JP6667519B2 - 高濃度の抗vegf抗体を含有する安定状態のタンパク質溶液製剤 - Google Patents

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Description

本出願は、その開示が参照により本明細書に具体的に組み込まれている、2014年12月5日に出願された米国仮出願第62/088,061号、および2014年11月7日に出願された米国仮出願第62/076,770号の優先権を主張するものである。
発明の分野
本発明は、抗VEGF抗体の水性医薬製剤、その調製法、およびこれらの製剤の使用に関する。
発明の背景
血管内皮増殖因子(VEGF)は血管形成および血管新生の周知のレギュレーターであり、腫瘍および眼内障害と関係がある血管新生の重要なメディエーターであることが示されている(Ferrara et al. Endocr. Rev. 18:4-25 (1997))。VEGFのmRNAは多くのヒト腫瘍において過剰発現され、眼内分泌液中のVEGFの濃度は、糖尿病および他の虚血関連網膜症を有する患者において活発に増殖する血管の存在と強く相関する(Berkman et al., J Clin Invest 91:153-159 (1993);Brown et al. Human Pathol. 26:86-91 (1995);Brown et al. Cancer Res. 53:4727-4735 (1993);Mattern et al. Brit. J. Cancer. 73:931-934 (1996);およびDvorak et al. Am J. Pathol. 146:1029-1039 (1995);Aiello et al. N. Engl. J. Med. 331:1480-1487 (1994))。さらに、近年の研究は、AMDに罹患した患者の脈絡膜新生血管膜における局所VEGFの存在を示している(Lopez et al. Invest. Ophtalmo. Vis. Sci. 37:855-868 (1996))。抗VEGF中和抗体を使用して、ヌードマウス中で様々なヒト腫瘍細胞株の増殖を抑制することができ、虚血性網膜障害のモデルにおいて眼内血管形成を阻害することもできる(Kim et al. Nature 362:841-844 (1993);Warren et al. J Clin Invest 95:1789-1797 (1995);Borgstrom et al. Cancer Res. 56:4032-4039 (1996);およびMelnyk et al. Cancer Res. 56:921-924 (1996))(Adamis et al. Arch. Opthalmol. 114:66-71 (1996))。
抗VEGF抗体を含む幾つかの抗体が、ヒトおよび他の哺乳動物における治療用途に認められている。液状医薬製剤中の治療用抗体の濃度は、例えば投与の経路に応じて広く変化する。小体積が望まれるとき、高濃度の抗体製剤がしばしば必要である。例えば、高濃度の製剤は硝子体内注射または皮下投与に望ましい可能性がある。
しかしながら、高濃度の抗体を含む製剤は短い貯蔵寿命を有する可能性があり、製剤化抗体は、保存中の化学的および物理的不安定性による原因で生物活性を失う可能性がある。凝集、脱アミド化、および酸化は、抗体分解の最も一般的な原因であることが知られている。特に、凝集は患者における免疫応答の増大をもたらす可能性があり、安全上の問題となる。したがって、それは最小化または予防されなければならない。
生物療法用製剤中での粒子の形成も品質上の大きな問題である。数十ミクロンからミリメートル未満およびミリメートルサイズまでの範囲の粒子は、一般に人間の肉眼によって見ることができるからである(Das, 2012, AAPS PharmSciTech, 13:732-746参照)。治療用点眼剤調製物中の粒子は、眼に対するダメージを引き起こす可能性がある。したがって、点眼剤製剤中の肉眼で見えない粒状物質の含有量が特定制限範囲内にあることを保証するための規制基準が存在する。例えば、米国薬局方(USP)は、顕微鏡による粒子計測法により決定して、直径10μm以上の粒子の最大数が1mLあたり50であること、直径25μm以上の粒子の最大数が1mLあたり5であること、および直径50μm以上の粒子の最大数が1mLあたり2であることなどの、点眼剤溶液中の粒状物質に関する要件を設定している(USP General Chapter <789>参照)。
高濃度の抗体製剤を生成するための方法は知られている。しかしながら、凝集体を形成する、または様々な医薬賦形剤、バッファーなどの存在下で分解するその傾向に対する抗体のアミノ酸配列の予想外の影響を克服するための普遍的な手法は存在しない。さらに、高濃度の(抗体などの)タンパク質を含み許容レベルの肉眼で見えない粒子を含有する点眼剤製剤の調製は、難題であり予測可能でない。
本発明の目的は、ヒト、特にヒトの眼に投与するのに適した、高濃度の抗VEGF抗体および低レベルの抗体凝集体および肉眼で見えない粒子を含む、さらなる改良型の製剤を提供することである。
発明の概要
したがって本発明は、点眼剤注射に適した、高濃度の抗VEGF抗体を含む水性医薬組成物を対象とする。ある特定の態様では、本発明の水性医薬組成物は低レベル〜検出不能レベルの抗体凝集または分解を示し、製造、調製、輸送および長期保存中に生物活性の減少がほとんど〜全くなく、抗VEGF抗体の濃度は少なくとも約50mg/ml、60mg/ml、80mg/ml、100mg/ml、120mg/ml、140mg/ml、160mg/ml、180mg/ml、または200mg/mlである。
本発明は、抗VEGF抗体、安定剤、バッファー、および界面活性剤を含む水性医薬組成物を提供する。ある特定の態様では、水性医薬組成物は、(i)少なくとも50mg/mlの抗VEGF抗体、(ii)安定剤としてスクロースまたはトレハロース、(iii)クエン酸またはヒスチジンバッファー、および(iv)界面活性剤としてポリソルベート80を含む。
ある特定の態様では、水性医薬組成物は、約4.5%〜11%w/vのスクロースまたは5%〜10%のトレハロース、0.006%〜0.012%のクエン酸(w/v)、0.2%〜0.6%のクエン酸三ナトリウム二水和物(w/v)、および約0.01%〜0.1%のポリソルベート80(w/v)を含み、この製剤のpHは6.3〜7.3である。
本発明の具体的な好ましい実施形態は、以下のある特定の好ましい実施形態および特許請求の範囲のより詳細な記載から明らかとなる。
異なるpHで製剤化した1008に関する濁度アッセイの結果を示すグラフである。x軸は55℃でのインキュベーション時間を示し、一方y軸は350nmでモニタリングした光学濃度を示す。 図2Aおよび図2Bは、180分間55℃でインキュベートした異なる1008製剤に関して、OD360の変化をモニタリングした濁度アッセイを示す図である(図2A)。60分で得たOD360曲線を拡大し示す(図2B中)。図2Aおよび図2B中のサンプル番号は、表13中の製剤番号に対応する。 簡略化のため、0分から90分の間で回収したデータでの濁度アッセイを示す図である。実験は全体で180分であった。55℃でインキュベートした異なる1008製剤に関してOD360の変化をモニタリングした。この図中のサンプル番号は表15中の製剤番号に対応する。 40℃で6週間保存した間の、選択した8製剤における主ピークに関するSECの結果を示すグラフである。
発明の詳細な記載
本発明は、高濃度の抗VEGF抗体を含む水性医薬組成物を提供する。ある特定の実施形態では、本発明の水性医薬組成物は2〜8℃で少なくとも18カ月安定状態であり、注射または注入を含む眼部投与に適している。特定の実施形態では、本発明の水性医薬組成物は、粒状物質の存在に関するUSP<789>の要件を満たす。したがって、ある特定の実施形態では、本発明の水性医薬組成物における直径10μm以上の粒子の最大数は1mLあたり50であり、本発明の水性医薬組成物における直径25μm以上の粒子の最大数は1mLあたり5であり、本発明の水性医薬組成物における直径50μm以上の粒子の最大数は1mLあたり2であり、米国薬局方General Chapter<789>により要求されるように、前記粒子数は、光の不透明度および/または顕微鏡による粒子計測法により決定した。
本明細書で使用する「水性」医薬組成物は、水性担体が蒸留水である医薬用途に適した組成物である。医薬用途に適した組成物は滅菌、均質および/または等張状態であってよい。水性医薬組成物は、水性形態、例えば直ちに使用できる予め充填した注射器で直接(「液体製剤」)、または使用直前に復元される凍結乾燥物として、のいずれかで調製することができる。本明細書で使用する用語「水性医薬組成物」は、液体製剤または復元した凍結乾燥製剤を指す。ある特定の実施形態では、本発明の水性医薬組成物はヒト対象への点眼剤投与に適している。具体的な実施形態では、本発明の水性医薬組成物は硝子体内投与に適している。別の実施形態では、本発明の水性医薬組成物は硝子体内注入による投与に適している。
本発明は、新規な医薬製剤、特にその活性成分がヒトVEGFに対する抗体を含む新規な医薬製剤を提供する。一態様では、本発明は、高濃度の抗VEGF抗体を含む水性医薬組成物に関する。本発明の製剤において好ましい抗VEGF抗体は、その全容が参照により本明細書に組み込まれている、国際公開第2009/155724号パンフレット中に記載されている。
本明細書で使用する用語「抗体」は、完全抗体およびその任意の抗原結合断片(すなわち「抗原結合部分」、「抗原結合ポリペプチド」、もしくは「イムノバインダー」)または単鎖を含む。「抗体」は、ジスルフィド結合によって相互に結合した少なくとも二本の重(H)鎖および二本の軽(L)鎖を含む糖タンパク質、またはその抗原結合部分を含む。それぞれの重鎖は、重鎖可変領域(本明細書ではVと略す)および重鎖定常領域で構成される。重鎖定常領域は、3ドメイン、CH1、CH2およびCH3で構成される。それぞれの軽鎖は、軽鎖可変領域(本明細書ではVと略す)および軽鎖定常領域で構成される。軽鎖定常領域は1ドメイン、CLで構成される。V領域およびV領域は、フレームワーク領域(FR)と呼ばれるさらに保存された領域が点在する、相補性決定領域(CDR)と呼ばれる超可変領域にさらに細かく分けることができる。それぞれのVおよびVは、アミノ末端からカルボキシ末端に以下の順序:FR1、CDR1、FR2、CDR2、FR3、CDR3、FR4で並んだ、3CDRと4FRで構成される。重鎖および軽鎖の可変領域は、抗原と相互作用する結合ドメインを含有する。抗体の定常領域は、免疫系の様々な細胞(例えばエフェクター細胞)および古典的補体系の主要成分(C1q)を含む宿主組織または因子と、免疫グロブリンの結合を媒介することができる。
用語、抗体の「抗原結合部分」(または単に「抗体部分」)は、抗原(例えばVEGF)と特異的に結合する能力を保持した抗体の1つまたは複数の断片を指す。抗体の抗原結合機能は、完全長抗体の断片によって果たされ得ることが示されている。用語、抗体の「抗原結合部分」内に包含される結合断片の例には、(i)Fab断片、V、V、CLおよびCH1ドメインからなる一価断片、(ii)F(ab’)断片、ヒンジ領域のジスルフィド結合によって連結した2つのFab断片を含む二価断片、(iii)VおよびCH1ドメインからなるFd断片、(iv)抗体の単一アームのVおよびVドメインからなるFv断片、(v)Vドメインからなる単一ドメインまたはdAb断片(Ward et al., (1989) Nature 341:544-546)、ならびに(vi)単離相補性決定領域(CDR)または(vii)場合によっては合成リンカーにより接合し得る2つ以上の単離CDRの組合せがある。さらに、Fv断片の2ドメイン、VおよびVは別々の遺伝子によってコードされているが、組換え法を使用し、V領域およびV領域が対になり一価分子を形成する単一タンパク質鎖としてそれらを作製することができる合成リンカーにより、それらを接合することができる(単鎖Fv(scFv)として知られている。例えばBird et al. (1988) Science 242:423-426およびHuston et al. (1988) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85:5879-5883を参照)。このような単鎖抗体も用語、抗体の「抗原結合部分」内に包含されると考えられる。これらの抗体断片は、当業者に知られている従来の技法を使用して得られ、完全抗体と同じ形式で有用性に関して断片をスクリーニングする。抗原結合部分は、組換えDNA技法によって、または完全免疫グロブリンの酵素もしくは化学的切断によって生成することができる。抗体は異なるアイソタイプ、例えばIgG(例えばIgG1、IgG2、IgG3、もしくはIgG4サブタイプ)、IgA1、IgA2、IgD、IgE、またはIgM抗体であってよい。
好ましい実施形態では、本発明の水性医薬組成物は、配列番号1で示す配列を有する可変重鎖および配列番号2で示す配列を有する可変軽鎖を含む。
VH:配列番号1
EVQLVESGGGLVQPGGSLRLSCTASGFSLTDYYYMTWVRQAPGKGLEWVGFIDPDDDPYYATWAKGRFTISRDNSKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAGGDHNSGWGLDIWGQGTLVTVSS
VL:配列番号2
EIVMTQSPSTLSASVGDRVIITCQASEIIHSWLAWYQQKPGKAPKLLIYLASTLASGVPSRFSGSGSGAEFTLTISSLQPDDFATYYCQNVYLASTNGANFGQGTKLTVLG
別の好ましい実施形態では、抗VEGF抗体は、以下の配列を含む単鎖Fv(scFv)抗体断片である:
EIVMTQSPSTLSASVGDRVIITCQASEIIHSWLAWYQQKPGKAPKLLIYLASTLASGVPSRFSGSGSGAEFTLTISSLQPDDFATYYCQNVYLASTNGANFGQGTKLTVLGGGGGSGGGGSGGGGSGGGGSEVQLVESGGGLVQPGGSLRLSCTASGFSLTDYYYMTWVRQAPGKGLEWVGFIDPDDDPYYATWAKGRFTISRDNSKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAGGDHNSGWGLDIWGQGTLVTVSS(配列番号3)
本発明の水性医薬組成物中の抗VEGF抗体は、例えば国際公開第2009/155724号パンフレット中に記載されたように生成することができる。本明細書に記載する発現ベクターを使用してscFvを生成することができる。発現ベクター中の開始コドン由来のメチオニンは、それが翻訳後に切断されなかった場合、最終タンパク質中に存在する(実施例の配列番号4を参照)。
ある特定の実施形態では、本発明の水性医薬組成物中の抗VEGF抗体は、それぞれ配列番号5、6および7で示す重鎖CDR1、CDR2およびCDR3、ならびに配列番号8、9および10で示す軽鎖CDR1、CDR2およびCDR3を含む。
配列番号5 GFSLTDYYYMT
配列番号6 FIDPDDDPYYATWAKG
配列番号7 GDHNSGWGLDI
配列番号8 QASEIIHSWLA
配列番号9 LASTLAS
配列番号10 QNVYLASTNGAN
一実施形態では、本発明の水性医薬組成物中の抗VEGF抗体の濃度は少なくとも50mg/mlである。好ましくは、本発明の水性医薬組成物は、約50mg/ml、約60mg/ml、約70mg/ml、約80mg/ml、約90mg/ml、約100mg/ml、約110mg/ml、約120mg/ml、約130mg/ml、約140mg/ml、約150mg/ml、約160mg/ml、約170mg/ml、約180mg/ml、約190mg/ml、約200mg/ml、約210mg/ml、約220mg/ml、約230mg/ml、約240mg/ml、約250mg/mlまたは約300mg/mlの抗VEGF抗体を含む。
ある特定の実施形態では、本発明の水性医薬組成物は、60mg/mlから120mg/mlの間の抗VEGF抗体、例えば配列番号1および配列番号2を含む抗体を含む。
一実施形態では、本発明の水性医薬組成物は、配列番号3を含む60mg/mlの抗VEGF抗体を含む。
別の実施形態では、本発明の水性医薬組成物は、配列番号3を含む120mg/mlの抗VEGF抗体を含む。
本発明の水性医薬組成物は、抗VEGF抗体以外に、1つまたは複数の以下の:(i)安定剤、(ii)緩衝剤、(iii)界面活性剤、および(iv)遊離アミノ酸などの、さらなる成分を含む。それぞれのこのような追加的成分を含めることによって、抗VEGF抗体の凝集が少ない組成物を得ることができる。本発明の水性医薬組成物は、抗VEGF抗体以外に、(i)安定剤、(ii)緩衝剤、および(iii)界面活性剤を含むことが好ましい。
本発明と共に使用するのに適した安定剤は、例えば増粘剤、バルキング剤、可溶化剤などとして作用することができる。安定剤はイオン性または非イオン性(例えば糖)であってよい。糖として、単糖、例えばフルクトース、マルトース、ガラクトース、グルコース、D−マンノース、ソルボースなど、二糖、例えばラクトース、スクロース、トレハロース、セロビオースなど、多糖、例えばラフィノース、メレジトース、マルトデキストリン、デキストラン、スターチなど、およびアルジトール、例えばマンニトール、キシリトール、マルチトール、ラクチトール、キシリトールソルビトール(グルシトール)などがあるが、これらだけには限られない。例えば、糖はスクロース、トレハロース、ラフィノース、マルトース、ソルビトールまたはマンニトールであってよい。糖は糖アルコールまたはアミノ糖であってよい。スクロースおよびトレハロースが好ましい。最も好ましいのはスクロースである。イオン性安定剤として、NaClなどの塩またはアルギニン−HClなどのアミノ酸成分を含めることができる。
本発明と共に使用するのに適した緩衝剤には、クエン酸、アスコルビン酸、グルコン酸、炭酸、酒石酸、コハク酸、酢酸またはフタル酸の塩などの有機酸塩、トリス、トロメタミン塩酸塩またはリン酸バッファーがあるが、これらだけには限られない。さらに、アミノ酸成分を緩衝剤として使用することもできる。10〜20mMのヒスチジンバッファー、例えば0.13%〜0.26%(w/v)のヒスチジンおよび0.03%〜0.07%(w/v)のヒスチジン塩酸塩一水和物、または10〜20mMのクエン酸バッファー、例えば0.006%〜0.012%のクエン酸(w/v)および0.2%〜0.6%のクエン酸三ナトリウム二水和物(w/v)を含む、クエン酸またはヒスチジンバッファーが特に有用である。本発明の製剤中で使用されるクエン酸は、任意の水和形型、例えば無水物または一水和物であってよい。
水性医薬組成物は、このような緩衝剤またはpH調整剤を含み、改善されたpH制御をもたらす。ある特定の実施形態では、本発明の水性医薬組成物は、5.0から8.0の間、5.0から7.0の間、6.0から8.0の間、または6.0から7.0の間のpHを有する。一実施形態では、本発明の水性医薬組成物のpHは約6.3〜約7.3である。具体的な実施形態では、本発明の水性医薬組成物は約6.8のpHを有する。
本明細書中で使用する用語「界面活性剤」は、両親媒性構造、すなわち正反対の可溶性傾向の基、典型的には油溶性炭化水素鎖および水溶性イオン基で構成される構造を有する有機物質を本明細書中で指す。界面活性剤は、表面活性部分の電荷に応じて、様々な医薬組成物および生体材料の調製物用のアニオン性、カチオン性、および分散剤に分類することができる。
本発明と共に使用するのに適した界面活性剤には、非イオン性界面活性剤、イオン性界面活性剤および両イオン性界面活性剤があるが、これらだけには限られない。本発明と共に使用するのに典型的な界面活性剤には、ソルビタン脂肪酸エステル(例えばソルビタンモノカプリレート、ソルビタンモノラウレート、ソルビタンモノパルミテート)、ソルビタントリオレート、グリセリン脂肪酸エステル(例えばグリセリンモノカプリレート、グリセリンモノミリステート、グリセリンモノステアレート)、ポリグリセリン脂肪酸エステル(例えばデカグリセリルモノステアレート、デカグリセリルジステアレート、デカグリセリルモノリノレート)、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル(例えばポリオキシエチレンソルビタンモノラウレート、ポリオキシエチレンソルビタンモノオレエート、ポリオキシエチレンソルビタンモノステアレート、ポリオキシエチレンソルビタンモノパルミテート、ポリオキシエチレンソルビタントリオレート、ポリオキシエチレンソルビタントリステアレート)、ポリオキシエチレンソルビトール脂肪酸エステル(例えばポリオキシエチレンソルビトールテトラステアレート、ポリオキシエチレンソルビトールテトラオレエート)、ポリオキシエチレングリセリン脂肪酸エステル(例えばポリオキシエチレングリセリルモノステアレート)、ポリエチレングリコール脂肪酸エステル(例えばポリエチレングリコールジステアレート)、ポリオキシエチレンアルキルエーテル(例えばポリオキシエチレンラウリルエーテル)、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレンアルキルエーテル(例えばポリオキシエチレンポリオキシプロピレングリコール、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレンプロピルエーテル、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレンセチルエーテル)、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル(例えばポリオキシエチレンノニルフェニルエーテル)、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油(例えばポリオキシエチレンヒマシ油、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油)、ポリオキシエチレンビーズワックス誘導体(例えばポリオキシエチレンソルビトールビーズワックス)、ポリオキシエチレンラノリン誘導体(例えばポリオキシエチレンラノリン)、およびポリオキシエチレン脂肪酸アミド(例えばポリオキシエチレンステアリン酸アミド)、C10〜C18アルキル硫酸(例えばセチル硫酸ナトリウム、ラウリル硫酸ナトリウム、オレイル硫酸ナトリウム)、平均2〜4モルのエチレンオキシド単位が付加されたポリオキシエチレンC10〜C18アルキルエーテル硫酸C10〜C18(例えばポリオキシエチレンラウリル硫酸ナトリウム)、およびC〜C18アルキルスルホコハク酸エステル塩(例えばラウリルスルホコハク酸ナトリウムエステル)、およびレシチン、グリセロリン脂質、スフィンゴリン脂質(例えばスフィンゴミエリン)などの天然界面活性剤、およびC12〜C18脂肪酸のスクロースエステルがあるが、これらだけには限られない。組成物は1つまたは複数のこれらの界面活性剤を含むことができる。好ましい界面活性剤はポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル、例えばポリソルベート20、40、60または80である。ポリソルベート80が特に好ましい。
本発明と共に使用するのに適した遊離アミノ酸には、アルギニン、リシン、ヒスチジン、オルニチン、イソロイシン、ロイシン、アラニン、グリシン、グルタミン酸またはアスパラギン酸があるが、これらだけには限られない。塩基性アミノ酸、すなわちアルギニン、リシンおよび/またはヒスチジンを含めることが好ましい。組成物がヒスチジンを含む場合、これは緩衝剤および遊離アミノ酸の両方として作用することができるが、ヒスチジンバッファーを使用するときは、典型的には非ヒスチジン遊離アミノ酸を含み、例えばヒスチジンバッファーおよびリシンを含む。アミノ酸はそのD型および/またはL型で存在し得るが、L型が典型的である。アミノ酸は任意の適切な塩、例えばアルギニン−HClなどの塩酸塩として存在し得る。好ましい一実施形態では、本発明の水性医薬組成物は如何なるこのような遊離アミノ酸も含まない。
好ましい実施形態では、例えば水中での凍結乾燥物の復元後に、糖は3%から11%の間の濃度(w/v)で本発明の水性医薬組成物中に存在する。ある特定の実施形態では、糖は約4.5%〜約11%の濃度のスクロース、または約5%〜約10%の濃度のトレハロースである。6.75%(w/v)の濃度のスクロースが好ましい。
好ましい実施形態では、例えば水中での凍結乾燥物の復元後に、緩衝剤は1mMから60mMの間、例えば10〜40mM、15〜30mM、15〜25mMの濃度で本発明の水性医薬組成物中に存在する。ある特定の実施形態では、緩衝剤はクエン酸またはヒスチジンである。15mMの濃度のクエン酸バッファーが好ましい。
好ましい実施形態では、例えば水中での凍結乾燥物の復元後に、界面活性剤は最大0.2(体積)%、例えば0.01〜0.1%、0.03〜0.08%、0.04〜0.08%の濃度で本発明の水性医薬組成物中に存在する。0.05%の濃度のポリソルベート80が好ましい。
本発明の水性医薬組成物において利用できる、他の企図される賦形剤には、例えば抗菌剤、抗酸化剤、静電気防止剤、リン脂質または脂肪酸などの脂質、コレステロールなどのステロイド、血清アルブミン(ヒト血清アルブミン)、組換えヒトアルブミン、ゼラチン、カゼインなどのタンパク質賦形剤、ナトリウムなどの塩形成対イオンなどがある。本発明の製剤において使用するのに適した、これらおよび他の知られている医薬賦形剤および/または添加剤は、例えばThe Handbook of Pharmaceutical Excipients, 4th edition, Rowe et al., Eds., American Pharmaceuticals Association (2003)およびRemington: the Science and Practice of Pharmacy, 21stedition, Gennaro, Ed., Lippincott Williams & Wilkins (2005)中に列記されたように、当技術分野で知られている。
本発明の好ましい製剤は、以下の実施例の表40中に示される。
ある特定の実施形態では、抗VEGF抗体の凍結乾燥は、患者を治療するための本発明の水性医薬組成物をもたらすと企図される。
抗体を凍結乾燥するための技法は当技術分野でよく知られており、例えばJohn F. Carpenter and Michael J. Pikal, 1997 (Pharm. Res. 14. 969-975);Xialin (Charlie) Tang and Michael J. Pikal, 2004 (Pharm. Res. 21, 191-200)を参照。
凍結乾燥物を患者に投与することができる状態にする前に、それを水性復元剤で復元しなければならない。このステップによって、凍結乾燥物中の抗体および他の成分を再溶解させて、患者への注射に適した溶液を得ることができる。
復元に使用される水性物質の体積が、生成する医薬組成物中の抗体の濃度を決定する。凍結乾燥前体積より小体積の復元剤を用いた復元は、凍結乾燥前より濃縮された組成物をもたらす。復元率(凍結乾燥後の製剤の体積:凍結乾燥前の製剤の体積)は1:0.5〜1:6であってよい。1:3の復元率が有用である。前述のように、本発明の凍結乾燥物を復元して少なくとも50mg/ml(すなわち、少なくとも60、70、80、90、100、110、120、または130mg/ml)の抗VEGF抗体濃度を有する水性組成物を得ることができ、復元剤の体積はそれに応じて選択される。必要な場合、復元した製剤は患者への投与前に適切に希釈し、目的用量を送達することができる。
凍結乾燥抗体に典型的な復元剤には、場合によっては防腐剤を含有する滅菌水またはバッファーがある。凍結乾燥物が緩衝剤を含む場合、復元剤は(凍結乾燥物の緩衝剤と同じであるかもしくは異なってよい)さらなる緩衝剤を含むことができ、または復元剤はその代わりに緩衝剤(例えば、WFI(注射用水)、もしくは生理食塩水)を含まない可能性がある。
抗VEGF抗体を含む本発明の水性医薬組成物を使用して、様々な疾患または障害を治療することができる。抗VEGF抗体を含む医薬組成物は、対象における眼内血管新生疾患を治療するのに特に有用である。
本発明の水性医薬組成物を使用して治療することができる「眼内血管新生疾患」には、異常な血管形成、脈絡膜血管新生(CNV)、網膜血管透過性亢進、網膜浮腫、糖尿病性網膜症(特に増殖性糖尿病性網膜症)、糖尿病性黄斑浮腫、nAMD(血管新生型AMD)を伴うCNVを含めた血管新生(滲出型)加齢黄斑変性症(AMD)、網膜虚血を伴う後遺症、網膜中心静脈閉塞症(CRVO)、および後眼部血管新生を含むが、これらだけには限られない、眼内血管新生と関係がある状態、疾患、または障害がある。
本発明の水性医薬組成物は、抗VEGF抗体以外に、さらなる活性成分を含むことができる。さらなる薬理活性物質は、例えば眼部疾患を治療するのに有用な他の抗体を含むことができる。
本発明の水性医薬組成物は患者に投与することができる。本明細書で使用する用語「対象」または「患者」は、霊長類、ウサギ、ブタ、ウマ、イヌ、ネコ、ヒツジ、およびウシを含むが、これらだけには限られない、ヒトおよび非ヒト哺乳動物を指す。対象または患者はヒトであることが好ましい。
投与は典型的には注射器を介して行う。したがって本発明は、本発明の医薬組成物を含む送達デバイス(例えば注射器)を提供する(例えば予め充填した注射器)。患者は有効量(すなわち、所望の効果を達成するまたは少なくとも部分的に達成するのに充分な量)の抗VEGF抗体を主要活性成分として投与される。疾患と関係がある症状または状態の漸増的変化をもたらすことさえできれば、治療有効用量は充分である。治療有効用量が疾患を完全に治癒する、または症状を完全に排除する必要はない。治療有効用量は、既に疾患に罹患している患者における疾患およびその合併症を、少なくとも部分的に抑制できることが好ましい。この使用に有効な量は、治療する障害の重症度、および患者自身の免疫系の一般的状態に依存する。
疾患または状態の治療に関して通常の技能を有する医師により、周知の投与量調節技法を使用して投与する量を容易に決定することができる。本発明の水性医薬組成物中に使用する抗VEGF抗体の治療有効量は、例えば所望の用量体積および投与形式(複数可)を考慮することによって決定される。典型的には、1回あたり0.001mg/ml〜約200mg/mlの範囲の投与量で、治療に有効な組成物を投与する。本発明の方法で使用する投与量は、約60mg/ml〜約120mg/ml(すなわち、約60、70、80、90、100、110、または120mg/ml)であることが好ましい。好ましい実施形態では、本発明の方法で使用する抗VEGF抗体の投与量は60mg/mlまたは120mg/mlである。
ある特定の実施形態では、患者の眼に直接、1用量を投与する。一実施形態では、眼あたりの用量は少なくとも約0.5mgから最大約6mgである。眼あたりの好ましい用量は、約0.5mg、0.6mg、0.7mg、0.8mg、0.9mg、1.0mg、1.2mg、1.4mg、1.6mg、1.8mg、2.0mg、2.5mg、3.0mg、3.5mg、4.0mg、4.5mg、5.0mg、5.5mg、および6.0mgを含む。50μlまたは100μlなどの点眼剤投与に適した様々な体積で、例えば3mg/50μlまたは6mg/50μlを含む用量を投与することができる。10μl以下、例えば約10μlまたは約8μlを含む、より少ない体積を使用することもできる。ある特定の実施形態では、1.2mg/10μlまたは1mg/8.0μl(例えば1mg/8.3μl)の用量を、前に記載した1つまたは複数の疾患および障害を治療または軽減するため患者の眼に送達する。送達は、例えば硝子体内注射または注入であってよい。
本発明は、医薬品として使用するため、例えば患者に抗体を送達する際の使用のため、または前に記載した1つまたは複数の疾患および障害を治療または軽減する際の使用のための、本発明の製剤(すなわち水性医薬組成物)も提供する。
本発明は、本発明の水性医薬組成物を患者に投与するステップを含む、患者に抗VEGF抗体を送達するための方法をさらに提供する。
ある特定の実施形態では、患者に抗VEGF抗体を送達するための方法は、(i)本発明の凍結乾燥物を復元して水性製剤を得るステップ、および(ii)患者に水性製剤を投与するステップを含む。ステップ(ii)は、ステップ(i)の24時間以内(例えば12時間以内、6時間以内、3時間以内、または1時間以内)に行うことが理想的である。
本発明のある特定の具体的な実施形態を、以下に番号付けしたように記載する:
1.(i)それぞれ配列番号5、6、および7の重鎖CDR1、CDR2およびCDR3、ならびにそれぞれ配列番号8、9、および10の軽鎖CDR1、CDR2およびCDR3を含む少なくとも50mg/mlの抗VEGF抗体、(ii)スクロースまたはトレハロース、(iii)クエン酸またはヒスチジンバッファー、ならびに(iv)界面活性剤としてポリソルベート80を含む水性医薬組成物。
2.4.5%〜11%(w/v)のスクロースまたは5%〜10%のトレハロース、0.006%〜0.012%のクエン酸(w/v)、0.2%〜0.6%のクエン酸三ナトリウム二水和物(w/v)、および0.01%〜0.1%のポリソルベート80(w/v)を含み、そのpHが約6.3〜約7.3である、実施形態1に記載の水性医薬組成物。
3.スクロースの濃度が6.75%(w/v)であり、クエン酸の濃度が約0.01%(w/v)であり、クエン酸三ナトリウム二水和物の濃度が約0.428%(w/v)であり、ポリソルベート80の濃度が約0.05%(w/v)であり、pHが約6.8である、実施形態2に記載の水性医薬組成物。
4.抗VEGF抗体の濃度が少なくとも60mg/ml、少なくとも70mg/ml、少なくとも80mg/ml、少なくとも90mg/ml、少なくとも100mg/ml、少なくとも110mg/ml、少なくとも120mg/ml、少なくとも130mg/ml、少なくとも140mg/ml、または少なくとも150mg/mlである、実施形態1から3のいずれか1つに記載の水性医薬組成物。
5.抗VEGF抗体の濃度が少なくとも60mg/ml、少なくとも70mg/ml、少なくとも80mg/ml、少なくとも90mg/ml、少なくとも100mg/ml、少なくとも110mg/ml、少なくとも120mg/ml、少なくとも130mg/ml、少なくとも140mg/ml、または少なくとも150mg/mlである、実施形態1から4のいずれか1つに記載の水性医薬組成物。
6.抗VEGF抗体が配列番号1および配列番号2の配列を含む、実施形態1から5のいずれか1つに記載の水性医薬組成物。
7.抗VEGF抗体が配列番号3の配列を含む、実施形態1から6のいずれか1つに記載の水性医薬組成物。
8.抗VEGF抗体の濃度が約60mg/mlまたは約120mg/mlである、実施形態1から7のいずれか1つに記載の水性医薬組成物。
9.実施形態1から8のいずれか1つに記載の水性医薬組成物を含む送達デバイス。
10.予め充填した注射器である、実施形態9に記載の送達デバイス。
11.対象に抗VEGF抗体を送達するための方法であって、実施形態1から8のいずれか1つに記載の水性医薬組成物を対象に投与するステップを含む方法。
12.VEGFによって媒介される眼部疾患または障害を治療する方法であって、実施形態1から8のいずれか1つに記載の水性医薬組成物を対象に投与することを含む方法。
13.前記眼部疾患または障害が眼部血管新生疾患である、実施形態12に記載の方法。
14.実施形態1から8のいずれか1つに記載の水性医薬組成物の凍結乾燥によって調製される凍結乾燥製剤。
15.凍結乾燥物を調製するための方法であって、(i)抗VEGF抗体、スクロースまたはトレハロース、クエン酸またはヒスチジンバッファー、および界面活性剤の水溶液を調製するステップ、ならびに(ii)水溶液を凍結乾燥するステップを含む方法。
16.抗VEGF抗体がそれぞれ配列番号5、6、および7の重鎖CDR1、CDR2およびCDR3、ならびにそれぞれ配列番号8、9、および10の軽鎖CDR1、CDR2およびCDR3を含む、実施形態15に記載の方法。
17.抗VEGF抗体が配列番号1および配列番号2の配列を含む、実施形態16に記載の方法。
18.抗VEGF抗体が配列番号3の配列を含む、実施形態16から17のいずれか1つに記載の方法。
19.対象に水性医薬組成物を投与するステップを含む、対象に抗VEGF抗体を送達する際の使用のための、実施形態1から8のいずれか1つに記載の水性医薬組成物。
20.対象に水性医薬組成物を投与することを含む、VEGFによって媒介される眼部疾患または障害を治療する際の使用のための、実施形態1から8のいずれか1つに記載の水性医薬組成物。
21.前記眼部疾患または障害が眼部血管新生疾患である、実施形態20に記載の使用。
別段の記述がない限り、本明細書中で使用する全てのパーセンテージは重量パーセンテージである。
別段の指示がない限り、本明細書中で使用する用語「a」と「an」は「1つ」、「少なくとも1つ」または「1つまたは複数」を意味すると考えられる。文脈による別段の要請がない限り、本明細書中で使用する単数形の用語は複数を含むものとし、複数形の用語は単数を含むものとする。
本明細書を通じて引用する任意の特許、特許出願、および参照文献の内容は、参照によりそれらの全容が本明細書に組み込まれている。
本発明の他の実施形態は、本明細書を考慮し、本明細書に開示する本発明を実践することにより、当業者には明らかとなる。本明細書および実施例は例示的なものに過ぎないと考えられ、本発明の真の範囲および精神は、以下の特許請求の範囲およびその均等物によって示されるものとする。
実施例
以下の実施例は、抗体1008を含む安定状態の高濃度溶液を提供して、点眼剤製品に関する規制要件を満たす、冷蔵保存条件で少なくとも18カ月の貯蔵寿命があるIVT製剤を可能にするのに適切な安定化手法および組成を同定するように設計された製剤開発努力を記載する。
1008抗体は、ヒト血管内皮増殖因子A(VEGF−A)と結合しその生物活性を阻害する単鎖抗体である。発現された1008のアミノ酸配列は以下の通りである:
MEIVMTQSPS TLSASVGDRV IITCQASEII HSWLAWYQQK PGKAPKLLIY LASTLASGVP SRFSGSGSGA EFTLTISSLQ PDDFATYYCQ NVYLASTNGA NFGQGTKLTV LGGGGGSGGG GSGGGGSGGG GSEVQLVESG GGLVQPGGSL RLSCTASGFS LTDYYYMTWV RQAPGKGLEW VGFIDPDDDP YYATWAKGRF TISRDNSKNT LYLQMNSLRA EDTAVYYCAG GDHNSGWGLD IWGQGTLVTV SS(配列番号4)
pH6.25で0.001%のポリソルベート20を含む15mMのクエン酸バッファー中の等張溶液として1008を製剤化したとき、60mg/mlの濃度の1008で相当量の肉眼で見えない粒子を観察した。この初期製剤に関する大きな問題は、−20℃で保存したときでさえ、注射用点眼剤溶液に関する規制制限(USP<789>)を超える粒状物質があることであった。
以下の実施例は、少なくとも18カ月間2〜8℃の保存時に安定状態の、60および120mg/mlの1008硝子体内(IVT)溶液の製剤開発を要約する。製剤開発努力は、肉眼で見えない粒子の形成の阻害、ならびに含有量、純度および効力に関するUSP要件を満たすことに焦点を当てた。
分析法
以下の方法を、示す通り実施例全体で使用した。
マイクロフローイメージング(MFI)法
賦形剤スクリーニング、60mg/mlの最適化試験に関する試験1および試験2の分析に使用したMFI法は以下の通りであった:
使用した合計サンプル体積:0.50mL
パージ体積:0.20mL
分析体積:0.26mL
最適化照射ステップを、精製濾過した、粒子を含まない水で行った。
120mg/mlの1008に関する試験3および試験4の分析に使用したMFI法:
使用した合計サンプル体積:0.80mL
パージ体積:0.23mL
分析体積:0.48mL
最適化照射ステップを、精製濾過した、粒子を含まない水で行った。
SEC法
SE−HPLC(サイズ排除クロマトグラフィー)は、タンパク質をそれらのサイズに応じて分離する。サンプル分子が多孔性粒子固定相を通過したとき、それらの差次的排除、または包接によって分離を実施した。0.25ml/分の流速および4℃のサンプル温度を維持することができ、TOSOH SuperSW3000カラム(Tosoh Bioscience LLC、King of Prussia、PA)、および214nmと280nmで同時に作動可能な検出器を備える高速液体クロマトグラフィーシステム。この方法は純度試験に使用した。
IEX−HPLC法
AIEX−HPLC(アニオン交換高速液体クロマトグラフィー)は、それらの正味電荷に従いタンパク質を分離する。この手順は、強アニオン交換カラムを含有する(25℃に設定した)温度制御型カラムコンパートメント、(4℃に設定した)オートサンプラー、および280nmで作動可能な可変波長UV検出器を用いて、0.8ml/分の流速を維持することができる高速液体クロマトグラフィー(HPLC)を使用して実施した。
CGE法
キャピラリーゲル電気泳動法を、SDSゲルキャピラリー電気泳動による分子量10kDaから225kDaの間のタンパク質の同一性および純度を決定するために実施した。キャピラリーには、Beckman Coulterの0.2%SDSゲルバッファー、pH8、専売製剤を動的に充填した。タンパク質の分離は、分子ふるい電気泳動により実施した。タンパク質分子量の対数は、その相互電気泳動移動度と直線関係が認められた。タンパク質の同一性は、分子量標準とその移動を比較することにより決定した。純度は、親ピークおよび不純物の面積割合の分析によって決定した。フォトダイオードアレイ検出器(PDA)を使用して220nmでサンプルを分析した。
効能分析
競合ELISAを効能試験に使用した。競合ELISAで、ビオチニル化VEGFをめぐってVEGFR2/Fcと競合する1008の能力を測定した。観察したシグナルは1008の濃度と反比例関係にあった。1008の量が増加するにつれ、ビオチニル化VEGFとその受容体VEGFR2/Fcとの結合が効率よく遮断されたからである。それぞれのサンプルは1008参照標準に対して96ウエルマイクロタイタープレート中で分析し、参照標準の効能に対するサンプルの相対的効能を報告した。
実施例1
賦形剤スクリーニング
pH6.25でクエン酸バッファー中で1008を製剤化した。製剤の組成を表1に示す。
相当数の肉眼で見えない粒子を前述の製剤において観察した。−20℃で保存したときでさえ、粒状物質は、USP<789>の注射用点眼剤溶液に関する規制制限を超えていた。
肉眼で見えない粒子の形成に対する様々な賦形剤の影響を調べて、より安定した1008の液体溶液を開発した。異なる賦形剤を含有するタンパク質溶液を40℃で60mg/mlで保存し、MFIにより1〜100μmのサイズの粒子に関して分析した。実験データによって、アルギニン、デキストラン、アスコルビン酸、メチオニン、および酢酸アンモニウムを含めて、試験した大部分の賦形剤が、粒子の形成を低減しないことを実証した。スクロースおよびトレハロースなどの非還元糖の存在下でのみ、粒子の形成が有意に低減した。
さらなる賦形剤スクリーニングを実施した。1008の安定性に対する賦形剤の影響は、約60mg/mlの1008溶液において評価した。0.1%のヒト血清アルブミン(HSA)、0.1%のポロキサマー407、0.1%のBrij35、3%のグリシン、50mMのグリセリンを含有するタンパク質溶液を40℃で保存し、保存8、21、および28日後にMFI、SECおよびIEXによりサンプルをアッセイした。結果を表2に示す。実験データによって、試験した賦形剤の存在下でのタンパク質の不安定状態を実証した。
57mg/mlの1008の安定性を、pH6.25で20mMのリン酸バッファーにおいて調べた。9%のスクロースおよび0.1%のPS80を含有する製剤を40℃での保存6、14および27日後にアッセイした。結果を表3に列記する。
実施例2
新たな製剤開発
試験1
賦形剤スクリーニング
pH6.25で0.001%のポリソルベート20および0.73%のNaClを含有する、20mMのクエン酸バッファー中60mg/mlの1008のタンパク質溶液を、サンプル調製に使用した。原型タンパク質溶液中の界面活性剤を除去するため、最初に、NAP−25カラムを使用したバッファー交換を、ポリソルベート20を含まないビヒクルを使用して実施した。次いでバッファー交換したタンパク質溶液を、Vivaspinフィルターおよび10kDa MWCOを使用し約60mg/mlに濃縮した。HSA、グリシン、グリセリン、ポロキサマー407、およびBrij35の賦形剤を個々にスパイク添加した。次いで調製したサンプルを、4mL透明ガラス製バイアルに0.2umPVDF膜を介してシリンジ濾過した。約100μLのサンプルを初期アッセイに使用し、一方で残りのサンプルは40℃で保存した。各製剤の1ミリリットルサンプルを、MFI、SECおよびIEXによる分析用に、40℃での保存8、21、および28日後に取り出した。
バッファー、糖および界面活性剤の成分の選択
内部で実施した賦形剤スクリーニング試験に基づき、2つのバッファー(クエン酸およびヒスチジン)、糖(スクロースおよびトレハロース)、ならびに界面活性剤(ポリソルベート20およびポリソルベート80)を製剤成分選択で選択した。20mMのバッファー強度、264mMの糖濃度、および0.1%の界面活性剤濃度を試験用に選択した。全要因実験試験を以下の表に示すように設計した。
使用した全設計を以下の表5に示す:
他のパラメーター:
濃度/pH pH6.25で50〜60mg/mlの1008
バッファー交換 NAP25カラム、Vivaspinの10kDa MWCOで濃縮
サンプルサイズ/Pkg スクリューキャップ付き4mL透明ガラス製バイアル中に2〜2.5mL
保存/取り出し 40℃/0、1、2および4週
アッセイ MFI、SECおよびIEX
0.001%のポリソルベート20を含有する原型バッファー中60mg/mlの1008のタンパク質溶液を、サンプル調製に使用した。異なるバッファー/糖の組合せ(20mMクエン酸/264mMトレハロース、20mMクエン酸/264mMスクロース、20mMヒスチジン/264mMトレハロース、20mMヒスチジン/264mMスクロース)を含む4つの新たなビヒクルバッファーを調製した。1008薬剤物質(DS)を、Illustra NAP−25カラム(GE Healthcare)を使用してビヒクルバッファーに最初に交換した。カラムを25mLのクエン酸バッファーで平衡状態にした。次いで2mLの1008DSをカラムにロードした。DS溶液をカラムに完全に移動させた後、カラムの平衡状態化に使用したのと同じ2mLのバッファーでカラムを洗浄した。カラムから溶出した6mLの溶液を、Vivaspin6濃縮装置(10kDa MWCO、GE Healthcare)に回収した。次いで6mLの溶出溶液を、9384×gおよび4℃でBeckman GS−15R遠心分離機を使用して約2mLに濃縮した。次いでタンパク質の濃度を、OD280を使用してNanoDrop1000分光光度計で測定した。ポリソルベート20(PS20)またはポリソルベート80(PS80)を、0.1%の最終濃度まで製剤にスパイク添加した。次いで調製した製剤を、0.2umPVDFシリンジフィルターを介して濾過し、4mL透明ガラス製バイアルに充填した。約100μLのサンプルを初期アッセイに使用し、一方で残りのサンプルは40℃で保存した。1ミリリットルのサンプルを、MFI、SECおよびIEXによる分析用に、40℃で1、2および4週間の保存後に取り出した。
定性試験を実施して、製剤に最適な糖/界面活性剤/バッファー成分を選択した。2つのバッファー(クエン酸およびヒスチジン)、糖(スクロースおよびトレハロース)、ならびに界面活性剤(ポリソルベート20およびポリソルベート80)を、前で論じたようにこの試験設計で使用した。4週間の安定性試験を加速条件下(40℃)で実施した。安定性試験のサンプルはSEC、IEXおよびMFIによってアッセイした。表6はSEC、IEXによる安定性試験の結果、およびμDSCによる融点(Tm)を示す。
安定性試験の結果は、Minitab(Minitab Inc.、State College PA)を使用して分析した。SECおよびIEXは同じ傾向を示したので、SECのデータのみをMinitabによって分析し報告した。SECの結果は、界面活性剤が唯一の有意な因子であり、反応に影響を与えた可能性がある他の要因にはバッファー選択および(低い程度で)バッファーおよび糖の間の相互作用があることを実証した。SECのデータは、最適な製剤成分はバッファーとしてクエン酸、界面活性剤としてポリソルベート80、および糖としてスクロースであることを示唆した。
MFIによる粒子に関する実験結果もMinitabによって分析した。評価した3因子(糖、界面活性剤およびバッファー)はいずれも有意ではないようであった(α=0.05)。粒子に対する主な影響を比較すると、クエン酸はヒスチジンより好影響であり、PS80はPS20より好影響であり、スクロースはトレハロースと同等またはトレハロースより若干好影響であった。したがって、バッファーとしてクエン酸、界面活性剤としてポリソルベート80、および糖としてスクロースを、さらなる試験用に選択した。
試験2
バッファー、糖および界面活性剤に関する濃度の最適化
2つの中心点での2レベルにおける3因子を含有する全要因試験を、クエン酸バッファーおよびヒスチジンバッファーでそれぞれ実施して、選択したそれぞれの製剤成分に最適な濃度を決定した。3因子はバッファー(クエン酸またはヒスチジン)、ポリソルベート80およびスクロースである。因子および設計スペースを表7に作表し、詳細な実験設計を表8および9に示す。
個々の製剤を調製するため、pH6.25で0.001%のポリソルベート20/0.73%のNaClを含有するクエン酸バッファー中60mg/mlの1008のタンパク質溶液を使用した。最初にタンパク質溶液を、NAP−25カラムを使用してビヒクルにバッファー交換した。このビヒクルは、バッファーおよびスクロースをそれらの標的濃度で含有していた。交換したタンパク質溶液を、Vivaspinの10kDa MWCOを使用して約60mg/mlの濃度に濃縮した。
次いでバッチ量のポリソルベート80および塩化ナトリウムを加え、最終製剤組成物を作製した。各サンプル中のタンパク質濃度は、280nmでUVにより測定した吸光度を使用し理論上の吸光係数で確認した。
次いで調製した製剤を、0.2μmPVDFシリンジフィルターを介して4mL透明ガラス製バイアルに濾過した。約100μLのサンプルをSECおよびIEXによる初期アッセイに使用し、一方で約2〜2.5mLのサンプルを40℃で保存した。約600μLのサンプルをMFI、SECおよびIEXによる分析用に、40℃で11、20および27日の保存後に取り出した。
試験1の結果に基づき、2つの中心点での2レベルにおける3因子を含有する全要因試験を、クエン酸バッファーとヒスチジンバッファーでそれぞれ実施して、選択したそれぞれの製剤成分に最適な濃度を決定した。試験したサンプルは40℃で保存し、MFI、SECおよびIEXによる分析用に0、1.6、2.9および4週間で取り出した。結果を表10および11に作表する。
実験データはMinitabによって分析した。クエン酸バッファーにおけるSECの結果に関しては、界面活性剤がタンパク質凝集に影響を与えた主要因子であり、一方スクロース、スクロースおよびポリソルベート80の間の相互作用、ならびにバッファー強度はあまり有意な役割は果たさなかった。高スクロース濃度および低ポリソルベート80濃度がタンパク質の安定性に好ましかった。タンパク質の安定性は凝集に若干影響を与え、高いクエン酸バッファー強度は若干良いタンパク質の安定性を助長した。
クエン酸バッファーにおけるMFIの結果に関しては、スクロースおよびポリソルベート80の因子、ならびにスクロースおよびポリソルベート80の相互作用が、粒子形成において同等に有意な役割を果たした。高スクロースおよび高ポリソルベート80が粒子形成を有意に抑制し、一方10〜20mMの範囲のバッファー強度は粒子形成に若干影響を与え、低いバッファー強度が好ましかった。
ヒスチジンバッファー溶液のMinitab分析による結果は、界面活性剤、ポリソルベート80はタンパク質凝集に影響を与える主要因子であり、一方バッファー強度およびポリソルベート80の間の相互作用、ならびにスクロースはあまり有意な役割は果たさなかったことを示した。低濃度のポリソルベート80がタンパク質の安定性に好ましかった。バッファー強度およびスクロース濃度は、タンパク質凝集に影響を与えないようであった。
ヒスチジンバッファーにおけるMFIの結果に関しては、ポリソルベート80、スクロース、ならびにスクロースおよびポリソルベート80の相互作用が、粒子形成において有意な役割を果たした。高スクロースおよび低ポリソルベート80、および低バッファー強度が、粒子形成を抑制するのに好ましかった。
pH最適化
1008の凝集挙動に対するpHの影響を、0.1%のNaCl、6.75%のスクロースおよび0.05%のPS80を含有する15mMのクエン酸バッファーにおいて6つのpH条件下(5.0、6.0、6.25、6.50、6.75および7.0)で試験した。最初に1008薬剤物質を、Illustra NAP−10カラム(GE Healthcare)を使用して異なるpHの(PS80を含まない)ビヒクルに交換した。最初にカラムを15mLのクエン酸バッファーで平衡状態にした。次いで1mLの1008DSをカラムに充填した。DS溶液をカラムに完全に移動させた後、カラムの平衡状態化に使用したのと同じ2mLのクエン酸バッファーでカラムを洗浄した。Vivaspin2濃縮装置(10kD MWCO、GE Healthcare)にカラムから溶出した2mL溶液を回収した。次いで2mLの溶出溶液を、9384×gおよび4℃でBeckman GS−15R遠心分離機を使用して。次いでタンパク質の濃度をNanoDrop1000分光光度計で測定した。この試験の最終1008濃度は約70mg/mlであると決定した。PS80を0.05%の最終標的濃度まで製剤にスパイク添加した。動力学的な濁度アッセイを、2箇所セルホルダーおよび温度制御用水浴を備えるPerkinElmer Lambda35分光光度計を使用して実施した。1cmパス長を有するStarnaサブマイクロ体積石英セル(Starna Scientific Ltd.、イングランド)において、250μLの1008製剤または対応するビヒクルを加えた。セルは予め55℃に加熱したセルホルダーに置いた。1008製剤におけるOD350の変化を120分間モニタリングした。次いで異なるpHの製剤に関して得たOD350のデータを、比較用に時間に対してプロットした。
濁度ベースの動力学アッセイを使用して、1008の凝集挙動に対するpHの影響を、pH5.0〜7.0で約70mg/mlの1008を含有する製剤で試験した。濁度アッセイに関して、OD350の急激な増大はタンパク質の主要凝集事象と関係があった。したがって、それぞれの製剤のOD350が増大するのに必要なインキュベーション時間の差は、製剤中タンパク質の異なる物理的安定性を反映し得る。図1中に示したように、試験した製剤条件下でpH6.75において、1008は最も安定していたようであった。OD350の急激な増大前にそれが最長インキュベーション時間を有していたからである。類似した結果での反復実験によって、試験した製剤はpH6.75で最も安定していることを確認した。
試験3
賦形剤および高活性化濃度の影響
半要因試験(表12)を実施して、タンパク質(60〜120mg/ml)、スクロース(4.5〜9.0%)、クエン酸バッファー(10〜20mM)およびポリソルベート80(0.01〜0.1%)の濃度を含む主要製剤条件の影響を調べた。
前述の製剤を調製するため、20%のクエン酸バッファー、pH6.5および20mMのクエン酸バッファー、pH6.5中30%のスクロースストック溶液を最初に調製した。次いでクエン酸バッファー、ストック溶液および注射用水を適切な割合で混合して、PS80を含む5つのバッファーを作製し、それらは10mMのクエン酸中4.5%のスクロース、10mMのクエン酸中9%のスクロース、20mMのクエン酸中4.5%のスクロース、20mMのクエン酸中9%のスクロースおよび15mMのクエン酸中6.75%のスクロースであった。続いて1008DSはIllustra NAP−25カラム(GE Healthcare)を使用してこれら5バッファーに交換し、次にVivaspin6濃縮装置(5kD MWCO、GE Healthcare)を用いて5℃で8000×で濃縮した。各サンプル中のタンパク質濃度は、遠心分離中にNanoDrop2000分光光度計で測定した。最初の4バッファーにおけるサンプルに関して、1008濃度が約70mg/mlに達したとき、サンプルの一部を濃縮装置から除去し、これらを使用して、適量の対応するバッファーを加え10%のPS80をスパイク添加することにより60mg/mlのAPIを含む製剤(表12中の番号1、3、5および7)を調製した。残りのサンプルは130mg/ml超までさらに濃縮し、次いでバッファーおよび10%のPS80を加えて最終製剤(表12中の番号2、4、6および8)を得た。表12中の製剤番号9および10は、バッファー番号5に交換した1008サンプルを約108mg/mlまで濃縮することによって調製し、次いでバッファーおよび10%のPS80と混合して最終製剤濃度に到達させた。全最終製剤のpH値を測定し、6.5に調節した。
前に記載したアッセイから改変した濁度アッセイを、評価用の分析ツールとして使用した。この改変型濁度アッセイでは、12箇所セルCary100UV−Vis分光光度計を使用した。このアッセイ中で使用したキュベットは、ストッパー付き1mm石英キュベットであった。それぞれのキュベット中に、300μLのサンプルを試験用に加えた。55℃でインキュベートした製剤に関する360nmでの光学濃度の変化をモニタリングした。
賦形剤および高活性化濃度の影響
試験3に関する全製剤の測定した1008濃度および最終pHを表13に要約する。低、中および高1008濃度(表4.3.1.−1)および異なるスクロース、PS80濃度およびバッファー強度を有する製剤を55℃でインキュベートし、OD360の変化をモニタリングした。図2に示したように、製剤に関して異なる凝集傾向を観察した。インキュベーション開始後即座にほぼ凝集した2つの製剤は製剤2および6であり、これらは比較的高い1008濃度(約120mg/ml)および低いスクロース濃度(4.5%)を含有していた。他方で、比較的低い1008濃度(約60mg/ml)および高いスクロース濃度(9%)を含有した製剤3および7は、他の製剤よりゆっくりと凝集した。中程度1008濃度とスクロース濃度の他の組合せの凝集傾向は前述の2群の間であった。
それぞれの製剤のOD360が0.25に達した時間を基準として使用し、異なる製剤因子の影響を比較した。これらの結果は、スクロース、次にAPI濃度が1008の凝集に対して最も強い影響があることを示唆した。スクロースおよびAPI濃度の影響は正反対であり、高スクロースおよび低API濃度がより良い製剤安定性に好ましいことを示した。他の2因子、バッファー強度およびPS80はあまり影響を示さなかった。
試験4
活性化およびスクロース濃度に関するさらなる試験
前述の試験3からの結果に基づき、試験4を実施して、pH6.50で0.05%のPS80を含有する15mMのクエン酸バッファーにおける、タンパク質濃度(60〜120mg/ml)およびスクロース濃度(6〜9%のより狭い範囲)の影響をさらに調べた。試験設計を以下の表に示す。
製剤を調製するため、約80gの1008薬剤物質をTFFシステムにロードし、次いでバッファー交換を、薬剤物質のほぼ5倍の体積で6%のスクロースを含有する15mMのクエン酸バッファーを用いて実施した。バッファー交換後、タンパク質溶液の体積を、TFFシステムを使用し初期体積のほぼ半分まで減らした。約44gの濃縮1008溶液を回収し、NanoDrop2000分光光度計により測定したところ、濃縮タンパク質は約112mg/mlであった。次いで濃縮1008溶液を使用して、0、6%および/または40%のスクロースを含有する適量の10%のPS80および15mMのクエン酸バッファーとの混合により製剤番号1、3、5、7〜12を調製して、これらの製剤各々において対応する最終API、スクロースおよびPS80濃度を得た。1008溶液の残りはさらに約132mg/mlに濃縮して、同じ形式で製剤番号2と4を調製した。最後に、約171mg/mlに1008溶液を濃縮することによって製剤番号6を調製し、タンパク質、スクロースおよびPS80の濃度は、0、6%および/または40%のスクロースを含有する10%のPS80および15mMのクエン酸バッファーを用いて調節した。それぞれの製剤における1008の最終濃度はNanoDrop2000分光光度計を用いて測定し、pHは6.5に調節した。
サンプルは、前に記載した濁度アッセイを使用して分析した。8個の選択した製剤(番号1〜4および番号7〜10)も6週間40℃の実験用インキュベーター中で保存し、異なる時間地点でMIF、IEXおよびSEC法を用いて分析した。
表15に列記した12の製剤を調べた。
55℃での濁度アッセイを使用して製剤の凝集をモニタリングした。図3に示すように、同じ熱ストレスの下で、異なる程度の製剤の凝集が示された。(表15中の製剤番号2および6などの)比較的高い1008濃度および低いスクロース濃度を有した製剤は、インキュベーションによって急速に凝集した製剤であった。比較的低い1008濃度および高いスクロース濃度を有した製剤(表15中の製剤番号3および5)は、残りの全ての製剤よりゆっくりと凝集した。様々な製剤に関する濁度アッセイから得た曲線はシグモイド関数に適合させた。移行の中期に対応するインキュベーション時間を、それぞれの製剤に関するT(移行中間点時間)として記録した。結果を表15に列記する。スクロース濃度および1008濃度に対するT値は、タンパク質凝集に対するスクロース濃度および1008濃度の正反対の影響を示した。
55℃での濁度アッセイを使用した試験以外に、40℃での8個の選択した製剤の安定性も6週間にわたりMFI、SECおよびIEXによってモニタリングした。製剤および結果を表16〜23に列記する。濁度アッセイと一致して、MFIの結果は、高1008濃度(約120mg/ml)を有した製剤は、低API濃度を有した製剤と比較してより多くの粒子、特に25μmを超える粒子を形成したことを示した。MFIの結果は、同量の1008を含んだ製剤(製剤番号7〜10)に関するスクロース濃度の明確な影響は示さなかった。図4に示すように、40℃で6週間の保存後、高1008濃度を有した2つの製剤(製剤番号2および4)が最も劣化し、約60mg/mlの1008濃度を有した製剤は他の全ての製剤ほど劣化しなかった。約90mg/mlの1008を有した製剤に関しては、低スクロース濃度(製剤番号7)より若干低い劣化を高スクロース濃度で観察した(製剤番号8)。IEXの結果はSECと同じ傾向を示した。
実施例3
探索的安定性試験
対照製剤
探索的安定性試験を、pH6.25で対照として、60mg/mlの1008溶液、20mMのクエン酸、0.001%のPS20中の製剤に関して実施した。対照製剤は0.2umシリンジフィルターを介して濾過し、40℃、周囲室温、および冷蔵庫で保存した。サンプルは、0、2および5週に40℃サンプルを、ならびに26週に周囲室温および冷蔵庫保存したサンプルを取り出した。選択した安定性試験用サンプルは、A280、SEC、IEX、CGFおよびELISAによりpH、重量オスモル濃度、含有量に関して試験した。結果を表24に示す。
対照製剤に関する別の試験を、pH6.25で、20mMのクエン酸、0.001%のPS20および0.73%のNaCl中60mg/mlの1008溶液に関して実施した。製剤は0.2μmシリンジフィルターを介して濾過し40℃で保存した。サンプルはMFI分析用に1、2、3および4週に取り出した。結果を表25に示す。
9%のスクロースおよび0.5%のポリソルベート80を含む60mg/mlの1008に関する探索的安定性試験
探索的安定性試験を、9%のスクロースおよび0.5%のPS80を含有する60mg/mlの1008製剤に関して実施した。製剤は0.2μmシリンジフィルターを介して濾過し40℃で保存した。サンプルは1.6、2.9および4週に取り出し、MFI、SECおよびIEXによって分析した。結果を表26に作表する。
pH6.25での60mg/mlの1008、9%のスクロース、20mMのクエン酸、0.1%のPS80に関するパイロットスケール安定性試験
60mg/mlの1008溶液のリアルタイム安定性試験を、表27中に示すように、pH6.25で9%のスクロース、20mMのクエン酸、0.1%のPS80を含有する製剤に関して実施した。安定性試験のサンプルは2〜8℃、25℃、40℃およびライトキャビネット(LC)で保存し、それらにさらに3サイクルの凍結−解凍(FT)を施した。サンプルは表28に示したスケジュールに従い取り出し、pH、重量オスモル濃度、MFI、含有量、SEC、IEX、CGEおよび効能などを様々な分析法によって分析した。
初期段階では、60mg/mlの1008溶液のリアルタイム安定性試験を開始した。表29に示すように、製剤はpH6.25で9%のスクロース、20mMのクエン酸、0.1%のPS80を含有した。サンプルは2〜8℃、25℃、40℃およびライトキャビネット(LC)で保存し、それらにさらに3サイクルの凍結−解凍(FT)を施した。サンプルは表30に示したスケジュールに従い取り出し、様々な分析法によって分析した。安定性試験の結果を表31〜33に作表する。
クエン酸バッファー:60mg/mlの1008、15mMのクエン酸/6.75%のスクロース/0.05%のPS80/pH6.75中における探索的安定性試験
15mMのクエン酸/6.75%のスクロース/0.05%のPS80/pH6.75において60mg/mlの1008の製剤に関して、クエン酸バッファーで探索的安定性試験を実施した。安定性試験のサンプルは5℃および25℃で保存し、さらに凍結−解凍サイクルを施した。サンプルは以下の表に示したスケジュールに従い取り出し、外観、pH、重量オスモル濃度、MFI、含有量、SEC、およびIEXに関して分析した。
同様に、15mMのヒスチジン/6.75%のスクロース/0.05%のPS80/pH6.75において60mg/mlの1008の製剤に関して、ヒスチジンバッファーで探索的安定性試験を実施した。安定性試験のサンプルは5℃および25℃で保存した。サンプルはさらに凍結−解凍サイクルを施した。サンプルは以下の表に示したスケジュールに従い取り出し、外観、pH、重量オスモル濃度、MFI、含有量、SEC、およびIEXに関して分析した。
実験データを以下の表に作表する。
実験データは、試験したこれらの製剤の安定性は、60mg/mlのタンパク質濃度で対照製剤の安定性と比較して、特に粒状物質の形成の抑制に関して有意に向上したことを示した。
安定状態を確認した溶液製剤は、表40に示すように15mMのクエン酸/6.75%のスクロース/0.0505%のPS80を含有していた。
本発明およびその実施形態を詳細に記載してきた。しかしながら、本発明の範囲は、本明細書中に記載した任意のプロセス、製造法、組成物、化合物、手段、方法、および/またはステップの特定の実施形態に限定されるとは考えられない。様々な修正、置換、および変更を、本発明の精神および/または本質から逸脱せずに、開示した題材に施すことができる。したがって当業者は、本明細書中に記載する実施形態とほぼ同じ機能を果たす、またはほぼ同じ結果を得る、後の修正、置換、および/または変更を、本発明のこのような関連実施形態に従い利用できることを本開示から容易に理解する。したがって、以下の特許請求の範囲は、本明細書中に開示したプロセス、製造法、組成物、化合物、手段、方法、および/またはステップの修正、置換、および変更をそれらの範囲内に包含すると考えられる。特許請求の範囲は、その趣旨が言及されない限り、記載した順序または要素に限定されると読むべきではない。添付の特許請求の範囲から逸脱せずに、形式および詳細の様々な変更を施すことができることは理解されるはずである。

以下の態様を包含し得る。
[1] (i)配列番号1および配列番号2の配列を含む少なくとも50mg/mlの抗VEGF抗体、(ii)スクロースまたはトレハロース、(iii)クエン酸またはヒスチジンバッファー、ならびに(iv)界面活性剤としてポリソルベート80を含む水性医薬組成物。
[2] 約4.5%〜11%(w/v)のスクロースまたは約5%〜10%(w/v)のトレハロース、0.006%〜0.012%のクエン酸(w/v)、0.2%〜0.6%のクエン酸三ナトリウム二水和物(w/v)、および0.01%〜0.1%のポリソルベート80(w/v)を含み、そのpHが約6.3〜約7.3である、上記[1]に記載の水性医薬組成物。
[3] そのpHが約6.8である、上記[2]に記載の水性医薬組成物。
[4] 前記抗体が配列番号3の配列を含む、上記[1]に記載の水性医薬組成物。
[5] 前記抗VEGF抗体の濃度が約60mg/mlであり、スクロースの濃度が約6.75%(w/v)であり、クエン酸の濃度が約0.01%(w/v)であり、クエン酸三ナトリウム二水和物の濃度が約0.428%(w/v)であり、かつポリソルベート80の濃度が約0.05%(w/v)である、上記[1]に記載の水性医薬組成物。
[6] 前記抗VEGF抗体が配列番号3の配列を含み、pHが約6.8である、上記[5]に記載の水性医薬組成物。
[7] 前記抗VEGF抗体の濃度が約120mg/mlであり、スクロースの濃度が約6.8%(w/v)であり、クエン酸の濃度が約0.01%(w/v)であり、クエン酸三ナトリウム二水和物の濃度が約0.428%(w/v)であり、かつポリソルベート80の濃度が約0.05%(w/v)である、上記[1]に記載の水性医薬組成物。
[8] 前記抗VEGF抗体が配列番号3の配列を含み、pHが約6.8である、上記[7]に記載の水性医薬組成物。
[9] 上記[1]に記載の水性医薬組成物を含む送達デバイス。
[10] 予め充填した注射器である、上記[9]に記載の送達デバイス。
[11] 上記[2]に記載の水性医薬組成物を含む送達デバイス。
[12] 予め充填した注射器である、上記[11]に記載の送達デバイス。
[13] 上記[7]に記載の水性医薬組成物を含む送達デバイス。
[14] 予め充填した注射器である、上記[13]に記載の送達デバイス。
[15] 対象に抗VEGF抗体を送達するための方法であって、上記[1]に記載の水性医薬組成物を前記対象に投与するステップを含む方法。
[16] VEGFによって媒介される眼部疾患または障害を治療する方法であって、上記[1]に記載の水性医薬組成物を対象に投与することを含む方法。
[17] 前記眼部疾患または障害が眼部血管新生疾患である、上記[16]に記載の方法。
[18] 上記[1]に記載の水性医薬組成物の凍結乾燥によって調製される凍結乾燥製剤。
[19] 対象に抗VEGF抗体を送達するための方法であって、上記[2]に記載の水性医薬組成物を前記対象に投与するステップを含む方法。
[20] VEGFによって媒介される眼部疾患または障害を治療する方法であって、上記[2]に記載の水性医薬組成物を対象に投与することを含む方法。
[21] 前記眼部疾患または障害が眼部血管新生疾患である、上記[20]に記載の方法。
[22] 上記[2]に記載の水性医薬組成物の凍結乾燥によって調製される凍結乾燥製剤。
[23] 対象に抗VEGF抗体を送達するための方法であって、上記[7]に記載の水性医薬組成物を前記対象に投与するステップを含む方法。
[24] VEGFによって媒介される眼部疾患または障害を治療する方法であって、上記[7]に記載の水性医薬組成物を対象に投与することを含む方法。
[25] 前記眼部疾患または障害が眼部血管新生疾患である、上記[24]に記載の方法。
[26] 上記[7]に記載の水性医薬組成物の凍結乾燥によって調製される凍結乾燥製剤。

Claims (25)

  1. (i)配列番号4または配列番号3の配列からなる少なくとも50mg/mlの抗VEGF抗体、(ii)スクロースまたはトレハロース、(iii)クエン酸またはヒスチジンバッファー、ならびに(iv)界面活性剤としてポリソルベート80を含む水性医薬組成物。
  2. 約4.5%〜11%(w/v)のスクロースまたは約5%〜10%(w/v)のトレハロース、0.006%〜0.012%のクエン酸(w/v)、0.2%〜0.6%のクエン酸三ナトリウム二水和物(w/v)、および0.01%〜0.1%のポリソルベート80(w/v)を含み、そのpHが約6.3〜約7.3である、請求項1に記載の水性医薬組成物。
  3. そのpHが約6.8である、請求項2に記載の水性医薬組成物。
  4. 前記抗VEGF抗体の濃度が約60mg/mlであり、スクロースの濃度が約6.75%(w/v)であり、クエン酸の濃度が約0.01%(w/v)であり、クエン酸三ナトリウム二水和物の濃度が約0.428%(w/v)であり、かつポリソルベート80の濃度が約0.05%(w/v)である、請求項1に記載の水性医薬組成物。
  5. Hが約6.8である、請求項に記載の水性医薬組成物。
  6. 前記抗VEGF抗体の濃度が約120mg/mlであり、スクロースの濃度が約6.8%(w/v)であり、クエン酸の濃度が約0.01%(w/v)であり、クエン酸三ナトリウム二水和物の濃度が約0.428%(w/v)であり、かつポリソルベート80の濃度が約0.05%(w/v)である、請求項1に記載の水性医薬組成物。
  7. Hが約6.8である、請求項に記載の水性医薬組成物。
  8. 請求項1に記載の水性医薬組成物を含む送達デバイス。
  9. 予め充填した注射器である、請求項に記載の送達デバイス。
  10. 請求項2に記載の水性医薬組成物を含む送達デバイス。
  11. 予め充填した注射器である、請求項10に記載の送達デバイス。
  12. 請求項に記載の水性医薬組成物を含む送達デバイス。
  13. 予め充填した注射器である、請求項12に記載の送達デバイス。
  14. 対象に抗VEGF抗体を送達するための方法で用いるための請求項1に記載の水性医薬組成物であって、前記方法は、前記水性医薬組成物を前記対象に投与するステップを含む、水性医薬組成物
  15. VEGFによって媒介される眼部疾患または障害を治療する方法で用いるための請求項1に記載の水性医薬組成物であって、前記方法は、前記水性医薬組成物を対象に投与することを含む、水性医薬組成物
  16. 前記眼部疾患または障害が眼部血管新生疾患である、請求項15に記載の水性医薬組成物
  17. 請求項1に記載の水性医薬組成物の凍結乾燥によって調製される凍結乾燥製剤。
  18. 対象に抗VEGF抗体を送達するための方法で用いるための請求項2に記載の水性医薬組成物であって、前記方法は、前記水性医薬組成物を前記対象に投与するステップを含む、水性医薬組成物
  19. VEGFによって媒介される眼部疾患または障害を治療する方法で用いるための請求項2に記載の水性医薬組成物であって、前記方法は、前記水性医薬組成物を対象に投与することを含む、水性医薬組成物
  20. 前記眼部疾患または障害が眼部血管新生疾患である、請求項19に記載の水性医薬組成物
  21. 請求項2に記載の水性医薬組成物の凍結乾燥によって調製される凍結乾燥製剤。
  22. 対象に抗VEGF抗体を送達するための方法で用いるための請求項に記載の水性医薬組成物であって、前記方法は、前記水性医薬組成物を前記対象に投与するステップを含む、水性医薬組成物
  23. VEGFによって媒介される眼部疾患または障害を治療する方法で用いるための請求項に記載の水性医薬組成物であって、前記方法は、前記水性医薬組成物を対象に投与することを含む、水性医薬組成物
  24. 前記眼部疾患または障害が眼部血管新生疾患である、請求項23に記載の水性医薬組成物
  25. 請求項に記載の水性医薬組成物の凍結乾燥によって調製される凍結乾燥製剤。
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