム 反応時間(時)
(XIO−’M) 6 46 70無添加
3.3g 5.63 6.421
4.40 6.66 7.952 4.
58 g、63 9.913 5.11
7.92 9.184 3.17 6.16
7.69実施例3 本実施例においては、塩化アルミニウムの代わりに、硫
酸アルミニウム アンモニウムを使用シた。反応に使用
した酵素は実施例2で使用したと同じ酵素である。得ら
れた結果を第3表に示す。
3.3g 5.63 6.421
4.40 6.66 7.952 4.
58 g、63 9.913 5.11
7.92 9.184 3.17 6.16
7.69実施例3 本実施例においては、塩化アルミニウムの代わりに、硫
酸アルミニウム アンモニウムを使用シた。反応に使用
した酵素は実施例2で使用したと同じ酵素である。得ら
れた結果を第3表に示す。
アンモニウム(X 10−’M) 1 41 6
5G 2.82 4.61 5
.743 2.13 7.22
7.544 2.29 8.28
9.03実施例4 実施例2において調製した酵素を硫酸アンモニウム70
%飽和になるように加えて酵素を沈澱させ、遠心分離に
より回収し、蒸溜水で透析したものを酵素液として使用
した。
5G 2.82 4.61 5
.743 2.13 7.22
7.544 2.29 8.28
9.03実施例4 実施例2において調製した酵素を硫酸アンモニウム70
%飽和になるように加えて酵素を沈澱させ、遠心分離に
より回収し、蒸溜水で透析したものを酵素液として使用
した。
木酢素0.05単位を、プルラン5%、酢酸緩衝液(p
H4,5)O,OIM、塩化カルシウムI X 10−
’M、乳酸アルミニウム0.5X10−’〜5X10−
3M加え、全ff11m1で60℃で反応させた。反応
42および66時間目に、生成した還元糖をグルコース
として定量した。得られた結果を第4表に示す。
H4,5)O,OIM、塩化カルシウムI X 10−
’M、乳酸アルミニウム0.5X10−’〜5X10−
3M加え、全ff11m1で60℃で反応させた。反応
42および66時間目に、生成した還元糖をグルコース
として定量した。得られた結果を第4表に示す。
乳酸ア、(レー蓮:ニウム 反応時間(時)(x 1
0−3M) 42 660
1.59 1.590.5
3.49 5.211
g、71 9.992
9.25 12.73
9.33 12.34
10.92 12.95
9.80 12.9表から明らかなように、乳酸ナ
トリウムを使用した場合、比較的広い濃度範囲で効果を
示した。
0−3M) 42 660
1.59 1.590.5
3.49 5.211
g、71 9.992
9.25 12.73
9.33 12.34
10.92 12.95
9.80 12.9表から明らかなように、乳酸ナ
トリウムを使用した場合、比較的広い濃度範囲で効果を
示した。
実施例5
本実施例では、α−1,6−グルコシダーゼとして、シ
ュードモナス・アミロデラモサ(Psuudomo−n
as amylodelamosa)のイソアミラーゼ
を用いて試験した結果について記載する。
ュードモナス・アミロデラモサ(Psuudomo−n
as amylodelamosa)のイソアミラーゼ
を用いて試験した結果について記載する。
本酵素はアミロペクチンの長鎖の分岐(α−1゜6−グ
ルコシド結合)を分解することができるが、プルランの
α−1,6−グルコシド結合は分解するにあり、60°
Cでは急速に失活するr K、 Yokobaya−s
i他、Biochimica et Biophysi
ca Acta 212,45g(1970)]。本酵
素の精製標品は生化学工業(株)よ。
ルコシド結合)を分解することができるが、プルランの
α−1,6−グルコシド結合は分解するにあり、60°
Cでは急速に失活するr K、 Yokobaya−s
i他、Biochimica et Biophysi
ca Acta 212,45g(1970)]。本酵
素の精製標品は生化学工業(株)よ。
り入手することができる。
本酵素に対するアルミニウム塩による安定性を試験する
ために、植物β−アミラーゼと併用して、澱粉からのマ
ルトースの生成試験を行った。この場合、β−アミラー
ゼによる影響を無くするために、β−アミラーゼは基質
に対して十分量を加えた。
ために、植物β−アミラーゼと併用して、澱粉からのマ
ルトースの生成試験を行った。この場合、β−アミラー
ゼによる影響を無くするために、β−アミラーゼは基質
に対して十分量を加えた。
可溶性澱粉5%、酢酸緩衝液(pH5,0)0、OIM
、 大麦β−アミラーゼ(フィンランド国、フィンシコ
ガー社製、商品名Spezyme BBA)4.2単位
、前記シュードモナス属イソアミラーゼ100単位、硫
酸アルミニウム アンモニウムまたは乳酸アルミニウム
を3XIO−’〜5×10−’M、全量1mlで、60
℃で反応させた。対照として、アルミニウム塩無添加で
同時に反応させた。経時的に→)定量をとり、生成した
還元糖(マルト−ス)をゾモギー・不ルソン法により定
量シた。得られた結果を第5表に示す。
、 大麦β−アミラーゼ(フィンランド国、フィンシコ
ガー社製、商品名Spezyme BBA)4.2単位
、前記シュードモナス属イソアミラーゼ100単位、硫
酸アルミニウム アンモニウムまたは乳酸アルミニウム
を3XIO−’〜5×10−’M、全量1mlで、60
℃で反応させた。対照として、アルミニウム塩無添加で
同時に反応させた。経時的に→)定量をとり、生成した
還元糖(マルト−ス)をゾモギー・不ルソン法により定
量シた。得られた結果を第5表に示す。
第 5 表
アルミ塩 β−アミ イソア 反応時間(時)(x
lo−’ M) ラーゼ ミラーゼ 2246無添加
+ 26.4 30.8無添加
+ + 27.6 31.8AINI(4
(SO4)t 3 + + 25.032.15
+’ + 33.036.2乳
酸アルミ 3 + + 31.8 34.6
5 + + 33.237.81
0 + + 32.236.8表
から明らかなように、アルミニウム塩が存在したきは、
存在しない場合にくらべ、長時間にわたり活性が維持さ
れ、高い収用でマルトースが得られた。
lo−’ M) ラーゼ ミラーゼ 2246無添加
+ 26.4 30.8無添加
+ + 27.6 31.8AINI(4
(SO4)t 3 + + 25.032.15
+’ + 33.036.2乳
酸アルミ 3 + + 31.8 34.6
5 + + 33.237.81
0 + + 32.236.8表
から明らかなように、アルミニウム塩が存在したきは、
存在しない場合にくらべ、長時間にわたり活性が維持さ
れ、高い収用でマルトースが得られた。
実施例6
実施神1′2’:’8j調製した酵素を、グルコアミラ
ーゼ:l 、f7 と併用゛して液化澱粉の糖化試験を行った。
ーゼ:l 、f7 と併用゛して液化澱粉の糖化試験を行った。
DE約12の液化澱粉30%、グルコアミラーゼ(フィ
ンシュガー社製、商品名Spezyme GA200)
0. 03%(/固形分)、α−1,6−グルコシダ
ーゼ0.4 単位(/基質g)、塩化カルシウム0.O
IM、硫酸アルミニウム アンモニウム5XlO−’M
の組成の下、pH4,5,60℃で糖化反応を行った。
ンシュガー社製、商品名Spezyme GA200)
0. 03%(/固形分)、α−1,6−グルコシダ
ーゼ0.4 単位(/基質g)、塩化カルシウム0.O
IM、硫酸アルミニウム アンモニウム5XlO−’M
の組成の下、pH4,5,60℃で糖化反応を行った。
得られた結果は第6表に示す通りであった。
表から明らかなように、アルミニウム塩を添加するとα
−1,6−グルコシダーゼの安定性が増加するため、高
い収量でグルコースが得られた。
−1,6−グルコシダーゼの安定性が増加するため、高
い収量でグルコースが得られた。
第6表
アルミ塩 α−1,6−クル グルコース含量−−93
,4
,4
Claims (1)
- α−1,6−グルコシダーゼを用いる反応をアルミニウ
ム塩の存在下で行うことを特徴とするα−1,6−グル
コシダーゼの安定化法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP26230287A JPH01104171A (ja) | 1987-10-16 | 1987-10-16 | α−1・6−グルコシダーゼの安定化法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP26230287A JPH01104171A (ja) | 1987-10-16 | 1987-10-16 | α−1・6−グルコシダーゼの安定化法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH01104171A true JPH01104171A (ja) | 1989-04-21 |
Family
ID=17373897
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP26230287A Pending JPH01104171A (ja) | 1987-10-16 | 1987-10-16 | α−1・6−グルコシダーゼの安定化法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH01104171A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5169771A (en) * | 1989-08-18 | 1992-12-08 | Rohm Gmbh | Method for making a sedimentation resistant stable enzyme dispersion |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS62262303A (ja) * | 1986-05-09 | 1987-11-14 | 宇部興産株式会社 | 高誘電率磁器組成物 |
-
1987
- 1987-10-16 JP JP26230287A patent/JPH01104171A/ja active Pending
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS62262303A (ja) * | 1986-05-09 | 1987-11-14 | 宇部興産株式会社 | 高誘電率磁器組成物 |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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US5169771A (en) * | 1989-08-18 | 1992-12-08 | Rohm Gmbh | Method for making a sedimentation resistant stable enzyme dispersion |
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