JP7015316B2

JP7015316B2 - ナノグを導入した羊水内胎児由来間葉系幹細胞から獲得したエクソソーム内に含まれた育毛促進用組成物の製造方法

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Publication number: JP7015316B2
Application number: JP2019558322A
Authority: JP
Inventors: スン・クォン・ユ; ジュン－ヒョン・パク; ジ－フン・チャン; ウン・キョン・ジュン
Original assignee: ステムラボ・インコーポレイテッド
Priority date: 2017-01-11
Filing date: 2018-01-11
Publication date: 2022-02-02
Anticipated expiration: 2038-01-11
Also published as: JP2020505058A; WO2018131900A3; KR20180082980A; CN110191714A; US20190330594A1; WO2018131900A2; KR102037038B1; EP3569239A4; EP3569239A2

Description

本発明は、逆分化因子ナノグ（Ｎａｎｏｇ）を過発現させた羊水内胎児由来間葉系幹細胞の培養液内のエクソソーム分離を介した育毛促進用組成物およびその製造方法に関する。

幹細胞（ｓｔｅｍｃｅｌｌ）とは、身体内での特徴的な条件および環境が与えられたり、自体内での必要に応じて程度による無限自己増殖能力および身体内で必要な特定細胞および組織への分化能を有している細胞を意味する。幹細胞は、その種類を３つに分類しており、その種類としては、初期胚芽から分離した胚芽幹細胞（ｅｍｂｒｙｏｎｉｃｓｔｅｍｃｅｌｌ，ＥＳ細胞）、胚芽期の原始生殖細胞から分離した胚芽生殖細胞（ｅｍｂｒｙｏｎｉｃｇｅｒｍｃｅｌｌ．ＥＧ細胞）、および成体の骨髄から分離した多能性成体幹細胞（ｍｕｌｔｉｐｏｔｅｎｔａｄｕｌｔｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒｃｅｌｌ，ＭＡＰＣ細胞）がある。

それらのうち成体幹細胞とよく知られた間葉系幹細胞は、既に臨床的に細胞治療剤および培養液治療剤として多様に活用されており、その効果も、相当数立証された。この中間葉細胞は、様々な身体組織から分離が可能なものと確認され、代表的には、骨髄、脂肪、臍帯血、羊水などで同定が可能である。また、その細胞の性格および特性が相当数一致しており、治療剤としての活用価値も、同様または同一であることが既によく知られている。

それらのうち羊水間葉系幹細胞は、様々な長所を有しているので、研究的、商業的活用価値に優れている。羊水間葉系幹細胞は、妊婦の羊水から分離して体外培養が可能であるが、羊水は、産婦から容易に獲得することができる。また、羊水は、胎児の健康に関する様々な情報を知ることができる検査用に使用されるが、これを患者の同意によって研究用目的に使用が可能であり、獲得する方法も、非常に簡単であるので、羊水を獲得した当日に体外培養が可能である。このような長所によって羊水由来間葉系幹細胞を治療用製剤として活用することが適当であると判断することができる。

ヒトの毛髪は、必要部位に一定数の毛髪を維持することとなる。毛髪の成長は、その組織によってそれぞれの独自の成長周期があるが、これを毛周期（ｈａｉｒｃｙｃｌｅ）と言い、発生期→成長期→退行期→休止期の段階を有している。このような機作を毛根の付近に位置する毛乳頭細胞（ｄｅｒｍａｌｐａｐｉｌｌａ）が周囲細胞に信号を伝達することによって管理することとなるが、この細胞が受け入れる成長因子および自体の数が毛髪の成長に大きい役割を行うこととなる。脱毛が進行し始めると、毛乳頭が小さくなり、毛乳頭が小さくなると、髪の毛の太さも細くなると同時に、毛周期も短くなり、新しく育ってきた毛は、細くなり始める。このような進行過程によってハゲ頭が進行されると、髪の毛は、綿毛に変わり、毛髪の成長株期は、さらに短くなって、少し育った後、毛髪は脱落する。ハゲ頭の最も大きい原因は、遺伝であり、男性ホルモンであるテストステロンが毛乳頭細胞の成長を抑制して脱毛を誘導するという報告もある。このような身体内の原因以外にも、環境による脱毛も多数存在する。特に老化は、頭皮細胞の減少と頭皮脂肪質の蓄積量が増加するにつれて、毛包組織への酸素供給が円滑にならず、これに伴い、毛包組織が栄養供給を受けることに問題が生じて、脱毛が生成されると知られている。これに加えて、ストレス、不規則な生活、環境汚染など外的要因も、脱毛の原因となり得るという見解も多数存在する。

ハゲ頭や脱毛現象に当事者が感じる精神的な苦痛は非常に大きいが、現在開発されて販売されている発毛剤は、大概発毛効果が一時的であるか、または制限的であるので、ユーザの欲求を十分に満足させていない。ある程度効果が検証されて使用されている塗る発毛剤であるミノキシジルは、血管拡張作用によって、経口用であるプロペシアは、フィナステリドを主剤とした男性ホルモンの活性化抑制作用によって脱毛防止効果に優れた製剤として多く用いられている。しかしながら、前述した発毛剤は、脱毛の防止にはある程度の効果を示すが、発毛と関連した効果は微小である。すなわち、前記発毛剤を使用してから中断するときには、再び脱毛現象が起こることとなり、長期使用時には、副作用の憂慮が大きく、また、長期使用による費用問題もあるので、大概の患者が治療をあきらめているのが現状である。

これより、本発明者らは、ナノグ（Ｎａｎｏｇ）を導入して細胞の生長および寿命を延ばした羊水内胎児由来間葉系幹細胞から分離したコンディションド培地をエクソソーム単位にまで分離、獲得した後、発毛効能を評価し、それに対する主要因子を選別した。

韓国特許公開第２０１３－０１１６９７２号公報韓国特許登録第１４２２５５９号公報

本発明の他の目的は、ナノグ（Ｎａｎｏｇ）が過発現した羊水内胎児由来間葉系幹細胞から生産されたヒト成長因子が含有されたエクソソームの製造方法を提供することにある。

本発明のさらに他の目的は、ナノグ（Ｎａｎｏｇ）が過発現した羊水内胎児由来間葉系幹細胞から生産されたヒト成長因子が含有されたエクソソームを有効成分として含む育毛促進用組成物、およびその化粧料組成物または薬学的組成物を提供することにある。

本発明は、（ａ）妊婦から得た羊水から胎児由来細胞を分離する段階；
（ｂ）前記分離した胎児由来細胞をＦＢＳ（ｆｅｔａｌｂｏｖｉｎｅｓｅｒｕｍ）および、ｂＦＧＦ（ｂａｓｉｃｆｉｂｒｏｂｌａｓｔｇｒｏｗｔｈｆａｃｔｏｒ）を含む培地で継代培養して、羊水内胎児由来間葉系幹細胞を収得する段階；
（ｃ）前記収得した羊水内胎児由来間葉系幹細胞にナノグ（Ｎａｎｏｇ）を導入して、ナノグ（Ｎａｎｏｇ）が過発現した羊水内胎児由来間葉系幹細胞を収得する段階；
（ｄ）前記収得したナノグ（Ｎａｎｏｇ）が過発現した羊水内胎児由来間葉系幹細胞を無血清培地で１～５日間培養して、コンディションド培地を製造する段階；および
（ｅ）前記コンディションド培地からエクソソームを分離する段階を含む間葉系幹細胞由来エクソソームの製造方法を提供する。

本発明において用語「間葉系幹細胞（ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌｓｔｅｍｃｅｌｌｓ；ＭＳＣｓ）」というのは、骨、軟骨、脂肪、骨髄間質、筋肉、神経などを作るのに起源となる細胞であって、成人では、一般的に骨髄に留まっているが、臍帯血、末梢血液、その他の組織などにも存在し、これらから収得できる細胞を意味する。妊婦から得た羊水には、胎児のからだから出てきた様々な化学物質が含まれていて、人体にある大概の細胞を生成することができ、採取が容易である。また、羊水には、異種（ｈｅｔｅｒｏｇｅｎｏｕｓ）形状の細胞が存在するが、本発明者らは、そのうち間葉系幹細胞の特徴である線維芽細胞（ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ）と同じ形状を有する同種（ｈｏｍｏｇｅｎｏｕｓ）の間葉系幹細胞が存在することを確認した。

本発明において用語「逆分化因子ナノグ（Ｎａｎｏｇ）」は、２００６年にＹａｍａｎａｋａ教授チームにより導入された概念である逆分化（Ｒｅｐｒｏｇｒａｍｍｉｎｇ）から始まった。成体のすべての組織は、正常発達過程を経て分化しない状態から次第に分化して、各機能が専門化した細胞に変化する。そのうち受精卵の細胞は、全能性（Ｔｏｔｉｐｏｔｅｎｔ）を有しており、その後、発達段階が進行されるにつれて、胚盤胞になると、内部細胞塊（ｉｎｎｅｒｃｅｌｌｍａｓｓ）と外側細胞とに区分が可能であるが、この際の内部細胞塊細胞が胚芽体細胞と生殖細胞として発生し得、これを万能性（ｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔ）と呼ぶ。この胚芽幹細胞は、万能性特有の遺伝子発現様相を示すが、その代表的な例がＯｃｔ４、Ｓｏｘ２、Ｎａｎｏｇ、Ｌｉｎ２８等である。逆分化は、体細胞にこのような特異的な遺伝子発現を誘導して、胚芽幹細胞と類似した性質に戻す技術といえる。Ｎａｎｏｇは、それによる一連の研究で使用されてきた多様な因子の一つであって、Ｖｉｒａｌｖｅｃｔｏｒを利用して細胞内に遺伝子を導入して過発現させる技術に本研究チームは活用した。

本発明において用語「培地（ｃｕｌｔｕｒｅｍｅｄｉｕｍ）」は、ｉｎｖｉｔｒｏ上で羊水内胎児由来細胞の成長および生存を支持できるようにする培地を意味し、羊水内胎児由来細胞の培養に適切な当分野において使用される通常の培地を全部含む。細胞の種類によって培地および培養条件を選択することができる。培養に使用される培地は、好ましくは細胞培養最小培地（ｃｅｌｌｃｕｌｔｕｒｅｍｉｎｉｍｕｍｍｅｄｉｕｍ；ＣＣＭＭ）であり、一般的に炭素源、窒素源および微量元素成分を含む。このような細胞培養最小培地には、例えば、ＤＭＥＭ（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓＭｏｄｉｆｉｅｄＥａｇｌｅ’ｓＭｅｄｉｕｍ）、ＭＥＭ（ＭｉｎｉｍａｌｅｓｓｅｎｔｉａｌＭｅｄｉｕｍ）、ＢＭＥ（ＢａｓａｌＭｅｄｉｕｍＥａｇｌｅ）、ＲＰＭＩ１６４０，Ｆ－１０，Ｆ－１２，αＭＥＭ（αＭｉｎｉｍａｌｅｓｓｅｎｔｉａｌＭｅｄｉｕｍ）、ＧＭＥＭ（Ｇｌａｓｇｏｗ’ｓＭｉｎｉｍａｌｅｓｓｅｎｔｉａｌＭｅｄｉｕｍ）およびＩＭＥＭ（Ｉｓｃｏｖｅ’ｓＭｏｄｉｆｉｅｄＤｕｌｂｅｃｃｏ’ｓＭｅｄｉｕｍ）等があるが、これらに制限されない。また、前記培地は、ペニシリン（ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｎ）、ストレプトマイシン（ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｉｎ）またはゲンタマイシン（ｇｅｎｔａｍｉｃｉｎ）等の抗生剤を含むことができる。

本発明において、羊水内胎児由来間葉系幹細胞は、羊水から分離した細胞をＦＢＳおよびｂＦＧＦを含有する塩基性培地で培養することによって収得することができ、好ましくは１０％ＦＢＳが含まれた低グルコースＤＭＥＭ培地にｂＦＧＦ４ｎｇ／ｍｌ、セレニウム５ｎｇ／ｍｌ、アスコルビン酸５０μｇ／ｍｌを添加して培養することによって収得することができる。本発明の好ましい実施例として、前記低グルコースＤＭＥＭ培地は、１０％ＦＢＳ、１％Ｌ－グルタミンおよび１％ペニシリン－ストレプトマイシンとｂＦＧＦ４ｎｇ／ｍｌ、セレニウム５ｎｇ／ｍｌ、アスコルビン酸５０μｇ／ｍｌ溶液をさらに含むことができる。

前記段階（ｃ）のナノグ（Ｎａｎｏｇ）導入の方法は、レトロウイルスベクター（Ｒｅｔｒｏｖｉｒａｌｖｅｃｔｏｒ）を利用することができる。

さらに具体的に、段階（ｄ）で、段階（ｃ）で収得した間葉系幹細胞を無血清培地で３日間培養して、コンディションド培地を製造することができる。

具体的に、本発明は、ナノグ（Ｎａｎｏｇ）が導入された胎児由来間葉系幹細胞を適正な培地で培養して、Ａｐｏ－１／Ｆａｓ、表皮細胞成長因子（ＥＧＦ）、ＩＰ－１０（Ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ－γ ｉｎｄｕｃｉｂｌｅｐｒｏｔｅｉｎ－１０）、レプチン（Ｌｅｐｔｉｎ）、ＭＩＰ４、ＭＭＰ３、ランテス（Ｒａｎｔｅｓ）、インターフェロン－ガンマ（ＩＦＮγ）、ヒト形質転換成長因子－ベータ（ＴＧＦ－β）、腫瘍壊死因子－アルファ（ＴＮＦα）、腫瘍壊死因子受容体Ｉ（ＴＮＦＲＩ）、腫瘍壊死因子受容体ＩＩ（ＴＮＦＲＩＩ）、細胞接着因子－１（ＩＣＡＭ－１）、血管細胞接着因子－１（ＶＣＡＭ－１）、脈管内皮細胞成長因子（ＶＥＧＦ）、インターロイキン－１ベータ（ＩＬ－１β）、インターロイキン－１受容体アルファ（ＩＬ－１Ｒα）、ＩＬ－２、ＩＬ－３、ＩＬ－４、ＩＬ－５、ＩＬ－６、ＩＬ－６Ｒ、ＩＬ－７、ＩＬ－８、ＩＬ－１２およびＩＬ－１５等を合成し、さらに好ましくは、毛髪成長促進成長因子であるｂＦＧＦ（ｂａｓｉｃＦｉｂｒｏｂｌａｓｔＧｒｏｗｔｈＦａｃｔｏｒ）、ＩＧＦ（Ｉｎｓｕｌｉｎ－ｌｉｋｅＧｒｏｗｔｈＦａｃｔｏｒ）、ＰＤＧＦ－ＡＡ（Ｐｌａｔｅｌｅｔ－ｄｅｒｉｖｅｄＧｒｏｗｔｈＦａｃｔｏｒ）、Ｗｎｔ７ａなどを合成することができるように操作する方法を提供する。羊水内胎児由来間葉系幹細胞のコンディションド培地を利用してＥＬＩＳＡ（Ｅｎｚｙｍｅ－ＬｉｎｋｅｄＩｍｍｕｎｏＳｏｒｂｅｎｔＡｓｓａｙ）を通じて成分を明らかにし、ｉｎｖｉｔｒｏ上で確認が可能である。

本発明では、胎児由来間葉系幹細胞のコンディションド培地を得るために、羊水から分離して収得した間葉系幹細胞をアミノ酸またはその類似体およびビタミンまたはその類似体を含むＤＭＥＭ栄養素混合液を含有する無血清培地を利用することが好ましい。この際、Ｌ－グルタミンなどの酸化栄養源、ピルビン酸ナトリウムなどのエネルギー代謝物質、重炭酸ナトリウムなどの炭素調節源を添加することが可能である。本混合液は、細胞の成長と恒常性の維持を助け、間葉系幹細胞の初期培養後に継代培養において細胞の安定性および維持力の増進に関与される様々な無機質およびアミノ酸、胎児由来間葉系幹細胞で分泌される成長因子のさらに高い生産を促進できるビタミン系の栄養素と他の因子を一定の割合で混合して形成される。

本発明で用語「コンディションド培地（ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄｍｅｄｉｕｍ）」とは、細胞を液体懸濁培養して細胞分裂最盛期である対数増殖期に到達したとき、分裂細胞を遠心分離または濾過して除去し、培養液だけを採取して、これを培養基質に混合した培地をいう。これは、分裂中の細胞から培地内で抽出されて出る未知の成長要素（ｇｒｏｗｔｈｆａｃｔｏｒ）を利用するものであって、低密度の細胞プレーティングや原形質体の培養に多く用いられる。

本発明のコンディションド培地には、胎児由来間葉系幹細胞に由来した成長因子などの物質が豊富に含有されており、好ましくはＡｐｏ－１／Ｆａｓ、表皮細胞成長因子（ＥＧＦ）、ＩＰ－１０（Ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ－γｉｎｄｕｃｉｂｌｅｐｒｏｔｅｉｎ－１０）、レプチン（Ｌｅｐｔｉｎ）、ＭＩＰ４、ＭＭＰ３、ランテス（Ｒａｎｔｅｓ）、インターフェロン－ガンマ（ＩＦＮγ）、ヒト形質転換成長因子－ベータ（ＴＧＦ－β）、腫瘍壊死因子－アルファ（ＴＮＦα）、腫瘍壊死因子受容体Ｉ（ＴＮＦＲＩ）、腫瘍壊死因子受容体ＩＩ（ＴＮＦＲＩＩ）、細胞接着因子－１（ＩＣＡＭ－１）、血管細胞接着因子－１（ＶＣＡＭ－１）、脈管内皮細胞成長因子（ＶＥＧＦ）、インターロイキン－１ベータ（ＩＬ－１β）、インターロイキン－１受容体アルファ（ＩＬ－１Ｒα）、ＩＬ－２、ＩＬ－３、ＩＬ－４、ＩＬ－５、ＩＬ－６、ＩＬ－６Ｒ、ＩＬ－７、ＩＬ－８、ＩＬ－１２およびＩＬ－１５を含む。最も好ましくは毛髪成長促進成長因子であるｂＦＧＦ（ｂａｓｉｃＦｉｂｒｏｂｌａｓｔＧｒｏｗｔｈＦａｃｔｏｒ）、ＩＧＦ（Ｉｎｓｕｌｉｎ－ｌｉｋｅＧｒｏｗｔｈＦａｃｔｏｒ）、ＰＤＧＦ－ＡＡ（Ｐｌａｔｅｌｅｔ－ｄｅｒｉｖｅｄＧｒｏｗｔｈＦａｃｔｏｒ）、Ｗｎｔ７ａなどを含む。

間葉系幹細胞のコンディションド培地の生産において主な限界点は、幹細胞の老化と大きく関連がある。細胞の老化は、細胞成長の低下を誘発し、分泌する成長因子およびサイトカイン（ｃｙｔｏｋｉｎｅ）の量を減少させ、細胞の死滅を引き起こす。また、細胞由来コンディションド培地の量および質的損失を誘発し、均一な組成を維持しにくくし、これは、結局、コンディションド培地およびこれを有効成分として含む組成物の大量生産および産業化時に困難を招く。これより、本発明者らは、以前の研究で間葉系幹細胞の培養に逆分化技術を導入した。前記先行研究によれば、羊水由来間葉系幹細胞に多様な万能性因子であるＯｃｔ４、ナノグ（Ｎａｎｏｇ）、Ｌｉｎ２８を導入し、そのうちナノグ（Ｎａｎｏｇ）を導入した羊水由来間葉系幹細胞は、細胞株を確立可能であり、持続的な培養が可能であるのに対し、他の遺伝子の導入は、細胞死滅が由来され、持続的な細胞培養が困難であることを確認した。さらに、ナノグ（Ｎａｎｏｇ）を導入した羊水幹細胞において細胞成長の増大および幹細胞能の保存効果が既存の羊水幹細胞よりも向上したことを確認した。これを通じて、ナノグが導入された羊水由来幹細胞のコンディションド培地の生産が持続され得、コンディションド培地を通じて培地に含まれた多量の成長因子などを獲得することができることを証明した。

本発明において用語「エクソソーム（ｅｘｏｓｏｍｅ）」とは、細胞間相互作用のための一つの伝達体系物質であって、リン脂質の膜で円形状を成しているナノサイズの袋である。エクソソームの内部は、一般的にｍＲＮＡ、ｓｈＲＮＡ、プロテインなどが含まれており、このような物質が細胞内部、外部から伝達されて、その機能を行う。細胞外部に排出されるエクソソームは、他の細胞に物質を伝達することとなり、提供された細胞は、それに合う反応機作を示すこととなる。現在までエクソソームの多様な機能が研究されてきており、一般的に癌のバイオマーカー、傷治癒、プロテイン伝達、ｓｈＲＮＡの伝達などが知られている。細胞のセクレトームと比較したとき、細胞外部環境に対する抵抗性が相当に高く、他の細胞への吸着性にも優れている。それに加えて、濃度の調節が容易であるので、機能性製剤として活用できる価値が十分である。

具体的に、前記段階（ｅ）で分離したエクソソームは、ｂＦＧＦ（ｂａｓｉｃｆｉｂｒｏｂｌａｓｔｇｒｏｗｔｈｆａｃｔｏｒ、塩基性線維芽細胞成長因子）、ＩＧＦ（Ｉｎｓｕｌｉｎ－ｌｉｋｅＧｒｏｗｔｈＦａｃｔｏｒ）、Ｗｎｔ７ａ（Ｗｉｎｇｌｅｓｓ－ｔｙｐｅＭＭＴＶｉｎｔｅｇｒａｔｉｏｎｓｉｔｅｆａｍｉｌｙｍｅｍｂｅｒ７Ａ）およびＰＤＧＦ－ＡＡ（Ｐｌａｔｅｌｅｔ－ｄｅｒｉｖｅｄＧｒｏｗｔｈＦａｃｔｏｒ）よりなる群から選ばれたいずれか一つ以上のヒト成長因子を含有することができるが、これに制限されるものではない。

本発明の具体的な一実施例によれば、分離したエクソソームの内部には、毛髪成長因子と関連するｍＲＮＡ、成長因子などが多数含まれており、毛乳頭細胞に処理したとき、毛乳頭細胞の成長を促進させると共に、毛髪成長信号体系も活性化されることを確認することができた。

また、本発明の一実施例において、コンディションド培地からエクソソームを除去した後、成長因子などを分析した結果、エクソソームの除去後、成長因子などが大幅減少することを確認し、エクソソームの内部に多量の成長因子などが含まれていることを確認した。これに伴い、エクソソームを分離して利用する場合、エクソソームに含有された成長因子などをより効率的に活用できる可能性を確認した。

また、本発明は、羊水内胎児由来間葉系幹細胞から分離したエクソソームを有効成分として含む育毛促進用化粧料組成物を提供する。

前記化粧料組成物は、育毛促進、毛髪再生および脱毛防止効果を有する毛髪化粧品に多様に用いられる。

前記化粧料組成物は、全体化粧料組成物１００重量部に対して０．００１～１０重量部を含むことができる。

前記化粧料組成物は、脂肪物質、有機溶媒、溶解剤、濃縮剤、ゲル化剤、軟化剤、抗酸化剤、懸濁化剤、安定化剤、発泡剤（ｆｏａｍｉｎｇａｇｅｎｔ）、芳香剤、界面活性剤、水、イオン型または非イオン型乳化剤、充填剤、金属イオン封鎖剤、キレート化剤、保存剤、ビタミン、遮断剤、湿潤化剤、エッセンシャルオイル、染料、顔料、親水性または親油性活性剤、脂質小胞または化粧品に通常使用される任意の他の成分のような化粧品学または皮膚科学分野において通常的に使用される補助剤を含有することができる。前記補助剤は、化粧品学または皮膚科学分野において一般的に使用される量で導入される。

前記化粧料組成物の外形は、化粧品学または皮膚科学的に許容可能な媒質または基剤を含有する。これは、局所適用に適合したすべての剤形であって、例えば、溶液、ゲル、固体、混練無水生成物、水相に油相を分散させて得たエマルジョン、懸濁液、マイクロエマルジョン、マイクロカプセル、微細顆粒球またはイオン型（リポソーム）および非イオン型の小胞分散剤の形態で、またはクリーム、スキン、ローション、パウダー、軟膏、スプレーまたはコンシーラースティックの形態で提供され得る。これらの組成物は、当該分野の通常の方法によって製造され得る。本発明による組成物は、また、泡沫（ｆｏａｍ）の形態で、または圧縮された推進剤をさらに含有するエアロゾル組成物の形態で使用することができる。

本発明の化粧料組成物は、その剤形において特に限定されず、例えば、柔軟化粧水、収れん化粧水、栄養化粧水、栄養クリーム、マッサージクリーム、エッセンス、アイクリーム、アイエッセンス、クレンジングクリーム、クレンジングフォーム、クレンジングウォーター、パック、パウダー、ボディーローション、ボディークリーム、ボディーオイル、ボディーエッセンス、ヘアトニック、ヘアコンディショナー、ヘアエッセンス、ヘアローション、ヘア栄養ローション、ヘアシャンプー、ヘアリンス、ヘアトリートメント、ヘアクリーム、ヘア栄養クリーム、ヘアモイスチャークリーム、ヘアマッサージクリーム、ヘアワックス、ヘアエアロゾル、ヘアパック、ヘア栄養パック、ヘア石鹸、ヘアクレンジングフォーム、ヘアオイル、毛髪乾燥剤、毛髪保存処理剤、毛髪染色剤、毛髪用ウェーブ剤、毛髪脱色剤、ヘアジェル、ヘアグレーズ、ヘアドレッシング、ヘアラッカー、ヘアモイスチャライザー、ヘアムースまたはヘアスプレーなどの化粧品で剤形化され得る。

上述したような化粧料組成物は、皮膚に塗る形態で適用され得、マイクロニードルなどを利用して皮膚内部に吸収される形態で適用されることもできる。

また、本発明は、羊水内胎児由来間葉系幹細胞から分離したエクソソームを有効成分として含む育毛促進用薬学的組成物を提供する。

前記薬学的組成物は、育毛促進、毛髪再生および脱毛防止効果を有する毛髪医薬品に多様に用いられる。

前記薬学的組成物は、全体薬学的組成物１００重量部に対して０．００１～１０重量部を含むことができる。

前記薬学的組成物は、育毛促進用錠剤、カプセル剤、散剤、顆粒剤、注射剤、ジェル、エマルジョン、シロップ、エアロゾル、パッチ、噴霧剤、クリーム、軟膏剤、硬膏剤、ローション剤、リニメント剤、パスタ（ｐａｓｔｅ）剤またはカタプラズマ剤の形態の薬学組成物で製造して使用することができるが、これらに限定されるものない。

前記薬学的組成物を製剤化する場合には、通常使用する充填剤、増量剤、結合剤、湿潤剤、崩解剤、界面活性剤などの希釈剤または賦形剤を使用して調製される。経口投与のための固形製剤には、錠剤、丸剤、散剤、顆粒剤、カプセル剤などが含まれ、このような固形製剤は、一つ以上の化合物に少なくとも一つ以上の賦形剤、例えば、デンプン、炭酸カルシウム、スクロース（ｓｕｃｒｏｓｅ）またはラクトース（ｌａｃｔｏｓｅ）、ゼラチンなどを混ぜて調製される。また、単純な賦形剤以外に、ステアリン酸マグネシウム、タルクなどのような潤滑剤も使用される。経口投与のための液状製剤としては、懸濁剤、内用液剤、乳剤、シロップ剤などが該当するが、頻繁に使用される単純希釈剤である水、リキッドパラフィン以外に、様々な賦形剤、例えば湿潤剤、甘味剤、芳香剤、保存剤などを含むことができる。非経口投与のための製剤としては、滅菌された水溶液、非水性溶剤、懸濁剤、乳剤、凍結乾燥製剤、坐剤が含まれる。非水性溶剤、懸濁溶剤としては、プロピレングリコール（ｐｒｏｐｙｌｅｎｅｇｌｙｃｏｌ）、ポリエチレングリコール、オリーブオイルのようなじ植物性オイル、エチルオレートのような注射可能なエステルなどを使用することができる。坐剤の基剤としては、ウィテプソル（ｗｉｔｅｐｓｏｌ）、マクロゴール、ツイン（ｔｗｅｅｎ）６１、カカオ脂、ラウリン脂、グリセロゼラチンなどが使用され得る。

前記薬学的組成物の投与形態は、これらの薬学的許容可能な塩、単独または他の薬学的活性化合物と結合だけでなく、適当な集合の形態で使用することができる。前記塩としては、薬学的に許容されるものであれば、特に限定されず、例えば塩酸、硫酸、硝酸、リン酸、フッ化水素酸、臭化水素酸、ギ酸、酢酸、酒石酸、乳酸、クエン酸、フマル酸、マレイン酸、コハク酸、メタンスルホン酸、ベンゼンスルホン酸、トルエンスルホン酸、ナフタレンスルホン酸などを使用することができる。

前記薬学的組成物は、目的に応じて非経口投与したり、経口投与することができ、一日に体重１ｋｇ当たり０．１～５００ｍｇ、１～１００ｍｇの量で投与されるように１～数回に分けて投与することができる。特定の患者に対する投与用量は、患者の体重、年齢、性別、健康状態、食事、投与時間、投与方法、排泄率、疾患の重症度などによって変化することができる。

前記薬学的組成物は、ラット、マウス、家畜、ヒトなどの哺乳動物に非経口、経口などの多様な経路で投与することができ、投与のすべての方式は、予想できるが、例えば、経口、直腸または静脈、筋肉、皮下、子宮内硬膜または脳血管内（ｉｎｔｒａｃｅｒｅｂｒｏｖｅｎｔｒｉｃｕｌａｒ）注射によって投与することができる。

本発明は、羊水内胎児由来間葉系幹細胞に逆分化因子であるナノグ（Ｎａｎｏｇ）を導入して過発現することによって、間葉系幹細胞の成長、幹細胞性、寿命を増大し、これから分泌される成長因子の発現を増大した。また、ナノグ（Ｎａｎｏｇ）が導入された羊水内胎児由来間葉系幹細胞を培養したコンディションド培地から分離したエクソソームも毛髪成長促進効果を示すので、育毛促進用化粧料組成物および薬学的組成物として活用が可能である。

図１は、本発明の一実施例によって細胞株でＮａｎｏｇの過発現の有無を確認した結果を示す。図２は、本発明の一実施例によって羊水由来間葉系幹細胞およびナノグ羊水由来間葉系幹細胞の平均サイズおよび個数を測定した結果を示す。図３は、本発明の一実施例によってエクソソーム内部の物質をＰＣＲを通じて分析した結果を示す。図４は、本発明の一実施例によってエクソソーム内部の物質をＥＬＩＳＡを通じて分析した結果を示す。図５は、本発明の一実施例によって獲得されたエクソソームの機能を確認した結果を示す。図６は、本発明の一実施例によって得られたエクソソームの毛乳頭成長と共に、毛髪生成マーカーの変化をＡＰｓｔａｉｎｉｎｇを通じて確認した結果を示す。図７は、本発明の一実施例によって得られたエクソソームのマーカーの変化を確認した結果を示す。

別途定義されない限り、本明細書で使用されたすべての技術的および科学的用語は、本発明の属する技術分野において熟練した専門家によって通常的に理解されるものと同じ意味を有する。一般的に、本明細書で使用された命名法は、本技術分野においてよく知られており、通常的に使用されるものである。

［実施例］
実施例１：Ｎａｎｏｇが導入された羊水由来間葉系幹細胞株の確立
本発明者らは、細胞拡張に容易な羊水由来間葉系幹細胞株を獲得するために、羊水由来間葉系幹細胞にレトロウイルスベクターシステム（Ｒｅｔｒｏｖｉｒａｌｖｅｃｔｏｒｓｙｓｔｅｍ）を利用してナノグ（Ｎａｎｏｇ）遺伝子を導入し、ナノグ（Ｎａｎｏｇ）の過発現を誘導し、これにより、ナノグ（Ｎａｎｏｇ）導入羊水由来間葉系幹細胞株を確立した。具体的な方法は、次の通りである。

妊婦から得られた羊水内から分離した胎児由来細胞を１０％ＦＢＳ（Ｆｅｔａｌｂｏｖｉｎｅｓｅｒｕｍ、ウシ胎児血清）、１％ペニシリン／ストレプトマイシン、１％Ｌ－グルタミン、ｂＦＧＦ（ｂａｓｉｃｆｉｂｒｏｂｌａｓｔｇｒｏｗｔｈｆａｃｔｏｒ、塩基性線維芽細胞成長因子）４ｎｇ／ｍｌ、セレニウム（Ｓｅｌｅｎｉｕｍ）５ｎｇ／ｍｌ、アスコルビン酸（Ａｓｃｏｒｂｉｃａｃｉｄ）５０μｇ／ｍｌが含まれた低グルコース（ｌｏｗｇｌｕｃｏｓｅ）ＤＭＥＭ（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓＭｏｄｉｆｉｅｄＥａｇｌｅ’ｓＭｅｄｉｕｍ）培地で継代培養して、羊水内胎児由来間葉系幹細胞を収得した。

レトロウイルスベクターシステム（Ｒｅｔｒｏｖｉｒａｌｖｅｃｔｏｒｓｙｓｔｅｍ）を利用して前記収得した羊水由来間葉系幹細胞にナノグ（Ｎａｎｏｇ）遺伝子を導入してナノグ（Ｎａｎｏｇ）の過発現を誘導することによって、ナノグ（Ｎａｎｏｇ）導入羊水由来間葉系幹細胞株を製造した。

具体的に、ｐＢＳ－Ｎａｎｏｇベクター（Ｙａｍａｎａｋａｌａｂ’ｓｐｌａｓｍｉｄｓｔｏｃｋ＃Ａ４，ＪＡＰＡＮ）で制限酵素（ｒｅｓｔｒｉｃｔｉｏｎｅｎｚｙｍｅ）を利用してナノグ遺伝子（ＮＣＢＩＧｅｎＢａｎｋＡｃｃｅｓｓｉｏｎｎｕｍｂｅｒＮＭ＿０２４８６５．３）（配列番号１）を分離した。分離したナノグ遺伝子をｐＭＸｓベクター（Ｃｅｌｌｂｉｏｌａｂ，ＪＡＰＡＮ）にＴ４連結酵素（ｌｉｇａｓｅ）でライゲーション（ｌｉｇａｔｉｏｎ）して、ｐＭＸｓ－Ｎａｎｏｇを製作した。ｐＭＸｓ－Ｎａｎｏｇベクターを２９３ＧＰＧｃｅｌｌに形質導入試薬（ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎｒｅａｇｅｎｔ）を利用して６時間の間形質導入（ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ）した。７２時間の間ナノグ遺伝子を有するウイルスを生産し、上澄み液を分離した後、２，０００ｒｐｍで１０分間遠心分離した後、その上澄み液を０．４５ｕｍのフィルターにフィルタリングした。このウイルスを８０％コンフルエンス状態の羊水由来間葉系幹細胞に６時間の間処理して、細胞内に感染（Ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ）させた。

実施例２：ナノグ（Ｎａｎｏｇ）が導入された羊水由来間葉系幹細胞のナノグ（Ｎａｎｏｇ）発現検定
ＲＴ－ＰＣＲを行うために、ナノグ（Ｎａｎｏｇ）導入羊水由来間葉系幹細胞をトリゾール（ＴＲＩｚｏｌ）試薬（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，ＵＳＡ）を利用して製造者の指示に応じてトータルＲＮＡを分離した。分離したトータルＲＮＡ５００ｕｇをｃＤＮＡ製造ミックス（Ｂｉｏｎｅｅｒ）を利用してｃＤＮＡに逆転写した。実験チューブを４５℃で６０分間静置した後、９５℃で５分間静置し、以後、使用時まで－２０℃で保管された。ｃＤＮＡは、Ｔａｑ合成酵素（Ｐｒｏｍｅｇａ）とナノグ（Ｎａｎｏｇ）ｍＲＮＡに特異的なプライマー（Ｅｘｏ－Ｎａｎｏｇｆｏｗａｒｄ：５’－ＧＣＴＴＧＧＡＴＡＣＡＣＧＣＣＧＣ－３’（配列番号２）；およびＥｘｏ－Ｎａｎｏｇｒｅｖｅｒｓｅ：５’－ＧＡＴＴＧＴＴＣＣＡＧＧＡＴＴＧＧＧＴＧ－３’（配列番号３））を通じて増幅された。ＲＴ－ＰＣＲは、９４℃で２０秒、６０℃で３０秒、および７２℃で２分のサイクルを３５回繰り返した後、最終合成のために７２℃で１０分間進めた。ＰＣＲ結果物を１％アガロースゲルに電気泳動し、これを分析した。

ナノグ（Ｎａｎｏｇ）過発現を確認するウェスタンブロット（Ｗｅｓｔｅｒｎｂｌｏｔ）実験を行うために、ナノグ（Ｎａｎｏｇ）導入羊水由来間葉系幹細胞を１０％ＦＢＳを含むＤＭＥＭ培地で１００％飽和するまで培養した後に収得し、細胞を破砕した後、タンパク質が含有された上澄み液３０μｇをＳＤＳ－ＰＡＧＥ（ｓｏｄｉｕｍｄｏｄｅｃｙｌｓｕｌｆａｔｅ－ｐｏｌｙａｃｒｙｌａｍｉｄｅｇｅｌｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ）に展開して分離し、ニトロセルロース膜（ｎｉｔｒｏｃｅｌｌｕｌｏｓｅｍｅｍｂｒａｎｅ）に移動して４％スキムミルク（ｓｋｉｍｍｉｌｋ）でブロッキング（ｂｌｏｃｋｉｎｇ）した。以後、膜に１次抗体としてナノグ（Ｎａｎｏｇ）受容体を探知する抗体（ＡＦ１９９７，Ｒ＆Ｄ）を処理して４℃で一晩中培養し、ＴＢＳＴ（０．１％Ｔｗｅｅｎ２０が添加されたＴｒｉｓ－ＢｕｆｆｅｒｅｄＳａｌｉｎｅ（ＴＢＳ））で洗浄した。２次抗体としてヤギ由来のＨＲＰ抗体（ｇｏａｔＨＲＰａｎｔｉｂｏｄｙ）（ＳａｎｔａＣｒｕｚＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，ＵＳＡ）を１％ＢＳＡ（ウシ血清アルブミン、ｂｏｖｉｎｅｓｅｒｕｍａｌｂｕｍｉｎ）を含むＴＢＳＴと共に膜に処理し、一時間の間反応してウェスタンブロットを行った。発現の程度を比較するための対照群として、抗－α－チューブリン（ｔｕｂｕｌｉｎ）抗体（Ｒ＆Ｄ、ＵＳＡ）を１次抗体として使用して前記の方法と同じ方法を行うことによって、α－チューブリンの発現を確認した。

その結果、ナノグ（Ｎａｎｏｇ）導入羊水由来間葉系幹細胞が、ｍＲＮＡ水準での外因性（ｅｘｏｇｅｎｏｕｓ）ナノグ（Ｎａｎｏｇ）遺伝子発現量と蛋白質水準でのナノグ（Ｎａｎｏｇ）発現量が羊水由来間葉系幹細胞より顕著に向上して、過発現したことを確認した（図１）。

上記した胎児由来間葉系幹細胞は、ＤＭＥＭ低グルコース＋１０％ウシ胎児血清＋１％ペニシリン／ストレプトマイシン＋１％非必須アミノ酸＋ｂａｓｉｃＦＧＦ（ｂＦＧＦ）４ｎｇ／ｍｌ＋セレニウム５ｎｇ／ｍｌ＋アスコルビン酸５０μｇ／ｍｌ）で培養したとき、持続的に細胞成長が起こった。

実施例３：ナノグ（Ｎａｎｏｇ）が導入された羊水由来間葉系幹細胞に由来したコンディションド培地内エクソソーム分析
実施例１および２で確立された羊水由来間葉系幹細胞株のうちそれぞれ一つずつの細胞部を選択し、コンディションド培地１００ｍｌを生産した後、エクソソームを分離した。

コンディションド培地からエクソソームの抽出は、胎児由来間葉系幹細胞から生産したコンディションド培地を一定の分子量（ｍｏｌｅｃｕｌａｒｗｅｉｇｈｔ）のプロテインを濾すことが可能となるように考案されたＡｍｉｃｏｎＵｌｔｒａ－１５１０ＫＣｅｎｔｒｉｆｕｇａｌｆｉｌｔｅｒｄｅｖｉｃｅ（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）を使用した。コンディションド培地１４．８ｍｌをデバイスの上部キャップ（ｕｐｐｅｒｃａｐ）に入れた後、５，０００×ｇで１５～４０分間遠心分離をさせた。このような方式でコンディションド培地１００ｍｌを濃縮させた後、濃縮された培地にＥｘｏｓｏｍｅｉｓｏｌａｔｉｏｎｋｉｔ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を最終ボリュームの１／２を入れた後、よく混ぜた。完成されたサンプル（ｓａｍｐｌｅ）は、４℃で１２時間の間保管した。以後、１３，２０００ｒｐｍで３０分間遠心分離をした後、上澄み液は除去し、残っている白色のペレット（ｐｅｌｌｅｔ）をＰＢＳまたはＤＭＥＭに溶解して、エクソソームサンプルを完成した。

Ｎａｎｏｓｉｇｈｔを利用してエクソソームの平均サイズおよび個数を測定した結果、羊水由来間葉系幹細胞およびナノグ羊水由来間葉系幹細胞のそれぞれの直径１５６ｎｍ、１４７ｎｍを記録し、その個数は、２０．０×１０^８、２０．１×１０^８と測定された（図２）。すなわち、実験に使用された幹細胞株からエクソソームの分離は、正常に行われ、また、ナノグが導入された羊水由来間葉系幹細胞株から同一量のエクソソームが分離可能であることを確認することができた。

実施例４：エクソソーム内部の物質分析
実施例３で分離したエクソソーム内部の物質を分析するために、最初にＲＴ－ＰＣＲを通じてｍＲＮＡの含有を調査した。

ｑＲＴ－ＰＣＲは、上記のＲＴ－ＰＣＲ時にＲＮＡｐｒｅｐと同一にＲＮＡを収得し、同一にｃＤＮＡを製作した。このように準備したｃＤＮＡは、ＣＦＸ－９６ＰＣＲｓｙｓｔｅｍを通じてｑＲＴ－ＰＣＲを行い、ｃＤＮＡは、ｂＦＧＦ、ＩＧＦ、Ｗｎｔ７ａおよびＰＤＧＦ－ＡＡのｍＲＮＡに特異的なプライマーを利用して増幅した。ｂＦＧＦ特異的プライマーは、ｂＦＧＦｆｏｒｗａｒｄ：５’－ＣＡＧＡＴＴＡＧＣＧＧＡＣＧＣＧＧＴＧＣ－３’（配列番号４）およびｂＦＧＦｒｅｖｅｒｓｅ：５’－ＴＣＡＣＧＧＡＴＧＧＧＴＧＴＣＴＣＣＧＣ－３’（配列番号５）を使用し、ＩＧＦ特異的プライマーは、ＩＧＦｆｏｒｗａｒｄ：５’－ＣＣＡＴＧＴＣＣＴＣＣＴＣＧＣＡＴＣＴＣＴＴＣＴ－３’（配列番号６）およびＩＧＦｒｅｖｅｒｓｅ：５’－ＣＣＡＴＡＣＣＣＴＧＴＧＧＧＣＴＴＧＴＴＧＡＡ－３’（配列番号７）を使用し、Ｗｎｔ７ａ特異的プライマーは、Ｗｎｔ７ａｆｏｒｗａｒｄ：５’－ＴＣＴＴＴＣＴＣＡＧＣＣＴＧＧＧＣＡＴＧＧＴ－３’（配列番号８）およびＷｎｔ７ａｒｅｖｅｒｓｅ：５’－ＴＣＣＴＡＴＧＡＣＧＡＴＧＡＴＧＧＣＧＴＣＧ－３’（配列番号９）を使用し、ＰＤＦＧ－ＡＡ特異的プライマーは、ＰＤＧＦ－ＡＡｆｏｒｗａｒｄ：５’－ＣＴＧＣＣＣＡＴＴＣＧＧＡＧＧＡＡＧＡＧＡＡ－３’（配列番号１０）およびＰＤＧＦ－ＡＡｒｅｖｅｒｓｅ：５’－ＴＧＧＣＡＣＴＴＧＡＣＡＣＴＧＣＴＣＧＴＧＴＴ－３’（配列番号１１）を使用した。標的ｍＲＮＡの相対的定量は、ＣＴ方法で分析した。

ｂＦＧＦ、Ｗｎｔ７ａおよびＰＤＧＦ－ＡＡタンパク質の分泌程度を調べてみるために、ナノグ（Ｎａｎｏｇ）導入羊水由来間葉系幹細胞から分離したエクソソームに対して酵素免疫測定法（Ｅｎｚｙｍｅ－ＬｉｎｋｅｄＩｍｍｕｎｏＳｏｒｂｅｎｔＡｓｓａｙ，ＥＬＩＳＡａｓｓａｙ）を行った。エクソソーム内ｂＦＧＦ、Ｗｎｔ７ａ、ＰＤＧＦ－ＡＡタンパク質の量は、ＥＬＩＳＡキット（Ｒａｙｂｉｏｔｅｃｈ）を使用してそれぞれのエクソソーム内タンパク質の含量を確認した。ＥＬＩＳＡは、エクソソームを準備した後、標準（ｓｔａｎｄａｒｄ）およびサンプルにビオチン（ｂｉｏｔｉｎ）抗体を１時間の間処理した後、ストレプトアビジン（ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ）を４５分間処理した。以後、３０分間ＴＭＢｓｕｂｓｔｒａｔｅｒｅａｇｅｎｔを処理した後、停止液（ｓｔｏｐｓｏｌｕｔｉｏｎ）を加えて反応を中止させた。結果は、マイクロプレート分光光度計（ＭｉｃｒｏｐｌａｔｅＳｐｅｃｔｒｏｐｈｏｔｏｍｅｔｅｒ）を通じて４５０ｎｍ吸光度を測定した後、定量分析した。

ＲＴ－ＰＣＲを通じて毛髪成長関連遺伝子の発現を比較してみた結果、Ｗｎｔ７ａを除いたｂＦＧＦ、ＰＤＧＦ、ＩＧＦにおいてナノグ羊水由来間葉系幹細胞エクソソームがさらに高い発現量を示した。これは、ナノグ羊水由来間葉系幹細胞でのエクソソームの量が、既存の幹細胞と数が類似してはいるが、内部の物質で少しの差異があることを示す。ＲＴ－ＰＣＲデータをさらに確実にするために、ｑＲＴ－ＰＣＲを通じて定量分析した。ＲＴ－ＰＣＲと同一に、Ｗｎｔ７ａを除いた残りの成長因子のｍＲＮＡ量が非常に多数存在することが分かった（図３）。結論的に、エクソソームの内部には、毛髪成長関連因子のｍＲＮＡが含まれており、これは、毛髪成長の促進に役に立つと解析することができる。プロテインの量は、ＥＬＩＳＡを利用して分析し、Ｗｎｔ７ａ、ＰＤＧＦ－ＡＡ、ｂＦＧＦの濃度を測定した（図４）。測定によれば、Ｗｎｔ７ａは、約８ｐｇ／ｍＬ、ＰＤＧＦ－ＡＡは、２．５ｐｇ／ｍＬ、ｂＦＧＦは、約５．５ｐｇ／ｍＬが存在していた。これは、エクソソームの内部に毛髪成長関連プロテインも含まれていることを確認することができた。

実施例５：エクソソーム処理を介した毛乳頭細胞の成長およびマーカー変化
獲得したエクソソームを様々な濃度に区別した後、毛乳頭細胞に処理して毛髪生成に決定的な役割をする二つ、すなわち、毛乳頭細胞の成長および毛髪生成マーカーの変化を確認した。濃度は、１００Ｘから１Ｘまで分け、コンディションド培地とエクソソームを除いたコンディションド培地を共に比較分析した。

具体的に、ラットの皮膚組織を採取して細胞を分離し、実施例２と同じ方法で細胞のトータルＲＮＡを分離して、ｃＤＮＡに逆転写し、ｃＤＮＡは、Ｔａｑ合成酵素（Ｐｒｏｍｅｇａ）とＡＬＰ、ＬＥＦおよびベルシカン（Ｖｅｒｓｉｃａｎ）のｍＲＮＡに特異的なプライマーを通じて増幅された。ＡＬＰ特異的プライマーは、ＡＬＰｆｏｒｗａｒｄ：５’－ＴＧＧＣＣＣＴＣＴＣＣＡＡＧＡＣＧＴＡＣＡＡ－３’（配列番号１２）およびＡＬＰｒｅｖｅｒｓｅ：５’－ＴＧＧＴＴＣＡＣＴＣＴＣＧＴＧＧＴＧＧＴＣＡ－３’（配列番号１３）を使用したし、ＬＥＦ特異的プライマーは、ＬＥＦｆｏｒｗａｒｄ：５’－ＣＴＴＣＣＴＴＧＧＴＧＡＡＣＧＡＧＴＣＴＧ－３’（配列番号１４）およびＬＥＦｒｅｖｅｒｓｅ：５’－ＧＴＧＴＴＣＴＣＴＧＧＣＣＴＴＧＴＣＧＴ－３’（配列番号１５）を使用し、ベルシカン特異的プライマーは、Ｖｅｒｓｉｃａｎｆｏｒｗａｒｄ：５’－ＡＡＣＴＡＧＣＣＧＴＴＧＧＡＧＴＧＧＡＴＴＣ－３’（配列番号１６）およびＶｅｒｓｉｃａｎｒｅｖｅｒｓｅ：５’－ＡＡＡＴＧＣＴＣＴＧＴＧＧＣＴＣＴＧＧＡ－３’（配列番号１７）を使用した。結果物を１％アガロースゲルに電気泳動して、ＧＡＰＤＨｍＲＮＡを基準として相対的なｍＲＮＡ発現量をＣＴ値基準の分析を利用して定量化した。

結果によれば、濃度が増加するにつれて、毛乳頭細胞の成長率は次第に増加し、一定濃度以上は、コンディションド培地よりも非常に良好な成長促進能力を発揮した。それに加えて、エクソソームを除去したコンディションド培地は、その機能性が顕著に低くなることを確認することができたが、これは、コンディションド培地内でもエクソソームの機能が多くの部分を占めていることを反証している（図５）。

毛乳頭の成長とともに、毛髪生成マーカーの変化をｑＲＴ－ＰＣＲおよびＡＰｓｔａｉｎｉｎｇを通じて確認した。毛乳頭細胞が毛髪生成を誘導するためには、毛乳頭細胞固有の幹細胞能性を維持しなければならないが、この幹細胞性を表すマーカーが代表的にＡＬＰ、ＬＥＦおよびベルシカン（Ｖｅｒｓｉｃａｎ）と知られている。したがって、このマーカーの発現量を、エクソソームのない培地（Ｃｏｎｔｒｏｌ）およびそれぞれの濃度（１０Ｘ、５０Ｘ）に区別して処理した結果、ＡＬＰおよびＬＥＦの発現量が１．５倍から２倍程増加することを確認することができた（図６、上段）。ベルシカンの場合には、少量増加することのように見えるが、大きく異ならなかった。このデータに信憑性を得るために、ＡＬＰを染色（ｓｔａｉｎｉｎｇ）で確認できるＡＰｓｔａｉｎｉｎｇを進め、ｑＲＴ－ＰＣＲと同様に、エクソソームの濃度が増加するにつれて、青色に染色（ｓｔａｉｎｉｎｇ）になる細胞の数が増加することを確認することができる（図６、下段）。

追加に、毛乳頭細胞も、間葉系幹細胞への機能をある程度有していることが知られているので、一般的な幹細胞マーカーであるＯｃｔ４、Ｓｏｘ２が発現する。このような一般的な幹細胞マーカーの変化を確認した結果、ＡＬＰ、ＬＥＦのように徐々に増加することが分かる（図７）。特にＯｃｔ４の場合には、５倍以上違いが生じる様相を示していて、エクソソームがＯｃｔ４発現に大きい影響力を有していると解析することができる。

この結果を見れば、エクソソームは、毛乳頭細胞の毛髪生成能力を促進させて、発毛および育毛に効率的な効果を示すことができると判断することができる。

＜製剤例１＞ヘアローションの製造
通常のヘアローションの製造方法によって、本発明のナノグ（Ｎａｎｏｇ）を導入した羊水由来間葉系幹細胞コンディションド培地内エクソソームを有効成分として含むヘアローションを表１のように製造した。

＜製剤例２＞親水性軟膏剤の製造
通常の親水性軟膏剤の製造方法によって、本発明のナノグ（Ｎａｎｏｇ）を導入した羊水由来間葉系幹細胞コンディションド培地内エクソソームを有効成分として含む親水性軟膏剤を表２のように製造した。

Claims

（ａ）妊婦から得た羊水から胎児由来細胞を分離する段階；
（ｂ）前記分離した胎児由来細胞をＦＢＳ（ｆｅｔａｌｂｏｖｉｎｅｓｅｒｕｍ）および、ｂＦＧＦ（ｂａｓｉｃｆｉｂｒｏｂｌａｓｔｇｒｏｗｔｈｆａｃｔｏｒ）を含む培地で継代培養して、羊水内胎児由来間葉系幹細胞を収得する段階；
（ｃ）前記収得した羊水内胎児由来間葉系幹細胞にナノグ（Ｎａｎｏｇ）を導入して、ナノグ（Ｎａｎｏｇ）が過発現した羊水内胎児由来間葉系幹細胞を収得する段階；
（ｄ）前記収得したナノグ（Ｎａｎｏｇ）が過発現した羊水内胎児由来間葉系幹細胞を無血清培地で１～５日間培養して、コンディションド培地を製造する段階；および
（ｅ）前記コンディションド培地からエクソソームを分離する段階；を含み、
前記分離したエクソソームは、ｂＦＧＦ（ｂａｓｉｃｆｉｂｒｏｂｌａｓｔｇｒｏｗｔｈｆａｃｔｏｒ、塩基性線維芽細胞成長因子）、ＩＧＦ（Ｉｎｓｕｌｉｎ－ｌｉｋｅＧｒｏｗｔｈＦａｃｔｏｒ）、Ｗｎｔ７ａ（Ｗｉｎｇｌｅｓｓ－ｔｙｐｅＭＭＴＶｉｎｔｅｇｒａｔｉｏｎｓｉｔｅｆａｍｉｌｙｍｅｍｂｅｒ７Ａ）およびＰＤＧＦ－ＡＡ（Ｐｌａｔｅｌｅｔ－ｄｅｒｉｖｅｄＧｒｏｗｔｈＦａｃｔｏｒ）よりなる群から選ばれたいずれか一つ以上のヒト成長因子を含有することを特徴とする、間葉系幹細胞由来エクソソームを製造する方法。
前記段階（ｃ）でナノグ（Ｎａｎｏｇ）は、レトロウイルスベクターを利用して導入するものである、請求項１に記載の間葉系幹細胞由来エクソソームを製造する方法。
前記段階（ｂ）でセレニウム（ｓｅｌｅｎｉｕｍ）およびアスコルビン酸（ａｓｃｏｒｂｉｃａｃｉｄ）をさらに含む培地で継代培養する、請求項１に記載の間葉系幹細胞由来エクソソームを製造する方法。