JP6574754B2 - エストロゲン受容体関連疾患を処置するための抗体及び方法 - Google Patents
エストロゲン受容体関連疾患を処置するための抗体及び方法Info
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- C07K2319/01—Fusion polypeptide containing a localisation/targetting motif
- C07K2319/02—Fusion polypeptide containing a localisation/targetting motif containing a signal sequence
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N2333/00—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
- G01N2333/435—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans
- G01N2333/705—Assays involving receptors, cell surface antigens or cell surface determinants
- G01N2333/72—Assays involving receptors, cell surface antigens or cell surface determinants for hormones
- G01N2333/723—Steroid/thyroid hormone superfamily, e.g. GR, EcR, androgen receptor, oestrogen receptor
Description
本出願は、2013年3月19日に出願されたPCT特許出願番号PCT/CN2013/072844の優先権を主張し、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。
a)配列番号9を含む軽鎖可変領域、
b)配列番号11を含む軽鎖可変領域、
c)配列番号12を含む軽鎖可変領域、及び
d)配列番号13を含む軽鎖可変領域
からなる群から選択される。
a)配列番号10を含む軽鎖可変領域、
b)配列番号14を含む軽鎖可変領域、及び
c)配列番号15を含む軽鎖可変領域、
からなる群から選択される。
a)配列番号9を含む軽鎖可変領域、
b)配列番号11を含む軽鎖可変領域、
c)配列番号12を含む軽鎖可変領域、及び
d)配列番号13を含む軽鎖可変領域
からなる群から選択される。
一態様では、本開示は、配列番号1のアミノ酸残基284〜310に、すなわち、配列番号2に示された27個のアミノ酸のフラグメントに特異的に結合する、抗hER−α36抗体及びその抗原結合性フラグメントを提供する。
配列番号1のアミノ酸配列
配列番号2のアミノ酸配列
本明細書において、SNGmB1抗体のCDRの少なくとも1つ(例えば少なくとも2つ、3つ、4つ、5つ又は6つ全て)を含む抗hER−α36抗体及びその抗原結合性フラグメントが提供される。
SNGmB1の軽鎖のアミノ酸配列(配列番号16)
SNGmB1の重鎖のアミノ酸配列(配列番号18)
マウス抗体SNGmB1の軽鎖をコードするヌクレオチド配列(配列番号17)
マウス抗体SNGmB1の重鎖をコードするヌクレオチド配列(配列番号19)
ある特定の実施形態では、抗hER−α36抗体及び抗原結合性フラグメントはキメラである。本明細書で使用される時、「キメラ」とは、異なる種に由来する少なくとも2つの部分を含む分子を指す。例えば、キメラ抗体は少なくとも1つの非ヒト配列及びヒト配列を有することができる。ある特定の実施形態では、キメラ抗体及びその抗原結合性フラグメントは、マウスに由来する少なくとも1つのCDR、並びに非マウス種(例えばヒト)に由来する少なくとも1つの定常領域及び/又はフレームワーク領域を含む。
本開示は、向上した特性(例えば、親和性の増加、半減期の増加、コンジュゲーション適性の改善等)を備える抗体及び抗原結合性フラグメントをさらに提供する。このような抗体及び抗原結合性フラグメントは、SNGmB1抗体の1つ若しくは複数のCDR配列又は重鎖若しくは軽鎖可変領域中に、或いは、重鎖若しくは軽鎖定常領域中に、1つ若しくは複数のアミノ酸置換、付加又は欠失を含む。
ある特定の実施形態では、抗hER36抗体及び抗原結合性フラグメントは、したがって1つ又は複数の非天然アミノ酸(NNAA)の置換を含む。本明細書で使用される時、「非天然アミノ酸」又は「NNAA」とは、改変アミノ酸及び/又はアミノ酸アナログを含む、20の標準アミノ酸(すなわちグリシン、アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、セリン、システイン、トレオニン、メチオニン、プロリン、フェニルアラニン、チロシン、トリプトファン、ヒスチジン、リシン、アルギニン、アスパラギン酸、グルタミン酸、アスパラギン、及びグルタミン)のうちの1つではない任意のアミノ酸を指す。
ピロリシンなどのリシンアナログ、
p−ニトロフェニルアラニン、p−アミノフェニルアラニン、p−(2−アミノ−3−ヒドロキシエチル)フェニルアラニン、p−ベンゾイルフェニルアラニン、p−フェニルアゾフェニルアラニン、p−アジドフェニルアラニン、p−ヨードフェニルアラニン、p−アセチルフェニルアラニン、p−メトキシフェニルアラニン、p−(3−オキソブタノイル)−L−フェニルアラニン、p−イソプロピルチオカルボニル−フェニルアラニン、p−エチルチオカルボニルフェニルアラニン、及びp−プロパルギルオキシフェニルアラニン、p−カルボキシメチルフェニルアラニン、3,4−ジヒドロキシ−L−フェニルアラニンなどのフェニルアラニンアナログ、
L−3−(2−ナフチル)アラニンなどのアラニンアナログ、
O−メチル−チロシン、O−(2−ニトロベンジル)−チロシン、O−(トリメチルアンモニウムアルキル)チロシン、3−ヨードチロシン、3−アミノ−チロシンなどのチロシンアナログ、
S−(2−ニトロベンジル)−システイン、セレノシステインなどのシステインアナログ、
p−ベンゾイル−L−フェニルアラニンなどのフェニルアラニンアナログ、
5−ヒドロキシトリプトファンなどのトリプトファンアナログ、
7−ヒドロキシクマリン−グリシン及びダンシル−グリシンなどのグリシンアナログ、
β−GlcNAc−セリン、N−アセチル−L−グルコサミニル−L−セリン、N−アセチル−L−ガラクトサミニル−L−セリン、N−アセチル−L−グルコサミニル−L−トレオニン、N−アセチル−L−グルコサミニル−L−アスパラギン及びO−マンノサミニル−L−セリンなどのセリンアナログ、
α−GalNAc−トレオニンなどのトレオニンアナログ、並びに
L−ホモグルタミンなどのグルタミンアナログが挙げられる。
ある特定の実施形態では、抗hER36抗体及び抗原結合性フラグメントは、したがってSNGmB1抗体由来の保存的置換を含む。本明細書で使用される時、「保存的置換」とは、アミノ酸残基を別のアミノ酸残基で置換することを指し、この別のアミノ酸残基の側鎖は、置換された残基の側鎖に類似する物理化学特性を有する(例えば、側鎖の疎水性及び分子バルク)。例えば、保存的置換は、疎水性側鎖を有するアミノ酸(例えばMet、Ala、Val、Leu、及びIle)の内で、中性親水性側鎖を有するアミノ酸(例えばCys、Ser、Thr、Asn及びGln)の内で、酸性側鎖を有するアミノ酸(例えばAsp、Glu)の内で、塩基性側鎖を有するアミノ酸(例えばHis、Lys、及びArg)の内で、又は芳香族側鎖を有するアミノ酸(例えばTrp、Tyr、及びPhe)の内で行うことができる。当業界で公知のように、保存的置換は、タンパク質の立体的構造に重大な変化を引き起こすことが無く、したがってタンパク質の生物活性を低下させる又は損なうことが無い。ある特定の実施形態では、保存的置換を、SNGmB1抗体の可変領域の1箇所又は複数の部位に、例えば、抗原結合にとって重大ではない部位に、導入することができる。
ある特定の実施形態では、抗体又は抗原結合性フラグメントは、ER−α36へのpH依存性結合を実現する1つ又は複数のアミノ酸置換(複数可)を含む。ある特定の実施形態では、そのような抗体及び抗原結合性フラグメントでは、中性pHでの結合と比較して、酸性pHでのER−α36への結合が低下している。表面受容体に結合した抗体は、細胞質ゾルに内部移行し、続いてpHが酸性であるリソソームで分解されることがある。酸性pHで親和性が低下すると、抗体がリソソーム中で受容体から解離し、抗体が分解から免れて、且つさらなる受容体分子に引き続き結合するために細胞表面へと再循環して戻ることが可能となると考えられる。
ある特定の実施形態では、抗体又は抗原結合性フラグメントをFc領域において工学的に処理し、抗体依存性細胞傷害性(ADCC)を改変することができる。Fc領域は、ナチュラルキラー細胞及びマクロファージなどのエフェクター細胞の表面のFc受容体に結合し、かかるエフェクター細胞をER−α36発現細胞などの標的細胞に誘導する。ある特定の実施形態では、抗体又は抗原結合性フラグメントは、ADCC活性を増強する1つ若しくは複数の改変又は突然変異を含む。Fc領域のCH2ドメインのある特定のアミノ酸残基を置換して、ADCC活性を増強することができる。代替的に又は付加的に、抗体上の炭水化物の構造を変えてADCC活性を増強することができる。抗体の工学的処理によってADCC活性を増強する方法は当分野において記載されており、例えば、Shields RL.ら、J Biol Chem.2001.276(9):6591〜604;Idusogie EE.ら、J Immunol.2000.164(8):4178〜84:Steurer W.ら、J Immunol.1995、155(3):1165〜74;Idusogie EE.ら、J Immunol.2001、166(4):2571〜5;Lazar GA.ら、PNAS、2006、103(11):4005〜4010;Ryan MC.ら、Mol.Cancer Ther.、2007、6:3009〜3018;Richards JO、.ら、Mol Cancer Ther.2008、7(8):2517〜27;Shields R.L.ら、J.Biol.Chem、2002、277:26733〜26740;Shinkawa T.ら、J.Biol.Chem、2003、278:3466〜3473を参照されたい。
本開示は、SNGmB1抗体が特異的に結合する同一のエピトープに実質的に結合する抗体及びその抗原結合性フラグメントをさらに提供する。
本明細書で提供される抗体及び抗原結合性フラグメントにより、腫瘍の成長がin vivoで阻害されることが分かった。したがって、このような抗体及び抗原結合性フラグメントを使用して、ER−α36と関連した様々な状態又は疾患を処置することができる。
組換えER−α36タンパク質を、免疫化のために及び以下の方法により作製した。
Fcは、組換え方法によりER−α36リガンド結合ドメインのC末端に融合した。LBD−ER−α36_Fcを発現するベクターを構築した。ER−α36のリガンド結合ドメインは、配列番号1の166位アミノ酸から310位アミノ酸にわたる。プラスミドpET30a−ER−α36 LBD−Fcは以下の方法を用いて構築した。ヒトER−a36完全長遺伝子をpcDNA3.1(+)ベクター(Invitrogen)のBamH I/Not I部位にクローニングし、挿入配列は、T7フォワードプライマー及びBGHリバースプライマーを用いてDNA配列検証により確認した。N末端mycタグ及びコザック配列を有するヒトER−α36もpcDNA3.1(+)ベクターのNheI/XbaI部位にクローニングし、挿入した。挿入配列は、CMVフォワードプライマー及びBGHリバースプライマーを用いてDNA配列検証により確認した。プラスミドDNAをBL21(DE3)(New England Biolabs Inc.)に形質転換した。新鮮な形質転換体をピックアップし、30L LB培地(トリプトン10g/L、酵母エキス5g/L、NaCl、10g/L)で37℃で培養した。タンパク質発現は、培養OD600が0.6に達するときに、最終濃度0.5mMまでIPTG(Sigma)を添加して誘導した。誘導4時間後に4℃、30分間、7,000gの遠心分離により細胞を回収した。300mlのタンパク質抽出緩衝液(50mMトリス、150mM NaCl、2.0M尿素、1%トリトンX100、pH8.0)中の組換えER−α36 LBD−Fcを発現する30グラムの細菌細胞を、超音波処理(350W、3×45バースト)により溶解した。4℃、30分間、20,000gの遠心分離(Beckman hAvanti J−26XP)後に可溶性タンパク質を上清から回収し、20ml CaptivA PriMABカラム(RepliGen Corporation)に投入した。カラムを平衡化し、A280値がベースラインに達するまでCaptivA PriMAB緩衝液A(50mMトリス、150mM NaCl、pH8.0)により洗浄した。組換えER−α36 LBD−Fcタンパク質を次いでCaptivA PriMAB緩衝液B(100mMグリシン、pH2.5)によりCaptivA PriMABカラムから溶出した。タンパク質溶出画分を一緒にプールし、最後に透析により保存緩衝液に交換した。最終精製タンパク質を透析し、−80℃で保存緩衝液(PBS pH7.3)に保存した。
Fcは、組換え方法によりER−α36リガンド結合ドメインのN末端に融合した。プラスミドpET30a−Fc−ER−α36 LBDは以下の方法を用いて構築した:プラスミドDNAをBL21(DE3)に形質転換した。新鮮な形質転換体をピックアップし、30L LB培地で37℃で培養した。タンパク質発現は、培養OD600が0.6に達するときに、最終濃度0.5mMまでIPTGを添加して誘導した。誘導4時間後に4℃、30分間、7,000gの遠心分離により細胞を回収した。300mlのタンパク質抽出緩衝液(50mMトリス、150mM NaCl、2.0M尿素、1%トリトンX100、pH8.0)中の組換えFc−ER−α36 LBDを発現する30グラムの細菌細胞を、超音波処理(350W、3×45バースト)により溶解した。4℃、30分間、20,000gの遠心分離(Beckman hAvanti J−26XP)後に可溶性タンパク質を上清から回収し、20ml CaptivA PriMABカラムに投入した。カラムを平衡化し、A280値がベースラインに達するまでCaptivA PriMAB緩衝液A(50mMトリス、150mM NaCl、pH8.0)により洗浄した。組換えFc−ER−α36 LBDタンパク質を次いでCaptivA PriMAB緩衝液B(100mMグリシン、pH2.5)によりCaptivA PriMABカラムから溶出した。タンパク質溶出画分を一緒にプールし、最後に透析により保存緩衝液に交換し、−80℃で保存緩衝液(PBS pH7.3)に保存した。
ヒトER−α36完全長遺伝子をpcDNA3.1(+)ベクターのBamH I/Not I部位にクローニングし、挿入配列は、T7フォワードプライマー及びBGHリバースプライマー(Invirogen)を用いてDNA配列検証により確認した。N末端mycタグ及びコザック配列を有するヒトER−α36もpcDNA3.1(+)ベクターのNheI/XbaI部位にクローニングし、挿入した。挿入配列は、CMVフォワードプライマー及びBGHリバースプライマーを用いてDNA配列検証により確認した。
抗原及び免疫原調製
ER−α36に対して生成される抗体の多様性を最大化するために、1)ER−α36由来C末端ペプチド、2)リガンド結合ドメイン及びC末端の27アミノ酸の両方を含有する組換えER−α36タンパク質、並びに3)一過性若しくは安定トランスフェクションを用いて樹立された完全長ER−α36タンパク質を発現する細胞系、又は膜上に高レベルのER−α36タンパク質を発現する天然に存在する細胞系、を含む3つの異なるタイプの抗原をER−α36抗体作製用に使用した。
組換えタンパク質及び合成KLHコンジュゲートペプチドを次いで、C57BL/6、Balb/c、及びSJLマウス(Slac laboratory animal,Ltd、上海)の免疫化の免疫原として使用した。簡単には、免疫原を等容量の完全又は不完全フロイントアジュバント(Sigma)で乳化し、次いで動物を100ul/注射及び50〜100ug/動物/注射の投与量で皮下又は腹腔内免疫化した。免疫化は少なくとも2〜3週間ごとに生じ、試験採血及びELISA試験を各追加免疫化の7日後に行った。
融合の4日前に、各マウスをPBS中のER−α36タンパク質又は27aaペプチド−KLHコンジュゲート又は組換えER−α36タンパク質で腹腔内に追加免疫した。融合当日、脾臓を無菌的に除去し、該臓器を処理して単一細胞懸濁液にした。洗浄後、細胞をDMEM基本培地(Gibco)に懸濁し、5:1比でSP2/0骨髄腫細胞(ATCC)と混合し、混合物を基本培地で1回洗浄し、次いでPEG媒介融合に供した。融合の完了後すぐに、細胞をDMEM基本培地で1回洗浄し、1×HAT(Sigma)及びハイブリドーマ増殖因子を補充した融合後細胞増殖培地に0.5×106細胞/mlまで再懸濁した。1ウェルあたり200μlの細胞懸濁液を96ウェル細胞培養プレートに播種し、5%CO2を含む37℃インキュベーターに入れた。7日間のインキュベーション後、1×HAT(Sigma)を含有する新鮮な増殖培地50μl/ウェルを添加した。融合を、細胞融合後10〜14日目にELISA又はAcumenマイクロプレートサイトメトリーによりスクリーニングした。
1.ELISAスクリーニング
高結合透明ポリスチレン96ウェルプレート(Nunc)を100ul/ウェルの精製ER−α36 LBD融合タンパク質、陰性対照タンパク質又は他のカウンタースクリーニング抗原(FC−ER−α66リガンド結合ドメイン融合タンパク質、ヒトIgGを含む)で被覆し、PBS、pH7.2中1μg/mlに希釈した。プレートを2〜8℃で一晩、被覆溶液でインキュベートし、次いでPBS+0.05%Tween20(PBST、Sigma)を用いてプレート洗浄機で1回洗浄した。200μl/ウェルのブロッキング溶液(pH7.4のPBS+1%BSA(Sigma))を各ウェルに添加し、室温で1〜2時間インキュベートした。プレートを空にし、50〜100μl/ウェルのハイブリドーマ培養上清を添加した。37℃、1.0時間のインキュベーション後、プレートを次いで3回洗浄し(PBST)、次いで100μl/ウェルのHRPコンジュゲートヤギ抗マウスIgG抗体(ZSGB Bio)を添加した。反応を37℃で1.0時間継続し、この後PBSTで3回洗浄し、100ul/ウェルのTMB基質(CW bio)を添加した。室温で15分間のインキュベーション後、100μl/ウェルの1.0N HClを停止溶液として添加し、プレートをELISAプレートリーダー(Molecular Device)上で450nmで読み取った。ELISAスクリーンで高い読み取り値を示す抗体を産生するハイブリドーマクローンを同定した。
ヒトER−α36トランスフェクトスクリーニング細胞を黒/透明底384ウェルプレート(Nunc)に播種し、一晩、37℃、5%CO2で培養した。翌日、培地を除去し、20μl/ウェルのハイブリドーマ上清試料を添加した。37℃で2.0時間のインキュベーション後、プレートをPBS、pH7.2で2回洗浄し、次いで15μl/ウェルのAlexa488コンジュゲートヤギ抗マウスIgG(F(ab’)2フラグメント、Invitrogen)を添加し、この後37℃で1.0時間のインキュベーションを行った。プレートを次いでPBSで3〜4回洗浄し、細胞を次いで4%パラホルムアルデヒド(Sigma)で固定し、37℃にて、1.0時間、PI(DOJINDO)で再び染色した。アッセイプレートをAcumenマイクロプレートサイトメーター(Acumen eX3、TTP LabTech)で読み取った。Acumenマイクロプレートサイトメトリースクリーニングで高い読み取り値を示す抗体を産生するハイブリドーマクローンを同定した。
ELISA及び/又はAcumenスクリーニングからの選択陽性ハイブリドーマクローンを、限界希釈により96ウェル細胞培養プレートでサブクローニングした。7〜10日の培養後、サブクローニングプレートをELISA又はAcumenアッセイによりスクリーニングした。各親クローンに対し単一のコロニー増殖を有する2つの陽性クローンを、さらなる確認アッセイ用に24ウェルプレートに拡大し、アイソタイプ化し、次いで凍結保存のために培養フラスコにさらに拡大した。
選択ハイブリドーマ細胞系の抗体作製は、ハイブリドーマ培地(SFM、Gibco)を含むローラーボトル(Corning)細胞培養を用いて行った。培養2〜3週間後、培地を回収し、細胞及び細胞残屑を限外濾過器で除去した。清澄化上清を次いで限外濾過により濃縮し、調製プロテインAセファロースカラム(GE Healthcare Life Science)に投入した。UVモニターによるモニタリング下、平衡化緩衝液でベースラインまで洗浄した後、カラムを次いで0.1Mクエン酸、pH3.5で溶出し、溶出抗体を1.0Mトリス−HCl緩衝液、pH8.0で直ちに中和し、2〜8℃で一晩、2回緩衝液を交換しながらPBS、pH7.2(Invitrogen)に対して透析した。精製抗体を0.22um滅菌シリンジフィルターを通じて濾過し、アリコートで−80℃以下にて保存した。精製抗体はSNGmB1と命名した。抗体産物の試料を純度、濃度、タンパク質及び細胞ベースの抗原への結合能力、インビトロ効力アッセイ等を含むQC試験にかけた。QC分析結果を図2に示す。
ER−α36への抗ER−α36抗体SNGmB1の結合活性を、この例において以下に列挙された種々の側面から特徴付けた。
SNGmB1の結合特異性はELISAアッセイを用いて評価した。5つの異なるタンパク質を使用してアッセイプレートを1μg/mlで被覆した。十分にブロッキングした後、種々の濃度(10、2、0.4、0.08及び0.016、0.004μg/ml)のSNGmB1抗体をアッセイプレートに添加し、1.5時間インキュベートし、この後、HRP(ホースラディッシュペルオキシダーゼ)標識抗マウスIgG Fc(Invitrogen)を用いて複合体形成の検出を行った。データの例を以下に図3で示した。SNGmB1は、ER−α36(図3の「ペプチド」)のFドメインに由来する27アミノ酸ペプチド及びまたFc−LBDタンパク質(図3の「Fc−LBD」)に結合するが、27アミノ酸が欠失したFc−LBD(図3の「Fc−LBD−D27」)又はFc−ER−α66タンパク質(図3の「Fc−ER66」)又は対照ヒトIgGタンパク質(図3の「ヒトIgG」)には結合しないことが示された。故に、SNGmB1は、ER−α36のC末端Fドメインの27アミノ酸ペプチドに特異的に結合した。SNGmB1結合にとってER−α36Fドメインにおける重要なエピトープ残基を、Pepスキャン及びアラニンスキャンの両方を用いてマッピングした(実施例5を参照されたい)。
抗体SNGmB1の結合特異性を、一連のヒト癌細胞系由来の全細胞溶解物のウエスタンブロット分析を用いてさらに評価した。以下の溶解物を使用した:1)親HEK293細胞、2)Mycタグを有するpcDNA3.1_ER−α36完全長タンパク質をトランスフェクトしたHEK293細胞、3)MDA−MB−231(ATCC)、4)MCF−7(ATCC)、5)Hec−1A(ATCC)、6)K562(ATCC)。
慢性骨髄性白血病患者に由来する細胞系、K−562細胞;MCF7:ER−α66及びER−α36の両方を発現する乳癌細胞系;SKBR3(ATCC):高レベルのHER2を発現する乳癌細胞系;及びMHCC97H(ATCC):高転移性肝細胞癌細胞系を含む、一連のヒト癌細胞系へのSNGmB1の結合について同様に調べた。これらの細胞系は、ウエスタンブロットによりER−α36タンパク質を発現することが見出された。
MCF−7細胞における膜結合ER−α36タンパク質を検出するSNGmB1の能力は、免疫染色を用いて評価した。MCF−7マンモスフェアを形成し、免疫染色を次のようなステップにより行った:
1.MCF−7細胞をフェノールレッドを含まないDMEMで2日間培養し、7−アミノアクチノマイシンD(7−AAD)で染色し、この後FACS選別を行った。選別細胞をB27(Invitrogen)、EGF(BD Biosciences)及びbFGF(BD Biosciences)を含む、フェノールレッドを含まないDMEM/F12培地(Gibo)で6日間培養し、MCF−7マンモスフェアを形成させた。
2.MCF−7マンモスフェアを4分間、1000rpmで遠心分離し、上清を除去した。
3.マンモスフェアを500μl PBSで洗浄し、1.5ml EPチューブに移した後、4分間、1000rpmで遠心分離し、上清を捨てた。
4.沈殿物を500μlパラホルムアルデヒド(4%)で20分間(又は一晩)固定し、4分間、1000rpmで遠心分離して上清を移した。
5.沈殿物を500μl PBSで洗浄し、4分間、1000rpmで遠心分離し、上清を捨て、PBSを用いて3回洗浄した。
6.上清を除去し、沈殿物を50μlヤギ血清ブロッキング溶液と37℃で30分間インキュベートした。4分間、1000rpmで遠心分離後、上清を捨てた。
7.マンモスフェアをSNGmB1(作用濃度:10μg/mL)と4℃で一晩インキュベートした。
8.翌日、マンモスフェアを4分間、1000rpmで遠心分離し、500μl PBSで3回洗浄した。
9.ヤギ抗マウスIgG(H+L)FITC二次抗体(Invitrogen)二次抗体(5μg/ml)を添加し、37℃で30分間インキュベートした。
10.4分間、1000rpmで遠心分離後、20μlヘキストを沈殿物に滴下添加し、室温で20分間置いた。
11.マンモスフェアを500μl PBSで3回洗浄した。
12.マンモスフェアを小さい観察皿に移し、検出まで4℃で保存した。
抗体薬物コンジュゲートの開発は、化学療法剤を腫瘍細胞に送達するために内部移行する担体抗体に依存することから、K−562細胞により内部移行するSNGmB1の能力も評価した。
細胞の形成及び増殖に対する抗体の影響を、エストラジオール刺激MCF7マンモスフェア形成アッセイにより評価した。
SNGmB1のその標的タンパク質に対する親和性は、ビアコアにより測定した。ビアコアアッセイのフォーマットを図8に示す。抗体を抗マウス/ヒトFC IgG被覆表面に捕捉し、ペプチドを表面に注射した。空FC1を参照チャネルとして使用した。チップ表面をGly 1.5で再生させた。
シリーズS CM5センサーチップ(9000RU)(ビアコア)を、等量の50mM NHS及び200mM EDCで新しく調製した混合物を7分間注射(10μl/分)して、FC2、FC3及びFC4チップにおいて活性化した。次いで1:25希釈ビアコア抗マウスFc抗体(10mM酢酸ナトリウム緩衝液PH5.0中、25μg/mlの濃度の)を、活性化チップFC2、FC3及びFC4細胞に10μl/分で、シグナルが9000Ruに達するまで注射した。活性結合部位を、10μl/分で1Mエタノールアミンの7分の注射によりブロックした。各抗体をそれぞれチップ表面に捕捉した(FC2、FC3及びFC4、参照細胞としてのFC1)。捕捉シグナルは約500RUであった。結合相の180秒間、及び解離相の900秒間、30μl/分での0nM、1.5625nM、3.125nM、6.25nM、12.5nM及び25nMの濃度のGV27(配列番号2に記載されたER−α36 C末端27aa)。再生緩衝液(pH1.5を有する10mMグリシン緩衝液)を90秒間注射してセンサー表面を再生した。対照として、GV27を捕捉抗体なしのFCの表面にも種々の濃度で注射した。ステップ2からのシグナルを対照ステップから減算し、1対1結合モデルを用いて結果をフィットさせた。
SNGmB1により結合されたエピトープを、アラニンスキャン方法を用いてさらに分析した。アラニンへのアミノ酸の連続置換を有する一連のペプチドを合成し、前記ペプチドを高結合プレートに被覆し、ペプチドを結合する抗体の能力を決定した。ペプチド及びこの配列のリストを表4に列挙した。
アラニンへのアミノ酸の逐次置換を有する上記ペプチドに対するSNGmB1の結合を、以下の方法を用いて試験した:透明なポリスチレンプレート(Nunc)を、リスト中の33ペプチドの1つからなるPBS中5μg/mlペプチド溶液(50μl/ウェル)で被覆した。プレートを被覆溶液と4℃、一晩インキュベートした。次いでプレートを、PBS+0.05%Tween20(Sigma)を用いて自動プレート洗浄機で1回洗浄した。PBS+1%BSA+0.5%Tween20(Sigma)からなる200μlのブロック溶液を各ウェルに添加し、37℃で1時間インキュベートした。ブロッキング溶液中10μg/mlの試験SNGmB1 50μlをプレートに添加し、37℃で1時間インキュベートし、次いでプレートを0.05%Tween20含有PBSで3回洗浄した。次いで、100μlのヤギ抗マウス−IgG−Fab−HRP(ZSGB Bio)を各ウェルに添加し、プレートを37℃で1時間インキュベートした。プレートを0.05%Tween20を含むPBSで3回洗浄後、100μl/ウェルTMB基質を各ウェルに添加し、プレートを次いでRTで15分間インキュベートした。プレートに50ul/ウェル停止溶液を添加し、プレートリーダーで読み取った。結果を図9に示す。
SNGmB1軽鎖及び重鎖可変領域の配列は、5’RACE(cDNA末端の迅速増幅)として知られるポリメラーゼ連鎖反応(PCR)増幅技法により得た。SNGmB1抗体を産生するハイブリドーマ細胞由来の全RNAをトリゾール(Invitrogen)を用いて単離し、オリゴ(dT)12−18プライマーを用いるSuperscript第1鎖合成システム(Invitrogen)を用いてcDNAを合成した。マウスIgG遺伝子の可変領域を、重鎖可変領域に対してはMuIgG VH3’−2及びMuIg−5’リーダープライマー、軽鎖可変領域に対してはMuIgK VL3’−1及びMuIg−5”リーダープライマー(NOVAGEN)を用いるPCRによりクローニングした。得られたバンドをTOPO TAクローニングベクターにクローニングし、10種を超えるクローン由来のDNAを配列決定にかけ、ABI DNA配列決定装置(life technologies)を用いて決定した。コンセンサス配列はVector NTI Advance 10ソフトウェア(Invitrogen)を用いて決定した。配列解析及び確認後、抗体作製及び精製のためにSNGmB1遺伝子の可変領域を組換え発現ベクターにクローニングした(VLはpCP−mCKに、VHはpCP−mCg2aに)。
組換え抗体タンパク質の発現及び精製は、以下の方法により行った:10%のプルロニックF−68を含むFreestyle 293 Expression Medium(Gibco)で培養したHEK293E細胞、1×106細胞/mlを、最終濃度0.5μg/mlの等量の重鎖ベクター及び軽鎖ベクターDNA、及び1.0μg/mlのPEI(ポリエチレンイミン−線形、Polyscience)でトランスフェクトした。DNA対PEI比は1:2であった。最適MEMによるDNA及びPEI複合体形成期間は、室温で15分間となるはずである。トランスフェクト細胞を5%CO2、37℃、125rpm振盪速度によりフラスコで培養した。1%ペプトン培地をトランスフェクション後22から26時間で添加した。馴化培地を6日目に回収し、上清を3,000rpmで30分間遠心分離した。清澄化馴化培地を次いでnプロテインAカラム(G.E. Healthcare)に投入し、PBSプラス0.1%トリトン−X100で洗浄し、最後に結合IgGをpH3.5で0.1Mグリシンを含有する溶液で溶出した。溶出抗体タンパク質をPBSに対して透析し、−80℃で保存した。エンドトキシンを除去するために、精製タンパク質をHitrap DEAEセファロースF.F.カラムを通過させてさらに処理し、得られた抗体は、サイズ排除クロマトグラフィー(Superdex 200 5/150 GL、G.E. Healthcare)を用いて、純度レベルを決定するために分析した。
ヒト化及び配列分析:
マウスSNGmB1抗体の可変領域の配列を使用して、マウスフレームワークと最も高い相同性を有する生殖系列配列を同定し、コンピュータモデリングを使用してヒト化バリアントを設計した。SNGmB1は、V4、P44、L46、S49、S64復帰突然変異を有するVK1|5−2アクセプターフレームワークに直接CDR移植した軽鎖V1を用いてヒト化した(配列番号24及び配列番号25、アミノ酸及びヌクレオチド)。SNGmB1はまた、V4、L46、S49、S64復帰突然変異を有する軽鎖V2を用いてヒト化した(配列番号26及び配列番号27、アミノ酸及びヌクレオチド)。SNGmB1はまた、V4、P44、L46、S49復帰突然変異を有する軽鎖V3を用いてヒト化した(配列番号28及び配列番号29)。SNGmB1は、VH1|1−46アクセプターフレームワークに、T28Aのマウス残基を有するCDRを移植した重鎖V1を用いてヒト化した(配列番号32及び配列番号33)。SNGmB1はまた、さらなるL81M突然変異を有するV1を有する重鎖V2を用いてヒト化した(配列番号30及び配列番号31)。所望のバリアントを合成し、ヒトIgG1 Fc定常ドメインを有するpTT5発現ベクターにクローニングした、293E6細胞において発現させた。
ヒト化抗体を精製し、ELISA及び結合分析のためのビアコアを用いて特徴付けした。ヒト化抗体の配列成分を表5に示す。
ハイブリドーマ由来SNGmB1、キメラSNGmB1、及びヒト化SNGmB1を、ER−α36への結合をめぐってハイブリドーマ由来SNGmB1又は104c3F8抗体(SNGmB1とは異なる配列を有するERα36抗体)と競合する能力について、ELISA競合アッセイを用いて試験した。
ヒト組織試料中のER−α36の存在をよりよく検出するためにSNGmB1のような特異的抗体を利用する能力を評価するのに、免疫組織化学(IHC)アッセイを使用した。乳癌患者の4μm厚のパラフィン組織ブロックをキシレンに20分間、2回浸漬して脱パラフィンし、この後、99%、90%、85%、75%、50%エタノール中でそれぞれ5分間、連続的に再水和した。組織切片を次いでPBSで3回洗浄した。次いで抗原賦活を、電子レンジで95℃クエン酸塩(pH6.0)緩衝液中、15分間加熱して行った。室温まで冷却したら、切片を次いでPBSで3回洗浄し、3%過酸化水素と室温で20分間インキュベートし、この後、PBSで洗浄した。抗体の非特異的結合を次いで10%正常ヤギ血清と30分間インキュベートしてブロックし、この後、湿潤チャンバーで4℃、一晩、一次抗体とインキュベートした。PBSで5回洗浄した直後に、予め希釈した二次抗体(ZSGB−Bio、Cat# PV−6000)を添加し、室温で20分間インキュベートした。切片を次いでPBSで洗浄し、DAB溶液と2〜5分間インキュベートし、この後、蒸留水で5〜10分間すすいだ。切片を次いでヘマトキシリン(ZSGB−BIO、Cat# ZLI−9609)で対比染色し、この後、50%、75%、85%、90%及び99%エタノールで連続的にすすいで脱水した。切片を次いでキシレンで透徹し、中性バルサムで封入した後、顕微鏡で評価した。
異種移植モデルにおいてヒト腫瘍細胞増殖の阻害における抗ER−α36抗体の能力を、BCAP37乳癌モデルを用いて評価した。BCAP37は、浸潤性乳管がんを有する患者から開発され、ウエスタンブロットによりER−α36及びHER2を発現することが示された。細胞をNOD−SCIDマウスに移植した。腫瘍が80〜120mm3サイズまで増殖したとき、マウスを10匹の群に無作為に割り付け、マウスIgG2b又はSNGmB1抗体又はハーセプチンのいずれかにより、SNGmB1については1.25、5及び20mg/kg、又はハーセプチンについては3mg/kgの用量で処置した。処理の17日後、腫瘍を切除し、腫瘍重量及び体積の両方を測定した。図12に示されているように、SNGmB1抗体は、腫瘍増殖をハーセプチンと同様に、用量依存的に阻害できることが見出された。対照IgG2b処置群からの腫瘍体積とSNGmB1抗体処置群からの腫瘍体積の間に有意な差があった。
1.Ab−mc−vc−PAB−MMAE式(VII)の抗体薬物コンジュゲート(ADC)の合成
140mgの抗体SNGmB1(Ab)を取り、溶液の濃度を10mg/mlに調整しながらPBS(Corning)に溶解する。TCEP(Thermo Scientific)をモル比、TCEP/Ab=3で抗体溶液に添加する。上記の溶液を含むチューブを37℃で2時間保つ。小分子(TCEP及びTCEP酸化物等)をPBS中で平衡化PD−10カラム(GE)を通じて除去する。DTNB中でAb濃度及び遊離チオールをモニタリングする。遊離チオール/Ab>4の場合、1/10(v/v)ジメチルアセトアミド(DMA)(Honeywell)をAb溶液に添加する。DMA中10mM MMAE(すなわち薬物)をAb溶液にモル比で添加し、薬物対Abの比は4.5に達する。溶液を室温に4時間保ち、反応をHIC−HPLC(Agilent)によりモニタリングする。反応が終了した後、ADC産物をAmicon遠心分離フィルターユニットを用いて精製し、0.2umフィルターを通じて10容量PBSで6回洗浄し、最終産物を得る。ADCを4℃で保存する。
2.1.HIC−HPLC手順
カラム:#14947、TSK gel Butyl−NPR、4.6mm I.D.×3.5cm、2.5um(Tosoh Bioscience)、カラム温度、30℃
流速:1ml/分
検出:UV280及びUV252。緩衝液A:1.5M硫酸アンモニウム;
緩衝液B:25mMリン酸ナトリウム、pH7.0、25%イソプロパノール、20分、0%−−−90%;1分、90%−−−95%;4分、95%;1分、95%−−−0%。ADC濃度に依存する分析用20ul試料
カラム:#08541、G3000SWxl、7.8mm I.D.×30cm、5um(Tosoh Bioscience)、カラム温度、室温。
流速:0.4ml/分
検出:UV280。
緩衝液:100mMリン酸ナトリウム、pH7.0、100mM塩化ナトリウム、15%イソプロパノール、60分。
ADC濃度に依存する分析用20ul試料。ナノドロップ手順及びDAR計算
測定のためのul容量;ブランクとして1×PBS;280nmの吸光度を記録
3.1 HIC−HPLC:
図13から分かるように、ピークがほとんどないクロマトグラフィーは本発明の非コンジュゲート抗体を示している。より多くのピークを有するクロマトグラフィーはAb−mc−vc−PAB−MMAEを示している。両方の試料を同一のHIC−HPLC条件下で分析した。Ab−mc−vc−PAB−MMAEは標準的なHPLC条件下で複数のピークを示す。これは、抗体自体の不均一な集団を示唆している。
図14aから分かるように、非コンジュゲート抗体、すなわち本発明のSNGmB1が示されている。図14bから分かるように、Ab−mc−vc−PAB−MMAEのADCが示されている。結果は、より低い質量重量(MW)種がコンジュゲーション過程中に形成されることを示し、これは、該抗体が還元され、インタクトなIgGを形成する代わりにより低いMW種を形成したこと、またIgG間ジスルフィド結合により幾つかのHMW種も形成したことを示唆している可能性がある。
1. ADC Ab−mc−MMAF式(VIII)の合成
140mg Abを採取し、溶液の濃度を10mg/mlに調整しながらPBS(Corning)に溶解する。TCEP(Thermo Scientific)をモル比、TCEP/Ab=3でAb溶液に添加する。上記の溶液を含むチューブを37℃で2時間保つ。小分子をPBS中で平衡化PD−10カラム(GE)を通じて除去する。DTNB中でAb濃度及び遊離チオをモニタリングする。遊離チオール/Ab>4の場合、1/10(v/v)ジメチルアセトアミド(DMA)(Honeywell)をAb溶液に添加する。DMA中10mMのMMAF、すなわち薬物をAb溶液にモル比で添加し、薬物対Abの比は4.5に達する。溶液を室温に4時間保ち、反応をHIC−HPLC(Agilent)によりモニタリングする。反応が終了した後、ADC産物をAmicon遠心分離フィルターユニットで精製し、10容量PBSで6回洗浄し、最終産物を得る。0.2umフィルターを通じて濾過した後、ADCを4℃で保存する。
2.1 HIC−HPLC手順
カラム:#14947、TSK gel Butyl−NPR、4.6mm I.D.×3.5cm、2.5um(Tosoh Bioscience)、カラム温度、30℃
流速:1ml/分
検出:UV280及びUV252。
緩衝液A:1.5M硫酸アンモニウム;
緩衝液B:25mMリン酸ナトリウム、pH7.0、25%イソプロパノール、
20分、0%−−−90%;1分、90%−−−95%;4分、95%;1分、95%−−−0%。ADC濃度に依存する分析用20ul試料。
カラム:#08541、G3000SWxl、7.8mm I.D.×30cm、5um(Tosoh Bioscience)、カラム温度、室温。
流速:0.4ml/分
検出:UV280。
緩衝液:100mMリン酸ナトリウム、pH7.0、100mM塩化ナトリウム、15%イソプロパノール、60分。
ADC濃度に依存する分析用20ul試料。
ナノドロップ手順及びDAR計算
測定のための2.5ul容量;ブランクとして1×PBS
280nmの吸光度を記録
3.1 HIC−HPLC:
図15から分かるように、ピークがほとんどないクロマトグラフィーは非コンジュゲート抗体、すなわち本発明のSNGmB1を示している。より多くのピークを有するクロマトグラフィーはAb−mc−MMAFを示している。両方の試料を同一のHIC−HPLC条件下で分析した。Ab−mc−MMAFは標準的なHPLC条件下で複数のピークを示す。これは、抗体自体の不均一な集団を示唆している。
図16から分かるように、Ab−mc−MMAFのADCが示されている。結果は、より低い質量重量(MW)種がコンジュゲーション過程中に形成されることを示し、これは、この抗体が還元され、インタクトなIgGを形成する代わりにより低いMW種を形成したことを示唆している可能性がある。また、かなりの量の高質量重量(HMW)もある。
Ab−SMCC−DM1の合成
100mg Abを採取し、溶液の濃度を10mg/mlに調整しながらPBS(Corning)に溶解する。PBSの緩衝液をコンジュゲーション緩衝液(50mMリン酸ナトリウム、pH=6.5)に交換する。DMA1/10(v/v)を溶液に添加し、DM1、すなわち薬物対抗体のモル比は7.5に等しい。反応を室温で2時間保つ。反応をHIC−HPLCでモニタリングする。反応が終了した後、ADC産物をAmicon遠心分離フィルターユニットで精製し、10容量PBSで6回洗浄し、最終産物を得る。0.2umフィルターを通じて濾過した後、ADCを4℃で保存する。
2.1 HIC−HPLC手順:
カラム:#14947、TSK gel Butyl−NPR、4.6mm I.D.×3.5cm、2.5um(Tosoh Bioscience)、カラム温度、30℃
流速:1ml/分。
検出:UV280及びUV252。
緩衝液A:1.5M硫酸アンモニウム;緩衝液B:25mMリン酸ナトリウム、pH7.0。25%イソプロパノール、20分、0%−−−90%;1分、90%−−−95%;4分、95%;1分、95%−−−0%。
ADC濃度に依存する分析用μl試料。
カラム:#08541、G3000SWxl、7.8mm I.D.×30cm、5um(Tosoh Bioscience)。カラム温度:室温。
流速:0.4ml/分。
検出:UV280。緩衝液:100mMリン酸ナトリウム、pH7.0、100mM塩化ナトリウム、15%イソプロパノール、60分。
ADC濃度に依存する分析用5〜100ul試料。
測定のための2.5ul容量
ブランクとして1×PBS
280nmの吸光度を記録。
Endosafe PTS装置説明書に従って所望の試験範囲(50〜100倍)まで試料をエンドトキシン不含水で希釈して、試料をカートリッジに添加する。エンドトキシン測定値をプリントアウトする。
3.1 HIC−HPLC:
図17において、ピークがほとんどないクロマトグラフィーは本発明の非コンジュゲート抗体を示している。より多くのピークを有するクロマトグラフィーはAb−SMCC−DM1を示している。両方の試料を同一のHIC−HPLC条件下で分析した。Ab−SMCC−DM1は、標準的なHPLC条件下で複数のピークを示す。これは、抗体自体の不均一な集団を示唆している。
図18から分かるように、より多くのピークを有するクロマトグラフィーはADCであり、ピークがほとんどないクロマトグラフィーは非コンジュゲート抗体である。Ab−MB−vc−PAB−MMAEと比べて、Ab−SMCC−DM1ははるかに少ない低質量重量(MW)種を含有する。これは、MMAEコンジュゲートにおける低MW種が還元ステップから生成されたことを裏付けるものである。
1.抗体薬物コンジュゲートの合成
100mg Abを採取し、溶液の濃度を10mg/mlに調整しながらPBS(Corning)に溶解する。PBSの緩衝液をコンジュゲーション緩衝液(50mMリン酸ナトリウム、pH=6.5)に交換する。DMA1/10(v/v)を溶液に添加し、抗体対DM4、すなわち薬物のモル比は7.5に等しい。反応を室温で2時間保つ。反応をHIC−HPLCでモニタリングする。反応終了後、ADC産物をAmicon遠心分離フィルターユニットで精製し、10容量PBSで6回洗浄し、最終産物を得る。0.2umフィルターを通じて濾過した後、ADCを4℃で保存する。
2.1 HIC−HPLC手順:
カラム:#14947、TSK gel Butyl−NPR、4.6mm I.D.×3.5cm、2.5um(Tosoh Bioscience)、カラム温度、30℃
流速:1ml/分。
検出:UV280及びUV252。
緩衝液A:1.5M硫酸アンモニウム;緩衝液B:25mMリン酸ナトリウム、pH7.0。25%イソプロパノール、20分、0%−−−90%;1分、90%−−−95%;4分、95%;1分、95%−−−0%。
ADC濃度に依存する分析用20μl試料。
カラム:#08541、G3000SWxl、7.8mm I.D.×30cm、5um(Tosoh Bioscience)。カラム温度:室温。
流速:0.4ml/分。
検出:UV280。
緩衝液:100mMリン酸ナトリウム、pH7.0、100mM塩化ナトリウム、15%イソプロパノール、60分。
ADC濃度に依存する分析用20ul試料。
測定のための2.5ul容量
ブランクとして1×PBS
280nmの吸光度を記録。
3.1 HIC−HPLC:
図19において、ピークがほとんどないクロマトグラフィーは本発明の非コンジュゲート抗体を示している。より多くのピークを有するクロマトグラフィーはAb−SPDB−DM4を示している。両方の試料を同一のHIC−HPLC条件下で分析した。Ab−SPDB−DM4は標準的なHPLC条件下で複数のピークを示す。これは、抗体自体の不均一な集団を示唆している。
図20から分かるように、より多くのピークを有するクロマトグラフィーはADCであり、ピークがほとんどないクロマトグラフィーは非コンジュゲート抗体である。
1.抗体薬物コンジュゲートの合成
140mg Ab、すなわちSNGmB1を採取し、溶液の濃度を10mg/mlに調整しながらPBS(Corning)に溶解する。TCEP(Thermo Scientific)をモル比、TCEP/Ab=3でAb溶液に添加する。上記の溶液を含むチューブを37℃で2時間保つ。過剰なTCEPをPBS中で平衡化PD−10カラム(GE)を通じて除去する。DTNB中でAb濃度及び遊離チオをモニタリングする。遊離チオール/Ab>4の場合、1/10(v/v)ジメチルアセトアミド(DMA、Honeywell)をAb溶液に添加する。DMA中10mMのデュオカルマイシン、すなわち、薬物をAb溶液にモル比で添加し、薬物対Abの比は4.5に達する。溶液を室温に4時間保ち、反応をHIC−HPLC(Agilent)によりモニタリングする。反応が終了した後、ADC産物をAmicon遠心分離フィルターユニットで精製し、10容量PBSで6回洗浄し、最終産物を得る。0.2umフィルターを通じて濾過した後、ADCを4℃で保存する。
2.1 HIC−HPLC手順
カラム:#14947、TSK gel Butyl−NPR、4.6mm I.D.×3.5cm、2.5um(Tosoh Bioscience)、カラム温度、30℃
流速:1ml/分
検出:UV280及びUV252。
緩衝液A:1.5M硫酸アンモニウム;緩衝液B:25mMリン酸ナトリウム、pH7.0、25%イソプロパノール、
20分、0%−−−90%;1分、90%−−−95%;4分、95%;1分、95%−−−0%。
ADC濃度に依存する分析用20ul試料。
カラム:#08541、G3000SWxl、7.8mm I.D.×30cm、5um(Tosoh Bioscience)、カラム温度、室温。
流速:0.4ml/分
検出:UV280。
緩衝液:100mMリン酸ナトリウム、pH7.0、100mM塩化ナトリウム、15%イソプロパノール、60分。
ADC濃度に依存する分析用20ul試料。
測定のための2.5ul容量
ブランクとして1×PBS
280nmの吸光度を記録。
図21から分かるように、より多くのピークを有するクロマトグラフィーはADCであり、ピークがほとんどないクロマトグラフィーは非コンジュゲート抗体である。両方の試料を同一のHIC−HPLC条件下で分析した。ADCは標準的なHPLC条件下で複数のピークを示す。これは、抗体自体の不均一な集団を示唆している。
この実験で使用した細胞を以下の表1として列挙する。
1日目:
表1の細胞をそれぞれ90%コンフルエンスで採取し、培地を除去した。2mL PBSを60mmペトリ皿に添加し、除去した。0.5mLトリプシンをペトリ皿に添加し、37℃で2〜3分間保つ。約80%細胞を顕微鏡により懸濁したとき、1mL完全培地を添加して反応を終わらせた。細胞懸濁液を2mL Epチューブに移し、900rpm、室温で5分間遠心分離した。上清を吸収し、1ml PBSを添加して細胞を再懸濁した(フェノールレッド及び血清ホルモンを除去しながら)。溶液を900rpm、室温で5分間遠心分離し、細胞をフェノールレッドを含まない2.5%CS−FBS培地を通過させ、カウントした。細胞を、2000〜3000細胞/ウェル及び90μL/ウェルを保ちながら、細胞体積及び増殖速度に従って96ウェルプレートで培養した。各ADCをトリプルウェルに滴下し、PBSをウェルのへりの周囲に添加した。プレートを5%CO2を含むインキュベーターに入れ、37℃で24時間保った。
各ADC(Ab−mc−vc−PAB−MMAE、Ab−mc−MMAF、Ab−SPDB−DM4、Ab−SMCC−DM1及びAb−MB−vc−デュオカルマイシン)の試験濃度は、それぞれ300nM、100nM、30nM、10nM、3nM、1nM、0.3nM及び0.1nMであった。各上記溶液を試験のために72時間保った。
10μL CCK−8を、温度を2〜4時間で37℃に上昇させながら各ウェルに添加した。細胞の色に基づき、OD450を試験するのに最適な時間を選択し、IC50を計算した。種々の濃度の各薬剤(SNGmB1、Ab−mc−vc−PAB−MMAE、Ab−mc−MMAF、Ab−SMCC−DM1、Ab−SPDB−DM4及びAb−MB−vc−デュオカルマイシン)を投与されたPLCのOD450を図23として示した。種々の濃度の各薬剤(SNGmB1、Ab−mc−vc−PAB−MMAE、Ab−mc−MMAF、Ab−SMCC−DM1、Ab−SPDB−DM4及びAb−MB−vc−デュオカルマイシン)を投与されたSUM159のOD450を図24として示した。
肺腫瘍転移を阻害するSNGmB1
FACS選別4T1−ER−α36陽性細胞(ATCC)(5×104)を尾静脈を介してヌードマウスに注射した。平均20mg/kg体重SNGmB1又は対照IgG(20mg/kg体重)を3又は4日ごとに18日間、尾静脈注射により投与し、タモキシフェン(1mg/kg体重)を同期に胃内投与した。肺腫瘍細胞の転移を図25に示す。SNGmB1が肺腫瘍の転移を防ぐことが例証されている。
Claims (51)
- 配列番号3で表されるLCDR1、配列番号4で表されるLCDR2、及び配列番号5で表されるLCDR3を含む軽鎖可変領域、ならびに
配列番号6で表されるHCDR1、配列番号7で表されるHCDR2、及び配列番号8で表されるHCDR3を含む重鎖可変領域を含む、ER-α36に結合する抗体又はその抗原結合性フラグメント。 - 前記軽鎖可変領域が、
a)配列番号9を含む軽鎖可変領域、
b)配列番号11を含む軽鎖可変領域、
c)配列番号12を含む軽鎖可変領域、及び
d)配列番号13を含む軽鎖可変領域
からなる群から選択される、請求項1に記載の抗体又はその抗原結合性フラグメント。 - 前記重鎖可変領域が、
a)配列番号10を含む重鎖可変領域、
b)配列番号14を含む重鎖可変領域、及び
c)配列番号15を含む重鎖可変領域
からなる群から選択される、請求項1に記載の抗体又はその抗原結合性フラグメント。 - 配列番号16を含む軽鎖、及び配列番号18の重鎖を含む、請求項1〜3のいずれかに記載の抗体又はその抗原結合性フラグメント。
- 配列番号20を含む軽鎖、及び配列番号22の重鎖を含む、請求項1〜3のいずれかに記載の抗体又はその抗原結合性フラグメント。
- 配列番号24、配列番号26、及び配列番号28からなる群から選択される軽鎖、並びに配列番号30、及び配列番号32からなる群から選択される重鎖を含む、請求項1〜3のいずれかに記載の抗体又はその抗原結合性フラグメント。
- 配列番号2のG20、N21、K22、W23、及び/又はF24を含むエピトープに実質的に結合する、請求項4に記載の抗体又はその抗原結合性フラグメント。
- 前記エピトープが、配列番号2のS3、K8、R10、P16、K17、G20、N21、K22、W23、及び/又はF24を含む、請求項7に記載の抗体又はその抗原結合性フラグメント。
- モノクローナル抗体、二重特異性抗体、キメラ抗体、ヒト化抗体、組換え抗体、標識抗体、又は二価抗体である、請求項1から8のいずれかに記載の抗体又はその抗原結合性フラグメント。
- ダイアボディ、scFv、scFvダイマー、BsFv、dsFv、(dsFv)2、dsFv−dsFv’、Fvフラグメント、Fab、Fab’、F(ab’)2、dsダイアボディ、ナノボディ、又は二価ドメイン抗体である、請求項1から8のいずれかに記載の抗体又はその抗原結合性フラグメント。
- 免疫グロブリン定常領域をさらに含む、請求項1から8のいずれかに記載の抗体又はその抗原結合性フラグメント。
- 前記免疫グロブリン定常領域が、λ軽鎖、κ軽鎖、γ1重鎖、γ2重鎖、γ3重鎖、又はγ4重鎖定常領域である、請求項11に記載の抗体又はその抗原結合性フラグメント。
- 配列番号1に記載のhER−α36又は配列番号2を含むhER−α36のフラグメントに結合する、請求項1から12のいずれかに記載の抗体又はその抗原結合性フラグメントを含む複合体。
- 請求項1から12のいずれかに記載の抗体又はその抗原結合性フラグメントの1つ又は複数のアミノ酸配列を含む単離されたポリペプチド。
- 請求項14に記載のポリペプチドをコードする単離されたポリヌクレオチド。
- 請求項15に記載のポリヌクレオチドを含む単離されたベクター。
- 請求項16に記載のベクターを含む単離された宿主細胞。
- 請求項14に記載の1つ又は複数のアミノ酸配列を含むポリペプチドを発現させる方法であって、請求項14に記載のポリペプチドが発現している条件下で、請求項17に記載の単離された宿主細胞を培養することを含む方法。
- 請求項1から12のいずれかに記載の抗体又はその抗原結合性フラグメント、及び1種又は複数の薬学的に許容される担体を含む医薬組成物。
- 前記1種又は複数の薬学的に許容される担体が、薬学的に許容される液体、ゲル、固体担体、水性ビヒクル、非水性ビヒクル、抗菌剤、等張化剤、緩衝剤、抗酸化剤、麻酔薬、懸濁化/ディスペンディング剤、金属イオン封鎖剤又はキレート剤、希釈剤、アジュバント、賦形剤、及び無毒性補助物質からなる群から選択される、請求項19に記載の医薬組成物。
- 1種若しくは複数の化学療法剤と連結した又は組み合わせた、請求項1から12のいずれかに記載の抗体又はその抗原結合性フラグメントを含む医薬組成物。
- 1種若しくは複数の化学療法剤が、アムルビシン、アトラセンタン バタブリン、カルシトリオール、シレンジチド、ダサチニブ、デカタニブ、エドテカリン、エンザスタウリン、エルロチニブ、エベロリムス、ジマテカン、ゴシポール イピリムマブ、ロナファルニブ、ルカントン、ノイラジアブ、ノラトレキセド、オブリメルセン、オファツムマブ、オレゴボマブ、パニツムマブ、パゾパニブ ルビテカン、タランパネル、テムシロリムス、テスミリフェン、テトランドリン、チシリムマブ、トラベクテジン、バンデタニブ、ビテスパン、ザノリムマブ、ゾレンドロネート、ヒストレリン、アザシチジン、デクスラゾキサン、アレムツズマブ、レナリドマイド、ゲムツズマブ、ケトコナゾール、ナイトロジェンマスタード、イブリツモマブ チウキセタン、デシタビン、ヘキサメチルメラミン、ベキサロテン、トシツモマブ、三酸化ヒ素、エディトロネート、シクロスポリン、エドウィナ−アスパラギナーゼ、及びストロンチウム89からなる群から選択される、請求項21に記載の抗体又はその抗原結合性フラグメントを含む医薬組成物。
- 1つ又は複数のコンジュゲートと連結した、請求項1から12のいずれかに記載の抗体又はその抗原結合性フラグメントを含む組成物。
- 前記コンジュゲートが、123I、124I、125I、131I、35S、3H、111In、112In、14C、64Cu、67Cu、86Y、88Y、90Y、177Lu、211At、186Re、188Re、153Sm、212Bi、及び32Pから選択される放射性同位体、ランタニド、発光標識、フルオレセイン、ローダミン、ダンシル、フィコエリトリン、又はテキサスレッドから選択される蛍光標識、並びにホースラディッシュペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、又はβ−D−ガラクトシダーゼから選択される酵素基質標識からなる群から選択される、請求項23に記載の組成物。
- 1つ若しくは複数の薬物部分に共有結合した抗体を含む抗体薬物コンジュゲート又は薬学的に許容されるその塩若しくは溶媒和物であって、式(I)
Ab(−L−D)n (I)
(式中、Abは請求項1から12のいずれかに記載の抗体又はその抗原結合性フラグメントであり、Lは前記薬物を前記抗体に結合させているリンカーであり、Dは薬物であり、nは1〜60の範囲にある整数である)を有する抗体薬物コンジュゲート。 - 前記Lが、マレイミドカプロイル、マレイミドカプロイル−バリン−シトルリン−p−アミノベンジルカルバモイル、N−スクシンイミジル−4−(マレイミドメチル)シクロヘキサンカルボキシレート、N−スクシンイミジル−4−(2−ピリジルジチオ)ブタノエート及びMB−vcからなる群から選択される、請求項25に記載の抗体薬物コンジュゲート。
- マレイミドカプロイルの構造が式(II)
として示される、請求項26に記載の抗体薬物コンジュゲート。 - マレイミドカプロイル−バリン−シトルリン−p−アミノベンジルカルバモイルの構造が式(III)
として示される、請求項26に記載の抗体薬物コンジュゲート。 - MBvcの構造が式(IV)
として示される、請求項26に記載の抗体薬物コンジュゲート。 - N−スクシンイミジル−4−(マレイミドメチル)シクロヘキサンカルボキシレートの構造が式(V)
として示される、請求項26に記載の抗体薬物コンジュゲート。 - N−スクシンイミジル−4−(2−ピリジルジチオ)ブタノエートの構造が式(VI)
として示される、請求項26に記載の抗体薬物コンジュゲート。 - 前記薬物が、モノメチルオーリスタチンE、モノメチルオーリスタチンF、デュオカルマイシン及びメイタンシノイドからなる群から選択される、請求項25に記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 前記メイタンシノイドが、N2'−デアセチル−N2'−(3−メルカプト−1−オキソプロピル)−メイタンシン又はN2'−デアセチル−N2'−(4−メルカプト−4−メチル−1−オキソペンチル)メイタンシンを含む、請求項32に記載の抗体薬物コンジュゲート。
- 抗体薬物コンジュゲート化合物の構造が、式(VII)
(式中、sは1〜20の範囲にある整数である)としてAb−mc−vc−PAB−MMAEを含む、請求項25に記載の抗体薬物コンジュゲート。 - 抗体薬物コンジュゲート化合物の構造が、式(VIII)
(式中、tは1〜20の範囲にある整数である)としてAb−mc−MMAFを含む、請求項25に記載の抗体薬物コンジュゲート。 - 抗体薬物コンジュゲート化合物の構造が、式(IX)
- 抗体薬物コンジュゲート化合物の構造が、式(X)
(式中、uは1〜60の範囲にある整数である)としてAb−SPDB−DM4を含む、請求項25に記載の抗体薬物コンジュゲート。 - 抗体薬物コンジュゲート化合物の構造が、式(XI)
- 試料中のER−α36の存在を検出する方法であって、請求項1から12のいずれかに記載の抗体又はその抗原結合性フラグメントに試料を曝露すること、及びN−スクシンイミジル−4−(マレイミドメチル)シクロヘキサンカルボキシレートの存在を決定することを含む方法。
- ER−α36を発現している試料を検出するためのキットであって、請求項1から12のいずれかに記載の抗体又はその抗原結合性フラグメントを含むキット。
- 対象においてER−α36と関連した状態を処置又は予防するための医薬組成物であって、請求項1から12のいずれかに記載の抗体又はその抗原結合性フラグメントを処置有効量含む医薬組成物。
- 対象においてER−α36と関連した状態を処置又は予防するための医薬組成物であって、請求項25から38のいずれかに記載の抗体薬物コンジュゲートを処置有効量含む医薬組成物。
- 前記状態が、骨喪失、骨折、骨粗鬆症、転移性骨疾患、パジェット病、歯周疾患、軟骨変性、子宮内膜症、子宮類線維疾患、ほてり、高LDLコレステロールレベル、心血管疾患、認知機能障害、脳変性障害、再狭窄、女性化乳房、血管平滑筋細胞増殖、肥満、失禁、不安症、エストロゲン欠乏から生じるうつ、周閉経期のうつ、分娩後うつ、月経前症候群、躁うつ病、不安症、認知症、強迫性行動、注意欠陥障害、睡眠障害、被刺激性、衝動性、免疫不全、自己免疫疾患、アンガーマネージメント、多発性硬化症及びパーキンソン病、炎症、炎症状態、炎症性腸疾患、呼吸器系疾患、性機能不全、高血圧、網膜変性、喘息並びにがん状態からなる群から選択される、請求項41又は42に記載の医薬組成物。
- 前記状態が、骨喪失、骨折、骨粗鬆症、閉経、月経前症候群、子宮内膜症、子宮疾患、インポテンス、性機能不全、高LDLコレステロールレベル、心血管疾患、アテローム性動脈硬化症、血管平滑筋細胞増殖、エストロゲン欠乏から生じるうつ、周閉経期のうつ、分娩後うつ、免疫不全、自己免疫疾患、炎症、炎症状態、喘息及びがん状態を含む、請求項41から43のいずれかに記載の医薬組成物。
- 前記炎症状態が、関節リウマチ、乾癬、強皮症、慢性閉塞性肺疾患、及び喘息からなる群から選択される、請求項43又は44に記載の医薬組成物。
- 前記がん状態が、扁平上皮がん、肺がん(例えば、肺小細胞がん、非小細胞性肺がん(NSCLC)、肺腺癌、又は肺扁平上皮癌)、腹膜のがん、肝臓がん(例えば、肝細胞癌/ヘパトーマ)、胃のがん又は胃がん(例えば、消化器がん)、膵臓がん、脳腫瘍(例えば、膠芽腫/多形性膠芽腫(GBM)、非膠芽腫脳腫瘍、又は髄膜腫)、神経膠腫(例えば、上衣腫、星細胞腫、退形成性星細胞腫、乏突起膠腫、又は、乏突起星細胞腫などの混合性神経膠腫)、子宮頚部がん、卵巣がん、肝臓がん(例えば、肝芽腫、肝細胞癌/ヘパトーマ、又は肝臓の癌)、膀胱がん(例えば、尿路上皮がん)、乳がん、結腸がん、結腸直腸がん、直腸がん、子宮内膜癌又は子宮癌、唾液腺癌、腎臓がん又は腎臓のがん(例えば、腎臓の桿状腫瘍)、前立腺がん、外陰がん、陰茎がん、肛門がん(例えば、肛門扁平上皮癌)、甲状腺がん、頭頚部がん(例えば、鼻咽頭がん)、皮膚がん(例えば、黒色腫又は扁平上皮癌)、骨肉腫、ユーイング肉腫、軟骨肉腫、軟部組織肉腫(例えば、横紋筋肉腫、線維肉腫、カポジ肉腫)、カルチノイドがん、眼がん(例えば、網膜芽細胞腫)、中皮腫、リンパ性/リンパ芽球性白血病(例えば、T細胞系列及びB細胞前駆系列双方の急性リンパ性/リンパ芽球性白血病(ALL)、慢性リンパ芽球性/リンパ性白血病(CLL)、肥満細胞性白血病を含む急性骨髄性/骨髄芽球性白血病(AML)、慢性骨髄性/骨髄球性/骨髄芽球性白血病(CML)、有毛状細胞性白血病(HCL)、ホジキン病、非ホジキンリンパ腫、慢性骨髄単球性白血病(CMML)、濾胞性リンパ腫(FL)、びまん性大細胞型B細胞リンパ腫(DLCL)、マントル細胞リンパ腫(MCL)、バーキットリンパ腫(BL)、菌状息肉腫、セザリー症候群、皮膚T細胞リンパ腫、肥満細胞腫瘍、髄芽細胞腫、腎芽腫、孤立性形質細胞腫、骨髄異形成症候群、慢性及び非慢性骨髄増殖性疾患、中枢神経系腫瘍、下垂体腺種、前庭神経鞘腫、原始神経外胚葉腫瘍、上衣腫、脈絡叢乳頭腫、真性多血症、血小板血症、特発性骨髄線維症、並びに小児肉腫(例えば、神経芽細胞腫、横紋筋肉腫、及び骨肉腫)などの小児がんからなる群から選択される、請求項43又は44に記載の医薬組成物。
- 皮下、腹腔内、静脈内、筋肉内、若しくは皮内注射を含む腸管外経路;又は経皮、経口、鼻腔内、眼内、舌下、直腸、若しくは局所を含む非腸管外経路を通して投与される、請求項41又は42に記載の医薬組成物。
- 前記処置有効量が約0.01mg/kg〜約100mg/kgである、請求項41又は42に記載の医薬組成物。
- 前記処置有効量が、約0.01mg/kg、約0.5mg/kg、約1mg/kg、約2mg/kg、約5mg/kg、約10mg/kg、約15mg/kg、約20mg/kg、約25mg/kg、約30mg/kg、約35mg/kg、約40mg/kg、約45mg/kg、約50mg/kg、約55mg/kg、約60mg/kg、約65mg/kg、約70mg/kg、約75mg/kg、約80mg/kg、約85mg/kg、約90mg/kg、約95mg/kg、及び約100mg/kgからなる群から選択される、請求項48に記載の前記医薬組成物。
- 対象においてER−α36と関連した状態のステータスを決定するのを補助する方法であって、請求項1から12のいずれかに記載の抗体又はその抗原結合性フラグメントを用いて対象由来のサンプル中のER−α36のレベルを測定することを含む方法。
- 請求項1から12のいずれかに記載の抗体又はその抗原結合性フラグメントを含む、腫瘍転移を排除するための医薬組成物。
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