JP6845548B2 - 粘膜免疫調節剤 - Google Patents
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Description
下記一般式(2)で表される化合物
下記一般式(3)で表される化合物
並びにこれらの塩からなる群より選択される少なくとも1種を有効成分として含有する、粘膜免疫調節剤に関する。
本発明の粘膜免疫調節剤のうち、粘膜免疫賦活作用を有するもの(粘膜免疫賦活剤)は、アジュバントとしても使用できる。本発明のアジュバントによる作用メカニズムの少なくとも一部は、粘膜免疫応答の開始に関わるM細胞の分化を誘導することに基づくものである。本実施形態に係るアジュバントは、上記粘膜免疫賦活剤を含むものであってもよく、上記粘膜免疫賦活剤からなるものであってもよい。
〔試験化合物の準備〕
式(4)、(5)、(6)、(7)、(8)、(9)、(10)、(11)、(12)、(13)又は(14)で表される化合物を試験化合物として準備した。
式(4)で表される化合物((2E,9R)−9−ヒドロキシ−2−デセン酸)は、特開2010−168290号公報の調製例14に記載された方法に従って、合成した。
式(5)で表される化合物((2E,9R)−メチル−9,10−ジヒドロキシ−2−デセノエート)は、特開2010−168290号公報の調製例11に記載された方法に従って、合成した。
式(6)で表される化合物((2E,11R)−11,12−ジヒドロキシ−2−ドデセン酸)は、特開2010−168290号公報の調製例6に記載された方法に従って、合成した。
式(7)で表される化合物((2E)−3,10−ジヒドロキシ−デカン酸)は、以下の方法に従い、ローヤルゼリーから単離した。
式(8)で表される化合物(セバシン酸)は、Sigma−aldrich社から購入した。
式(9)で表される化合物((2E,7R)−7,8−ジヒドロキシ−2−オクテン酸)は、特開2010−168290号公報の調製例5に記載された方法に従って、合成した。
式(10)で表される化合物((2Z,9R)−9,10−ジヒドロキシ−2−デセン酸)は、特開2010−168290号公報の調製例8に記載された方法に従って、合成した。
式(11)で表される化合物((2E)−7−アセトキシ−2−ヘプテン酸)は、特開2010−168290号公報の調製例15に記載された方法に従って、合成した。
式(12)で表される化合物((2E,9R)−9,10−ジアセトキシ−2−デセン酸)は、特開2010−168290号公報の調製例12に記載された方法に従って、合成した。
式(13)で表される化合物((2E,9S)−9,10−ジヒドロキシ−2−デセン酸)は、特開2010−168290号公報の調製例2に記載された方法に従って、合成した。
式(14)で表される化合物(9(S),12(S),13(S)−トリヒドロキシ−10(E)−オクタデセン酸)は、Larodan社から購入した。
インビトロM細胞モデルとして、ヒト腸管上皮細胞由来のCaco−2細胞を使用した。Caco−2細胞は、MEM培地(日水製薬株式会社製)に20%ウシ胎児血清(FCS:CANSERA INTERNATIONAL社製)、2mMグルタミン(和光純薬株式会社製)、及び0.1mM非必須アミノ酸(Gibco社製)を補充した培地を使用して、37℃、5%CO2存在下で培養した。細胞は、対数増殖の範囲内(2.0×105〜1.0×106cells/mL)で継代培養を行った。なお、細胞濃度はトリパンブルー染色法により、生細胞数と死細胞数とを力ウントして求めた。
各試験化合物によるM細胞の分化誘導を、GP2を指標としてFACSにより解析した。各試験化合物は、DMSO溶液として調製した(10mM)。6ウェルプレートにCaco−2細胞を播種し、単層膜を形成させた後、上記各試験化合物を終濃度が100μMとなるよう添加した。また、対照として、同量のDMSOを添加した。培地は上述のとおりである。添加後、37℃、5%CO2存在下で3日間培養した。培養後、1mM EDTA・2Na/PBS(−)(pH7.2)で細胞を回収し、ウサギ抗GP2抗体(IMGENEX社製)及びAlexa488標識抗ウサギ抗体(Molecular prob11es社製)で染色した。染色した細胞をFACS(BECKMAN COULTER社製)で解析し、GP2発現量を定量した。
[参考例1:10−ヒドロキシデカン酸におけるM細胞分化誘導試験−インビトロ試験]
〔細胞培養〕
試験例1と同様に行った。
試験化合物として10−ヒドロキシデカン酸(SIGMA−ALDRICH社製)を用いたこと以外は、試験例1と同様にしてFACS解析を行った。FACSのヒストグラムからGP2発現量の定量値を解析ソフトFlowjoにより求め、対照(DMSOのみ)の定量値を1としたときの相対値として算出した。結果を下記表2に示す。10−ヒドロキシデカン酸は、GP2の発現を誘導した。
トランズウェルインサート(6.5mm Transwell,コーニング社製)にCaco−2細胞を2×105cells播種し、単層膜を形成させた後、単層膜の頂端側から10−ヒドロキシデカン酸(終濃度100μM)を作用させ、37℃、5%CO2存在下で3日間培養した。培養後、トランズウェルインサートの膜ごと切断し、電子顕微鏡(JEOL社製)で細胞形態を観察した。
〔試験方法〕
10−ヒドロキシデカン酸のDMSO溶液(10mM)を、PBS(−)で100倍希釈して試験液を調製した。カニクイザル(Macaca fascicularis)の雄3匹(試験開始時3〜4歳、試験開始時の体重3.53〜4.36kg)を被験動物とした。ファインアトマイザー(ネイザル)(商品番号:FAN020,製造販売元:吉川化成株式会社)を用いて、上記試験液をカニクイザルの左右鼻腔に約0.1mLずつ噴霧した。対照として、PBS(−)を用いて同様の操作を行った。この操作を1日1回、3日間繰り返した後、4日目にカニクイザルを解剖し、咽頭扁桃部位の鼻咽頭粘膜を採取した。採取した鼻咽頭粘膜をAlexa555標識抗GP2抗体(IMGENEX社製)又はAlexa555標識抗GP2抗体(Abcam社製)で蛍光免疫組織染色し、オールインワン蛍光顕微鏡BZ−9000(キーエンス社製)で蛍光像を観察した。なお、蛍光像の観察にあたり、DAPI染色を併用している。
〔試験方法〕
(カプセル剤の調製)
10−ヒドロキシデカン酸2.4mgのみを腸溶カプセルに充填し、10−ヒドロキシデカン酸入りカプセル剤(カプセルA錠)を調製した。10−ヒドロキシデカン酸2.4mgに加え、抗原としてFetuin(3mg)、不活化ポリオウイルス抗原(106 TCID50)及び不活化インフルエンザウイルス抗原(220_HA Units)を腸溶カプセルに充填し、10−ヒドロキシデカン酸と上記3種の抗原を含有するカプセル剤(カプセルB錠)を調製した。また、抗原としてFetuin(3mg)、不活化ポリオウイルス抗原(106 TCID50)及び不活化インフルエンザウイルス抗原(220_HA Units)を腸溶カプセルに充填し、上記3種の抗原を含有するカプセル剤(カプセルC錠)を調製した。
カニクイザル(Macaca fascicularis)の雄3頭(試験開始時3〜6歳、試験開始時の体重3.0〜6.0kg)を被験動物とし、上記カプセルA錠及びカプセルB錠を下記表3に示すスケジュールに従って経口投与した(1日1回1錠)(以下、試験群)。対照として、カニクイザルの雄3頭(試験開始時3〜6歳、試験開始時の体重3.0〜6.0kg)にカプセルC錠のみを下記表3に示スケジュールに従って経口投与した(カプセルA錠及びカプセルB錠は投与せず)(以下、対象群)。22日目にカニクイザルを解剖し、腸管粘膜を採取した。採取した腸管粘膜をAlexa555標識抗GP2抗体(IMGENEX社製)又はAlexa555標識抗GP2抗体(Abcam社製)で蛍光免疫組織染色し、オールインワン蛍光顕微鏡BZ−9000(キーエンス社製)で蛍光像を観察した。なお、蛍光像の観察に当たり、DAPI染色を併用している。
〔試験方法〕
参考例3で飼育したカニクイザルの糞便を採取し、糞便中の抗Fetuin IgA抗体価、抗ポリオウイルスIgA抗体価、抗インフルエンザウイルスIgA抗体価を、ELISAにより測定した。
(a)Peroxidase−Labeled Affinity Purified antibody to Monkey IgA(alpha)(Cat.No.074−11−011,KPL)
(b)Goat Anti−monkey IgA(alpha−chain specifc)−peroxidase(Affinity purified)(Cat.No.70041,Alpha diagnostic international)
Claims (4)
- 下記式(4)、(5)、(6)で表される化合物、及びこれらの塩からなる群より選択される少なくとも1種を有効成分として含有する、粘膜免疫賦活剤。
- 請求項1に記載の粘膜免疫賦活剤を含む、粘膜免疫賦活用食品組成物。
- 請求項1に記載の粘膜免疫賦活剤を含む、アジュバント。
- 請求項3に記載のアジュバントを含む、ワクチン製剤。
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