JP6668558B2 - セルロースザンテート微細繊維含有樹脂組成物 - Google Patents
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Description
セルロースザンテート微細繊維スラリー全体の平均繊維長(μm)=(遠心上清数平均繊維長×ナノファイバー生成率)+{未解繊物数平均繊維長×(100%−ナノファイバー生成率)}・・・(1)
セルロースザンテート微細繊維スラリー全体の平均繊維径(nm)=(遠心上清数平均繊維径×ナノファイバー生成率)+{未解繊物数平均繊維径×(100%−ナノファイバー生成率)}・・・(2)
・A(2):A(1)において二硫化炭素に不溶の繊維中の硫黄含有率
・B :酸化剤処理前のセルロースザンテート微細繊維の全硫黄含有率
・変性率(1):ザンテート基を除く強度向上に寄与する硫黄分
・変性率(1)(%)=A(1)÷B×100
・変性率(2):ザンテート基を除く特に強度向上に寄与する二硫化炭素不溶硫黄分
・変性率(2)(%)=A(2)÷B×100
<アルカリ処理>
NBKPをパルプ固形分(α−セルロースに加えて不純物であるリグニンなどを含む固形分、及びそれらの変性物を指す。以下同じ。)100gとなるように秤量した。これを3Lのビーカーに導入し、8.5質量%水酸化ナトリウム水溶液 2500gを入れ、室温にて3時間撹拌してアルカリ処理を行った。このアルカリ処理後のパルプを遠心分離(ろ布400メッシュ、3000rpmで5分間)により固液分離してアルカリセルロースの脱水物を得た。このアルカリセルロースの脱水物における水酸化ナトリウム含有率は7.5質量%、パルプ固形分は27.4質量%であった。
上記で作製したアルカリセルロースの脱水物をパルプ固形分10gとなるように秤量し、ナス型フラスコに導入した。このナス型フラスコ内へ二硫化炭素を3.5g(対パルプ固形分35質量%分)導入し、室温で4.5時間硫化反応を進行させてザンテート化処理を行った。
また、セルロースザンテートについて、平均ザンテート置換度をBredee法により測定したところ、0.295であった。なお、このザンテート置換度はセルロースのグルコース単位当たりにザンテート基が導入されている度合に対する値である。Bredee法の手順は次のように行った。100mLビーカーにセルロースザンテートを1.5g精秤し、飽和塩化アンモニウム溶液(5℃)を40mL添加した。ガラス棒でサンプルを潰しながらよく混合し、15分間放置後、GFPろ紙(ADVANTEC社製GS−25)でろ過して、飽和塩化アンモニウム溶液で十分に洗浄した。サンプルをGFPろ紙ごと500mLのトールビーカーに入れ、0.5M水酸化ナトリウム溶液(5℃)を50mL添加して撹拌した。15分間放置後、1.5M酢酸で中和した(フェノールフタレイン指示薬)。中和後蒸留水を250mL添加してよく撹拌し、1.5M酢酸 10mL、0.05mol/Lヨウ素溶液10mLをホールピペットを使用して添加した。この溶液を0.05mol/Lチオ硫酸ナトリウム溶液で滴定した(1%澱粉溶液指示薬)。チオ硫酸ナトリウムの滴定量、サンプルのセルロース含有量より次式(3)からザンテート置換度を算出した。このザンテート置換度は、セルロース繊維におけるグルコース単位当たりに、導入されているザンテート基の比率である。
上記のセルロースザンテート中のセルロース含有率測定時に得られたセルロースについてIR測定を行った結果、セルロースI型に対応するピーク形状が観測された。
上記のザンテート化処理で作製したセルロースザンテートをセルロース固形分で0.25g秤量し、蒸留水50mLを添加して攪拌し、セルロース固形分0.5質量%のスラリーとした。このスラリーを、ホモジナイザー((株)日本精機製作所製:AM−7)を用いて17000rpmにて30分間かけて解繊処理してセルロースザンテート微細繊維を得た。
上記で解繊処理を行ったセルロースザンテート微細繊維のスラリー(セルロース固形分0.5質量%)に蒸留水を添加してスラリー濃度を0.1質量%に調整した。このスラリーを遠心分離(9000rpm、10分間)して未解繊物を沈降させた。上清はナノファイバースラリーとして分離して三角フラスコに移し、沈降した未解繊物に蒸留水を添加して再度遠心分離を行い、未解繊物を洗浄した。未解繊物をるつぼに移して絶乾し、未解繊物の質量を測定した。未解繊物の質量と解繊処理したセルロースザンテート中のセルロース含有量より次式(4)から生成したセルロースザンテートナノファイバーの生成率(解繊度)を求めた。以下、上記遠心分離操作にて沈降しなかったセルロースザンテート微細繊維をセルロースザンテートナノファイバーと定義する。
水で0.1質量%に希釈した微細繊維スラリーを、遠沈管に入れ、9000rpmにて10分間かけて遠心分離を行った。遠心上清を回収し、濃度調整後染色を施し、支持膜上で乾燥し乾燥検体とした。透過型電子顕微鏡(TEM (株)日立ハイテクノロジーズ製)を使用し、加速電圧100kVで観察を行った。観察を行った100,000倍の画像よりナノファイバー100本を選択し、繊維長を測定した。同様に、400,000倍の画像よりナノファイバー100本を選択し、繊維径を測定した。遠心上清に含まれるナノファイバーの平均繊維長、平均繊維径はそれぞれ測定した100点の平均とした。それぞれの写真を図1(a)、(b)に示す。
実施例1aと同様の操作を行い、セルロースザンテート微細繊維を得た。ただし、遠心分離は行わず、実施例1aでは分離された遠心上清と未解繊物とが混合された状態とした。その結果を表1に示す。ナノファイバー生成率は92.4%となった。以下、このセルロースザンテート微細繊維を「XCNF2」と略記する。XCNF2にはセルロースザンテートナノファイバー(XCNF1)が含まれているが、未解繊物であるより大きな繊維も含んでいる。
水で0.1質量%に希釈した微細繊維スラリーを、遠沈管に入れ、9000rpmにて10分間かけて遠心分離を行った。遠心上清を除去後、遠沈管底部に残留した未解繊物を回収し、スラリー濃度0.05質量%になるように調整、ホモジナイザーで再分散させた上で、エタノールと体積比1:1で混合した。混合液をスライドガラス上に20μL滴下して自然乾燥させた。乾燥後、染色液であるサフラニンを滴下して一分間静置し、流水で洗浄後に再度自然乾燥させ、顕微鏡観察を行った。顕微鏡観察を行った1000倍の画像を100分割し、1分割分(35μm×26μm)の中に含まれる繊維を一本選択して合計100本分の繊維長を測定した。繊維長の値は測定した100点の平均とした。上記方法により算出されたセルロースザンテート微細繊維に含まれる未解繊物の繊維長は40μmから860μmであり、数平均繊維長は195μmとなった。
水で0.1質量%に希釈した微細繊維スラリーを、遠沈管に入れ、9000rpmにて10分間かけて遠心分離を行った。遠心上清を除去後、遠沈管底部に残留した未解繊物を回収し、スラリー濃度0.03質量%になるように調整し、ホモジナイザーで再分散させた上で、tert−ブチルアルコールと体積比8:2(tert−ブチルアルコール20%含有)で混合した。混合液を凍結乾燥させ、電界放出型走査電子顕微鏡(FE−SEM)写真を撮影した。FE−SEM観察を行った1000倍、10,000倍の画像から繊維100本を選択し、繊維径を測定した。繊維径の値は測定した100点の平均とした。上記方法により算出されたセルロースザンテート微細繊維に含まれる未解繊物の繊維径は38nmから7μmであり、数平均繊維径は460nmとなった。
実施例1aにおいて、解繊処理の速度を17000rpmから10000rpmに低下させ、解繊処理の時間を30分間から5分間に短縮させた。その結果を表1に示す。ナノファイバーの生成率は52.4%に低下したが、セルロースザンテート微細繊維が生成していることが確認された。以下、この実施例2で得られたセルロースザンテート微細繊維を「XCNF3」と略記する。上記(1)式、(2)式により算出されたXCNF3全体の平均繊維径は222nm、平均繊維長は93μmと算出された。
NBKPを用い、室温下でパルプ濃度2質量%にて標準離解工程を行ってセルロースを得た(脱水後のセルロース量38.1%)。このセルロースに対して、2,2,6,6−テトラメチルピペリジン−1−オキシルフリーラジカル(以下、「TEMPO」と略す)を触媒として、対パルプ質量で5.5mmol/gのNaClOを添加し、室温下にて2時間掛けてTEMPO酸化を行った。これにより対質量の平均酸化度が2mmol/gのTEMPO酸化セルロースが得られた。このTEMPO酸化セルロースを、実施例1と同様に解繊処理して、ナノファイバー生成率92.4%、平均重合度280でセルロースI型を維持したTEMPO酸化セルロース微細繊維を得た。以下、「TOCN」と略記する。
(実施例3)
・マスターバッチの作製
実施例1にて作製したXCNF1と天然ゴム(以下、「NR」と略す)ラテックス((株)レヂテックス社製 HA NR LATEX 固形分60%、アンモニア0.7%)、14%アンモニア水を混合し(セルロースザンテートナノファイバー添加量はNR固形分100質量部に対して4質量部)、ホモジナイザーにて撹拌した(8000rpm、5分)。撹拌混合後スラリーを70℃にて2日間乾燥し、次いで減圧乾燥を行い、NRマスターバッチを作製した。
得られたマスターバッチを50℃に加温した二本ロール(日本ロール製造(株) φ200mm×L500mmミキシングロール機)を使用して素練りし、次いで下記表2及び表3の配合通りにステアリン酸(ナカライテスク(株)製)、酸化亜鉛(ナカライテスク(株)製)、硫黄(ナカライテスク(株)製)、加硫促進剤(三新化学工業(株)製サンセラーNS−G)を添加混合し、厚さ2mm以上のコンパウンドシートを作製した。
得られたコンパウンドシートを用いて加硫判定機(株式会社オリンテック製:キュラストメーターV型 測定温度150℃、測定時間20分)により90%加硫時間(Tc90)を測定した。この時、Tc90は5.5分であり、後述する比較例1に比べて加硫促進効果が発揮されていることが確認された。このコンパウンドシートを金型に入れ、測定したTc90の値に基づき150℃、5.5分間圧縮成形して厚さ2mmの加硫ゴムシートを作製した。
得られた加硫ゴムシートからJIS3号形のダンベル形状に試験片を打ち抜き(n=5)、各試験片について厚みを測定した(n=3)。試験片は引張試験機((株)島津製作所 精密万能試験機 AG−1000D)にて引張試験(つかみ幅:50mm、速度:500mm/分JIS K6251準拠:ISO37に対応する)を行い、破断点応力、及びひずみを求めた。この結果を表4に示す。
実施例3において、XCNF1の代わりにXCNF2を用い、対ゴム添加量を5質量部に変更した以外は実施例3と同様の手順によりゴムシートを作製して測定を行った。その結果を表4に示す。また、Tc90は5.6分となり、XCNF1を用いた実施例3と同様に、後述する比較例1に比べて加硫促進効果が発揮されていることが確認された。
実施例4において、XCNF2の対ゴム添加量を10質量部に変更した以外は実施例4と同様の手順によりゴムシートを作製して測定を行った。その結果を表4に示す。実施例4に比べて、破断点までの応力が添加量に応じて増加した。
実施例3において、XCNF1を添加しない以外は同様の手順によりゴムシートを作製して測定を行った。Tc90は8分であった。
(実施例6)
実施例4において、XCNF1をナノファイバー生成率が低いXCNF3に変更した以外は同様の手順によりゴムシートを作製して測定を行った。その結果を表4に示す。Tc90は6.1分であり、セルロースザンテートナノファイバーであるXCNF1の方がXCNF3に比べて加硫促進効果が僅かに高いことが確認された。同じひずみにおける応力は、XCNF3の方が高い結果となった。
実施例4において、添加するXCNF2を、一旦加熱処理して平均ザンテート置換度が0.001未満のザンテート基を脱離したセルロース微細繊維に加工したものに変更した以外は同様の手順によりゴムシートを作製して測定を行った。その結果を表4に示す。Tc90は7.8分となり、僅かながら加硫促進効果が見られた。これはザンテート基が脱離してセルロース微細繊維となったことで、マスターバッチ中にザンテート基由来の成分が減少したためと考えられる。
(実施例8〜10、比較例2)
実施例4において、用いるゴムを天然ゴムから水素化ニトリルゴム(日本ゼオン株式会社製:ゼットポール2230LX 固形分40%、「HNBR」と略記する。)に変更し、XCNF2の添加量を対ゴム1質量部、3質量部、5質量部に変更し、混練条件を表3の如く変更し、加硫を160℃にて行った以外は同様の手順によりゴムシートを作製して測定を行った(実施例8〜10)。また、比較例2として、XCNF2を導入せずに同様にHNBRを用いた以外は同様の手順によりゴムシートを作製して測定を行った。その結果を表4に示す。これらについてひずみを横軸、応力を縦軸にとったグラフを図3に示す。
実施例4において、用いるゴムを天然ゴムからスチレンブタジエンゴム(JSR株式会社製:JSR2108 固形分40%、「SBR」と略記する。)に変更し、混練条件を表3の如く変更した以外は同様の手順によりゴムシートを作製して測定を行った(実施例11)。また、比較例3として、XCNF2を導入せずに同様にSBRを用いた以外は同様の手順によりゴムシートを作製して測定を行った。それらの結果を表4に示す。また、XCNF2を添加した実施例11はTc90は9.6分となり、XCNF2を添加しない比較例3のTc90の値12.3分と比べて、加硫促進効果が確認された。
(比較例4)
実施例4において、XCNF2の代わりに、解繊処理を行っていないセルロースザンテートを添加した以外は同様の手順によりゴムシートを作製して測定を行った。その結果を表3,4に示す。比較例1に比べて破断点応力がほとんど変わらず、強度向上効果が発揮されないことが確認された。また、XCNF1を添加しない比較例1,解繊していない比較例4,解繊度52.4%の実施例6,解繊度92.4%の実施例4について、ひずみを横軸、応力を縦軸にとったグラフを図4に示す。
実施例4において、XCNF2の代わりにTOCNを用いた以外は同様の手順によりゴムシートを作製して測定を行った。その結果を表4に示す。強度向上効果は得られたが、加硫促進効果はXCNF2に比べると低かった。
実施例4において、XCNF2の代わりにセルロースナノファイバー((株)スギノマシン製:BiNFi−sWMa―10002)を用いた以外は同様の手順によりゴムシートを作製して測定を行った。その結果を表4に示す。Tc90は8分となり、強度向上効果は十分に得られたが、加硫促進効果が全く見られなかった。
実施例10において、XCNF2の代わりにTOCNを用いた以外は同様の手順によりゴムシートを作製して測定を行った。その結果を表4に示す。
(実施例12〜14)
実施例4において、XCNF2の代わりに、解繊前のセルロースザンテートをラテックスへ混合した後、ホモジナイザーにて15000rpmで5分間(実施例12)、15分間(実施例13)、30分間(実施例14)解繊して、解繊されたセルロースザンテート微細繊維を含有するゴムラテックスを得た。その上で、実施例4と同様の手順によりゴムシートを作製して測定を行った。これらの構成を表5に、その結果を表6に示す。解繊が進むと、ある程度の範囲で強度向上効果が高まることが示された。解繊時間の異なるこれらの例と、添加しない比較例1とについて横軸にひずみ、縦軸に応力をとったグラフを図5に示す。
セルロースザンテート微細繊維を含有するゴムラテックスに濃度調整後染色を施し、支持膜上で乾燥し乾燥検体とした。透過型電子顕微鏡(TEM (株)日立ハイテクノロジーズ製)を使用し、加速電圧100kVで観察を行った。観察を行った100,000倍の画像より微細繊維100本を選択し、繊維長を測定した。同様に、400,000倍の画像より微細繊維100本を選択し、繊維径を測定した。NRラテックス中セルロースザンテート微細繊維の繊維長、繊維径はそれぞれ測定した100点の平均とした。このうち、実施例13における400,000倍の写真を図6(a)に示す。
実施例13において作製したマスターバッチを一部採取し、高分子凍結して超薄切片を作製し、観察検体とした。透過型電子顕微鏡(TEM 同上)を使用し、加速電圧100kVで観察を行った。観察を行った20,000倍の画像より微細繊維100本を選択し、繊維長を測定した。同様に、200,000倍の画像より微細繊維100本を選択し、繊維径を測定した。マスターバッチ中のセルロースザンテート微細繊維の繊維長、繊維径はそれぞれ測定した100点の平均とした。このマスターバッチの20,000倍の写真を図6(b)に示す。
実施例13においてセルロースザンテートの代わりに解繊処理前のTEMPO酸化セルロースを用いた以外は実施例13と同様にゴムラテックス中で解繊して、解繊されたTEMPO酸化セルロース微細繊維を含有するゴムラテックスを得た。その上で、実施例12と同様の手順によりゴムシートを作製して測定を行った。その構成を表5に、その結果を表6に示す。また、無添加の比較例1と、セルロースザンテートをゴムラテックス中で解繊した実施例13と、TEMPO酸化セルロースをゴムラテックス中で解繊した比較例8とについて、横軸にひずみ、縦軸に応力をとったグラフを図7に示す。
実施例10において、解繊前のセルロースザンテートをラテックスへ混合した後、ホモジナイザーにて15000rpmで15分間解繊して、解繊されたセルロースザンテート微細繊維を含有するゴムラテックスを得た。その上で、実施例10と同様の手順によりゴムシートを作製して測定を行った。その構成を表5に、その結果を表6に示す。HNBRラテックス中で解繊した場合においても強度向上効果が確認された。
(比較例9〜11)
実施例3において、XCNF1を添加しないNRのみのマターバッチを作製し、コンパウンド作製時にカーボンブラック(東海カーボン株式会社製:シースト3)を対ゴム質量でそれぞれ20、30、40質量部添加したものについて、同様にゴムコンパウンドを得た(比較例9〜11)。その上で実施例3と同様の手順によりゴムシートを作製して測定を行った。その構成を表7に、その結果を表8に示す。
(比較例12:XCNF無し・酸凝固からの乾燥)
比較例1において、ホモジナイザーで撹拌した後、70℃で2日間乾燥する前に、1mol/l硫酸溶液を撹拌しながらpHが5となるまで滴下した。さらに、析出したゴム粒子を回収し、pHが中性となるまで洗浄した。その上で、比較例1と同様に70℃にて2日間乾燥し、減圧乾燥してマスターバッチを作製した。Tc90は11.9分となった。
実施例4において、ホモジナイザーで撹拌した後、70℃で2日間乾燥する前に、1mol/l硫酸溶液を撹拌しながらpHが5となるまで滴下した。さらに、析出したゴム粒子を回収し、pHが中性となるまで洗浄した。その上で、実施例3と同様に70℃にて2日間乾燥し、減圧乾燥してマスターバッチを作製した。Tc90は10.9分となり、酸凝固の際にザンテート基が脱離してセルロース微細繊維に戻ったものの、比較例12と比べてわずかながら加硫促進効果がみられた。また、得られたマスターバッチについてX線CTを測定したところ、明確な繊維像や凝集塊はほとんど観察されなかった。この写真を図10に示す。これにより、X線CTの分解能の大きさにまでは凝集していないことが確かめられた。
・装置:島津社製 SMX−160CT−SV3S
・空間分解能:1.4μm
・管電圧:90kV、管電流:70μm
・SID: 400mm、SOD:5mm
・ビュー数 1200(ハーフスキャン)
実施例4において、XCNF2の代わりにビスコース(レンゴー(株)製:セルロース濃度9.5質量%)を用い、天然ゴムラテックス、アンモニア水とともにホモジナイザーにて同様に撹拌した後、70℃にて2日間乾燥させる前に、1mol/l硫酸溶液を撹拌しながらpHが5となるまで滴下した。さらに、析出したゴム粒子を回収し、pHが中性となるまで洗浄した。その上で、実施例4と同様に70℃にて2日間乾燥し、減圧乾燥してマスターバッチを作製した。Tc90は13.5分となり、加硫促進効果はみられなかった。
微細繊維の添加が無い比較例1,XCNF2を添加した実施例4,TOCNを添加した比較例5,ラテックス中でセルロースザンテートを解繊した実施例13,ラテックス中でTEMPO酸化セルロースを解繊した比較例8について、加硫ゴムシートの測定を行った。色差計(technidyne社製:Color Touch PC)にて明度(L値)を測定した値を表11に示す。XCNFを添加したゴムシートは、TOCNを添加したゴムシートに比べて、いずれもL値が大きくなった。TOCNに比べてXCNFの方が熱安定性が高いため、加硫時の加熱により変色しにくいと考えられる。
XCNFはザンテート基を持つため、NRラテックスと混合、マスターバッチ作製時にNRの二重結合部位と反応し、化学結合するか又は高い親和性でNRと相互作用していると考えられる。マスターバッチのNRを溶解し、残存成分量(バウンドラバー量)を測定することにより、ゴムとXCNFの相互作用の有無を確認した。対象としては、加熱乾燥でマスターバッチを得る実施例4,XCNFをTOCNに変えた比較例5,CNFに変えた比較例6,ラテックス中の解繊に変えた実施例13、酸凝固工程を加えた実施例16、ビスコースを用いた比較例13、NRのみの比較例1である。
(実施例17)
実施例13において、ラテックス中での解繊処理を行った後、70℃で2日間乾燥する前に、1mol/l硫酸溶液を撹拌しながらpHが5となるまで滴下した。さらに、析出したゴム粒子を回収し、pHが中性となるまで洗浄し、70℃にて2日間乾燥し、次いで減圧乾燥を行い、マスターバッチを作製した。その上で、実施例3と同様の手順によりゴムシートを作製して測定を行った。その結果を表13、14に示す。また、Tc90は11.1分となり、実施例16と同様に酸凝固の際にザンテート基が脱離してセルロース微細繊維に戻ったものの、比較例12と比べてわずかながら加硫促進効果がみられた。
XCNFを混合したマスターバッチは加硫時に加硫促進効果があることが上記で確かめられている。これはセルロースザンテート微細繊維のザンテート基によるものと考えられるため、それぞれのサンプルでのマスターバッチ中の硫黄含有量の測定を行った。具体的には、硫黄分析装置(Tox−100)を使用し、三回測定した平均を求めた。対象としては、添加の無い比較例1,XCNFを添加する実施例4、TOCNを添加する比較例5、CNFを添加する比較例6、ラテックス中でXCNFの解繊を行う実施例13、酸凝固を行う実施例16、ビスコースを用いた比較例13、及び下記のラテックス中でXCNFの解繊をしかつ酸凝固を行う実施例17について行った。その結果を表15に示す。
ゴムラテックス中での解繊を行う実施例13において、ホモジナイザーで撹拌した後、70℃で2日間乾燥する前に、1mol/l硫酸溶液を撹拌しながらpHが5となるまで滴下した。さらに、析出したゴム粒子を回収し、pHが中性となるまで洗浄した。その上で、実施例13と同様に70℃にて2日間乾燥し、減圧乾燥してマスターバッチを作製した。
(実施例19)
セルロースザンテート微細繊維を含有する樹脂分散液の挙動について検証を行った。まず、スラリーを調製した。平均ザンテート置換度0.28のセルロースザンテート微細繊維を水中に分散させ、全固形分濃度0.57質量%(セルロース固形分濃度は0.506質量%)となるスラリーを得た。このスラリーの粘度は1.87Pa・s(10rpm)であった。
・タケラックSW−5100……三井化学(株)製、水性ウレタンエマルジョン、固形分比率30%、Tg120℃
・PDX−7341……BASF社製、アクリル樹脂エマルジョン、固形分49%、Tg15℃
セルロースザンテート微細繊維を導入しないこと以外は実施例19と同様の手順によりそれぞれの樹脂エマルジョンについて塗工した。塗工はバーコータを用い、セルロースザンテート微細繊維を含有しない分、樹脂の固形分が同等になるように、ウェット状態で20g/m2となるように塗工した。その後の乾燥は同様に行った。
解繊処理をしていないセルロースザンテートを導入したこと以外は実施例19と同様の手順によりそれぞれの樹脂エマルジョンについて塗工した。塗工はバーコータを用い、ウェット状態で20g/m2となるように塗工した。その後の乾燥は同様に行った。
(実施例20)
実施例19のセルロースザンテート微細繊維を使用し、樹脂エマルジョンにSBRラテックス(日本ゼオン製:LX407S)を使用する以外は同様の操作を行った。
セルロースザンテート微細繊維を導入しないこと以外は実施例20と同様の手順によりSBRラテックスについて塗工した。塗工はバーコータを用い、セルロースザンテート微細繊維を含有しない分、樹脂の固形分が同等になるように、ウェット状態で20g/m2となるように塗工した。その後の乾燥は同様に行った。
解繊処理をしていないセルロースザンテートを導入したこと以外は実施例20と同様の手順によりSBRラテックスについて塗工した。塗工はバーコータを用い、ウェット状態で20g/m2となるように塗工した。その後の乾燥は同様に行った。
(実施例21)
実施例3において、XCNF1(スラリーを解繊処理した後に遠心分離した遠心上清、数平均繊維径:7nm、ナノファイバー生成率:100%)の添加量を対ゴム質量で5phrに変更し、コンパウンド作製時にカーボンブラック(東海カーボン株式会社製:シースト3)を対ゴム質量で20質量部添加したものについて、上記以外の点は実施例3と同様の手順によりコンパウンドを得た。その上で、実施例3と同様の手順によりゴムシートを作製して同様に測定を行った。その構成を表18に、その結果を表19に示す。
実施例13における、ラテックス中での解繊処理により解繊されたセルロースザンテート微細繊維(80%以上が繊維径3nm〜200nm、繊維長25nm〜1μmのセルロースザンテートナノファイバーであり、セルロースザンテート微細繊維全体の平均繊維径は3nm〜500nmである。ただし、繊維径500nm〜4μm、繊維長10μm〜700μmのナノファイバーでないものも含み、セルロースザンテート微細繊維全体のサイズは繊維径3nm〜4μm、繊維長25nm〜700μmまで分布が幅広い結果となったもの。)を含有するゴムラテックスからのマスターバッチを用いて、実施例13のゴムコンパウンドを作製する際に、カーボンブラック(東海カーボン(株)製:シースト3)を対ゴム質量で20質量部を追加的に添加し、それ以外は表2と同様の構成となるコンパウンドシートを作製した。その上で、実施例3と同様の手順によりゴムシートを作製して測定を行った。その構成を表20に、その結果を表21に示す。
(実施例23)
実施例3と同様の方法において作製したマスターバッチを室温にて2ヶ月間保管を行った。保管したマスターバッチを実施例3と同様の手順によりゴムシートを作製して測定を行った。その結果を表23に示す。室温保管での時間経過による補強効果の低下は確認されなかった。また、Tc90は5.7分となり、保管を行っていない実施例3と同様に、加硫促進効果が発揮されていることが確認された。
なお、変性率の測定は、ザンテート基は酸などにより分解してOH基になるが、酸化変性により生成した硫黄やジスルフィド結合は酸では分解せず残存し、またその硫黄分の殆どが二硫化炭素に溶解しないことを利用して行った。検証用のXCNFスラリーとして、セルロース固形分0.5質量%、ザンテート置換度0.29、ナノファイバー生成率92.4%であるスラリーを用いた。このXCNFスラリーを300g用いて、XCNFのザンテート基モル量に対してH2O2が50〜2000mol%となるように過酸化水素水を添加して、回転式ホモジナイザーにて撹拌混合(8000rpm、5分間)した。その後、室温にて3時間静置し、静置後のXCNFスラリーを50g秤量し、0.1%に希釈した後、1M硫酸2mLを添加して再生処理を行った。遠心分離により再生CNFを回収、中性になるまで洗浄した後に、凍結乾燥し、凍結乾燥サンプルの硫黄含有率を測定した。その後、凍結乾燥サンプルを0.5g秤量し、二硫化炭素10gを添加して、室温で24時間浸漬した。その後、二硫化炭素を除去し、アセトンを添加して凍結乾燥サンプルを十分に洗浄して減圧乾燥し、減圧乾燥サンプルの硫黄含有率を測定した。ここまでの手順の中で酸化剤処理後、および二硫化炭素に浸漬した後、それぞれのタイミングでセルロースナノファイバーの硫黄含有率を測定することで、二硫化炭素可溶性硫黄分を含む変性率(1)と、二硫化炭素不溶性硫黄分のみの変性率(2)とを定義した。以上のことから、過酸化水素水で処理する前のセルロースザンテート微細繊維の硫黄含有率(処理前硫黄含有率)と、過酸化水素水での処理と再生処理後、および続く二硫化炭素による浸漬処理後のセルロースナノファイバーのそれぞれの硫黄含有率(再生後硫黄含有率)とから、次式により変性率を定めた。
・A(2):A(1)において二硫化炭素に不溶の繊維中の硫黄含有率
・B :酸化剤処理前のセルロースザンテート微細繊維の全硫黄含有率
・変性率(1)(ザンテート基を除く強度向上に寄与する硫黄分)
・変性率(1)(%)=A(1)÷B×100
・変性率(2)(ザンテート基を除く強度向上に寄与する二硫化炭素不溶硫黄分)
・変性率(2)(%)=A(2)÷B×100
(実施例24)
実施例4において、XCNF2とNRラテックスを混合する前に、XCNF2に30%過酸化水素水(三徳化学工業(株)製)を、XCNF中のザンテート基のモル量に対してH2O2が10mol%となるように添加した。添加後、回転式ホモジナイザーにて8000rpmで5分間撹拌混合した。その後室温にて3時間静置した。酸再生後の硫黄含有率は0.133%、二硫化炭素浸漬後の硫黄含有率は0.13%、変性率(1)および変性率(2)共に1.5%であった。セルロースザンテート微細繊維の代わりに、この酸化剤処理したセルロースザンテート微細繊維を用い、対ゴム質量を5質量部に変更した以外は、同様の手順によりゴムシートを作成して測定を行った。その構成を表25に、その結果を表26に示す。ひずみと応力について測定した結果を横軸にひずみ、縦軸に応力をとったグラフを図13に示す。
実施例24において、30%過酸化水素水(三徳化学工業(株)製)を、XCNF中のザンテート基のモル量に対してH2O2が50mol%となるように添加し、同様に処理を行った。酸再生後の硫黄含有率は1.2%、二硫化炭素浸漬後の硫黄含有率は1.2%、変性率(1)は14.0%、変性率(2)は13.8%であった。また同様の手順によりゴムシートを作成して測定を行った。その構成を表25に、その結果を表26に示す。ひずみと応力について測定した結果を横軸にひずみ、縦軸に応力をとったグラフを図13に示す。
実施例24において、30%過酸化水素水(三徳化学工業(株)製)を、XCNF中のザンテート基のモル量に対してH2O2が100mol%となるように添加し、同様に処理を行った。酸再生後の硫黄含有率は4.3%、二硫化炭素浸漬後の硫黄含有率は4.2%、変性率(1)は48.8%、変性率(2)は47.7%であった。また同様の手順によりゴムシートを作成して測定を行った。その構成を表25に、その結果を表26に示す。ひずみと応力について測定した結果を横軸にひずみ、縦軸に応力をとったグラフを図13に示す。
実施例24において、30%過酸化水素水(三徳化学工業(株)製)を、XCNF中のザンテート基のモル量に対してH2O2が2000mol%となるように添加し、同様に処理を行った。酸再生後の硫黄含有率は8.6%、二硫化炭素浸漬後の硫黄含有率は8.4%、変性率(1)98.9%、変化率(2)は96.6%であった。また同様の手順によりゴムシートを作成して測定を行った。その構成を表25に、その結果を表26に示す。ひずみと応力について測定した結果を横軸にひずみ、縦軸に応力をとったグラフを図13に示す。
実施例4において、XCNF2の代わりに解繊処理を行っていないセルロースザンテート(XC)を使用し、XCとNRラテックスを混合する前に、1質量%XCスラリーに30%過酸化水素水(三徳化学工業(株)製)を、XC中のザンテート基のモル量に対してH2O2が2000mol%となるように添加した。添加後、スターラーにて撹拌混合した。その後室温にて3時間静置し、ろ過洗浄した後に、1質量%のスラリーとなるように調整した。セルロースザンテート微細繊維の代わりに、この1質量%スラリーを用い、対ゴム質量を5質量部に変更した以外は、同様の手順によりゴムシートを作成して測定を行った。その構成を表25に、その結果を表26に示す。ひずみと応力について測定した結果を横軸にひずみ、縦軸に応力をとったグラフを図13に示す。
実施例26で得られる酸化剤処理XCNFスラリーを凍結乾燥し検体とした。図14はフィルム表面の光学顕微鏡写真で、図15は図13で観察される粒子状部(図中矢印によって指示する円形の強調箇所)のラマンスペクトルを、図16は粒子状以外の部分で−S−S−結合に関係する範囲のラマンスペクトルである。ラマン測定の条件は次の通りである。
・装置:T−64000((株)堀場製作所)
・条件:測定モード;顕微ラマン、対物レンズ;×100、ビーム径;1μm、光源;Ar+レーザー/514.5nm、レーザーパワー;20mW、回折格子;Single 600gr/mm、スリット;100μm、検出器;CCD/Jobin Yvon 1024×256
(実施例28)
実施例4において、XCNF2とNRラテックスとを撹拌混合する前に、30%過酸化水素水(三徳化学工業(株)製)を、XCNF中のザンテート基のモル量に対してH2O2が2000mol%となるように添加した。すなわち、ラテックスにXCNF2が分散する前に過酸化水素水を添加した。添加後、XCNF2とNRラテックスと過酸化水素水が存在した状態で、回転式ホモジナイザーにて8000rpmで5分間撹拌混合した。その撹拌混合の後、スラリーを70℃にて2日間乾燥し、次いで減圧乾燥を行い、NRマスターバッチを作製した。セルロースザンテート微細繊維の代わりに、この酸化変性させたセルロースザンテート微細繊維を用い、対ゴム質量を5質量部に変更した以外は、同様の手順によりゴムシートを作成して測定を行った。その構成を表27に、その結果を表28に示す。ひずみと応力について測定した結果を横軸にひずみ、縦軸に応力をとったグラフを図17に示す。
Claims (10)
- セルロースI型の結晶構造を有する繊維径が3nm以上200nm以下のセルロースザンテートナノファイバーを含有する樹脂組成物。
- ザンテート基の一部ではなく二硫化炭素に溶解しない硫黄分を有する、請求項1に記載の樹脂組成物。
- セルロースI型の結晶構造を有する繊維径が3nm以上200nm以下のセルロースザンテートナノファイバーを含有する樹脂分散液。
- 前記セルロースザンテートナノファイバーが、ザンテート基と酸化剤の反応により生じた硫黄分を有する、請求項3に記載の樹脂分散液。
- 請求項3又は4に記載の樹脂分散液から、乾燥又は酸凝固により得られるマスターバッチ。
- 上記樹脂分散液がゴム組成物の分散液であり、請求項5に記載のマスターバッチを含むゴム混合物を加硫したゴム組成物。
- 上記ゴム混合物がカーボンブラックを含む、請求項6に記載のゴム組成物。
- セルロースI型の結晶構造を有する繊維径が3nm以上200nm以下のセルロースザンテートナノファイバーを含有するゴムラテックスからマスターバッチを得て、
前記マスターバッチを含むゴム混合物を加熱して加硫するゴム成形体の製造方法。 - 酸化剤を加えて前記セルロースザンテートナノファイバーの一部を酸化変性する手順を含む、請求項8に記載のゴム成形体の製造方法。
- ザンテート基の一部ではなく、二硫化炭素に溶解しない硫黄分を有する、セルロースI型の結晶構造を有する繊維径が3nm以上200nm以下のセルロースザンテートナノファイバー。
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