JP7146397B2 - 改変γδT細胞 - Google Patents
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Description
本明細書で言及するすべての刊行物、特許、及び特許出願は、あたかも個別の刊行物、特許、または特許出願をそれぞれ参照により援用すると具体的かつ個別に示した場合と同様に、参照により本明細書に援用する。
ヒトにおいて、γδT細胞(複数可)は先天免疫応答と適応免疫応答との間を結びつけるT細胞のサブセットである。これらの細胞はV-(D)-Jセグメント再構成を経て抗原特異的γδT細胞受容体(γδTCR)を生成し、γδT細胞(複数可)は、γδT細胞エフェクタ-機能を活性化するように独立してまたは一緒に作用するγδTCRまたは他の非TCRタンパク質のいずれかによる抗原の認識を介して、直接活性化され得る。哺乳類においてγδT細胞はT細胞集団全体の小部分を占め、末梢血及びリンパ器官中のT細胞のおよそ1~5%であり、主に皮膚、肝臓、消化路、気道、及び生殖道のような上皮細胞リッチ区画に存在すると思われる。主要組織適合抗原複合体分子(MHC)に結合した抗原を認識するαβTCRとは異なり、γδTCRは、インタクトタンパク質または非ペプチド化合物の形態の細菌抗原、ウイルス抗原、疾患細胞によって発現されているストレス抗原、及び腫瘍抗原を直接認識することができる。
改変γδT細胞は当該技術分野において公知の様々な方法で生成され得る。改変γδT細胞は特定の腫瘍認識部分を安定発現するように設計され得る。トランスポゾン/トランスポザーゼシステム、もしくはウイルスベースの遺伝子移入システム、例えばレンチウイルスもしくはレトロウイルスシステムなど、または別の好適な方法、例えば形質移入、エレクトロポレーション、形質導入、リポフェクション、リン酸カルシウム(CaPO4)、ナノ加工物質、例えばオルモシルなど、アデノウイルス、レトロウイルス、レンチウイルス、アデノ随伴ウイルスを含むウイルス送達方法、もしくは別の好適な方法などによって、腫瘍認識または別のタイプの認識部分を含む発現カセットをコードするポリヌクレオチドをγδT細胞に安定導入することができる。抗原特異的TCR、αβまたはγδのいずれかは、抗原特異的TCRの遺伝子コードを含むポリヌクレオチドをγδT細胞のゲノム中に安定挿入することによって、改変γδT細胞に導入することができる。腫瘍認識部分とともにCARをコードするポリヌクレオチドが、そのポリヌクレオチドをγδT細胞のゲノム中に安定挿入することによって改変γδT細胞に導入され得る。場合によっては、改変腫瘍認識部分は改変T細胞受容体であり、改変γδT細胞のゲノムに組み込まれる発現カセットは、改変TCRα(TCRアルファ)遺伝子、改変TCRβ(TCRベータ)遺伝子、TCRδ(TCRデルタ)遺伝子、または改変TCRγ(TCRガンマ)遺伝子をコードするポリヌクレオチドを含む。場合によっては、改変γδT細胞のゲノムに組み込まれる発現カセットは、抗体断片またはその抗原結合部分をコードするポリヌクレオチドを含む。場合によっては、抗体断片またはその抗原結合断片は、完全な抗体、抗体断片、一本鎖可変断片(scFv)、シングルドメイン抗体(sdAb)、Fab、F(ab)2、Fc、抗体上の軽鎖もしくは重鎖、抗体の可変領域もしくは定常領域、またはこれらの任意の組合せでCAR及びT細胞受容体(TCR)、もしくは異なる抗原を対象とする抗体を有する複数のCARを含むキメラ抗原受容体(CAR)構築体、もしくは二重特異性構築体の一部として細胞表面腫瘍抗原に結合するものをコードするポリヌクレオチドである。場合によっては、ポリヌクレオチドはヒトまたは別の種に由来する。非ヒト種に由来する抗体断片またはその抗原結合断片ポリヌクレオチドは、ヒトにおいて天然産生される抗体バリアントに対する類似性を増加させるように改変することができ、抗体断片または抗原結合断片は部分的にまたは完全にヒト化することができる。抗体断片またはその抗原結合断片ポリヌクレオチドはキメラ、例えばマウス-ヒト抗体キメラとすることもできる。CARを発現する改変γδT細胞は、腫瘍認識部分によって認識される抗原に対するリガンドを発現するように改変することもできる。
改変γδT細胞は被検者の体内の特定の身体的部位にホーミングし得る。改変γδT細胞の遊走及びホーミングは、特定のケモカイン及び/または接着分子の発現及び作用の組合せに依存し得る。改変γδT細胞のホーミングはケモカインとその受容体との間の相互作用によって制御することができる。例えば、限定はしないがCXCR3(そのリガンドはIP-10/CXCL10及び6Ckine/SLC/CCL21に代表される) CCR4+ CXCR5+(RANTES、MIP-1α、MIP-1βに対する受容体) CCR6+及びCCR7をはじめとするサイトカインは、改変γδT細胞のホーミングに影響を及ぼし得る。場合によっては、改変γδT細胞は炎症及び傷害の部位、ならびに疾患細胞にホーミングして機能の修復を行い得る。場合によっては、改変γδT細胞は癌にホーミングすることができる。場合によっては、改変γδT細胞は胸腺、骨髄、皮膚、喉頭、気管、胸膜、肺、食道、腹部、胃、小腸、大腸、肝臓、膵臓、腎臓、尿道、膀胱、精巣、前立腺、精管、卵巣、子宮、乳腺、副甲状腺、脾臓または被検者の体内の別の部位にホーミングし得る。改変γδT細胞は1つ以上のホーミング部分、例えば特定のTCR対立遺伝子及び/またはリンパ球ホーミング分子などを発現することができる。
本明細書に開示の本発明は、疾患特異的エピトープを認識する抗原認識部分を発現する改変γδT細胞を提供する。抗原は免疫応答を誘発する分子であり得る。この免疫応答は抗体産生、特定の免疫担当細胞の活性化のいずれか、または両方を伴い得る。抗原は例えばペプチド、タンパク質、ハプテン、脂質、炭水化物、細菌、病原体、またはウイルスであり得る。抗原は腫瘍抗原であり得る。腫瘍エピトープはMHC IまたはMHC II複合体によって腫瘍細胞の表面上に提示され得る。エピトープは細胞表面上に発現されて腫瘍認識部分によって認識される抗原の一部とすることができる。
いくつかの態様において、本開示は、被検者から単離したγδT細胞の遺伝子改変のための方法を提供する。γδT細胞は被検者の複合サンプルから単離することができる。複合サンプルは、末梢血サンプル、臍帯血サンプル、腫瘍、幹細胞前駆体、腫瘍生検、組織、リンパであってもよく、もしくは外部環境に直接接している被検者の上皮部位由来でもよく、または幹前駆細胞に由来してもよい。γδT細胞は、例えば1つ以上の細胞表面マーカーを発現するγδT細胞(複数可)をフローサイトメトリー法でソーティングすることによって、被検者の複合サンプルから直接単離され得る。野生型γδT細胞は、γδT細胞(複数可)に関連し得る多数の抗原認識、抗原提示、共刺激、及び接着分子を呈する。1つ以上の細胞表面マーカー、例えば特定のγδTCR、抗原認識、抗原提示、リガンド、接着分子、または共刺激分子などが、複合サンプルから野生型γδT細胞を単離するために用いられ得る。γδT細胞に関連する、またはγδT細胞によって発現される様々な分子が、複合サンプルからγδT細胞を単離するために用いられ得る。場合によっては、本開示は、Vδ1+、Vδ2+、Vδ3+細胞の混合集団またはこれらの任意の組合せの単離のための方法を提供する。
他の態様では、本開示は、養子移入療法のための改変γδT細胞集団のエクスビボ増殖方法を提供する。本開示の改変γδT細胞はエクスビボ増殖させられ得る。本開示の改変γδT細胞は、APCによる活性化なしで、またはAPC及びアミノホスフェートとの共培養なしでインビトロ増殖させることができる。
一態様において、本開示は速い成長速度で改変及び非改変γδT細胞の増殖を刺激する作用物質のエピトープを同定するための方法を提供する。エピトープは固有の空間的構造をした少なくとも3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、または20アミノ酸を含むことができる。エピトープは隣接アミノ酸またはタンパク質の三次フォールディングによって並んだ非隣接アミノ酸の両方から形成され得る。隣接アミノ酸から形成されるエピトープは一般に変性溶媒にさらされても維持され得る一方で、三次フォールディングによって形成されるエピトープは一般に変性溶媒で処理すると失われ得る。
本明細書に記載の改変γδT細胞を含有する医薬組成物は、予防的及び/または治療的処置のために投与され得る。治療用途において、すでに疾患または病態を患っている被検者に、疾患または病態の症状を治療する、または少なくとも部分的に抑えるのに十分な量で組成物を投与することができる。改変γδT細胞は、病態の発症、罹患、または悪化の可能性を低下させるために投与することもできる。治療用途に有効な改変γδT細胞集団の量は、疾患もしくは病態の重症度及び経過、それまでの治療法、被検者の健康状態、体重、及び/または薬剤への反応、及び/または治療する医師の判断に応じて変化し得る。
1種または複数の改変γδT細胞(複数可)を任意の順序でまたは同時に被検者に投与することができる。同時の場合、複数の改変γδT細胞(複数可)は、単一の一体化された形態、例えば静脈内注射など、または複数の形態、例えば複数の静脈内注入、s.c、注射または丸薬として提供することができる。改変γδT細胞(複数可)は、単一パッケージまたは複数のパッケージに一緒にまたは別々に充填することができる。1種またはすべての改変γδT細胞(複数可)は複数回投与で与えることができる。同時ではない場合、複数回投与の間のタイミングは様々であり、約1週間、1か月、2か月、3か月、4か月、5か月、6か月、または約1年にもなり得る。場合によっては、改変γδT細胞(複数可)は、被検者への投与後に被検者の体内でインビボ増殖することができる。改変γδT細胞(複数可)は、複数回治療用の細胞に同一の細胞調製を行うために凍結することができる。本開示の改変γδT細胞(複数可)、及びこれを含む医薬組成物はキットとしてパッケージ化することができる。キットは改変γδT細胞(複数可)及びこれを含む組成物の使用についての指示(例えば説明書)を含み得る。
本明細書に開示の改変γδT細胞(複数可)は正確な投与量の単回投与に適した単位剤形に製剤化され得る。場合によっては、単位剤形は別のリンパ球を含む。単位剤形では、1種以上の化合物の適切な量を含有する単位投与量に製剤を分割する。単位投与量は製剤の個々の量を含有するパッケージの形態とすることができる。非限定例は包装された錠剤またはカプセル、及びバイアルまたはアンプル中の粉末である。水性懸濁液組成物は単回投与量の再封不可能な容器に入れることができる。複数回投与量の再封可能な容器を、例えば保存剤とともに、または保存剤なしで用いることができる。いくつかの例では、医薬組成物は保存剤を含まない。腸管外注入用の製剤は、単位剤形、例えば、アンプルで、または保存剤を含む複数回投与量の容器で提供することができる。
いくつかの実施形態において、γδT細胞は凍結培地中で製剤化され、少なくとも約1か月、2か月、3か月、4か月、5か月、6か月、1年、2年、3年、または少なくとも5年の長期保存のために低温保存装置、例えば液体窒素冷凍装置(-195℃)または超低温冷凍装置(-65℃、-80℃または-120℃)などに入れられ得る。凍結培地は、ジメチルスルホキシド(DMSO)、及び/または塩化ナトリウム(NaCl)、及び/またはデキストロース、及び/または硫酸デキストラン及び/またはヒドロイエチルデンプン(hydroyethyl starch)(HES)を、約6.0~約6.5、約6.5~約7.0、約7.0~約7.5、約7.5~約8.0または約6.5~約7.5のpHを維持するための生理的pH緩衝剤とともに含有することができる。凍結保存γδT細胞は、解凍して本明細書に記載の抗体、タンパク質、ペプチド、及び/またはサイトカインでの刺激によってさらに処理することができる。凍結保存γδT細胞は、解凍して本明細書に記載のウイルスベクター(レトロウイルス及びレンチウイルスベクターを含む)または非ウイルス手段(RNA、DNA及びタンパク質を含む)で遺伝子組換えすることができる。改変γδT細胞をさらに凍結保存して、凍結培地中1mL当たり少なくとも約101、102、103、104、105、106、107、108、109、または少なくとも約1010細胞で少なくとも約1,5,10、100、150、200、500バイアルの量の細胞バンクを作製することができる。凍結保存細胞バンクはその機能を保持し得、解凍してさらに刺激及び増殖させることができる。いくつかの態様において、解凍した細胞を好適な密閉容器内、例えば細胞培養バッグ及び/またはバイオリアクターなどで刺激及び増殖させて、アロジェニック細胞製品としての細胞の量を生成することができる。凍結保存γδT細胞は、低温保存条件下で少なくとも約6か月、7か月、8か月、9か月、10か月、11か月、12か月、13か月、15か月、18か月、20か月、24か月、30か月、36か月、40か月、50か月、または少なくとも約60か月間その生物学的機能を維持することができる。いくつかの態様において、製剤に保存剤を用いない。凍結保存γδT細胞は、アロジェニック汎用細胞製品として解凍して複数の患者に注入することができる。
アフェレーシス機器を用いて一次ヒト末梢血単核細胞(PBMC)を健康なドナーから収集する。PBMCをFicolll-Paque(商標)PLUS(GE Healthcare Bio-Sciences AB, Uppsala, スウェーデン)システムまたは類似のシステムで精製する。その後、細胞を適切な成長培地に再懸濁する。
健康なドナー由来の新鮮組織をCooperative Human Tissue Network(CHTN)から入手し、RPMI-1640培地に入れ実験室に輸送する。組織をメスで1~3mm3断片に切断する。GlutaMAX、25mM HEPES pH7.2、100U/mlペニシリン、100U/mlストレプトマイシン及び10%ヒトAB血清ならびに100IU/mlのrhIL-2を追加した2mLのRPMI-1640中の2~5断片/ウェルを24ウェルプレート(Costar)に入れるか、または後述のように消化する。プレートを37℃、空気中5%CO2で加湿インキュベーター内でインキュベートする。1日おきに培養物を検査してリンパ球の増殖を監視する。培養開始後7日ごとにすべてのウェルで培地の半分を交換する。密集したリンパ球のカーペットが断片の周りを覆うか、または後述のように消化した組織に由来するリンパ球集団が適切な濃度に達したら、リンパ球を収集する。
健康なドナー由来の新鮮組織サンプルをCooperative Human Tissue Network(CHTN)から入手し、RPMI-1640培地に入れ実験室に輸送した。Liberase(商標)DL Research Grade(Sigma Aldrich Co., St. Louis, MO)、またはLiberase(商標)TM Research Grade(Sigma Aldrich Co., St. Louis, MO)の2つの酵素ブレンドを用いて、リンパ球を酵素消化によって単離した。組織を2~3mm3の断片に切断し、37℃、5%CO2で1時間消化した。消化した細胞懸濁液を40μmフィルターに通し、スピンダウンしてRPMI-1640培地で洗浄した。細胞を計数し、10%ヒトAB血清(Corning)及び100IU/mlのrhIL-2を追加したRPMI培地(GIBCO BRL)に再懸濁した。収集した細胞集団を24ウェル組織培養プレートに0.5~1×106細胞/mlで接種した。細胞が1.5×106細胞/mlの濃度を超えた場合、細胞をRPMI-IL2含有培地に分割した。
結腸、乳房、腎臓、頭頚部、口腔、膵臓及び肝臓のものを含む原発性及び転移性癌の患者由来の新鮮腫瘍検体をCooperative Human Tissue Network(CHTN)から入手し、RPMI培地に入れ実験室に輸送した。腫瘍検体をメスで1~3mm3断片に切断した。GlutaMAX、25mM HEPES pH7.2、100U/mlペニシリン、100U/mlストレプトマイシン及び10%ヒトAB血清ならびに100IU/mlのrhIL-2を追加した2mlのRPMI-1640中の2~5断片/ウェルを24ウェルプレート(Costar)に入れた。プレートを37℃、空気中5%CO2で加湿インキュベーター内でインキュベートした。1日おきに培養物を検査してリンパ球の増殖を監視した。培養開始後7日ごとにすべてのウェルで培地の半分を交換した。密集したリンパ球のカーペットが断片の周りを覆ったら、リンパ球を収集した。
結腸、乳房、腎臓、頭頚部、口腔、膵臓及び肝臓のものを含む原発性及び転移性癌の患者由来の新鮮腫瘍検体をCooperative Human Tissue Network(CHTN)から入手し、RPMI培地に入れ実験室に輸送した。Liberase(商標)DL Research Grade(Sigma Aldrich Co., St. Louis, MO)、またはLiberase(商標)TM Research Grade(Sigma Aldrich Co., St. Louis, MO)の2つの酵素ブレンドを用いて、リンパ球を酵素消化によって単離した。組織を2~3mm3の断片に切断し、37℃、空気中5%CO2で1時間消化した。消化した細胞懸濁液を40μmフィルターに通し、スピンダウンしてRPMI-1640培地で洗浄した。細胞を計数し、10%ヒトAB血清(Corning)及び100IU/mlのrhIL-2を追加したRPMI培地(GIBCO BRL)に再懸濁した。収集した細胞集団を24ウェル組織培養プレートに0.5~1×106細胞/mlで接種した。細胞が1.5×106細胞/mlの濃度を超えた場合、細胞をRPMI-IL2含有培地に分割した。
Ficoll-Paque(商標)PLUS(GE Healthcare Bio-Sciences PA, 米国)を用いて健康なドナーに由来するバフィーコートから分離することによってPBMC集団を得た。24ウェル組織培養プレートにおいて、10%ウシ胎児血清(Gibco)、2mmol/L L-グルタミン、100U/mL ペニシリン、100U/mL ストレプトマイシン、及び100rhIL-2/mlを追加したRPMI-1640(Corning CellGro)中で、1×106細胞/mLでPBMCを培養した。
Ficoll-Paque(商標)PLUS(GE Healthcare Bio-Sciences PA, 米国)を用いて健康なドナーに由来するバフィーコートから分離することによってPBMC集団を得た。24ウェル組織培養プレートにおいて、CTS-OpTmizerサプリメントを含むCTS無血清培地中で、1×106細胞/mLでPBMCを培養した。
PMBCを前述のアフェレーシス法で収集し、低張処理またはFicoll勾配遠心分離を用いた密度分離によって赤血球を除去する。赤血球不含PBMCをラージスケール組織培養容器中、例えば10スタックまたは40スタックCell Factory(Nunc)、ローラーボトル(Nunc)などでインキュベートする。マクロファージ及び単球を含む接着性集団は一般に細胞培養容器の表面に付着したままとなる。懸濁集団中で成長した細胞集団はγδT細胞が豊富である。およそ108、109または1010PBMCをCD4及びCD8でコーティングされた鉄含有マイクロビーズ(例えばMiltenyi Biotechマイクロビーズ)でインキュベートする。インキュベートした細胞集団を磁場中に流し通すと、CD4+及びCD8+T細胞がそこに留まる。「フロースルー」細胞集団はγδT細胞が豊富である。
PMBCを前述のアフェレーシス法で収集し、低張処理またはFicoll勾配遠心分離を用いた密度分離によって赤血球を除去する。赤血球不含PBMCをラージスケール組織培養容器中、例えば10スタックまたは40スタックCell Factory(Nunc)、ローラーボトル(Nunc)などでインキュベートする。赤血球除去PBMCをグラスウール充填カラムに流すことによって単球及びマクロファージを除去する。「フロースルー」細胞集団はさらなる処理のためのγδT細胞が豊富である。
PMBCを前述のアフェレーシス法で収集し、低張処理またはFicoll勾配遠心分離を用いた密度分離によって赤血球を除去する。赤血球不含PBMCをラージスケール組織培養容器中、例えば10スタックまたは40スタックCell Factory(Nunc)、ローラーボトル(Nunc)などでインキュベートする。実施例8または実施例9に記載した方法のいずれかによって単球及びマクロファージを除去する。およそ108、109または1010PBMCをCD4及びCD8でコーティングされた鉄含有マイクロビーズ(例えばMiltenyi Biotechマイクロビーズ)でインキュベートする。インキュベートした細胞集団を磁場中に流し通すと、CD4+及びCD8+T細胞がそこに留まる。「フロースルー」細胞集団はγδT細胞が豊富である。不要な細胞、例えばNK、γδT細胞、B細胞、単球及びマクロファージなどは、不要な細胞型を対象とする抗体のカクテルを用いた免疫磁気ビーズ分離(例えばMiltenyi Biotech AutoMACSシステム)によって除去する。
一実施例では、細胞表面マーカーのポジティブ(すなわちγδTCR)またはネガティブ(すなわちαβTCR、CD4、CD8、CD56)発現に基づいて、フローサイトメトリーソーティングで一次培養物から天然γδT細胞を単離する。
新たに採取された腫瘍検体をNCI Cooperative Human Tissue Network(CHTN)から入手した。肝臓転移結腸腺癌(TIL1)及び腎腫瘍(TIL2)がRPMI-1640培地に入れて輸送された。平刃を用いて腫瘍組織を2mm3の大きさの小片に細断し、その後、RPMI及び3000ユニットのDNase中2mLのLiberase酵素カクテル(Sigma Chemical Co., St. Louis, MO)で記載したように消化した。消化後に腫瘍を滅菌ガーゼ40μmナイロンメッシュに通して濾過し、RPMI-1640で2回洗浄した。細胞を計数し、L-グルタミン、及び100U/mLのrhIL-2を追加した10%ヒトAB血清を含有するRPMI-1640中1×106/mlとして24ウェルプレートで培養した。培養6日後に腫瘍浸潤リンパ球を収集した。フローサイトメトリー抗δ1TCR(FITC結合抗Vδ1TS8.2(Thermo Fisher)及び抗Vδ2 B6(Biolegend)によってγδTリンパ球の存在を分析した。データはFlowJoソフトウェアで分析した。
サイトカイン(IL-2、IL-4、IL-7、IL-15、IL-12、IL-21、IL-23またはIL-33)、成長因子(インスリン及びトランスフェリン、インスリン様成長因子)、アルブミン、脂質(コレステロール、脂質溶液、脂質前駆体)、ビタミン、銅、鉄、セレン、タンパク質加水分解物、必須アミノ酸、非必須アミノ酸、及び剪断保護剤(Pluronic F-68)を含有する無血清培地、例えばEx-Vivo10、Ex-Vivo15、Ex-Vivo20、AIMV培地、Optimizer CTSなどの中でγδT細胞を刺激して増殖させる。
ロバストなγδT細胞成長をもたらす追加の添加剤には、塩化カルシウム、無水物、硝酸カルシウム、硫酸第二銅、五水和物、クエン酸第二鉄、硝酸第二鉄、硫酸第一鉄、硫酸亜鉛、及び/またはプトレシンが含まれていた。
異なる集団を区別する細胞表面マーカーに対するFACS染色によって増殖したT細胞集団を同定する。2%ウシ胎児血清を含有するHEPES緩衝生理食塩水(HBSS)中で細胞を1回洗浄し、4℃で30分間適量のMAbとともにインキュベートしてHBSSで再び洗浄した。簡潔に述べると、CD2、CD3(BioLegend、クローンOKT3)、CD4(BioLegend、クローンOKT4)、CD7、CD8(BioLegend、クローンRPAT8)、CD11a、CD16、CD18、CD19、CD27、CD28、CD38、CD45RA、CD56、CD57、CD69、CD71、CD95、CD107、ICAM-1、MICA/B、NKG2D DR5、CCR1、CCR2、CCR3、CCR4、CCR5 CCR6、CCR7、CCR10、CXCR1、CXCR2、CXCR3、CXCR5、CXCR5、CXCR6、CXCR7、IL-2R、IL-7R、Ki67、L-セレクチン、VLA-4、JAML、PD1、PDL1、CTLA-4、Ox40、TCR Vδ1(ThermoFisher Scientific、クローンTS8.2)、またはTCR Vδ2(BioLegend、クローンB6)を対象とするフルオロイソチオシアネート(FITC)またはフィコエリスリン(PE)結合MAbを含有する100ulの量のFACS染色培地(FSM;2%ウシ胎児血清を含有するHBSS)中で1×106細胞を染色する。
血清含有培地(R2:RPMI+10%FBS)及び無血清培地(AIMV+ウシアルブミン;CTS無血清サプリメント)において、異なるδ2T細胞の成長及び増殖速度を評価した。図5はδ2T細胞の成長を図示するグラフを示す。本実験に用いたすべての培地は100IU/mLのIL-2、2mMのグルタミン及び1×ペニシリン/ストレプトマイシンを含有していた。さらに、0日目に1、5及び20μMのゾレドロン酸で細胞を刺激した。ゾレドロン酸のさらなる添加はなしで2~3日ごとに培地を補充した。13日の期間の後の各処理の106PBMCから増殖したδ2T細胞の総数及び増殖倍率を図5に示す。
図6及び図7は抗γδTCR抗体遮断実験を図示するグラフを示し、図8及び図9は抗体競合アッセイを示す。図6及び図7は遮断実験の結果を示すが、この実験ではPBMCを様々な抗体、すなわち5A6.E9、B1、TS8.2、15D、B3、B6、TS-1、γ3.20、IMMU510、または11F2でプレインキュベートした。その後、細胞を洗浄して二次TS8.2-FITC(δ1特異的)またはB6-PE(δ2特異的)抗体で染色した。フローサイトメトリーによってPBMCサンプルを分析した。幾何平均蛍光強度(gMFI)の低下を用いて遮断の程度を評価した。TS8.2-FITC(図6)及びB6-PE(図7)に対して阻害のレベルを示す。
24ウェルプレートを0.5~1μgの抗γδTCR抗体でコーティングした。消化した腫瘍組織から実施例10に記載したように単離した細胞を計数し、10%ヒトAB血清及びrhIL-2(100IU/mL)を追加したRPMI1640培地中0.5~1×106細胞/mlで抗体でコーティングしたウェルに接種した。培養物を37℃、5%CO2で74~21日間インキュベートした。
実施例5に記載したように消化した腫瘍組織から単離した細胞を計数し、10%ヒトAB血清及びrhIL-2(100IU/mL)を追加したRPMI1640培地中0.5~1×106細胞/mlで、三次元細胞培養プレート(Corning(登録商標)Costar(登録商標)超低接着マルチウェルプレート)の抗体でコーティングしたウェルに接種した。培養物を37℃、5%CO2で74~21日間インキュベートした。
活性化剤は、可溶性作用物質、または培養ウェルに固定化した作用物質のいずれかとして試験した。1×106細胞/mlの細胞密度で24ウェルプレート中で培養したヒトPBMCに、可溶性抗原及び抗体を0.1~5μg/mlの最終濃度で添加した。あるいは、24ウェル培養プレートのウェルをコーティングすることによって、抗γδTCR抗体を固定化した。抗γδTCR抗体は0.1~10μg/mlの濃度で添加した。PBSでウェルを2回洗浄し、その後、PBMCをプレートに移して、上記のようにRPMI-1640、AIM-VまたはCTS-OpTmizer培地のいずれかで培養した。培養培地には100IU/mLのrhIL-2を追加した。
ドナーB3由来の100万PBMCを、24ウェルプレートに1ウェル当たり0.5、1、及び2μgで固定化した様々な抗体で0日目に刺激した。試験した抗体は、マウスIgG1アイソタイプ対照クローンMG1-45(Bio Legend)、UCHT-1、5A6.E9、B1、TS8.2、15D、B6、B3、TS-1、γ3.20、7A5、及びゾレドロネートであった。図10及び図11は、それぞれPBMC由来のδ1及びδ2T細胞の活性化及び増殖を図示するグラフを示す。細胞は、10%FBS、100IU/mL rhIL-2、グルタミン及び1×ペニシリン ストレプトマイシンを含むRPMIを含有する培地中で活性化及び増殖させた。最初の刺激後7日目に、細胞を新鮮な培地に継代し、同一濃度の同一抗体で新たにコーティングした24ウェルプレートに入れた。再刺激した培養物の培地は13日目まで2~3日ごとに補充し、フローサイトメトリーによって分析した。
抗体の結合エピトープの適切なフォールディング/組立てにジスルフィド結合の形成を必要とするエピトープは、立体構造エピトープとして知られている。重要な結合残基の特定は、反応性Vデルタ鎖の部位特異的変異誘発によって行うことができる。変異鎖を特異的抗体に対する反応性の喪失について試験する。結合部位に包含される残基は、さもなければ非反応性である鎖における重要な残基の変異誘発によってTS-1抗体の結合が復元されることとなる場合に特定することができる。
CD2エピトープ:
個々のドナー由来の増殖したγδT細胞のクローン多様性をポリメラーゼ連鎖反応(PCR)で評価する。健康なドナー由来の新たに単離したPBMCのクローン多様性を、抗TCR特異的抗体、リガンド、及びレクチンを含む本明細書に記載の異なる活性化剤で7及び13日間刺激した培養物のクローン多様性と比較する。
ヒトCD20遺伝子をcDNAクローン(Origene Technologies, Inc., 6 Taft Court, Suite 100, Rockville, Md. 20850)から得る。フォワードプライマー(5’ATGACAACACCCAGAAATTCAGTAAATGG3’)及びリバースプライマー(5’TCAAGGAGAGCTGTCATTTTCTATTGGTG3’)を用いてCD20遺伝子を増幅する。増幅したCD20cDNAを哺乳類細胞用の高発現ベクターとしてのpCDNA3.4(Thermo Fisher Scientific)に組み込み、宿主細胞としてのCHO細胞に形質移入する。細胞表面上に高いレベルでCD20分子を発現する組換えCHO細胞(CD20/CHO細胞)をFACS分析によって同定する。
NY-ESO-1-MHC特異的ペプチド複合体を発現するTリンパ球から、高反応性αβTCR鎖の配列を含むTCRを発現する構築体を単離する。NY-ESO-1-MHC特異的ペプチド複合体は、様々なNYESO-1発現腫瘍に対する強力なインビトロ及びインビボ抗腫瘍活性を誘発する。
標準的な技術を用いて所望の抗原に対して特異的であるものを選択したT細胞から、αβTCR(腫瘍認識部分)を含むポリヌクレオチドをクローニングする。腫瘍認識部分をコードする発現カセットを含むレトロウイルスまたはレンチウイルスによる感染前に、単離した内因性野生型γδT細胞を前述の実施例に記載の方法で少なくとも6×106細胞に成長させる。ウイルス感染の標準的手順を用いてベクター系を野生型γδT細胞に導入することができる。選択マーカーの発現を用いて形質移入に成功した細胞を選択する。
腫瘍細胞を特異的に認識し、活性化してこれを死滅させるように改変γδT細胞を誘導することができる標的化部分を発現するレトロまたはレンチウイルスベースのベクターを、γδT細胞に形質導入する。形質導入される標的化部分は、腫瘍特異的表面タンパク質または腫瘍特異的細胞内ペプチドを対象とするMAbを含む。γδT細胞は、ペプチド-MHC複合体を対象とする高親和性TCRによっても改変する。
CAR構築体設計は異なる主な機能ドメインを含み、腫瘍細胞に掲示された目的のタンパク質またはMHC結合ペプチドを認識する標的部分、細胞外受容体標的化要素を膜貫通ドメインに連結する短いスペーサーがあり、膜貫通ドメインは細胞膜を横断し、細胞内活性化シグナル伝達ドメインに連結する。
癌細胞に対する改変T細胞の効力を最適化するために、様々なスペーサーが腫瘍認識部分構築体中に改変されるであろう。各スペーサーのサイズは、標的タンパク質のサイズ、受容体によって認識されるエピトープ、改変腫瘍認識部分のサイズ及び受容体の親和性に応じて異なることになる。立体構造変化に適応することのできるスペーサーは、ヒトIgG、CD8a及びCD4ヒンジ領域の配列を含む。
様々な共刺激ドメインが腫瘍認識部分を含む構築体中に改変されることになる。CD28、4-1BB、CD2、CD27、NKG2D、CD161、CD30、JAML、CD244を含む共刺激ドメインまたはCD100共刺激シグナル伝達ドメインをγδT細胞中に改変して、キメラ受容体を介した活性化を増幅する「二次シグナル」を模倣するが、これによってよりロバストなシグナルがもたらされ、増殖して癌細胞を死滅させる。
3つのITAMドメイン(ITAM1:APAYQQGQNQLYNELNLGRREEYDVLDKR、(配列番号5);ITAM2:PQRRKNPQEGLYNELQKDKMAEAYSEIGM、(配列番号6);及びITAM3:ERRRGKGHDGLYQGLSTATKDTYDALHMQ、(配列番号7))を含む細胞内CD3ζ(残基52~164)をクローニングした。
同一の細胞内腫瘍特異的タンパク質を対象とするTCR及びMAbを含めた腫瘍認識部分を含む2つ以上の構築体をγδT細胞に形質導入する。異なるMHCハプロタイプ、例えばA2及びA1などとの関連で特異的ペプチドを認識するように各構築体を選択し、同一腫瘍細胞上に発現される異なる標的を対象とする抗体または同一標的上の異なるエピトープを対象とする抗体である。
適切な組織培養培地、例えば前述の実施例に記載の組織培養培地などで改変γδT細胞を成長及び増殖させる。外部抗原による刺激有りまたは無しで、かつAPCまたはアミノホスフェートとの共培養なしで、5%CO2インキュベーター中、37℃で約1×106まで指数関数的に改変γδT細胞を成長させる。
IFN-γ、TNF-α(R&D Systems)、IL-1β、IL-2、(Biosource International)、IL-12(Diaclone Research)、及びIL-18の発現は、市販の酵素結合免疫吸着アッセイ(ELISA)キットを用いて測定される。酵素結合免疫吸着アッセイは製造者の指示に従って実施される。サイトカインの量は、0.05M炭酸水素ナトリウムバッファー中1μg/mlの濃度で一晩4℃で、ヒトサイトカインに対するモノクローナルマウスIgG1でコーティングしたポリスチレン96ウェルプレート(Maxisorb、Nunc)中で、異なる時点(24~72時間)において測定される。Tween20を含有するPBSで洗浄した後、プレートをPBST中3%ウシ血清アルブミン(BSA、重量/体積、Sigma)で1時間37℃でブロッキングする。標準試料(R&Dから入手できる組換えヒトサイトカイン)及びγδ培養物サンプルからの上清を添加し、プレートを室温で2時間インキュベートする。組換えヒトサイトカイン標準試料に対して対応する抗体ペアで検出。
全PBMCまたは富化改変及び非改変γδT細胞集団に共刺激剤を添加することによって、改変及び非改変γδT細胞の活性化、増殖及び生存力を補助する様々な共刺激剤の能力を試験する。抗γδTCR特異的MAbを含む様々な活性化剤に共刺激剤を可溶性または固定化形態で添加する。前述の実施例に記載の健康なドナーのバフィーコートから精製されたヒトPBMCまたは組織から単離されたリンパ球を、24ウェルフラットボトム組織中で100IU/mL rhIl-2を追加した1mLの完全RPMI-1640培地中に2×106で、2~10μgの抗γδTCR抗体とともに、CD2、CD27、CD28、CD30、CD137、ICOS、CD161、CD122、CD244、及びNKG2Dに対する可溶性もしくは固定化アゴニスト抗体、またはCD70-FC(CD27に対するリガンド)、MICA、MICB及びULBP(NKG2Dに対するリガンド)、4-1BB(CD137に対するリガンド)、ならびにPilar9(CD161に対するリガンド)を含む刺激リガンドの存在下または非存在下で培養する。
全PBMCまたは富化改変及び非改変γδT細胞集団にサイトカインを添加することによって、改変及び非改変γδT細胞の活性化、増殖及び生存力を補助する様々なサイトカインの能力を試験する。サイトカイン活性化補助を試験するために、様々なサイトカインを3日ごとに100IU/mLで別々の細胞培養物に個別に添加する。試験するサイトカインにはIL-2、IL-7、IL-12、IL-15、IL-33、IL-21、IL-18、IL-19、IL-4、IL-9、IL-23、及びIL1βが含まれる。選択した期間の終了後、細胞のサンプルを採取し、細胞集団の組成、すなわちγδT細胞、αβT細胞、B細胞、及びNK細胞のパーセンテージをフローサイトメトリーによって測定する。
改変または非改変γδ-T細胞のインビトロ細胞傷害性アッセイは、4つの異なる細胞傷害性アッセイ:1)腫瘍細胞溶解;2)活性化T細胞によるサイトカイン放出;3)LDHアッセイ;及び4)CD107a発現の活性化によって測定される。限定はしないが結腸、乳房、卵巣、腎臓、頭頚部、口腔、膵臓及び肝臓癌に由来する様々なヒト腫瘍細胞株またはヒト腫瘍由来細胞(患者由来異種移植片腫瘍株)を標的細胞として用いる。正常ヒト乳腺上皮細胞(HMEC)を陰性対照として用いる。簡潔に述べると、増殖させる標的細胞を96ウェルプレートに1ウェル当たり1×104細胞で接種する。24時間後、培地を除去し、活性化T細胞をRPMI培地(Corningから入手できるRPMI-1640、10%Hycloneウシ胎児血清、2mmol/L L-グルタミン、100U/mLペニシリン、100U/mLストレプトマイシン)中に、20:1または40:1のエフェクタ-対標的比で添加して、5%CO2の加湿雰囲気中、37℃で5時間インキュベートする。改変及び非改変γδ-T細胞によって放出されるサイトカインは、このインキュベーションの後、共培養上清を収集し、市販のELISAキット(BioLegend)を用いてIFN-γ、IL2、TNFα、IL-6及びIL1βを含むサイトカインの分泌を定量化することによって測定する。LDH細胞傷害性検出キット(Roche)を製造業者の指示に従って用いてLDHアッセイを実施する。最後に、標的細胞へのγδ-T細胞の添加後、Cy7PE(BioLegend)に結合したCD107a抗体5ulを添加することによってCD107a発現を測定する。プレートを短時間遠心分離し、5%CO2の加湿雰囲気中、37℃で1時間インキュベートし、その後、1:50希釈のGolgi stop BD Biosciences(BD)8.5μLを添加する。5%CO2の加湿雰囲気中、37℃でさらに2時間細胞をインキュベートする。このインキュベーションの後、細胞を氷上で収集し、冷HBSSで1回洗浄し、1ulのzombie aqua(BioLegend)アミン染色色素で染色して100ulのHBSS中の生細胞集団を測定する。細胞をFACS染色培地(FSM;2%ウシ胎児血清を含有するHBSS)で洗浄し、FITCに結合したVδ1抗体(ThermoFisherから入手できるクローンTS8.2)及びPEに結合したVδ2抗体(BioLegendから入手できるクローンB6)を含めた、飽和量の抗体を含有する100ulのFSMに再懸濁する。抗体を細胞とともに氷上で30分間インキュベートし、その後、過剰量のHBSSで洗浄する。染色された集団をBD FACSCanto IIで収集し、FlowJo v10.1ソフトウェアを用いて解析する。
様々な腫瘍細胞株及び原発性腫瘍細胞に対する細胞傷害性活性を1:1~40:1のエフェクタ-対標的比で試験する。細胞内酵素である乳酸脱水素酵素の放出を検出することによって、腫瘍細胞株及び原発性腫瘍細胞の溶解を測定する。培養物中の改変腫瘍認識部分を発現しているγδT細胞のパーセンテージをフローサイトメトリー、ELISA及び/またはELISPOTアッセイによって測定する。
ヒト腫瘍異種移植片を移植した免疫不全マウス、もしくはhuPBMC-NOG(Taconic)マウス、または前述のヒト化免疫系を有するマウスのコホートに、結腸、乳房、腎臓、頭頚部、前立腺、膀胱、口腔、膵臓及び肝臓の癌を含む患者由来腫瘍または腫瘍細胞株に由来する細胞を皮下または同所注入して、100mm3の平均サイズに到達させる。富化または単離したナイーブまたは改変いずれかのγδ-T細胞をある範囲の投与量でマウスに静脈内注入するか、または腫瘍に直接注入する。腫瘍退縮は、未治療及び特定の適応症に対する標準治療と比較したγδ-T細胞投与後の腫瘍体積の減少と定義される。いくつかの実験において、ナイーブまたは改変γδT細胞をGFPまたはルシフェラーゼで標識し、腫瘍保有マウスに注入してそのパーシスタンス及びホーミングを追跡する。研究の最後に、腫瘍を採取してフローサイトメトリー及び免疫組織化学によってGFP陽性細胞を分析した。
非改変γδT細胞を長期保存のために凍結培地中で製剤化し、低温保存装置、例えば液体窒素冷凍装置(-195℃)または超低温冷凍装置(-65℃、-80℃または-120℃)などに入れる。凍結培地は、ジメチルスルホキシド(DMSO)、塩化ナトリウム(NaCl)、デキストロース、硫酸デキストランまたはヒドロイエチルデンプン(hydroyethyl starch)(HES)を6.5~7.5の範囲の生理的pH緩衝剤とともに含有することになるであろう。
他の凍結保護物質を前述の実施例に記載の凍結保存担体に加え、栄養維持ならびに凍結及び解凍プロセス中の溶解に対する生物物理的細胞保護をもたらす。これらとしては、D-グルコース、マンニトール、スクロース、アデニン、グアノシン、組換えヒトアルブミン、シトレート、抗凝固剤、ベンゾナーゼ、DNase、プロピレングリコール、エチレングリコール、2-メチル-2,4-ペンタンジオールが挙げられる。高細胞密度凍結製品に緩衝能を付与するように意図された追加の添加剤としては、無機リン酸塩、炭酸水素ナトリウム及びHEPESが挙げられる。
速度制御冷凍装置(例えばCryoMedコントロールレートフリーザー)、または所望の凍結速度をもたらす適切に断熱されたラッキングシステムを備える機械式-70℃冷凍装置を用いて、1分当たり-0.1℃~-0.5℃の凍結速度を達成するように意図した温度制御傾斜でγδT細胞の最初の凍結を行う。最大30~60日の短期保存のために凍結細胞を-70℃冷凍装置に入れる。前述の節に記載の方法によって測定した場合に劣化を示すことなく、γδT細胞数及び細胞機能を維持したまま最大12、24、36及び48か月で長期保存するためには、液体N2貯蔵タンクに凍結細胞を入れる。
遠心分離及び/または膜透析濾過によって、凍結保護添加剤を含有する生理緩衝液中5×106細胞/mL~108細胞/mLまで改変γδT細胞を濃縮し、長期保存のために低温保存装置、例えば液体窒素、または超低温冷凍装置などに入れる。
新鮮なまたは凍結した改変γδT細胞をベッドサイドで解凍し、ヒト被検者に静脈内注入する。約1細胞/kg~約1×1010細胞/kgの改変γδT細胞を30~60分間かけてヒト被検者に注入する。改変γδT細胞は、共刺激サイトカインIL-2または他のサイトカインの補助有りまたは無しで投与する。任意により、処置を繰り返す。被検者におけるγδT細胞のインビボ増殖をフローサイトメトリーによって測定する。
Claims (14)
- 増殖したγδT細胞集団を含む医薬を製造するための方法であって、γδT細胞集団の増殖が、δ1γδT細胞又はδ2γδT細胞亜集団の選択的な増殖を刺激する作用物質によって活性化されており、
作用物質が、δ1又はδ2γδT細胞を増殖させ、かつそれぞれ:
i.δ1TCR鎖の特異的エピトープに結合し、δ1γδT細胞を選択的に増殖させ、かつ増殖したδ1γδT細胞集団を製造する、TS8.2又はTS-1抗体、又は
ii.δ2TCR鎖の特異的エピトープに結合し、δ2γδT細胞を選択的に増殖させ、かつ増殖したδ2γδT細胞集団を製造する、B6又は15D抗体
から選択され、並びに:
a.増殖したγδT細胞集団が、δ1T細胞のあるパーセンテージを含み、δ1T細胞のパーセンテージが、80%より高く、かつ増殖したγδT細胞集団が、少なくとも1×10 7 個のδ1γδT細胞を含む;又は
b.増殖したγδT細胞集団が、δ2T細胞のあるパーセンテージを含み、δ2T細胞のパーセンテージが、80%より高く、かつ増殖したγδT細胞集団が、少なくとも1×10 7 個のδ2γδT細胞を含む
方法。 - a.増殖したγδT細胞集団が、δ1T細胞のあるパーセンテージを含み、増殖したγδT細胞集団中のδ1T細胞のパーセンテージが、90%より高い;
b.増殖したγδT細胞集団が、δ2T細胞のあるパーセンテージを含み、増殖したγδT細胞集団中のδ2T細胞のパーセンテージが、90%より高い;
c.増殖したγδT細胞集団が、δ3T細胞のあるパーセンテージを含み、増殖したγδT細胞集団中のδ3T細胞のパーセンテージが、5%より高い;又は
d.抗体は、γδT細胞集団の増殖を24時間未満に1細胞分裂の平均速度で刺激する、
請求項1に記載の方法。 - a.抗体が、表面上に固定され;かつ/又は
b.γδT細胞集団のγδT細胞が、血液試料、臍帯血試料、腫瘍、幹細胞前駆体、腫瘍生検試料、組織、リンパ球、及び外部環境と直接接触する対象の上皮部位からなる群から選択される対象の複合試料から単離されたγδT細胞に由来する
請求項1に記載の方法。 - γδT細胞集団が、腫瘍認識部分を発現するように改変されたγδT細胞のある量をさらに含む、請求項1-3のいずれか1項に記載の方法。
- a.改変されたγδT細胞が、ヒトHLA遺伝子座を欠いている;
b.改変γδT細胞が、万能ドナー細胞である;
c.改変γδT細胞が、腫瘍特異的アロジェニックγδT細胞である;
d.改変γδT細胞が、2つ以上の腫瘍認識部分を発現するように改変されており、
(i)2つ以上の腫瘍認識部分が、異なっており、それぞれの異なる腫瘍認識部分が、同じ抗原の異なるエピトープを認識するように改変されているか、若しくは
(ii)2つ以上の腫瘍認識部分が、異なっており、それぞれの異なる腫瘍認識部分が、異なる抗原の異なるエピトープを認識するように改変されている;
e.改変γδT細胞が、Vδ1+T細胞、Vδ2+T細胞、若しくはVδ3+T細胞、又はそれらの混合物に由来する;
f.改変γδT細胞が、血液試料、臍帯血試料、腫瘍、幹細胞前駆体、腫瘍生検試料、組織、リンパ球、及び外部環境と直接接触する対象の上皮部位からなる群から選択される対象の複合試料から単離されたγδT細胞に由来する;又は
g.改変γδT細胞が、約2~約20時間以内に1細胞分裂の平均速度で増殖する、請求項4に記載の方法。 - a.腫瘍認識部分が、腫瘍浸潤リンパ球に由来する;又は
b.腫瘍認識部分が、T細胞からクローンされる;又は
c.腫瘍認識部分が、改変T細胞受容体であり、
i.改変T細胞受容体が、ヒト若しくはマウスT細胞受容体に由来する、
ii.改変T細胞受容体が、改変αβTCRである、若しくは
iii.改変T細胞受容体が、改変γδTCRである;
d.腫瘍認識部分が、腫瘍抗原を認識する、キメラ抗原受容体(CAR)、抗体、単一鎖可変断片(scFV)、単一ドメイン抗体(sdAb)、抗体断片、Fab、若しくはF(ab) 2 であり、腫瘍認識部分が、ヒトB細胞、ラクダB細胞、ラマB細胞、ラットB細胞、若しくはマウスB細胞に由来する;
e.腫瘍抗原が、ペプチド-MHC複合体であり、かつ腫瘍認識部分が、ペプチド-MHC複合体を認識する;又は
f.腫瘍認識部分が、腫瘍細胞表面上に発現される外来性抗原、又はMHCクラス分子との複合体として細胞表面に呈示される派生ペプチドを認識する
請求項5に記載の方法。 - γδT細胞集団が、抗原認識部分を発現するように改変されているγδT細胞のある量をさらに含み、抗原認識部分が、自己免疫疾患に関連する抗原又は病原性抗原を認識する、請求項1に記載の方法。
- a.改変γδT細胞が、2つ以上の抗原認識部分を発現するように改変されており、それぞれの抗原認識部分が、同じ又は異なる自己免疫抗原を認識する;
b.改変γδT細胞が、2つ以上の抗原認識部分を発現するように改変されており、それぞれの抗原認識部分が、同じ又は異なる自己免疫抗原の異なるエピトープを認識する;
c.改変γδT細胞が、抗原認識部分を発現するように改変されており、抗原認識部分が、細菌性抗原又はウイルス性抗原である病原性抗原を認識する;
d.改変γδT細胞が、2つ以上の抗原認識部分を発現するように改変されており、それぞれの抗原認識部分が、同じ病原性抗原の異なるエピトープを認識する;又は
e.改変γδT細胞が、2つ以上の抗原認識部分を発現するように改変されており、それぞれの抗原認識部分が、異なる病原性抗原を認識し、
i.病原性抗原が、細菌蛋白質である;若しくは
ii.病原性抗原が、ウイルス蛋白質である
請求項7に記載の方法。 - δ1γδT細胞又はδ2γδT細胞亜集団の選択的なインビトロにおける増殖のための方法であって、
γδT細胞亜集団の選択的な増殖を刺激する活性化剤にγδT細胞集団を接触させることを含み、活性化剤がδ1又はδ2γδT細胞を選択的に増殖させる抗体であり、前記方法が、
a.60パーセントより高い、増殖したγδT細胞集団中のδ1T細胞のパーセンテージであって、増殖したγδT細胞集団が、少なくとも1×10 7 個のδ1γδT細胞を含み、δ1γδT細胞を選択的に増殖させる抗体がTS8.2及びTS-1抗体からなる群から選択される、パーセンテージ;又は
b.80パーセントより高い、増殖したγδT細胞集団中のδ2T細胞のパーセンテージであって、増殖したγδT細胞集団が、少なくとも1×10 7 個のδ2γδT細胞を含み、δ2γδT細胞を選択的に増殖させる抗体が15D及びB6抗体からなる群から選択される、パーセンテージ
を含む増殖したγδT細胞集団を生成することを含む、方法。 - 抗体が、表面上に固定化されている、請求項9に記載の方法。
- γδT細胞が、血液試料、臍帯血試料、腫瘍、幹細胞前駆体、腫瘍生検試料、組織、リンパ球、及び外部環境と直接接触する対象の上皮部位からなる群から選択される対象の複合試料から単離されたγδT細胞に由来する、請求項10に記載の方法。
- γδT細胞集団のγδT細胞が、腫瘍認識部位を発現するように改変されており、
a.改変γδT細胞が、万能ドナー細胞である;
b.改変γδT細胞が、腫瘍特異的アロジェニックγδT細胞である;
c.改変γδT細胞が、2つ以上の腫瘍認識部分を発現するように改変されており、
i.2つ以上の腫瘍認識部分が、異なっており、それぞれの異なる腫瘍認識部分が、同じ抗原の異なるエピトープを認識するように改変されている、若しくは
ii.2つ以上の腫瘍認識部分が、異なっており、それぞれの異なる腫瘍認識部分が、異なる抗原の異なるエピトープを認識するように改変されている;
d.改変γδT細胞が、Vδ1+T細胞、Vδ2+T細胞、若しくはVδ3+T細胞、又はそれらの混合物に由来する;又は
e.改変γδT細胞が、血液試料、臍帯血試料、腫瘍、幹細胞前駆体、腫瘍生検試料、組織、リンパ球、及び外部環境と直接接触する対象の上皮部位からなる群から選択される対象の複合試料から単離されたγδT細胞に由来する
請求項9-11のいずれか1項に記載の方法。 - a.腫瘍認識部分が、腫瘍浸潤リンパ球に由来する;
b.腫瘍認識部分が、T細胞からクローンされる;
c.腫瘍認識部分が、改変T細胞受容体であり、
i.改変T細胞受容体が、ヒト若しくはマウスT細胞受容体に由来する、
ii.改変T細胞受容体が、改変αβTCRである、若しくは
iii.改変T細胞受容体が、改変γδTCRである;
d.腫瘍認識部分が、腫瘍抗原を認識する、キメラ抗原受容体(CAR)、抗体、単一鎖可変断片(scFV)、単一ドメイン抗体(sdAb)、抗体断片、Fab、若しくはF(ab) 2 であり、腫瘍認識部分が、ヒトB細胞、ラクダB細胞、ラマB細胞、ラットB細胞、若しくはマウスB細胞に由来する;
e.腫瘍抗原が、ペプチド-MHC複合体であり、かつ腫瘍認識部分が、ペプチド-MHC複合体を認識する;又は
f.腫瘍認識部分が、腫瘍細胞表面上に発現される外来性抗原、又はMHCクラス分子との複合体として細胞表面に呈示される派生ペプチドを認識する
請求項12に記載の方法。 - 抗体が、γδT細胞集団の増殖を24時間未満に1細胞分裂の平均速度で刺激する、請求項9-13のいずれか1項に記載の方法。
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| C21 | Notice of transfer of a case for reconsideration by examiners before appeal proceedings |
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| A912 | Re-examination (zenchi) completed and case transferred to appeal board |
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| C211 | Notice of termination of reconsideration by examiners before appeal proceedings |
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| C22 | Notice of designation (change) of administrative judge |
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| C13 | Notice of reasons for refusal |
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| C22 | Notice of designation (change) of administrative judge |
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| A521 | Request for written amendment filed |
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| C23 | Notice of termination of proceedings |
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