JP6626892B2 - ヒト化抗タウ抗体 - Google Patents

Description

関連出願の相互参照
本出願は、２０１５年６月２日に出願された米国特許出願第６２／１７０，０３６号、２０１４年１１月１７日に出願された米国特許出願第６２／０８０，９０３号および２０１４年６月２７日に出願された米国特許出願第６２／０１８，４３６号の３５ Ｕ．Ｓ．Ｃ．§１１９（ｅ）の下での優先権の利益を主張するものであり、これらの内容全体が参照により本明細書に組み込まれる。

配列表の組込み
添付の配列表の内容は、参照により本出願に組み込まれる。付属の配列表のテキストファイル、名称Ｃ２Ｎ１１２０＿４ＷＯ＿Ｓｅｑｕｅｎｃｅ＿Ｌｉｓｔｉｎｇは、２０１５年６月２６日に作成され、９ｋｂである。このファイルは、Ｗｉｎｄｏｗｓ ＯＳを使用するコンピュータ上でＭｉｃｒｏｓｏｆｔ Ｗｏｒｄを用いて評価することができる。

本発明は、タウに結合するヒト化抗体およびこの抗原結合フラグメントならびにタウオパチーを治療するためにこのような抗体を使用する方法に関する。特に、本発明は、タウの特異的エピトープに結合し、タウの播種を妨げるヒト化抗体および抗原結合フラグメントに関する。

タウオパチーは、脳内の不溶性過剰リン酸化タウタンパク質の蓄積を共通して有する。２０を超える種々の神経変性障害がある程度の神経細線維変性を特徴とし、タウオパチーと分類され得る（Ｗｉｌｌｉａｍｓ ２００６）。進行性核上性麻痺（ＰＳＰ）および皮質基底核変性症（ＣＢＤ）などの基本型タウオパチーは、唯一のまたは主たる中枢神経系病変であるタウ封入体を特徴とする。基本型タウオパチーは、アルツハイマー病（ＡＤ）で認められるアミロイドベータ（Αβ）斑またはパーキンソン病（ＰＤ）で認められるレヴィー小体のように、他の神経病理学的特徴の存在下でタウ凝集体が認められる他のタウオパチーとは異なる。これらの非基本型タウオパチーでは、タウ病変が一次疾患駆動因子であるのかまたは他のタンパク質のミスフォールディングおよび神経変性に続発するのかはより不確かである。

進行性核上性麻痺（ＰＳＰ、スティール‐リチャードソン‐オルスゼフスキー症候群としても知られる。）は、進行性の神経変性障害であり、推定年間発生率は１０万人当たり５−７人である（Ｇｏｌｂｅ ２０１４）。米国内では、約２万人がこの疾患に罹患する。ＰＳＰの頻度に明らかな地理的、民族的、性別または人種的相違は存在しない。ＰＳＰは、最初は、特発性パーキンソン病を含む他の脳障害と類似の臨床症状を呈し得る。この理由から、ＰＳＰの正しい診断は時として遅れ、通常は臨床症状の最初の発症の１から３年後に診断される。症状の発症はほとんどの場合５０歳から７０歳の間であり、臨床経過には変動があるが、症状の発症時からの典型的な生存期間は５から９年である（Ｈｏｕｇｈｔｏｎ，２００７）。臨床像の不均一性はあるが、現在リチャードソン症候群と称される、最も一般的で最初に記述されたＰＳＰ症候群は、転倒を引き起こす顕著な姿勢の不安定性および軸性硬直、視界障害を生じさせる核上性注視麻痺、前頭葉−皮質下型認知症および吸引の原因となる嚥下困難の存在である。疾患の経過は進行性であり、一様に致死的である（Ｗｉｌｌｉａｍｓ ａｎｄ Ｌｅｅｓ ２００９）。

病理学的には、ＰＳＰは、脳幹、小脳、基底核および大脳皮質におけるニューロンおよびグリア中のタウタンパク質の過剰リン酸化された不溶性凝集体の異常蓄積を特徴とする（Ｗｉｌｌｉａｍｓ ａｎｄ Ｌｅｅｓ ２００９）。ＰＳＰにおけるタウ凝集の程度と分布は、生存期間中のＰＳＰの総体的症状と強く相関する（Ｓｃｈｏｆｉｅｌｄ ｅｔ ａｌ．２０１２）。リチャードソン症候群を表す米国国立神経疾患研究所および進行性核上性麻痺学会（Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｎｅｕｒｏｌｏｇｉｃａｌ Ｄｉｓｏｒｄｅｒｓ ａｎｄ ｔｈｅ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｆｏｒ Ｐｒｏｇｒｅｓｓｉｖｅ Ｓｕｐｒａｎｕｃｌｅａｒ Ｐａｌｓｙ）（ＮＩＮＤＳ−ＳＰＳＰ）の研究基準は、根底にあるＰＳＰ病変を高度に予測する（Ｌｉｔｖａｎ ｅｔ ａｌ．１９９６）。脳の様々な領域におけるニューロン喪失は、タウ凝集体から成る神経原線維変化（ＮＦＴ）を伴う。特定のドーパミン作動性、コリン作動性、ＧＡＢＡ作動性およびノルアドレナリン作動性の系を侵すものを含む、多数の神経伝達物質異常も生じる。

現在承認されているＰＳＰのための治療はない（Ｓｔａｍｅｌｏｕ ｅｔ ａｌ．２０１０）。ＰＳＰにおける治療効果試験の残念な結果は、証拠に基づく標準的な治療法を推奨することを不可能にする（Ｂｏｘｅｒ ｅｔ ａｌ．２０１４）。有効な疾患修飾療法または神経保護療法が存在しない状況で、ＰＳＰは、満たされていない緊急の医学的必要性である。

アルツハイマー病（ＡＤ）は、認知および行動機能の不可逆的な喪失が存在する、一般的な慢性進行性神経変性疾患である。この疾患は１０年以上にわたって持続することがあり、軽度の症状から極めて重篤な症状発現まで進行する。ＡＤは、６５歳以上の集団の約１０％および８０歳以上の集団の３０％以上が罹患すると言われている。アルツハイマー病は、病理学的には細胞外アミロイド斑および細胞内神経原線維変化として現れる。神経原線維変化は、例えば、対らせん状および直線状フィラメントへと集合する、微小管結合タンパク質タウから成る。これらの実体は機能的に関連し得ることが示唆されているが、アミロイド沈着が病的タウフィラメント集合を促進する機構かまたはこの逆の場合の機構かは明らかではない。

タウオパチーの細胞内神経細線維構造体（神経原線維変化、変性神経突起および神経絨毛糸）は、ペアードヘリカルフィラメント（ＰＨＦ）を有する。ＰＨＦの主要なタンパク質サブユニットは、異常に過剰リン酸化された形態の微小管関連タンパク質タウである。神経細線維変化を有するニューロンは変性し、この変性の程度は罹患個人における認知症の程度と直接相関する。

微小管関連タンパク質タウを含む線維状細胞封入体を有することが公知の他のタウオパチーには、ピック病（ＰｉＤ）、第１７番染色体に連鎖するパーキンソン症候群を伴う、集合的に前頭側頭型認知症と称される関連障害の群（ＦＴＤＰ−１７）、筋委縮性側索硬化症（ＡＬＳ）、クロイツフェルト‐ヤコブ病（ＣＪＤ）、ボクサー認知症（ＤＰ）、ゲルストマン‐ストロイスラー‐シャインカー病（ＧＳＳＤ）、レヴィー小体病、慢性外傷性脳症（ＣＴＥ）およびハンチントン病が含まれる。これらの疾患における病因、臨床症状、病理所見および線維状細胞封入体の生化学的組成物は異なるが、正常な細胞タンパク質が凝集して様々な線維状封入体を形成することに関与する機構は同様であることを示唆する新たな証拠が存在する。微小管関連タンパク質タウのコンフォメーションの初期変化は、フィラメント集合体の核または種の生成を開始するように働く、つまり鍵となる特徴の１つであると考えられる。この工程は、正常タンパク質の翻訳後修飾によって、特定の遺伝子の変異または欠失によって、および正常タンパク質に結合し、結果としてこれらのコンフォメーションを改変する因子によって影響され得る。

本発明の１つの態様として、タウに特異的に結合する単離された抗体または抗原結合フラグメントが提供される。抗体またはフラグメントは重鎖可変（ＶＨ）領域および軽鎖可変（ＶＬ）領域を含み、ＶＨおよびＶＬ領域の各々は、図１および２に示すアミノ酸配列から選択される配列を有する。より特定すると、ＶＬ領域は、配列番号１、２、３および４［ＶＫ１、ＶＫ２、ＶＫ３およびＶＫ４］から成る群より選択されるアミノ酸配列を有することができ、ＶＨ領域は、配列番号５、６、７および８［ＶＨ１、ＶＨ２、ＶＨ３およびＶＨ４］から成る群より選択されるアミノ酸配列を有し得る。幾つかの実施形態では、ＶＬ領域は配列番号２［ＶＫ２］のアミノ酸配列を有し、およびＶＨ領域は配列番号５［ＶＨ１］のアミノ酸配列を有する。幾つかの実施形態では、抗体はＦｃ領域を含み、これはヒトＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４またはこの変異体、例えばＳ２４１Ｐヒンジ安定化変異を含むヒトＩｇＧ４であり得る。抗体は、ヒトアイソタイプκまたはこの変異体の軽鎖定常領域を含み得る。幾つかの実施形態では、抗体またはフラグメントはｓｃＦｖまたはＦａｂである。幾つかの実施形態では、抗体またはフラグメントは、ヒト化抗体もしくはフラグメントまたはキメラ抗体もしくはフラグメントである。抗体またはフラグメントはモノクローナル抗体であり得る。幾つかの実施形態では、抗体またはフラグメントは、ヒトタウタンパク質への特異的結合に関してＨＪ８．５と競合する。幾つかの実施形態では、抗体またはフラグメントは、少なくとも１０^−４Ｍの平衡解離定数（Ｋｄ）でヒトタウタンパク質に結合する。

本発明の別の態様として、複数の抗原結合領域を有する多重特異性抗体または抗原結合フラグメントが提供される。多重特異性抗体またはフラグメントの少なくとも１つの抗原結合領域はヒトタウタンパク質に結合する。または、２つの抗原結合領域を有する二重特異性抗体または抗原結合フラグメントが提供される。二重特異性抗体またはフラグメントの抗原結合領域の１つはヒトタウタンパク質に結合する。または、抗体または抗原結合フラグメントの１本の腕がヒトタウタンパク質への特異的結合に関してＨＪ８．５と競合する、二重特異性抗体または抗原結合フラグメントが提供される。または、抗体または抗原結合フラグメントの１本の腕が重鎖可変（ＶＨ）領域および軽鎖可変（ＶＬ）領域を含んで成り、ＶＨおよびＶＬ領域の各々が、図１および２に示すアミノ酸配列から選択される配列を有する、二重特異性抗体または抗原結合フラグメントが提供される。

前記抗体または抗原結合フラグメントのいずれかは、毒性ペイロード、任意選択により薬物複合体または放射性核種をさらに含み得る。

本発明のさらに別の態様として、前記抗体もしくは抗原結合フラグメントのいずれか、または図１もしくは２に示すＶＨ領域もしくはＶＬ領域をコードする単離された核酸分子が提供される。このような核酸分子を含むベクター（例えば発現ベクターなど）が提供され得る。このようなベクターを含む単離された宿主細胞が提供され得る。宿主細胞は、原核細胞または真核細胞、例えば哺乳動物細胞であり得る。

本発明の別の態様として、医薬組成物が提供される。医薬組成物は、前記抗体もしくは抗原結合フラグメントのいずれかまたは本明細書で述べる核酸分子、および医薬として許容される担体を含む。

本発明のさらに別の態様として、図１および２に示す軽鎖の１つの配列を含む単離されたアミノ酸配列が提供される。またはもしくは加えて、図１および２に示す重鎖の１つの配列を含む単離されたアミノ酸配列が提供される。

本発明のさらなる態様として、アミノ酸配列ＤＱＧＧＹＴ（配列番号９）を含むエピトープに特異的に結合する単離されたヒト化抗体または抗原結合フラグメントが提供される。抗体または抗原結合フラグメントは、ドナー抗体に由来するＶＨおよびＶＬ領域のＣＤＲを含み得る。幾つかの実施形態では、抗体は、Ｆｃ領域、例えばＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４またはこの変異体のＦｃ領域を含む。Ｆｃ領域は、ヒトＩｇＧ４またはこの変異体、例えばＳ２４１Ｐヒンジ安定化変異を含むヒトＩｇＧ４であり得る。抗体は、ヒトアイソタイプκまたはこの変異体の軽鎖定常領域を含み得る。幾つかの実施形態では、抗体またはフラグメントはｓｃＦｖまたはＦａｂである。幾つかの実施形態では、抗体またはフラグメントは、ヒト化抗体もしくはフラグメントまたはキメラ抗体もしくはフラグメントである。抗体またはフラグメントはモノクローナル抗体であり得る。抗体またはフラグメントは、抗体またはフラグメントの１本の腕がアミノ酸配列ＤＱＧＧＹＴ（配列番号９）を含むエピトープに特異的に結合する二重特異性抗体または抗原結合フラグメントであり得る。幾つかの実施形態では、検出可能部分または治療部分に連結された前記抗体またはフラグメントの１つを含む免疫複合体が提供される。

別の態様として、アミノ酸配列ＧＹＴＭＨＱＤＱ（配列番号１０）を含むエピトープに特異的に結合する単離されたヒト化抗体または抗原結合フラグメントが提供される。抗体またはフラグメントは、ドナー抗体由来のＶＨおよびＶＬ領域のＣＤＲを有し得る。幾つかの実施形態では、抗体またはフラグメントは、Ｆｃ領域、例えばＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４またはこの変異体のＦｃ領域を含む。Ｆｃ領域は、ヒトＩｇＧ４およびＳ２４１Ｐヒンジ安定化変異を含むこの変異体であり得る。抗体は軽鎖定常領域を含み得る。幾つかの実施形態では、抗体またはフラグメントはｓｃＦｖまたはＦａｂである。抗体の１本の腕がアミノ酸配列ＧＹＴＭＨＱＤＱ（配列番号１０）を含むエピトープに特異的に結合する二重特異性抗体または抗原結合フラグメントも提供される。幾つかの実施形態では、前記抗体またはフラグメントのいずれかを含む免疫複合体は、検出可能部分または治療部分に結合している。

本発明のさらなる態様として、タウオパチーの治療を必要とするヒトに本明細書で述べる抗体またはフラグメントの１つ以上を投与することを含む、被験者においてタウオパチーを予防するまたは治療する方法。抗体または抗原結合フラグメントは、タウオパチーを予防するまたは治療するのに有効な条件下および量で投与される。タウオパチーは、アルツハイマー病（ＡＤ）、進行性核上性麻痺（ＰＳＰ）、皮質基底核変性症（ＣＢＤ）、ピック病（ＰｉＤ）、第１７番染色体に連鎖するパーキンソン症候群を伴う、集合的に前頭側頭型認知症と称される関連障害の群（ＦＴＤＰ−１７）、筋委縮性側索硬化症（ＡＬＳ）、クロイツフェルト‐ヤコブ病（ＣＪＤ）、ボクサー認知症（ＤＰ）、ゲルストマン‐ストロイスラー‐シャインカー病（ＧＳＳＤ）、レヴィー小体病、慢性外傷性脳症（ＣＴＥ）またはハンチントン病の１つ以上であり得る。

治療を必要とする被験体に抗タウ抗体またはフラグメントを投与することを含む、タウオパチーを治療する方法であって、ここで抗体または抗原結合フラグメントはタウに特異的に結合し、ならびに重鎖可変（ＶＨ）領域および軽鎖可変（ＶＬ）領域を含み、ここでＶＨおよびＶＬ領域の各々は図１および２に示すアミノ酸配列から選択される配列を有し、および抗体またはフラグメントを約０．１ｍｇ／ｋｇから約２５０ｍｇ／ｋｇ、または約１ｍｇ／ｋｇから約２５ｍｇ／ｋｇの用量で被験体に投与する、方法が提供される。幾つかの実施形態では、抗体またはフラグメントは、配列番号１、２、３および４［ＶＫ１、ＶＫ２、ＶＫ３およびＶＫ４］から成る群より選択されるアミノ酸配列を含むＶＬ領域を有する；またはもしくは加えて、抗体またはフラグメントは、配列番号５、６、７および８［ＶＨ１、ＶＨ２、ＶＨ３およびＶＨ４］から成る群より選択されるアミノ酸配列を含むＶＨ領域を有する。

マウスＨＪ８．５抗体の可変領域配列ならびに重鎖および軽鎖の各々についての４つのヒト化変異体配列（４ＶＨおよび４ＶＬ／ＶＫ配列）を示す。ＭｕＶＬ（配列番号１１）；ＶＫ１（配列番号１）；ＶＫ２（配列番号２）；ＶＫ３（配列番号３）；ＶＫ４（配列番号４）；ＭｕＶＨ（配列番号１２）；ＶＨ１（配列番号５）；ＶＨ２（配列番号６）；ＶＨ３（配列番号７）；ＶＨ４（配列番号８）。 図２Ａは、重鎖ＶＨ１（配列番号１３）についてのヒト化可変領域および定常領域配列の配列を示す。図２Ｂは、重鎖ＶＨ２（配列番号１４）についてのヒト化可変領域および定常領域配列を示す。図２Ｃは、重鎖ＶＨ３（配列番号１５）についてのヒト化可変領域および定常領域の配列を示す。図２Ｄは、重鎖ＶＨ４（配列番号１６）についてのヒト化可変領域および定常領域の配列を示す。可変重鎖を、Ｓ２４１Ｐヒンジ安定化変異を含むヒトＩｇＧ４の定常重鎖に移植している。 図２Ｅは、軽鎖ＶＬ１（配列番号１７）についてのヒト化可変領域および定常領域の配列を示す。図２Ｆは、軽鎖ＶＬ２（配列番号１８）についてのヒト化可変領域および定常領域の配列を示す。図２Ｇは、軽鎖ＶＬ３（配列番号１９）についてのヒト化可変領域および定常領域の配列を示す。図２Ｈは、軽鎖ＶＬ４（配列番号２０）についてのヒト化可変領域および定常領域の配列を示す。 ＶＨおよびＶＫ領域をコードするポリヌクレオチドでトランスフェクトした細胞の２回の一過性発現からの発現データを示す。結果は、ヒト化重鎖および軽鎖可変領域の種々の組合せに基づく１３のヒト化抗タウ抗体に関して要約しており、種々のレベルの発現が認められる。 ＥＬＩＳＡ型形式での、ヒトタウへの結合に関してもとのマウスＨＪ８．５（親抗体）と競合する本発明の抗タウ抗体の能力を評価する効力アッセイからのデータを示す。 ヒトタウに対する６つの最良発現ヒト化構築物の結合動態を測定する、表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）分析からの結果を要約する。 サンドイッチ型ＥＬＩＳＡにおける可溶性ヒトタウへの４つのヒト化抗体変異体の結合を示す。 野生型マウス（陰性対照組織）、Ｐ３０１Ｓマウス（Ｐ３０１Ｓ変異を有するヒトタウを発現し、加齢に関連するタウ病変を発症する。）およびアルツハイマー病または進行性核上性麻痺（ＰＳＰ）のいずれかを有するヒト由来の組織へのヒト化抗体および対照抗体の結合を示す。マウスおよびヒト組織へのキメラ（陽性対照）の結合。 野生型マウス（陰性対照組織）、Ｐ３０１Ｓマウス（Ｐ３０１Ｓ変異を有するヒトタウを発現し、加齢に関連するタウ病変を発症する。）およびアルツハイマー病または進行性核上性麻痺（ＰＳＰ）のいずれかを有するヒト由来の組織へのヒト化抗体および対照抗体の結合を示す。マウスおよびヒト組織への非特異的ヒトＩｇＧ４（陰性対照）の結合。 野生型マウス（陰性対照組織）、Ｐ３０１Ｓマウス（Ｐ３０１Ｓ変異を有するヒトタウを発現し、加齢に関連するタウ病変を発症する。）およびアルツハイマー病または進行性核上性麻痺（ＰＳＰ）のいずれかを有するヒト由来の組織へのヒト化抗体および対照抗体の結合を示す。マウスおよびヒト組織へのＶＨ１／ＶＫ２の結合。 野生型マウス（陰性対照組織）、Ｐ３０１Ｓマウス（Ｐ３０１Ｓ変異を有するヒトタウを発現し、加齢に関連するタウ病変を発症する。）およびアルツハイマー病または進行性核上性麻痺（ＰＳＰ）のいずれかを有するヒト由来の組織へのヒト化抗体および対照抗体の結合を示す。マウスおよびヒト組織へのＶＨ１／ＶＫ３の結合。 野生型マウス（陰性対照組織）、Ｐ３０１Ｓマウス（Ｐ３０１Ｓ変異を有するヒトタウを発現し、加齢に関連するタウ病変を発症する。）およびアルツハイマー病または進行性核上性麻痺（ＰＳＰ）のいずれかを有するヒト由来の組織へのヒト化抗体および対照抗体の結合を示す。マウスおよびヒト組織へのＶＨ２／ＶＫ２の結合。 野生型マウス（陰性対照組織）、Ｐ３０１Ｓマウス（Ｐ３０１Ｓ変異を有するヒトタウを発現し、加齢に関連するタウ病変を発症する。）およびアルツハイマー病または進行性核上性麻痺（ＰＳＰ）のいずれかを有するヒト由来の組織へのヒト化抗体および対照抗体の結合を示す。マウスおよびヒト組織へのＶＨ２／ＶＫ３の結合。 野生型マウス（陰性対照組織）、Ｐ３０１Ｓマウス（Ｐ３０１Ｓ変異を有するヒトタウを発現し、加齢に関連するタウ病変を発症する。）およびアルツハイマー病または進行性核上性麻痺（ＰＳＰ）のいずれかを有するヒト由来の組織へのヒト化抗体および対照抗体の結合を示す。マウスおよびヒト組織へのＶＨ３／ＶＫ２の結合。 野生型マウス（陰性対照組織）、Ｐ３０１Ｓマウス（Ｐ３０１Ｓ変異を有するヒトタウを発現し、加齢に関連するタウ病変を発症する。）およびアルツハイマー病または進行性核上性麻痺（ＰＳＰ）のいずれかを有するヒト由来の組織へのヒト化抗体および対照抗体の結合を示す。マウスおよびヒト組織へのＶＨ３／ＶＫ３の結合。 ヒトタウのアミノ酸配列に対するマウス抗体ＨＪ８．５についてのエピトープマッピングを示す。ヒト、アカゲザルおよびマウスのタウ配列を示す（それぞれ、配列番号２１、２２、２３）。ペプチドＰＥＰ＿２８７５８００からＰＥＰ＿２８７５８３０の配列を示す（それぞれ、配列番号２４から５４）。 ＨＪ８．５およびＣ_２Ｎ−８Ｅ１２の詳細なペプチドベースのエピトープマッピングを示す。マッピングは、Ｃ_２Ｎ−８Ｅ１２の結合エピトープが_２５ＤＱＧＧＹＴ_３０ （配列番号９）であり、マウス親、ＨＪ８．５のエピトープとマッチすることを示す。 ヒトまたはアカゲザルタウのいずれかへの種々の抗ヒトタウ抗体の結合結果を例示する。結果は、Ｃ_２Ｎ−８Ｅ１２およびＨＪ８．５がアカゲザルタウには結合しないが、これらがヒトタウへの明確な結合を示すことを明らかにする。ＨＪ８．７はヒトおよびアカゲザルの両方のタウに結合する。 様々なタウオパチーを有するヒト被験者由来のＣＳＦ中のタウへのヒト化抗タウ抗体の結合を示す。様々なタウオパチーを有すると診断された被験者由来のＣＳＦ試料中のタウへのＣ_２Ｎ−８Ｅ１２の結合を評価した。

神経変性におけるタウ病変に対抗する方法としてのタウ免疫療法戦略を支持する強力な実験証拠および生物学的論拠が存在する。第一に、タウは、通常は高度に可溶性で、天然にアンフォールドの細胞内タンパク質であり、そのため細胞外抗体はタウの正常な機能に影響を及ぼす可能性が低い。第二に、タウ病変の負荷は、タウオパチーのヒトおよびトランスジェニックマウスモデルにおける進行性神経機能不全、シナプス喪失および機能低下と相関する。第三に、病的条件下では、タウはミスフォールドとなり、病的タウ原線維から成るニューロン内神経原線維変化（ＮＦＴ）へと凝集する。ヒトタウオパチーでは、この病変は、疾患特異的パターンで１つの脳領域から別の脳領域へと進行する。実験データは、タウ凝集体が細胞から細胞へと広がり、脳内でさらなるタウ凝集とタウ病変の拡大を誘導できることを示唆する。このデータは、１つの細胞内で生成された凝集体が細胞外間隙に放出され、隣接細胞または結合細胞中で凝集を促進できることを示唆する。最後に、抗タウ抗体が、変異ヒト形態のタウを担持するマウスの脳においてタウ病変の進行を防ぐまたは遅くすることができることを実証する先行技術が存在する。

「ヒト化抗体」は、投与後にヒトにおいて免疫応答を誘発する非ヒト抗体の危険性を低減するように修飾されている抗体またはこの変異体、誘導体、類似体もしくはフラグメントである。ヒト化抗体は、本明細書で使用される場合、非ヒト抗体（ドナー抗体）と同じまたは類似のエピトープに免疫特異的に結合する。幾つかの実施形態では、ヒト化抗体は、ヒト抗体のアミノ酸配列を実質的に有するフレームワーク（ＦＲ）領域および非ヒト抗体のアミノ酸配列を実質的に有する相補性決定領域（ＣＤＲ）を含む。ＣＤＲに関連して「実質的に」という用語は、非ヒト抗体ＣＤＲのアミノ酸配列と少なくとも８０％、好ましくは少なくとも８５％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、少なくとも９８％または少なくとも９９％同一のアミノ酸配列を有するＣＤＲを指す。ヒト化抗体は、全部または実質的に全部のＣＤＲ領域が非ヒト免疫グロブリン（即ちドナー抗体）のものに対応し、および全部または実質的に全部のフレームワーク領域がヒト免疫グロブリンコンセンサス配列のものである、少なくとも１つ、典型的には２つの可変ドメイン（Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、ＦａｂＣ、Ｆｖ）の実質的に全部を含む。好ましくは、ヒト化抗体はまた、免疫グロブリン定常領域（Ｆｃ）の少なくとも一部分、典型的にはヒト免疫グロブリンのものも含む。新規フレームワーク領域を含むヒト化抗体が本発明において提供される。

一部の実施形態では、ヒト化抗体は、軽鎖ならびに少なくとも重鎖の可変ドメインの両方を含む。抗体はまた、重鎖のＣＨＩ、ヒンジ、ＣＨ２、ＣＨ３およびＣＨ４領域も含み得る。幾つかの実施形態では、ヒト化抗体はヒト化軽鎖だけを含む。幾つかの実施形態では、ヒト化抗体はヒト化重鎖だけを含む。特定の実施形態では、ヒト化抗体は、軽鎖のヒト化可変ドメインおよび／またはヒト化重鎖だけを含む。

抗体は、ＩｇＭ、ＩｇＧ、ＩｇＤ、ＩｇＡおよびＩｇＥを含む免疫グロブリンの任意のクラスならびに、限定されることなく、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３およびＩｇＧ４を含む任意のアイソタイプから選択され得る。ヒト化抗体は、１つより多いクラスまたはアイソタイプからの配列を含んでよく、個々の定常ドメインは、当分野で周知の技術を用いて所望のエフェクター機能を最適化するように選択され得る。

抗体またはこの抗原結合フラグメントは、ジスルフィド結合したＦｖ、モノクローナル抗体、一本鎖可変フラグメント（ｓｃＦｖ）、キメラ抗体、ＣＤＲ移植抗体、ダイアボディ、ヒト化抗体、多重特異性抗体、Ｆａｂ（抗原結合フラグメント）、二重特異性抗体、Ｆ（ａｂ’）２（典型的にはペプシンでの抗体の切断によって調製される２本の腕の抗原結合フラグメント）、Ｆａｂ’（典型的には穏やかな還元によって、Ｆ（ａｂ’）２を２つの抗原結合フラグメントに分割した成果物）、またはＦｖ（抗原結合可変フラグメント）から成る群より選択される。

「キメラ抗体」という用語は、１つの種に由来する重鎖および軽鎖可変領域配列と別の種に由来する定常領域配列を含む抗体、例えばヒト定常領域に連結されたマウス重鎖および軽鎖可変領域を有する抗体を指す。

「ＶＨ領域」、「ＶＬ領域」または「ＶＫ領域」は、それぞれ重鎖の可変領域（ＶＨ）、λ軽鎖の可変領域（ＶＬ）またはκ軽鎖の可変領域（ＶＫ）を指す。ＶＨおよびＶＬ領域は、フレームワーク領域（ＦＲ）と称されるより保存された領域が散在して組み入れられた、相補性決定領域（ＣＤＲ）と称される超可変性の領域にさらに細分することができる。各々のＶＨおよびＶＬは、以下の順にアミノ末端からカルボキシ末端に配置された、３つのＣＤＲと４つのＦＲで構成される：ＦＲ１、ＣＤＲ１、ＦＲ２、ＣＤＲ２、ＦＲ３、ＣＤＲ３、ＦＲ４。免疫グロブリン分子は、任意のタイプ（例えばＩｇＧ、ＩｇＥ、ＩｇＭ、ＩｇＤ、ＩｇＡおよびＩｇＹ）、クラス（例えばＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４、ＩｇＡ１およびＩｇＡ２）またはサブクラスであり得る。

「フレームワーク」または「フレームワーク配列」という用語は、可変領域からＣＤＲを除いた残りの配列を指す。ＣＤＲ配列の正確な定義は種々のシステムによって決定され得るため、フレームワーク配列の意味はこれに対応して異なる解釈に従う。６つのＣＤＲ（軽鎖のＣＤＲ−Ｌ１、ＣＤＲ−Ｌ２およびＣＤＲ−Ｌ３ならびに重鎖のＣＤＲ−Ｈ１、ＣＤＲ−Ｈ２およびＣＤＲ−Ｈ３）も、軽鎖および重鎖上のフレームワーク領域を各々の鎖上の４つのサブ領域（ＦＲ１、ＦＲ２、ＦＲ３およびＦＲ４）に分類し、ＣＤＲ１はＦＲ１とＦＲ２の間に位置し、ＣＤＲ２はＦＲ２とＦＲ３の間、およびＣＤＲ３はＦＲ３とＦＲ４の間に位置する。特定のサブ領域をＦＲｌ、ＦＲ２、ＦＲ３またはＦＲ４と指定することなく、他の語でも称される、フレームワーク領域は、１本の天然に存在する免疫グロブリン鎖の可変領域内の組み合わされたＦＲを表す。１つのＦＲは４つのサブ領域の１つを表し、複数のＦＲは、フレームワーク領域を構成する４つのサブ領域の２つ以上を表す。

これまでに記述されている多くのヒト化免疫グロブリン（Ｊｏｎｅｓ ｅｔ ａｌ．，Ｖｅｒｈｏｅｙｅｎ ｅｔ ａｌ．，Ｒｉｅｃｈｍａｎｎ ｅｔ ａｌ．）は、特定のヒト免疫グロブリン鎖のフレームワークと同一であるフレームワーク、アクセプターおよび非ヒトドナー免疫グロブリン鎖からの３つのＣＤＲを含んでいる。「ヒト化抗タウ」抗体は、タウに結合することができる非ヒト（ドナー）抗体から作製され、前記結合がヒト抗体（アクセプター）に移植されている抗体を指す。

「ＣＤＲ」という用語は、抗体可変配列内の相補性決定領域を指す。重鎖および軽鎖の可変領域の各々には３つのＣＤＲが存在し、これらは可変領域の各々についてＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３と称される。特許請求される本発明のＶＨおよびＶＬ／Ｋ領域のＣＤＲのアミノ酸配列を図１に示す。

本明細書で使用される場合、一本鎖抗体とも称される、一本鎖Ｆｖという用語は、結合抗体の結合ドメイン（重鎖および軽鎖の両方）を単離し、結合機能の保存を可能にする連結部分を与えることによって調製される改変抗体構築物を指す。２本の鎖の間に挿入されたリンカーペプチドは、適切な折りたたみおよび活性結合部位の創製を妨げることなく可変ドメインの安定化を可能にする。このリンカーは５から３０個のアミノ酸長であってよく、典型的には「ＧＧＧＧＳ」（（Ｇｌｙ）４Ｓｅｒ）（配列番号５５）アミノ酸配列の反復から成る。これは、基本的に、抗原に結合するのに必要な可変ドメインだけを有する大きく短縮された抗体を形成する。

ダイアボディ、トリアボディおよびテトラボディならびにより高次の変異体は、典型的には上記で言及したリンカーペプチドの長さをゼロから数アミノ酸まで変化させることによって創製される。変異体は、ＶＨおよびＶＬドメインが１本のポリペプチド鎖上で発現されるが、同じ鎖上の２つのドメイン間での対合を可能にするには短すぎるリンカーを使用することにより、これらのドメインが別の鎖の相補的ドメインと対合することを強いられ、２つの抗原結合部位を創製する、多価・多重特異性抗体である（例えばＨｏｌｌｉｇｅｒ，Ｐ．，ｅｔ ａｌ．（１９９３）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９０：６４４４−６４４８；Ｐｏｌｊａｋ，Ｒ．Ｊ．，ｅｔ ａｌ．（１９９４）Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ２：１１２１−１１２３参照）。このような抗体結合部分は当分野で公知である（Ｋｏｎｔｅｒｍａｎｎ ａｎｄ Ｄｕｂｅｌ ｅｄｓ．，Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ（２００１） Ｓｐｒｉｎｇｅｒ−Ｖｅｒｌａｇ．Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ．ｐ．７９０（ＩＳＢＮ ３−５４０−４１３５４−５）。または、多価結合抗体変異体が、可変ドメインに連結された自己集合性ユニットを使用して作製できることも当分野で周知である。

二重特異性、三重特異性または多重特異性の抗体は、１つの抗体の重鎖および軽鎖を１つ以上の他の抗体の重鎖および軽鎖と組み合わせることによって創製される。これらの鎖は共有結合で連結され得る。例えば「二重特異性抗体」という用語は、クアドローマ技術（Ｍｉｌｓｔｅｉｎ ａｎｄ Ｃｕｅｌｌｏ（１９８３）Ｎａｔｕｒｅ ３０５（５９３４）：５３７−４０参照）によって、２つの異なるモノクローナル抗体の化学的結合によって（Ｓｔａｅｒｚ ｅｔ ａｌ．（１９８５）Ｎａｔｕｒｅ ３１４（６０１２）：６２８−３１参照）、またはＦｃ領域に変異を導入し、このうちの１つだけが機能的二重特異性抗体である多数の異なる免疫グロブリン種を生じさせるノブ・イントゥ・ホールもしくは類似のアプローチ（Ｈｏｌｌｉｇｅｒ ｅｔ ａｌ．（１９９３）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９０（１４）：６４４４−６４４８参照）によって作製される完全長抗体を指す。分子機能により、二重特異性抗体は、この２本の結合腕（一対のＨＣ／ＬＣ）の１本上の１つの抗原（またはエピトープ）に結合し、およびこの２番目の腕（異なる対のＨＣ／ＬＣ）上の異なる抗原（またはエピトープ）に結合する。二重特異性抗体は２つの異なる結合腕（特異性およびＣＤＲ配列の両方において）を有し、これが結合する各々の抗原に関して一価である。

タウに結合することができる一連のマウス抗体が、当分野で公知の方法を用いて惹起された。Ｈｏｌｔｚｍａｎ ｅｔ ａｌ．，ＷＯ２０１４／０８４０４参照。さらに、これらの抗体は、これらを治療用途のための適切な候補物にし得る特異的生物活性を有する抗体を同定するためにスクリーニングされた。

１つの態様では、本開示は複合ヒト化抗体を提供する。Ｃｏｍｐｏｓｉｔｅ Ｈｕｍａｎ Ａｎｔｉｂｏｄｙ（商標）技術は、ドナー抗体の可変領域（Ｖ領域）配列中の潜在的Ｔ細胞エピトープを同定し、潜在的Ｔ細胞エピトープへの結合が排除されるように抗体または抗原結合フラグメントを操作することによってヒト化抗体を作製する（ＥＰ２，３８８，８７１参照）。単一のヒト軽鎖および重鎖Ｖ領域フレームワークまたはヒトコンセンサスフレームワークをドナー抗体（典型的にはマウス）由来のそれぞれの相補性決定領域（ＣＤＲ）の軽鎖および重鎖「アクセプター」として使用する他のヒト化技術と異なり、Ｃｏｍｐｏｓｉｔｅ Ｈｕｍａｎ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ（商標）は、無関係な複数のヒト抗体のＶ領域由来の複数の配列セグメント（「複合材料」）を含む。

無関係なヒトＶ領域のデータベース由来の配列セグメントは、出発抗体の抗原結合に不可欠と見なされるアミノ酸を決定した後に選択される。ヒトＶ領域データベース由来のすべての選択した配列セグメントを、当分野で公知のコンピュータツールを使用して潜在的ＣＤ４＋ Ｔ細胞エピトープの存在に関してフィルターにかける。Ｃｏｍｐｏｓｉｔｅ Ｈｕｍａｎ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ（商標）は、出発抗体のＶ領域のすべての部分とヒト配列セグメントの密接な適合により、標準的なヒト化抗体よりも良好な親和性および特異性を保持する。Ｃｏｍｐｏｓｉｔｅ Ｈｕｍａｎ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ（商標）は、Ｔ細胞エピトープが激減しており、それゆえヒト化および脱免疫化の両方と見なされる。

１つの実施形態では、ドナー抗体由来のマウス可変領域がヒトアクセプターＩｇＧ中のヒト可変領域に取って代わり、キメラ抗体を生成する。

さらなる実施形態では、ドナー抗体由来のマウスＣＤＲ配列がヒトアクセプターＩｇＧ中のＣＤＲ配列に取って代わり、ヒト化抗体を創製する。ドナー抗体の結合特性を維持するのに不可欠と見なされる潜在的Ｔ細胞エピトープおよびフレームワーク残基を除去するためにさらなる変化がヒト化抗体に組み込まれる。当業者は、ＣＤＲ移植などの他の方法が抗体をヒト化するために使用できることを認識する。

さらなる実施形態では、ヒトタウに結合することができる非ヒト抗体がヒト化される。

本発明の抗体は、ドナー抗体と比較して変化した結合親和性および／または変化した免疫原性を示し得る。幾つかの実施形態では、キメラまたはヒト化抗体は、タウのエピトープに関してドナー抗体と同じ結合親和性を実質的に有する。

さらなる実施形態では、本明細書で述べるヒト化抗体、例えばヒト化抗タウ抗体に基づく一本鎖可変フラグメントは、単量体として結合し得る。

さらなる実施形態では、抗体フラグメントを使用した多価結合は、ダイアボディ、トリアボディ、テトラボディおよび調製され得る他のより高次の変異体を使用することによって達成できる。

さらなる実施形態では、ヒト化抗タウ抗体の重鎖および軽鎖を他の抗体の重鎖および軽鎖と組み合わせて、二重特異性または他のさらなる多重特異性の抗体を形成し得る。

さらに本発明のヒト化抗体、例えばヒト化抗タウ抗体はまた、抗体フラグメント、例えばＦａｂ、Ｆａｂ’単量体、Ｆ（ａｂ）’２二量体または全免疫グロブリン分子の形態であり得る。

１つの実施形態では、本発明は、アミノ酸配列、ＤＱＧＧＹＴ（配列番号９）から成る単離されたペプチドを提供する。このペプチドは、Ｃ _２ Ｎ−８Ｅ１２またはＨＪ８．５として本明細書で述べる抗体のコアエピトープである。本発明の１つの態様では、ペプチドはＸ_{（０−８）}ＤＱＧＧＹＴＸ_{（０−８）} （配列番号５６）を含み、ここでＸは任意のアミノ酸である。説明例は１５マー（図１１参照）を示すが、当業者は、異なる長さのペプチドが本発明に包含されることを認識する。従って、本発明の抗体またはフラグメントは、アミノ酸配列ＤＱＧＧＹＴ（配列番号９）を含むエピトープに特異的に結合し得る。エピトープは、線状または立体構造エピトープであり得、約６から２２個のアミノ酸長であり得る。

他の実施形態では、本発明の方法は、抗体または抗原結合フラグメントでタウオパチーを治療することに関し、ここで抗体またはフラグメントは、タウオパチーを有する被験体に一定の用量で投与される。

抗体または抗原結合フラグメントの適切な用量は、被験体の体重ｋｇ当たりの薬剤ｍｇの単位で表され得る。抗体または抗原結合フラグメントの適切な用量には、少なくとも約０．１ｍｇ／ｋｇ、または約０．２ｍｇ／ｋｇ、または約０．２５ｍｇ／ｋｇ、または約０．３ｍｇ／ｋｇ、または約０．５ｍｇ／ｋｇ、または約０．７５ｍｇ／ｋｇ、または約１ｍｇ／ｋｇ、または約１．２５ｍｇ／ｋｇ、または約１．５ｍｇ／ｋｇ、または約２ｍｇ／ｋｇ、または約５ｍｇ／ｋｇ、または約７．５ｍｇ／ｋｇ、または約１０ｍｇ／ｋｇ、または約１２．５ｍｇ／ｋｇ、または約１５ｍｇ／ｋｇ、または約２０ｍｇ／ｋｇ、または約２５ｍｇ／ｋｇ、または約３０ｍｇ／ｋｇ、または約５０ｍｇ／ｋｇ、または約１００ｍｇ／ｋｇが含まれる。抗体または抗原結合フラグメントの適切な用量は、多くても約２５０ｍｇ／ｋｇ、または多くても約２００ｍｇ／ｋｇ、または多くても約１７５ｍｇ／ｋｇ、または多くても約１５０ｍｇ／ｋｇ、または多くても約１２５ｍｇ／ｋｇ、または多くても約１００ｍｇ／ｋｇ、または多くても約７５ｍｇ／ｋｇ、または多くても約５０ｍｇ／ｋｇ、または多くても約２５ｍｇ／ｋｇ、または多くても約２０ｍｇ／ｋｇ、または多くても約１５ｍｇ／ｋｇであり得る。範囲の最小値が範囲の最大値より低い限り、前記最小値および最大値のいずれかを組み合わせて範囲を定義し得る（例えば約０．１ｍｇ／ｋｇから約２５０ｍｇ／ｋｇまで）。

抗体または抗原結合フラグメントの適切な用量は、被験体に投与される薬剤ｍｇの単位で表され得る。ヒト化抗体または抗原結合フラグメントの適切な用量には、少なくとも約２．５ｍｇ、または少なくとも約５ｍｇ、または少なくとも約１０ｍｇ、または少なくとも約１５ｍｇ、または少なくとも約２０ｍｇ、または少なくとも約２５ｍｇ、または少なくとも約３０ｍｇ、または少なくとも約４０ｍｇ、または少なくとも約５０ｍｇ、または少なくとも約６０ｍｇ、または少なくとも約７０ｍｇ、または少なくとも約８０ｍｇ、または少なくとも約９０ｍｇ、または少なくとも約１００ｍｇ、または少なくとも約１２５ｍｇ、または少なくとも約１５０ｍｇ、または少なくとも約１７５ｍｇ、または少なくとも約２００ｍｇ、または少なくとも約２５０ｍｇ、または少なくとも約１００ｍｇ、または少なくとも約１２５ｍｇ、または少なくとも約３００ｍｇが含まれる。抗体または抗原結合フラグメントの適切な用量は、多くても約２５００ｍｇ、または多くても約２０００ ｍｇ、または多くても約１５００ｍｇ、または多くても約１０００ｍｇ、または多くても約７５０ｍｇ、または多くても約５００ｍｇ、または多くても約４００ｍｇ、または多くても約３００ｍｇ、または多くても約２７５ｍｇ、または多くても約２５０ｍｇ、または多くても約２００ｍｇ、または多くても約１５０ｍｇであり得る。範囲の最小値が範囲の最大値より低い限り、前記最小値および最大値のいずれかを組み合わせて範囲を定義し得る（例えば約５ｍｇから約２５００ｍｇまで。

Ｃ_２Ｎ−８Ｅ１２は、ヒト化組換えＩｇＧ４抗ヒトタウ抗体である。Ｃ_２Ｎ−８Ｅ１２のＩｇＧ４骨格は、半抗体の形成を最小限に抑えるＳ２４１Ｐヒンジ安定化変異を含む。Ｃ_２Ｎ−８Ｅ１２は、すべてのヒトタウスプライス変異体ならびにタウのアミノ末端フラグメントに存在する配列である、ヒトタウ中のアミノ酸２５−３０個（ＤＱＧＧＹＴ）（配列番号９）に結合する。この抗体は、タウオパチー患者由来のヒト脳組織中の単量体タウおよび凝集タウの両方に結合する。Ｃ _２ Ｎ−８Ｅ１２は高度に安定であり、凝集または分解をほとんど伴わない。Ｃ_２Ｎ−８Ｅ１２の一般的な物理特性を表１に列挙する。

本発明を添付の実施例を参照して説明しているが、修正および変法は本発明の精神および範囲内に包含されることが理解される。ここに添付するのは本発明を説明するための実施例であり、これらの全体が参照により本明細書に組み込まれる。

［実施例１］
この実施例は、マウス抗タウ抗体ＨＪ８．５のヒト化のための取り組みと結果を述べる。この取り組みは、４つのヒト化軽鎖可変領域（ＶＬまたはＶＫ）および４つのヒト化重鎖可変領域（ＶＨ）を生じた。

ヒト化とは、一般に、慢性処置のために非ヒトモノクローナル抗体を使用することに関連する潜在的免疫性を低減する技術を指す。免疫原性を低減するために典型的に使用される２つの方法は、ＣＤＲ移植および脱免疫化である。マウス抗体ＨＪ８．５は、Ａｎｔｉｔｏｐｅによって開発された方法を用いて脱免疫化された。

ＣＤＲ移植はタンパク質の遺伝子操作アプローチである。簡単に述べると、これは抗体の基本構造および種間でのこの保存の両方の理解に基づく。マウス抗体とヒト抗体は共通の／保存された構造を共有する。抗体構造は定常領域と可変領域に分けられる。可変領域はさらに、いわゆるフレームワーク領域とＣＤＲ領域に分けることができる。可変領域は４つのフレームワーク（Ｆｗｋ）と３つのＣＤＲで構成されることがわかる。フレームワークとＣＤＲの配置は、軽鎖と重鎖の可変ドメインにおいて同じである。

ＣＤＲ移植では、非ヒト定常領域をヒト定常領域で置換して、いわゆるキメラ抗体を生じさせる。加えて、マウスＣＤＲ領域をヒトフレームワーク領域に移植する；生じる可変ドメインは、ヒトフレームワークとマウスＣＤＲの混合物である。最終段階として、親和性を維持するのに重要な役割を果たすと考えられる、幾つかのマウスフレームワーク残基を移植する（示していない。）。

脱免疫化：ＡｎｔｉｔｏｐｅからのＣｏｍｐｏｓｉｔｅ Ｈｕｍａｎ Ａｎｔｉｂｏｄｙ（商標）技術は、ＣＤＲおよび結合に役割を果たすと考えられるフレームワーク中の鍵となるアミノ酸の両方を同定することと組み合わせて使用される脱免疫化技術であると言われている。生じる完全ヒト化抗体は、出発モノクローナル抗体の結合親和性と特異性を保持し、同時にＣＤ４＋ Ｔ細胞エピトープを有さず、これによりヒトにおける望ましくない免疫原性を回避する。

Ｃｏｍｐｏｓｉｔｅ Ｈｕｍａｎ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ（商標）は、１００，０００個の無関係な完全ヒト抗体可変領域配列を含むＡｎｔｉｔｏｐｅデータベースからのヒト抗体配列の複数のセグメントを組み合わせることによって作製される。ＨＪ８．５抗体の可変領域配列の初期モデリングを使用して、抗体結合に必須のアミノ酸を同定し、次にこれらを使用してヒト配列セグメントの選択を拘束する。この後、ＣＤ４＋ Ｔ細胞エピトープを欠く完全ヒト可変領域配列の選択のために２つのコンピュータによる特許技術（ｉＴｏｐｅ（商標）およびＴＣＥＤ（商標））を用いて個々の配列セグメントおよび隣接セグメント間の接合部を分析する。Ｃｏｍｐｏｓｉｔｅ Ｈｕｍａｎ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓについての可変領域をコードするＤＮＡを合成し、ヒト定常領域と共に発現ベクターにクローニングして、ヒト化抗体の生成のために哺乳動物細胞に移植する。

ＨＪ８．５のヒト化：ＨＪ８．５マウス抗タウ４１２抗体Ｖ領域の構造モデルを、Ｓｗｉｓｓ ＰＤＢを用いて作成し、抗体の結合特性のために必須である可能性が高いＶ領域中の重要な「拘束」アミノ酸を同定するために分析する。分析から、幾つかの拘束フレームワーク残基を完全ヒト化Ｖ領域に含めるための候補物として同定した。これらの残基の１つ以上を含むようにヒト可変領域配列のセグメントを選択した。

完全ヒト化ＨＪ８．５抗体を創製するのに使用できるヒト配列セグメントの予備的なセットを選択し、ヒトＭＨＣクラスＩＩ対立遺伝子に結合するペプチドのコンピュータ解析のためにｉＴｏｐｅ（商標）技術を使用し（Ｐｅｒｒｙ ｅｔ ａｌ ２００８）、および公知の抗体配列関連Ｔ細胞エピトープのＴＣＥＤ（商標）（Ｔ細胞エピトープデータベース）を用いて（Ｂｒｙｓｏｎ ｅｔ ａｌ ２０１０）分析した。ヒトＭＨＣクラスＩＩへの重要な非ヒト生殖細胞系結合因子として同定された、またはＴＣＥＤ（商標）に対する有意のヒットを得た配列セグメントを廃棄した。セグメント間の接合部が潜在的Ｔ細胞エピトープを含まないことを確実にするため、配列セグメントの組合せも分析した。次に選択したセグメントを組み合わせて、合成のために重鎖および軽鎖Ｖ領域配列を作製した。ＨＪ８．５のために、４本のＶＨ鎖および４本のＶκ鎖を設計し、構築した。

図１は、マウスＨＪ８．５抗体の可変領域配列ならびに重鎖および軽鎖の各々についての４つのヒト化変異体配列（４ＶＨおよび４ＶＬ／ＶＫ配列）を示す。これら４本のＶＨ鎖および４本のＶκ鎖のアミノ酸配列を図１に示す。Ｋａｂａｔ ｅｔ ａｌによって定義されたＣＤＲ配列を赤色でハイライトする（下線を付している。）。もとのマウス配列からのフレームワーク変化を青色および太字でハイライトする。

表Ｂ−１は、重鎖および軽鎖可変ドメインの各変異体中に導入されたフレームワーク変化の数を要約する。

図２は、重鎖および軽鎖の各々についてのヒト化可変および定常領域配列（４ＶＨおよび４ＶＬ／ＶＫ配列）の配列を示す。可変重鎖を、Ｓ２４１Ｐヒンジ安定化変異を含むヒトＩｇＧ４の定常重鎖に移植している。可変軽鎖をヒトκ軽鎖の定常軽鎖に移植している。この表は、理論的等電点（ＰＩ）および分子量（Ｍｗ）も列挙する。

図３は、ＶＨおよびＶＫ領域をコードするポリヌクレオチドでトランスフェクトした細胞の２回の一過性発現からの発現データを示す。１３のヒト化抗タウ抗体に関する結果を要約する。重鎖と軽鎖の種々の組合せは、観察された著明に異なるレベルの発現をもたらした。１回目では、ＶＨとＶＬ領域のすべての変異体を互いに組み合わせた（試験した１６のうち１３についての結果だけを示す。２回目には、１回目で認められた６つの最良発現の組合せを試験した。発現を培地ｍＬ当たりの抗体μｇとして示す。より高いレベルの発現は、抗体が正しく折りたたまれ、予想されたように分泌され、非毒性で一般に安定であることを示唆するので、有益である。

図４は効力アッセイからのデータを示す。ヒト化抗タウ抗体変異体をさらに特性づけるため、効力アッセイは、ＥＬＩＳＡ型形式で、ヒトタウへの結合に関してもとのマウスＨＪ８．５（親抗体）と競合する抗体の能力を評価する。このアッセイ形式は、ＥＬＩＳＡプレートをヒトタウで被覆し、次に試験抗体ならびにビオチン化ＨＪ８．５をタウへの結合に関して競合させることを含む。アッセイは、各ヒト化抗体変異体に関する相対的ＩＣ５０値を測定することを可能にする。プレート間での比較を可能にするためＩＣ５０値をキメラＨＪ８．５のＩＣ５０値に標準化する。このデータは、ヒト化工程がヒトタウへのヒト化抗体の結合を有意に変化させなかったことを実証する。

［実施例２］
この試験は、組換えヒトタウ−４１２タンパク質と、６つの完全ヒト化（実施例１で上述した、ＶＨ１／ＶＫ２、ＶＨ１／ＶＫ３、ＶＨ２／ＶＫ２、ＶＨ２／ＶＫ３、ＶＨ３／ＶＫ２およびＶＨ３／ＶＫ３）モノクローナル抗体ならびにＨＪ８．５に基づく１つのキメラモノクローナル抗体との間の相互作用の結合特性を測定し、比較するためのＢｉａｃｏｒｅ Ｔ２００の使用を説明する。この試験の目的は、タウ−４１２とこれら７つのｍＡｂとの間の相互作用の高分解能の動態特性づけのためにＢｉａｃｏｒｅ Ｔ２００表面プラズモン共鳴装置を使用することであった。

抗体を４℃で保存した。タウ−４１２を製造者の指示に従って−２０℃で保存した。ひとたび再溶解すれば、タウ−４１２溶液を氷上で保存し、２４時間以内に使用した。再溶解したタウ−４１２のアリコートは、再溶解から３０分以内に凍結し、−２０℃で保存した。

Ｂｉａｃｏｒｅ装置をＢｉａｃｏｒｅ Ｔ２００ Ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ Ｓｏｆｔｗａｒｅ Ｖ１．１（Ｕｐｐｓａｌａ，Ｓｗｅｄｅｎ）で作動させた。すべての材料は、特に明記されない限りＢｉａｃｏｒｅからであった：
Ｂｉａｃｏｒｅ保守保全キット２ ＢＲ−１００６−５１
シリーズＳ ＣＭ５センサーチップ ＢＲ−１００６−６８
アミンカップリングキット ＢＲ−１０００−５０
１０ｍＭアセテート ｐＨ４．５ ＢＲ−１００３−５１
ＨＢＳ−ＥＰランニング緩衝液 ＢＲ−１００６−６９
１０ｍＭグリシン−ＨＣｌ ｐＨ１．５ ＢＲ−１００３−５４
１０ｍＭグリシン−ＨＣｌ ｐＨ２．０ ＢＲ−１００３−５５
プロテインＡ（Ｓｉｇｍａ） Ｐ６０３１
４Ｍ ＭｇＣｌ_２ヘキサハイドレート（Ｓｉｇｍａ） Ｍ９２７２−５００Ｇ

すべての実験はＢｉａｃｏｒｅ 「ｗｉｚａｒｄ」ソフトウェアで開発した。以下のＢｉａｃｏｒｅ法を使用した：固定化；動態／親和性；ならびに脱着および消毒。

あらゆる試料を試験する前および試験中に、システムチェック（Ｂｉａｃｏｒｅ保守保全キット２）を実施した。試験したすべてのシステムが合格し（試薬ポンプ、屈折計、注入、ノイズ、混合および緩衝液セレクター）、装置が製造者によって定められた基準通りに機能していることを示した。

ＣＭ５／プロテインＡチップの挿入後、システムを準備し、次にＢＩＡ標準化溶液（Ｂｉａｃｏｒｅ保守保全キット２）で標準化した。５℃でインキュベートした試料ラックを用いてすべての試料を２５℃で検査した。チップをシステムに添加し、ＨＢＳ−ＥＰをランニング緩衝液として使用した。

ｍＡｂを供給されたように保存し、すべての固定化（捕捉）試験のために１００ｎＭに希釈した。抗原タウ−４１２を、乾燥粉末からＭｉｌｌｉ−Ｑ水を用いて１ｍｇ／ｍＬの最終濃度に再溶解した；動態試験のためにさらなる希釈を実施した。濃度計算に使用したタウ−４１２の質量および分子量は、試薬製造によって提供された（１００μｇ／バイアルおよび４２．９ｋＤａ）。この溶液には担体タンパク質を添加しなかった。抗原のバイアルは必要時にのみ再溶解し、使用時まで粉末形態にて−２０℃で保存した。ひとたび再溶解すれば、抗原溶液を氷上に保持し、２４時間以内に使用した。

プロテインＡによる捕捉アッセイをこの試験のために選択した。プロテインＡ表面の性能は、同じく試験した抗ヒトプロテインＡ／Ｇ、プロテインＧおよびプロテインＬ表面より優れていた。プロテインＡチップを、標準的なアミンカップリング化学を用いた固定化を介して調製した。固定化は、ＣＭ５シリーズＳセンサーチップ（Ｂｉａｃｏｒｅ）で５００反射率単位（ＲＵ）の標的応答レベルに対して１０ｍＭアセテート緩衝液ｐＨ４．５中５μｇ／ｍＬのタンパク質濃度で実施した。

プロテインＡチップの「全部」および指定Ｆ_ｃｓについての最終応答レベルを表Ｇ−１に示す。

動態実験に関して、チップの表面での物質移動効果を回避するために固定化／捕捉リガンドの量を制限する必要がある。動態実験のために、表面は、理想的には５０−１００ＲＵの最大分析物結合レベル（Ｒ_ｍａｘ）を有するべきである。固定化するリガンドの量は、それゆえ、方程式１：

を用いて計算する。

分析物タウ−４１２に関しては４２．９ｋＤａの平均ＭＷ（試薬製造によって提供された。）、リガンドについては１５０ｋＤａ（抗体に関する推定値）（ｍＡｂ）、Ｒ_ｍａｘについては１００ＲＵを使用し、化学量論（Ｓ_ｍ）を１として、３００ＲＵの標的をすべての試験抗体の捕捉に関して設定した。試験内で得られた捕捉レベルは約２８０−４００ＲＵまで様々であった。２回目および３回目に関しては、所望の３００ＲＵ捕捉レベルにより近づくように注入抗体の量を調整した。

非特異的結合は、リガンド（非特異的で検出が困難）、捕捉タンパク質またはセンサーチップ表面のいずれかと相互作用する分析物または分析物混入物に起因し得る。タウ−４１２の比較的高い濃度（４０ｎＭ）の３００秒の注入後にブランクＦ_ｃ１表面の応答を分析することにより、カルボキシ−デキストラン表面またはプロテインＡ捕捉表面に対するＮＳＢ（非特異的結合）は観察されなかった。タウ−４１２濃度＞１００ｎＭでは、カルボキシ−デキストランチップ表面への有意のＮＳＢが認められた；しかしながら、この範囲内の濃度はこの後の動態分析には必要でなかった。

再生条件検討を実施し、プロテインＡ表面上のキメラおよびＶＨ１／ＶＫ２抗体の再生のための最適条件は以下のとおりであった。すべて４０μＬ／分で、１０ｍＭグリシン−ＨＣｌ ｐＨ１．７の３回の２４０秒注入の後に１回の４Ｍ ＭｇＣｌ_２の３００秒注入を実施した。次の結合サイクルを開始する前に表面を安定させるため、最後の再生注入後に６００秒の待機段階を導入した。

初期試験は、選択した緩衝液「ＨＢＳ−ＥＰ」が動態分析に適した再現可能な系を生じることを示したので、緩衝液の検討実験は実施しなかった。

表面の性能を、開始時、間隔をおいておよび動態試験の最後に２．５ｎＭタウ−４１２の反復制御注入によって分析した。安定な結合が動態試験全体を通じて認められ、動態分析のための系の適切性を強調した。

会合の速度が、チップ表面へのおよびチップ表面からの分析物の移動の速度に関連する有意の成分を含む場合、物質移動制限が起こる。物質移動が有意であると認められる場合、生じる動態分析は不正確であり得る。固定化リガンドの密度を低下させるまたは流量を増加させることにより、質量移動制限を低減することができる。低密度表面および類似の分子量の抗原を使用した以前の実験から、４０μＬ／分の流量をこの試験のために選択した。

１対１結合モデルからの逸脱を調べるために、関連反応制御実験を使用してリガンド−分析物相互作用を評価する。分析物を種々の時間（接触時間）表面に注入し、解離速度を分析して、解離速度が接触時間と共に変化するかどうかを決定する。このような関係が認められる場合、これは、表面に安定化複合体を生じる初期結合事象後に２番目の相互作用事象が起こっていることを示す。

捕捉アッセイ形式を用いた以前の実験、１．５の見掛け結合化学量論および１対１モデルが生じる動態データに信頼性を持って適合し得ることから、より複雑な動態相互作用を支持するさらなる証拠は存在しないので、関連反応制御実験は実施しなかった。

１対１結合モデルを使用して、生じる動態データに適合させた（方程式２）。捕捉される抗体の量に変動があるため、パラメータＲ_ｍａｘは、各々の抗体動態分析の大域解析とは対照的に局所解析に設定した。

抗体特性づけ：プロテインＡ捕捉表面に関して実施した特性づけおよび制御実験は、これがタウ−４１２相互作用についての動態値を決定するための適切な系であることを示唆した。試験プロテインＡ表面の２７７ＲＵの捕捉ＶＨ１／ＶＫ２上に飽和濃度のタウ−４１２（１０００ｎＭ）を注入することによって結合化学量論を評価した。１０００ｎＭのタウ−４１２の２回の連続注入は、１２２ＲＵで飽和結合を生じさせると思われた。これは、１個のタウ−４１２分子に対する１個の抗体分子の結合に関して予想されるよりも高い、１５０％の結合化学量論をもたらした。この理由には、タウ−４１２の２個の分子への抗体の結合またはチップの表面でのタウ−４１２のオリゴマー化が含まれると考えられた。

潜在的な質量移動効果を最小限に抑えるために４０μＬ／分の流量で動態データを得た。動態サイクルの間の表面および分析物の両方の安定性を調べるために、ブランク（抗原なし）および２．５ｎＭ濃度の分析物の２回の反復を動態試験に組み込んだ。初期動態試験に関しては、４０ｎＭから０．１５６ｎＭのタウ−４１２の２倍希釈を試験した。動態分析のためおよびこの後の試験時には、２０ｎＭから０．６２５ｎＭの分析物範囲を選択した。この範囲は、報告されているＫ_Ｄより上と下の両方の多数の分析物濃度を含んだ。

より高濃度の分析物の一部を定常状態に至らせるために会合相を５００秒間観測した。動態サイクルの解離相の間の十分なシグナル低下（＞１０％）を観察するため、解離を１２００秒間測定した。第５章で論じたように、Ｆ_ｃｓを各再生段階後６００秒間安定化させた。参照チャネルＦ_ｃ１からのシグナルをＦ_ｃ２、Ｆ_ｃ３およびＦ_ｃ４のシグナルから差し引いた。

Ｂｉａｃｏｒｅ Ｔ２００でプロテインＡ捕捉システムを使用して測定した７つのｍＡｂとタウ−４１２の相互作用に関する動態パラメータを表Ｆ−２に示す。各結合サイクル間の抗体の捕捉レベルの差を補正するため、局所Ｒ_ｍａｘパラメータを１対１結合モデルで使用した。タウ−４１２および抗体の新鮮調製物を使用した３回の独立した実験で動態分析を実施した。１回目と２＋３回目は、抗原タウ−４１２の異なるバイアルを使用した；それゆえ平均応答に関連する報告された誤差は、おそらく分析物の調製別の変動およびアッセイの設定と実施における相違である。１回目から２＋３回目まで、標的の３００ＲＵ捕捉レベルにより近づけるように注入抗体の量を調整した。１回目に関しては、キメラ抗体を３回重複して試験し、３つ全部のデータセットの分析を表Ｆ−２に示す。これら３つのデータセットから導かれたＫ_ＤのＣＶ％は４．３％であり、結果がアッセイの変動性の範囲内であることを示した。

Ｃｈｉ^２値は、会合データと解離データが提案された１対１結合モデルにどの程度良好に適合するかを示し、値が低いほど適合が良好である。速度定数に関する関連ＳＥ値は、記述されているモデルにデータを適合させることに関連する不確実性を表し、真の動態値についての全面的な不確実性を示すわけではない。平均応答データは、２または３つの独立した分析からの平均動態値および関連ＳＤを表す。

表Ｆ−２からの平均Ｋ_Ｄ値を使用して、親和性に基づき抗体を以下のように順位づけることができる：ＶＨ３／ＶＫ２＞ＶＨ３／ＶＫ３＞キメラ＞ＶＨ２／ＶＫ３＞ＶＨ１／ＶＫ３＞ＶＨ１／ＶＫ２＞ＶＨ２／ＶＫ２。平均動態パラメータに関連するＣＶ％は１０−２０％の範囲であり、従ってすべての抗体が非常の類似した親和性を有しており、差は純粋にアッセイ変動の結果である可能性が高い。一般に、抗体間結合の差はアッセイ変動に起因すると考えられ、キメラ抗体と比較してヒト化抗体のＫＤ値に有意差はないと考えられる。

抗体とタウ−４１２の間の相互作用に関してＢｉａｃｏｒｅ Ｔ２００でプロテインＡ捕捉アッセイを用いて測定した動態値の比較を示す。キメラ抗体は、ヒト化抗体と比較した場合、親和性は同様であるが、有意に異なる結合プロフィールを示すと思われる。ｋ _ｄ 対ｋ _ａ のプロットは、Ｂｉａｃｏｒｅ Ｔ２００でプロテインＡ捕捉アッセイを用いて測定した試験抗体とタウ−４１２との相互作用の相対的動態値を示す。破線の対角線は等親和性のラインを表す。プロット上のヒト化抗体の明瞭さを高めることを目的として、軸は異なるデータ範囲を示すことに留意されたい。

図５は、ヒトタウに対する６つの最良発現ヒト化構築物の結合動態を測定する、表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）分析からの結果を要約する。試験抗体を種々の濃度のヒトタウと共にＳＰＲチップ上に固定化し、次にチップの上を流動させる。測定された結合事象に基づき会合速度と解離速度ならびに親和性を変異体の各々に関して計算する。キメラ変異体も試験した。

［実施例３］
図６は、サンドイッチ型ＥＬＩＳＡにおける可溶性ヒトタウへの４つのヒト化抗体変異体の結合を示す。受動吸着に依存するアッセイ方法は、人為的結合結果を作り出す潜在的可能性を有する。この可能性を克服するため、ヒト化抗体変異体の結合活性を測定する溶液ベースの方法を用いた。このアッセイ形式では、抗原（ヒトタウ）を、ＨＪ８．５とは異なるエピトープを認識するモノクローナル抗ヒトタウ抗体によって捕捉する。捕捉されたヒトタウへのヒト化抗タウ抗体のこの後の結合は抗原濃度に依存するが、ＩｇＧ４アイソタイプ対照は全く結合を示さない。このアッセイは、ヒトタウへのヒト化抗タウ抗体の結合が特異的であり、抗体が可溶性ヒトタウに結合することを明らかにする。

［実施例４］
図７（Ａ−Ｈ）は、野生型マウス（陰性対照組織）、Ｐ３０１Ｓマウス（Ｐ３０１Ｓ変異を有するヒトタウを発現し、加齢に関連するタウ病変を発症する。）およびアルツハイマー病または進行性核上性麻痺（ＰＳＰ）のいずれかを有するヒト由来の組織へのヒト化抗体および対照抗体の結合を示す。この試験の目的は、ヒト化抗体が、キメラ形態のＨＪ８．５と比較して組織中の凝集タウに結合する能力を保持することを確認することであった。図は、ヒト化ＨＪ８．５抗体の種々の変異体でヒトおよびマウス脳を染色した代表的な画像を示す。４か月齢および９か月齢のＰ３０１Ｓマウスを試験し、両方の時点のマウスがタウの病的凝集体を示し、９か月齢のマウスは４か月齢のマウスよりも多くのタウ病変を有していた。ヒト染色に関しては、ＰＳＰを有する１名の被験者由来の脳組織の試料およびＡＤを有する１名の被験者由来の脳組織の試料を検査した。図７Ａは、マウスおよびヒトＡＤ組織に関するキメラＨＪ８．５での染色を例示する。図７Ｂは、陰性対照抗体（非特異的ヒトＩｇＧ４）での染色を例示する。図７Ｃ−７Ｈは、６つのヒト化抗体での染色を例示する。マウスＨＪ８．５抗体のすべてのヒト化変異体は、Ｐ３０１Ｓマウス脳において認められるタウ凝集体ならびにＡＤまたはＰＳＰのいずれかを有すると診断された被験者の脳組織中で認められるタウ凝集体に結合する。

［実施例５］
図８は、ヒトタウ中のＨＪ８．５のエピトープを示す。酵母ディスプレイを用いてエピトープをマッピングした。この方法のために、酵母を使用してヒトタウの配列をカバーする様々なペプチドを発現させた。培養下の酵母へのＨＪ８．５抗体の結合を免疫蛍光検査によって測定した。最初の３４個のアミノ酸を含むタウの変異体を発現する酵母への結合が認められたが、酵母がタウの最初の３２個のアミノ酸だけを発現する場合は結合が認められなかった。これは、エピトープが最初の３４個のアミノ酸内に存在することを示唆する。加えて、ＨＪ８．５は、ペプチドがアミノ酸２７−１３５個を含む場合は結合するが、ペプチドがアミノ酸３０−１３５個にわたる場合は結合しない。これは、エピトープがアミノ酸２７個より大きいアミノ酸を含むことを示唆する。このデータに基づき、エピトープはヒトタウの２７−３４個の配列（ＧＹＴＭＨＱＤＱ）（配列番号１０）内に含まれる。図８はまた、アカゲザルおよびマウスタウ配列も示し、ヒトタウからのアミノ酸変化を赤色でハイライトする。

図９は、ＨＪ８．５およびＣ_２Ｎ−８Ｅ１２のより詳細なペプチドベースのエピトープマッピングを示す。ヒトタウの完全配列（ＩＮ４Ｒ、４１２個のアミノ酸）にわたる線状１５量体のペプチドライブラリを創製した。加えて、アミノ酸１０個および１１個がアラニンに変化したこれらのペプチドの二重アラニン型も作製した。二重アラニンライブラリのために、１０または１１位の任意の天然に存在するアラニンをグリシンに変異させた。すべてのペプチドをペプチドアレイ上にスポットし、次にＨＪ８．５またはＣ_２Ｎ−８Ｅ１２でプローブして、結合を測定した。両抗体のタウ結合エピトープを、これらのペプチドアレイを用いて信頼できるようにマッピングした。Ｃ_２Ｎ−８Ｅ１２の結合エピトープは_２５ＤＱＧＧＹＴ_３０ （配列番号９）であり、マウス親、ＨＪ８．５のエピトープにマッチする。ＨＪ８．５およびＣ_２Ｎ−８Ｅ１２のタウペプチドへの結合は、エピトープ中のアミノ酸Ｄ、Ｑ、ＹまたはＴをアラニンで置き換えた場合、大きく低下し、これらが抗体結合において極めて重要な役割を果たすことを示唆した。しかし、エピトープ中の中央の２個のグリシンをアラニンで置き換えた場合は、タウペプチドへの抗体の結合はあまり低下しなかった（ＰＥＰ ２８７５８１１）。これは、これらのアミノ酸が結合に重要ではないことを示すのではなく、アラニンとグリシンアミノ酸との間の置換の保存的性質に起因する可能性が高い。これらのより詳細な方法を用いてマッピングしたエピトープは、酵母ディスプレイを使用してマッピングしたものとわずかに異なる（図８）。この相違は結合アッセイの相違に帰せられ、酵母ディスプレイシステムではより大きなペプチドが使用される。１５量体ペプチドアレイの方法は酵母ディスプレイ法よりも優れていると考えられる。

［実施例６］
図１０は、ヒトまたはアカゲザルタウのいずれかへの種々の抗ヒトタウ抗体の結合結果を例示する。ヒト化変異体ＶＨ１／ＶＫ２（Ｃ _２ Ｎ−８Ｅ１２とも称される。）と共にマウス抗ヒトタウ抗体ＨＪ８．５およびＨＪ８．７を試験した。図８は、特許請求される結合エピトープ配列ＧＹＴＭ（Ｈ／Ｌ）ＱＤＱ（配列番号５７）において、ヒトとアカゲザルタウの間で３２位に１個のアミノ酸相違が存在することを示す。図８は、特許請求される結合エピトープ配列ＤＱ（Ｇ／Ｅ）ＧＹＴ（配列番号５８）において、ヒトとアカゲザルタウの間で２７位に１個のアミノ酸相違が存在することを示す。２つの種のタウの間でのこれらのアミノ酸相違が抗体ＨＪ８．５／Ｃ_２Ｎ−８Ｅ１２の結合能力に影響を及ぼすかどうかを調べるため、以下の実験を実施した。ヒトおよびアカゲザルタウへのＣ _２ Ｎ−８Ｅ１２、ＨＪ８．５（Ｃ _２ Ｎ−８Ｅ１２のマウス前駆体）およびＨＪ８．７（ヒトとアカゲザルのアミノ酸配列が１００％保存されているタウのエピトープに結合するマウス抗ヒトタウ抗体）の結合を、９６ウェルＥＬＩＳＡプレートを様々な濃度のヒトタウまたはアカゲザルタウのいずれかで被覆することによって測定した。本発明者らの結果は、Ｃ_２Ｎ−８Ｅ１２およびＨＪ８．５はアカゲザルタウには結合しないが、これらがヒトタウへの明確な結合を示すことを明らかにした。予想されたように、ＨＪ８．７はヒトおよびアカゲザルの両方のタウに結合する。

［実施例７］
図１１は、様々なタウオパチーを有するヒト被験者由来のＣＳＦ中のタウへのヒト化抗タウ抗体の結合を示す。様々なタウオパチーを有すると診断された被験者ならびに年齢がマッチする健常対照および若年健常対照被験者由来のＣＳＦ試料中のタウへのＣ_２Ｎ−８Ｅ１２の結合を評価した。サンドイッチＥＬＩＳＡを使用して、ＡＤ、ＣＢＤ、ＦＴＤまたはＰＳＰを有する被験者ならびに年齢がマッチするおよび若年／成人対照由来のヒトＣＳＦ中のタウへのＣ_２Ｎ−８Ｅ１２の結合を明らかにした。Ｃ_２Ｎ−８Ｅ１２を、ＣＳＦ試料中のタウを捕捉するための被覆抗体として使用した。ビオチン化マウスモノクローナルタウ抗体ＨＪ８．７を検出抗体として使用した。対照ヒトＩｇＧ４で被覆したウェルは実験の陰性対照としての役割を果たした。Ｃ_２Ｎ−８Ｅ１２被覆ウェルと対照ＩｇＧ４被覆ウェルからのシグナルには大きな差が観察され、ヒトＣＳＦ試料中のタウへのＣ_２Ｎ−８Ｅ１２の特異的結合を明らかにした。標準曲線（組換えタウ）を含めることにより、これらのＣＳＦ試料中のタウ濃度に関する定量的情報を得ることが可能である。

［実施例８］
この試験は、最大１０施設までで実施される無作為化、二重盲検、プラセボ対照、単回増加量（ＳＡＤ）第１相試験である。Ｃ_２Ｎ−８Ｅ１２の単回与の安全性、耐容性、免疫原性およびＰＫを評価し、今後の反復投与試験において使用されるＭＴＤを確立するように設計されている。

この試験の主要目的は、ＰＳＰを有する被験者においてＣ_２Ｎ−８Ｅ１２の単回投与の安全性、耐容性、免疫原性および最大耐容量（ＭＴＤ）を決定することである。安全性評価には、理学的および神経学的検査、臨床安全性検査室検査、免疫原性、有害事象、生命徴候および併用薬検査が含まれる。

副次的目的は、単回注入後の最大血漿濃度；単回注入後の曲線下面積（ＡＵＣ）；注入後に最大濃度が達成される時間；Ｃ_２Ｎ−８Ｅ１２の終末半減期；脳脊髄液（ＣＳＦ）へのＣ_２Ｎ−８Ｅ１２の分配；ならびに血液およびＣＳＦ中の可溶性タウレベルの測定を介した生物学的標的係合を含む、単回投与の全身薬物動態を測定することならびにＣ_２Ｎ−８Ｅ１２−タウ複合体の存在を評価することである。

この試験は、ＰＳＰを有する３２名の被験者（処置群２４名およびプラセボ群８名）を登録する予定である。被験者は、４名の患者の８ブロックに登録され、各ブロック中の１名の患者がプラセボに無作為に割り当てられ、３名がＭＴＤの現在の推定値に割り当てられる。ＤＬＴが起こる場合は付加的な被験者が登録され得る。しかし、用量増加工程の間に、用量を飛ばして進むことはできない。

統計的設計の章で述べるように用量増加に関する連続再評価法（ＣＲＭ）を使用する。用量ごとのＤＬＴの確率を同定するためにロジスティックモデルを使用する。

Ｃ_２Ｎ−８Ｅ１２は、２０ｍｇ／ｍＬの名目濃度で使い捨てボトル中の凍結液体として臨床施設に発送される。各ボトルはＣ_２Ｎ−８Ｅ１２ ３００ｍｇを含有し、−７０℃から−８０℃で保存しなければならない。

患者は、選択基準および除外基準を満たすどうかを評価するスクリーニングを受ける。スクリーニングは、血液およびＣＳＦの評価ならびにＭＲＩも含む。投与の当日（０日目）、Ｃ_２Ｎ−８Ｅ１２の単回用量を、ＩＶラインを介して投与し、投与後２４時間、臨床施設で被験者を注意深く観察する。これは、安全性およびＰＫ評価のための血液試料を含む。これに続く３日間ならびに注入後１週目と２週目に、さらなる臨床検査と血液採取を行う。さらなる安全性ＭＲＩおよびＣＳＦ試料採取を注入後４日目に実施する。被験者を、投与の日から２か月間以上、２８日ごと（例えば５６日目）に追跡調査する。この後、以下の事象のいずれかが早期に発生するまで、月１回の測定を継続する：（ｉ）Ｃ_２Ｎ−８Ｅ１２がもはや血液中で検出できない；（ｉｉ）主催者が試験の完了を決定する；（ｉｉｉ）被験者が試験への参加を早期に中止することを決定する。

第１相試験の目標は、この後の第２相／ＭＡＤ試験における評価のための用量の推奨範囲を決定するための、臨床検査室検査、理学的および神経学的検査ならびに有害事象の発生を含む安全性評価によって評価される、ＭＴＤの確立を含む。被験者の無作為な割り当ておよびプラセボ群を含めることにより、バイアスを回避し、既知および未知の両危険因子が処置群の間で均一に分布する可能性を高める。

データ安全性監視委員会（ＤＳＭＣ）は、安全性データを継続的に検討する。安全性監視委員会は、最小限で２名の独立した医師、１名の生物統計解析者、ＰＳＰに関する専門知識を有する１名の医師および主催者からの投票権のない１名の成員で構成される。いずれかの個別の試験被験者がＳＡＥを経験した場合、この被験者に関するすべての利用可能な安全性データを検討し、事象がＤＬＴの定義に合致するかどうかおよびＭＴＤが確立されているかどうかを判定する。ＭＴＤが確立されておらず、および患者の登録が継続される場合、ＤＳＭＣは、この後の登録患者の安全性を確保するために何らかのさらなる措置またはプロトコルの修正が必要かどうかの勧告を主催者に提供する。主催者は、試験の何らかの修正または早期中止に関する最終的な決定を下す。

用量制限毒性は、ｉ）Ｃ_２Ｎ−８Ｅ１２が事象を引き起こした妥当な可能性が存在する、リウマチ学共通毒性基準（Ｒｈｅｕｍａｔｏｌｏｇｙ Ｃｏｍｍｏｎ Ｔｏｘｉｃｉｔｙ Ｃｒｉｔｅｒｉａ）ｖ２による何らかのグレード３以上のＡＥ；（ｉｉ）臨床的に有意と見なされ、Ｃ_２Ｎ−８Ｅ１２が事象を引き起こした妥当な可能性が存在する、ＮＣＩの有害事象に関する共通用語基準（Ｃｏｍｍｏｎ Ｔｅｒｍｉｎｏｌｏｇｙ Ｃｒｉｔｅｒｉａ ｆｏｒ Ａｄｖｅｒｓｅ Ｅｖｅｎｔｓ）ｖ４．０（ＣＴＣＡＥ）の神経系および精神障害の器官別大分類の何らかのグレード２のＡＥ；または（ｉｉｉ）Ｃ_２Ｎ−８Ｅ１２の注入中または注入の完了後２４時間以内に発生し、注入速度の低下および／または支持療法で速やかに消失しない、何らかの注入関連毒性（例えばアレルギー反応／過敏症）と定義される。

用量増加：用量コホートへの被験者の割り当ては以下の規則によって決定される：（１）４名の患者の各ブロック内で、１名の患者はプラセボ群に割り当てる；（２）より高い用量レベルに増加する前の用量レベルで少なくとも３名の患者に関して完全な毒性情報が必要である；（３）１つのコホートから次のコホートへの増加の最大増分は１用量レベルである；および（４）少なくとも１２名の被験者（３ブロック）はＭＴＤ用量レベルで投与されるべきである。

各々４名の患者のコホート内で、患者に連続的に投与し、安全性保証のさらなる測定を提供するために連続する被験者の投与の間には少なくとも２日の最低間隔をおく。

最初のコホートはｄ_１に割り当てる。コホートごとに完全な毒性情報が得られた後、統計モデルを更新する。規則に従って、直近のコホートのすべての被験者についての完全な毒性情報が得られる前に１つの追加コホートを登録し得る。次のコホートが登録され、無作為化されるまで、３名以下の患者に関しては不完全な毒性データが許容される。

後続の各コホートは、上記の定義に従ってＭＴＤであると推定される用量に割り当てる。患者の集積が遅れる場合は、各患者が登録され、後続の各患者が現在の推定ＭＴＤを投与されるときにモデルを更新し得る。

試験集団：この試験は、５０歳から８５歳までの進行性核上性麻痺（ＰＳＰ）を有する男性および女性被験者を登録する。

選択基準：試験に組み入れるために、各被験者はインフォームドコンセントを提供する意思があり、提供することができなければならない。処置プロトコルの開始前に、各患者が処置プロトコルについての同意を提供できることが確認される。被験者は試験に参加することを要請され、インフォームドコンセント書式に署名した後、スクリーニング手順が実施される。被験者が選択基準を満たすことができないまたは除外基準のいずれかに合致する場合、被験者はスクリーニング評価または処置スケジュールに登録されない。

各被験者は、この試験に登録されるには以下の基準を満たさなければならない：男性または女性；５０歳から８５歳までの年齢；以下を含む、ＮＮＩＰＰＳおよびＡＬ−１０８−２３１臨床試験に関して修正されたＮＩＮＤＳ−ＳＰＳＰの可能性または蓋然性基準を満たす：（ｄ）核上性注視麻痺または衝動性眼球運動速度低下、（ｉｉ）症状の最初の３年以内の歩行不安定性または転倒；スクリーニング時の脳ＭＲＩがＰＳＰと一致する（＜４の微小出血および大きな脳卒中または重篤な白質疾患なし）；ＰＳＰ評価スケールで２０から５０のスコア；基線時に参加に対するインフォームドコンセントを提供することができるまたはインフォームドコンセントを提供することができない場合は、参加への同意を提供することができ、およびコンセントを与えることができる正式な医療担当者を有している；少なくとも週に５時間患者に会い、患者の試験参加のための受診および同意に付き添うことができる試験パートナーを有している；他の併用非生物学的製剤療法は許容されるが、登録前の少なくとも３０日間用量が安定していなければならない；最小限の補助（一方の腕の安定化または杖／歩行具の使用）で５歩歩くことができる；レボドパ、ドーパミンアゴニスト、ラサギリン、ＣＯＭＴ阻害剤、アマンタジン、メマンチンまたはコリンエステラーゼ阻害剤を含む、スクリーニング前少なくとも２か月間のパーキンソン症候群のための安定な薬物治療；４−１８か月間にわたる３回までの腰椎穿刺、被験者が第１相／ＳＡＤ試験と第２相／ＭＡＤ試験の両方に参加する場合は６回までの腰椎穿刺に同意する；被験者から署名と日付の入った書面のインフォームドコンセントが得られる；プロトコルで規定された避妊方法を使用することに同意する（下記参照）。

以下の基準のいずれかに合致する被験者は試験から除外される：以下を含む、ＰＳＰ以外の神経障害のタイプの基準により良好に合致する進行性神経障害の徴候：（ａ）蓋然的アルツハイマー病の基準を満たすまたは（ｂ）レヴィー小体を伴うパーキンソン認知症、多系統萎縮症（ＭＳＡ）もしくは筋委縮性側索硬化症（ＡＬＳ）の研究基準を満たす；スクリーニングの５年以内の何らかの悪性疾患（皮膚の非転移性基底細胞癌以外）；試験者の専門的判断に基づく、スクリーニング時の臨床的に有意の腎または肝機能不全；試験者の専門的判断に基づく、試験登録前３か月以内の臨床的に有意の心臓血管事象；試験者の専門的判断に基づく、スクリーニングの間の臨床的に有意の血液学的異常または化学検査室検査結果の異常；直近９０日以内に何らかの理由で事前のモノクローナル抗体療法を受けているまたは過去３０日以内もしくは５半減期以内（いずれか長い方）に何らかの他の試験薬を摂取した。Ｃ_２Ｎ−８Ｅ１２の事前投与はこの除外基準には適用されず、それゆえ被験者が第２相／ＭＡＤ試験に参加することは不適格と見なさない；現在何らかの他の生物学的または免疫調節療法を受けている：症状の発症以来５年を超える疾患持続期間；スクリーニングＭＲＩスキャンで中脳体積＞８，６００ｍｍ^３；高度看護施設または認知症ケア施設に居住する被験者；ＡＬＳ病変と一致する、検査での運動ニューロン疾患の明確な証拠を有する（これはＣＢＳ（大脳皮質基底核症候群）の症状を伴うＣ９０ＲＦ７２遺伝子保因者において記述されている。）；試験者の専門的判断に基づく、認知障害を説明し得る他の何らかの重要な無関係の神経または精神障害（例えば活動性発作障害、脳卒中、血管性認知症）の診断；臨床判断およびＧＤＳ（高齢者うつ病評価尺度）の結果に基づく、基線評価時の未処置の大うつ病；他の重要な精神疾患の病歴；自殺未遂の前歴；試験者の見解で転帰測定の収集を不可能にする、ＭＭＳＥによって評価される重度の認知障害（＜１７）；評価プロトコルに参加することができない；安全上のリスクを高めるまたは試験データの適切な解釈を妨げる、一般にスクリーニング時に採取された血液試料からの有意の異常値；臨床的に有意の細菌、真菌またはミコバクテリア感染の現在または最近の既往歴（スクリーニング前４週間以内）；スクリーニング時のＭＲＩスキャンを耐容できないまたはＭＲＩに対する他の何らかの禁忌；ワルファリンなどの抗凝固薬の使用を含む、スクリーニング時の腰椎穿刺に対する何らかの禁忌または腰椎穿刺を耐容できない。８１ｍｇのアスピリンまたは類似の抗凝固薬の毎日の投与は、用量がスクリーニング前３０日間安定である限り、許容される；試験者の見解で、投与スケジュールまたは試験評価に従うことができないまたは従わない可能性が高い被験者；スクリーニングの３か月以内の別の介入的臨床試験への参加；スクリーニングの３０日以内の別試験薬での処置；４５０ミリ秒を超える何らかの既存のＱＴｃＦ持続時間；被験者が主催者の従業員もしくは家族の一員または試験施設の職員もしくは職員の家族の一員である。

被験者は、試験全体を通しておよび最後の処置期間の最後の試験薬投与後５６日目まで、基線受診時に開始される許容される避妊方法を使用する（および／またはパートナーに使用させる。）ことに同意しなければならない。許容される避妊方法を以下に列挙する。

試験薬：第１相／ＳＡＤ試験は、拡大アクセス（治験用新薬利用範囲拡大制度）ＩＮＤ １１９４０４において現在使用されているＤＰロット番号１０１８７７５−研究細胞バンク（Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｃｅｌｌ Ｂａｎｋ）（ＲＣＢ）材料からのＣ_２Ｎ−８Ｅ１２を使用する。これはｐＨ５．５の２５ｍＭアセテート緩衝液中に製剤されており、２０ｍｇ／ｍＬの濃度で提供される。プラセボ：プラセボは、活性試験薬を含まずにＣ_２Ｎ−８Ｅ１２と同一に製剤されている。

用量の理論的根拠：最大推奨出発用量（ＭＲＳＤ）は、食品医薬品局（ＦＤＡ）の製薬業界向けガイダンス「Ｅｓｔｉｍａｔｉｎｇ ｔｈｅ Ｓａｆｅ Ｓｔａｒｔｉｎｇ Ｄｏｓｅ ｉｎ ｔｈｅ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｔｒｉａｌｓ ｆｏｒ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ ｉｎ Ａｄｕｌｔ Ｈｅａｌｔｈｙ Ｖｏｌｕｎｔｅｅｒｓ」を用いて計算した。ガイダンスにより、ＩＶ投与される分子量＞１００，０００ダルトンの試験治療用タンパク質に関して、ＭＲＳＤは、体表面積スケーリングによってではなく種間で標準化することによって推定されるべきである。マウス毒性試験で認められた２５０ｍｇ／ｋｇの無影響量（Ｎｏ Ｏｂｓｅｒｖｅｄ Ｅｆｆｅｃｔ Ｌｅｖｅｌ）（ＮＯＥＬ）に基づき、１０の標準安全係数で用量を２５ｍｇ／ｋｇに制限する。

第１相／ＳＡＤ試験の出発用量はＩＶ投与で２．５ｍｇ／ｋｇである。この出発用量は、４週間のマウス毒性試験に基づく最大許容出発用量より１０倍低く、拡大アクセスおよびＣ_２Ｎ−８Ｅ１２を含む例外的使用のヒト処置プロトコルで投与される現在の最大用量（１５ｍｇ／ｋｇ）より６倍低い（「試験者資料集」参照）。

単一患者試験からの予備的血漿ＰＫに基づき、２．５ｍｇ／ｋｇ用量のＣ_２Ｎ−８Ｅ１２投与後の様々な時点でＣ_２Ｎ−８Ｅ１２によって結合されるＣＳＦ中のタウのパーセントを推定することが可能である。この計算のために、ヒト化抗体のＣＳＦ濃度は血漿濃度の０．１％であり、ＣＳＦ中のタウの濃度は５００ｐｇ／ｍＬであると仮定する。これらの仮定に基づき、２．５ｍｇ／ｋｇの用量は、最初の１か月間にわたってＣＳＦ中のタウのモル濃度より３から４０倍高いＣ_２Ｎ−８Ｅ１２のＣＳＦ濃度をもたらす。Ｃ_２Ｎ８Ｅ１２のＫ_Ｄに基づき、２．５ｍｇ／ｋｇ用量は抗体によるＣＳＦ中のタウの３−２６％の結合を生じさせる。同様のモデリングを、これまでにヒトに投与された最高用量（１５ｍｇ／ｋｇ）からのＰＫデータに関して実施し、２８日間にわたる平均タウ結合は約５０％（最大７２％、最小４０％結合）であると推定された。また、ＣＳＦ区画を介してアクセスできないが、抗体が結合することができる細胞外タウが脳内に豊富に存在する可能性も高い。それゆえ、脳内で有意の標的係合をもたらす可能性が高い用量の安全性を評価するために用量増加を２５ｍｇ／ｋｇに進める。

試験者によって承認されない限り、処置期間中、試験被験者は以下を摂取してはならない：何らかの他の生物学的または免疫調節療法；何らかの他の試験薬；ワルファリン；ＣＳＦ試料採取前の処置の一時的な停止が医学的危険性を与える状態に対しての何らかの抗凝固薬（８１ｍｇの毎日のアスピリン以外）。

インフォームドコンセント：インフォームドコンセントを提供した後、各被験者は、選択基準を満たし得ることおよびこのプロトコルの下で処置を受けることに対していかなる禁忌も存在しないことを再確認するスクリーニング評価を受ける。具体的には、各被験者を、スクリーニング時に診断を確認するための臨床および神経学的検査で評価する。ＰＳＰ評価尺度による簡単な認知スクリーニングおよび面接を伴ううつ病スケールを実施し、完全な病歴および薬物／薬歴を得る。被験者がすべての選択基準を満たし、除外基準を有さない場合、さらなる検査を実施する。スクリーニング受診は、基線／０日目受診の２８日前から７日前までに行われる。

薬物動態評価：以下の表３に示す様々な時点でＰＫ分析のために試料を収集する。

（^＊）早期中止が起こる場合は、最終ＰＫ評価のために早期中止受診時に最終血液試料を得る；
（＃）注入完了から１５分以内；
（＠）２８日目以降、以下の事象のいずれかの早期発生まで２８日ごとにＰＫ試料を採取する：（ｉ）試験中止；（ｉｉ）Ｃ_２Ｎ−８Ｅ１２の検出可能な血液レベルの不在。

有害事象評価：ＡＥを観測するために以下の安全性評価を実施する：生命徴候（血圧、脈拍／心拍数、体温、呼吸速度、ＳＰＯ２）；認知評価（精神状態検査）を含む、完全な神経学的検査；検査室検査：（１）血液学パネル：白血球分画、ヘマトクリットおよびヘモグロビン（Ｈｂ）、血小板数を伴う完全血球算定（ＣＢＣ）；（２）化学パネル：血清電解質、グルコース、尿酸、血液尿素窒素（ＢＵＮ）、クレアチニン、総タンパク質量、アルブミン、ビリルビン（総、直接および間接）、アルカリホスファターゼ、乳酸デヒドロゲナーゼ（ＬＤＨ）、肝酵素（ＡＳＴ、ＡＬＴおよびＧＧＴ）、鉄、コレステロールパネル、ＣＰＫ、アミラーゼおよびリパーゼ；（３）凝固パネル：プロトロンビン時間（ＰＴ）、ＩＮＲおよび部分トロンボプラスチン時間（ＰＴＴ）；Ｈｂ、ＷＢＣおよびタンパク質含量の測定を含む尿検査；ＥＣＧ−連続モニタリングまたは１２誘導ＥＣＧ；フレアー法（ｆｌｕｉｄ ａｔｔｅｎｕａｔｅｄ ｉｎｖｅｒｓｉｏｎ ｒｅｃｏｖｅｒｙ）（ＦＬＡＩＲ）を含むＭＲＩ脳イメージング；細胞数（ＷＢＣおよびＲＢＣ）、総タンパク質量およびグルコースの測定を伴うＣＳＦサンプリング。

ヒト血漿およびＣＳＦ中のＣ２Ｎ−８Ｅ１２の定量：血漿およびＣＳＦ中のＣ２Ｎ−８Ｅ１２の濃度を測定するためにサンドイッチＥＬＩＳＡアッセイを開発した。Ｃｈａｒｌｅｓ Ｒｉｖｅｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓは、様々な異なるマトリックスにおける使用のためにこれらのアッセイの有効性を確認した（表４参照）。

ヒト血漿中の抗Ｃ２Ｎ−８Ｅ１２抗体の定量：初回投与前および薬剤の投与後１４日目と２８日目に抗薬剤抗体（ＡＤＡ）開発の評価のために血液試料を収集した。終了時に最終測定を実施する。血漿中のＣ_２Ｎ−８Ｅ１２に対する抗体（ＡＤＡ）の存在を測定するためにＥＣＬに基づくサンドイッチＥＬＩＳＡアッセイを開発した。Ｃｈａｒｌｅｓ Ｒｉｖｅｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓは、ヒト血漿中のＡＤＡ応答の検出のためにこのアッセイの有効性を確認した（表５参照）。

臨床および機能評価は、コロンビア自殺重大度評価尺度（Ｃｏｌｕｍｂｉａ−Ｓｕｉｃｉｄｅ Ｓｅｖｅｒｉｔｙ Ｒａｔｉｎｇ Ｓｃａｌｅ）を含む：安全性パラメータとして、自殺念慮に関するコロンビア自殺重大度評価尺度（Ｃ−ＳＳＲＳ）を使用する（Ｐｏｓｎｅｒ ｅｔ ａｌ．２０１１）。高齢者うつ病評価尺度（Ｇｅｒｉａｔｒｉｃ Ｄｅｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｓｃａｌｅ）：Ｃ−ＳＳＲＳと同様に、試験期間中の全体的な気分を評価するために高齢者うつ病評価尺度（ＧＤＳ）を使用する。高齢者うつ病評価尺度（ＧＤＳ）は、高齢者におけるうつ病を同定するために使用される３０項目の自己報告評価である（Ｙｅｓａｖａｇｅ ｅｔ ａｌ．１９８３）。ＰＳＰ評価尺度：ＰＳＰ評価尺度（ＰＳＰＲＳ）を、選択のためのスクリーニング時ならびに基線時と試験の最後に経時的な尺度の変化を評価するために使用する（Ｇｏｌｂｅ ａｎｄ Ｏｈｍａｎ−Ｓｔｒｉｃｋｌａｎｄ ２００７）。臨床全般印象尺度（Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｇｌｏｂａｌ Ｉｍｐｒｅｓｓｉｏｎｓ）：症状の重症度を評価するために臨床全般印象変化度（ＣＧＩｃ）および重症度（ＣＧＩｓ）スケールを使用する。シュワブ・イングランド日常生活活動（Ｓｃｈｗａｂ ａｎｄ Ｅｎｇｌａｎｄ Ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｏｆ Ｄａｉｌｙ Ｌｉｖｉｎｇ）：シュワブ・イングランド日常生活活動（ＳＥＡＤＬ）スケールを、日常活動を実施する被験者の能力を評価する手段として用いる（Ｓｃｈｗａｂ ａｎｄ Ｅｎｇｌａｎｄ １９６９）。臨床的認知症重症度判定尺度−前頭側頭葉型認知症（Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｄｅｍｅｎｔｉａ Ｒａｔｉｎｇ Ｓｕｍ ｏｆ Ｂｏｘｅｓ Ｆｒｏｎｔｏｔｅｍｐｏｒａｌ Ｌｏｂｅ Ｄｅｍｅｎｔｉａ）：臨床的認知症重症度判定尺度−前頭側頭葉型認知症（ＣＤＲ−ＳＢ−ＦＴＬＤ）は、行動、態度、人格および言語の評価を含む、ＣＤＲ−ＳＢ認知評価検査の一種である（Ｋｎｏｐｍａｎ ｅｔ ａｌ．２００８）。精神状態短時間検査（Ｍｉｎｉ Ｍｅｎｔａｌ Ｓｔａｔｅ Ｅｘａｍｉｎａｔｉｏｎ）：精神状態短時間検査（ＭＭＳＥ）は、認知障害を測定する信頼性のある３０問の質問表である（Ｆｏｌｓｔｅｉｎ，Ｆｏｌｓｔｅｉｎ，ａｎｄ ＭｃＨｕｇｈ １９７５）。

脳脊髄液：ＣＳＦを腰椎穿刺によってＬ３−４間から採取する。ＣＳＦ試料採取が成功しない場合は、ローカルプロトコルに従って地域の臨床施設職員の裁量でＣＴ／Ｘ線透視下腰椎穿刺を用いることができる。ＣＳＦに関する安全性検査室検査は、各々の腰椎穿刺／ＣＳＦ収集後に該当臨床施設において地域で分析される。これらの測定は、細胞数（ＷＢＣおよびＲＢＣ）、総タンパク質量およびグルコースを含む。他のＣＳＦ測定（例えばＣ_２Ｎ−８Ｅ１２濃度、標的係合および他の探索的バイオマーカー）は、該当する指定検査室によって分析される。

イメージング：被験者はまた、構造、フレアー、拡散強調および磁化率強調画像による基線ＭＲＩスキャンを受ける。投与後の画像解析は事象スケジュール（Ｓｃｈｅｄｕｌｅ ｏｆ Ｅｖｅｎｔｓ）に従って実施される。

探索的薬理ゲノム解析：基線時にＤＮＡ抽出のために血液試料を収集する。すべての個人は、Ｈ１（Ａ−Ｄ）およびＨ２保因状態を調べるために拡張ＭＡＰＴハプロタイプ配列解析を受ける。ＤＮＡを試料から抽出し、このＤＮＡをこの試験のための指定薬理ゲノムコア施設に発送する。

以下の事象のいずれかの早期発生まで被験者をこの試験に登録する：（ｉ）被験者が自らの参加および事象スケジュール全体を完了する；（ｉｉ）被験者または試験者が被験者の参加を中止することを決定する；（ｉｉｉ）該当する被験者が、試験者がこの試験へのさらなる参加を不可能にすると判断し、この後の第２相／ＭＡＤ試験についての適格性を除外する、何らかのＤＬＴまたはＳＡＥを経験する。加えて、試験者の裁量で、何らかの選択基準を満たさなくなった、または試験期間中に１つ以上の除外基準に合致した被験者は、試験への参加を継続する資格がないまたはこの後の第２相／ＭＡＤ試験に参加する資格がないと決定され得る。

Claims (12)

1. 単離されたモノクローナル抗タウ抗体であって、
   配列番号２のアミノ酸配列を含む軽鎖、及び、
   配列番号５のアミノ酸配列を含む重鎖
   を含む、抗タウ抗体。
2. ヒト化ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３又はＩｇＧ４抗体である、請求項１に記載の抗体。
3. Ｓ２４１Ｐヒンジ安定化変異を含むヒト化ＩｇＧ４抗体である、請求項１に記載の抗体。
4. 配列番号９のアミノ酸配列を含むエピトープに結合する請求項１に記載の抗体。
5. 請求項１に記載の抗タウ抗体と、薬理学的に許容される担体とを含む、医薬組成物。
6. 単離されたモノクローナル抗タウ抗体であって、
   配列番号１８のアミノ酸配列を含む軽鎖、及び、
   配列番号１３のアミノ酸配列を含む重鎖
   を含む、抗タウ抗体。
7. 請求項６に記載の抗タウ抗体と、薬理学的に許容される担体とを含む、医薬組成物。
8. 配列番号９のアミノ酸配列を含むエピトープに結合する請求項６に記載の抗体。
9. 配列番号２のアミノ酸配列を含む抗体軽鎖と、配列番号５のアミノ酸配列を含む抗体重鎖とをコードする核酸分子。
10. 配列番号１８のアミノ酸配列を含む軽鎖と、配列番号１３のアミノ酸配列を含む重鎖とをコードする請求項９に記載の核酸分子。
11. ヒトアイソタイプκの軽鎖定常領域を含む、請求項１に記載の抗体。
12. 請求項３に記載の抗タウ抗体と、薬理学的に許容される担体とを含む、医薬組成物。

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