JPH01104160A - 遺伝子組換え大腸菌及びそれを用いるl‐フエニルアラニンの製造方法 - Google Patents
遺伝子組換え大腸菌及びそれを用いるl‐フエニルアラニンの製造方法Info
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-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
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- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
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- C12N15/70—Vectors or expression systems specially adapted for E. coli
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-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
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- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/22—Processes using, or culture media containing, cellulose or hydrolysates thereof
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
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- C12N15/52—Genes encoding for enzymes or proenzymes
-
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- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P13/00—Preparation of nitrogen-containing organic compounds
- C12P13/04—Alpha- or beta- amino acids
- C12P13/22—Tryptophan; Tyrosine; Phenylalanine; 3,4-Dihydroxyphenylalanine
-
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は組換え大腸菌(エスシエリキア・コリEsch
erichia colt)菌株を用いてL−フェニル
アラニンを製造する方法に関する。より詳しくは、本発
明はL−フェニルアラニン生産遺伝子を含有する新規な
大腸菌菌株、ならびにこの新菌株を用いてL−フェニル
アラニンを製造する方法に関する。
erichia colt)菌株を用いてL−フェニル
アラニンを製造する方法に関する。より詳しくは、本発
明はL−フェニルアラニン生産遺伝子を含有する新規な
大腸菌菌株、ならびにこの新菌株を用いてL−フェニル
アラニンを製造する方法に関する。
L−フェニルアラニンは必須アミノ酸の一種であり、甘
味剤であるアスパルテーム(登録商標)の合成に使用さ
れる。各種の微生物を使用することによりL−フェニル
アラニンを製造する方法は既に多く知られている。例え
ば特開昭37−6345、同60−160890号公報
にはチロシン要求株であるプレビバクテリュウム(Br
evibacterium)属の菌株又はコリネバクテ
リュウム(Corynebacterium)属の菌株
を使用してL−フェニルアラニンを製造スる方法が記載
されている。特開昭55−165797号公報には、同
様な方法としてチロシン要求株であり、かつトリプトフ
ァン類縁化合物に対して耐性を示す大腸菌菌株を用いる
方法が示されている。
味剤であるアスパルテーム(登録商標)の合成に使用さ
れる。各種の微生物を使用することによりL−フェニル
アラニンを製造する方法は既に多く知られている。例え
ば特開昭37−6345、同60−160890号公報
にはチロシン要求株であるプレビバクテリュウム(Br
evibacterium)属の菌株又はコリネバクテ
リュウム(Corynebacterium)属の菌株
を使用してL−フェニルアラニンを製造スる方法が記載
されている。特開昭55−165797号公報には、同
様な方法としてチロシン要求株であり、かつトリプトフ
ァン類縁化合物に対して耐性を示す大腸菌菌株を用いる
方法が示されている。
しかし、以上挙げた従来技術における各方法はL−フェ
ニルアラニンを工業的規模で製造するには適した方法と
は云えなかった。さらに、これらの方法でのL−フェニ
ルアラニンの生産収率はいずれも低かった。
ニルアラニンを工業的規模で製造するには適した方法と
は云えなかった。さらに、これらの方法でのL−フェニ
ルアラニンの生産収率はいずれも低かった。
そのため、成る一つの生成物を製造する従来技術の方法
においては、遺伝子工学による特定な方法で、これに関
与する律速酵素(rate −limiting酵素)
をコードする遺伝子のコピー数を増幅させる手段が採ら
れていることが知られている。しかし、細胞中で遺伝子
が過剰に発現されて、プラスミド中の遺伝子の欠失や、
細胞死滅をきたす細胞の溶解が起る場合が多かった。プ
ラスミドの発現を制御する方法としては、多くの手段が
ある、例えば、IPTG (イソプロビルチオーガラク
トシフド)のような誘導物質がj2acオペレーター系
において用いられ、lacオペロンやアルカリホスファ
ターゼ遺伝子の制御に利用されている(A、イタクマら
、r 5cience J 、 198巻、1056頁
(1977) :及びA、ミャノハラら、r Proc
、Nat l 、Acad、Sci、U、S、八、、4
80巻、1頁(1983) ;参照〕 ファージの温度感受性レプレッサーcI857を用いる
温度シフト(shut)法も知られている。レプレッサ
ーは普通、37℃で活性を示し、そしてオペレーターを
阻害するので転写が起らないが、37℃より高い温度で
は、レプレッサーは活性を失なうので阻害作用を発揮す
ることができなくなり、このためにレプレッサーの制御
下で遺伝子の発現が行われることになる。
においては、遺伝子工学による特定な方法で、これに関
与する律速酵素(rate −limiting酵素)
をコードする遺伝子のコピー数を増幅させる手段が採ら
れていることが知られている。しかし、細胞中で遺伝子
が過剰に発現されて、プラスミド中の遺伝子の欠失や、
細胞死滅をきたす細胞の溶解が起る場合が多かった。プ
ラスミドの発現を制御する方法としては、多くの手段が
ある、例えば、IPTG (イソプロビルチオーガラク
トシフド)のような誘導物質がj2acオペレーター系
において用いられ、lacオペロンやアルカリホスファ
ターゼ遺伝子の制御に利用されている(A、イタクマら
、r 5cience J 、 198巻、1056頁
(1977) :及びA、ミャノハラら、r Proc
、Nat l 、Acad、Sci、U、S、八、、4
80巻、1頁(1983) ;参照〕 ファージの温度感受性レプレッサーcI857を用いる
温度シフト(shut)法も知られている。レプレッサ
ーは普通、37℃で活性を示し、そしてオペレーターを
阻害するので転写が起らないが、37℃より高い温度で
は、レプレッサーは活性を失なうので阻害作用を発揮す
ることができなくなり、このためにレプレッサーの制御
下で遺伝子の発現が行われることになる。
従って、本発明の要旨の一つは、フェニルアラニンを生
産でき且つそのフェニルアラニンの生産能が30℃〜3
5℃、特に30℃〜32℃の温度で最適になるようなフ
ェニルアラニン生産性の新規な大腸菌形質転換株を提供
することにある。この大腸菌はL−フェニルアラニンの
生合成経路における酵素を生産する遺伝子を含有するプ
ラスミドにより形質転換できるものである。そのような
形質転換に用いるプラスミドは温度域受性のレプレッサ
ーを含有することができ、しかもそのレプレッサーは、
該レプレッサーにより前記プラスミドの最適発現が、従
来法でのものが38℃より高い温度下のものであったの
に比べ、30〜35℃の温度下で達成することのできる
ものである。このプラスミドは、カナマイシン耐性遺伝
子と、phe A遺伝子と、aro F遺伝子とを含有
するプラスミドpMK 20でありうる。このプラスミ
ドの調製には、制限酵素PstI、 EcoRI及び旧
nd I[[が使用できる。その他の制限酵素+ Af
j2 III 1lae L Bam III B
gj2 II、Dra mなども、前記プラスミドの
調製に使用できる。本発明における好ましい大腸菌菌株
としては、大腸菌K −12,肺PEC13−60株(
韓国の寄託所[KへIST J−に1987年3月25
日、rKCTC8237PJとして寄託し;また米国の
アメリカン・タイプ・カルチュア・コレクションに19
87年7月9日にrATCC67459Jとして寄託済
)又はその変異株が挙げられ、これらはいずれも本発明
の好ましいフェニルアラニン生産株である。この大腸菌
に−12、MWPEC13,−60株の形態学性性状は
通常の大腸菌のそれと同じであるが、遺伝子学的性質が
異なるものである。
産でき且つそのフェニルアラニンの生産能が30℃〜3
5℃、特に30℃〜32℃の温度で最適になるようなフ
ェニルアラニン生産性の新規な大腸菌形質転換株を提供
することにある。この大腸菌はL−フェニルアラニンの
生合成経路における酵素を生産する遺伝子を含有するプ
ラスミドにより形質転換できるものである。そのような
形質転換に用いるプラスミドは温度域受性のレプレッサ
ーを含有することができ、しかもそのレプレッサーは、
該レプレッサーにより前記プラスミドの最適発現が、従
来法でのものが38℃より高い温度下のものであったの
に比べ、30〜35℃の温度下で達成することのできる
ものである。このプラスミドは、カナマイシン耐性遺伝
子と、phe A遺伝子と、aro F遺伝子とを含有
するプラスミドpMK 20でありうる。このプラスミ
ドの調製には、制限酵素PstI、 EcoRI及び旧
nd I[[が使用できる。その他の制限酵素+ Af
j2 III 1lae L Bam III B
gj2 II、Dra mなども、前記プラスミドの
調製に使用できる。本発明における好ましい大腸菌菌株
としては、大腸菌K −12,肺PEC13−60株(
韓国の寄託所[KへIST J−に1987年3月25
日、rKCTC8237PJとして寄託し;また米国の
アメリカン・タイプ・カルチュア・コレクションに19
87年7月9日にrATCC67459Jとして寄託済
)又はその変異株が挙げられ、これらはいずれも本発明
の好ましいフェニルアラニン生産株である。この大腸菌
に−12、MWPEC13,−60株の形態学性性状は
通常の大腸菌のそれと同じであるが、遺伝子学的性質が
異なるものである。
更に、本発明は、大腸菌を形質転換するのに使用すると
、温度30℃〜35℃で最適なフェニルアラニン生産能
を示す大腸菌形質転換菌株を作成できるような複製可能
な組換えプラスミドも要旨の一つとする。この本発明の
プラスミドは、好ましくはphe A遺伝子と、aro
F遺伝子と、これらの遺伝子の発現を制御する温度感
受性プロモーターとを含有するものである。
、温度30℃〜35℃で最適なフェニルアラニン生産能
を示す大腸菌形質転換菌株を作成できるような複製可能
な組換えプラスミドも要旨の一つとする。この本発明の
プラスミドは、好ましくはphe A遺伝子と、aro
F遺伝子と、これらの遺伝子の発現を制御する温度感
受性プロモーターとを含有するものである。
また更に、本発明は、本発明に係る前記のフェニルアラ
ニン生産能を有する大腸菌菌株を培地中に培養してフェ
ニルアラニンを製造する方法をも要旨の一つとする。
ニン生産能を有する大腸菌菌株を培地中に培養してフェ
ニルアラニンを製造する方法をも要旨の一つとする。
この本発明の方法における大腸菌の培養は30℃〜35
℃、好ましくは30°C〜32℃の温度下にて行なうの
がよい。この培地には第一次栄養源として塘及びその他
の主要な栄養源を含有させる。この糖としてはブドウt
I!(グルコース)であることができ、あるいはグルコ
ース、−果糖及び蔗糖を含む加水分解混合物であること
ができる。本発明の方法には、さらヒ、培地の通気、攪
拌工程や、培養液からのフェニルアラニンの回収工程を
含めることができる。このフェニルアラニンの精製工程
を含めてもよい。
℃、好ましくは30°C〜32℃の温度下にて行なうの
がよい。この培地には第一次栄養源として塘及びその他
の主要な栄養源を含有させる。この糖としてはブドウt
I!(グルコース)であることができ、あるいはグルコ
ース、−果糖及び蔗糖を含む加水分解混合物であること
ができる。本発明の方法には、さらヒ、培地の通気、攪
拌工程や、培養液からのフェニルアラニンの回収工程を
含めることができる。このフェニルアラニンの精製工程
を含めてもよい。
以下に更に詳細な説明を行って、本発明のその他の目的
やその適用の範囲を明らかにする。以下の詳細な説明な
らびに具体的な実施例は、本発明の好ましい態様に関す
るものであるが、これらはあくまで例示的なものであり
、本発明の要旨を変更しない範囲で、多くの変形や修飾
のあり得ることは当業者にとって自明なことである。す
なわち、本発明は後記の説明と、添付図面によりさらに
よく理解できるであろう。添付図面において;第1図は
、本発明に用いるに好ましい大腸菌に−12゜MWPE
C13−60株に組込まれたプラスミドの作成に用いら
れる組換えプラスミドpMW 12の調製方法を示す図
式図と、各種プラスミドの制限酵素地図を示し、また第
3図は同様に°−ミ゛ 病品用いられる組換えプラスミドpMW 13の調製方
法を示す図式図と、各種プラスミドの制限酵素地図を示
す。
やその適用の範囲を明らかにする。以下の詳細な説明な
らびに具体的な実施例は、本発明の好ましい態様に関す
るものであるが、これらはあくまで例示的なものであり
、本発明の要旨を変更しない範囲で、多くの変形や修飾
のあり得ることは当業者にとって自明なことである。す
なわち、本発明は後記の説明と、添付図面によりさらに
よく理解できるであろう。添付図面において;第1図は
、本発明に用いるに好ましい大腸菌に−12゜MWPE
C13−60株に組込まれたプラスミドの作成に用いら
れる組換えプラスミドpMW 12の調製方法を示す図
式図と、各種プラスミドの制限酵素地図を示し、また第
3図は同様に°−ミ゛ 病品用いられる組換えプラスミドpMW 13の調製方
法を示す図式図と、各種プラスミドの制限酵素地図を示
す。
L−フェニルアラニンの製造に用いられる本発明の大腸
菌形質転換株の作成のため形質転換に使用される前記a
ro F遺伝子及びphe、A遺伝子は大腸@MWEc
101−5(韓国のrKAIST Jに1987年3
月25日、rKCTC8234pJとして寄託)からシ
ョットガン法により調製される。この際には、大腸菌M
W[IC101−5は、生合成代謝の制御からデプレス
(depress)されている。また、この際、ラムダ
(Lambda)ファージのpm −ptプロモーター
はプラスミドの発現増大のプロセスに利用される。
菌形質転換株の作成のため形質転換に使用される前記a
ro F遺伝子及びphe、A遺伝子は大腸@MWEc
101−5(韓国のrKAIST Jに1987年3
月25日、rKCTC8234pJとして寄託)からシ
ョットガン法により調製される。この際には、大腸菌M
W[IC101−5は、生合成代謝の制御からデプレス
(depress)されている。また、この際、ラムダ
(Lambda)ファージのpm −ptプロモーター
はプラスミドの発現増大のプロセスに利用される。
次に、本発明を説明するに関連して、生物体、特に大腸
菌におけるフェニルアラニン等の芳香族アミノ酸の生合
成の代謝経路及び及び機構を図式的に表示する生合成経
路チャートを以下に示す。
菌におけるフェニルアラニン等の芳香族アミノ酸の生合
成の代謝経路及び及び機構を図式的に表示する生合成経
路チャートを以下に示す。
上記チャートにおいて、記号(1)〜(V)は次の意味
を示すニー (1)はaro F遺伝子(チロシン 抑制)によりコ
ードされるDAHPシンターゼisoenzymeを表
わす。
を示すニー (1)はaro F遺伝子(チロシン 抑制)によりコ
ードされるDAHPシンターゼisoenzymeを表
わす。
(■)はaro G遺伝子(フェニルアラニン抑制)に
よりコードされるDAHPシンターゼisoenzym
eを表わす。
よりコードされるDAHPシンターゼisoenzym
eを表わす。
(I[[)はaro H遺伝子(トリプトファン抑制)
によりコードされるDAHPシンターゼisoenzy
meを表わす。
によりコードされるDAHPシンターゼisoenzy
meを表わす。
(IV)はコリスメート ムターゼP−プレフェナート
デハイドラターゼを表わす。
デハイドラターゼを表わす。
(V)はコリスメート ムターゼT−プレフェナート
デバイドロゲナーゼを表わす。
デバイドロゲナーゼを表わす。
・・・・・・・・・Oはフィードバック阻害。
・・・・・・・・・・はフィードバック抑制上記のチャ
ートについて、組換えプラスミドを用いる場合にL−フ
ェニルアラニンの生成行程は、大腸菌菌株の細胞中の酵
素の作用で制御される。
ートについて、組換えプラスミドを用いる場合にL−フ
ェニルアラニンの生成行程は、大腸菌菌株の細胞中の酵
素の作用で制御される。
その反応を制御する酵素の一つとして挙げられるものは
、コリスミ酸ムターゼP−プレフエナートデヒドラター
ゼである。また、反応を制御するその他の酵素の一つと
しては、3−デオキシ−D−アラビノへプチュロソナー
トー7−ホスフエートシンターゼ(DAHPシンターゼ
)が挙げられる。このDAHPシンターゼはaro F
、 aro G及びaro H遺伝子によってそれぞ
れコードされる3種のイソ酵素(isoenzyme)
として存在する。
、コリスミ酸ムターゼP−プレフエナートデヒドラター
ゼである。また、反応を制御するその他の酵素の一つと
しては、3−デオキシ−D−アラビノへプチュロソナー
トー7−ホスフエートシンターゼ(DAHPシンターゼ
)が挙げられる。このDAHPシンターゼはaro F
、 aro G及びaro H遺伝子によってそれぞ
れコードされる3種のイソ酵素(isoenzyme)
として存在する。
添付図面の第1図及び第2図には、各種のプラスミドの
調製方法が図式的に示されるが、プラスミドの調製法の
具体的な手法は、文献r Recombin−ant
DNA Methodology J (Jo−An
ne、 R,Dillion。
調製方法が図式的に示されるが、プラスミドの調製法の
具体的な手法は、文献r Recombin−ant
DNA Methodology J (Jo−An
ne、 R,Dillion。
Anwar Na51m、 Earle R,Nest
mann)及びr MolecularCloning
J (T、Maniatis+ E、 F、 Fr1
tsch、 J、Sambrook)の記載に従って行
われた。
mann)及びr MolecularCloning
J (T、Maniatis+ E、 F、 Fr1
tsch、 J、Sambrook)の記載に従って行
われた。
本発明のフェニルアラニン生産能を有する大腸菌形質転
換株の一例である新菌株大腸菌K −12゜MWPEc
13−60(ATCC67459)は次の通り調製さ
れたものである。
換株の一例である新菌株大腸菌K −12゜MWPEc
13−60(ATCC67459)は次の通り調製さ
れたものである。
大腸面に−12MWEC101−5株(韓国のrKAI
sTJにKCTC8234Pとして寄託)をLB培地(
バタトトリプトン1%、バクトイ−ストエキストラクト
0.5%、塩化ナトリウム1%、pH7,4)中で37
℃、15時間培養してから、この菌株の細胞を採取する
。
sTJにKCTC8234Pとして寄託)をLB培地(
バタトトリプトン1%、バクトイ−ストエキストラクト
0.5%、塩化ナトリウム1%、pH7,4)中で37
℃、15時間培養してから、この菌株の細胞を採取する
。
単離したプラスミドをアルカリ抽出法(Molecul
arC1oning+ A Laboratory M
anual (1982))ならびにC5ct密度勾配
遠心法により処理して染色体(chromosomal
) DNA(cDNA)を1潤製する。次いでこのcD
NAをブタノール処理と透析により精製する(添付図面
第1図参照)。
arC1oning+ A Laboratory M
anual (1982))ならびにC5ct密度勾配
遠心法により処理して染色体(chromosomal
) DNA(cDNA)を1潤製する。次いでこのcD
NAをブタノール処理と透析により精製する(添付図面
第1図参照)。
他方、第1図に示されて本発明で組換えプラスミドの作
成に使用される大腸菌HBIOI由来のプラスミドρB
R322、大腸菌由来のプラスミドpPLC2833、
大腸菌IIBIOI由来のプラスミドpTR262及び
大腸菌HB Lot由来のプラスミドpMK 20の各
プラスミドDNAも、上述の方法にて採取、精製する。
成に使用される大腸菌HBIOI由来のプラスミドρB
R322、大腸菌由来のプラスミドpPLC2833、
大腸菌IIBIOI由来のプラスミドpTR262及び
大腸菌HB Lot由来のプラスミドpMK 20の各
プラスミドDNAも、上述の方法にて採取、精製する。
なお大腸菌MWEC101−5株から得られた前記の染
色体cDNAは、制限酵素を含む緩衝液(塩化ナトリウ
ム50mM、トリス(pH7,5)10mM、塩化マグ
ネシウム10mM、ジチオスレイトール1 mM)中で
制限酵素EcoRrを用いて、37℃、1時間かけて消
化、切断する。通常の方法で制限酵素を不活性化し、さ
らにEcoRI切断后のcDNAを制限酵素Pst
’Iで切断する。その反応液から4〜?kbの大きさの
フラグメントを回収(0,7%(重量)、アガロースゲ
ルを使用)し、このフラグメントをターゲットとして採
取すべき遺伝子とする。前記のプラスミドpBR322
も上記の制限酵素EcoRIとPst Iで切断する。
色体cDNAは、制限酵素を含む緩衝液(塩化ナトリウ
ム50mM、トリス(pH7,5)10mM、塩化マグ
ネシウム10mM、ジチオスレイトール1 mM)中で
制限酵素EcoRrを用いて、37℃、1時間かけて消
化、切断する。通常の方法で制限酵素を不活性化し、さ
らにEcoRI切断后のcDNAを制限酵素Pst
’Iで切断する。その反応液から4〜?kbの大きさの
フラグメントを回収(0,7%(重量)、アガロースゲ
ルを使用)し、このフラグメントをターゲットとして採
取すべき遺伝子とする。前記のプラスミドpBR322
も上記の制限酵素EcoRIとPst Iで切断する。
この切断后のプラスミドpBR322と、大腸菌MWE
C101−5株から得られた前述の4−7kb遺伝子フ
ラグメントとを1=3の量比で混合する。切断后のプラ
スミドpBR322の断片と大腸菌MWEC101−5
染色体遺伝子DNAの切断フラグメントとをT、DNA
リガーゼ緩衝液〔トリス(pj17.4)0.5M、塩
化マグネシウム0.1M1ジチオ−スレイトール0.1
M、スペル ミジン10酵、^TP 10mM、ウシ血
清アルブミン1mg/mjり中で、12−14℃で12
時間連結反応にかける。
C101−5株から得られた前述の4−7kb遺伝子フ
ラグメントとを1=3の量比で混合する。切断后のプラ
スミドpBR322の断片と大腸菌MWEC101−5
染色体遺伝子DNAの切断フラグメントとをT、DNA
リガーゼ緩衝液〔トリス(pj17.4)0.5M、塩
化マグネシウム0.1M1ジチオ−スレイトール0.1
M、スペル ミジン10酵、^TP 10mM、ウシ血
清アルブミン1mg/mjり中で、12−14℃で12
時間連結反応にかける。
こうして連結された組換えプラスミドを含有する連結反
応混合物(ligation m1xture)を用い
て、Nogardの塩化カルシウム法で大腸菌フェニル
アラニン栄養要求変異株(auxotroph) (p
he A−欠失株)MWEC203−7株を形質転換す
る。こうして得られた形質転換株を、聞培地(グルコー
スLog、硫酸アンモニウム4g、リン酸カリウム2g
1硫酸マグネシウム0.5 g 、塩化第一鉄20■、
塩化マンガン10■、チアミン塩酸塩1呵、フマール酸
0.5g1蒸溜水11 、pH7,4)中で、37℃、
1時間保持する。このように処理された菌株を、テトラ
サイクリン(15μg7yd”)を含有する寒天培地に
塗抹、植菌し、10日間培養する。■培地で生育できた
組換え菌株を、選択、採取する。この選択された菌株か
ら、次にプラスミドpMW 10を単離し、これを制限
酵素旧nd、n[で切断し、さらに、制限酵素PstI
で部分的に切断してから、この制限酵素を不活性化する
。その反応混合物から、目的とするpheA遺伝子及び
aro F遺伝子含有の遺伝子フラグメントを、電気泳
動法(0,7% アガロース ゲル使用)で分離して回
収する。
応混合物(ligation m1xture)を用い
て、Nogardの塩化カルシウム法で大腸菌フェニル
アラニン栄養要求変異株(auxotroph) (p
he A−欠失株)MWEC203−7株を形質転換す
る。こうして得られた形質転換株を、聞培地(グルコー
スLog、硫酸アンモニウム4g、リン酸カリウム2g
1硫酸マグネシウム0.5 g 、塩化第一鉄20■、
塩化マンガン10■、チアミン塩酸塩1呵、フマール酸
0.5g1蒸溜水11 、pH7,4)中で、37℃、
1時間保持する。このように処理された菌株を、テトラ
サイクリン(15μg7yd”)を含有する寒天培地に
塗抹、植菌し、10日間培養する。■培地で生育できた
組換え菌株を、選択、採取する。この選択された菌株か
ら、次にプラスミドpMW 10を単離し、これを制限
酵素旧nd、n[で切断し、さらに、制限酵素PstI
で部分的に切断してから、この制限酵素を不活性化する
。その反応混合物から、目的とするpheA遺伝子及び
aro F遺伝子含有の遺伝子フラグメントを、電気泳
動法(0,7% アガロース ゲル使用)で分離して回
収する。
このようにして得られた組換えプラスミドに対しT4O
NAポリメラーゼとdNTPとの混合溶液(dATP2
5mM、dGTP25mM、dcTP25mM及びdT
TP25mMを含有)を加えてプラスミドの接着性末端
をプラント末端に変換する。
NAポリメラーゼとdNTPとの混合溶液(dATP2
5mM、dGTP25mM、dcTP25mM及びdT
TP25mMを含有)を加えてプラスミドの接着性末端
をプラント末端に変換する。
他方、カナマイシン耐性遺伝子(fun)を含有するプ
ラスミドpMK 20をPst rで処理し、その切
断反応液を上記のT、DNAポリメラーゼとdNTPと
の混合溶液に加えて、そのプラスミドの接着性末端をプ
ラント末端に変える。
ラスミドpMK 20をPst rで処理し、その切
断反応液を上記のT、DNAポリメラーゼとdNTPと
の混合溶液に加えて、そのプラスミドの接着性末端をプ
ラント末端に変える。
前述のphe A欠失菌株である大腸菌MWE203−
7株は、これを上述と同様にして形質転換する。得られ
た組換えプラスミドPMW 11は、カナマイシン50
μg/−含有する聞−寒天培地中でM誓EC203−7
株を増殖させた細胞株から前記と同様にして分離して回
収され、る。
7株は、これを上述と同様にして形質転換する。得られ
た組換えプラスミドPMW 11は、カナマイシン50
μg/−含有する聞−寒天培地中でM誓EC203−7
株を増殖させた細胞株から前記と同様にして分離して回
収され、る。
前記のプラスミドpPLc2833は、pt、プロモー
ターを含有するものであるが、このプラスミドpPLc
2833は制限酵素11am Hr、Hae IIで
処理し、その切断反応混合物から0.2kbの大きさの
PLフラグメントを2%アガロースゲル泳動法で分離、
回収する。
ターを含有するものであるが、このプラスミドpPLc
2833は制限酵素11am Hr、Hae IIで
処理し、その切断反応混合物から0.2kbの大きさの
PLフラグメントを2%アガロースゲル泳動法で分離、
回収する。
前記の如く得られた組換えプラスミドpH11は、これ
を酵素AfAnで切断し、次いでDNAポリメラーゼで
処理して両端にプラント末端を形成する。
を酵素AfAnで切断し、次いでDNAポリメラーゼで
処理して両端にプラント末端を形成する。
このように処理した後のプラスミドpMW 11に前記
のPLフラグメントを加え、連結(ligate)反応
を行って、別の組換えプラスミドを作る。このよ′うに
して作られた組換えプラスミドを用いて大腸菌phe
A欠失株のMWEC203−7株を形質転換する。
のPLフラグメントを加え、連結(ligate)反応
を行って、別の組換えプラスミドを作る。このよ′うに
して作られた組換えプラスミドを用いて大腸菌phe
A欠失株のMWEC203−7株を形質転換する。
この形質転換された株から、組換えプラスミドpMW
12を分離、回収する。この組換えプラスミドpMW
12の大きさは、プラスミドpMW 11に比べ0.2
kbだけ大きい。
12を分離、回収する。この組換えプラスミドpMW
12の大きさは、プラスミドpMW 11に比べ0.2
kbだけ大きい。
別途、温度域受性レプレッサー(CI as、)とプロ
モーター(p* )を含有するプラスミドを有するバク
テリアpTR262を、第2図に図式的に示されるよう
に、ヒドロキシルアミン塩酸塩処理(HA)と紫外線(
UV)照射により遺伝学的に変異させる。この処理され
た菌株から、゛温度感受性菌株のみを単離、回収する。
モーター(p* )を含有するプラスミドを有するバク
テリアpTR262を、第2図に図式的に示されるよう
に、ヒドロキシルアミン塩酸塩処理(HA)と紫外線(
UV)照射により遺伝学的に変異させる。この処理され
た菌株から、゛温度感受性菌株のみを単離、回収する。
このように処理した后に回収されたプラスミドを用いて
、大腸菌MWEC101−6株(韓国のrKAIST
JにKCTC8235Pとして寄託法)を形質転換する
。
、大腸菌MWEC101−6株(韓国のrKAIST
JにKCTC8235Pとして寄託法)を形質転換する
。
このように形質転換された菌株を、テトラサイタリン1
5μg7mlを含有するLB寒天培地中で、33℃で培
養する。増殖したコロニーを選別し、LB寒天培地に移
し、28℃で24時間培養する。これで増殖しなかった
大腸菌菌株から、次いで、温度感受性レプレッサーを含
有するプラスミドpTR262−10を分離、回収する
。
5μg7mlを含有するLB寒天培地中で、33℃で培
養する。増殖したコロニーを選別し、LB寒天培地に移
し、28℃で24時間培養する。これで増殖しなかった
大腸菌菌株から、次いで、温度感受性レプレッサーを含
有するプラスミドpTR262−10を分離、回収する
。
次に、第2図に図式的に示されるように、前記の組換え
プラスミドpMW 12は、これを酵素Dra I[I
で切断して、次に、T、DNAポリメラーゼを作用させ
てプラント末端を形成する。また前記のプラスミドpT
R262−10を酵素Pst IとBgj211で切
断して温度域受性レプレッサー(cI)とプロモーター
(Pi )をもつフラグメントを得る。
プラスミドpMW 12は、これを酵素Dra I[I
で切断して、次に、T、DNAポリメラーゼを作用させ
てプラント末端を形成する。また前記のプラスミドpT
R262−10を酵素Pst IとBgj211で切
断して温度域受性レプレッサー(cI)とプロモーター
(Pi )をもつフラグメントを得る。
このcIとP、lを含むフラグメントを、0.9%(重
it)アガロース ゲル泳動法で回収してから、DNA
ポリメラーゼ処理により両端にプラント末端を形成する
(大腸菌のフレノウ(1(lenow)フラグメントの
生成)このようにポリメラーゼ処理した上記フラグメン
トにT4DNAリガーゼを加えると、組換えプラスミド
pMW 13が生成される。このプラスミドpMW 1
3を用いてNorgard法で宿主菌、大腸菌MWEC
101−6株を形質転換する。かくして得られた形質転
換菌株をカナマイシン(50μs/d)を含有するLB
寒天培地で培養すると、増殖したコロニーから新菌株と
して大腸菌に−12,肚PEC13−60(ATCC6
7459)が分離、選別できる。この新菌株はL−フェ
ニルアラニンの生産能を有し本発明でフェニルアラニン
の製造に使用できる。この新菌株、大腸菌に−12,M
WPEC13−60株はアメリカン・タイプ・カルチュ
ア・コレクシラン(American TypeCul
ture Co11ection)にブタベスト条約に
もとすいて1987年7月14日に寄託し、寄託番号A
TCC67459号が付された。
it)アガロース ゲル泳動法で回収してから、DNA
ポリメラーゼ処理により両端にプラント末端を形成する
(大腸菌のフレノウ(1(lenow)フラグメントの
生成)このようにポリメラーゼ処理した上記フラグメン
トにT4DNAリガーゼを加えると、組換えプラスミド
pMW 13が生成される。このプラスミドpMW 1
3を用いてNorgard法で宿主菌、大腸菌MWEC
101−6株を形質転換する。かくして得られた形質転
換菌株をカナマイシン(50μs/d)を含有するLB
寒天培地で培養すると、増殖したコロニーから新菌株と
して大腸菌に−12,肚PEC13−60(ATCC6
7459)が分離、選別できる。この新菌株はL−フェ
ニルアラニンの生産能を有し本発明でフェニルアラニン
の製造に使用できる。この新菌株、大腸菌に−12,M
WPEC13−60株はアメリカン・タイプ・カルチュ
ア・コレクシラン(American TypeCul
ture Co11ection)にブタベスト条約に
もとすいて1987年7月14日に寄託し、寄託番号A
TCC67459号が付された。
大腸菌に−12,M畦EC13−60株の菌学的性状は
宿主菌株の大腸菌MWEC101−6株のそれと同じで
ある。しかし、宿主菌株MWEC101−6に比較して
、変異株MWPEC13−60のL−フェニルアラニン
の生産収量と、その安定性は下記の通り高い値を示す(
後記の表1及び■参照)。
宿主菌株の大腸菌MWEC101−6株のそれと同じで
ある。しかし、宿主菌株MWEC101−6に比較して
、変異株MWPEC13−60のL−フェニルアラニン
の生産収量と、その安定性は下記の通り高い値を示す(
後記の表1及び■参照)。
表 ■
上記データーは実施例2の手順に従って得た。
表 ■
夫々の供試大腸菌菌株をLB培地にて培養してから、試
料を採取し、それぞれLB寒天培地及びカナマイシン(
カナマイシン50μg/m)含有LB寒天培地上に植菌
し、24時間培養後にコロニー数を数えて生存率を算定
した。
料を採取し、それぞれLB寒天培地及びカナマイシン(
カナマイシン50μg/m)含有LB寒天培地上に植菌
し、24時間培養後にコロニー数を数えて生存率を算定
した。
次に、実施例により本発明をさらに詳しく説明するが、
これらの実施例はあくまで例示的なものであって本発明
を何ら限定するものではない。
これらの実施例はあくまで例示的なものであって本発明
を何ら限定するものではない。
実施例I
(八)使用菌株
大腸菌に−12,MWPEC13−60(本発明の一菌
株例) (B) 種培地の組成 グルコース 5 %バタトートリ
プトン 1 %バクトー酵母抽出物
1 %塩化ナトリウム 0.1
%カナマイシン 10■/7!pH7
,0 (C) 発酵生産培地の組成 グルコース 6 %硫酸カルシウ
ム 0.04%硫酸アンモニウム
2 %クエン酸ナトリウム 0
.05%フマル酸 0.05%
塩化マグネシウム 0.05%リン酸カ
リウム(−塩基)0.1% /リン酸カリウム(二基基) バクト酵母抽出物 0.1%グルタミン酸
0.05%塩化コバルト
0.1■/l硫酸亜鉛
1 ■/1塩≠ 塩化カルシカルシウム 5 ■/lチアミン塩
酸塩 10 mg/lニコチン酸
10 rrc/j!pH7,0 (D) 発酵によるL−フェニルアラニンの生産試験
。
株例) (B) 種培地の組成 グルコース 5 %バタトートリ
プトン 1 %バクトー酵母抽出物
1 %塩化ナトリウム 0.1
%カナマイシン 10■/7!pH7
,0 (C) 発酵生産培地の組成 グルコース 6 %硫酸カルシウ
ム 0.04%硫酸アンモニウム
2 %クエン酸ナトリウム 0
.05%フマル酸 0.05%
塩化マグネシウム 0.05%リン酸カ
リウム(−塩基)0.1% /リン酸カリウム(二基基) バクト酵母抽出物 0.1%グルタミン酸
0.05%塩化コバルト
0.1■/l硫酸亜鉛
1 ■/1塩≠ 塩化カルシカルシウム 5 ■/lチアミン塩
酸塩 10 mg/lニコチン酸
10 rrc/j!pH7,0 (D) 発酵によるL−フェニルアラニンの生産試験
。
500−各試験フラスコに種培地CB)の5Qmj!を
入れ、120℃で20分間加熱した。本発明による新菌
株、大腸菌に−12,wtpzc 13−60(^TC
CNa 67459)をこのフラスコに入れ、30℃で
12Orpmの回転速度で16時間培養して種培養物を
得た。他方、発酵生産培地(C)を上述の組成で調製し
た。
入れ、120℃で20分間加熱した。本発明による新菌
株、大腸菌に−12,wtpzc 13−60(^TC
CNa 67459)をこのフラスコに入れ、30℃で
12Orpmの回転速度で16時間培養して種培養物を
得た。他方、発酵生産培地(C)を上述の組成で調製し
た。
炭酸カルシウム(5%)を、上記の発酵生産培地(C)
に入れ、これに上記の種培養物’l mlを加え、32
℃で35時間攪拌培養させた。発酵終了後、L−フェニ
ルアラニンの収量は測定すると12.46g/ 1であ
った。
に入れ、これに上記の種培養物’l mlを加え、32
℃で35時間攪拌培養させた。発酵終了後、L−フェニ
ルアラニンの収量は測定すると12.46g/ 1であ
った。
スJlIL影
使用される大腸菌菌株(A)、種培地(B)及び発酵生
産培地(C)は実施例1と同じである。
産培地(C)は実施例1と同じである。
発酵によるL−フェニルアラニンの生産試験を次の通り
行った。
行った。
50〇−容のフラスコに種培地(B)の50−を入れ、
120℃で20分間加熱した。新菌株の大腸菌に〜12
゜MWPHC13−60(ATCC67459)をこの
フラスコに入れ、30℃で16時間培養して種培養物を
得た。発酵生産培地(C)の201を発酵槽に入れた。
120℃で20分間加熱した。新菌株の大腸菌に〜12
゜MWPHC13−60(ATCC67459)をこの
フラスコに入れ、30℃で16時間培養して種培養物を
得た。発酵生産培地(C)の201を発酵槽に入れた。
上記の種培養液をこれに接種して32℃で55時間培養
した。(400rpmで攪拌?0.75 VVII+酸
素供給率)。
した。(400rpmで攪拌?0.75 VVII+酸
素供給率)。
培養中は、グルコース濃度が1%以下に下ったら発酵槽
に水酸化アンモニウムと60%グルコース溶液をフィー
ドしく2回) 、pHを7.0〜7.2に保った。
に水酸化アンモニウムと60%グルコース溶液をフィー
ドしく2回) 、pHを7.0〜7.2に保った。
培養中に用いられるグルコースの総量は160g/lで
あった。かくてL−フェニルアラニンが収量として42
.8g/ 1の濃度で得られた。発酵液11を通常の方
法、即ちイオン交換樹脂で吸着処理し、水酸化アンモニ
ウムでの抽出により精製を行うと、L−フェニルアラニ
ンが粗結晶(38,52g/ l )として得られた。
あった。かくてL−フェニルアラニンが収量として42
.8g/ 1の濃度で得られた。発酵液11を通常の方
法、即ちイオン交換樹脂で吸着処理し、水酸化アンモニ
ウムでの抽出により精製を行うと、L−フェニルアラニ
ンが粗結晶(38,52g/ l )として得られた。
天−権■主
グルコースの代りに、蔗糖のインベルターゼ加水分解物
、すなわちグルコース、果糖、蔗糖を含有する糖混合物
を用いる以外は実施例1と同様に培養を行なった。L−
フェニルアラニンの収量は43.7g/ 12であった
。
、すなわちグルコース、果糖、蔗糖を含有する糖混合物
を用いる以外は実施例1と同様に培養を行なった。L−
フェニルアラニンの収量は43.7g/ 12であった
。
第1図及び第2図は夫々に、本発明に用いるのに好まし
い新菌株の大腸菌に−12,MWPEC13−16株に
組込まれたプラスミドの作成に用いられる組換えプラス
ミドpMW 12及びプラスミドpMW 13の調製方
法を示す図式図と、各種プラスミドの制限酵素地図を示
す。
い新菌株の大腸菌に−12,MWPEC13−16株に
組込まれたプラスミドの作成に用いられる組換えプラス
ミドpMW 12及びプラスミドpMW 13の調製方
法を示す図式図と、各種プラスミドの制限酵素地図を示
す。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、フェニルアラニン生産能を有し、かつそのフェニル
アラニン産生最適温度が30℃〜35℃であることを特
徴とする大腸菌菌株。 2、フェニルアラニンの生合成経路に関与する酵素を生
産する遺伝子を含有するプラスミドで形質転換された請
求項1記載の大腸菌菌株。 3、フェニルアラニン産生最適温度が30℃〜32℃で
ある請求項1記載の大腸菌菌株。 4、大腸菌K−12、MWPEC13−60株(ATC
C67459)又はその変異株である請求項1記載の大
腸菌菌株。 5、請求項2記載のプラスミドがカナマイシン耐性遺伝
子、pheA遺伝子及びaroF遺伝子を含有するプラ
スミドpMK20である請求項2記載の大腸菌菌株。 6、請求項2記載のプラスミドは制限酵素Pst I 、
EcoR I 及びHindIIIを用いて調製されたのであ
る請求項2記載の大腸菌菌株。 7、請求項2記載のプラスミドは制限酵素AflII、H
aeII、BamH I 、BglII及びDraIIIを用いて
調製されたものである請求項2記載の大腸菌菌株。 8、大腸菌を形質転換するのに用いると、フェニルアラ
ニン産生最適温度が30℃〜35℃であるフェニルアラ
ニン産生能を有する大腸菌形質転換株を作成できる複製
可能な組換えプラスミド。 9、pheA−及びaroF遺伝子を含有し、さらに遺
伝子の発現を制御する温度感受性プロモーターを含有す
る請求項8記載のプラスミド。 10、請求項1記載の大腸菌菌株を培地中で培養するこ
とを特徴とする、フェニルアラニンの製造方法。 11、大腸菌菌株を温度30℃〜35℃で培養する請求
項10記載の方法。 12、培養温度が30℃〜32℃である請求項10記載
の方法。 13、糖の存在下で培養を行なう請求項10記載の方法
。 14、請求項13記載の糖がブドウ糖、果糖、蔗糖から
なる加水分解混合物である請求項13記載の方法。 15、培養物からL−フェニルアラニンを回収する工程
を含む請求項10記載の方法。 16、培地の通気、攪拌を行なう請求項10記載の方法
。 17、回収されたフェニルアラニンを精製する工程を含
む請求項16記載の方法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
KR87-2816 | 1987-03-26 | ||
KR1019870002816A KR890003714B1 (ko) | 1987-03-26 | 1987-03-26 | 유전자 조작 미생물에 의한 l-페닐알라닌 제조방법 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH01104160A true JPH01104160A (ja) | 1989-04-21 |
JPH062052B2 JPH062052B2 (ja) | 1994-01-12 |
Family
ID=19260316
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP63069928A Expired - Lifetime JPH062052B2 (ja) | 1987-03-26 | 1988-03-25 | 遺伝子組換え大腸菌及びそれを用いるl‐フエニルアラニンの製造方法 |
Country Status (4)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US5008190A (ja) |
EP (1) | EP0284185B1 (ja) |
JP (1) | JPH062052B2 (ja) |
KR (1) | KR890003714B1 (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4856492A (en) * | 1987-05-26 | 1989-08-15 | Nippon Furnace Kogyo Kaisha Ltd. | Radiant tube burner |
Families Citing this family (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
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KR880011334A (ko) | 1988-10-27 |
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