JP7374883B2 - 核酸分子およびその使用 - Google Patents
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Description
ASCIIテキストファイル(名称:4159_493PC01_ST25;サイズ:434,561バイト;作成日:2018年8月9日)の電子的に提出された配列表の内容は、参照により本明細書に完全に組み入れる。
(a)パルボウイルス科(Parvoviridae)の非AAVファミリーメンバーのITRである第1のITR;
(b)組織特異的プロモーター配列、例えば、TTPプロモーター;
(c)イントロン、例えば、合成イントロン;
(d)治療的タンパク質、例えば凝固因子またはmiRNAをコードするヌクレオチド配列;
(e)転写後調節エレメント、例えば、WPRE;
(f)3’UTRポリ(A)テール配列、例えば、bGHpA;および
(g)パルボウイルス科(Parvoviridae)の非AAVファミリーメンバーのITRである第2のITR、
を含む。
用語「1つ(a)」または「1つ(an)」の実体とは、その実体の1つまたはそれ以上を指す点に留意する:例えば、「ヌクレオチド配列」は、1つまたはそれ以上のヌクレオチド配列を表すと理解される。同様に、「治療的タンパク質」および「miRNA」は、1つまたはそれ以上の治療的タンパク質および1つまたはそれ以上のmiRNAをそれぞれ表すと理解される。このように、用語「a」(または、「an」)、「1つまたはそれ以上」および「少なくとも1つ」は、本明細書で互換的に使用することができる。
本開示は、標的タンパク質の発現をモジュレートすることができる治療的タンパク質または遺伝子をコードする、プラスミド様、無カプシドの核酸分子に関する。ウイルスのタンパク質の殻であるカプシドは、ウイルスの遺伝物質を封入する。カプシドは、ウイルスゲノムを保護し、ゲノムを宿主に送達し、宿主と相互作用することによって、ビリオンの機能を助けることが知られている。それにもかかわらず、ウイルスカプシドは、ベクターのパッケージング能力の制限および/または、特に遺伝子療法で使用する場合の免疫応答の誘導における因子である可能性がある。
(a)パルボウイルス科(Parvoviridae)の非AAVファミリーメンバーのITRである第1のITR;
(b)組織特異的プロモーター配列、例えばTTPプロモーター;
(c)イントロン、例えば合成イントロン;
(d)miRNAまたは治療的タンパク質、例えば凝固因子をコードするヌクレオチド;
(e)転写後調節エレメント、例えばWPRE;
(f)3’UTRポリ(A)テール配列、例えばbGHpA;
(g)パルボウイルス科(Parvoviridae)の非AAVファミリーメンバーのITRである第2のITR。
(a)パルボウイルス科(Parvoviridae)の非AAVファミリーメンバーのITRである第1のITR;
(b)組織特異的プロモーター配列、例えばTTPプロモーター;
(c)イントロン、例えば合成イントロン;
(d)miRNAをコードするヌクレオチド、ここで、miRNAは、SOD1、HTT、RHOまたは任意のその組合せから選択される標的遺伝子の発現を下方制御する;
(e)転写後調節エレメント、例えばWPRE;
(f)3’UTRポリ(A)テール配列、例えばbGHpA;
(g)パルボウイルス科(Parvoviridae)の非AAVファミリーメンバーのITRである第2のITR。
(a)パルボウイルス科(Parvoviridae)の非AAVファミリーメンバーのITRである第1のITR;
(b)組織特異的プロモーター配列、例えばTTPプロモーター;
(c)イントロン、例えば合成イントロン;
(d)X連鎖ジストロフィン、MTM1(ミオチューブラリン)、チロシン水酸化酵素、AADC、シクロヒドロラーゼ、SMN1、FXN(フラタキシン)、GUCY2D、RS1、CFH、HTRA、ARMS、CFB/CC2、CNGA/CNGB、Prf65、ARSA、PSAP、IDUA(MPS I)、IDS(MPS II)、PAH、GAA(酸性アルファ-グルコシダーゼ)または任意のその組合せをコードするヌクレオチド;
(e)転写後調節エレメント、例えばWPRE;
(f)3’UTRポリ(A)テール配列、例えばbGHpA;
(g)パルボウイルス科(Parvoviridae)の非AAVファミリーメンバーのITRである第2のITR。
(a)AAVのITRである第1のITR、例えばAAV血清型2ゲノム;
(b)組織特異的プロモーター配列、例えばTTPプロモーター;
(c)イントロン、例えば合成イントロン;
(d)FVIIIをコードするヌクレオチド;ここで、ヌクレオチドは配列番号1~14または配列番号71から選択されるヌクレオチド配列と少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%または少なくとも99%の配列同一性を有し、ヌクレオチドによってコードされるFVIIIはFVIII活性を保持する;
(e)転写後調節エレメント、例えばWPRE;
(f)3’UTRポリ(A)テール配列、例えばbGHpA;および
(g)AAVのITRである第2のITR、例えばAAV血清型2ゲノム。
(a)AAVのITRである第1のITR、例えばAAV血清型2ゲノム;
(b)組織特異的プロモーター配列、例えばTTPプロモーター;
(c)イントロン、例えば合成イントロン;
(d)miRNAをコードするヌクレオチド、ここで、miRNAは、標的遺伝子、例えばSOD1、HTT、RHOおよび任意のその組合せの発現を下方制御する;
(f)3’UTRポリ(A)テール配列、例えばbGHpA;および
(g)AAVのITRである第2のITR、例えばAAV血清型2ゲノム。
(a)AAVのITRである第1のITR、例えばAAV血清型2ゲノム;
(b)組織特異的プロモーター配列、例えばTTPプロモーター;
(c)イントロン、例えば合成イントロン;
(d)X連鎖ジストロフィン、MTM1(ミオチューブラリン)、チロシン水酸化酵素、AADC、シクロヒドロラーゼ、SMN1、FXN(フラタキシン)、GUCY2D、RS1、CFH、HTRA、ARMS、CFB/CC2、CNGA/CNGB、Prf65、ARSA、PSAP、IDUA(MPS I)、IDS(MPS II)、PAH、GAA(酸性アルファ-グルコシダーゼ)または任意のその組合せをコードするヌクレオチド;
(f)3’UTRポリ(A)テール配列、例えばbGHpA;および
(g)AAVのITRである第2のITR、例えばAAV血清型2ゲノム。
(a)第1のITR;
(b)組織特異的プロモーター配列、例えばTTPプロモーター;
(c)イントロン、例えば合成イントロン;
(d)miRNAまたは治療的タンパク質、例えば凝固因子をコードするヌクレオチド;
(e)転写後調節エレメント、例えばWPRE;
(f)3’UTRポリ(A)テール配列、例えばbGHpA;および
(g)第2のITR、
ここで、第1のITRまたは第2のITRの1つはパルボウイルス科(Parvoviridae)の非AAVファミリーメンバーのITRであり、他のITRはAAV、例えばAAV血清型2ゲノムのITRである。
(a)第1のITR;
(b)組織特異的プロモーター配列、TTPプロモーター;
(c)イントロン、例えば合成イントロン;
(d)miRNAまたは治療的タンパク質、例えば凝固因子をコードするヌクレオチド;
(e)転写後調節エレメント、例えばWPRE;
(f)3’UTRポリ(A)テール配列、例えばbGHpA;および
(g)第2のITR、
ここで、第1のITRが合成ITRであるか、第2のITRが合成ITRであるか、または第1のITRおよび第2のITRの両方が合成ITRである。
本開示のある特定の態様は、第1のITR、例えば5’ITR、および第2のITR、例えば3’ITRを含む核酸分子に関する。一般的に、ITRは、原核生物のプラスミドからのパルボウイルス(例えば、AAV)DNAの複製および解放、または切除に関与する(Samulskiら、1983年、1987年;Senapathyら、1984年;GottliebおよびMuzyczka、1988年)。さらに、ITRは、AAVプロウイルス組入れのために、およびビリオンへのAAV DNAのパッケージングのために必要とされる最小限の配列のようである(McLaughlinら、1988年;Samulskiら、1989年)。これらのエレメントは、パルボウイルスゲノムの効率的な増殖のために必須である。ITR機能にとって不可欠な最小限の規定エレメントは、Rep結合部位(例えば、RBS;AAV2の場合GCGCGCTCGCTCGCTC(配列番号104))および末端分解部位(例えば、TRS;AAV2の場合AGTTGG(配列番号105))、さらにヘアピン形成を可能にする可変パリンドローム配列であると仮定されている。パリンドロームヌクレオチド領域は、DNA複製の起点として、およびウイルスのためのパッケージングシグナルとして、通常シスで一緒に機能する。ITRの中の相補的配列は、DNA複製の間、ヘアピン構造に折りたたまれる。一部の実施形態では、ITRは、ヘアピンT字形構造に折りたたまれる。他の実施形態では、ITRは、非T字形ヘアピン構造、例えば、U字形ヘアピン構造に折りたたまれる。AAV ITRのT字形ヘアピン構造は、ITRに隣接する導入遺伝子の発現を抑制することができることをデータは示唆する。例えば、Zhouら、Scientific Reports 7:5432頁(2017年7月14日)を参照のこと。T字形ヘアピン構造を形成しないITRを利用することによって、この形態の抑制を回避することができる。したがって、ある特定の態様では、非AAV ITRを含むポリヌクレオチドは、T字形ヘアピンを形成するAAV ITRを含むポリヌクレオチドと比較して向上した導入遺伝子発現を有する。
本開示のある特定の態様は、第1のITR、第2のITR、および治療用タンパク質をコードする遺伝子カセットを含む核酸分子を対象とする。一部の実施形態では、遺伝子カセットは、1つの治療用タンパク質をコードする。一部の実施形態では、遺伝子カセットは、1つより多い治療用タンパク質をコードする。一部の実施形態では、遺伝子カセットは、同一の治療用タンパク質の2つまたはそれ以上の複製をコードする。一部の実施形態では、遺伝子カセットは、同一の治療用タンパク質の2つまたはそれ以上のバリアントをコードする。一部の実施形態では、遺伝子カセットは、2つまたはそれ以上の異なる治療用タンパク質をコードする。
一部の実施形態では、核酸分子は、第1のITR、第2のITR、および治療用タンパク質をコードする遺伝子カセットを含み、治療用タンパク質は、第VIII因子ポリペプチドを含む。本出願全体を通して「FVIII」と略される「第VIII因子」は、本明細書で使用されるように、別段に特定されていなければ、凝固におけるその通常の役割において、機能的なFVIIIポリペプチドを意味する。よって、FVIIIという用語は、機能的であるバリアントポリペプチドを含む。「FVIIIタンパク質」は、FVIIIポリペプチド(またはタンパク質)またはFVIIIと互換的に使用される。FVIII機能の例として、これらに限定されないが、凝固を活性化する能力、第IX因子に関する補因子として作用する能力、またはCa2+とリン脂質の存在下で、第IX因子とテンナーゼ複合体を形成し、次いで、第X因子を活性化形態Xaに変換する能力が挙げられる。FVIIIタンパク質は、ヒト、ブタ、イヌ、ラット、またはマウスのFVIIIタンパク質であり得る。さらに、ヒト由来のFVIIIと他の種由来のFVIIIの間の比較によって、機能に必要とされる可能性の高い保存残基が特定された(Cameronら、Thromb. Haemost. 79:317~22(1998);US6,251,632)。全長ポリペプチドおよびポリヌクレオチド配列は、多くの機能的断片、突然変異体および改変バージョンがそうであるように、公知である。様々なFVIIIアミノ酸およびヌクレオチド配列が、例えば、米国特許出願公開第2015/0158929号、同第2014/0308280号、および同第2014/0370035号ならびに国際特許出願公開第2015/106052号に開示されている。FVIIIポリペプチドとして、例えば、全長FVIII、全長FVIIIからN末端のMetを除いたもの、成熟FVIII(シグナル配列を除いたもの)、N末端に追加のMetを有する成熟FVIII、および/またはBドメインの全体的または部分的欠失を有するFVIIIが挙げられる。FVIIIバリアントは、部分的欠失であるか全体的欠失であるかにかかわらず、Bドメインの欠失を含む。
一部の実施形態では、核酸分子は、第1のITR、第2のITR、および治療用タンパク質をコードする遺伝子カセットを含み、治療用タンパク質は、第VIII因子ポリペプチドを含む。本出願全体を通して「FVIII」と略される「第VIII因子」は、本明細書で使用されるように、別段に特定されていなければ、凝固におけるその通常の役割において、機能的なFVIIIポリペプチドを意味する。よって、FVIIIという用語は、機能的であるバリアントポリペプチドを含む。「FVIIIタンパク質」は、FVIIIポリペプチド(またはタンパク質)またはFVIIIと互換的に使用される。FVIII機能の例として、これらに限定されないが、凝固を活性化する能力、第IX因子に関する補因子として作用する能力、またはCa2+とリン脂質の存在下で、第IX因子とテンナーゼ複合体を形成し、次いで、第X因子を活性化形態Xaに変換する能力が挙げられる。FVIIIタンパク質は、ヒト、ブタ、イヌ、ラット、またはマウスのFVIIIタンパク質であり得る。さらに、ヒト由来のFVIIIと他の種由来のFVIIIの間の比較によって、機能に必要とされる可能性の高い保存残基が特定された(Cameronら、Thromb. Haemost. 79:317~22(1998);US6,251,632)。全長ポリペプチドおよびポリヌクレオチド配列は、多くの機能的断片、突然変異体および改変バージョンがそうであるように、公知である。様々なFVIIIアミノ酸およびヌクレオチド配列が、例えば、米国特許出願公開第2015/0158929号、同第2014/0308280号、および同第2014/0370035号ならびに国際特許出願公開第2015/106052号に開示されている。FVIIIポリペプチドとして、例えば、全長FVIII、全長FVIIIからN末端のMetを除いたもの、成熟FVIII(シグナル配列を除いたもの)、N末端に追加のMetを有する成熟FVIII、および/またはBドメインの全体的または部分的欠失を有するFVIIIが挙げられる。FVIIIバリアントは、部分的欠失であるか全体的欠失であるかにかかわらず、Bドメインの欠失を含む。
一部の実施形態では、本開示の核酸分子は、第1のITR、第2のITR、および治療用タンパク質をコードする遺伝子カセットを含み、第1のITRおよび第2のITRは、AAVゲノムに由来し、遺伝子カセットは、FVIIIポリペプチドをコードするコドン最適化されたヌクレオチド配列を含む。一部の実施形態では、コドン最適化されたヌクレオチド配列は、全長FVIIIポリペプチドをコードする。他の実施形態では、コドン最適化されたヌクレオチド配列は、Bドメイン欠失(BDD)FVIIIポリペプチドをコードし、FVIIIのBドメインの全てまたは一部は、欠失している。特定の一実施形態では、コドン最適化されたヌクレオチド配列は、配列番号17と少なくとも約80%、少なくとも約85%、少なくとも約86%、少なくとも約87%、少なくとも約88%、少なくとも約89%、少なくとも約90%、少なくとも約95%、少なくとも約96%、少なくとも約97%、少なくとも約98%、もしくは少なくとも約99%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドまたはその断片をコードする。一実施形態では、コドン最適化されたヌクレオチド配列は、配列番号17のアミノ酸配列を有するポリペプチドまたはその断片をコードする。
一実施形態では、遺伝子カセットは、FVIIIポリペプチドをコードするコドン最適化されたヌクレオチド配列を含み、コドン最適化されたヌクレオチド配列のヒトコドン適応インデックスは、配列番号16に対して増加する。例えば、コドン最適化されたヌクレオチド配列は、少なくとも約0.75(75%)、少なくとも約0.76(76%)、少なくとも約0.77(77%)、少なくとも約0.78(78%)、少なくとも約0.79(79%)、少なくとも約0.80(80%)、少なくとも約0.81(81%)、少なくとも約0.82(82%)、少なくとも約0.83(83%)、少なくとも約0.84(84%)、少なくとも約0.85(85%)、少なくとも約0.86(86%)、少なくとも約0.87(87%)、少なくとも約0.88(88%)、少なくとも約0.89(89%)、少なくとも約0.90(90%)、少なくとも約0.91(91%)、少なくとも約0.92(92%)、少なくとも約0.93(93%)、少なくとも約0.94(94%)、少なくとも約0.95(95%)、少なくとも約0.96(96%)、少なくとも約0.97(97%)、少なくとも約0.98(98%)、または少なくとも約0.99(99%)であるヒトコドン適応インデックスを有し得る。一部の実施形態では、コドン最適化されたヌクレオチド配列は、少なくとも約.88(88%)であるヒトコドン適応インデックスを有する。他の実施形態では、コドン最適化されたヌクレオチド配列は、少なくとも約.91(91%)であるヒトコドン適応インデックスを有する。他の実施形態では、コドン最適化されたヌクレオチド配列は、少なくとも約.97(97%)であるヒトコドン適応インデックスを有する。
一部の実施形態では、遺伝子カセットは、FVIIIポリペプチドをコードするコドン最適化されたヌクレオチド配列を含み、コドン最適化されたヌクレオチド配列は、配列番号16のG/Cヌクレオチドのパーセンテージと比較してより高いパーセンテージのG/Cヌクレオチドを含有する。他の実施形態では、FVIIIポリペプチドをコードするコドン最適化されたヌクレオチド配列は、少なくとも約45%、少なくとも約46%、少なくとも約47%、少なくとも約48%、少なくとも約49%、少なくとも約50%、少なくとも約51%、少なくとも約52%、少なくとも約53%、少なくとも約54%、少なくとも約55%、少なくとも約56%、少なくとも約57%、少なくとも約58%、少なくとも約59%、または少なくとも約60%であるG/C含量を有する。
一部の実施形態では、遺伝子カセットは、FVIIIポリペプチドをコードするコドン最適化されたヌクレオチド配列を含み、コドン最適化されたヌクレオチド配列は、配列番号16に対してより少ないMARS/ARS配列を含有する。他の実施形態では、FVIIIポリペプチドをコードするコドン最適化されたヌクレオチド配列は、最大6、最大5、最大4、最大3、または最大2個のMARS/ARS配列を含有する。他の実施形態では、FVIIIポリペプチドをコードするコドン最適化されたヌクレオチド配列は、最大1個のMARS/ARS配列を含有する。なお他の実施形態では、FVIIIポリペプチドをコードするコドン最適化されたヌクレオチド配列は、MARS/ARS配列を含有しない。
一部の実施形態では、遺伝子カセットは、FVIIIポリペプチドをコードするコドン最適化されたヌクレオチド配列を含み、コドン最適化されたヌクレオチド配列は、配列番号16に対してより少ない不安定化エレメントを含有する。他の実施形態では、FVIIIポリペプチドをコードするコドン最適化されたヌクレオチド配列は、最大9、最大8、最大7、最大6、または最大5個の不安定化エレメントを含有する。他の実施形態では、FVIIIポリペプチドをコードするコドン最適化されたヌクレオチド配列は、最大4、最大3、最大2、または最大1個の不安定化エレメントを含有する。なお他の実施形態では、FVIIIポリペプチドをコードするコドン最適化されたヌクレオチド配列は、不安定化エレメントを含有しない。
一部の実施形態では、遺伝子カセットは、FVIIIポリペプチドをコードするコドン最適化されたヌクレオチド配列を含み、ヌクレオチド配列は、配列番号16に対してより少ない潜在的プロモーター結合部位を含有する。他の実施形態では、FVIIIポリペプチドをコードするコドン最適化されたヌクレオチド配列は、最大9、最大8、最大7、最大6、または最大5個の潜在的プロモーター結合部位を含有する。他の実施形態では、FVIIIポリペプチドをコードするコドン最適化されたヌクレオチド配列は、最大4、最大3、最大2、または最大1個の潜在的プロモーター結合部位を含有する。なお他の実施形態では、FVIIIポリペプチドをコードするコドン最適化されたヌクレオチド配列は、潜在的プロモーター結合部位を含有しない。
上述のMAR/ARS配列、不安定化エレメント、および潜在的プロモーター部位に加えて、いくつかのさらなる潜在的阻害配列を、野生型BDD FVIII配列(配列番号16)において特定することができる。2つのAUリッチ配列エレメント(ARE)を、最適化されていないBDD FVIII配列におけるポリA部位(AAAAAAA;配列番号26)、ポリT部位(TTTTTT;配列番号25)、およびスプライス部位(GGTGAT;列番号27)と一緒に、特定することができる(ATTTTATT(配列番号30);およびATTTTTAA(配列番号31))。1つまたはそれ以上のこれらのエレメントは、最適化されたFVIII配列から除去することができる。これらの部位のそれぞれの位置および最適化された配列における対応するヌクレオチドの配列を表3に示す。
一部の実施形態では、核酸分子は、第1のITR、第2のITR、および治療用タンパク質をコードする遺伝子カセットを含み、治療用タンパク質は、FIXポリペプチドを含む。一部の実施形態では、FIXポリペプチドは、FIXまたはそのバリアントもしくは断片を含み、FIXまたはそのバリアントもしくは断片は、FIX活性を有する。
一部の実施形態では、核酸分子は、第1のITR、第2のITR、および治療用タンパク質をコードする遺伝子カセットを含み、治療用タンパク質は、第VII因子ポリペプチドを含む。一部の実施形態では、FVIIポリペプチドは、FVIIまたはFVII活性を有するそのバリアントもしくは断片を含む。
一部の実施形態では、核酸分子は、第1のITR、第2のITR、および治療用タンパク質をコードする遺伝子カセットを含み、治療用タンパク質は、成長因子を含む。成長因子は、当技術分野で公知の任意の成長因子から選択することができる。一部の実施形態では、成長因子は、ホルモンである。他の実施形態では、成長因子は、サイトカインである。一部の実施形態では、成長因子は、ケモカインである。
マイクロRNA(miRNA)は、翻訳を阻害するかまたはメッセンジャーRNA(mRNA)の分解を誘導することによって、遺伝子発現を負に調節する非コードRNA小分子(約18~22ヌクレオチド)である。これらの発見以来、miRNAは、アポトーシス、分化および細胞増殖を含む様々な細胞プロセスに関係し、発癌において重要な役割を果たすことが示されてきた。遺伝子発現を調節するmiRNAの能力によって、遺伝子療法において、miRNAのin vivoでの有益なツールを発現させる。
一部の実施形態では、核酸分子は、第1のITR、第2のITR、および治療用タンパク質をコードする遺伝子カセットを含み、治療用タンパク質は、少なくとも1つの異種部分を含む。一部の実施形態では、異種部分は、治療用タンパク質のN末端またはC末端に融合される。他の実施形態では、異種部分は、治療用タンパク質内の2つのアミノ酸の間に挿入される。
別の態様では、異種部分は、1つまたはそれ以上の免疫グロブリン定常領域またはその部分(例えば、Fc領域)を含む。一実施形態では、本開示の単離された核酸分子は、免疫グロブリン定常領域またはその一部をコードする異種核酸配列をさらに含む。一部の実施形態では、免疫グロブリン定常領域またはその部分は、Fc領域である。
別の態様では、異種部分は、scFc(単鎖Fc)領域を含む。一実施形態では、本開示の単離された核酸分子は、ScFc領域をコードする異種核酸配列をさらに含む。scFc領域は、同じ直鎖状ポリペプチド鎖内に、フォールディングして(例えば、分子内または分子間フォールディングして)、Fcペプチドリンカーによって連結される1つの機能性scFc領域を形成することが可能な、少なくとも2つの免疫グロブリン定常領域またはその部分(例えば、Fc部分またはFcドメイン(例えば、2、3、4、5、6個、またはそれ以上のFc部分またはドメイン))を含む。例えば、一実施形態では、半減期を改善するかもしくは免疫エフェクター機能(例えば、抗体依存性細胞障害性(ADCC)、食作用、または補体依存性細胞障害性(CDCC))を誘発する、および/または製造性を改善する目的で、本開示のポリペプチドは、そのScFc領域を介して、少なくとも1つのFcレセプター(例えば、FcRn、FcγRレセプター(例えば、FcγRIII)、または補体タンパク質(例えば、C1q))に結合することが可能である。
別の態様では、異種部分は、ヒト絨毛性ゴナドトロピンのβサブユニットの1つのC末端ペプチド(CTP)、またはその断片、バリアントもしくは誘導体を含む。組換えタンパク質に挿入された1つまたはそれ以上のCTPペプチドは、そのタンパク質のin vivo半減期を増加させることが知られている。例えば、参照によってその全体として本明細書に組み入れる、米国特許第5,712,122号を参照のこと。
一部の実施形態では、異種部分は、1つまたはそれ以上のXTEN配列、その断片、バリアント、または誘導体を含む。本明細書で使用されるように、「XTEN配列」は、低分子親水性アミノ酸で主に構成され、生理的条件下では二次構造もしくは三次構造をとる程度が低いかまたはそれをとらない、天然に存在しない、実質的に非反復の配列を有する伸長したポリペプチドを指す。異種部分として、XTENは、半減期延長部分としての機能を果たすことができる。さらに、XTENは、これらに限定されないが、薬物動態パラメーターおよび溶解特性の増強を含む所望の特性をもたらすことができる。
一部の実施形態では、異種部分は、アルブミンまたはその機能性断片を含む。完全長形態では609個のアミノ酸のタンパク質であるヒト血清アルブミン(HSA、またはHA)は、血清の浸透圧のかなりの部分を担っており、内因性および外因性リガンドの担体としても機能する。本明細書で使用されるように、用語「アルブミン」は、完全長アルブミンまたはその機能性断片、バリアント、誘導体、もしくはアナログを含む。アルブミンまたはその断片もしくはバリアントの例は、参照によってその全体として本明細書に組み入れる、米国特許出願公開第2008/0194481 A1号、同第2008/0004206 A1号、同第2008/0161243 A1号、同第2008/0261877 A1号、もしくは同第2008/0153751 A1号、またはPCT特許出願公開第2008/033413 A2号、同第2009/058322 A1号、もしくは同第2007/021494 A2号に開示されている。
ある特定の実施形態では、異種部分は、アルブミン結合ペプチド、細菌アルブミン結合ドメイン、アルブミン結合抗体断片、またはこれらの任意の組合せを含むアルブミン結合部分である。
他の実施形態では、異種部分は、PAS配列である。PAS配列は、本明細書で使用されるように、アラニン残基およびセリン残基を主に含むかまたはアラニン残基、セリン残基、およびプロリン残基を主に含むアミノ酸配列であって、生理的条件下でランダムコイル立体配座を形成するアミノ酸配列を意味する。したがって、PAS配列は、キメラタンパク質において異種部分の一部として使用することができるアラニン、セリン、およびプロリンを含むか、これらから本質的になるか、またはこれらからなるビルディングブロック、アミノ酸ポリマー、または配列カセットである。ただし、PAS配列における微量成分として、アラニン、セリン、およびプロリン以外の残基が付加される場合、アミノ酸ポリマーがランダムコイル立体配座を形成できることは、当業者であれば分かる。用語「微量成分」は、本明細書で使用されるように、アラニン、セリン、およびプロリン以外のアミノ酸を、PAS配列に、ある特定の程度まで、例えば、最大で約12%、すなわち、PAS配列の100個のアミノ酸のうちの約12個、最大で約10%、すなわち、PAS配列の100個のアミノ酸のうちの約10個、最大で約9%、すなわち、100個のアミノ酸のうちの約9個、最大で約8%、すなわち、100個のアミノ酸のうちの約8個、約6%、すなわち、100個のアミノ酸のうちの約6個、約5%、すなわち、100個のアミノ酸のうちの約5個、約4%、すなわち、100個のアミノ酸のうちの約4個、約3%、すなわち、100個のアミノ酸のうちの約3個、約2%、すなわち、100個のアミノ酸のうちの約2個、約1%、すなわち、100個のアミノ酸うちの約1個付加できることを意味する。アラニン、セリン、およびプロリンと異なるアミノ酸は、Arg、Asn、Asp、Cys、Gln、Glu、Gly、His、Ile、Leu、Lys、Met、Phe、Thr、Trp、Tyr、およびValからなる群から選択することができる。
ある特定の実施形態では、異種部分は、グリシンリッチホモアミノ酸ポリマー(HAP)である。HAP配列は、少なくとも50個のアミノ酸、少なくとも100個のアミノ酸、120個のアミノ酸、140個のアミノ酸、160個のアミノ酸、180個のアミノ酸、200個のアミノ酸、250個のアミノ酸、300個のアミノ酸、350個のアミノ酸、400個のアミノ酸、450個のアミノ酸、または500個のアミノ酸長を有するグリシン反復配列を含む場合がある。一実施形態では、HAP配列は、HAP配列に融合または連結された部分の半減期を延長することが可能である。HAP配列の非限定例として、これらに限定されないが、(Gly)n、(Gly4Ser)nまたはS(Gly4Ser)n(式中、nは、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、または20である)が挙げられる。一実施形態では、nは、20、21、22、23、24、25、26、26、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、または40である。別の実施形態では、nは、50、60、70、80、90、100、110、120、130、140、150、160、170、180、190、または200である。
ある特定の実施形態では、異種部分は、トランスフェリンまたはその断片である。いずれかのトランスフェリンを使用して、本開示の凝固因子タンパク質を作製することができる。一例として、野生型ヒトTF(TF)は、およそ75KDaの679個のアミノ酸タンパク質であり(糖鎖付加は考慮せず)、2つの主要ドメイン、N(約330個のアミノ酸)およびC(約340個のアミノ酸)を有し、遺伝子重複に起因すると考えられる。その全てを参照によってその全体として本明細書に組み入れる、GenBank受託番号NM001063、XM002793、M12530、XM039845、XM039847およびS95936(www.ncbi.nlm.nih.gov/)を参照のこと。トランスフェリンは、2つのドメイン、NドメインおよびCドメインを含む。Nドメインは、N1ドメインおよびN2ドメインという2つのサブドメインを含み、Cドメインは、C1ドメインおよびC2ドメインという2つのサブドメインを含む。
ある特定の実施形態では、異種部分は、クリアランスレセプター、その断片、バリアント、または誘導体である。LRP1は、第X因子のような種々のタンパク質のレセプター媒介性クリアランスに関与する600KDaの膜内在性タンパク質である。例えば、Naritaら、Blood 91:555~560頁(1998)を参照のこと。
ある特定の実施形態では、異種部分は、フォンビルブランド因子(VWF)またはその1つもしくはそれ以上の断片である。
ある特定の実施形態では、異種部分は、ペプチドリンカーである。
一部の実施形態では、本開示の治療用タンパク質は、凝固因子を含む単量体-二量体ハイブリッド分子を含む。
一部の実施形態では、本開示の核酸分子は、少なくとも1つの発現制御配列をさらに含む。発現制御配列は、本明細書で使用されるように、プロモーター配列またはプロモーターとエンハンサーの組合せのような任意の調節ヌクレオチド配列であって、その配列が作動可能に連結するコード核酸の効率的な転写と翻訳を促す、配列である。例えば、本開示の核酸分子は、少なくとも1つの転写制御配列に作動可能に連結される。遺伝子発現制御配列は、例えば、構成的または誘導性プロモーターのような哺乳動物プロモーターまたはウイルスプロモーターである場合がある。
ある特定の実施形態では、例えば、凝固因子導入遺伝子に作動可能に連結される1つまたはそれ以上のmiRNA標的配列をベクター内に含むことが有用である。よって、本開示は、凝固因子ヌクレオチド配列に作動可能に連結されるか、またはそうでなければ、ベクター内に挿入される少なくとも1つのmiRNA配列標的も提供する。ベクターに含まれるmiRNA標的配列の2つ以上の複製によって、その系の有効性を高めることができる。異なるmiRNA標的配列も含まれる。例えば、2つ以上の導入遺伝子を発現するベクターは、2つ以上のmiRNA標的配列(同じであるかまたは異なる場合もある)の制御下で、導入遺伝子を有することができる。miRNA標的配列は、タンデムに存在することができるが、他の配置も含まれる。miRNA標的配列を含有する導入遺伝子発現カセットは、ベクター内にアンチセンス方向で挿入することもできる。アンチセンス方向は、ウイルス粒子の産生において、その発現を回避しなければ、プロデューサー細胞に対して毒性を示すことのある遺伝子産物の発現を回避するのに有用である場合がある。他の実施形態では、ベクターは、同じかまたは異なるmiRNA標的配列を1、2、3、4、5、6、7または8複製含む。しかしながら、ある特定の別の実施形態では、ベクターは、いずれのmiRNA標的配列も含まないことになる。miRNA標的配列を含むか否か(および何個のmiRNA標的配列を含むか)の選択は、意図する組織標的、所要の発現レベルなどの公知のパラメーターなどによって導き出される。
本開示は、本開示の核酸分子またはベクターを含む宿主細胞も提供する。本明細書で使用されるように、用語「形質転換」は、広い意味で、遺伝型を変化させ、その結果、レシピエント細胞を変化させる、レシピエント宿主細胞へのDNAの導入を指す。
本開示は、本開示の核酸分子によってコードされるポリペプチドも提供する。他の実施形態では、本開示のポリペプチドは、本開示の核酸分子を含むベクターによってコードされる。さらに他の実施形態では、本開示のポリペプチドは、本開示の核酸分子を含む宿主細胞によって産生される。
本開示の核酸分子、核酸分子によってコードされるポリペプチド、ベクター、または宿主細胞を含有する組成物は、好適な、薬学的に許容される担体を含有することができる。例えば、この組成物は、活性化合物を処理して、作用部位への送達用に設計された調製物にするのを容易にする賦形剤および/または補助剤を含有することができる。
一部の実施形態では、核酸分子は、第1のITR、第2のITR、および遺伝子カセットを含み、遺伝子カセットは、凝固因子を含み、核酸分子を使用して、それを必要とする対象における出血性疾患または状態を処置する。出血性疾患または状態は、出血性血液凝固障害、関節血症、筋肉出血、口腔出血、大出血、筋肉内への大出血、口腔大出血、外傷、頭部外傷、消化器系出血、頭蓋内大出血、腹腔内大出血、胸腔内大出血、骨折、中枢神経系出血、咽頭後隙内出血、腹膜後隙内出血、腸腰筋外筒内出血およびこれらの任意の組合せからなる群から選択される。さらに他の実施形態では、対象は、手術を受けることが予定されている。また他の実施形態では、処置は、予防的であるかまたは要求に応じるものである。
本開示のある特定の態様は、本開示の単離された核酸分子を、それを必要とする対象に投与することを含む、対象において、遺伝構築物を発現する方法を提供する。一部の態様では、本開示は、本開示の単離された核酸分子を、それを必要とする対象に投与することを含む、対象において、ポリペプチドの発現を増加させる方法を提供する。他の態様では、本開示は、本開示の単離された核酸分子、例えば、miRNAを含む核酸配列を、それを必要とする対象に投与することを含む、それを必要とする対象において、ポリペプチドの発現をモジュレートする方法を提供する。一部の態様では、本開示は、本開示の単離された核酸分子、例えば、miRNAを含む核酸配列を、対象に投与することを含む、それを必要とする対象において、標的遺伝子の発現を下方調節する方法を提供する。
実施例1a.コドン最適化FVIII遺伝子およびAAV由来の逆方向末端反復配列(ITR)領域の遺伝子カセットへのクローニング。
FVIII遺伝子カセットは、AAV血清型2のゲノムに基づいて生成された。しかしながら、任意の血清型を起源とする(合成を含む)ITR領域がこの手法に使用された(図1A)。
AAVが属する、パルボウイルス科のメンバー間の系統学的な関係に基づき(図2A)、他の非AAVのディペンドウイルス属のメンバーおよびエリスロウイルス属のメンバー(おそらく、全ての/多くの他のウイルス科のメンバー)が、ウイルスのライフサイクルの維持、および最も重要な、耐性の確立、持続感染のために同様の細胞メカニズムを利用すると仮定された。したがって、これらのウイルスのゲノムを起源とするITR領域が、AAV-様(AAVベースではない)遺伝子発現カセットの開発に利用された。以下のパルボウイルスは、遺伝子療法用途のための遺伝子構築物の開発のため、それらのITR領域の適応性を試験された:ディペンドウイルスガチョウパルボウイルス(GPV)B株およびエリスロウイルスB19パルボウイルス(図2A)
以前に、組換えB19ウイルスのレスキューのための逆遺伝学システムは、ITRのトランケートバージョンを有するように開発された(Manaresiら、2017年、Virology、doi:10.1016/j.virol.2017.05.006)(表2B、ITR ID:B19d135)。したがって、本発明者らは、B19d135 ITRを利用して、遺伝的に安定なFVIII発現プラスミドB19-FVIIIco6XTENを生成した(図1C)。GPV ITRベースの構築物の合成のためのこの手法をさらに利用するため、本発明者らは、B19、GPV、およびAAV2 ITRの全長野生型配列を比較した(図3A)。ITR機能に不要である、B19およびAAV2 ITR配列のそれぞれ最初の135ヌクレオチドおよび15ヌクレオチドへの相同性に基づき、本発明者らは、完全に機能的なITRを有する安定な遺伝子構築物を合成するためにGPV ITRの最初の162ヌクレオチドは除去できると仮定した(図3A、グレーに影を付けた配列)。したがって、それらの相当するITRのトランケートバージョンを有する構築物AAV2-FVIIIco6XTENおよびB19-FVIIIco6XTENと同様に、本発明者らはGPVd162(表2C)を使用して安定なFVIII発現プラスミド構築物GPV-FVIIIco6XTEN(図1D)を生成した。特に、全長B19とGPV ITRの両方は、全長AAV2 ITR(表1)よりもずっと長く、AAV ITRの特有のT型ヘアピン構造を形成しなかった(図2B)。
FVIII発現カセットを挟んでいるITR領域内のヘアピン構造の形成は、標的細胞の持続的な形質導入を促進すると仮定された。概念証明研究のため、AAV ITRベースのプラスミドAAV2-FVIIIco6XTENならびに非AAV ITRベースのプラスミドB19-FVIIIco6XTENおよびGPV-FVIIIco6XTENは、それぞれPvuIIおよびLguIで消化された。ヘアピンITR構造が形成された一本鎖(ss)AAV-FVIII、B19-FVIII、またはGPV-FVIII断片は、PvuIIまたはLguI消化の二本鎖DNA断片産物(FVIII発現カセットおよびプラスミド骨格)を95℃で変性させ、次いで4℃に冷却し、パリンドロームITR配列を折りたたませることによって生成された(図1A)。生じたssAAV-FVIII、ssB19-FVIII、またはssGPV-FVIIIは、肝細胞の持続的な形質導入を確立する能力に関してHemA(血友病A)マウスモデルにおいて試験された。
昆虫細胞において、クローズドエンドのDNA(ceDNA)分子の形態のAAV-FVIII、B19-FVIII、およびGPV-FVIII構築物の産生に関してLiら、PLoS ONE 8(8):e69879(2013年)に記載されたバキュロウイルス発現システムが利用される。ceDNA発現カセットの全身送達が実証され、肝細胞の持続的な形質導入が確立され、肝臓における安定な長期の導入遺伝子発現を促進した。
実施例2a.ssAAV-FVIII媒介FVIII発現のin vivo評価。
AAV ITR領域を有するssAAV-FVIIIのin vivoでの持続的な導入遺伝子発現を媒介する能力を評価するため、遺伝子発現カセットは、ssDNA遺伝子発現カセット(ssAAV-FVIII)5μg、10μg、または20μgで5~12週齢のHem Aマウスに(4匹/群)、水圧注入(HDI)によって全身に送達された(図4A)。HDIは、実験動物の肝臓への注射した物質の主な送達をもたらす。親の発現プラスミド5μg/マウスを注射された対照動物は、投与後短期間では高いFVIII血漿活性を示した。しかしながら、循環するFVIIIのレベルは急速に減少し、注射後(p.i.)15日目までに検出不可能になった。血漿試料は、ssAAV-FVIIIの単回水圧注入後18時間、3日、2週間、3週間、1カ月、2カ月、3カ月、および4カ月で実験動物から採取された。血液中のFVIII血漿活性は、発色FVIII活性アッセイによって分析された。ssAAV-FVIII 5、10、および20μg/マウスを注射された実験動物は、それぞれ通常のFVIIIレベルの約8、16、および32%の安定なレベルの循環FVIIIにより導入遺伝子の長期発現を発生した(図4A)。本発明者らが、注射した用量と処置の転帰の間の強い相関を示す強い用量応答を観察したことは強調されるべきである。
それぞれ非AAVパルボウイルスITR領域B19d135およびGPVd162を有するssB19-FVIIIおよびssGPV-FVIIIからのFVIIIのin vivo発現を評価するため、ssB19-FVIII遺伝子発現カセット10または20μg/マウス、およびssGPV-FVIII遺伝子発現カセット10または50μg/マウスが、5~12週齢の血友病A(HemA)マウスにおいてHDIによって全身に送達された。血液試料は、注射後1日、3日、7日、14日、21日、および28日で採取され、血液中のFVIII活性は発色FVIII活性アッセイによって分析された。AAV-FVIII構築物による実験において以前に観察されたように、親のFVIII発現プラスミド5μg/マウスを注射された対照動物は、注射後24時間で高いレベルのFVIII血漿活性を示し、急速に減少し、注射後14日目までに検出不可能になった。ssB19-FVIIIを注射した実験動物は、注射後24時間でピークFVIII血漿活性を示し、次いで21日間にわたって徐々に減少し、注射後およそ28日で安定化された(図4B)。一方、ssGPV-FVIIIを注射したHemAマウスは、およそ7日で安定なレベルのFVIII血漿活性を急速に発生し、28日間の全観察期間中維持された(図4C)。特に、10μg/マウスでssAAV-FVIII(図4A)またはssGPV-FVIII(図4C)のいずれかを注射した動物は、非常に類似した安定なレベルのFVIII血漿活性を発生し、AAV2とGPV ITR領域の両方が、標的細胞の持続的な形質導入の効果的な確立に必要な遺伝因子を含むことを示している。
実施例3a.B19およびGPV ITRの最小必須配列の決定。
ディペンドウイルスAAV2およびGPV、ならびにエリスロウイルスB19(それぞれ、Gene Bank受入番号NC_001401.2、U25749.1、およびKY940273.1)のITR配列間の比較に基づき、本発明者らは、そのようなITRを有する遺伝子構築物による真核細胞の持続的な形質導入のための追加の配列(スペーサー、挿入、逆位、追加、および/または他のパルボウイルスITRの野生型配列による組換え)有りまたは無しで、必要とされるGPVおよびB19パルボウイルスITRの最小配列を設計した(図3Aおよび図3B)。したがって、AAV2、GPV、およびB19 ITRの配列アラインメントは、可変配列のスペーサー領域の無い連続的な配列として表2A~2Cに示した3つのウイルス種全ての間での保存領域B19v1およびGPVv1を明らかにした。同様に、最小必須配列バリアントB19v3およびGPVv3は、B19とGPV ITRの間の配列比較に基づいて設計された。GPVd162 ITRを有するFVIII発現構築物は、B19d135 ITRを有する遺伝子構築物よりもin vivo実験においてより良く実行されたため、本発明者らは、継続的な形質導入に必要な全ての遺伝因子はGPV ITR配列に存在し;しかしながら、B19 ITR配列はこれらの遺伝因子のいくつかを欠損すると仮定した。したがって、B19v3配列は、B19とGPV ITR配列の間で保存された最小のB19 ITR配列領域を含み、GPVv3配列は、GPV ITR配列に存在し、B19 ITR配列から欠損する最小GPV ITR配列領域を含む(表2Bおよび表2C)。配列B19v2およびGPVv2は、最初の135および162ヌクレオチド、ならびにそれぞれB19およびGPV ITR配列のITRパリンドローム領域の相当する相補的な135および162ヌクレオチドを除外することによって生成された(表2Bおよび表2C)。
自己相補的なパリンドローム領域からなるパルボウイルスITRの部分。組換え感染性B19パルボウイルスに関して、順方向または逆方向のパリンドローム領域を有するレスキューされたウイルスは同様の増殖特性を示すことが以前に実証された(Manaresiら、2017年、Virology、doi:10.1016/j.virol.2017.05.006)。したがって、本発明者らは、B19およびGPV ITRならびにそれらの誘導体を有する遺伝子発現構築物が、そのようなITRのパリンドローム領域が順方向、逆方向、または遺伝子発現カセットに関して5’および3’ITR組合せの任意の可能な組合せであるかどうかにかかわらず依然として機能性であることを提案する。
B19d135およびGPVd162非AAVパルボウイルスITRの誘導体を有するssDNA構築物からのFVIIIin vivo発現を評価するため、各ssDNA遺伝子発現カセット5、10、20、または50μg/マウスが、5~12週齢のHemAマウスにHDIによって全身に送達された。血液試料は、注射後1、3、7、14、21、および28日、次いで4カ月間月に1回採取された。血液中のFVIII活性は、発色FVIII活性アッセイによって分析された。
実施例4a.B19d135およびGPVd162ITRの誘導体を有するceDNA発現構築物を生成するためのバキュロウイルス発現システムの使用。
実施例1dに記載のAAV-FVIII、B19-FVIII、およびGPV-FVIII構築物と同様に、本発明者らは、昆虫細胞においてceDNAの形態のB19d135およびGPVd162非AAVパルボウイルスITRの誘導体を有する遺伝子構築物のFVIII発現を生じさせるためのバキュロウイルス発現システムを使用する。
B19d135およびGPVd162非AAVパルボウイルスITRの誘導体を有するceDNA構築物からのFVIIIin vivo発現を評価するため、各ceDNA遺伝子発現カセット5、10、20、または50μg/マウスが、5~12週齢のHemAマウスにHDIによって全身に送達された。血液試料は、注射後1、3、7、14、21、および28日、次いで4カ月間月に1回採取された。血液中のFVIII活性は、発色FVIII活性アッセイによって分析された。
実施例1および4に記載のように、各ssDNAまたはceDNAが産生された後、各遺伝子構築物は、マイクロ流体混合によって適切な脂質組成物を使用して脂質ナノ粒子(LNP)に製剤化された(LNP-ssDNAおよびLNP-ceDNA)。LNPに製剤化された、AAVまたは非AAVパルボウイルスITRのいずれかに挟まれたFVIII発現カセットをコードする親プラスミドは、形質導入効率の対照として使用された。
実施例6a.培養肝細胞におけるssDNA-およびceDNA-媒介FVIII発現のin vitro評価。
ssDNAまたはceDNA FVIII発現遺伝子構築物および相当する親対照プラスミドは、実施例5に記載のように、標的化遺伝子送達のためにLNPに製剤化された。Huh7またはHEK293T(非肝細胞対照)細胞は、24ウェル組織培養プレートに7×104個の細胞/ウェルで播種され、終夜インキュベートされた。次の日、LNP-ssDNAまたはLNP-ceDNA製剤が細胞に1000、500、250、125、および62.5ng/ウェルで添加された。培養培地および細胞は、形質導入後24および48時間で回収された。培養培地中のFVIII活性は、発色FVIII活性アッセイによって測定された。細胞でのFVIIIの発現もウェスタンブロットによって分析された。
5~12週齢のHemAマウスは、LNP-ssDNA、LNP-ceDNA、またはLNP-pDNA(プラスミド対照)のいずれかをIV注射によって5、10、20、40、100μg/マウスで投与された、N=4/群。血液試料は、注射後48時間から開始して6カ月まで選択された時点で採取され、血液中のFVIII活性は発色FVIII活性アッセイによって分析された。LNP-ssDNAまたはLNP-ceDNAによって処置されたマウスにおけるFVIII発現プロファイルは、実施例1および4に記載の各遺伝子構築物に関してLNP-pDNAによって処置されたマウスのものと比較された。
実施例6bのLNP-ssDNAまたはLNP-ceDNAによって処置されたマウスのサブセットは、最初の注射の2カ月後同じ用量で相当するLNPの追加のIV注射ブーストを受けた。血液試料は、ブースター注射後48時間から開始して6カ月まで選択された時点で採取された。血液中のFVIII活性は発色FVIII活性アッセイによって分析された。LNP-ssDNAまたはLNP-ceDNAによって処置されたマウスにおけるFVIII発現プロファイルは、相当するLNP-pDNAによって処置されたマウスのものと比較された。
実施例7a.B19またはGPV起源のITRを有するレポーター遺伝子構築物の生成。
遺伝子療法用途での一般的な使用のためのプラットフォームとして非AAV ITRベースの遺伝子発現システムの利用を実証するため、発現カセットを含むレポーター構築物は、実施例1bに記載の構築物に基づき、B19d135またはGPVd162 ITRのいずれかに挟まれた緑色蛍光タンパク質(GFP)またはルシフェラーゼ(luc)のいずれかのために生成された。したがって、B19-FVIIIco6XTEN(図1C)およびGPV-FVIIIco6XTEN(図1D)におけるFVIIIのオープンリーディングフレーム(ORF)は、従来の分子クローニング技術によってGFPまたはlucのいずれかのORFと置き換えられた。
ssDNAレポーター/PAH構築物は、実施例1cに記載のように調製された。簡単に言うと、プラスミドはLguIで消化された。形成されたヘアピンITR構造を有するssDNA断片は、LguI消化の二本鎖DNA断片産物(レポーター発現カセットおよびプラスミド骨格)を95℃で変性させ、次いで4℃に冷却し、パリンドロームITR配列を折りたたませることによって生成された(図1A)。生じたssDNA構築物は、肝臓、筋肉組織、眼の光受容体、および中枢神経系(CNS)の持続的な形質導入を確立する能力に関してマウスにおいて試験された。
実施例7bに記載のssDNAレポーター構築物のin vivoでの持続的な導入遺伝子発現を媒介する能力を評価するため、5~12週齢のマウス(4匹/群)は、レポーターssDNA 5、10、または20μg/マウスを、全身に、筋肉組織およびCNS細胞を標的として局所的に、および/または光受容体細胞を標的として網膜下に注射された。
E1.第1の逆方向末端反復配列(ITR)、第2のITR、および治療用タンパク質をコードする遺伝子カセットを含む核酸分子であって;第1のITRおよび/または第2のITRは非アデノ随伴ウイルス(非AAV)のITRであり、遺伝子カセットは第1のITRと第2のITRの間に配置され、治療用タンパク質は凝固因子を含む、核酸分子。
(a)第1のITRはパルボウイルス科(Parvoviridae)の非AAVファミリーメンバーのITRであり;
(b)組織特異的プロモーター配列はTTPプロモーターを含み;
(c)イントロンは合成イントロンであり;
(d)ヌクレオチド配列は凝固因子をコードし;
(e)転写後調節エレメントはWPREを含み;
(f)3’UTRポリ(A)テール配列はbGHpAを含み;および
(g)第2のITRはパルボウイルス科(Parvoviridae)の非AAVファミリーメンバーのITRである、
E38またはE39の核酸分子。
Claims (16)
- 第1の逆方向末端反復配列(ITR)、第2のITRおよび遺伝子カセットを含む核酸分子であって;
ここで、該第1のITRおよび該第2のITRは非アデノ随伴ウイルス(非AAV)由来のITRであり、ここで、非AAVは、エリスロウイルスパルボウイルスB19(ヒトウイルス)またはガチョウパルボウイルス(GPV)株であり;
ここで、該遺伝子カセットは該第1のITRと該第2のITRの間に配置され、
ここで、該遺伝子カセットは治療用タンパク質、miRNA、または治療用タンパク質およびmiRNAの両方をコードするヌクレオチド配列を含み、
ここで、核酸分子は無カプシドベクターである、前記核酸分子。 - 治療用タンパク質は凝固因子を含む、請求項1に記載の核酸分子。
- 第1のITRおよび/または第2のITRは、配列番号167、168、169、170、176、171またはその組合せから選択される配列を含む、請求項1または2に記載の核酸分子。
- 組織特異的プロモーターをさらに含む、請求項1~3のいずれか1項に記載の核酸分子。
- プロモーターは肝細胞、内皮細胞、筋細胞、シヌソイド細胞またはその任意の組合せにおける治療用タンパク質の発現を促進する、請求項4に記載の核酸分子。
- プロモーターは、マウスサイレチンプロモーター(mTTR)、内因性ヒト第VIII因子プロモーター(F8)、ヒトアルファ-1-抗トリプシンプロモーター(hAAT)、ヒトアルブミン最小プロモーター、マウスアルブミンプロモーター、トリステトラプロリン(TTP)プロモーター、CASIプロモーター、CAGプロモーター、サイトメガロウイルス(CMV)プロモーター、α1-抗トリプシン(AAT)、筋肉クレアチンキナーゼ(MCK)、ミオシン重鎖アルファ(αMHC)、ミオグロビン(MB)、デスミン(DES)、SPc5-12、2R5Sc5-12、dMCK、tMCKおよびホスホ
グリセリン酸キナーゼ(PGK)プロモーターからなる群から選択される、請求項4に記載の核酸分子。 - 遺伝子カセットは、5’から3’方向の順に
(a)イントロン配列、
(b)転写後調節エレメント、
(c)3’UTRポリ(A)テール配列、
(d)エンハンサー配列、または、
(e)(a)~(d)の任意の組合せ
を含む、請求項1~6のいずれか1項に記載の核酸分子。 - (a)イントロン配列は、治療用タンパク質をコードするヌクレオチド配列の5’側に配置されるか;
(b)転写後調節エレメントは、突然変異したウッドチャック肝炎ウイルス転写後調節エレメント(WPRE)、マイクロRNA結合部位、DNA核標的化配列または任意のその組合せを含むか;
(c)3’UTRポリ(A)テール配列は、bGHポリ(A)、アクチンポリ(A)、ヘモグロビンポリ(A)および任意のその組合せからなる群から選択されるか;または
(d)(a)~(c)の任意の組合せである、
請求項7に記載の核酸分子。 - (a)イントロン配列は、配列番号115を含むか;
(b)マイクロRNA結合部位は、miR142-3pへの結合部位を含むか;
(c)3’UTRポリ(A)テール配列は、bGHポリ(A)を含むか;または
(d)(a)~(c)の任意の組合せである、
請求項8に記載の核酸分子。 - (a)第1のITR;
(b)TTPプロモーターを含む組織特異的プロモーター配列;
(c)合成イントロンであるイントロン;
(d)凝固因子をコードするヌクレオチド配列;
(e)WPREを含む転写後調節エレメント;
(f)bGHpAを含む3’UTRポリ(A)テール配列;および
(g)第2のITR
をこの順序で含む、請求項1に記載の核酸分子。 - ヌクレオチド配列によりコードされる治療用タンパク質は、凝固因子を含み、凝固因子は、第I因子(FI)、第II因子(FII)、第V因子(FV)、第VII因子(FVII)、第VIII因子(FVIII)、第IX因子(FIX)、第X因子(FX)、第XI因子(FXI)、第XII因子(FXII)、第XIII因子(FXIII)、フォンビルブランド因子(VWF)、プレカリクレイン、高分子量キニノーゲン、フィブロネクチン、抗トロンビンIII、ヘパリン補因子II、プロテインC、プロテインS、プロテインZ、プロテインZ関連プロテアーゼ阻害剤(ZPI)、プラスミノーゲン、アルファ2-抗プラスミン、組織プラスミノーゲン活性化因子(tPA)、ウロキナーゼ、プラスミノーゲン活性化因子阻害剤-1(PAI-1)、プラスミノーゲン活性化因子阻害剤-2(PAI2)または任意のその組合せを含む、請求項1~10のいずれか1項に記載の核酸分子。
- FVIIIは、配列番号106および109から選択される配列に示すアミノ酸配列と少なくとも90%同一であるアミノ酸配列を含む、請求項11に記載の核酸分子。
- 凝固因子は、アルブミン、免疫グロブリンFc領域、ヒト絨毛性ゴナドトロピンのβサブユニットのC末端ペプチド(CTP)、トランスフェリンおよび任意のその組合せからなる群から選択される異種部分を含む、請求項12に記載の核酸分子。
- 脂質ナノ粒子を含む送達剤で製剤化される、請求項1~13のいずれか1項に記載の核酸分子。
- 請求項1~14のいずれか1項に記載の核酸分子および薬学的に許容される担体を含む医薬組成物。
- 請求項1~15のいずれか1項に記載の核酸分子および薬学的に許容される担体を含む医薬組成物であって、それを必要とする対象において治療用タンパク質、miRNA、または治療用タンパク質およびmiRNAの両方を発現させるために使用される、前記医薬組成物。
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