JP7080263B2 - 高濃度の抗vegf抗体を含有する安定状態のタンパク質溶液製剤 - Google Patents
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Description
2月5日に出願された米国仮出願第62/088,061号、および2014年11月7
日に出願された米国仮出願第62/076,770号の優先権を主張するものである。
本発明は、抗VEGF抗体の水性医薬製剤、その調製法、およびこれらの製剤の使用に
関する。
血管内皮増殖因子(VEGF)は血管形成および血管新生の周知のレギュレーターであ
り、腫瘍および眼内障害と関係がある血管新生の重要なメディエーターであることが示さ
れている(Ferrara et al. Endocr. Rev. 18:4-25 (1997))。VEGFのmRNAは多く
のヒト腫瘍において過剰発現され、眼内分泌液中のVEGFの濃度は、糖尿病および他の
虚血関連網膜症を有する患者において活発に増殖する血管の存在と強く相関する(Berkma
n et al., J Clin Invest 91:153-159 (1993);Brown et al. Human Pathol. 26:86-91 (
1995);Brown et al. Cancer Res. 53:4727-4735 (1993);Mattern et al. Brit. J. Can
cer. 73:931-934 (1996);およびDvorak et al. Am J. Pathol. 146:1029-1039 (1995);
Aiello et al. N. Engl. J. Med. 331:1480-1487 (1994))。さらに、近年の研究は、A
MDに罹患した患者の脈絡膜新生血管膜における局所VEGFの存在を示している(Lope
z et al. Invest. Ophtalmo. Vis. Sci. 37:855-868 (1996))。抗VEGF中和抗体を使
用して、ヌードマウス中で様々なヒト腫瘍細胞株の増殖を抑制することができ、虚血性網
膜障害のモデルにおいて眼内血管形成を阻害することもできる(Kim et al. Nature 362:
841-844 (1993);Warren et al. J Clin Invest 95:1789-1797 (1995);Borgstrom et al
. Cancer Res. 56:4032-4039 (1996);およびMelnyk et al. Cancer Res. 56:921-924 (1
996))(Adamis et al. Arch. Opthalmol. 114:66-71 (1996))。
められている。液状医薬製剤中の治療用抗体の濃度は、例えば投与の経路に応じて広く変
化する。小体積が望まれるとき、高濃度の抗体製剤がしばしば必要である。例えば、高濃
度の製剤は硝子体内注射または皮下投与に望ましい可能性がある。
抗体は、保存中の化学的および物理的不安定性による原因で生物活性を失う可能性がある
。凝集、脱アミド化、および酸化は、抗体分解の最も一般的な原因であることが知られて
いる。特に、凝集は患者における免疫応答の増大をもたらす可能性があり、安全上の問題
となる。したがって、それは最小化または予防されなければならない。
メートル未満およびミリメートルサイズまでの範囲の粒子は、一般に人間の肉眼によって
見ることができるからである(Das, 2012, AAPS PharmSciTech, 13:732-746参照)。治療
用点眼剤調製物中の粒子は、眼に対するダメージを引き起こす可能性がある。したがって
、点眼剤製剤中の肉眼で見えない粒状物質の含有量が特定制限範囲内にあることを保証す
るための規制基準が存在する。例えば、米国薬局方(USP)は、顕微鏡による粒子計測
法により決定して、直径10μm以上の粒子の最大数が1mLあたり50であること、直
径25μm以上の粒子の最大数が1mLあたり5であること、および直径50μm以上の
粒子の最大数が1mLあたり2であることなどの、点眼剤溶液中の粒状物質に関する要件
を設定している(USP General Chapter <789>参照)。
する、または様々な医薬賦形剤、バッファーなどの存在下で分解するその傾向に対する抗
体のアミノ酸配列の予想外の影響を克服するための普遍的な手法は存在しない。さらに、
高濃度の(抗体などの)タンパク質を含み許容レベルの肉眼で見えない粒子を含有する点
眼剤製剤の調製は、難題であり予測可能でない。
および低レベルの抗体凝集体および肉眼で見えない粒子を含む、さらなる改良型の製剤を
提供することである。
したがって本発明は、点眼剤注射に適した、高濃度の抗VEGF抗体を含む水性医薬組
成物を対象とする。ある特定の態様では、本発明の水性医薬組成物は低レベル~検出不能
レベルの抗体凝集または分解を示し、製造、調製、輸送および長期保存中に生物活性の減
少がほとんど~全くなく、抗VEGF抗体の濃度は少なくとも約50mg/ml、60m
g/ml、80mg/ml、100mg/ml、120mg/ml、140mg/ml、
160mg/ml、180mg/ml、または200mg/mlである。
成物を提供する。ある特定の態様では、水性医薬組成物は、(i)少なくとも50mg/
mlの抗VEGF抗体、(ii)安定剤としてスクロースまたはトレハロース、(iii
)クエン酸またはヒスチジンバッファー、および(iv)界面活性剤としてポリソルベー
ト80を含む。
は5%~10%のトレハロース、0.006%~0.012%のクエン酸(w/v)、0
.2%~0.6%のクエン酸三ナトリウム二水和物(w/v)、および約0.01%~0
.1%のポリソルベート80(w/v)を含み、この製剤のpHは6.3~7.3である
。
請求の範囲のより詳細な記載から明らかとなる。
本発明は、高濃度の抗VEGF抗体を含む水性医薬組成物を提供する。ある特定の実施
形態では、本発明の水性医薬組成物は2~8℃で少なくとも18カ月安定状態であり、注
射または注入を含む眼部投与に適している。特定の実施形態では、本発明の水性医薬組成
物は、粒状物質の存在に関するUSP<789>の要件を満たす。したがって、ある特定
の実施形態では、本発明の水性医薬組成物における直径10μm以上の粒子の最大数は1
mLあたり50であり、本発明の水性医薬組成物における直径25μm以上の粒子の最大
数は1mLあたり5であり、本発明の水性医薬組成物における直径50μm以上の粒子の
最大数は1mLあたり2であり、米国薬局方General Chapter<789>
により要求されるように、前記粒子数は、光の不透明度および/または顕微鏡による粒子
計測法により決定した。
組成物である。医薬用途に適した組成物は滅菌、均質および/または等張状態であってよ
い。水性医薬組成物は、水性形態、例えば直ちに使用できる予め充填した注射器で直接(
「液体製剤」)、または使用直前に復元される凍結乾燥物として、のいずれかで調製する
ことができる。本明細書で使用する用語「水性医薬組成物」は、液体製剤または復元した
凍結乾燥製剤を指す。ある特定の実施形態では、本発明の水性医薬組成物はヒト対象への
点眼剤投与に適している。具体的な実施形態では、本発明の水性医薬組成物は硝子体内投
与に適している。別の実施形態では、本発明の水性医薬組成物は硝子体内注入による投与
に適している。
な医薬製剤を提供する。一態様では、本発明は、高濃度の抗VEGF抗体を含む水性医薬
組成物に関する。本発明の製剤において好ましい抗VEGF抗体は、その全容が参照によ
り本明細書に組み込まれている、国際公開第2009/155724号パンフレット中に
記載されている。
ち「抗原結合部分」、「抗原結合ポリペプチド」、もしくは「イムノバインダー」)また
は単鎖を含む。「抗体」は、ジスルフィド結合によって相互に結合した少なくとも二本の
重(H)鎖および二本の軽(L)鎖を含む糖タンパク質、またはその抗原結合部分を含む
。それぞれの重鎖は、重鎖可変領域(本明細書ではVHと略す)および重鎖定常領域で構
成される。重鎖定常領域は、3ドメイン、CH1、CH2およびCH3で構成される。そ
れぞれの軽鎖は、軽鎖可変領域(本明細書ではVLと略す)および軽鎖定常領域で構成さ
れる。軽鎖定常領域は1ドメイン、CLで構成される。VH領域およびVL領域は、フレ
ームワーク領域(FR)と呼ばれるさらに保存された領域が点在する、相補性決定領域(
CDR)と呼ばれる超可変領域にさらに細かく分けることができる。それぞれのVHおよ
びVLは、アミノ末端からカルボキシ末端に以下の順序:FR1、CDR1、FR2、C
DR2、FR3、CDR3、FR4で並んだ、3CDRと4FRで構成される。重鎖およ
び軽鎖の可変領域は、抗原と相互作用する結合ドメインを含有する。抗体の定常領域は、
免疫系の様々な細胞(例えばエフェクター細胞)および古典的補体系の主要成分(C1q
)を含む宿主組織または因子と、免疫グロブリンの結合を媒介することができる。
)と特異的に結合する能力を保持した抗体の1つまたは複数の断片を指す。抗体の抗原結
合機能は、完全長抗体の断片によって果たされ得ることが示されている。用語、抗体の「
抗原結合部分」内に包含される結合断片の例には、(i)Fab断片、VL、VH、CL
およびCH1ドメインからなる一価断片、(ii)F(ab’)2断片、ヒンジ領域のジ
スルフィド結合によって連結した2つのFab断片を含む二価断片、(iii)VHおよ
びCH1ドメインからなるFd断片、(iv)抗体の単一アームのVLおよびVHドメイ
ンからなるFv断片、(v)VHドメインからなる単一ドメインまたはdAb断片(Ward
et al., (1989) Nature 341:544-546)、ならびに(vi)単離相補性決定領域(CDR
)または(vii)場合によっては合成リンカーにより接合し得る2つ以上の単離CDR
の組合せがある。さらに、Fv断片の2ドメイン、VLおよびVHは別々の遺伝子によっ
てコードされているが、組換え法を使用し、VL領域およびVH領域が対になり一価分子
を形成する単一タンパク質鎖としてそれらを作製することができる合成リンカーにより、
それらを接合することができる(単鎖Fv(scFv)として知られている。例えばBird
et al. (1988) Science 242:423-426およびHuston et al. (1988) Proc. Natl. Acad. S
ci. USA 85:5879-5883を参照)。このような単鎖抗体も用語、抗体の「抗原結合部分」内
に包含されると考えられる。これらの抗体断片は、当業者に知られている従来の技法を使
用して得られ、完全抗体と同じ形式で有用性に関して断片をスクリーニングする。抗原結
合部分は、組換えDNA技法によって、または完全免疫グロブリンの酵素もしくは化学的
切断によって生成することができる。抗体は異なるアイソタイプ、例えばIgG(例えば
IgG1、IgG2、IgG3、もしくはIgG4サブタイプ)、IgA1、IgA2、
IgD、IgE、またはIgM抗体であってよい。
変重鎖および配列番号2で示す配列を有する可変軽鎖を含む。
VH:配列番号1
EVQLVESGGGLVQPGGSLRLSCTASGFSLTDYYYMTWVRQ
APGKGLEWVGFIDPDDDPYYATWAKGRFTISRDNSKNTLY
LQMNSLRAEDTAVYYCAGGDHNSGWGLDIWGQGTLVTVSS
VL:配列番号2
EIVMTQSPSTLSASVGDRVIITCQASEIIHSWLAWYQQKP
GKAPKLLIYLASTLASGVPSRFSGSGSGAEFTLTISSLQP
DDFATYYCQNVYLASTNGANFGQGTKLTVLG
)抗体断片である:
EIVMTQSPSTLSASVGDRVIITCQASEIIHSWLAWYQQKP
GKAPKLLIYLASTLASGVPSRFSGSGSGAEFTLTISSLQP
DDFATYYCQNVYLASTNGANFGQGTKLTVLGGGGGSGGGG
SGGGGSGGGGSEVQLVESGGGLVQPGGSLRLSCTASGFSL
TDYYYMTWVRQAPGKGLEWVGFIDPDDDPYYATWAKGRFT
ISRDNSKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAGGDHNSGWGLDI
WGQGTLVTVSS(配列番号3)
24号パンフレット中に記載されたように生成することができる。本明細書に記載する発
現ベクターを使用してscFvを生成することができる。発現ベクター中の開始コドン由
来のメチオニンは、それが翻訳後に切断されなかった場合、最終タンパク質中に存在する
(実施例の配列番号4を参照)。
列番号5、6および7で示す重鎖CDR1、CDR2およびCDR3、ならびに配列番号
8、9および10で示す軽鎖CDR1、CDR2およびCDR3を含む。
配列番号5 GFSLTDYYYMT
配列番号6 FIDPDDDPYYATWAKG
配列番号7 GDHNSGWGLDI
配列番号8 QASEIIHSWLA
配列番号9 LASTLAS
配列番号10 QNVYLASTNGAN
mg/mlである。好ましくは、本発明の水性医薬組成物は、約50mg/ml、約60
mg/ml、約70mg/ml、約80mg/ml、約90mg/ml、約100mg/
ml、約110mg/ml、約120mg/ml、約130mg/ml、約140mg/
ml、約150mg/ml、約160mg/ml、約170mg/ml、約180mg/
ml、約190mg/ml、約200mg/ml、約210mg/ml、約220mg/
ml、約230mg/ml、約240mg/ml、約250mg/mlまたは約300m
g/mlの抗VEGF抗体を含む。
/mlの間の抗VEGF抗体、例えば配列番号1および配列番号2を含む抗体を含む。
EGF抗体を含む。
抗VEGF抗体を含む。
安定剤、(ii)緩衝剤、(iii)界面活性剤、および(iv)遊離アミノ酸などの、
さらなる成分を含む。それぞれのこのような追加的成分を含めることによって、抗VEG
F抗体の凝集が少ない組成物を得ることができる。本発明の水性医薬組成物は、抗VEG
F抗体以外に、(i)安定剤、(ii)緩衝剤、および(iii)界面活性剤を含むこと
が好ましい。
どとして作用することができる。安定剤はイオン性または非イオン性(例えば糖)であっ
てよい。糖として、単糖、例えばフルクトース、マルトース、ガラクトース、グルコース
、D-マンノース、ソルボースなど、二糖、例えばラクトース、スクロース、トレハロー
ス、セロビオースなど、多糖、例えばラフィノース、メレジトース、マルトデキストリン
、デキストラン、スターチなど、およびアルジトール、例えばマンニトール、キシリトー
ル、マルチトール、ラクチトール、キシリトールソルビトール(グルシトール)などがあ
るが、これらだけには限られない。例えば、糖はスクロース、トレハロース、ラフィノー
ス、マルトース、ソルビトールまたはマンニトールであってよい。糖は糖アルコールまた
はアミノ糖であってよい。スクロースおよびトレハロースが好ましい。最も好ましいのは
スクロースである。イオン性安定剤として、NaClなどの塩またはアルギニン-HCl
などのアミノ酸成分を含めることができる。
、炭酸、酒石酸、コハク酸、酢酸またはフタル酸の塩などの有機酸塩、トリス、トロメタ
ミン塩酸塩またはリン酸バッファーがあるが、これらだけには限られない。さらに、アミ
ノ酸成分を緩衝剤として使用することもできる。10~20mMのヒスチジンバッファー
、例えば0.13%~0.26%(w/v)のヒスチジンおよび0.03%~0.07%
(w/v)のヒスチジン塩酸塩一水和物、または10~20mMのクエン酸バッファー、
例えば0.006%~0.012%のクエン酸(w/v)および0.2%~0.6%のク
エン酸三ナトリウム二水和物(w/v)を含む、クエン酸またはヒスチジンバッファーが
特に有用である。本発明の製剤中で使用されるクエン酸は、任意の水和形型、例えば無水
物または一水和物であってよい。
もたらす。ある特定の実施形態では、本発明の水性医薬組成物は、5.0から8.0の間
、5.0から7.0の間、6.0から8.0の間、または6.0から7.0の間のpHを
有する。一実施形態では、本発明の水性医薬組成物のpHは約6.3~約7.3である。
具体的な実施形態では、本発明の水性医薬組成物は約6.8のpHを有する。
傾向の基、典型的には油溶性炭化水素鎖および水溶性イオン基で構成される構造を有する
有機物質を本明細書中で指す。界面活性剤は、表面活性部分の電荷に応じて、様々な医薬
組成物および生体材料の調製物用のアニオン性、カチオン性、および分散剤に分類するこ
とができる。
面活性剤および両イオン性界面活性剤があるが、これらだけには限られない。本発明と共
に使用するのに典型的な界面活性剤には、ソルビタン脂肪酸エステル(例えばソルビタン
モノカプリレート、ソルビタンモノラウレート、ソルビタンモノパルミテート)、ソルビ
タントリオレート、グリセリン脂肪酸エステル(例えばグリセリンモノカプリレート、グ
リセリンモノミリステート、グリセリンモノステアレート)、ポリグリセリン脂肪酸エス
テル(例えばデカグリセリルモノステアレート、デカグリセリルジステアレート、デカグ
リセリルモノリノレート)、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル(例えばポリ
オキシエチレンソルビタンモノラウレート、ポリオキシエチレンソルビタンモノオレエー
ト、ポリオキシエチレンソルビタンモノステアレート、ポリオキシエチレンソルビタンモ
ノパルミテート、ポリオキシエチレンソルビタントリオレート、ポリオキシエチレンソル
ビタントリステアレート)、ポリオキシエチレンソルビトール脂肪酸エステル(例えばポ
リオキシエチレンソルビトールテトラステアレート、ポリオキシエチレンソルビトールテ
トラオレエート)、ポリオキシエチレングリセリン脂肪酸エステル(例えばポリオキシエ
チレングリセリルモノステアレート)、ポリエチレングリコール脂肪酸エステル(例えば
ポリエチレングリコールジステアレート)、ポリオキシエチレンアルキルエーテル(例え
ばポリオキシエチレンラウリルエーテル)、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレンア
ルキルエーテル(例えばポリオキシエチレンポリオキシプロピレングリコール、ポリオキ
シエチレンポリオキシプロピレンプロピルエーテル、ポリオキシエチレンポリオキシプロ
ピレンセチルエーテル)、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル(例えばポリオ
キシエチレンノニルフェニルエーテル)、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油(例えばポリ
オキシエチレンヒマシ油、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油)、ポリオキシエチレンビー
ズワックス誘導体(例えばポリオキシエチレンソルビトールビーズワックス)、ポリオキ
シエチレンラノリン誘導体(例えばポリオキシエチレンラノリン)、およびポリオキシエ
チレン脂肪酸アミド(例えばポリオキシエチレンステアリン酸アミド)、C10~C18
アルキル硫酸(例えばセチル硫酸ナトリウム、ラウリル硫酸ナトリウム、オレイル硫酸ナ
トリウム)、平均2~4モルのエチレンオキシド単位が付加されたポリオキシエチレンC
10~C18アルキルエーテル硫酸C10~C18(例えばポリオキシエチレンラウリル
硫酸ナトリウム)、およびC1~C18アルキルスルホコハク酸エステル塩(例えばラウ
リルスルホコハク酸ナトリウムエステル)、およびレシチン、グリセロリン脂質、スフィ
ンゴリン脂質(例えばスフィンゴミエリン)などの天然界面活性剤、およびC12~C1
8脂肪酸のスクロースエステルがあるが、これらだけには限られない。組成物は1つまた
は複数のこれらの界面活性剤を含むことができる。好ましい界面活性剤はポリオキシエチ
レンソルビタン脂肪酸エステル、例えばポリソルベート20、40、60または80であ
る。ポリソルベート80が特に好ましい。
、オルニチン、イソロイシン、ロイシン、アラニン、グリシン、グルタミン酸またはアス
パラギン酸があるが、これらだけには限られない。塩基性アミノ酸、すなわちアルギニン
、リシンおよび/またはヒスチジンを含めることが好ましい。組成物がヒスチジンを含む
場合、これは緩衝剤および遊離アミノ酸の両方として作用することができるが、ヒスチジ
ンバッファーを使用するときは、典型的には非ヒスチジン遊離アミノ酸を含み、例えばヒ
スチジンバッファーおよびリシンを含む。アミノ酸はそのD型および/またはL型で存在
し得るが、L型が典型的である。アミノ酸は任意の適切な塩、例えばアルギニン-HCl
などの塩酸塩として存在し得る。好ましい一実施形態では、本発明の水性医薬組成物は如
何なるこのような遊離アミノ酸も含まない。
間の濃度(w/v)で本発明の水性医薬組成物中に存在する。ある特定の実施形態では、
糖は約4.5%~約11%の濃度のスクロース、または約5%~約10%の濃度のトレハ
ロースである。6.75%(w/v)の濃度のスクロースが好ましい。
0mMの間、例えば10~40mM、15~30mM、15~25mMの濃度で本発明の
水性医薬組成物中に存在する。ある特定の実施形態では、緩衝剤はクエン酸またはヒスチ
ジンである。15mMの濃度のクエン酸バッファーが好ましい。
2(体積)%、例えば0.01~0.1%、0.03~0.08%、0.04~0.08
%の濃度で本発明の水性医薬組成物中に存在する。0.05%の濃度のポリソルベート8
0が好ましい。
剤、抗酸化剤、静電気防止剤、リン脂質または脂肪酸などの脂質、コレステロールなどの
ステロイド、血清アルブミン(ヒト血清アルブミン)、組換えヒトアルブミン、ゼラチン
、カゼインなどのタンパク質賦形剤、ナトリウムなどの塩形成対イオンなどがある。本発
明の製剤において使用するのに適した、これらおよび他の知られている医薬賦形剤および
/または添加剤は、例えばThe Handbook of Pharmaceutical Excipients, 4th edition,
Rowe et al., Eds., American Pharmaceuticals Association (2003)およびRemington: t
he Science and Practice of Pharmacy, 21stedition, Gennaro, Ed., Lippincott Willi
ams & Wilkins (2005)中に列記されたように、当技術分野で知られている。
の水性医薬組成物をもたらすと企図される。
enter and Michael J. Pikal, 1997 (Pharm. Res. 14. 969-975);Xialin (Charlie) Tan
g and Michael J. Pikal, 2004 (Pharm. Res. 21, 191-200)を参照。
なければならない。このステップによって、凍結乾燥物中の抗体および他の成分を再溶解
させて、患者への注射に適した溶液を得ることができる。
凍結乾燥前体積より小体積の復元剤を用いた復元は、凍結乾燥前より濃縮された組成物を
もたらす。復元率(凍結乾燥後の製剤の体積:凍結乾燥前の製剤の体積)は1:0.5~
1:6であってよい。1:3の復元率が有用である。前述のように、本発明の凍結乾燥物
を復元して少なくとも50mg/ml(すなわち、少なくとも60、70、80、90、
100、110、120、または130mg/ml)の抗VEGF抗体濃度を有する水性
組成物を得ることができ、復元剤の体積はそれに応じて選択される。必要な場合、復元し
た製剤は患者への投与前に適切に希釈し、目的用量を送達することができる。
ッファーがある。凍結乾燥物が緩衝剤を含む場合、復元剤は(凍結乾燥物の緩衝剤と同じ
であるかもしくは異なってよい)さらなる緩衝剤を含むことができ、または復元剤はその
代わりに緩衝剤(例えば、WFI(注射用水)、もしくは生理食塩水)を含まない可能性
がある。
療することができる。抗VEGF抗体を含む医薬組成物は、対象における眼内血管新生疾
患を治療するのに特に有用である。
異常な血管形成、脈絡膜血管新生(CNV)、網膜血管透過性亢進、網膜浮腫、糖尿病性
網膜症(特に増殖性糖尿病性網膜症)、糖尿病性黄斑浮腫、nAMD(血管新生型AMD
)を伴うCNVを含めた血管新生(滲出型)加齢黄斑変性症(AMD)、網膜虚血を伴う
後遺症、網膜中心静脈閉塞症(CRVO)、および後眼部血管新生を含むが、これらだけ
には限られない、眼内血管新生と関係がある状態、疾患、または障害がある。
きる。さらなる薬理活性物質は、例えば眼部疾患を治療するのに有用な他の抗体を含むこ
とができる。
象」または「患者」は、霊長類、ウサギ、ブタ、ウマ、イヌ、ネコ、ヒツジ、およびウシ
を含むが、これらだけには限られない、ヒトおよび非ヒト哺乳動物を指す。対象または患
者はヒトであることが好ましい。
む送達デバイス(例えば注射器)を提供する(例えば予め充填した注射器)。患者は有効
量(すなわち、所望の効果を達成するまたは少なくとも部分的に達成するのに充分な量)
の抗VEGF抗体を主要活性成分として投与される。疾患と関係がある症状または状態の
漸増的変化をもたらすことさえできれば、治療有効用量は充分である。治療有効用量が疾
患を完全に治癒する、または症状を完全に排除する必要はない。治療有効用量は、既に疾
患に罹患している患者における疾患およびその合併症を、少なくとも部分的に抑制できる
ことが好ましい。この使用に有効な量は、治療する障害の重症度、および患者自身の免疫
系の一般的状態に依存する。
を使用して投与する量を容易に決定することができる。本発明の水性医薬組成物中に使用
する抗VEGF抗体の治療有効量は、例えば所望の用量体積および投与形式(複数可)を
考慮することによって決定される。典型的には、1回あたり0.001mg/ml~約2
00mg/mlの範囲の投与量で、治療に有効な組成物を投与する。本発明の方法で使用
する投与量は、約60mg/ml~約120mg/ml(すなわち、約60、70、80
、90、100、110、または120mg/ml)であることが好ましい。好ましい実
施形態では、本発明の方法で使用する抗VEGF抗体の投与量は60mg/mlまたは1
20mg/mlである。
たりの用量は少なくとも約0.5mgから最大約6mgである。眼あたりの好ましい用量
は、約0.5mg、0.6mg、0.7mg、0.8mg、0.9mg、1.0mg、1
.2mg、1.4mg、1.6mg、1.8mg、2.0mg、2.5mg、3.0mg
、3.5mg、4.0mg、4.5mg、5.0mg、5.5mg、および6.0mgを
含む。50μlまたは100μlなどの点眼剤投与に適した様々な体積で、例えば3mg
/50μlまたは6mg/50μlを含む用量を投与することができる。10μl以下、
例えば約10μlまたは約8μlを含む、より少ない体積を使用することもできる。ある
特定の実施形態では、1.2mg/10μlまたは1mg/8.0μl(例えば1mg/
8.3μl)の用量を、前に記載した1つまたは複数の疾患および障害を治療または軽減
するため患者の眼に送達する。送達は、例えば硝子体内注射または注入であってよい。
または前に記載した1つまたは複数の疾患および障害を治療または軽減する際の使用のた
めの、本発明の製剤(すなわち水性医薬組成物)も提供する。
F抗体を送達するための方法をさらに提供する。
明の凍結乾燥物を復元して水性製剤を得るステップ、および(ii)患者に水性製剤を投
与するステップを含む。ステップ(ii)は、ステップ(i)の24時間以内(例えば1
2時間以内、6時間以内、3時間以内、または1時間以内)に行うことが理想的である。
3、ならびにそれぞれ配列番号8、9、および10の軽鎖CDR1、CDR2およびCD
R3を含む少なくとも50mg/mlの抗VEGF抗体、(ii)スクロースまたはトレ
ハロース、(iii)クエン酸またはヒスチジンバッファー、ならびに(iv)界面活性
剤としてポリソルベート80を含む水性医薬組成物。
.006%~0.012%のクエン酸(w/v)、0.2%~0.6%のクエン酸三ナト
リウム二水和物(w/v)、および0.01%~0.1%のポリソルベート80(w/v
)を含み、そのpHが約6.3~約7.3である、実施形態1に記載の水性医薬組成物。
(w/v)であり、クエン酸三ナトリウム二水和物の濃度が約0.428%(w/v)で
あり、ポリソルベート80の濃度が約0.05%(w/v)であり、pHが約6.8であ
る、実施形態2に記載の水性医薬組成物。
少なくとも80mg/ml、少なくとも90mg/ml、少なくとも100mg/ml、
少なくとも110mg/ml、少なくとも120mg/ml、少なくとも130mg/m
l、少なくとも140mg/ml、または少なくとも150mg/mlである、実施形態
1から3のいずれか1つに記載の水性医薬組成物。
少なくとも80mg/ml、少なくとも90mg/ml、少なくとも100mg/ml、
少なくとも110mg/ml、少なくとも120mg/ml、少なくとも130mg/m
l、少なくとも140mg/ml、または少なくとも150mg/mlである、実施形態
1から4のいずれか1つに記載の水性医薬組成物。
いずれか1つに記載の水性医薬組成物。
載の水性医薬組成物。
形態1から7のいずれか1つに記載の水性医薬組成物。
れか1つに記載の水性医薬組成物を対象に投与するステップを含む方法。
形態1から8のいずれか1つに記載の水性医薬組成物を対象に投与することを含む方法。
。
製される凍結乾燥製剤。
またはトレハロース、クエン酸またはヒスチジンバッファー、および界面活性剤の水溶液
を調製するステップ、ならびに(ii)水溶液を凍結乾燥するステップを含む方法。
およびCDR3、ならびにそれぞれ配列番号8、9、および10の軽鎖CDR1、CDR
2およびCDR3を含む、実施形態15に記載の方法。
載の方法。
つに記載の方法。
する際の使用のための、実施形態1から8のいずれか1つに記載の水性医薬組成物。
疾患または障害を治療する際の使用のための、実施形態1から8のいずれか1つに記載の
水性医薬組成物。
。
ージである。
なくとも1つ」または「1つまたは複数」を意味すると考えられる。文脈による別段の要
請がない限り、本明細書中で使用する単数形の用語は複数を含むものとし、複数形の用語
は単数を含むものとする。
りそれらの全容が本明細書に組み込まれている。
とにより、当業者には明らかとなる。本明細書および実施例は例示的なものに過ぎないと
考えられ、本発明の真の範囲および精神は、以下の特許請求の範囲およびその均等物によ
って示されるものとする。
以下の実施例は、抗体1008を含む安定状態の高濃度溶液を提供して、点眼剤製品に
関する規制要件を満たす、冷蔵保存条件で少なくとも18カ月の貯蔵寿命があるIVT製
剤を可能にするのに適切な安定化手法および組成を同定するように設計された製剤開発努
力を記載する。
害する単鎖抗体である。発現された1008のアミノ酸配列は以下の通りである:
MEIVMTQSPS TLSASVGDRV IITCQASEII HSWLAWY
QQK PGKAPKLLIY LASTLASGVP SRFSGSGSGA EFT
LTISSLQ PDDFATYYCQ NVYLASTNGA NFGQGTKLTV
LGGGGGSGGG GSGGGGSGGG GSEVQLVESG GGLVQP
GGSL RLSCTASGFS LTDYYYMTWV RQAPGKGLEW VG
FIDPDDDP YYATWAKGRF TISRDNSKNT LYLQMNSLR
A EDTAVYYCAG GDHNSGWGLD IWGQGTLVTV SS(配列
番号4)
ー中の等張溶液として1008を製剤化したとき、60mg/mlの濃度の1008で相
当量の肉眼で見えない粒子を観察した。この初期製剤に関する大きな問題は、-20℃で
保存したときでさえ、注射用点眼剤溶液に関する規制制限(USP<789>)を超える
粒状物質があることであった。
20mg/mlの1008硝子体内(IVT)溶液の製剤開発を要約する。製剤開発努力
は、肉眼で見えない粒子の形成の阻害、ならびに含有量、純度および効力に関するUSP
要件を満たすことに焦点を当てた。
以下の方法を、示す通り実施例全体で使用した。
賦形剤スクリーニング、60mg/mlの最適化試験に関する試験1および試験2の分
析に使用したMFI法は以下の通りであった:
使用した合計サンプル体積:0.50mL
パージ体積:0.20mL
分析体積:0.26mL
最適化照射ステップを、精製濾過した、粒子を含まない水で行った。
120mg/mlの1008に関する試験3および試験4の分析に使用したMFI法:
使用した合計サンプル体積:0.80mL
パージ体積:0.23mL
分析体積:0.48mL
最適化照射ステップを、精製濾過した、粒子を含まない水で行った。
SE-HPLC(サイズ排除クロマトグラフィー)は、タンパク質をそれらのサイズに
応じて分離する。サンプル分子が多孔性粒子固定相を通過したとき、それらの差次的排除
、または包接によって分離を実施した。0.25ml/分の流速および4℃のサンプル温
度を維持することができ、TOSOH SuperSW3000カラム(Tosoh B
ioscience LLC、King of Prussia、PA)、および214
nmと280nmで同時に作動可能な検出器を備える高速液体クロマトグラフィーシステ
ム。この方法は純度試験に使用した。
AIEX-HPLC(アニオン交換高速液体クロマトグラフィー)は、それらの正味電
荷に従いタンパク質を分離する。この手順は、強アニオン交換カラムを含有する(25℃
に設定した)温度制御型カラムコンパートメント、(4℃に設定した)オートサンプラー
、および280nmで作動可能な可変波長UV検出器を用いて、0.8ml/分の流速を
維持することができる高速液体クロマトグラフィー(HPLC)を使用して実施した。
キャピラリーゲル電気泳動法を、SDSゲルキャピラリー電気泳動による分子量10k
Daから225kDaの間のタンパク質の同一性および純度を決定するために実施した。
キャピラリーには、Beckman Coulterの0.2%SDSゲルバッファー、
pH8、専売製剤を動的に充填した。タンパク質の分離は、分子ふるい電気泳動により実
施した。タンパク質分子量の対数は、その相互電気泳動移動度と直線関係が認められた。
タンパク質の同一性は、分子量標準とその移動を比較することにより決定した。純度は、
親ピークおよび不純物の面積割合の分析によって決定した。フォトダイオードアレイ検出
器(PDA)を使用して220nmでサンプルを分析した。
競合ELISAを効能試験に使用した。競合ELISAで、ビオチニル化VEGFをめ
ぐってVEGFR2/Fcと競合する1008の能力を測定した。観察したシグナルは1
008の濃度と反比例関係にあった。1008の量が増加するにつれ、ビオチニル化VE
GFとその受容体VEGFR2/Fcとの結合が効率よく遮断されたからである。それぞ
れのサンプルは1008参照標準に対して96ウエルマイクロタイタープレート中で分析
し、参照標準の効能に対するサンプルの相対的効能を報告した。
賦形剤スクリーニング
pH6.25でクエン酸バッファー中で1008を製剤化した。製剤の組成を表1に示
す。
でさえ、粒状物質は、USP<789>の注射用点眼剤溶液に関する規制制限を超えてい
た。
8の液体溶液を開発した。異なる賦形剤を含有するタンパク質溶液を40℃で60mg/
mlで保存し、MFIにより1~100μmのサイズの粒子に関して分析した。実験デー
タによって、アルギニン、デキストラン、アスコルビン酸、メチオニン、および酢酸アン
モニウムを含めて、試験した大部分の賦形剤が、粒子の形成を低減しないことを実証した
。スクロースおよびトレハロースなどの非還元糖の存在下でのみ、粒子の形成が有意に低
減した。
、約60mg/mlの1008溶液において評価した。0.1%のヒト血清アルブミン(
HSA)、0.1%のポロキサマー407、0.1%のBrij35、3%のグリシン、
50mMのグリセリンを含有するタンパク質溶液を40℃で保存し、保存8、21、およ
び28日後にMFI、SECおよびIEXによりサンプルをアッセイした。結果を表2に
示す。実験データによって、試験した賦形剤の存在下でのタンパク質の不安定状態を実証
した。
おいて調べた。9%のスクロースおよび0.1%のPS80を含有する製剤を40℃での
保存6、14および27日後にアッセイした。結果を表3に列記する。
新たな製剤開発
試験1
賦形剤スクリーニング
pH6.25で0.001%のポリソルベート20および0.73%のNaClを含有
する、20mMのクエン酸バッファー中60mg/mlの1008のタンパク質溶液を、
サンプル調製に使用した。原型タンパク質溶液中の界面活性剤を除去するため、最初に、
NAP-25カラムを使用したバッファー交換を、ポリソルベート20を含まないビヒク
ルを使用して実施した。次いでバッファー交換したタンパク質溶液を、Vivaspin
フィルターおよび10kDa MWCOを使用し約60mg/mlに濃縮した。HSA、
グリシン、グリセリン、ポロキサマー407、およびBrij35の賦形剤を個々にスパ
イク添加した。次いで調製したサンプルを、4mL透明ガラス製バイアルに0.2umP
VDF膜を介してシリンジ濾過した。約100μLのサンプルを初期アッセイに使用し、
一方で残りのサンプルは40℃で保存した。各製剤の1ミリリットルサンプルを、MFI
、SECおよびIEXによる分析用に、40℃での保存8、21、および28日後に取り
出した。
内部で実施した賦形剤スクリーニング試験に基づき、2つのバッファー(クエン酸およ
びヒスチジン)、糖(スクロースおよびトレハロース)、ならびに界面活性剤(ポリソル
ベート20およびポリソルベート80)を製剤成分選択で選択した。20mMのバッファ
ー強度、264mMの糖濃度、および0.1%の界面活性剤濃度を試験用に選択した。全
要因実験試験を以下の表に示すように設計した。
濃度/pH pH6.25で50~60mg/mlの1008
バッファー交換 NAP25カラム、Vivaspinの10kDa MWCOで濃縮
サンプルサイズ/Pkg スクリューキャップ付き4mL透明ガラス製バイアル中に2
~2.5mL
保存/取り出し 40℃/0、1、2および4週
アッセイ MFI、SECおよびIEX
08のタンパク質溶液を、サンプル調製に使用した。異なるバッファー/糖の組合せ(2
0mMクエン酸/264mMトレハロース、20mMクエン酸/264mMスクロース、
20mMヒスチジン/264mMトレハロース、20mMヒスチジン/264mMスクロ
ース)を含む4つの新たなビヒクルバッファーを調製した。1008薬剤物質(DS)を
、Illustra NAP-25カラム(GE Healthcare)を使用してビ
ヒクルバッファーに最初に交換した。カラムを25mLのクエン酸バッファーで平衡状態
にした。次いで2mLの1008DSをカラムにロードした。DS溶液をカラムに完全に
移動させた後、カラムの平衡状態化に使用したのと同じ2mLのバッファーでカラムを洗
浄した。カラムから溶出した6mLの溶液を、Vivaspin6濃縮装置(10kDa
MWCO、GE Healthcare)に回収した。次いで6mLの溶出溶液を、9
384×gおよび4℃でBeckman GS-15R遠心分離機を使用して約2mLに
濃縮した。次いでタンパク質の濃度を、OD280を使用してNanoDrop1000
分光光度計で測定した。ポリソルベート20(PS20)またはポリソルベート80(P
S80)を、0.1%の最終濃度まで製剤にスパイク添加した。次いで調製した製剤を、
0.2umPVDFシリンジフィルターを介して濾過し、4mL透明ガラス製バイアルに
充填した。約100μLのサンプルを初期アッセイに使用し、一方で残りのサンプルは4
0℃で保存した。1ミリリットルのサンプルを、MFI、SECおよびIEXによる分析
用に、40℃で1、2および4週間の保存後に取り出した。
のバッファー(クエン酸およびヒスチジン)、糖(スクロースおよびトレハロース)、な
らびに界面活性剤(ポリソルベート20およびポリソルベート80)を、前で論じたよう
にこの試験設計で使用した。4週間の安定性試験を加速条件下(40℃)で実施した。安
定性試験のサンプルはSEC、IEXおよびMFIによってアッセイした。表6はSEC
、IEXによる安定性試験の結果、およびμDSCによる融点(Tm)を示す。
llege PA)を使用して分析した。SECおよびIEXは同じ傾向を示したので、
SECのデータのみをMinitabによって分析し報告した。SECの結果は、界面活
性剤が唯一の有意な因子であり、反応に影響を与えた可能性がある他の要因にはバッファ
ー選択および(低い程度で)バッファーおよび糖の間の相互作用があることを実証した。
SECのデータは、最適な製剤成分はバッファーとしてクエン酸、界面活性剤としてポリ
ソルベート80、および糖としてスクロースであることを示唆した。
子(糖、界面活性剤およびバッファー)はいずれも有意ではないようであった(α=0.
05)。粒子に対する主な影響を比較すると、クエン酸はヒスチジンより好影響であり、
PS80はPS20より好影響であり、スクロースはトレハロースと同等またはトレハロ
ースより若干好影響であった。したがって、バッファーとしてクエン酸、界面活性剤とし
てポリソルベート80、および糖としてスクロースを、さらなる試験用に選択した。
バッファー、糖および界面活性剤に関する濃度の最適化
2つの中心点での2レベルにおける3因子を含有する全要因試験を、クエン酸バッファ
ーおよびヒスチジンバッファーでそれぞれ実施して、選択したそれぞれの製剤成分に最適
な濃度を決定した。3因子はバッファー(クエン酸またはヒスチジン)、ポリソルベート
80およびスクロースである。因子および設計スペースを表7に作表し、詳細な実験設計
を表8および9に示す。
73%のNaClを含有するクエン酸バッファー中60mg/mlの1008のタンパク
質溶液を使用した。最初にタンパク質溶液を、NAP-25カラムを使用してビヒクルに
バッファー交換した。このビヒクルは、バッファーおよびスクロースをそれらの標的濃度
で含有していた。交換したタンパク質溶液を、Vivaspinの10kDa MWCO
を使用して約60mg/mlの濃度に濃縮した。
作製した。各サンプル中のタンパク質濃度は、280nmでUVにより測定した吸光度を
使用し理論上の吸光係数で確認した。
ラス製バイアルに濾過した。約100μLのサンプルをSECおよびIEXによる初期ア
ッセイに使用し、一方で約2~2.5mLのサンプルを40℃で保存した。約600μL
のサンプルをMFI、SECおよびIEXによる分析用に、40℃で11、20および2
7日の保存後に取り出した。
験を、クエン酸バッファーとヒスチジンバッファーでそれぞれ実施して、選択したそれぞ
れの製剤成分に最適な濃度を決定した。試験したサンプルは40℃で保存し、MFI、S
ECおよびIEXによる分析用に0、1.6、2.9および4週間で取り出した。結果を
表10および11に作表する。
結果に関しては、界面活性剤がタンパク質凝集に影響を与えた主要因子であり、一方スク
ロース、スクロースおよびポリソルベート80の間の相互作用、ならびにバッファー強度
はあまり有意な役割は果たさなかった。高スクロース濃度および低ポリソルベート80濃
度がタンパク質の安定性に好ましかった。タンパク質の安定性は凝集に若干影響を与え、
高いクエン酸バッファー強度は若干良いタンパク質の安定性を助長した。
ト80の因子、ならびにスクロースおよびポリソルベート80の相互作用が、粒子形成に
おいて同等に有意な役割を果たした。高スクロースおよび高ポリソルベート80が粒子形
成を有意に抑制し、一方10~20mMの範囲のバッファー強度は粒子形成に若干影響を
与え、低いバッファー強度が好ましかった。
ベート80はタンパク質凝集に影響を与える主要因子であり、一方バッファー強度および
ポリソルベート80の間の相互作用、ならびにスクロースはあまり有意な役割は果たさな
かったことを示した。低濃度のポリソルベート80がタンパク質の安定性に好ましかった
。バッファー強度およびスクロース濃度は、タンパク質凝集に影響を与えないようであっ
た。
ース、ならびにスクロースおよびポリソルベート80の相互作用が、粒子形成において有
意な役割を果たした。高スクロースおよび低ポリソルベート80、および低バッファー強
度が、粒子形成を抑制するのに好ましかった。
1008の凝集挙動に対するpHの影響を、0.1%のNaCl、6.75%のスクロ
ースおよび0.05%のPS80を含有する15mMのクエン酸バッファーにおいて6つ
のpH条件下(5.0、6.0、6.25、6.50、6.75および7.0)で試験し
た。最初に1008薬剤物質を、Illustra NAP-10カラム(GE Hea
lthcare)を使用して異なるpHの(PS80を含まない)ビヒクルに交換した。
最初にカラムを15mLのクエン酸バッファーで平衡状態にした。次いで1mLの100
8DSをカラムに充填した。DS溶液をカラムに完全に移動させた後、カラムの平衡状態
化に使用したのと同じ2mLのクエン酸バッファーでカラムを洗浄した。Vivaspi
n2濃縮装置(10kD MWCO、GE Healthcare)にカラムから溶出し
た2mL溶液を回収した。次いで2mLの溶出溶液を、9384×gおよび4℃でBec
kman GS-15R遠心分離機を使用して。次いでタンパク質の濃度をNanoDr
op1000分光光度計で測定した。この試験の最終1008濃度は約70mg/mlで
あると決定した。PS80を0.05%の最終標的濃度まで製剤にスパイク添加した。動
力学的な濁度アッセイを、2箇所セルホルダーおよび温度制御用水浴を備えるPerki
nElmer Lambda35分光光度計を使用して実施した。1cmパス長を有する
Starnaサブマイクロ体積石英セル(Starna Scientific Ltd
.、イングランド)において、250μLの1008製剤または対応するビヒクルを加え
た。セルは予め55℃に加熱したセルホルダーに置いた。1008製剤におけるOD35
0の変化を120分間モニタリングした。次いで異なるpHの製剤に関して得たOD35
0のデータを、比較用に時間に対してプロットした。
pH5.0~7.0で約70mg/mlの1008を含有する製剤で試験した。濁度アッ
セイに関して、OD350の急激な増大はタンパク質の主要凝集事象と関係があった。し
たがって、それぞれの製剤のOD350が増大するのに必要なインキュベーション時間の
差は、製剤中タンパク質の異なる物理的安定性を反映し得る。図1中に示したように、試
験した製剤条件下でpH6.75において、1008は最も安定していたようであった。
OD350の急激な増大前にそれが最長インキュベーション時間を有していたからである
。類似した結果での反復実験によって、試験した製剤はpH6.75で最も安定している
ことを確認した。
賦形剤および高活性化濃度の影響
半要因試験(表12)を実施して、タンパク質(60~120mg/ml)、スクロー
ス(4.5~9.0%)、クエン酸バッファー(10~20mM)およびポリソルベート
80(0.01~0.1%)の濃度を含む主要製剤条件の影響を調べた。
のクエン酸バッファー、pH6.5中30%のスクロースストック溶液を最初に調製した
。次いでクエン酸バッファー、ストック溶液および注射用水を適切な割合で混合して、P
S80を含む5つのバッファーを作製し、それらは10mMのクエン酸中4.5%のスク
ロース、10mMのクエン酸中9%のスクロース、20mMのクエン酸中4.5%のスク
ロース、20mMのクエン酸中9%のスクロースおよび15mMのクエン酸中6.75%
のスクロースであった。続いて1008DSはIllustra NAP-25カラム(
GE Healthcare)を使用してこれら5バッファーに交換し、次にVivas
pin6濃縮装置(5kD MWCO、GE Healthcare)を用いて5℃で8
000×で濃縮した。各サンプル中のタンパク質濃度は、遠心分離中にNanoDrop
2000分光光度計で測定した。最初の4バッファーにおけるサンプルに関して、100
8濃度が約70mg/mlに達したとき、サンプルの一部を濃縮装置から除去し、これら
を使用して、適量の対応するバッファーを加え10%のPS80をスパイク添加すること
により60mg/mlのAPIを含む製剤(表12中の番号1、3、5および7)を調製
した。残りのサンプルは130mg/ml超までさらに濃縮し、次いでバッファーおよび
10%のPS80を加えて最終製剤(表12中の番号2、4、6および8)を得た。表1
2中の製剤番号9および10は、バッファー番号5に交換した1008サンプルを約10
8mg/mlまで濃縮することによって調製し、次いでバッファーおよび10%のPS8
0と混合して最終製剤濃度に到達させた。全最終製剤のpH値を測定し、6.5に調節し
た。
た。この改変型濁度アッセイでは、12箇所セルCary100UV-Vis分光光度計
を使用した。このアッセイ中で使用したキュベットは、ストッパー付き1mm石英キュベ
ットであった。それぞれのキュベット中に、300μLのサンプルを試験用に加えた。5
5℃でインキュベートした製剤に関する360nmでの光学濃度の変化をモニタリングし
た。
試験3に関する全製剤の測定した1008濃度および最終pHを表13に要約する。低
、中および高1008濃度(表4.3.1.-1)および異なるスクロース、PS80濃
度およびバッファー強度を有する製剤を55℃でインキュベートし、OD360の変化を
モニタリングした。図2に示したように、製剤に関して異なる凝集傾向を観察した。イン
キュベーション開始後即座にほぼ凝集した2つの製剤は製剤2および6であり、これらは
比較的高い1008濃度(約120mg/ml)および低いスクロース濃度(4.5%)
を含有していた。他方で、比較的低い1008濃度(約60mg/ml)および高いスク
ロース濃度(9%)を含有した製剤3および7は、他の製剤よりゆっくりと凝集した。中
程度1008濃度とスクロース濃度の他の組合せの凝集傾向は前述の2群の間であった。
因子の影響を比較した。これらの結果は、スクロース、次にAPI濃度が1008の凝集
に対して最も強い影響があることを示唆した。スクロースおよびAPI濃度の影響は正反
対であり、高スクロースおよび低API濃度がより良い製剤安定性に好ましいことを示し
た。他の2因子、バッファー強度およびPS80はあまり影響を示さなかった。
活性化およびスクロース濃度に関するさらなる試験
前述の試験3からの結果に基づき、試験4を実施して、pH6.50で0.05%のP
S80を含有する15mMのクエン酸バッファーにおける、タンパク質濃度(60~12
0mg/ml)およびスクロース濃度(6~9%のより狭い範囲)の影響をさらに調べた
。試験設計を以下の表に示す。
でバッファー交換を、薬剤物質のほぼ5倍の体積で6%のスクロースを含有する15mM
のクエン酸バッファーを用いて実施した。バッファー交換後、タンパク質溶液の体積を、
TFFシステムを使用し初期体積のほぼ半分まで減らした。約44gの濃縮1008溶液
を回収し、NanoDrop2000分光光度計により測定したところ、濃縮タンパク質
は約112mg/mlであった。次いで濃縮1008溶液を使用して、0、6%および/
または40%のスクロースを含有する適量の10%のPS80および15mMのクエン酸
バッファーとの混合により製剤番号1、3、5、7~12を調製して、これらの製剤各々
において対応する最終API、スクロースおよびPS80濃度を得た。1008溶液の残
りはさらに約132mg/mlに濃縮して、同じ形式で製剤番号2と4を調製した。最後
に、約171mg/mlに1008溶液を濃縮することによって製剤番号6を調製し、タ
ンパク質、スクロースおよびPS80の濃度は、0、6%および/または40%のスクロ
ースを含有する10%のPS80および15mMのクエン酸バッファーを用いて調節した
。それぞれの製剤における1008の最終濃度はNanoDrop2000分光光度計を
用いて測定し、pHは6.5に調節した。
号1~4および番号7~10)も6週間40℃の実験用インキュベーター中で保存し、異
なる時間地点でMIF、IEXおよびSEC法を用いて分析した。
、同じ熱ストレスの下で、異なる程度の製剤の凝集が示された。(表15中の製剤番号2
および6などの)比較的高い1008濃度および低いスクロース濃度を有した製剤は、イ
ンキュベーションによって急速に凝集した製剤であった。比較的低い1008濃度および
高いスクロース濃度を有した製剤(表15中の製剤番号3および5)は、残りの全ての製
剤よりゆっくりと凝集した。様々な製剤に関する濁度アッセイから得た曲線はシグモイド
関数に適合させた。移行の中期に対応するインキュベーション時間を、それぞれの製剤に
関するTm(移行中間点時間)として記録した。結果を表15に列記する。スクロース濃
度および1008濃度に対するTm値は、タンパク質凝集に対するスクロース濃度および
1008濃度の正反対の影響を示した。
性も6週間にわたりMFI、SECおよびIEXによってモニタリングした。製剤および
結果を表16~23に列記する。濁度アッセイと一致して、MFIの結果は、高1008
濃度(約120mg/ml)を有した製剤は、低API濃度を有した製剤と比較してより
多くの粒子、特に25μmを超える粒子を形成したことを示した。MFIの結果は、同量
の1008を含んだ製剤(製剤番号7~10)に関するスクロース濃度の明確な影響は示
さなかった。図4に示すように、40℃で6週間の保存後、高1008濃度を有した2つ
の製剤(製剤番号2および4)が最も劣化し、約60mg/mlの1008濃度を有した
製剤は他の全ての製剤ほど劣化しなかった。約90mg/mlの1008を有した製剤に
関しては、低スクロース濃度(製剤番号7)より若干低い劣化を高スクロース濃度で観察
した(製剤番号8)。IEXの結果はSECと同じ傾向を示した。
探索的安定性試験
対照製剤
探索的安定性試験を、pH6.25で対照として、60mg/mlの1008溶液、2
0mMのクエン酸、0.001%のPS20中の製剤に関して実施した。対照製剤は0.
2umシリンジフィルターを介して濾過し、40℃、周囲室温、および冷蔵庫で保存した
。サンプルは、0、2および5週に40℃サンプルを、ならびに26週に周囲室温および
冷蔵庫保存したサンプルを取り出した。選択した安定性試験用サンプルは、A280、S
EC、IEX、CGFおよびELISAによりpH、重量オスモル濃度、含有量に関して
試験した。結果を表24に示す。
PS20および0.73%のNaCl中60mg/mlの1008溶液に関して実施した
。製剤は0.2μmシリンジフィルターを介して濾過し40℃で保存した。サンプルはM
FI分析用に1、2、3および4週に取り出した。結果を表25に示す。
8に関する探索的安定性試験
探索的安定性試験を、9%のスクロースおよび0.5%のPS80を含有する60mg
/mlの1008製剤に関して実施した。製剤は0.2μmシリンジフィルターを介して
濾過し40℃で保存した。サンプルは1.6、2.9および4週に取り出し、MFI、S
ECおよびIEXによって分析した。結果を表26に作表する。
、0.1%のPS80に関するパイロットスケール安定性試験
60mg/mlの1008溶液のリアルタイム安定性試験を、表27中に示すように、
pH6.25で9%のスクロース、20mMのクエン酸、0.1%のPS80を含有する
製剤に関して実施した。安定性試験のサンプルは2~8℃、25℃、40℃およびライト
キャビネット(LC)で保存し、それらにさらに3サイクルの凍結-解凍(FT)を施し
た。サンプルは表28に示したスケジュールに従い取り出し、pH、重量オスモル濃度、
MFI、含有量、SEC、IEX、CGEおよび効能などを様々な分析法によって分析し
た。
表29に示すように、製剤はpH6.25で9%のスクロース、20mMのクエン酸、0
.1%のPS80を含有した。サンプルは2~8℃、25℃、40℃およびライトキャビ
ネット(LC)で保存し、それらにさらに3サイクルの凍結-解凍(FT)を施した。サ
ンプルは表30に示したスケジュールに従い取り出し、様々な分析法によって分析した。
安定性試験の結果を表31~33に作表する。
スクロース/0.05%のPS80/pH6.75中における探索的安定性試験
15mMのクエン酸/6.75%のスクロース/0.05%のPS80/pH6.75
において60mg/mlの1008の製剤に関して、クエン酸バッファーで探索的安定性
試験を実施した。安定性試験のサンプルは5℃および25℃で保存し、さらに凍結-解凍
サイクルを施した。サンプルは以下の表に示したスケジュールに従い取り出し、外観、p
H、重量オスモル濃度、MFI、含有量、SEC、およびIEXに関して分析した。
H6.75において60mg/mlの1008の製剤に関して、ヒスチジンバッファーで
探索的安定性試験を実施した。安定性試験のサンプルは5℃および25℃で保存した。サ
ンプルはさらに凍結-解凍サイクルを施した。サンプルは以下の表に示したスケジュール
に従い取り出し、外観、pH、重量オスモル濃度、MFI、含有量、SEC、およびIE
Xに関して分析した。
対照製剤の安定性と比較して、特に粒状物質の形成の抑制に関して有意に向上したことを
示した。
のスクロース/0.0505%のPS80を含有していた。
以下の態様を包含し得る。
[1] (i)配列番号1および配列番号2の配列を含む少なくとも50mg/mlの抗VEGF抗体、(ii)スクロースまたはトレハロース、(iii)クエン酸またはヒスチジンバッファー、ならびに(iv)界面活性剤としてポリソルベート80を含む水性医薬組成物。
[2] 約4.5%~11%(w/v)のスクロースまたは約5%~10%(w/v)のトレハロース、0.006%~0.012%のクエン酸(w/v)、0.2%~0.6%のクエン酸三ナトリウム二水和物(w/v)、および0.01%~0.1%のポリソルベート80(w/v)を含み、そのpHが約6.3~約7.3である、上記[1]に記載の水性医薬組成物。
[3] そのpHが約6.8である、上記[2]に記載の水性医薬組成物。
[4] 前記抗体が配列番号3の配列を含む、上記[1]に記載の水性医薬組成物。
[5] 前記抗VEGF抗体の濃度が約60mg/mlであり、スクロースの濃度が約6.75%(w/v)であり、クエン酸の濃度が約0.01%(w/v)であり、クエン酸三ナトリウム二水和物の濃度が約0.428%(w/v)であり、かつポリソルベート80の濃度が約0.05%(w/v)である、上記[1]に記載の水性医薬組成物。
[6] 前記抗VEGF抗体が配列番号3の配列を含み、pHが約6.8である、上記[5]に記載の水性医薬組成物。
[7] 前記抗VEGF抗体の濃度が約120mg/mlであり、スクロースの濃度が約6.8%(w/v)であり、クエン酸の濃度が約0.01%(w/v)であり、クエン酸三ナトリウム二水和物の濃度が約0.428%(w/v)であり、かつポリソルベート80の濃度が約0.05%(w/v)である、上記[1]に記載の水性医薬組成物。
[8] 前記抗VEGF抗体が配列番号3の配列を含み、pHが約6.8である、上記[7]に記載の水性医薬組成物。
[9] 上記[1]に記載の水性医薬組成物を含む送達デバイス。
[10] 予め充填した注射器である、上記[9]に記載の送達デバイス。
[11] 上記[2]に記載の水性医薬組成物を含む送達デバイス。
[12] 予め充填した注射器である、上記[11]に記載の送達デバイス。
[13] 上記[7]に記載の水性医薬組成物を含む送達デバイス。
[14] 予め充填した注射器である、上記[13]に記載の送達デバイス。
[15] 対象に抗VEGF抗体を送達するための方法であって、上記[1]に記載の水性医薬組成物を前記対象に投与するステップを含む方法。
[16] VEGFによって媒介される眼部疾患または障害を治療する方法であって、上記[1]に記載の水性医薬組成物を対象に投与することを含む方法。
[17] 前記眼部疾患または障害が眼部血管新生疾患である、上記[16]に記載の方法。
[18] 上記[1]に記載の水性医薬組成物の凍結乾燥によって調製される凍結乾燥製剤。
[19] 対象に抗VEGF抗体を送達するための方法であって、上記[2]に記載の水性医薬組成物を前記対象に投与するステップを含む方法。
[20] VEGFによって媒介される眼部疾患または障害を治療する方法であって、上記[2]に記載の水性医薬組成物を対象に投与することを含む方法。
[21] 前記眼部疾患または障害が眼部血管新生疾患である、上記[20]に記載の方法。
[22] 上記[2]に記載の水性医薬組成物の凍結乾燥によって調製される凍結乾燥製剤。
[23] 対象に抗VEGF抗体を送達するための方法であって、上記[7]に記載の水性医薬組成物を前記対象に投与するステップを含む方法。
[24] VEGFによって媒介される眼部疾患または障害を治療する方法であって、上記[7]に記載の水性医薬組成物を対象に投与することを含む方法。
[25] 前記眼部疾患または障害が眼部血管新生疾患である、上記[24]に記載の方法。
[26] 上記[7]に記載の水性医薬組成物の凍結乾燥によって調製される凍結乾燥製剤。
Claims (35)
- (i)配列番号1および配列番号2の配列を含む少なくとも50mg/mlの抗VEGF抗体、(ii)スクロースまたはトレハロース、(iii)クエン酸またはヒスチジンバッファー、ならびに(iv)界面活性剤としてポリソルベート80を含み、前記抗体が、単鎖Fv(scFv)抗体断片である、水性医薬組成物。
- 約4.5%~11%(w/v)のスクロースまたは約5%~10%(w/v)のトレハロース、0.006%~0.012%のクエン酸(w/v)、0.2%~0.6%のクエン酸三ナトリウム二水和物(w/v)、および0.01%~0.1%のポリソルベート80(w/v)を含み、そのpHが約6.3~約7.3である、請求項1に記載の水性医薬組成物。
- そのpHが約6.8である、請求項2に記載の水性医薬組成物。
- 少なくとも60mg/mlの前記抗VEGF抗体を含む、請求項1に記載の水性医薬組成物。
- 60mg/mlから120mg/mlの間の前記抗VEGF抗体を含む、請求項4に記載の水性医薬組成物。
- 前記抗体が配列番号3または配列番号4の配列を含む、請求項1に記載の水性医薬組成物。
- 前記抗VEGF抗体の濃度が約60mg/mlであり、スクロースの濃度が約6.75%(w/v)であり、クエン酸の濃度が約0.01%(w/v)であり、クエン酸三ナトリウム二水和物の濃度が約0.428%(w/v)であり、かつポリソルベート80の濃度が約0.05%(w/v)である、請求項1に記載の水性医薬組成物。
- 前記抗VEGF抗体が配列番号3または配列番号4の配列を含み、pHが約6.8である、請求項7に記載の水性医薬組成物。
- 前記抗VEGF抗体の濃度が約120mg/mlであり、スクロースの濃度が約6.8%(w/v)であり、クエン酸の濃度が約0.01%(w/v)であり、クエン酸三ナトリウム二水和物の濃度が約0.428%(w/v)であり、かつポリソルベート80の濃度が約0.05%(w/v)である、請求項1に記載の水性医薬組成物。
- 前記抗VEGF抗体が配列番号3または配列番号4の配列を含み、pHが約6.8である、請求項9に記載の水性医薬組成物。
- 請求項1に記載の水性医薬組成物を含む送達デバイス。
- 予め充填した注射器である、請求項11に記載の送達デバイス。
- 請求項2に記載の水性医薬組成物を含む送達デバイス。
- 予め充填した注射器である、請求項13に記載の送達デバイス。
- 請求項7に記載の水性医薬組成物を含む送達デバイス。
- 予め充填した注射器である、請求項15に記載の送達デバイス。
- 請求項9に記載の水性医薬組成物を含む送達デバイス。
- 予め充填した注射器である、請求項17に記載の送達デバイス。
- 対象に抗VEGF抗体を送達するための方法で用いるための請求項1に記載の水性医薬組成物であって、前記方法は、前記水性医薬組成物を前記対象に投与するステップを含む、水性医薬組成物。
- VEGFによって媒介される眼部疾患または障害を治療する方法で用いるための請求項1に記載の水性医薬組成物であって、前記方法は、前記水性医薬組成物を対象に投与することを含む、水性医薬組成物。
- 前記眼部疾患または障害が眼部血管新生疾患である、請求項20に記載の水性医薬組成物。
- 前記眼部血管新生疾患が、異常な血管形成、脈絡膜血管新生(CNV)、網膜血管透過性亢進、網膜浮腫、糖尿病性網膜症(特に増殖性糖尿病性網膜症)、糖尿病性黄斑浮腫、nAMD(血管新生型AMD)を伴うCNVを含めた血管新生(滲出型)加齢黄斑変性症(AMD)、網膜虚血を伴う後遺症、網膜中心静脈閉塞症(CRVO)、および後眼部血管新生からなる群から選択される、請求項21に記載の水性医薬組成物。
- 請求項1に記載の水性医薬組成物の凍結乾燥によって調製される凍結乾燥製剤。
- 対象に抗VEGF抗体を送達するための方法で用いるための請求項2に記載の水性医薬組成物であって、前記方法は、前記水性医薬組成物を前記対象に投与するステップを含む、水性医薬組成物。
- VEGFによって媒介される眼部疾患または障害を治療する方法で用いるための請求項2に記載の水性医薬組成物であって、前記方法は、前記水性医薬組成物を対象に投与することを含む、水性医薬組成物。
- 前記眼部疾患または障害が眼部血管新生疾患である、請求項25に記載の水性医薬組成物。
- 請求項2に記載の水性医薬組成物の凍結乾燥によって調製される凍結乾燥製剤。
- 対象に抗VEGF抗体を送達するための方法で用いるための請求項7に記載の水性医薬組成物であって、前記方法は、前記水性医薬組成物を前記対象に投与するステップを含む、水性医薬組成物。
- VEGFによって媒介される眼部疾患または障害を治療する方法で用いるための請求項7に記載の水性医薬組成物であって、前記方法は、前記水性医薬組成物を対象に投与することを含む、水性医薬組成物。
- 前記眼部疾患または障害が眼部血管新生疾患である、請求項29に記載の水性医薬組成物。
- 請求項7に記載の水性医薬組成物の凍結乾燥によって調製される凍結乾燥製剤。
- 対象に抗VEGF抗体を送達するための方法で用いるための請求項9に記載の水性医薬組成物であって、前記方法は、前記水性医薬組成物を前記対象に投与するステップを含む、水性医薬組成物。
- VEGFによって媒介される眼部疾患または障害を治療する方法で用いるための請求項9に記載の水性医薬組成物であって、前記方法は、前記水性医薬組成物を対象に投与することを含む、水性医薬組成物。
- 前記眼部疾患または障害が眼部血管新生疾患である、請求項33に記載の水性医薬組成物。
- 請求項9に記載の水性医薬組成物の凍結乾燥によって調製される凍結乾燥製剤。
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