JP6517140B2 - 抗ＦｃＲｎ抗体 - Google Patents

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Description

本開示は、ＦｃＲｎに特異的な抗体、それを含む製剤、治療における各々の使用、前記抗体を発現し、任意選択に製剤化するプロセス、抗体をコードするＤＮＡ及び前記ＤＮＡを含む宿主に関する。
ＦｃＲｎは、膜タンパク質ＦｃＲｎα鎖及びβ２ミクログロブリン（β２Ｍ）の非共有結合複合体である。成体哺乳動物において、ＦｃＲｎは、ＩｇＧアイソタイプの抗体に結合し、それを回収する受容体として作用することによって血清抗体レベルを維持するのに重要な役割を果たす。ＩｇＧ分子は内皮細胞によって取り込まれ、それらがＦｃＲｎに結合する場合、再利用され、例えば循環内に経細胞輸送される。対照的に、ＦｃＲｎに結合しないＩｇＧ分子は細胞に入り、それらが分解されるリソソーム経路に向かう。Ｈｉｓ４３５がアラニンに変異されるバリアントＩｇＧ１は、ＦｃＲｎ結合の選択的損失を生じ、血清半減期を著しく減少させる（Ｆｉｒａｎら ２００１、Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ １３：９９３）。
ＦｃＲｎは、自己抗体により少なくとも部分的に引き起こされる特定の自己免疫障害のための潜在的治療標的であると仮定されている。特定のこのような障害のための現在の処置はプラスマフェレーシスを含む。時々、プラスマフェレーシスは、疾患の長時間の管理の間、免疫抑制療法と共に利用される。血漿交換は有害な自己抗体を取り除くための最短の答えを与える。しかしながら、例えば、プレドニゾン、シクロホスファミド、シクロスポリン、ミコフェノール酸モフェチル、リツキシマブ又はこれらの混合物などの医薬の使用によって免疫系による自己抗体の産生を抑制することも望まれ得る。
プラスマフェレーシスにより処置され得る疾患の例には、ギランバレー症候群、慢性炎症性脱髄性多発神経障害、グッドパスチャー症候群、過粘稠度症候群、クリオグロブリン血症、パラプロテイン血症、ワルデンシュトレームマクログロブリン血症、重症筋無力症、血栓性血小板減少性紫斑病（ＴＴＰ）／溶血性尿毒症症候群、ウェゲナー肉芽腫症、ランバート−イートン症候群、抗リン脂質抗体症候群（ＡＰＳ又はＡＰＬＳ）、顕微鏡的多発血管炎、移植された腎臓における再発性の巣状及び分節性糸球体硬化症、ＨＥＬＬＰ症候群、ＰＡＮＤＡＳ症候群、レフサム病、ベーチェット症候群、ＨＩＶ関連神経障害、乳児及び新生児におけるグレーブス病、尋常性天疱瘡、多発性硬化症、横紋筋融解症及び同種免疫疾患が含まれる。
プラスマフェレーシスは時々、例えば緊急時に重篤な副作用を減少させるためにＦｃを含む治療を取り除くための救援治療として使用される。
プラスマフェレーシスは特定の医学的状態において有用であるが、治療に関連した潜在的リスク及び合併症が存在する。かなり大きな静脈内カテーテルの挿入は、出血、肺の破裂（カテーテル挿入の側に応じる）を引き起こす場合があり、カテーテルが非常に長い時間残ったままになると、静脈に対して感染及び／又は損傷を引き起こす場合があり、手順を繰り返す機会が限られる。
手順は更に、そのカテーテルに関連して複雑になり、例えば患者の血液がプラスマフェレーシス機器を通して身体の外側にある場合、血液は凝固する傾向がある。この傾向を減少させるために、１つの一般的なプロトコルにおいて、血液を循環させながら、クエン酸塩が注入される。クエン酸塩は血液中でカルシウムに結合し、カルシウムは血液を凝固させるのに不可欠である。クエン酸塩は血液が凝固するのを防ぐのに非常に効果的であるが、その使用は生命に驚異的な低いカルシウムレベルを引き起こし得る。これはクボステック兆候又はトルソー兆候を使用して検出され得る。この合併症を防ぐために、患者がプラスマフェレーシスを受けている間、カルシウムが静脈内に注入され、加えて、口からのカルシウム補足も与えられ得る。
手順の他の合併症には、低血圧、輸血反応又は輸血感染疾患のリスクを伴う血液製剤に対する潜在曝露、患者の免疫系の抑制及び針の穿刺による出血又は血腫が含まれる。
更に、プラスマフェレーシスを提供する器具は限定されており、手順は非常に高価である。
プラスマフェレーシスの代替は、１０００人以上の献血者の血漿から抽出されたプールされたポリクローナルＩｇＧを含有する血液製剤である静脈用免疫グロブリン（ＩＶＩＧ）である。この治療は静脈内投与であり、２週から３ヶ月の範囲で継続する。
ＩＶＩＧ処置の合併症には、頭痛、皮膚炎、治療製品の汚染に由来するウイルス感染、例えばＨＩＶ又は肝炎、肺水腫、アレルギー反応、急性腎不全、静脈血栓症及び無菌性髄膜炎が含まれる。
それ故、低侵襲性であり、患者を医学的合併症にほとんど曝さない、自己免疫障害のための治療についての重要で満たされていない要求が存在する。
それ故、低侵襲性であり、患者を医学的合併症にほとんど曝さない、免疫学的障害及び／又は自己免疫障害のための治療についての重要で満たされていない要求が存在する。
従って、ＦｃＲｎに対するＩｇＧの結合を遮断又は減少させる薬剤が、このような自己免疫及び炎症性疾患の処置又は防止に有用であり得る。抗ＦｃＲｎ抗体は以前にＷＯ２００９／１３１７０２、ＷＯ２００７／０８７２８９及びＷＯ２００６／１１８７７２において記載されている。
しかしながら、改良された抗ＦｃＲｎ抗体についての要求が存在する。
それ故、一態様において、可変領域を有する重鎖又は重鎖フラグメントを含む抗ＦｃＲｎ抗体又はその結合フラグメントであって、前記可変領域が、配列番号１、配列番号２及び配列番号３から独立して選択される１、２又は３つのＣＤＲを含み、例えばＣＤＲ Ｈ１は配列番号１であり、ＣＤＲ Ｈ２は配列番号２であり、ＣＤＲ Ｈ３は配列番号３である、抗ＦｃＲｎ抗体又はその結合フラグメントが提供される。
別の態様において、本明細書において定義される配列又は配列の組合せ、例えば同種対可変領域を含む、抗体又はフラグメントが提供される。
本開示の抗体は、ＦｃＲｎに対するＩｇＧの結合を遮断し、循環抗体の半減期を減少させることを含む、ＦｃＲｎの１つ又は複数の生物学的機能を減少させるのに有用であると考えられる。このことは、患者が自己抗体などの抗体をより迅速に除くことを可能にするという点で有益であり得る。
重要なことに、本発明の抗体は、同等で高い結合親和性でｐＨ６及びｐＨ７．４の両方にてヒトＦｃＲｎに結合できる。従って、有益には、抗体は、エンドソームを有さなくても、ＦｃＲｎに結合し続け、それにより、ＩｇＧに対するＦｃＲｎ結合の遮断を最大化する（機構の例示については図１０を参照のこと）。
一実施形態において、本開示に係る抗体又は結合フラグメントは、例えば配列番号４、配列番号５及び配列番号６から独立して選択される１、２又は３つのＣＤＲを含み、特にＣＤＲ Ｌ１が配列番号４であり、ＣＤＲ Ｌ２が配列番号５であり、ＣＤＲ Ｌ３が配列番号６である、可変領域を有する軽鎖又は軽鎖フラグメントを含む。
一実施形態において、本開示に係る抗体又は結合フラグメントは配列番号１〜６のＣＤＲ配列を含み、例えばＣＤＲ Ｈ１は配列番号１であり、ＣＤＲＥ Ｈ２は配列番号２であり、ＣＤＲ Ｈ３は配列番号３であり、ＣＤＲ Ｌ１は配列番号４であり、ＣＤＲ Ｌ２は配列番号５であり、ＣＤＲ Ｌ３は配列番号６である。
本開示はまた、本明細書に記載されている抗体又はフラグメントをコードする、ＤＮＡなどのポリヌクレオチドに拡張する。
前記ポリヌクレオチドを含む宿主細胞も提供される。
本明細書に提供される抗体又はフラグメントを発現する方法は、抗体又はフラグメントをＰＥＧなどのポリマーにコンジュゲートする方法である。
本開示はまた、前記抗体及びフラグメントを含む医薬組成物に関する。
一実施形態において、治療有効量の本明細書に記載される抗体、フラグメント又は組成物を投与するステップを含む、処置方法が提供される。
本開示はまた、処置、特に免疫学的及び／又は自己免疫障害の処置に使用するための本開示に係る抗体、フラグメント又は組成物に拡張する。
それ故、本開示は、抗体、そのフラグメント及びＩｇＧを異化するための身体の生来の機構を促進することによって達成される、病原性ＩｇＧを除去するための方法を提供する。
本質的に、本開示に係る抗体及びフラグメントは身体内のＩｇＧを再利用する系を遮断する。
本発明の治療は、プラスマフェレーシスが治療又はＩＶＩｇ治療であり、それが患者に有益である、特定の疾患のための置き換え又は補足を提供する可能性がある。
特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す図である。 特定の配列のアラインメントを示す図である。 特定の配列のアラインメントを示す図である。 本開示に係るＦａｂ’フラグメント及びそのＰＥＧ化型に対するヒトＭＤＣＫ ＩＩ上での結合の比較を示す図である。 本開示に係るＦａｂ’フラグメント及びそのＰＥＧ化型に対するヒトＭＤＣＫ ＩＩ上での結合の比較を示す図である。 ＭＤＣＫ ＩＩ細胞上でＩｇＧ再利用を阻害する本開示に係るＦａｂ’フラグメント及びそのＰＥＧ化型を示す図である。 本開示に係るＰＥＧ化Ｆａｂ’フラグメントが、ＭＤＣＫ ＩＩ細胞において頂部から基底外側のＩｇＧ経細胞輸送（ｔｒａｎｃｙｔｏｓｉｓ）を阻害することを示す図である。 本開示に係るＦａｂ’フラグメント及びそのＰＥＧ化型に対するカニクイザルＭＤＣＫ ＩＩの結合の比較を示す図である。 本開示に係るＦａｂ’フラグメント及びそのＰＥＧ化型に対するカニクイザルＭＤＣＫ ＩＩの結合の比較を示す図である。 本開示に係るＰＥＧ化Ｆａｂ’フラグメントが、ヒト及びそのカニクイザル型についてＭＤＣＫ ＩＩ細胞上でＩｇＧ再利用を阻害することを示す図である。 カニクイザルにおける血漿ＩｇＧレベルに対する本開示に係る単回投与のＰＥＧ化Ｆａｂ’分子の効果を示す図である。 血漿ＩｇＧレベルに対する本開示に係る１週間に４回の投与のＰＥＧ化Ｆａｂ’分子の効果を示す図である。 遮断タンパク質によって阻害されたＦｃＲｎの抗体再利用機能の図表示を示す図である。 精製したガンマ１ＩｇＧ抗体を使用したヒトＩｇＧ遮断アッセイに基づいたフローサイトメトリーを示す図である。 正常なカニクイザルにおけるＦａｂ’ＰＥＧ単回／間欠ＩＶ投与 ２０ｍｇ／Ｋｇ １及び６７日 ＩｇＧ薬物動態を示す図である。 正常なカニクイザルにおけるＦａｂ’ＰＥＧ：反復ＩＶ投与−週に１回の４×２０又は１００ｍｇ／Ｋｇ ＩｇＧ薬物動態を示す図である。 正常なカニクイザルにおけるＦａｂ’ＰＥＧ単回／間欠ＩＶ投与−２０ｍｇ／Ｋｇ及び１００ｍｇ／Ｋｇ １及び６７日 ＩｇＧ薬物動態を示す図である。 ２０ｍｇ／Ｋｇの１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧの２回のＩＶ投与後の４匹のカニクイザルにおける血漿ＩｇＧレベルを示す図である。 ３日毎に１回、２０ｍｇ／Ｋｇの１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧの１０回のＩＶ投与を与えている４匹のカニクイザルにおける血漿ＩｇＧレベルを示す図である。 カニクイザルにおける内因性血漿ＩｇＧに対する１５１９．ｇ５７ＩｇＧ４Ｐの２回の３０ｍｇ／ＫｇのＩＶ投与の効果を示す図である。 カニクイザルにおける血漿ＩｇＧに対する３０ｍｇ／Ｋｇ、続いて５ｍｇ／Ｋｇの１５１９．ｇ５７ ＩｇＧ４Ｐの４１日投与の効果を示す図である。 カニクイザルにおける血漿ＩｇＧに対するビヒクルによる毎日投与の結果を示す図である。 ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７Ｆａｂ’ＰＥＧ又はＰＢＳ ＩＶで処置したｈＦｃＲｎトランスジェニックマウスの血漿中のＩＶ ｈＩｇＧの増加したクリアランスを示す図である。 ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ＩｇＧ１又はＩｇＧ４又はＰＢＳ ＩＶで処置したｈＦｃＲｎトランスジェニックマウスの血漿中のＩＶ ｈＩｇＧの増加したクリアランスを示す図である。 ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７Ｆａｂ’−ヒト血清アルブミン又はＰＢＳ ＩＶで処置したｈＦｃＲｎトランスジェニックマウスの血漿中のＩＶ ｈＩｇＧの増加したクリアランスを示す図である。 ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ＦａｂＦｖ又はＰＢＳ ＩＶで処置したｈＦｃＲｎトランスジェニックマウスの血漿中のＩＶ ｈＩｇＧの増加したクリアランスを示す図である。 ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７Ｆａｂ又はＦａｂ’ＰＥＧ又はＰＢＳ ＩＶで処置したｈＦｃＲｎトランスジェニックマウスの血漿中のＩＶ ｈＩｇＧの増加したクリアランスを示す図である。 Ｆａｂ−ｄｓＦｖと称される、本発明の二重特異性抗体融合タンパク質を示す図である。
本明細書において利用されるＦｃＲｎとは、新生児Ｆｃ受容体としても知られている、ヒトＩｇＧ受容体アルファ鎖の間の非共有結合複合体を指し、そのアミノ酸配列は、β２ミクログロブリン（β２Ｍ）と一緒に番号Ｐ５５８９９の下でＵｎｉＰｒｏｔにあり、そのアミノ酸配列は番号Ｐ６１７６９の下でＵｎｉＰｒｏｔにある。
本明細書において利用される抗体分子は、抗体又はその結合フラグメントを指す。
本明細書において使用される「抗体」という用語は、概して、インタクトな（全）抗体、すなわち２本の重鎖及び２本の軽鎖の要素を含む抗体に関する。抗体は、例えばＷＯ２００７／０２４７１５に開示されている分子ＤＶＤ−Ｉｇ又はＷＯ２０１１／０３０１０７に記載されているいわゆる（ＦａｂＦｖ）２Ｆｃのように更なる結合ドメインを更に含んでもよい。このように本明細書に利用される抗体は、二、三又は四価完全長抗体を含む。
抗体の結合フラグメントには、単鎖抗体（すなわち、完全長重鎖及び軽鎖）、Ｆａｂ、修飾Ｆａｂ、Ｆａｂ’、修飾Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｖ、Ｆａｂ−Ｆｖ、Ｆａｂ−ｄｓＦｖ、単一ドメイン抗体（例えばＶＨ又はＶＬ又はＶＨＨ）、ｓｃＦｖ、二、三又は四価抗体、Ｂｉｓ−ｓｃＦｖ、ダイアボディ、トリボディ、トリアボディ、テトラボディ及び上記のいずれかのエピトープ結合フラグメントが含まれる（例えば、Ｈｏｌｌｉｇｅｒ及びＨｕｄｓｏｎ、２００５、Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈ．２３（９）：１１２６−１１３６；Ａｄａｉｒ及びＬａｗｓｏｎ、２００５、Ｄｒｕｇ Ｄｅｓｉｇｎ Ｒｅｖｉｅｗｓ−Ｏｎｌｉｎｅ ２（３）、２０９−２１７を参照のこと）。これらの抗体フラグメントを創出し、製造する方法は当該分野において周知である（例えばＶｅｒｍａら、１９９８、Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｍｅｔｈｏｄｓ、２１６、１６５−１８１を参照のこと）。Ｆａｂ−ＦｖフォーマットはＷＯ２００９／０４０５６２において最初に開示されており、そのジスルフィド安定化型、Ｆａｂ−ｄｓＦｖはＷＯ２０１０／０３５０１２に最初に開示されており、本明細書の図２５も参照されたい。本発明に使用するための他の抗体フラグメントには、国際特許出願ＷＯ２００５／００３１６９、ＷＯ２００５／００３１７０及びＷＯ２００５／００３１７１に記載されているＦａｂ及びＦａｂ’フラグメントが含まれる。多価抗体は複数の特異性、例えば二重特異性を含んでもよいか、又は単一特異性であってもよい（例えばＷＯ９２／２２５８３及びＷＯ０５／１１３６０５を参照のこと）。後者の１つのこのような例は、ＷＯ９２／２２５８３に記載されているＴｒｉ−Ｆａｂ（又はＴＦＭ）である。
典型的なＦａｂ’分子は重鎖及び軽鎖対を含み、該重鎖は可変領域ＶＨ、定常ドメインＣＨｌ及び天然又は修飾ヒンジ領域を含み、該軽鎖は可変領域ＶＬ及び定常ドメインＣＬを含む。
一実施形態において、例えば二量化がヒンジを介してであり得る、Ｆ（ａｂ’）２を創出するための本開示に係るＦａｂ’の二量体が提供される。
一実施形態において、抗体又はその結合フラグメントは結合ドメインを含む。結合ドメインは概して、重鎖から３個及び軽鎖から３個の６個のＣＤＲを含む。一実施形態において、ＣＤＲはフレームワーク内にあり、可変領域を一緒に形成する。それ故、一実施形態において、抗体又は結合フラグメントは軽鎖可変領域及び重鎖可変領域を含む抗原に特異的な結合ドメインを含む。
１つ又は複数（例えば１、２、３又は４つ）のアミノ酸の置換、付加及び／又は欠失が、ＦｃＲｎに結合する抗体の能力を顕著に変化させずに本発明によって提供されるＣＤＲ又は他の配列（例えば可変ドメイン）に対してなされてもよいことは理解される。任意のアミノ酸の置換、付加及び／又は欠失の効果は、当業者により、例えばＦｃＲｎを決定するために本明細書、特に例に記載されている方法を使用することによって容易に試験され得る。
１つ又は複数（例えば１、２、３又は４つ）のアミノ酸の置換、付加及び／又は欠失は、本発明によって提供される抗体又はフラグメントに利用されるフレームワーク領域に対してなされてもよく、ＦｃＲｎに対する結合親和性が保持されるか、又は増加する。
抗体可変ドメイン内の残基は、Ｋａｂａｔらによって考案されているシステムに従って慣例的に番号付けされる。このシステムは、Ｋａｂａｔら、１９８７、免疫学的対象のタンパク質の配列（Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｔｅｒｅｓｔ）、ＵＳ Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ ａｎｄ Ｈｕｍａｎ Ｓｅｒｖｉｃｅｓ、ＮＩＨ、ＵＳＡ（本明細書以下において「Ｋａｂａｔら（上記）」）に記載されている。他に示されている場合を除いて、この番号付けシステムが本明細書に使用される。
Ｋａｂａｔ残基の指定はアミノ酸残基の線形番号付けと常に直接的に対応するわけではない。実際の線形アミノ酸配列は、基礎可変ドメイン構造のフレームワーク又は相補性決定領域（ＣＤＲ）であるかに関わらず、構造構成成分の短縮又は構造構成成分内への挿入に対応する厳格なＫａｂａｔ番号付けにおけるよりも少ない又は追加のアミノ酸を含んでもよい。残基の正確なＫａｂａｔ番号付けは、抗体の配列と「標準的な」Ｋａｂａｔ番号付け配列との相同性の残基のアラインメントによって所与の抗体について決定され得る。
重鎖可変ドメインのＣＤＲは、Ｋａｂａｔ番号付けシステムに従って残基３１〜３５（ＣＤＲ−Ｈ１）、残基５０〜６５（ＣＤＲ−Ｈ２）及び残基９５〜１０２（ＣＤＲ−Ｈ３）に位置する。しかしながら、Ｃｈｏｔｈｉａ（Ｃｈｏｔｈｉａ，Ｃ．及びＬｅｓｋ，Ａ．Ｍ．Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．、１９６、９０１−９１７（１９８７））に従って、ＣＤＲ−Ｈ１に等価なループは残基２６から残基３２まで伸長する。それ故、他に示されない限り、本明細書において利用される「ＣＤＲ−Ｈ１」は、Ｋａｂａｔ番号付けシステムとＣｈｏｔｈｉａのトポロジカルループ定義との組合せによって記載されている、残基２６から３５を指すことを意図する。
軽鎖可変ドメインのＣＤＲは、Ｋａｂａｔ番号付けシステムに従って残基２４〜３４（ＣＤＲ−Ｌ１）、残基５０〜５６（ＣＤＲ−Ｌ２）及び残基８９〜９７（ＣＤＲ−Ｌ３）に位置する。
本開示の抗体及びフラグメントはＦｃＲｎを遮断するので、ＩｇＧの再循環においてそのＦｃＲｎが機能することを防ぐ。本明細書に利用される遮断とは、受容体を閉塞することなどの物理的に遮断することを指すが、また、抗体又はフラグメントが、例えば立体構造変化の原因となるエピトープに結合することも含み、このことは受容体に対して天然リガンドがもはや結合しないことを意味する。本発明の抗体分子はＦｃＲｎに結合するので、ＩｇＧ定常領域に対するＦｃＲｎ結合を低下させるか、又は防止（例えば阻害）する。
一実施形態において、抗体又はそのフラグメントはＩｇＧに対して競合的にＦｃＲｎに結合する。
一例において、抗体又はその結合フラグメントはヒトＩｇＧに対するヒトＦｃＲｎ結合の競合的阻害剤として機能する。一例において、抗体又はその結合フラグメントはＦｃＲｎ上のＩｇＧ結合部位に結合する。一例において、抗体又はその結合フラグメントはβ２Ｍに結合しない。
本開示に使用するための抗体は当該分野において公知の任意の適切な方法を使用して得られ得る。融合タンパク質、細胞（組換え又は天然）を発現するポリペプチド（活性化Ｔ細胞など）を含むＦｃＲｎポリペプチド／タンパク質は、ＦｃＲｎを特異的に認識する抗体を作製するために使用され得る。ポリペプチドは、「成熟」ポリペプチド又はその生物学的に活性なフラグメント若しくは誘導体であってもよい。ヒトタンパク質は、番号Ｐ５５８９９の下でＳｗｉｓｓ−Ｐｒｏｔに登録されている。ヒトＦｃＲｎアルファ鎖の細胞外ドメインは配列番号９４に提供される。β２Ｍの配列は配列番号９５に提供される。
一実施形態において、抗原は細胞の表面上にＦｃＲｎを提示するように操作されるＦｃＲｎの変異型であるので、ＦｃＲｎが細胞内に内在化する動的処理はほとんど又は全く存在せず、例えば、このことは、Ｏｂｅｒら ２００１ Ｉｎｔ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３、１５５１−１５５９に記載されているようにジロイシンがジアラニンに変異される、ＦｃＲｎアルファ鎖の細胞質尾部における変異を起こすことによって達成され得る。
宿主を免疫化するために使用するためのポリペプチドは、発現系を含む、遺伝的に操作される宿主細胞から当該分野において周知のプロセスによって調製され得るか、又はそれらは天然の生物学的起源から回収され得る。本出願において、「ポリペプチド」という用語は、ペプチド、ポリペプチド及びタンパク質を含む。これらは他に特定されない限り互換的に使用される。ＦｃＲｎポリペプチドは、一部の場合、例えば親和性タグ又は類似物に融合される融合タンパク質などのより大きなタンパク質の部分であってもよい。
動物の免疫化が必要な場合、ＦｃＲｎポリペプチドに対して生成される抗体は、周知及び慣用のプロトコルを使用して、ポリペプチドを動物、好ましくは非ヒト動物に投与することによって得られ得る。例えば、実験免疫学のハンドブック（Ｈａｎｄｂｏｏｋ ｏｆ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ）、Ｄ．Ｍ．Ｗｅｉｒ（ｅｄ．）、Ｖｏｌ４、Ｂｌａｃｋｗｅｌｌ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ、Ｏｘｆｏｒｄ、Ｅｎｇｌａｎｄ、１９８６）を参照のこと。ウサギ、マウス、ラット、ヒツジ、ウシ、ラクダ又はブタなどの多くの温血動物が免疫化され得る。しかしながら、マウス、ウサギ、ブタ及びラットが一般に最も好適である。
モノクローナル抗体は、ハイブリドーマ技術（Ｋｏｈｌｅｒ ＆ Ｍｉｌｓｔｅｉｎ、１９７５、Ｎａｔｕｒｅ、２５６：４９５−４９７）、トリオーマ技術、ヒトＢ細胞ハイブリドーマ技術（Ｋｏｚｂｏｒら、１９８３、Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ Ｔｏｄａｙ、４：７２）及びＥＢＶ−ハイブリドーマ技術（Ｃｏｌｅら、モノクローナル抗体及び癌治療（Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ａｎｄ Ｃａｎｃｅｒ Ｔｈｅｒａｐｙ）、ｐｐ７７−９６、Ａｌａｎ Ｒ Ｌｉｓｓ，Ｉｎｃ．、１９８５）などの当該分野において公知の任意の方法によって調製され得る。
本発明に使用するための抗体はまた、例えば、Ｂａｂｃｏｏｋ，Ｊら、１９９６、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９３（１５）：７８４３−７８４８１、ＷＯ９２／０２５５１、ＷＯ２００４／０５１２６８及び国際特許出願番号ＷＯ２００４／１０６３７７に記載されている方法によって特異的抗体を作製するために選択される単一のリンパ球から生成された免疫グロブリン可変領域ｃＤＮＡをクローニングし、発現することによって単一のリンパ球抗体方法を使用して生成され得る。
抗体についてのスクリーニングは、ヒトＦｃＲｎに対する結合を測定するためのアッセイ及び／又は受容体に対するＩｇＧ結合を遮断する能力を測定するためのアッセイを使用して実施され得る。結合アッセイの例は、特に、プレート上に固定化される、ヒトＦｃＲｎ及びヒトＦｃの融合タンパク質を使用し、融合タンパク質に結合した抗ＦｃＲｎ抗体を検出するために二次抗体を利用する、ＥＬＩＳＡである。好適なアンタゴニスト及び遮断アッセイの例は本明細書の例に記載されている。
ヒト化抗体（ＣＤＲ移植抗体を含む）は、非ヒト種由来の１つ又は複数の相補性決定領域（ＣＤＲ）及びヒト免疫グロブリン分子由来のフレームワーク領域を有する抗体分子である（例えば、ＵＳ５，５８５，０８９、ＷＯ９１／０９９６７を参照のこと）。全ＣＤＲではなくＣＤＲの特異性決定残基を転移させることだけ必要であり得ることは理解されるであろう（例えば、Ｋａｓｈｍｉｒｉら、２００５、Ｍｅｔｈｏｄｓ、３６、２５−３４を参照のこと）。ヒト化抗体は、任意選択に、ＣＤＲが誘導される非ヒト種由来の１つ又は複数のフレームワーク残基を更に含んでもよい。後者はしばしばドナー残基と称される。
本明細書に利用される特異性とは、特異的である抗原のみを認識する抗体又は非特異的である抗原に対する結合と比較して特異的である抗原に対して顕著に高い結合親和性、例えば少なくとも５、６、７、８、９、１０倍高い結合親和性を有する抗体を指すことを意図する。結合親和性は本明細書以下に記載されているＢＩＡｃｏｒｅなどの技術によって測定され得る。一例において、本発明の抗体はβ２ミクログロブリン（β２Ｍ）に結合しない。一例において、本発明の抗体はカニクイザルＦｃＲｎに結合する。一例において、本発明の抗体はラット又はマウスＦｃＲｎに結合しない。
本開示に係る特定の抗体のアミノ酸配列及びポリヌクレオチド配列は図面に提供される。
一実施形態において、本開示に係る抗体又はフラグメントはヒト化されている。
本明細書で使用される場合、「ヒト化抗体分子」という用語は、重鎖及び／又は軽鎖が、アクセプター抗体（例えばヒト抗体）の重鎖及び／又は軽鎖可変領域フレームワーク内にグラフトされたドナー抗体（例えばマウスモノクローナル抗体などの非ヒト抗体）由来の１つ又は複数のＣＤＲ（所望の場合、１つ又は複数の修飾ＣＤＲを含む）を含有する、抗体分子を指す。概説のために、Ｖａｕｇｈａｎら、Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、１６、５３５−５３９、１９９８を参照のこと。一実施形態において、全ＣＤＲが転移されるのではなく、本明細書上記のＣＤＲのいずれか１つに由来する特異性決定残基の１つ又は複数のみがヒト抗体フレームワークに転移される（例えば、Ｋａｓｈｍｉｒｉら、２００５、Ｍｅｔｈｏｄｓ、３６、２５−３４を参照のこと）。一実施形態において、本明細書上記のＣＤＲの１つ又は複数に由来する特異性決定残基のみがヒト抗体フレームワークに転移される。別の実施形態において、本明細書上記のＣＤＲの各々に由来する特異性決定残基のみがヒト抗体フレームワークに転移される。
ＣＤＲ又は特異性決定残基がグラフトされる場合、ＣＤＲが誘導されるドナー抗体のクラス／種類に関して、マウス、霊長類及びヒトフレームワーク領域を含む、任意の適切なアクセプター可変領域フレームワーク配列が使用されてもよい。
好適には、本発明に係るヒト化抗体は、ヒトアクセプターフレームワーク領域及び本明細書において具体的に提供されるＣＤＲの１つ又は複数を含む可変ドメインを有する。それ故、一実施形態において、可変ドメインがヒトアクセプターフレームワーク領域及び非ヒトドナーＣＤＲを含む、ヒトＦｃＲｎに結合するヒト化抗体を遮断することが提供される。
本発明に使用され得るヒトフレームワークの例は、ＫＯＬ、ＮＥＷＭ、ＲＥＩ、ＥＵ、ＴＵＲ、ＴＥＩ、ＬＡＹ及びＰＯＭ（Ｋａｂａｔら、上記）である。例えば、ＫＯＬ及びＮＥＷＭが重鎖のために使用されてもよく、ＲＥＩが軽鎖のために使用されてもよく、ＥＵ、ＬＡＹ及びＰＯＭが重鎖及び軽鎖の両方のために使用されてもよい。或いは、ヒト生殖細胞配列が使用されてもよく、それらは、ｈｔｔｐ：／／ｖｂａｓｅ．ｍｒｃ−ｃｐｅ．ｃａｍ．ａｃ．ｕｋ／にて利用可能である。
本発明のヒト化抗体において、アクセプター重鎖及び軽鎖は、同じ抗体に由来することを必ずしも必要とせず、所望の場合、異なる鎖に由来するフレームワーク領域を有する複合鎖を含んでもよい。
本発明のヒト化抗体の重鎖のための１つのこのような適切なフレームワーク領域は、ＪＨ４（配列番号５６）と一緒にヒトサブグループＶＨ３配列１−３ ３−０７に由来する。
従って、一例において、ＣＤＲ−Ｈ１について配列番号１に示される配列、ＣＤＲ−Ｈ２について配列番号２に示される配列及びＣＤＲＨ３について配列番号３に示される配列を含み、重鎖フレームワーク領域がＪＨ４と一緒にヒトサブグループＶＨ３配列１−３ ３−０７に由来するヒト化抗体が提供される。
ヒトＪＨ４の配列は以下の通りである：（ＹＦＤＹ）ＷＧＱＧＴＬＶＴＶＳ（配列番号７０）。ＹＦＤＹモチーフはＣＤＲ−Ｈ３の一部であり、フレームワーク４の一部ではない（Ｒａｖｅｔｃｈ，ＪＶら、１９８１、Ｃｅｌｌ、２７、５８３−５９１）。
一例において、抗体の重鎖可変ドメインは配列番号２９に示される配列を含む。
本発明のヒト化抗体の軽鎖についての適切なフレームワーク領域は、ＪＫ２（配列番号５４）と一緒にヒト生殖細胞サブグループＶＫ１配列２−１−（１）Ａ３０に由来する。
従って、一例において、ＣＤＲ−Ｌ１について配列番号４に示される配列、ＣＤＲ−Ｌ２について配列番号５に示される配列及びＣＤＲＬ３について配列番号６に示される配列を含み、軽鎖フレームワーク領域が、ＪＫ２と一緒にヒトサブグループＶＫ１配列２−１−（１）Ａ３０に由来するヒト化抗体が提供される。
ＪＫ２配列は以下の通りである：（ＹＴ）ＦＧＱＧＴＫＬＥＩＫ（配列番号７１）。ＹＴモチーフはＣＤＲ−Ｌ３の一部であり、フレームワーク４の一部ではない（Ｈｉｅｔｅｒ，ＰＡ．ら、１９８２、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．、２５７、１５１６−１５２２）。
一例において、抗体の軽鎖可変ドメインは配列番号１５に示される配列を含む。
本発明のヒト化抗体において、フレームワーク領域はアクセプター抗体の配列と正確に同じ配列を有することを必要としない。例えば、異常な残基は、アクセプター鎖のクラス又は種類について、より頻繁に存在する残基に変更されてもよい。或いは、アクセプターフレームワーク領域内の選択される残基は、それらがドナー抗体内の同じ位置に見られる残基に対応するように変更されてもよい（Ｒｅｉｃｈｍａｎｎら、１９９８、Ｎａｔｕｒｅ、３３２、３２３−３２４を参照のこと）。このような変更はドナー抗体の親和性を戻すための最低限の必要性にとどめられるべきである。変更する必要があり得るアクセプターフレームワーク領域内の残基を選択するためのプロトコルはＷＯ９１／０９９６７に記載されている。
それ故、一実施形態において、フレームワーク内の１、２、３、４又は５個の残基は代替のアミノ酸残基と置き換えられる。
従って、一例において、重鎖の可変ドメインの少なくとも３、２４、７６、９３及び９４位の各々における残基（Ｋａｂａｔ番号付け）がドナー残基である、ヒト化抗体が提供される。例えば、配列番号２９に示される配列を参照のこと。
一実施形態において、重鎖可変ドメインの残基３は代替のアミノ酸、例えばグルタミンと置き換えられる。
一実施形態において、重鎖可変ドメインの残基２４は代替のアミノ酸、例えばアラニンと置き換えられる。
一実施形態において、重鎖可変ドメインの残基７６は代替のアミノ酸、例えばアスパラギンと置き換えられる。
一実施形態において、重鎖の残基９３は代替のアミノ酸、例えばアラニンと置き換えられる。
一実施形態において、重鎖の残基９４は代替のアミノ酸、例えばアルギニンと置き換えられる。
一実施形態において、本開示に係るヒト化重鎖可変領域において、残基３はグルタミンであり、残基２４はアラニンであり、残基７６はアスパラギンであり、残基９３はアラニンであり、残基９４はアルギニンである。
従って、一例において、軽鎖の可変ドメインの少なくとも３６、３７及び５８位の各々における残基（Ｋａｂａｔ番号付け）がドナー残基である、ヒト化抗体が提供される。例えば配列番号１５に示される配列を参照のこと。
一実施形態において、軽鎖可変ドメインの残基３６は、代替のアミノ酸、例えばチロシンと置き換えられる。
一実施形態において、軽鎖可変ドメインの残基３７は、代替のアミノ酸、例えばグルタミンと置き換えられる。
一実施形態において、軽鎖可変ドメインの残基５８は、代替のアミノ酸、例えばバリンと置き換えられる。
一実施形態において、本開示に係るヒト化重鎖可変領域において、残基３６はチロシンであり、残基３７はグルタミンであり、残基５８はバリンである。
一実施形態において、本開示は、本明細書に開示されている配列と８０％類似又は同一である、例えば、関連配列、例えば、可変ドメイン配列、ＣＤＲ配列又はＣＤＲを除く可変ドメイン配列の一部又は全てにわたって８５％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％又は９９％類似又は同一である抗体配列を提供する。一実施形態において、関連配列は配列番号１５である。一実施形態において、関連配列は配列番号２９である。
一実施形態において、本発明は、重鎖の可変ドメインが、配列番号２９に示される配列と少なくとも８０％、８５％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％又は９９％の類似性又は同一性を有する配列を含む、重鎖を含むヒトＦｃＲｎに結合する抗体分子を提供する。
一実施形態において、本発明は、軽鎖の可変ドメインが、配列番号１５に示される配列と少なくとも８０％、８５％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％又は９９％の同一性又は類似性を有する配列を含む、軽鎖を含むヒトＦｃＲｎに結合する抗体分子を提供する。
一実施形態において、本発明は、抗体が、配列番号２９に示される配列と少なくとも９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％又は９９％の類似又は同一である重鎖可変ドメインを有するが、抗体分子が、ＣＤＲ−Ｈ１について配列番号１に示される配列、ＣＤＲ−Ｈ２について配列番号２に示される配列及びＣＤＲ−Ｈ３について配列番号３に示される配列を有する、ヒトＦｃＲｎに結合する抗体分子を提供する。
一実施形態において、本発明は、抗体が、配列番号１５に示される配列と少なくとも９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％又は９９％の類似又は同一である軽鎖可変ドメインを有するが、抗体分子が、ＣＤＲ−Ｌ１について配列番号４に示される配列、ＣＤＲ−Ｌ２について配列番号５に示される配列及びＣＤＲ−Ｌ３について配列番号６に示される配列を有する、ヒトＦｃＲｎに結合する抗体分子を提供する。
一実施形態において、本発明は、抗体が、配列番号２９に示される配列と少なくとも９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％又は９９％の類似又は同一である重鎖可変ドメイン及び配列番号１５に示される配列と少なくとも９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％又は９９％類似又は同一である軽鎖可変ドメインを有するが、抗体分子は、ＣＤＲ−Ｈ１について配列番号１に示される配列、ＣＤＲ−Ｈ２について配列番号２に示される配列、ＣＤＲ−Ｈ３について配列番号３に示される配列、ＣＤＲ−Ｌ１について配列番号４に示される配列、ＣＤＲ−Ｌ２について配列番号５に示される配列及びＣＤＲ−Ｌ３について配列番号６に示される配列を有する、ヒトＦｃＲｎに結合する抗体分子を提供する。
本明細書で使用される「同一性」とは、並べられた配列における任意の特定の位置にて、アミノ酸残基が配列間で同一であることを示す。本明細書で使用される「類似性」とは、並べられた配列における任意の特定の位置にて、アミノ酸残基が配列間で類似の種類であることを示す。例えば、ロイシンはイソロイシン又はバリンと置換されてもよい。多くの場合、互いに置換され得る他のアミノ酸には、限定されないが、以下が含まれる：
− フェニルアラニン、チロシン及びトリプトファン（芳香族側鎖を有するアミノ酸）、
− リシン、アルギニン及びヒスチジン（塩基性側鎖を有するアミノ酸）、
− アスパラギン酸及びグルタミン酸（酸性側鎖を有するアミノ酸）、
− アスパラギン及びグルタミン（アミド側鎖を有するアミノ酸）、並びに
− システイン及びメチオニン（硫黄含有側鎖を有するアミノ酸）。同一性及び類似性の程度は容易に計算され得る（分子計算生物学（Ｃｏｍｐｕｔａｔｉｏｎａｌ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ）、Ｌｅｓｋ，Ａ．Ｍ．、ｅｄ．、Ｏｘｆｏｒｄ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｐｒｅｓｓ、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ、１９８８；バイオコンピューティング．インフォマティクス及びゲノムプロジェクト（Ｂｉｏｃｏｍｐｕｔｉｎｇ．Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｃｓ ａｎｄ Ｇｅｎｏｍｅ Ｐｒｏｊｅｃｔｓ）、Ｓｍｉｔｈ，Ｄ．Ｗ．、ｅｄ．、Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ、１９９３；配列データのコンピュータ解析（Ｃｏｍｐｕｔｅｒ Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ Ｓｅｑｕｅｎｃｅ Ｄａｔａ）、Ｐａｒｔ １、Ｇｒｉｆｆｉｎ，Ａ．Ｍ．、及びＧｒｉｆｆｉｎ，Ｈ．Ｇ．、ｅｄｓ．、Ｈｕｍａｎａ Ｐｒｅｓｓ、Ｎｅｗ Ｊｅｒｓｅｙ、１９９４；分子生物学における配列解析（Ｓｅｑｕｅｎｃｅ Ａｎａｌｙｓｉｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ）、ｖｏｎ Ｈｅｉｎｊｅ，Ｇ．、Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ、１９８７、配列解析プライマー（Ｓｅｑｕｅｎｃｅ Ａｎａｌｙｓｉｓ Ｐｒｉｍｅｒ）、Ｇｒｉｂｓｋｏｖ，Ｍ．及びＤｅｖｅｒｅｕｘ，Ｊ．、ｅｄｓ．、Ｍ Ｓｔｏｃｋｔｏｎ Ｐｒｅｓｓ、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ、１９９１、ＮＣＢＩから入手可能なＢＬＡＳＴ（商標）ソフトウェア（ｔｈｅ ＢＬＡＳＴＴＭ ｓｏｆｔｗａｒｅ ａｖａｉｌａｂｌｅ ｆｒｏｍ ＮＣＢＩ）（Ａｌｔｓｃｈｕｌ，Ｓ．Ｆ．ら、１９９０、Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２１５：４０３−４１０；Ｇｉｓｈ，Ｗ． ＆ Ｓｔａｔｅｓ、Ｄ．Ｊ．１９９３、Ｎａｔｕｒｅ Ｇｅｎｅｔ．３：２６６−２７２．Ｍａｄｄｅｎ，Ｔ．Ｌ．ら、１９９６、Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．２６６：１３１−１４１；Ａｌｔｓｃｈｕｌ，Ｓ．Ｆ．ら、１９９７、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２５：３３８９−３４０２；Ｚｈａｎｇ、Ｊ． ＆ Ｍａｄｄｅｎ、Ｔ．Ｌ． １９９７、Ｇｅｎｏｍｅ Ｒｅｓ．７：６４９−６５６）。
本発明の抗体分子は、完全長重鎖及び軽鎖又はそのフラグメントを有する完全抗体分子を含んでもよく、限定されないが、Ｆａｂ、修飾Ｆａｂ、Ｆａｂ’、修飾Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｖ、単一ドメイン抗体（例えばＶＨ又はＶＬ又はＶＨＨ）、ｓｃＦｖ、二、三又は四価抗体、Ｂｉｓ−ｓｃＦｖ、ダイアボディ、トリアボディ、テトラボディ及び上記のいずれかのエピトープ結合フラグメントであってもよい（例えば、Ｈｏｌｌｉｇｅｒ及びＨｕｄｓｏｎ、２００５、Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈ．２３（９）：１１２６−１１３６；Ａｄａｉｒ及びＬａｗｓｏｎ、２００５、Ｄｒｕｇ Ｄｅｓｉｇｎ Ｒｅｖｉｅｗｓ−Ｏｎｌｉｎｅ ２（３）、２０９−２１７を参照のこと）。これらの抗体フラグメントを創出し、製造する方法は、当該技術分野において周知である（例えば、Ｖｅｒｍａら、１９９８、Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｍｅｔｈｏｄｓ、２１６、１６５−１８１を参照のこと）。本発明に使用するための他の抗体フラグメントは、国際特許出願ＷＯ２００５／００３１６９、ＷＯ２００５／００３１７０及びＷＯ２００５／００３１７１に記載されているＦａｂ及びＦａｂ’フラグメントを含む。多価抗体は、複数の特異性、例えば二重特異性を含んでもよいか、又は単一特異性であってもよい（例えば、ＷＯ９２／２２８５３、ＷＯ０５／１１３６０５、ＷＯ２００９／０４０５６２及びＷＯ２０１０／０３５０１２を参照のこと）。
一実施形態において、本開示の抗体分子は、例えば軽鎖及び重鎖のそれぞれについて配列番号１５及び２９に示される可変領域を含む抗体Ｆａｂ’フラグメントである。一実施形態において、抗体分子は、配列番号２２に示される配列を含む軽鎖及び配列番号３６に示される配列を含む重鎖を有する。
一実施形態において、本開示の抗体分子は、例えば軽鎖及び重鎖のそれぞれについて配列番号１５及び２９に示される可変領域を含む完全長ＩｇＧ１抗体である。一実施形態において、抗体分子は、配列番号２２に示される配列を含む軽鎖及び配列番号７２に示される配列を含む重鎖を有する。
一実施形態において、本開示の抗体分子は、例えば軽鎖及び重鎖のそれぞれについて配列番号１５及び２９に示される可変領域を含む完全長ＩｇＧ４フォーマットである。一実施形態において、抗体分子は、配列番号２２に示される配列を含む軽鎖及び配列番号８７に示される配列を含む重鎖を有する。
一実施形態において、本開示の抗体分子は、例えば軽鎖及び重鎖のそれぞれについて配列番号１５及び２９に示される可変領域を含む完全長ＩｇＧ４Ｐフォーマットである。一実施形態において、抗体分子は、配列番号２２に示される配列を含む軽鎖及び配列番号４３に示される配列を含む重鎖を有する。
本明細書で利用されるＩｇＧ４Ｐは、アミノ酸２４１がプロリンで置き換えられる野生型ＩｇＧ４アイソタイプの変異であり、例えば、Ａｎｇａｌら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、１９９３、３０（１）、１０５−１０８に記載されているように２４１位におけるセリンがプロリンに変化している場所を参照のこと。
一実施形態において、本開示に係る抗体は、例えば、ＷＯ２００９／０４０５６２、ＷＯ２０１００３５０１２、ＷＯ２０１１／０３０１０７、ＷＯ２０１１／０６１４９２及びＷＯ２０１１／０８６０９１（これらの全ては本明細書に参照により組み込まれる）に記載されているように、免疫グロブリン部分、例えばＦａｂ又はＦａｂ’フラグメントを含むＦｃＲｎ結合抗体融合タンパク質、及びそれらに直接又は間接的に連結された１つ又は２つの単一ドメイン抗体（ｄＡｂ）として提供される。
一実施形態において、融合タンパク質は、例えばジスルフィド結合によって任意選択に連結された可変重（ＶＨ）及び可変軽（ＶＬ）対として２つのドメイン抗体を含む。
一実施形態において、融合タンパク質のＦａｂ又はＦａｂ’エレメントは、単一ドメイン抗体（単数又は複数）と同じ又は類似の特異性を有する。一実施形態において、Ｆａｂ又はＦａｂ’は、単一ドメイン抗体（単数又は複数）と異なる特異性を有する。すなわち、融合タンパク質は多価である。一実施形態において、本発明に係る多価融合タンパク質はアルブミン結合部位を有し、例えばその中のＶＨ／ＶＬ対はアルブミン結合部位を提供する。１つのこのような実施形態において、重鎖は配列番号５０に示される配列を含み、軽鎖は配列番号４６又は配列番号７８に示される配列を含む。このＦａｂ−ｄｓＦｖフォーマットは本明細書において図２５に示される。
一実施形態において、本開示に係るＦａｂ又はＦａｂ’はＰＥＧ分子又はヒト血清アルブミンにコンジュゲートされている。
ＣＡ１７０＿０１５１９ｇ５７及び１５１９及び１５１９．ｇ５７は、本明細書において互換的に利用され、多くの異なるフォーマットで使用され得る抗体可変領域の特異的対を指すために使用される。これらの可変領域は、配列番号２９に示される重鎖配列及び配列番号１５に示される軽鎖配列である（図１）。
本発明の抗体分子の定常領域ドメインは、存在する場合、抗体分子の提案される機能、特に必要とされ得るエフェクター機能を考慮して選択されてもよい。例えば、定常領域ドメインは、ヒトＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＧ又はＩｇＭドメインであってもよい。特に、抗体分子が治療的使用を意図し、抗体エフェクター機能が必要とされる場合、特にＩｇＧ１及びＩｇＧ３アイソタイプのヒトＩｇＧ定常領域ドメインが使用されてもよい。或いは、抗体分子が治療目的を意図し、抗体エフェクター機能が必要とされない場合、ＩｇＧ２及びＩｇＧ４アイソタイプが使用されてもよい。これらの定常領域ドメインの配列バリアントも使用されてもよいことが理解されるであろう。例えば、Ａｎｇａｌら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、１９９３、３０（１）、１０５−１０８に記載されているように、２４１位におけるセリンがプロリンに変化されているＩｇＧ４分子が使用されてもよい。また、抗体は様々な翻訳後修飾を受けてもよいことは当業者により理解されるであろう。これらの修飾の種類及び程度は、多くの場合、抗体を発現するために使用される宿主細胞系及び培養条件に依存する。このような修飾は、グリコシル化の変化、メチオニン酸化、ジケトピペラジン形成、アスパラギン酸異性化及びアスパラギン脱アミドを含んでもよい。頻繁な修飾は、（Ｈａｒｒｉｓ、ＲＪ．Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ ７０５：１２９−１３４、１９９５に記載されているように）カルボキシペプチダーゼの作用に起因するカルボキシ末端塩基性残基（リシン又はアルギニンなど）の損失である。従って、抗体重鎖のＣ末端リシンは存在しなくてもよい。
一実施形態において、抗体重鎖はＣＨ１ドメインを含み、抗体軽鎖はＣＬドメイン、カッパ又はラムダのいずれかを含む。
一実施形態において、軽鎖は配列番号２２に示される配列を有し、重鎖は配列番号４３に示される配列を有する。
一実施形態において、軽鎖は配列番号２２に示される配列を有し、重鎖は配列番号７２に示される配列を有する。
一実施形態において、抗体分子由来のＣ末端アミノ酸は翻訳後修飾の間に切断される。
一実施形態において、抗体分子由来のＮ末端アミノ酸は翻訳後修飾の間に切断される。
本発明によって提供される抗体、特に重鎖配列ｇＨ２０（配列番号２９）及び／又は軽鎖配列ｇＬ２０（配列番号１５）を含む抗体が結合しているヒトＦｃＲｎの特異的領域又はエピトープも本発明によって提供される。
ヒトＦｃＲｎポリペプチドのこの特定の領域又はエピトープは、本発明によって提供される抗体のいずれか１つと組み合わせて、当該分野において公知の任意の適切なエピトープマッピング法によって識別され得る。このような方法の例は、抗体によって認識されるエピトープの配列を含有する抗体に特異的に結合できる最小のフラグメントを有する本発明の抗体への結合に関して、ＦｃＲｎに由来する様々な長さのペプチドをスクリーニングすることを含む。ＦｃＲｎペプチドは、合成的に又はＦｃＲｎポリペプチドのタンパク質分解によって作製され得る。抗体に結合するペプチドは、例えば、質量分光分析によって識別され得る。別の例において、ＮＭＲ分光法又はＸ線結晶学が、本発明の抗体が結合しているエピトープを識別するために使用されてもよい。一旦識別されると、本発明の抗体に結合するエピトープフラグメントは、必要とされる場合、同じエピトープに結合する更なる抗体を得るための免疫原として使用されてもよい。
一実施形態において、本開示の抗体は、以下に示されているようなヒトＦｃＲｎアルフ
ァ鎖細胞外配列に結合する：
下線の残基は、ヒトＦｃＲｎとヒトＩｇＧのＦｃ領域との相互作用に重要であることが知られているものであり、太字で強調されているこれらの残基は、ＦｃＲｎと、重鎖配列ｇＨ２０（配列番号２９）及び軽鎖配列ｇＬ２０（配列番号１５）を含む本開示の１５１９抗体との相互作用に関与するものである。
一例において、本発明は、配列番号１０５の残基Ｖ１０５、Ｐ１０６、Ｔ１０７、Ａ１０８及びＫ１０９からなる群から選択される少なくとも１つのアミノ酸並びに配列番号１０５のＰ１００、Ｅ１１５、Ｅ１１６、Ｆ１１７、Ｍ１１８、Ｎ１１９、Ｆ１２０、Ｄ１２１、Ｌ１２２、Ｋ１２３、Ｑ１２４、Ｇ１２８、Ｇ１２９、Ｄ１３０、Ｗ１３１、Ｐ１３２及びＥ１３３からなる群から選択される少なくとも１つの残基、例えば、少なくとも２、３、４、５、６、７、８、９又は１０個の残基を含むヒトＦｃＲｎのエピトープに結合する抗ＦｃＲｎ抗体分子を提供する。
一例において、抗体分子のエピトープは、β２Ｍとの複合体においてＦｃＲｎアルファ鎖細胞外配列（配列番号１０５）を使用してＸ線結晶学によって決定される。
一例において、本発明は、配列番号１０５の残基Ｖ１０５、Ｐ１０６、Ｔ１０７、Ａ１０８及びＫ１０９からなる群から選択される少なくとも１つのアミノ酸並びに配列番号１０５のＥ１１５、Ｅ１１６、Ｆ１１７、Ｍ１１８、Ｎ１１９、Ｆ１２０、Ｄ１２１、Ｌ１２２、Ｋ１２３及びＱ１２４からなる群から選択される少なくとも１つの残基、例えば、少なくとも２、３、４、５、６、７、８、９又は１０個の残基を含む、ヒトＦｃＲｎのエピトープに結合する抗ＦｃＲｎ抗体分子を提供する。
一例において、本発明は、配列番号１０５の残基Ｖ１０５、Ｐ１０６、Ｔ１０７、Ａ１０８及びＫ１０９からなる群から選択される少なくとも２、３、４又は５個のアミノ酸並びに配列番号１０５のＥ１１５、Ｅ１１６、Ｆ１１７、Ｍ１１８、Ｎ１１９、Ｆ１２０、Ｄ１２１、Ｌ１２２、Ｋ１２３及びＱ１２４からなる群から選択される少なくとも１つの残基を含む、ヒトＦｃＲｎのエピトープに結合する抗ＦｃＲｎ抗体分子を提供する。
一例において、本発明は、配列番号１０５の残基Ｖ１０５、Ｐ１０６、Ｔ１０７、Ａ１０８及びＫ１０９からなる群から選択される少なくとも１つのアミノ酸並びに配列番号１０５のＰ１００、Ｅ１１５、Ｅ１１６、Ｆ１１７、Ｍ１１８、Ｎ１１９、Ｆ１２０、Ｄ１２１、Ｌ１２２、Ｋ１２３、Ｑ１２４、Ｇ１２８、Ｇ１２９、Ｄ１３０、Ｗ１３１、Ｐ１３２及びＥ１３３からなる群から選択される少なくとも１つの残基を含む、ヒトＦｃＲｎのエピトープに結合する抗ＦｃＲｎ抗体分子を提供する。
一例において、本発明は、配列番号１０５の残基Ｖ１０５、Ｐ１０６、Ｔ１０７、Ａ１０８及びＫ１０９からなる群から選択される少なくとも１つのアミノ酸並びに配列番号１０５のＰ１００、Ｍ１１８、Ｎ１１９、Ｆ１２０、Ｄ１２１、Ｌ１２２、Ｋ１２３、Ｑ１２４及びＧ１２８からなる群から選択される少なくとも１つの残基を含む、ヒトＦｃＲｎのエピトープに結合する抗ＦｃＲｎ抗体分子を提供する。
一例において、本発明は、配列番号１０５の残基Ｖ１０５、Ｐ１０６、Ｔ１０７、Ａ１０８及びＫ１０９並びに配列番号１０５のＰ１００、Ｍ１１８、Ｎ１１９、Ｆ１２０、Ｄ１２１、Ｌ１２２、Ｋ１２３、Ｑ１２４及びＧ１２８からなる群から選択される少なくとも１つの残基を含む、ヒトＦｃＲｎのエピトープに結合する抗ＦｃＲｎ抗体分子を提供する。
一例において、本発明は、配列番号１０５の残基Ｖ１０５、Ｐ１０６、Ｔ１０７、Ａ１０８及びＫ１０９並びに配列番号１０５のＰ１００、Ｅ１１５、Ｅ１１６、Ｆ１１７、Ｍ１１８、Ｎ１１９、Ｆ１２０、Ｄ１２１、Ｌ１２２、Ｋ１２３、Ｑ１２４、Ｇ１２８、Ｇ１２９、Ｄ１３０、Ｗ１３１、Ｐ１３２及びＥ１３３からなる群から選択される少なくとも１つの残基を含む、ヒトＦｃＲｎのエピトープに結合する抗ＦｃＲｎ抗体分子を提供する。
一例において、本発明は、配列番号１０５の残基Ｐ１００、Ｖ１０５、Ｐ１０６、Ｔ１０７、Ａ１０８及びＫ１０９並びに配列番号１０５のＥ１１５、Ｅ１１６、Ｆ１１７、Ｍ１１８、Ｎ１１９、Ｆ１２０、Ｄ１２１、Ｌ１２２、Ｋ１２３、Ｑ１２４、Ｇ１２８、Ｇ１２９、Ｄ１３０、Ｗ１３１、Ｐ１３２及びＥ１３３からなる群から選択される少なくとも１つの残基を含む、ヒトＦｃＲｎのエピトープに結合する抗ＦｃＲｎ抗体分子を提供する。
一例において、「少なくとも１つの残基」は、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５又は１６個の残基であってもよい。
一例において、本発明は、配列番号１０５の残基１００、１０５〜１０９、１１５〜１２４及び１２９〜１３３を含む又はそれらからなる、ヒトＦｃＲｎのエピトープに結合する抗ＦｃＲｎ抗体分子を提供する。
本発明に係る抗体分子、特に、配列番号２９に示される重鎖配列及び配列番号１５に示される軽鎖配列を含む抗体分子の結合を交差遮断する抗体は、ＦｃＲｎ活性を遮断するのに同様に有用であり得る。従って、本発明はまた、ヒトＦｃＲｎに対する本明細書上記の抗体分子のいずれか１つの結合を交差遮断する、及び／又はこれらの抗体のいずれか１つによってヒトＦｃＲｎへの結合を交差遮断される、抗ＦｃＲｎ抗体分子を提供する。一実施形態において、このような抗体は本明細書上記の抗体と同じエピトープに結合する。別の実施形態において、交差遮断中和抗体は、本明細書上記の抗体が結合しているエピトープと隣接及び／又は重複しているエピトープに結合する。
交差遮断抗体は、例えば、ヒトＦｃＲｎへの交差遮断抗体の結合が本発明の抗体の結合を防ぐ、又はその逆である、競合的ＥＬＩＳＡ又はＢＩＡｃｏｒｅアッセイを使用することによって、当該分野における任意の好適な方法を使用して識別され得る。このような交差遮断アッセイは、単離された天然若しくは組換えＦｃＲｎ又は適切な融合タンパク質／ポリペプチドを使用してもよい。一例において、結合及び交差遮断は組換えヒトＦｃＲｎ細胞外ドメイン（配列番号１０５）を使用して測定される。一例において、組換えヒトＦｃＲｎアルファ鎖細胞外ドメインは、β２ミクログロブリン（β２Ｍ）（配列番号９５）との複合体において使用される。
一実施形態において、ＩｇＧに対するＦｃＲｎ結合を遮断し、重鎖が配列番号２９に示される配列を含み、軽鎖が配列番号１５に示される配列を含む、ヒトＦｃＲｎへの抗体の結合を交差遮断する抗ＦｃＲｎ抗体分子が提供される。一実施形態において、本発明によって提供される交差遮断抗体は、配列番号２９に示される重鎖配列及び配列番号１５に示される軽鎖配列を含む抗体の結合を、８０％超、例えば８５％超、例えば９０％超、特に９５％超、阻害する。
或いは又は更に、本発明のこの態様に係る抗ＦｃＲｎ抗体は、配列番号２９に示される重鎖配列及び配列番号１５に示される軽鎖配列を含む抗体によってヒトＦｃＲｎへの結合を交差遮断され得る。従って、ＩｇＧへのＦｃＲｎ結合を遮断し、配列番号２９に示される重鎖配列及び配列番号１５に示される軽鎖配列を含む抗体によってヒトＦｃＲｎへの結合を交差遮断される抗ＦｃＲｎ抗体分子も提供される。一実施形態において、本発明のこの態様によって提供される抗ＦｃＲｎ抗体は、配列番号２９に示される重鎖配列及び配列番号１５に示される軽鎖配列を含む抗体によってヒトＦｃＲｎへ結合することを、８０％超、例えば８５％超、例えば９０％超、特に９５％超、阻害する。
一実施形態において、本発明によって提供される交差遮断抗体は完全にヒトである。一実施形態において、本発明によって提供される交差遮断抗体はヒト化されている。一実施形態において、本発明によって提供される交差遮断抗体は、１００ｐＭ以下のヒトＦｃＲｎに対する親和性を有する。一実施形態において、本発明によって提供される交差遮断抗体は、５０ｐＭ以下のヒトＦｃＲｎに対する親和性を有する。親和性は本明細書以下に記載されている方法を使用して測定され得る。
抗体又はフラグメントなどの生体分子は酸性及び／又は塩基性官能基を含有するので、分子を正味の正又は負電荷にする。全体の「観察される」電荷の量は、実体の絶対的アミノ酸配列、３Ｄ構造における荷電基の局所環境及び分子の環境条件に依存する。等電点（ＰＩ）は、特定の分子又はその溶媒接触可能表面が正味の電荷を保有しないｐＨである。一例において、本発明のＦｃＲｎ抗体及びフラグメントは適切な等電点を有するように操作されてもよい。これにより、より強力な特性、特に好適な溶解度及び／又は安定化プロファイル及び／又は改良された精製特性を有する抗体及び／又はフラグメントが導かれ得る。
それ故、一態様において、本発明は、最初に識別された抗体の等電点と異なる等電点を有するように操作されるヒト化ＦｃＲｎ抗体を提供する。抗体は、例えば、酸性アミノ酸残基を１つ又は複数の塩基性アミノ酸残基と置換することなどのアミノ酸残基を置換することによって操作されてもよい。或いは、塩基性アミノ酸残基が導入されてもよいか、又は酸性アミノ酸残基が除去されてもよい。或いは、分子が許容し難い高ｐＩ値を有する場合、酸性残基が、必要な場合、ｐＩを下げるために導入されてもよい。ｐＩを操作する場合、抗体又はフラグメントの所望の活性を保持することに注意が払われなければならないことが重要である。それ故、一実施形態において、操作された抗体又はフラグメントは、「修飾されていない」抗体又はフラグメントと同じ又は実質的に同じ活性を有する。
＊＊ＥｘＰＡＳＹ ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｅｘｐａｓｙ．ｃｈ／ｔｏｏｌｓ／ｐｉ＿ｔｏｏｌ．ｈｔｍｌ及びｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｉｕｔ−ａｒｌｅｓ．ｕｐ．ｕｎｉｖ−ｍｒｓ．ｆｒ／ｗ３ｂｂ／ｄ＿ａｂｉｍ／ｃｏｍｐｏ−ｐ．ｈｔｍｌなどのプログラムが、抗体又はフラグメントの等電点を予測するために使用されてもよい。
本発明の抗体分子は、好適には、特にナノモル範囲で高い結合親和性を有する。親和性は、単離された天然又は組換えＦｃＲｎ又は好適な融合タンパク質／ポリペプチドを使用して、本明細書の例に記載されているようにＢＩＡｃｏｒｅを含む、当該分野において公知の任意の適切な方法を使用して測定され得る。一例において、親和性は、本明細書の例に記載されている組換えヒトＦｃＲｎ細胞外ドメイン（配列番号１０５）を使用して測定される。一例において、親和性は、β２ミクログロブリン（β２Ｍ）（配列番号９５）と会合する組換えヒトＦｃＲｎアルファ鎖細胞外ドメイン（配列番号１０５）を使用して測定される。好適には、本発明の抗体分子は、単離されたヒトＦｃＲｎに対して約１ｎＭ又はそれ未満の結合親和性を有する。一実施形態において、本発明の抗体分子は、約５００ｐＭ以下の結合親和性（すなわち、より高い親和性）を有する。一実施形態において、本発明の抗体分子は、約２５０ｐＭ以下の結合親和性を有する。一実施形態において、本発明の抗体分子は、約２００ｐＭ以下の結合親和性を有する。一実施形態において、本発明は、約１００ｐＭ以下の結合親和性を有する抗ＦｃＲｎ抗体を提供する。一実施形態において、本発明は、約１００ｐＭ以下の結合親和性を有するヒト化抗ＦｃＲｎ抗体を提供する。一実施形態において、本発明は、５０ｐＭ以下の結合親和性を有する抗ＦｃＲｎ抗体を提供する。
重要なことに、本発明の抗体は、同等の結合親和性でｐＨ６及びｐＨ７．４の両方にてヒトＦｃＲｎに結合できる。従って、有益には、抗体は、エンドソームを有さなくても、ＦｃＲｎに結合し続け、それにより、ＩｇＧに対するＦｃＲｎ結合の遮断を最大化する（機構の例示については図１０を参照のこと）。
一実施形態において、本発明は、ｐＨ６及びｐＨ７．４にて測定した場合、１００ｐＭ以下の結合親和性を有する抗ＦｃＲｎ抗体を提供する。
本発明の抗体又は結合フラグメントの親和性並びに結合剤（抗体など）が結合を阻害する程度は、従来技術、例えば、Ｓｃａｔｃｈａｒｄら（Ａｎｎ．ＫＹ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．５１：６６０−６７２（１９４９））により記載されているものを使用して当業者によって、又はＢＩＡｃｏｒｅなどのシステムを使用して表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）によって決定され得る。表面プラズモン共鳴に関して、標的分子は固相上に固定化され、フローセルと共に流している移動相においてリガンドに曝露される。固定化された標的に結合しているリガンドが存在する場合、局所屈折率が変化し、反射光の強さの変化を検出することによってリアルタイムでモニターされ得る、ＳＰＲ角の変化が生じる。ＳＰＲ信号の変化の速度は、結合反応の会合及び解離段階について見かけの速度定数を得るように分析され得る。これらの値の比は見かけの平衡定数（親和性）を与える（例えば、Ｗｏｌｆｆら、Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．５３：２５６０−６５（１９９３）を参照のこと）。
本発明において、試験抗体分子の親和性は典型的に、以下のようにＳＰＲを使用して決定される。試験抗体分子は固相上で捕捉され、β２Ｍとの非共有結合複合体におけるヒトＦｃＲｎアルファ鎖細胞外ドメインは移動相において捕捉抗体の上を流れ、ヒトＦｃＲｎに対する試験抗体分子の親和性が決定される。試験抗体分子は、任意の適切な方法を使用して、例えば、抗Ｆｃ又は抗Ｆａｂ’特異的捕捉剤を使用して固相チップ表面上で捕捉され得る。一例において、親和性がｐＨ６にて決定される。一例において、親和性がｐＨ７．４にて決定される。
本発明によって提供される抗体の親和性は、当該分野において公知の任意の好適な方法を使用して変化されてもよいことは理解されるであろう。従って、本発明はまた、ＦｃＲｎに対して改良された親和性を有する、本発明の抗体分子のバリアントに関する。このようなバリアントは、ＣＤＲを変異させること（Ｙａｎｇら、Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．、２５４、３９２−４０３、１９９５）、鎖シャッフリング（Ｍａｒｋｓら、Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、１０、７７９−７８３、１９９２）、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）の変異誘発系の使用（Ｌｏｗら、Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．、２５０、３５９−３６８、１９９６）、ＤＮＡシャッフリング（Ｐａｔｔｅｎら、Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．、８、７２４−７３３、１９９７）、ファージディスプレイ（Ｔｈｏｍｐｓｏｎら、Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．、２５６、７７−８８、１９９６）及びセクシャルＰＣＲ（Ｃｒａｍｅｒｉら、Ｎａｔｕｒｅ、３９１、２８８−２９１、１９９８）を含む多くの親和性成熟プロトコルによって得られ得る。Ｖａｕｇｈａｎら（上記）は親和性成熟のこれらの方法を説明している。
一実施形態において、本発明の抗体分子はヒトＦｃＲｎ活性を遮断する。ＦｃＲｎを遮断する抗体の能力を決定するのに好適なアッセイは本明細書の例に記載されている。抗体が循環ＩｇＧ分子とのＦｃＲｎ相互作用を遮断するかどうかを決定するのに好適なアッセイは本明細書の例に記載されている。インビトロで再循環するＩｇＧを遮断する抗体分子の能力を決定するための好適なアッセイは本明細書以下に記載されている。
所望の場合、本発明に使用するための抗体は、１つ又は複数のエフェクター分子（単数又は複数）にコンジュゲートされてもよい。エフェクター分子は、単一のエフェクター分子又は２つ以上のこのような分子を含んでもよいので、本発明の抗体に結合できる単一部分を形成するように連結されることは理解されるであろう。エフェクター分子に連結された抗体フラグメントを得ることが望ましい場合、これは、抗体フラグメントが直接的に又はカップリング剤を介してのいずれかでエフェクター分子に連結される、標準的な化学又は組換えＤＮＡ手順によって調製され得る。このようなエフェクター分子を抗体にコンジュゲートするための技術は当該分野において周知である（Ｈｅｌｌｓｔｒｏｍら、Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ、第２版、Ｒｏｂｉｎｓｏｎら、ｅｄｓ、１９８７、ｐｐ．６２３−５３；Ｔｈｏｒｐｅら、１９８２、Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｒｅｖ．、６２：１１９−５８及びＤｕｂｏｗｃｈｉｋら、１９９９、Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ、８３、６７−１２３を参照のこと）。特定の化学的手順には、例えば、ＷＯ９３／０６２３１、ＷＯ９２／２２５８３、ＷＯ８９／００１９５、ＷＯ８９／０１４７６及びＷＯ０３／０３１５８１に記載されているものが含まれる。或いは、エフェクター分子がタンパク質又はポリペプチドである場合、例えばＷＯ８６／０１５３３及びＥＰ０３９２７４５に記載されている組換えＤＮＡ手順を使用して連結が達成され得る。
本明細書で使用されるエフェクター分子という用語は、例えば、抗腫瘍剤、薬物、毒素、生物学的に活性なタンパク質、例えば酵素、他の抗体又は抗体フラグメント、合成又は天然に存在するポリマー、核酸及びそのフラグメント、例えばＤＮＡ、ＲＮＡ及びそれらのフラグメント、放射性核種、特に放射性ヨウ化物（ｒａｄｉｏｉｏｄｉｄｅ）、放射性同位体、キレート金属、ナノ粒子及び蛍光化合物などのレポーター基又はＮＭＲ若しくはＥＳＲ分光法によって検出され得る化合物を含む。
エフェクター分子の例には、細胞毒素又は細胞に有害である（例えば死滅させる）任意の作用物質を含む細胞毒性薬が含まれ得る。例には、コンブレスタチン（ｃｏｍｂｒｅｓｔａｔｉｎ）、ドラスタチン、エポチロン、スタウロスポリン、マイタンシノイド、スポンギスタチン（ｓｐｏｎｇｉｓｔａｔｉｎ）、リゾキシン、ハリコンドリン、ロリジン、ヘミアステリン、タキソール、サイトカラシンＢ、グラミシジンＤ、臭化エチジウム、エメチン、マイトマイシン、エトポシド、テノポシド（ｔｅｎｏｐｏｓｉｄｅ）、ビンクリスチン、ビンブラスチン、コルヒチン、ドキソルビシン、ダウノルビシン、ジヒドロキシアントラシンジオン、ミトキサントロン、ミトラマイシン、アクチノマイシンＤ、１−デヒドロテストステロン、グルココルチコイド、プロカイン、テトラカイン、リドカイン、プロプラノロール、及びピューロマイシン並びにそれらの類似体又は相同体が含まれる。
エフェクター分子にはまた、限定されないが、代謝拮抗薬（例えばメトトレキサート、６−メルカプトプリン、６−チオグアニン、シタラビン、５−フルオロウラシルデカルバジン）、アルキル化剤（例えばメクロレタミン、チオテパクロラムブシル（ｔｈｉｏｅｐａ ｃｈｌｏｒａｍｂｕｃｉｌ）、メルファラン、カルムスチン（ＢＳＮＵ）及びロムスチン（ＣＣＮＵ）、シクロホスファミド（ｃｙｃｌｏｔｈｏｓｐｈａｍｉｄｅ）、ブスルファン、ジブロモマンニトール、ストレプトゾトシン、マイトマイシンＣ及びｃｉｓ−ジクロロジアミン白金（ＩＩ）（ＤＤＰ）シスプラチン）、アントラサイクリン（例えばダウノルビシン（以前はダウノマイシン）及びドキソルビシン）、抗生物質（例えばダクチノマイシン（以前はアクチノマイシン）、ブレオマイシン、ミトラマイシン、アントラマイシン（ＡＭＣ）、カリケアマイシン又はデュオカルマイシン）及び抗有糸分裂剤（例えばビンクリスチン及びビンブラスチン）が含まれる。
他のエフェクター分子は、１１１Ｉｎ及び９０Ｙ、Ｌｕ１７７、ビスマス２１３、カリフォルニウム２５２、イリジウム１９２及びタングステン１８８／レニウム１８８などのキレート放射性核種又は限定されないが、アルキルホスホコリン、トポイソメラーゼＩ阻害剤、タキソイド及びスラミンなどの薬物を含んでもよい。
他のエフェクター分子は、タンパク質、ペプチド及び酵素を含む。対象の酵素には、限定されないが、タンパク質分解酵素、加水分解酵素、リアーゼ、イソメラーゼ、トランスフェラーゼが含まれる。対象のタンパク質、ポリペプチド及びペプチドには、限定されないが、免疫グロブリン、アブリン、リシンＡ、緑膿菌外毒素又はジフテリア毒素などの毒素、インスリン、腫瘍壊死因子、α−インターフェロン、β−インターフェロン、神経成長因子、血小板由来成長因子又は組織プラスミノゲン活性化因子などのタンパク質、血栓剤又は血管新生阻害剤、例えばアンギオスタチン若しくはエンドスタチン又はリンホカイン、インターロイキン−１（ＩＬ−１）、インターロイキン−２（ＩＬ−２）、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）、顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）、神経成長因子（ＮＧＦ）若しくは他の成長因子などの生物反応修飾物質及び免疫グロブリンが含まれる。
他のエフェクター分子は、例えば診断に有用な検出可能な物質を含んでもよい。検出可能な物質の例には、種々の酵素、補欠分子族、蛍光材料、発光材料、生物発光材料、放射性核種、陽電子放出金属（陽電子放出断層撮影法における使用のため）、及び非放射性常磁性金属イオンが含まれる。概して、診断として使用するための抗体にコンジュゲートされ得る金属イオンについて米国特許第４，７４１，９００号を参照のこと。好適な酵素には、西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、ベータ−ガラクトシダーゼ又はアセチルコリンエステラーゼが含まれ、好適な補欠分子族には、ストレプトアビジン、アビジン及びビオチンが含まれ、好適な蛍光材料には、ウンベリフェロン、フルオレセイン、フルオレセインイソチオシアネート、ローダミン、ジクロロトリアジニルアミンフルオレセイン、塩化ダンシル及びフィコエリトリンが含まれ、好適な発光材料には、ルミノールが含まれ、好適な生物発光材料には、ルシフェラーゼ、ルシフェリン及びエクオリンが含まれ、好適な放射性核種には、１２５Ｉ、１３１Ｉ、１１１Ｉｎ及び９９Ｔｃが含まれる。
別の例において、エフェクター分子は、インビボで抗体の半減期を増加でき、及び／又は抗体の免疫原性を減少でき、及び／又は上皮バリアにわたって抗体の免疫系への送達を向上できる。この種類の好適なエフェクター分子の例には、ＷＯ０５／１１７９８４に記載されているものなどのポリマー、アルブミン、アルブミン結合タンパク質又はアルブミン結合化合物が含まれる。
一実施形態において、ＦｃＲｎから独立しているエフェクター分子によって提供される半減期が有益である。
エフェクター分子がポリマーである場合、それは、概して、合成又は天然に存在するポリマー、例えば任意選択に置換された直鎖若しくは分岐鎖ポリアルキレン、ポリアルケニレン若しくはポリオキシアルキレンポリマー又は分岐若しくは非分岐多糖、例えばホモ−又はヘテロ−多糖であってもよい。
上述の合成ポリマーに存在し得る特定の任意選択の置換基には、１つ又は複数のヒドロキシ、メチル又はメトキシ基が含まれる。
合成ポリマーの特定の例には、任意選択に置換された直鎖又は分岐鎖ポリ（エチレングリコール）、ポリ（プロピレングリコール）ポリ（ビニルアルコール）又はそれらの誘導体、特に、メトキシポリ（エチレングリコール）などの任意選択に置換されたポリ（エチレングリコール）又はそれらの誘導体が含まれる。
特定の天然に存在するポリマーには、ラクトース、アミロース、デキストラン、グリコーゲン又はそれらの誘導体が含まれる。
一実施形態において、ポリマーは、ヒト血清アルブミン又はそのフラグメントなどのアルブミン又はそのフラグメントである。
本明細書で使用される「誘導体」は、反応性誘導体、例えばマレイミドなどのチオール選択的反応基を含むことを意図する。反応基は、直接的に又はリンカーセグメントを介してポリマーに連結され得る。このような基の残基は、一部の場合、抗体フラグメントとポリマーとの間の連結基として製品の一部を形成することは理解されるであろう。
ポリマーのサイズは、所望の場合、変化されてもよいが、一般に、５００Ｄａ〜５００００Ｄａ、例えば５０００〜４００００Ｄａ、例えば２００００〜４００００Ｄａの範囲の平均分子量である。ポリマーのサイズは、特に、製品の意図する使用、例えば腫瘍などの特定の組織に局在化する能力又は延長した循環半減期に基づいて選択されてもよい（概説のために、Ｃｈａｐｍａｎ、２００２、Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ Ｒｅｖｉｅｗｓ、５４、５３１−５４５を参照のこと）。それ故、例えば、腫瘍の処置に使用するために、例えば、製品が循環したままで、組織に浸透することを意図する場合、例えば、約５０００Ｄａの分子量を有する低分子量ポリマーを使用することが有利であり得る。製品が循環中に存在したままである用途に関して、例えば、２００００Ｄａ〜４００００Ｄａの範囲の分子量を有する、より高い分子量のポリマーを使用することが有利であり得る。
好適なポリマーには、特に、約１５０００Ｄａ〜約４００００Ｄａの範囲の分子量を有する、ポリ（エチレングリコール）若しくは特に、メトキシポリ（エチレングリコール）などのポリアルキレンポリマー又はそれらの誘導体が含まれる。
一例において、本発明に使用するための抗体は、ポリ（エチレングリコール）（ＰＥＧ）部分に結合される。１つの特定の例において、抗体は抗体フラグメントであり、ＰＥＧ分子は、抗体フラグメント内に局在化する任意の利用可能なアミノ酸側鎖又は末端アミノ酸官能基、例えば任意の遊離アミノ、イミノ、チオール、ヒドロキシル又はカルボキシル基を介して結合され得る。このようなアミノ酸は抗体フラグメント内に天然に存在し得るか、又は組換えＤＮＡ法を使用してフラグメント内で操作され得る（例えばＵＳ５，２１９，９９６、ＵＳ５，６６７，４２５、ＷＯ９８／２５９７１、ＷＯ２００８／０３８０２４を参照のこと）。一例において、本発明の抗体分子は、修飾が、エフェクター分子の結合を可能にするために、その重鎖の１つ又は複数のアミノ酸のＣ末端への付加である、修飾されたＦａｂフラグメントである。好適には、更なるアミノ酸は、エフェクター分子が結合され得る１つ又は複数のシステイン残基を含有する修飾されたヒンジ領域を形成する。多部位が２つ以上のＰＥＧ分子を結合するために使用されてもよい。
好適には、ＰＥＧ分子は、抗体フラグメントに局在化した少なくとも１つのシステイン残基のチオール基を介して共有結合する。修飾された抗体フラグメントに結合された各々のポリマー分子は、フラグメントに局在化するシステイン残基の硫黄原子に共有結合され得る。共有結合は一般に、ジスルフィド結合又は特に、硫黄−炭素結合である。チオール基が適切に活性化されたエフェクター分子の結合点として使用される場合、例えばマレイミド及びシステイン誘導体などのチオール選択的誘導体が使用されてもよい。活性化ポリマーは上記のポリマー修飾抗体フラグメントの調製における出発材料として使用されてもよい。活性化ポリマーは、α−ハロカルボン酸又はエステル、例えばヨードアセトアミド、イミド、例えばマレイミド、ビニルスルホン又はジスルフィドなどのチオール反応基を含有する任意のポリマーであってもよい。このような出発材料は、（例えば、Ｎｅｋｔａｒ、以前はＳｈｅａｒｗａｔｅｒ Ｐｏｌｙｍｅｒｓ Ｉｎｃ．、Ｈｕｎｔｓｖｉｌｌｅ、ＡＬ、ＵＳＡから）商業的に得られてもよいか、又は従来の化学的手順を使用して市販の出発材料から調製されてもよい。特定のＰＥＧ分子には、２０Ｋメトキシ−ＰＥＧ−アミン（Ｎｅｋｔａｒ、以前はＳｈｅａｒｗａｔｅｒ、Ｒａｐｐ Ｐｏｌｙｍｅｒｅ、及びＳｕｎＢｉｏから入手可能）及びＭ−ＰＥＧ−ＳＰＡ（Ｎｅｋｔａｒ、以前はＳｈｅａｒｗａｔｅｒから入手可能）が含まれる。
一実施形態において、抗体は、例えばＥＰ０９４８５４４又はＥＰ１０９００３７に開示されている方法に従って、ＰＥＧ化されている、すなわち、それに共有結合しているＰＥＧ（ポリ（エチレングリコール））を有する、修飾されたＦａｂフラグメント、Ｆａｂ’ フラグメント又はｄｉＦａｂである［「ポリ（エチレングリコール）化学、バイオ技術及び生体医学応用（Ｐｏｌｙ（ｅｔｈｙｌｅｎｅｇｌｙｃｏｌ） Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ， Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｃａｌ ａｎｄ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ）」、１９９２、Ｊ．Ｍｉｌｔｏｎ Ｈａｒｒｉｓ （ｅｄ）、Ｐｌｅｎｕｍ Ｐｒｅｓｓ、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ、「ポリ（エチレングリコール）化学及び生物学的応用（Ｐｏｌｙ（ｅｔｈｙｌｅｎｅｇｌｙｃｏｌ） Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ）」、１９９７、Ｊ．Ｍｉｌｔｏｎ Ｈａｒｒｉｓ及びＳ．Ｚａｌｉｐｓｋｙ（ｅｄｓ）、Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ、Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ ＤＣ並びに「生体医科学についてのバイオコンジュゲーションタンパク質カップリング技術（Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｉｏｎ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｃｏｕｐｌｉｎｇ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ｆｏｒ ｔｈｅ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ）」、１９９８、Ｍ．Ａｓｌａｍ及びＡ．Ｄｅｎｔ、Ｇｒｏｖｅ Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ；Ｃｈａｐｍａｎ，Ａ． ２００２、Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ Ｒｅｖｉｅｗｓ ２００２、５４：５３１−５４５も参照のこと］。一例において、ＰＥＧはヒンジ領域においてシステインに結合される。一例において、ＰＥＧ修飾Ｆａｂフラグメントは、修飾されたヒンジ領域において単一のチオール基に共有結合したマレイミド基を有する。リシン残基はマレイミド基に共有結合され得、リシン残基上のアミン基の各々は、約２０，０００Ｄａの分子量を有するメトキシポリ（エチレングリコール）ポリマーに結合され得る。Ｆａｂフラグメントに結合したＰＥＧの全分子量は、従って、約４０，０００Ｄａであり得る。
特定のＰＥＧ分子には、ＰＥＧ２ＭＡＬ４０Ｋ（Ｎｅｋｔａｒ、以前はＳｈｅａｒｗａｔｅｒから入手可能）としても知られている、Ｎ，Ｎ’−ビス（メトキシポリ（エチレングリコール）ＭＷ２０，０００）修飾リシンの２−［３−（Ｎ−マレイミド）プロピオンアミド］エチルアミドが含まれる。
ＰＥＧリンカーの代替源には、ＧＬ２−４００ＭＡ３（以下の構造におけるｍは５である）及びＧＬ２−４００ＭＡ（ｍは２である）を供給するＮＯＦが含まれ、ｎは約４５０である：
すなわち、各ＰＥＧは約２０，０００Ｄａである。
それ故、一実施形態において、ＰＥＧは、ＳＵＮＢＲＩＧＨＴ ＧＬ２−４００ＭＡ３として知られている２，３−ビス（メチルポリオキシエチレン−オキシ）−１−｛［３−（６−マレイミド−１−オキソヘキシル）アミノ］プロピルオキシ｝ヘキサン（２アーム分岐ＰＥＧ、−ＣＨ２）３ＮＨＣＯ（ＣＨ２）５−ＭＡＬ、Ｍｗ４０，０００である。
更に以下の種類の代替のＰＥＧエフェクター分子：

がＤｒ Ｒｅｄｄｙ、ＮＯＦ及びＪｅｎｋｅｍから入手可能である。
一実施形態において、鎖内のアミノ酸２２６、例えば重鎖のアミノ酸２２６（連続番号付けにより）、例えば配列番号３６のアミノ酸２２６において又は周囲でシステインアミノ酸残基を介して結合される、ＰＥＧ化される（例えば本明細書に記載されているＰＥＧを有する）抗体が提供される。
一実施形態において、本開示は、１つ又は複数のＰＥＧポリマー、例えば１つ又は２つのポリマー、例えば４０ｋＤａポリマー（単数又は複数）を含むＦａｂ’ＰＥＧ分子を提供する。
本開示に係るＦａｂ’−ＰＥＧ分子は、それらがＦｃフラグメントとは独立した半減期を有するという点で特に有益であり得る。一例において、本発明は、治療有効量の抗ＦｃＲｎ抗体又はその結合フラグメントを投与するステップを含む、ヒトＦｃＲｎを遮断することによって改善される疾患を処置する方法であって、該抗体又はその結合フラグメントが、ＦｃＲｎに対するＦｃ結合とは独立した半減期を有する、方法を提供する。
一実施形態において、ＰＥＧ分子、デンプン分子又はアルブミン分子などのポリマーにコンジュゲートされたＦａｂ’が提供される。
一実施形態において、ＰＥＧ分子、デンプン分子又はアルブミン分子などのポリマーにコンジュゲートされたｓｃＦｖが提供される。
一実施形態において、抗体又はフラグメントは、例えば半減期を増加させるためにデンプン分子にコンジュゲートされている。デンプンをタンパク質にコンジュゲートする方法は、本明細書に参照により組み込まれているＵＳ８，０１７，７３９に記載されている。
一実施形態において、
・血漿ＩｇＧ濃度の７０％減少を引き起こし、
・血漿アルブミン濃度の２０％以下の減少を伴い、及び／又は
・低い血漿ＩｇＧ濃度の長期間の維持を達成するために反復投与の可能性を有する、
抗ＦｃＲｎ結合分子が提供される。
本発明はまた、本発明の抗体分子の重鎖及び／又は軽鎖（単数又は複数）をコードする単離されたＤＮＡ配列を提供する。好適には、ＤＮＡ配列は本発明の抗体分子の重鎖又は軽鎖をコードする。本発明のＤＮＡ配列は、例えば、化学的処理によって作製される合成ＤＮＡ、ｃＤＮＡ、ゲノムＤＮＡ又はそれらの任意の組合せを含んでもよい。
本発明の抗体分子をコードするＤＮＡ配列は当業者に周知の方法により得られ得る。例えば、抗体重鎖及び軽鎖の一部又は全てをコードするＤＮＡ配列は、所望の場合、決定されたＤＮＡ配列から、又は対応するアミノ酸配列に基づいて合成され得る。
アクセプターフレームワーク配列をコードするＤＮＡは、当業者に広範に利用可能であり、それらの既知のアミノ酸配列に基づいて容易に合成され得る。
分子生物学の標準技術が、本発明の抗体分子をコードするＤＮＡ配列を調製するために使用されてもよい。所望のＤＮＡ配列はオリゴヌクレオチド合成技術を使用して完全に又は部分的に合成されてもよい。部位特異的変異誘発法及びポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）技術が必要に応じて使用されてもよい。
好適なＤＮＡ配列の例は本明細書に提供される。
１５１９軽鎖可変領域をコードする好適なＤＮＡ配列の例は、配列番号１６、配列番号１７及び配列番号９４に提供される。１５１９重鎖可変領域をコードする好適なＤＮＡ配列の例は、配列番号３０、配列番号３１及び配列番号１００に提供される。
１５１９軽鎖（可変及び定常）をコードする好適なＤＮＡ配列の例は、配列番号２３、配列番号７５及び配列番号９７に提供される。
１５１９重鎖（可変及び定常、フォーマットに依存する）をコードする好適なＤＮＡ配列の例は、配列番号３７、３８及び７６（Ｆａｂ’）、配列番号７２又は８９（ＩｇＧ１）、配列番号４４又は１０３（ＩｇＧ４Ｐ）及び配列番号９３（ＩｇＧ４）に提供される。
従って、一例において、本発明は、配列番号３７に示される配列を含む、本発明の抗体Ｆａｂ’フラグメントの重鎖をコードする単離されたＤＮＡ配列を提供する。配列番号２３に示される配列を含む、本発明の抗体Ｆａｂ’フラグメントの軽鎖をコードする単離されたＤＮＡ配列も提供される。
一例において、本発明は、本発明のＩｇＧ４（Ｐ）抗体の重鎖及び軽鎖をコードする単離されたＤＮＡ配列であって、重鎖をコードするＤＮＡが配列番号４４又は配列番号１０３に示される配列を含み、軽鎖をコードするＤＮＡが配列番号７５又は配列番号９７に示される配列を含む、ＤＮＡ配列を提供する。
一例において、本発明は、本発明のＦａｂ−ｄｓＦｖ抗体の重鎖及び軽鎖をコードする単離されたＤＮＡ配列であって、重鎖をコードするＤＮＡが配列番号５１又は配列番号８２に示される配列を含み、軽鎖をコードするＤＮＡが配列番号４７又は配列番号７９に示される配列を含む、ＤＮＡ配列を提供する。
本発明はまた、本発明の１つ又は複数のＤＮＡ配列を含む、クローニング又は発現ベクターに関する。従って、本発明の抗体をコードする１つ又は複数のＤＮＡ配列を含む、クローニング又は発現ベクターが提供される。好適には、クローニング又は発現ベクターは、本発明の抗体分子の軽鎖及び重鎖のそれぞれをコードする２つのＤＮＡ配列並びに好適なシグナル配列を含む。一例において、ベクターは重鎖と軽鎖との間に遺伝子間配列を含む（ＷＯ０３／０４８２０８を参照のこと）。
ベクターが構築され得る一般的な方法、トランスフェクション法及び培養法は当業者に周知である。これに関して、参照が、「分子生物学における現在のプロトコル（Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ）」、１９９９、Ｆ．Ｍ．Ａｕｓｕｂｅｌ（ｅｄ）、Ｗｉｌｅｙ Ｉｎｔｅｒｓｃｉｅｎｃｅ、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ及びＣｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇによって作成されたＭａｎｉａｔｉｓ Ｍａｎｕａｌに対してなされる。
本発明の抗体をコードする１つ又は複数のＤＮＡ配列を含む１つ又は複数のクローニング又は発現ベクターを含む宿主細胞も提供される。任意の好適な宿主細胞／ベクター系が、本発明の抗体分子をコードするＤＮＡ配列の発現のために使用されてもよい。細菌、例えば大腸菌及び他の微生物系が使用されてもよいか、又は真核生物、例えば哺乳動物、宿主細胞発現系もまた、使用されてもよい。好適な哺乳動物宿主細胞には、ＣＨＯ、骨髄腫又はハイブリドーマ細胞が含まれる。
本発明に使用するための好適な種類のチャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ細胞）には、ＣＨＯ−ＤＧ４４細胞及びＣＨＯ−ＤＸＢ１１細胞などのｄｈｆｒ−ＣＨＯ細胞を含むＣＨＯ及びＣＨＯ−Ｋ１細胞が含まれ得、それは、ＤＨＦＲ選択可能マーカー又はグルタミン合成酵素選択可能マーカーと共に使用され得るＣＨＯＫ１−ＳＶ細胞と共に使用されてもよい。抗体の発現に使用する他の細胞種類には、リンパ球細胞系、例えばＮＳＯ骨髄腫細胞及びＳＰ２細胞、ＣＯＳ細胞が含まれる。
本発明はまた、本発明の抗体分子をコードするＤＮＡからタンパク質の発現を導くのに好適な条件下で本発明のベクターを含有する宿主細胞を培養するステップ、及び抗体分子を単離するステップを含む、本発明に係る抗体分子を作製するプロセスを提供する。
抗体分子は重鎖又は軽鎖ポリペプチドのみを含んでもよく、この場合、重鎖又は軽鎖ポリペプチドのみをコードする配列が、宿主細胞をトランスフェクトするために使用するために必要とされる。重鎖及び軽鎖の両方を含む産物の作製に関して、細胞系が２つのベクターでトランスフェクトされてもよく、第１のベクターは軽鎖ポリペプチドをコードし、第２のベクターは重鎖ポリペプチドをコードする。或いは、単一ベクターが使用されてもよく、該ベクターは軽鎖及び重鎖ポリペプチドをコードする配列を含む。
本開示に係る抗体及びフラグメントは宿主細胞から良好なレベルで発現される。それ故、抗体及び／又はフラグメントの特性は商業的プロセスにつながる。
それ故、宿主細胞を培養し、抗体又はそのフラグメントを発現し、該抗体又はそのフラグメントを単離し、任意選択にそれらを精製して、単離された抗体又はフラグメントを提供するプロセスが提供される。一実施形態において、このプロセスは、エフェクター分子を単離された抗体又はフラグメントにコンジュゲートするステップ、例えば特に本明細書に記載されているＰＥＧポリマーにコンジュゲートするステップを更に含む。
一実施形態において、不純物がカラム上に保持され、抗体が溶出されるように、非結合様式において陰イオン交換クロマトグラフィーを実施するステップを含む、抗体（特に本発明に係る抗体又はフラグメント）を精製するプロセスが提供される。
一実施形態において、精製は、ＦｃＲｎカラム上での親和性捕捉を利用する。
一実施形態において、精製は、シバクロンブルー又はアルブミン融合若しくはコンジュゲート分子を精製するための類似物を利用する。
プロセスに使用するための好適なイオン交換樹脂には、Ｑ．ＦＦ樹脂（ＧＥ−Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅによって供給される）が含まれる。このステップは約ｐＨ８で実施され得る。
このプロセスは、例えば４．５などの約４〜５のｐＨにて実施される、陽イオン交換クロマトグラフィーを利用する最初の捕捉ステップを更に含んでもよい。陽イオン交換クロマトグラフィーは、例えば、ＣａｐｔｏＳ樹脂又はＳＰセファロースＦＦ（ＧＥ−Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅによって供給される）などの樹脂を利用してもよい。次いで抗体又はフラグメントは、例えば２００ｍＭの濃度にて塩化ナトリウムなどのイオン性塩溶液を利用する樹脂から溶出され得る。
それ故、クロマトグラフステップ（単数又は複数）は、必要に応じて、１つ又は複数の洗浄ステップを含んでもよい。
精製プロセスもまた、透析濾過ステップなどの１つ又は複数の濾過ステップを含んでもよい。
それ故、一実施形態において、精製された抗ＦｃＲｎ抗体又はフラグメント、例えば、特に、エンドトキシン及び／又は宿主細胞タンパク質若しくはＤＮＡを含まず又は実質的に含まずに、実質的に精製された形態で、ヒト化抗体又はフラグメント、特に本発明に係る抗体又はフラグメントが提供される。
上記で使用される精製形態は、少なくとも９０％の純度、例えば９１、９２、９３、９４、９５、９６、９７、９８、９９％ｗ／ｗ又はそれ以上の純度を指すことを意図する。
エンドトキシンを実質的に含まないとは、概して、１ＥＵ／ｍｇ抗体産物又はそれ未満、例えば０．５又は０．１ＥＵ／ｍｇ産物のエンドトキシン含有量を指すことを意図する。
宿主細胞タンパク質又はＤＮＡを実質的に含まないとは、概して、４００μｇ／ｍｇの抗体産物又はそれ未満、例えば１００μｇ／ｍｇ又はそれ未満、必要に応じて特に２０μｇ／ｍｇの宿主細胞タンパク質及び／又はＤＮＡ含有量を指すことを意図する。
本発明の抗体分子はまた、診断、例えばインビボ診断及びＦｃＲｎに関与する疾患状態の画像化に使用されてもよい。
本発明の抗体は病態の処置及び／又は予防に有用であるので、本発明はまた、薬学的に許容される賦形剤、希釈剤又は担体の１つ又は複数と組み合わせて本発明の抗体分子を含む医薬又は診断組成物を提供する。従って、医薬を製造するための本発明の抗体分子の使用が提供される。組成物は、普通、薬学的に許容される担体を通常含む無菌の医薬組成物の一部として供給される。本発明の医薬組成物は、薬学的に許容される賦形剤を更に含んでもよい。
本発明はまた、薬学的に許容される賦形剤、希釈剤又は担体の１つ又は複数と一緒に本発明の抗体分子を添加し、混合するステップを含む、医薬又は診断組成物を調製するプロセスを提供する。
抗体分子は、医薬若しくは診断組成物中の唯一の活性成分であってもよいか、又はステロイド若しくは他の薬物分子、特に半減期がＦｃＲｎ結合と独立している薬物分子などの他の抗体成分若しくは非抗体成分を含む他の活性成分を伴ってもよい。
医薬組成物は、好適には、治療有効量の本発明の抗体を含む。本明細書で使用される「治療有効量」という用語は、対象とする疾患若しくは状態を処置、改善若しくは防止するため、又は検出可能な治療若しくは防止効果を示すために必要とされる治療剤の量を指す。任意の抗体に関して、治療有効量は、細胞培養アッセイ又は動物モデル、通常、齧歯動物、ウサギ、イヌ、ブタ又は霊長類のいずれかにおいて最初に見積もられ得る。動物モデルはまた、適切な濃度範囲及び投与経路を決定するために使用されてもよい。次いでこのような情報は、ヒトにおける有用な用量及び投与経路を決定するために使用されてもよい。
ヒト対象のための正確な治療有効量は、疾患状態の重症度、対象の全体的な健康、年齢、対象の体重及び性別、食事、投与時間及び頻度、薬物の組合せ（単数又は複数）、反応感度及び治療に対する忍容性／応答に依存する。この量は慣例の実験によって決定され得、臨床医の判断内である。一般に、治療有効量は、０．０１ｍｇ／ｋｇ〜５００ｍｇ／ｋｇ、例えば０．１ｍｇ／ｋｇ〜２００ｍｇ／ｋｇ、例えば１００ｍｇ／Ｋｇである。医薬組成物は、用量当たり本発明の所定量の活性剤を含有する単位用量形態で簡便に提示され得る。
本開示に係る抗体の治療用量はインビボで明らかな毒性効果を示さない。
本発明に係る抗体又はフラグメントの一実施形態において、単回用量は循環ＩｇＧレベルの最大で７０％の減少を提供できる。
循環ＩｇＧの最大の治療的減少は関連する治療用量の投与の約１週間後に観察され得る。ＩｇＧのレベルは、更なる治療用量が送達されない場合、約６週間超で回復し得る。
有益には、インビボでのＩｇＧのレベルは、本開示に係る抗体又はフラグメントの連続的な用量の投与によって適切に低いレベルにて維持され得る。
組成物は、患者に個々に投与されてもよいか、又は他の薬剤、薬物若しくはホルモンと組み合わせて（例えば同時、連続又は別々に）投与されてもよい。
一実施形態において、本開示に係る抗体又はフラグメントは、ステロイド、特にプレドニゾンなどの免疫抑制剤治療と共に利用される。
一実施形態において、本開示に係る抗体又はフラグメントは、リツキシマブ又は他のＢ細胞治療と共に利用される。
一実施形態において、本開示に係る抗体又はフラグメントは、任意のＢ細胞若しくはＴ細胞調節剤又は免疫調節剤と共に利用される。例には、メトトレキサート、ミコフェノラート及びアザチオプリンが含まれる。
本発明の抗体分子が投与される用量は、処置される状態の性質、存在する炎症の程度及び抗体分子が予防的に使用されるか又は現存の状態を処置するためであるかどうかに依存する。
用量の頻度は、抗体分子の半減期及びその効果の期間に依存する。抗体分子が短い半減期（例えば２〜１０時間）を有する場合、１日当たり１又は複数回の用量を与えることが必要であり得る。或いは、抗体分子が、長い半減期（例えば２〜１５日）及び／又は長く続く薬物動態（ＰＤ）プロファイルを有する場合、１日当たり１回、１週間当たり１回又は更に１若しくは２ヶ月毎に１回の投薬を与えることを必要とするのみであってもよい。
一実施形態において、用量は、隔週、すなわち１ヶ月に２回送達される。
本明細書において利用される半減期は、循環中、例えば血清／血漿中の分子の持続時間を指すことを意図する。
本明細書において利用される薬物動態は、本開示に係る分子の生物学的作用のプロファイル、特に持続時間を指す。
薬学的に許容される担体は、組成物を受容する個体に有害な抗体の産生をそれ自体で誘導すべきではなく、毒性であるべきではない。好適な担体は、タンパク質、ポリペプチド、リポソーム、多糖、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、ポリマーアミノ酸、アミノ酸コポリマー及び不活性ウイルス粒子などの、大きく、ゆっくり代謝される巨大分子であってもよい。
薬学的に許容される塩、例えば、塩酸塩、臭化水素酸塩、リン酸塩及び硫酸塩などの鉱酸塩又は酢酸塩、プロピオン酸塩、マロン酸塩及び安息香酸塩などの有機酸の塩が使用されてもよい。
治療組成物中の薬学的に許容される担体は、水、生理食塩水、グリセロール及びエタノールなどの液体を更に含有してもよい。更に、湿潤剤又は乳化剤又はｐＨ緩衝物質などの補助物質がこのような組成物中に存在してもよい。このような担体により、医薬組成物が、患者が摂取するための錠剤、丸剤、糖衣錠、カプセル剤、液剤、ゲル、シロップ、スラリー及び懸濁剤として製剤化され得る。
好適な投与形態には、例えば注射又は注入による、例えばボーラス注射又は持続注入による非経口投与に好適な形態が含まれる。製品が注射又は注入用である場合、それは、油性又は水性ビヒクル中の懸濁剤、液剤又は乳剤の形態をとってもよく、それは、懸濁化剤、防腐剤、安定剤及び／又は分散剤などの製剤化剤（ｆｏｒｍｕｌａｔｏｒｙ ａｇｅｎｔ）を含有してもよい。或いは、抗体分子は適切な滅菌液を用いて使用前に再構成するための乾燥形態であってもよい。
一旦製剤化されると、本発明の組成物は対象に直接投与されてもよい。処置される対象は動物であってもよい。しかしながら、１つ又は複数の実施形態において、組成物はヒト対象への投与に適合される。
好適には、本開示に係る製剤において、最終製剤のｐＨは抗体又はフラグメントの等電点の値と類似しておらず、例えばタンパク質のｐＩが８〜９又はそれ以上の範囲である場合、７のｐＨの製剤が適切であり得る。理論により束縛されることを望まないが、このことは最終的に、改良された安定性、例えば抗体又はフラグメントが溶液中に存在している最終製剤を提供すると考えられる。
一例において、４．０〜７．０の範囲のｐＨにおける医薬製剤は、１〜２００ｍｇ／ｍＬの本開示に係る抗体分子、１〜１００ｍＭの緩衝液、０．００１〜１％の界面活性剤、ａ）１０〜５００ｍＭの安定剤、ｂ）１０〜５００ｍＭの安定剤及び５〜５００ｍＭの等張化剤、又はｃ）５〜５００ｍＭの等張化剤を含む。
本発明の医薬組成物は、限定されないが、経口、静脈内、筋肉内、動脈内、髄内、髄腔内、脳室内、経皮的、経皮性（例えば、ＷＯ９８／２０７３４を参照のこと）、皮下、腹腔内、鼻腔内、腸内、局所、舌下、膣内又は直腸経路を含む、任意の数の経路によって投与されてもよい。皮下噴射器もまた、本発明の医薬組成物を投与するために使用されてもよい。典型的に、治療組成物は、液体の液剤又は懸濁剤のいずれかとして注射剤として調製されてもよい。注射前に液体ビヒクル中の液剤又は懸濁剤に好適な固体形態もまた、調製されてもよい。
組成物の直接送達は、一般に、皮下、腹腔内、静脈内若しくは筋肉内の注射により、又は組織の間質空間への送達により達成される。組成物はまた、病変内に投与されてもよい。投薬処置は単回用量スケジュール又は複数回用量スケジュールであってもよい。
組成物中の活性成分は、抗体分子であることが理解されるだろう。従って、それは消化管内で分解しやすい。それ故、組成物が消化管を使用した経路によって投与される場合、組成物は分解から抗体を保護するが、それが消化管から吸収されると、抗体を放出する薬剤を含有することを必要とする。
薬学的に許容される担体の十分な説明はＲｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ（Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏｍｐａｎｙ、Ｎ．Ｊ．１９９１）において入手可能である。
一実施形態において、製剤は吸入を含む局所投与のための製剤として提供される。
好適な吸入調製剤には、吸入可能粉末、推進剤ガスを含有する計量エアロゾル又は推進剤ガスを含有しない吸収可能液剤が含まれる。活性物質を含有する本開示に係る吸入可能粉末は、上述の活性物質のみ又は上述の活性物質と生理的に許容される賦形剤との混合物を含んでもよい。
これらの吸入可能な粉末には、単糖（例えばグルコース又はアラビノース）、二糖（例えばラクトース、サッカロース、マルトース）、オリゴ糖及び多糖（例えばデキストラン）、多価アルコール（例えばソルビトール、マンニトール、キシリトール）、塩（例えば塩化ナトリウム、炭酸カルシウム）又は互いとのこれらの混合物が含まれてもよい。単糖又は二糖が好適には使用され、ラクトース又はグルコースの使用は特にそれらの水和物の形態に限らない。
肺内に堆積させるための粒子は、１０ミクロン未満、例えば１〜９ミクロン、例えば１〜５μｍの粒径を必要とする。活性成分（抗体又はフラグメントなど）の粒径が最重要である。
吸入可能なエアロゾルを調製するために使用され得る推進ガスは当該分野において公知である。好適な推進ガスは、ｎ−プロパン、ｎ−ブタン又はイソブタンなどの炭化水素及びメタン、エタン、プロパン、ブタン、シクロプロパン又はシクロブタンの塩素化及び／又はフッ素化誘導体などのハロ炭化水素の中から選択される。上述の推進ガスはそれら独自で又はそれらの混合物で使用されてもよい。
特に好適な推進ガスは、ＴＧ１１、ＴＧ１２、ＴＧ１３４ａ及びＴＧ２２７の中から選択されるハロゲン化アルカン誘導体である。上述のハロゲン化炭化水素のうち、ＴＧ１３４ａ（１，１，１，２−テトラフルオロエタン）及びＴＧ２２７（１，１，１，２，３，３，３−ヘプタフルオロプロパン）並びにそれらの混合物が特に好適である。
推進ガスを含有する吸入可能なエアロゾルはまた、共溶媒、安定剤、表面活性剤（界面活性剤）、酸化防止剤、滑沢剤及びｐＨを調整する手段などの他の成分を含有してもよい。全てのこれらの成分は当該分野において公知である。
本発明に係る推進剤ガスを含有する吸入可能なエアロゾルは、５重量％までの活性物質を含有してもよい。本発明に係るエアロゾルは、例えば、０．００２〜５重量％、０．０１〜３重量％、０．０１５〜２重量％、０．１〜２重量％、０．５〜２重量％又は０．５〜１重量％の活性成分を含有する。
或いは、肺への局所投与はまた、例えば噴霧器、例えば圧縮器に接続された噴霧器（例えば、Ｐａｒｉ Ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ Ｅｑｕｉｐｍｅｎｔ，Ｉｎｃ．、Ｒｉｃｈｍｏｎｄ、Ｖａによって製造されているＰａｒｉ Ｍａｓｔｅｒ（Ｒ）圧縮器に接続されたＰａｒｉ−ＬＣ−Ｊｅｔ Ｐｌｕｓ（Ｒ）噴霧器）などの装置を利用した液体の液剤又は懸濁剤の製剤の投与によってもよい。
本発明の抗体は、例えば液剤又は懸濁剤の形態で、溶媒中に分散されて送達されてもよい。それは、適切な生理溶液、例えば、生理食塩水又は他の薬理学的に許容される溶媒若しくは緩衝液中に懸濁されてもよい。当該分野において公知の緩衝液は、約４．０〜５．０のｐＨを達成するように、１ｍｌの水当たり、０．０５ｍｇ〜０．１５ｍｇのエデト酸２ナトリウム、８．０ｍｇ〜９．０ｍｇのＮａＣｌ、０．１５ｍｇ〜０．２５ｍｇのポリソルベート、０．２５ｍｇ〜０．３０ｍｇの無水クエン酸及び０．４５ｍｇ〜０．５５ｍｇのクエン酸ナトリウムを含有してもよい。懸濁液は、例えば、凍結乾燥抗体を利用できる。
治療用の懸濁剤又は液剤の製剤はまた、１つ又は複数の賦形剤を含有してもよい。賦形剤は当該分野において周知であり、緩衝液（例えばクエン酸緩衝液、リン酸緩衝液、酢酸緩衝液及び重炭酸緩衝液）、アミノ酸、尿素、アルコール、アスコルビン酸、リン脂質、タンパク質（例えば血清アルブミン）、ＥＤＴＡ、塩化ナトリウム、リポソーム、マンニトール、ソルビトール及びグリセロールを含む。液剤又は懸濁剤はリポソーム又は生分解性ミクロスフェア内に封入されてもよい。製剤は一般に、無菌製造プロセスを利用して、実質的に無菌形態で提供される。
これは、製剤に使用される緩衝化溶媒／溶液の濾過による作製及び滅菌、無菌緩衝溶媒溶液中の抗体の無菌懸濁及び当業者によく知られた方法による無菌容器内での製剤の調剤を含んでもよい。
本開示に係る噴霧可能な製剤は、例えば、ホイルエンベロープに詰められた単回用量単位（例えば密封されたプラスチック容器又はバイアル）として提供され得る。各バイアルは、溶媒／溶液緩衝液のある体積、例えば２ｍＬの単位用量を含有する。
本明細書に開示される抗体は噴霧による送達に好適であり得る。
また、本発明の抗体は遺伝子治療の使用によって投与されてもよいことも想定される。これを達成するために、適切なＤＮＡ構成成分の制御下で抗体分子の重鎖及び軽鎖をコードするＤＮＡ配列が、抗体鎖がＤＮＡ配列から発現され、インサイチュでアセンブルされるように患者内に導入される。
本発明はまた、自己免疫疾患、例えば、急性散在性脳脊髄炎（ＡＤＥＭ）、急性壊死性出血性白質脳炎、アジソン病、無ガンマグロブリン血症、円形脱毛、アミロイドーシス、ＡＮＣＡ関連血管炎、強直性脊椎炎、抗ＧＢＭ／抗ＴＢＭ腎炎、抗リン脂質症候群（ＡＰＳ）、自己免疫性血管浮腫、自己免疫性再生不良性貧血、自己免疫性自律神経障害、自己免疫性肝炎、自己免疫性高脂血症、自己免疫性免疫不全、自己免疫性内耳疾患（ＡＩＥＤ）、自己免疫性心筋炎、自己免疫性膵炎、自己免疫性網膜症、自己免疫性血小板減少性紫斑病（ＡＴＰ）、自己免疫性甲状腺疾患、自己免疫性蕁麻疹、軸索及びｎａｌ神経障害、バロー病、ベーチェット病、水疱性類天疱瘡、心筋症、キャッスルマン病、セリアック病、シャーガス病、慢性炎症性脱髄性多発神経炎（ＣＩＤＰ）、慢性再発性多発性骨髄炎（Ｃｈｒｏｎｉｃ ｒｅｃｕｒｒｅｎｔ ｍｕｌｔｉｆｏｃａｌ ｏｓｔｏｍｙｅｌｉｔｉｓ）（ＣＲＭＯ）、チャーグ−ストラウス症候群、瘢痕性類天疱瘡／良性粘膜類天疱瘡、クローン病、コーガン症候群、寒冷凝集素症、先天性心ブロック、コクサッキー心筋炎、ＣＲＥＳＴ病、本態性混合型クリオグロブリン血症、脱髄性神経障害、疱疹状皮膚炎、皮膚筋炎、デビック病（視神経脊髄炎）、拡張型心筋症、円板状ループス、ドレスラー症候群、子宮内膜症、好酸球性血管中心性線維症、好酸球性筋膜炎、結節性紅斑、実験的アレルギー性脳脊髄炎、エバンス症候群、線維化性肺胞炎、ジャイアント細胞動脈炎（側頭動脈炎）、糸球体腎炎、グッドパスチャー症候群、多発血管炎性肉芽腫症（ＧＰＡ）（ウェゲナーを参照）、グレーブス病、ギランバレー症候群、橋本脳炎、橋本甲状腺炎、溶血性貧血、ヘノッホ−シェーンライン紫斑病、ヘルペス妊娠性疱疹、低ガンマグロブリン血症、特発性低補体性尿細管間質性腎炎（Ｉｄｉｏｐａｔｈｉｃ ｈｙｐｏｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔｅｍｉｃ ｔｕｂｕｌｏｉｎｔｅｓｔｉｔｉａｌ ｎｅｐｈｒｉｔｉｓ）、特発性血小板減少性紫斑病（ＩＴＰ）、ＩｇＡ腎症、ＩｇＧ４関連疾患、ＩｇＧ４関連硬化性疾患、免疫調節リポタンパク質、炎症性大動脈瘤、炎症性偽腫瘍、封入体筋炎、インスリン依存性糖尿病（１型）、間質性膀胱炎、若年性関節炎、若年性糖尿病、川崎症候群、キュットネル腫瘍、ランバート−イートン症候群、白血球破砕性血管炎、扁平苔癬、硬化性苔癬、木質結膜炎、リニアＩｇＡ病（ＬＡＤ）、狼瘡（ＳＬＥ）、ライム病、慢性縦隔線維症、メニエール病、顕微鏡的多発血管炎、ミクリッツ症候群、混合性結合組織病（ＭＣＴＤ）、モーレン潰瘍、ミュシャ−ハーバーマン病、結合組織増殖症候群、多発性硬化症、重症筋無力症、筋炎、ナルコレプシー、視神経脊髄炎（デビック）、好中球減少症、眼部瘢痕性類天疱瘡、視神経炎、オーモンド病（後腹膜線維症）、回帰性リウマチ、ＰＡＮＤＡＳ（連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ）に関連する小児自己免疫性神経精神障害）、傍腫瘍性小脳変性症、異常タンパク性多発ニューロパチー、発作性夜間ヘモグロビン尿症（ＰＮＨ）、パリーロンベルグ症候群、パーソナージュ−ターナー症候群、扁平部炎（周辺性ブドウ膜炎）、尋常性天疱瘡、大動脈周囲炎、動脈周囲炎、末梢神経障害、静脈周囲脳脊髄炎、悪性貧血、ＰＯＥＭＳ症候群、結節性多発動脈炎、Ｉ型、ＩＩ型及びＩＩＩ型多腺性自己免疫症候群、多発筋痛リウマチ、多発性筋炎、心筋梗塞後症候群、心膜切開後症候群、プロゲステロン性皮膚炎、原発性胆汁性肝硬変、原発性硬化性胆管炎、乾癬、乾癬性関節炎、特発性肺線維症、壊疽性膿皮症、赤芽球癆、レイノー現象、反射性交感神経性ジストロフィー、ライター症候群、再発性多発性軟骨炎、レストレスレッグス症候群、後腹膜線維症（オーモンド病）、リウマチ熱、関節リウマチ、リーデル甲状腺炎、サルコイドーシス、シュミット症候群、強膜炎、強皮症、シェーグレン症候群、精子及び精巣自己免疫、スティッフパーソン症候群、亜急性細菌性心内膜炎（ＳＢＥ）、スザック症候群、交感性眼炎、高安動脈炎、側頭動脈炎／巨細胞性動脈炎、血栓性血小板減少性紫斑病（ＴＴＰ）、トロサ−ハント症候群、横断性脊髄炎、潰瘍性大腸炎、未分化結合組織疾患（ＵＣＴＤ）、ブドウ膜炎、血管炎、水疱性皮膚病、白斑、ワルデンシュトレーム型マクログロブリン血症、温式特発性溶血性貧血及びウェゲナー肉芽腫症（現在、多発血管炎性肉芽腫症（ＧＰＡと呼ばれる）の抑制に使用するための抗体分子（又はそれを含む組成物）を提供する。
一実施形態において、本開示に係る抗体又はフラグメントは、てんかん又は発作の処置又は予防に利用される。
一実施形態において、本開示に係る抗体又はフラグメントは、多発性硬化症の処置又は予防に利用される。
一実施形態において、本開示の抗体及びフラグメントは、以下を含む同種免疫疾患／兆候に利用される：
・抗ＨＬＡ抗体に起因する移植ドナーミスマッチ
・胎児及び新生児同種免疫性血小板減少症、ＦＮＡＩＴ（又は新生児同種免疫性血小板減少症、ＮＡＩＴＰ若しくはＮＡＩＴ若しくはＮＡＴ、又は胎母同種免疫性血小板減少症、ＦＭＡＩＴＰ若しくはＦＭＡＩＴ）。
更なる兆候には、ヒト患者からのＦｃを含有する生物薬剤の急速なクリアランス及び抗ＦｃＲｎ治療と他の治療−ＩＶＩｇ、リツキサン、プラスマフェレーシスとの組合せが含まれる。例えば、抗ＦｃＲｎ治療はリツキサン治療後に利用されてもよい。
実施形態において、本開示の抗体及びフラグメントは、
・慢性炎症性脱髄性多発神経炎（ＣＩＤＰ）
・ギランバレー症候群
・パラプロテイン血症性ニューロパチー
・視神経脊髄炎（ＮＭＯ、ＮＭＯスペクトル障害又はＮＭＯスペクトル障害）、及び
・重症筋無力症
などの神経学的障害に利用される。
実施形態において、本開示の抗体及びフラグメントは、
・水疱性類天疱瘡
・尋常性天疱瘡
・ＡＮＣＡ関連血管炎
・拡張型心筋症
などの皮膚疾患に利用される。
実施形態において、本開示の抗体及びフラグメントは、
・特発性血小板減少性紫斑病（ＩＴＰ）
・血栓性血小板減少性紫斑病（ＴＴＰ）
・温式特発性溶血性貧血
・グッドパスチャー症候群
・抗ＨＬＡ抗体に起因する移植ドナーミスマッチ
などの免疫学、血液学障害に利用される。
一実施形態において、障害は、重症筋無力症、視神経脊髄炎、ＣＩＤＰ、ギランバレー症候群、パラプロテイン血症多発性神経障害、難治性てんかん、ＩＴＰ／ＴＴＰ、溶血性貧血、グッドパスチャー症候群、ＡＢＯ不適合、ループス腎炎、腎血管炎、強皮症、線維性肺胞炎、拡張型心筋症、グレーブス病、１型糖尿病、自己免疫性糖尿病、天疱瘡、強皮症、狼瘡、ＡＮＣＡ血管炎、皮膚筋炎、シェーグレン病及び関節リウマチから選択される。
一実施形態において、障害は、自己免疫性多腺性内分泌症候群（ａｕｔｏｉｍｍｕｎｅ ｐｏｌｙｅｎｄｏｃｒｉｎｅ ｓｙｎｄｒｏｍｅ）１型（ＡＰＥＣＥＤ又はウィテカー症候群）及び２型（シュミット症候群）、全身性脱毛症、筋無力症クリーゼ、甲状腺発症、甲状腺関連眼疾患、甲状腺眼症、自己免疫性糖尿病、自己抗体関連脳炎及び／又は脳症、落葉状天疱瘡、表皮水疱症、疱疹状皮膚炎、シデナム舞踏病、急性運動性軸索型ニューロパチー（ＡＭＡＮ）、ミラーフィッシャー症候群、多巣性運動ニューロパチー（ＭＭＮ）、眼球クローヌス、炎症性筋疾患、アイザック症候群（自己免疫性神経筋緊張症）、腫瘍随伴症候群及び辺縁系脳炎から選択される。
本開示に係る抗体及びフラグメントは処置又は予防に利用されてもよい。
本発明はまた、個体における望ましくない抗体の濃度を減少させる方法であって、本明細書に開示されている治療有効量の抗ＦｃＲｎ抗体又はその結合フラグメントを個体に投与するステップを含む、方法を提供する。
一実施形態において、本開示は、例えば、レポーター分子にコンジュゲートした、診断用の試薬として抗体又はそのフラグメントの使用を含む。それ故、標識されている本開示に係る抗体又はフラグメントが提供される。一態様において、本開示に係る抗体又はフラグメントを含むカラムが提供される。
それ故、以下のような使用のための試薬として使用するための抗ＦｃＲｎ抗体又は結合フラグメントが提供される：
１）ＦｃＲｎタンパク質（又はそのフラグメント）の精製−このＦｃＲｎタンパク質はマトリクスにコンジュゲートされ、親和性カラムとして、又は（抗ＦｃＲｎの修飾形態として）沈殿剤として（例えば、任意選択に抗Ｆｃ試薬によって沈殿される、Ｆｃの付加によって修飾され（又は完全長ＩｇＧとして作製され）得る別の分子によって認識されるドメインで修飾された形態として）使用される。
２）生きた又は固定した、細胞上又は細胞中（インビトロでの細胞又は組織若しくは細胞切片中）のＦｃＲｎの検出及び／又は定量化。このための使用は、抗ＦｃＲｎ処置の効果を追跡するために、バイオマーカーとしてＦｃＲｎの定量化を含んでもよい。これらの目的のために、候補が、（例えば、完全長ＩｇＧ又は一部の他の部分のような、遺伝子融合タンパク質又は化学コンジュゲートとして、Ｆｃドメインの付加、例えば検出の目的に使用される蛍光タグの付加によって）修飾形態で使用されてもよい。
３）（１）及び（２）に例示した方法によって修飾された候補に結合することによって標識されたＦｃＲｎ保有細胞の精製又は分類。
また、ＦｃＲｎ活性を遮断する抗体分子などの試験分子の能力、特にＩｇＧを再利用する細胞の能力を評価するのに好適なアッセイが本発明によって提供される。このようなアッセイは抗体分子又は低分子などのＦｃＲｎ活性の阻害剤を識別するのに有用であり得、またそれ自体は、このような阻害剤の作製においてバッチ放出アッセイとして有用であり得る。
一態様において、ヒトＦｃＲｎ活性を遮断する抗体分子などの試験分子の能力、特にＩｇＧを再利用するヒトＦｃＲｎの能力を評価するのに好適なアッセイが提供され、その方法は、
ａ）ヒトＦｃＲｎアルファ鎖及びヒトβ２ミクログロブリン（β２Ｍ）を組換え発現する非ヒト哺乳動物細胞表面上に被覆するステップ、
ｂ）試験分子及びＩｇＧの両方のＦｃＲｎへの結合を可能にするのに十分な時間、約ｐＨ５．９などの弱酸性条件下で、細胞を、試験分子及び細胞により再利用されるＩｇＧと接触させ、任意選択に、ＩｇＧが再利用される前に試験分子を添加し、試験分子のＦｃＲｎへの結合を可能にするのに十分な時間、インキュベートするステップ、
ｃ）微酸性緩衝液で洗浄するステップ、及び
ｄ）細胞により内在化した及び／又は再利用されたＩｇＧの量を検出するステップ
を含む。
一態様において、ヒトＦｃＲｎ活性を遮断する抗体分子などの試験分子の能力、特にＩｇＧを再利用するヒトＦｃＲｎの能力を評価するのに好適なアッセイが提供され、その方法は、
ａ）ヒトＦｃＲｎアルファ鎖及びヒトβ２ミクログロブリン（β２Ｍ）を組換え発現する非ヒト哺乳動物細胞を表面上に被覆するステップ、
ｂ）試験抗体分子及びＩｇＧの両方のＦｃＲｎへの結合を可能にするのに十分な時間、約ｐＨ５．９などの弱酸性条件下で、細胞を、試験抗体分子及び細胞により再利用されるＩｇＧと接触させ、任意選択に、ＩｇＧが再利用される前に試験抗体分子を添加し、試験抗体分子のＦｃＲｎへの結合を可能にするのに十分な時間、インキュベートするステップ、
ｃ）微酸性緩衝液で洗浄して、未結合のＩｇＧ及び試験抗体分子を除去するステップ、及び
ｄ）細胞により再利用されたＩｇＧの量を検出するステップ
を含む。
一態様において、ヒトＦｃＲｎ活性を遮断する抗体分子などの試験分子の能力、特にＩｇＧを再利用するヒトＦｃＲｎの能力を評価するのに好適なアッセイが提供され、その方法は、
ａ）ヒトＦｃＲｎアルファ鎖及びヒトβ２ミクログロブリン（β２Ｍ）を組換え発現する非ヒト哺乳動物細胞を表面上に被覆するステップ、
ｂ）試験抗体分子及びＩｇＧの両方のＦｃＲｎへの結合を可能にするのに十分な時間、約ｐＨ５．９などの弱酸性条件下で、細胞を、試験抗体分子及び細胞により再利用されるＩｇＧと接触させ、任意選択に、ＩｇＧが再利用される前に試験抗体分子を添加し、試験抗体分子のＦｃＲｎへの結合を可能にするのに十分な時間、インキュベートするステップ、
ｃ）微酸性緩衝液で洗浄して、未結合のＩｇＧ及び試験抗体分子を除去するステップ、
ｄ）約ｐＨ７．２などの中性緩衝液中で細胞をインキュベートするステップ、
ｅ）上清内に放出されたＩｇＧの量を決定することによって細胞によって再利用されたＩｇＧの量を検出するステップ
を含む。
好適な細胞には、メイディン−ダービーイヌ腎臓細胞（ＭＤＣＫ）ＩＩ細胞が含まれる。ヒトＦｃＲｎアルファ鎖及びヒトβ２ミクログロブリン（β２Ｍ）によるＭＤＣＫ ＩＩ細胞のトランスフェクションは、Ｃｌａｙｐｏｏｌら、２００２、Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ、２７７、３１、２８０３８−２８０５０によって以前に記載されている。この論文はまた、これらのトランスフェクト細胞によるＩｇＧの再利用を記載している。
試験の間に細胞を支持するための培地には、ＭＥＭ（Ｇｉｂｃｏ＃２１０９０−０２２）、１×非必須アミノ酸（Ｇｉｂｃｏ １１１４０−０３５）、１×ピルビン酸ナトリウム（Ｇｉｂｃｏ＃１１３６０−０３９）及びＬ−グルタミン（Ｇｉｂｃｏ＃２５０３０−０２４）を含む完全培地が含まれる。
酸性洗浄液は、ＨＢＳＳ＋（ＰＡＡ＃Ｈ１５−００８）を取り、ｐＨ５．９＋／−０．５に到達するまで１ＭのＭＥＳを加えることによって調製できる。ＢＳＡ約１％も加えてもよい（Ｓｉｇｍａ＃Ａ９６４７）。
中性洗浄液は、ＨＢＳＳ＋（ＰＡＡ＃Ｈ１５−００８）を取り、ｐＨ７．２＋／−０．５に到達するまで１０ＭのＨｅｐｅｓを加えることによって調製できる。ＢＳＡ約１％も加えてもよい（Ｓｉｇｍａ＃Ａ９６４７）。
酸性緩衝液で細胞を洗浄することにより、未結合の試験抗体及び未結合のＩｇＧが除去され、更なる分析を実施することができる。ステップ（ｂ）に使用した酸性条件は、ＩｇＧのＦｃＲｎへの結合及びそのＩｇＧの内在化及び再利用を促す。
細胞の表面上のみの試験抗体又はフラグメント及びＩｇＧの量は、中性洗浄液で細胞を洗浄し、試験抗体又はＩｇＧの量を検出するために上清／洗浄物を分析することによって決定できる。重要なことに、溶解緩衝液は利用されない。細胞によって内在化されたＩｇＧの量を決定するために、抗体がまず、中性洗浄液により細胞の表面から除去され得、細胞は溶解緩衝液によって溶解され、次いで内部含有量が分析される。細胞によって再利用されたＩｇＧの量を決定するために、好適な時間、中性条件下で細胞をインキュベートし、周囲の緩衝液をＩｇＧ含有量について分析する。細胞の表面及び内部抗体含有量が必要とされる場合、細胞表面上の抗体の存在を維持するために細胞を酸性洗浄液で洗浄でき、続いて細胞溶解及び合わせた材料の分析が行われる。
ＩｇＧの内在化及び再利用の両方を測定することが望まれる場合、試料は二連で実施され、別々に行われた内在化及び再利用について試験される。
好適な溶解緩衝液には、１５０ｍＭのＮａＣｌ、２０ｍＭのＴｒｉｓ、ｐＨ７．５、１ｍＭのＥＤＴＡ、１ｍＭのＥＧＴＡ、１％のＴｒｉｔｏｎ−Ｘ１００が含まれ、各１０ｍｌについて、製造業者のガイドラインに記載されているようにプロテアーゼ阻害剤／リン酸阻害剤を加える。
典型的に、再利用されるＩｇＧが標識され、一例において、ビオチン化ヒトＩｇＧが使用されてもよい。次いで例えば、０．２ｕｇ／ｍＬのＭＳＤ遮断緩衝液にてストレプトアビジンスルホ−タグ検出抗体（ＭＳＤ＃ｒ３２ａｄ−５など）２５ｍＬを利用してＩｇＧが検出されてもよい。遮断緩衝液は、５００ｍＭのＴｒｉｓ、ｐＨ７．５、１．５ＭのＮａＣｌ及び０．２％のＴｗｅｅｎ−２０及び１．５％のＢＳＡを含んでもよい。
或いは、ＩｇＧはフルオロフォア又は同様の標識で予め標識されてもよい。
一実施形態において、好適な表面は、９６ウェルプレート又は類似物などのプラスチックプレート又はウェル、スライドガラス又は膜である。一例において、細胞は単層の形成を生じる密度にて表面上に被覆される。
一実施形態において、本明細書に記載されているアッセイは、膜の上下にわたってｐＨ勾配を用いた（例えば膜の一方の側は酸性条件であり、膜の下側は中性条件である）、その膜の上下にわたる抗体の経細胞輸送の測定ではない。
一例において、試験抗体又はフラグメント及びＩｇＧは、例えば、結合を可能にする酸性条件下で周囲温度にて約１時間、ステップ（ｂ）において細胞とインキュベートされてもよい。
一例において、試験抗体又はフラグメントは、例えば、再利用されるＩｇＧを加える前に結合を可能にする酸性条件下で周囲温度にて約１時間、ステップ（ｂ）において細胞とインキュベートされてもよい。続いて、細胞によって再利用されるＩｇＧは、例えば、結合を可能にする酸性条件下で周囲温度にて約１時間、ステップ（ｂ）において細胞とインキュベートされてもよい。
中性条件は上清内へのＩｇＧの放出を促進する。
本明細書の文脈において含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）は、包含する（ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ）を意味することを意図する。
技術的に適切な場合、本発明の実施形態は組み合わされてもよい。
実施形態は特定の特徴／要素を含むものとして本明細書に記載されている。この開示はまた、前記特徴／要素を含む又は実質的に含む別々の実施形態に拡張する。
特許及び出願などの技術的参考文献が本明細書に参照により組み込まれる。
本発明は更に、添付の図面を参照して、以下の例において例示目的のみとして記載されている。
図１は、特定のアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を示す。
図２は、特定の配列のアラインメントを示す。
図３は、本開示に係るＦａｂ’フラグメント及びそのＰＥＧ化型に対するヒトＭＤＣＫ ＩＩ上での結合の比較を示す。
図４は、ＭＤＣＫ ＩＩ細胞上でＩｇＧ再利用を阻害する本開示に係るＦａｂ’フラグメント及びそのＰＥＧ化型を示す。
図５は、本開示に係るＰＥＧ化Ｆａｂ’フラグメントが、ＭＤＣＫ ＩＩ細胞において頂部から基底外側のＩｇＧ経細胞輸送を阻害することを示す。
図６は、本開示に係るＦａｂ’フラグメント及びそのＰＥＧ化型に対するカニクイザルＭＤＣＫ ＩＩの結合の比較を示す。
図７は、本開示に係るＰＥＧ化Ｆａｂ’フラグメントが、ヒト及びそのカニクイザル型についてＭＤＣＫ ＩＩ細胞上でＩｇＧ再利用を阻害することを示す。
図８は、カニクイザルにおける血漿ＩｇＧレベルに対する本開示に係る単回投与のＰＥＧ化Ｆａｂ’分子の効果を示す。
図９は、血漿ＩｇＧレベルに対する本開示に係る１週間に４回の投与のＰＥＧ化Ｆａｂ’分子の効果を示す。
図１０は、遮断タンパク質によって阻害されたＦｃＲｎの抗体再利用機能の図表示を示す。
図１１は、精製したガンマ１ＩｇＧ抗体を使用したヒトＩｇＧ遮断アッセイに基づいたフローサイトメトリーを示す。
図１２は、正常なカニクイザルにおけるＦａｂ’ＰＥＧ単回／間欠ＩＶ投与 ２０ｍｇ／Ｋｇ １及び６７日 ＩｇＧ薬物動態を示す。
図１３は、正常なカニクイザルにおけるＦａｂ’ＰＥＧ：反復ＩＶ投与−週に１回の４×２０又は１００ｍｇ／Ｋｇ ＩｇＧ薬物動態を示す。
図１４は、正常なカニクイザルにおけるＦａｂ’ＰＥＧ単回／間欠ＩＶ投与−２０ｍｇ／Ｋｇ及び１００ｍｇ／Ｋｇ １及び６７日 ＩｇＧ薬物動態を示す。
図１５は、２０ｍｇ／Ｋｇの１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧの２回のＩＶ投与後の４匹のカニクイザルにおける血漿ＩｇＧレベルを示す。
図１６は、３日毎に１回、２０ｍｇ／Ｋｇの１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧの１０回のＩＶ投与を与えている４匹のカニクイザルにおける血漿ＩｇＧレベルを示す。
図１７は、カニクイザルにおける内因性血漿ＩｇＧに対する１５１９．ｇ５７ＩｇＧ４Ｐの２回の３０ｍｇ／ＫｇのＩＶ投与の効果を示す。
図１８は、カニクイザルにおける血漿ＩｇＧに対する３０ｍｇ／Ｋｇ、続いて５ｍｇ／Ｋｇの１５１９．ｇ５７ ＩｇＧ４Ｐの４１日投与の効果を示す。
図１９は、カニクイザルにおける血漿ＩｇＧに対するビヒクルによる毎日投与の結果を示す。
図２０は、ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７Ｆａｂ’ＰＥＧ又はＰＢＳ ＩＶで処置したｈＦｃＲｎトランスジェニックマウスの血漿中のＩＶ ｈＩｇＧの増加したクリアランスを示す。
図２１は、ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ＩｇＧ１又はＩｇＧ４又はＰＢＳ ＩＶで処置したｈＦｃＲｎトランスジェニックマウスの血漿中のＩＶ ｈＩｇＧの増加したクリアランスを示す。
図２２は、ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７Ｆａｂ’−ヒト血清アルブミン又はＰＢＳ ＩＶで処置したｈＦｃＲｎトランスジェニックマウスの血漿中のＩＶ ｈＩｇＧの増加したクリアランスを示す。
図２３は、ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ＦａｂＦｖ又はＰＢＳ ＩＶで処置したｈＦｃＲｎトランスジェニックマウスの血漿中のＩＶ ｈＩｇＧの増加したクリアランスを示す。
図２４は、ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７Ｆａｂ又はＦａｂ’ＰＥＧ又はＰＢＳ ＩＶで処置したｈＦｃＲｎトランスジェニックマウスの血漿中のＩＶ ｈＩｇＧの増加したクリアランスを示す。
図２５は、Ｆａｂ−ｄｓＦｖと称される、本発明の二重特異性抗体融合タンパク質を示す。
Ｂ細胞培養及び抗体スクリーニングのための材料を生成するために以下の免疫化を実施した：
Ｓｐｒａｇｕｅ Ｄａｗｌｅｙラットを、変異ヒトＦｃＲｎ（Ｌ３２０Ａ；Ｌ３２１Ａ）（Ｏｂｅｒら、２００１ Ｉｎｔ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３、１５５１−１５５９）及びマウスβ２Ｍを共発現するＮＩＨ３Ｔ３マウス線維芽細胞の３回の皮下注射により免疫化し、ヒトＦｃＲｎ細胞外ドメインの４回目の最後の追加免疫をした。ＨＥＫ−２９３細胞上での変異ＦｃＲｎへの両方の結合について、及びＡｌｅｘａｆｌｕｏｒ４８８により標識したヒトＩｇＧの結合を防ぐその能力について血清をモニターした。両方の方法をフローサイトメトリーによって実施した。結合に関して、フィコエリトリン（ＰＥ）により標識した抗マウス又はラットＦｃ特異的二次試薬を、血清中のＩｇＧの結合を明らかにするために使用した。
Ｚｕｂｌｅｒら（１９８５）に記載されているものと同様の方法を使用してＢ細胞培養物を調製した。手短に述べると、約５０００個の細胞／ウェルの密度でＢ細胞を、１０％ＦＣＳ（ＰＡＡ ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ ｌｔｄ）、２％ＨＥＰＥＳ（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ）、１％Ｌ−グルタミン（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ）、１％ペニシリン／ストレプトマイシン溶液（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ）、０．１％β−メルカプトエタノール（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ）、２〜５％活性化ウサギ脾細胞培養上清及びガンマ線を照射したＥＬ−４−Ｂ５マウス胸腺腫細胞（５×１０４個／ウェル）を補足した２００μｌ／ウェルのＲＰＭＩ１６４０培地（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ）を含むバーコード化した９６ウェル組織培養プレート中で、５％ＣＯ２雰囲気下、３７℃にて７日間、培養した。
標的抗原源として変異ＦｃＲｎを一過性にトランスフェクトしたＨＥＫ−２９３細胞（表面安定化した）を使用した均一な蛍光ベースの結合アッセイを使用してＢ細胞培養上清物中のＦｃＲｎ特異的抗体の存在を決定した。１０ｕｌの上清を、Ｍａｔｒｉｘ Ｐｌａｔｅｍａｔｅ液体ハンドラーを使用して、バーコード化した９６ウェル組織培養プレートから、５０００個のトランスフェクトしたＨＥＫ−２９３細胞／ウェルを含有するバーコード化した３８４ウェルブラックウェルアッセイプレートに移動させた。ヤギ抗ラット又はマウスＩｇＧ Ｆｃγ特異的Ｃｙ−５コンジュゲート（Ｊａｃｋｓｏｎ）との結合が明らかになった。プレートをＡｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ８２００細胞検出システムで読み取った。３８００×９６ウェル培養プレートから、３８個の異なる免疫化動物が表れ、９８００個の抗ヒトＦｃＲｎ結合物を識別した。これは約２５億個のＢ細胞のスクリーニングを表したと推定された。
一次スクリーニング後、陽性上清を、Ａｖｉｓｏ Ｏｎｙｘヒットピッキングロボットを使用して９６ウェルのバーコード化したマスタープレート上に固定し、細胞培養プレート中のＢ細胞を−８０Ｃにて凍結した。次いで、高親和性の抗体を含有するウェル及びヒトＩｇＧのＦｃＲｎへの結合を阻害した抗体を識別するためにマスタープレートをＢｉａｃｏｒｅアッセイでスクリーニングした（以下を参照のこと）。
表面プラズモン共鳴技術（ＳＰＲ）を使用した生体分子相互作用分析を、ＢＩＡｃｏｒｅＴ２００システム（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）で実施した。１０ｍＭのＮａＡｃ、ｐＨ５緩衝液中のヤギ抗ラットＩｇＧ、Ｆｃガンマ（Ｃｈｅｍｉｃｏｎ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｃ．）を、ランニング緩衝液としてＨＢＳ−ＥＰ＋を使用して約１９５００反応単位（ＲＵ）の捕捉レベルまでアミンカップリング化学によりＣＭ５センサーチップ上に固定化した。５０ｍＭのリン酸塩、ｐＨ６＋１５０ｍＭのＮａＣｌを、親和性及び遮断アッセイのためのランニング緩衝液として使用した。Ｂ細胞培養上清を、２００ｍＭのリン酸塩、ｐＨ６＋１５０ｍＭのＮａＣｌ中に５に対して１で希釈した。５μｌ／分にて希釈したＢ細胞上清の６００秒の注射を、固定化した抗ラットＩｇＧ、Ｆｃによる捕捉のために使用した。１００ｎＭにてヒトＦｃＲｎを、３０μｌ／分にて１８０秒間、捕捉したＢ細胞培養上清に対して注射し、続いて３６０秒解離した。ヒトＩｇＧ（Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ）を６０秒にわたって注射し、３０μｌ／分にて１８０秒解離した。
抗体の親和性定数（ＫＤ）を決定し、ＩｇＧ結合を遮断した抗体を決定するためにＴ２００評価ソフトウェア（バージョン１．０）を使用してデータを分析した。代替のアッセイとして、マスタープレート上清もまた、細胞ベースのヒトＩｇＧ遮断アッセイにおいてスクリーニングした。マスタープレートからの２５ｕｌのＢ細胞培養上清を９６ウェルＵ底ポリプロピレンプレートに加えた。次いで変異ｈＦｃＲｎトランスフェクトＨＥＫ−２９３細胞（２５ｕｌのＰＢＳ ｐＨ６／１％ＦＣＳ中の５０，０００個の細胞／ウェル）を各ウェルに加え、４℃にて１時間、インキュベートした。細胞を１５０ｕｌのＰＢＳ培地で２回洗浄した。次いで細胞を、７．５ｕｇ／ｍｌにてＡｌｅｘａｆｌｕｏｒ４８８又は６４９で標識したヒトＩｇＧを含有する５０ｕｌ／ウェルのＰＢＳ／ＦＣＳ培地中に再懸濁し、４℃にて１時間インキュベートした。次いで細胞を１５０ｕｌの培地で２回洗浄し、次いで固定剤として１％ホルムアルデヒドを含有する３５ｕｌ／ウェルのＰＢＳ／ＦＣＳ培地中で再懸濁した。次いでプレートをＦＡＣＳ Ｃａｎｔｏ２フローサイトメーターで読み取った。例のデータを図１１に与える。対象のウェルの選択から抗体可変領域遺伝子の回復を可能にするために、Ｂ細胞の異種集団を含有した所与のウェル中の抗原特異的Ｂ細胞の識別を可能にするためにデコンボルーションステップを実施しなければならなかった。これは蛍光ｆｏｃｉ法を使用して達成した。手短に述べると、陽性ウェル由来の免疫グロブリン分泌Ｂ細胞を、ビオチン化ヒトＦｃＲｎで被覆したストレプトアビジンビーズ（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ）及びヤギ抗ラット又はマウスＦｃγフラグメント特異的ＦＩＴＣコンジュゲート（Ｊａｃｋｓｏｎ）の１：１２００の最終希釈物と混合した。３７℃にて１時間の静的インキュベーションの後、抗原特異的Ｂ細胞周囲の蛍光ハロの存在のためにそのＢ細胞を識別できた。Ｏｌｙｍｐｕｓ顕微鏡を使用して識別した、これらの個々のＢ細胞を次いで、エッペンドルフマイクロマニピュレーターを用いて採取し、ＰＣＲチューブ内に堆積させた。蛍光ｆｏｃｉは２６８個の選択したウェルから生成した。
抗体可変領域遺伝子を、重鎖及び軽鎖可変領域特異的プライマーを使用した逆転写ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ）−ＰＣＲによって単一細胞から回収した。２ラウンドのＰＣＲを、マウスγ１ ＩｇＧ（ＶＨ）又はマウスカッパ（ＶＬ）哺乳動物発現ベクター内への可変領域のクローニングを可能にする、３’及び５’末端において制限部位を組み込んだネスティド２°ＰＣＲを用いてＡｖｉｓｏ Ｏｎｙｘ液体操作ロボットで実施した。対になった重鎖及び軽鎖構築物を、フェクチン２９３（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を使用してＨＥＫ−２９３細胞内に共トランスフェクトし、１ｍｌの体積で４８ウェルプレート中で培養した。５〜７日の発現後、上清を収集し、抗体を更なるスクリーニングに供した。
ＰＣＲにより、選択したウェルのうちの１５６個から単一のＢ細胞由来の重鎖及び軽鎖同種対を首尾よく回収した。クローニングした可変領域遺伝子のＤＮＡ配列分析により、組換え抗体の固有のファミリーの数を識別した。発現後、一過性上清を、ヒトＩｇＧ ＦＡＣＳ遮断（上記）及びＩｇＧ再利用アッセイの両方において調べた。一部の場合、精製したマウスγ１ ＩｇＧを作製し、試験した（データをそれに基づいて標識した）。
再利用アッセイは、９６ウェルプレートの２５，０００個の細胞／ウェルにて沈着したヒトＦｃＲｎ及びベータ２ミクログロブリンを過剰発現するＭＤＣＫ ＩＩ細胞（以下の例４及び５に記載したクローン３４）を使用した。これらは３７℃、５％ＣＯ２にて一晩インキュベートした。細胞をＨＢＳＳ＋Ｃａ／Ｍｇ ｐＨ７．２＋１％ＢＳＡを用いて洗浄し、次いで３７℃、５％ＣＯ２にて１時間、５０μｌの様々な濃度のＨＥＫ−２９３一過性上清又は精製した抗体とインキュベートした。上清を除去し、５０μｌのＨＢＳＳ＋Ｃａ／Ｍｇ ｐＨ５．９＋１％ＢＳＡ中の５００ｎｇ／ｍｌのビオチン化ヒトＩｇＧ（Ｊａｃｋｓｏｎ）を細胞に加え、３７℃、５％ＣＯ２にて１時間、インキュベートした。次いで細胞をＨＢＳＳ＋Ｃａ／Ｍｇ ｐＨ５．９中で３回洗浄し、１００μｌのＨＢＳＳ＋Ｃａ／Ｍｇ ｐＨ７．２を細胞に加え、３７℃、５％ＣＯ２にて２時間、インキュベートした。上清を細胞から除去し、抗ヒトＩｇＧ捕捉抗体（Ｊａｃｋｓｏｎ）及びストレプトアビジン−スルホタグ露出抗体（ＭＳＤ）と共にＭＳＤアッセイを使用して全ＩｇＧについて分析した。阻害曲線を非線形回帰によって分析してＩＣ５０値を決定した。
これらのアッセイの実施に基づいて、配列番号１〜６に示される６個のＣＤＲを含む抗体のファミリーを選択した。抗体ＣＡ１７０＿０１５１９は最適な活性を有し、ヒト化のために選択した。
（例１）ヒト化方法
抗体ＣＡ１７０＿０１５１９を、ヒト生殖細胞抗体Ｖ領域フレームワーク上にラット抗体Ｖ領域からＣＤＲをグラフトすることによってヒト化した。抗体の活性を回復させるために、ラットＶ領域由来の複数のフレームワーク残基もまた、ヒト化配列内に保持した。Ａｄａｉｒら（１９９１）（ヒト化抗体（Ｈｕｍａｎｉｓｅｄ ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ）ＷＯ９１／０９９６７）によって概説されたプロトコルを使用してこれらの残基を選択した。ヒト生殖細胞（アクセプター）Ｖ領域配列を有するラット抗体（ドナー）Ｖ領域配列のアラインメントを、設計したヒト化配列と一緒に図２Ａ及び２Ｂに示す。ドナーからアクセプター配列にグラフトしたＣＤＲは、Ｃｈｏｔｈｉａ／Ｋａｂａｔ定義の組合せが使用されている（Ａｄａｉｒら、１９９１ヒト化抗体（Ｈｕｍａｎｉｓｅｄ ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ．）ＷＯ９１／０９９６７）ＣＤＲ−Ｈ１を除いて、Ｋａｂａｔ（Ｋａｂａｔら、１９８７）によって定義されている通りである。ヒトＶ領域ＶＫ１ ２−１−（１）Ａ３０プラスＪＫ２ Ｊ領域（Ｖ ＢＡＳＥ、ｈｔｔｐ：／／ｖｂａｓｅ．ｍｒｃ−ｃｐｅ．ｃａｍ．ａｃ．ｕｋ／）を軽鎖ＣＤＲのためのアクセプターとして選択した。ヒトＶ領域ＶＨ３ １−３ ３−０７プラスＪＨ４ Ｊ領域（Ｖ ＢＡＳＥ、ｈｔｔｐ：／／ｖｂａｓｅ．ｍｒｃ−ｃｐｅ．ｃａｍ．ａｃ．ｕｋ／）を、重鎖ＣＤＲについてのアクセプターとして選択した。
複数のバリアント重鎖及び軽鎖Ｖ領域配列をコードする遺伝子を設計し、これらをＥｎｔｅｌｅｃｈｏｎ ＧｍｂＨによる自動化合成アプローチによって構築した。重鎖及び軽鎖Ｖ領域の両方の更なるバリアントを、オリゴヌクレオチド指定突然変異によりＶＨ及びＶＫ遺伝子を修飾することによって創出した。これらの遺伝子を、哺乳動物及び大腸菌細胞中のヒト化１５１９Ｆａｂ’の発現を可能にするために複数のベクター内にクローニングした。バリアント鎖及びそれらの組合せを、大腸菌におけるそれらの発現、親抗体に対するそれらの有効性、それらの生物物理学的特性及び下流プロセシングについての適合性について評価し、ｇＬ２０軽鎖グラフト及びｇＨ２０重鎖グラフトの選択を導いた。最後に選択したｇＬ２０及びｇＨ２０グラフト配列をそれぞれ図２Ａ及び２Ｂに示す。このＶ領域対合は１５１９．ｇ５７と命名した。
グラフトｇＬ２０における軽鎖フレームワーク残基は、ドナー残基ロイシン（Ｌ３６）、フェニルアラニン（Ｆ３７）及びイソロイシン（Ｉ５８）がそれぞれ保持されていた、残基３６、３７及び５８（Ｋａｂａｔ番号付け）を除いて、全てヒト生殖細胞系列遺伝子由来である。これらの３つの残基の保持はヒト化Ｆａｂ’の完全な有効性に必須であった。グラフトｇＨ２０における重鎖フレームワーク残基は、ドナー残基プロリン（Ｐ３）、バリン（Ｖ２４）、セリン（Ｓ７６）、トレオニン（Ｔ９３）及びトレオニン（Ｔ９４）がそれぞれ保持されていた、残基３、２４、７６、９３及び９４（Ｋａｂａｔ番号付け）を除いて、全てヒト生殖細胞系列遺伝子由来である。これらの５個の残基の保持は、ヒト化Ｆａｂ’の完全な有効性に重要であった。
大腸菌における発現に関して、ヒト化重鎖及び軽鎖Ｖ領域遺伝子を、ヒトＣ−カッパ定常領域（Ｋｌｍ３アロタイプ）及びヒトガンマ−１ＣＨ−１ヒンジ領域（Ｇｌｍ１７アロタイプ）をコードするＤＮＡを含有する、ＵＣＢ発現ベクターｐＴＴＯＤ内にクローニングした。大腸菌ＦｋｐＡ遺伝子もまた、発現プラスミド内に組み込んだので、このシャペロンタンパク質の共発現は、Ｆａｂ’発現を誘導するためにＩＰＴＧを使用した、バッチ供給発酵の間、大腸菌株ＭＸＥ０１６（ＷＯ２０１１／０８６１３６に開示されている）においてヒト化Ｆａｂ’の収率を改良することが見出された。１５１９Ｆａｂ’軽鎖及び重鎖並びにＦｋｐＡポリペプチドは全て、ＩＰＴＧ誘導性ｔａｃプロモーターの制御下で単一のマルチシストロンから発現した。
哺乳動物細胞における発現に関して、ヒト化軽鎖Ｖ領域遺伝子を、ヒトカッパ鎖定常領域（Ｋｍ３アロタイプ）をコードするＤＮＡを含有する、ＵＣＢ−Ｃｅｌｌｔｅｃｈヒト軽鎖発現ベクターｐＭｈＣＫ内でクローニングした。ヒト化重鎖Ｖ領域遺伝子を、変異Ｓ２４１Ｐ（Ａｎｇａｌら、Ｍｏｌ Ｉｍｍｕｎｏｌ．１９９３、３０（１）：１０５−８）を安定化するヒンジを有するヒトガンマ−４重鎖定常領域をコードするＤＮＡを含有する、ＵＣＢ−Ｃｅｌｌｔｅｃｈヒトガンマ−４重鎖発現ベクターｐＭｈｇ４Ｐ ＦＬ内でクローニングした。ＨＥＫ２９３懸濁細胞内の軽鎖及び重鎖ベクターの共トランスフェクションを、２９３フェクチン（１２３４７−０１９Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を使用して達成し、ヒト化組換え１５１９抗体の発現を与えた。
（例１Ａ）１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’−ＰＥＧコンジュゲートの調製
大腸菌のペリプラズムにおいて発現したＦａｂ’を、熱抽出によって細胞から抽出した。Ｆａｂ’は酸性溶出を用いたプロテインＧ親和性精製によって精製した。Ｆａｂ’は減少し、４０ｋＤａのＰＥＧ（ＳＵＮＢＲＩＧＨＴ ＧＬ２−４００ＭＡ３）によりＰＥＧ化された。ＰＥＧは抗体フラグメントにおける１つ又は複数のチオール基にマレイミド基を介して共有結合する。ＰＥＧ化の効果がＳＥ−ＨＰＬＣにより確認された。Ｆａｂ’ＰＥＧは陽イオン交換クロマトグラフィーによって未ＰＥＧ化Ｆａｂ’及びｄｉＦａｂ’から分離した。画分をＳＥ−ＨＰＬＣ及びＳＤＳ−ＰＡＧＥから分析した。不純物のレベルを最小化するためにプールを実施した。最後の試料を濃縮し、所望の緩衝液中に透析濾過した。
（例１Ｂ）ヒト血清アルブミンとコンジュゲートした１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’（抗ヒトＦｃＲｎ）の調製
抗ヒトＦｃＲｎ Ｆａｂ’１５１９．ｇ５７を、動物研究のために後で使用されるヒト血清アルブミン（組換え体由来）と化学的にコンジュゲートした。
・ヒト血清アルブミン：出芽酵母（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）において組換え的に作製された２０％ｗ／ｖ溶液として提供されるＮｏｖｏｚｙｍｅ製のＲｅｃｏｍｂｕｍｉｎ（カタログ番号：２００−０１０）。
・１５１９．ｇ５７Ｆａｂ’：０．１Ｍリン酸ナトリウム、２ｍＭのＥＤＴＡ、ｐＨ６．０（反応緩衝液）中に提供される３０ｍｇ／ｍｌ
・Ｔｈｅｒｍｏｆｉｓｈｅｒ製の１，６−ビスマレイミドヘキサン（ＢＭＨ）（カタログ番号２２３３０）
アルブミンの還元：還元緩衝液中で調製した新たに調製したシステアミン塩酸塩（Ｓｉｇｍａカタログ番号：３００７８）を使用してアルブミンを還元した。アルブミン溶液にシステアミン塩酸塩を１０倍のモル過剰にて加え、次いで３０分間、３７℃の水浴にてインキュベートした。還元後、ＰＤ１０カラム（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅカタログ番号１７−０８５１−０１）を使用して溶液を脱塩して、あらゆる過剰な還元剤を除去した。
ＢＭＨリンカーの添加：
１，６−ビスマレイミドヘキサンのストック溶液を、ジメチルホルムアミドを使用してガラスバイアル中で調製した。ＢＭＨの完全な溶解を確実にするためにこの溶液をボルテックスした。ＢＭＨ溶液をアルブミン濃度に対して１０倍モル過剰にて脱塩した還元型アルブミン溶液に加えた。次いでこの溶液を３７℃にて３０分間インキュベートし、続いて適切な混合を確実にするためにローラ上で室温にて一晩インキュベートした。白色の沈殿物が見られ、それをベンチトップ遠心分離機を使用して沈降させた。反応が完了した後、ＰＤ１０カラムを使用して溶液を脱塩した。
１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’の還元
還元緩衝液中で調製した新たに調製したシステアミン塩酸塩（Ｓｉｇｍａカタログ番号：３００７８）を使用して１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’を還元した。１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’溶液に、システアミン塩酸塩を１０倍モル過剰にて加え、次いで３０分間、３７℃の水浴にてインキュベートした。還元後、ＰＤ１０カラム（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅカタログ番号：１７−０８５１−０１）を使用して溶液を脱塩してあらゆる過剰な還元剤を除去した。
還元型Ｆａｂ及びアルブミン−ＢＭＨの混合
等量（モルの点で）の還元型Ｆａｂ’及びアルブミン−リンカーを加え、室温にて一晩ローラミキサ上でインキュベートした。
親和性精製：
次いで、アルブミン−Ｆａｂコンジュゲート及び遊離アルブミンに結合したブルーセファロースを使用して上記の混合物を親和性精製した。精製は本明細書に簡潔に述べられている製造業者の指示書に従って実施した：
ブルーセファロースをＤＰＢＳ ｐＨ７．４中で再構成し、ＰＢＳで３回洗浄した。洗浄後、Ｆａｂ及びリンカーが結合したアルブミンの混合物を加え、ローラミキサ上で１時間、室温にてインキュベートした。インキュベーション後、ＰＢＳを用いてマトリクスを再び洗浄してあらゆる未結合の材料を除去し、次いで２ＭのＫＣｌを含有するＰＢＳ７．４で溶出した。
サイズ排除精製：
親和性精製した材料はいくらかの未反応のＨＳＡと共にＦａｂにコンジュゲートしたアルブミンを含有した。これは更なる浄化を必要とし、これはサイズ排除クロマトグラフィー（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ製のＳ２００ １６×６０）を使用して達成した。最後のプールした画分はＤＰＢＳ ｐＨ７．４中に示された。最後の１５１９．ｇ５７Ｆａｂ−ＨＳＡコンジュゲートをＤＰＢＳ ｐＨ７．４中に２０ｍｇ／ｍｌまで濃縮し、分析的サイズ排除クロマトグラフィー（タンデムにおいてＡｇｉｌｅｎｔ Ｚｏｒｂａｘ ＧＦ２５０及びＧＦ４５０）で分析し、主に単量体コンジュゲートであることが見出された。エンドトキシンアッセイもまた、実施し、試料はエンドトキシン含有量の特定した下限値以下であることが見出された。
（例２）ＩｇＧ再利用アッセイにおけるＦａｂ’及びＦａｂ’ＰＥＧ候補分子のスクリーニング
機能的細胞アッセイにおいてＦｃＲｎ活性を遮断する候補Ｆａｂ’ＰＥＧ分子の能力を決定するために、分子をＩｇＧ再利用アッセイ（例５により詳細に記載されている）においてスクリーニングした。手短に述べると、酸性緩衝液中にビオチン化ヒトＩｇＧを添加する前に、ＭＤＣＫ ＩＩクローン３４細胞を候補Ｆａｂ’又はＦａｂ’ＰＥＧとプレインキュベートした。細胞を洗浄して全ての過剰なＩｇＧを除去し、次いで、ＩｇＧの上清内への放出を促進するために中性ｐＨ緩衝液中でインキュベートした。上清内に放出したＩｇＧの量をＭＳＤアッセイによって測定し、ＥＣ５０値を算出した。ＩｇＧ再利用を阻害するヒト化Ｆａｂ’及びＦａｂ’ＰＥＧ候補分子のＥＣ５０値を以下の表に示す。ＰＥＧ化すると、全ての候補抗体について有効性の損失が存在するが、この程度は候補に依存して変化する。
ＩｇＧ再利用アッセイにおけるＦａｂ’及びＦａｂ’ＰＥＧ分子についての平均ＥＣ５０値。
ヒトＦｃＲｎ及びベータ２ミクログロブリンで安定にトランスフェクトしたＭＤＣＫ ＩＩクローン３４細胞を９６ウェルプレート中で２５，０００個の細胞／ウェルにし、３７℃、５％ＣＯ２にて一晩インキュベートした。５００ｎｇ／ｍｌのビオチン化ヒトＩｇＧ（Ｊａｃｋｓｏｎ）を添加する前に細胞をＨＢＳＳ＋（Ｃａ／Ｍｇ）ｐＨ５．９＋１％ＢＳＡ中で、３７℃、５％ＣＯ２にて１時間、候補Ｆａｂ’又はＦａｂ’ＰＥＧとインキュベートし、更に１時間インキュベートした。細胞をＨＢＳＳ＋ｐＨ５．９で洗浄し、次いでＨＢＳＳ＋ｐＨ７．２中で３７℃、５％ＣＯ２にて２時間、インキュベートした。上清を細胞から除去し、ＭＳＤアッセイ（抗ヒトＩｇＧ捕捉抗体（Ｊａｃｋｓｏｎ）及びストレプトアビジン−スルホタグ露出抗体（ＭＳＤ）を使用した）を使用して全ＩｇＧについて分析した。阻害曲線を非線形回帰（Ｇｒａｐｈｐａｄ Ｐｒｉｓｍ（登録商標））によって分析してＥＣ５０を決定した。表１は２〜７回の実験から合わせたデータを表す。
（例３）ｈＦｃＲｎ結合に対する親和性
表面プラズモン共鳴技術（ＳＰＲ）を使用した生体分子相互作用分析を、Ｂｉａｃｏｒｅ Ｔ２００システム（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）で実施し、ヒトＦｃＲｎ細胞外ドメインに対する結合を測定した。ヒトＦｃＲｎ細胞外ドメインは、ヒトＦｃＲｎアルファ鎖細胞外ドメイン（配列番号１０５）とβ２ミクログロブリン（β２Ｍ）（配列番号９５）との間の非共有複合体として提供した。１０ｍＭのＮａＡｃ、ｐＨ５緩衝液中のＡｆｆｉｎｉｐｕｒｅ Ｆ（ａｂ’）２フラグメントヤギ抗ヒトＩｇＧ、Ｆ（ａｂ’）２フラグメント特異的（Ｆａｂ’−ＰＥＧ捕捉について）又はＦｃフラグメント特異的（ＩｇＧ１又はＩｇＧ４捕捉について）（Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂ，Ｉｎｃ．）を、ランニング緩衝液としてＨＢＳ−ＥＰ＋（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）を使用して４０００〜５０００反応単位（ＲＵ）の間の捕捉レベルまでアミンカップリング化学によりＣＭ５センサーチップ上に固定化した。
５０ｍＭのリン酸塩、ｐＨ６＋１５０ｍＭのＮａＣｌ＋０．０５％Ｐ２０又はＨＢＳ−Ｐ、ｐＨ７．４（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）を親和性アッセイのためのランニング緩衝液として使用した。抗ｈＦｃＲｎ Ｆａｂ’−ＰＥＧ、ＩｇＧ１又はＩｇＧ４Ｐのいずれかの関連抗体を、ランニング緩衝液中で５μｇ／ｍｌ（Ｆａｂ’−ＰＥＧ）、０．３μｇ／ｍｌ（ＩｇＧ１）又は４μｇ／ｍｌ（ＩｇＧ４）に希釈した。１０μｌ／分におけるＦａｂ’−ＰＥＧ又はＩｇＧ１若しくはＩｇＧ４の６０秒の注射を、固定化した抗ヒトＩｇＧ、Ｆ（ａｂ’）２による捕捉のために使用した。ヒトＦｃＲｎ細胞外ドメインを、３０μｌ／分にて３００秒間、捕捉した抗ＦｃＲｎ抗体（Ｆａｂ’−ＰＥＧ、ＩｇＧ１又はＩｇＧ４）に対して２０ｎＭ〜１．２５ｎＭまで滴定し、続いて１２００秒解離した。表面を１０μｌ／分にて２×６０秒の５０ｍＭのＨＣｌにより再生成した。
Ｔ２００評価ソフトウェア（バージョン１．０）を使用してデータを分析した。

これらの実験において、Ｆａｂ’ＰＥＧは、ｐＨ６において約４２ｐＭ及びｐＨ７．４において約５６ｐＭの平均親和性を有した。

表３Ａ及び３Ｂは、ｐＨ６及びｐＨ７．４の両方におけるＦａｂ’−ＰＥＧについて観察されたものと一致する完全長抗体の親和性を示す。
（例４）細胞ベースの有効性
ジェネティシン選択マーカーを有するヒトＦｃＲｎ及びヒトＢ２Ｍ二重遺伝子ベクターで安定にトランスフェクトしていたメイディン−ダービーイヌ腎臓（ＭＤＣＫ）ＩＩ細胞を使用して細胞ベースのアッセイを実施した。ヒトＩｇＧを再利用でき、経細胞輸送できる安定な細胞クローンを選択し、これを全ての後の研究について使用した。それはＭＤＣＫ ＩＩクローン３４と称される。
ヒトＦｃＲｎについてのＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧの細胞ベースのアッセイ
ＭＤＣＫ ＩＩクローン３４細胞及びＡｌｅｘａＦｌｕｏｒ４８８により標識したＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’又はＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧを使用して定量的フローサイトメトリー実験を実施した。様々な抗体濃度にわたるＦｃＲｎに対する抗体の特異的結合を使用してＫＤを決定した。血漿（ｐＨ７．４）又はエンドソーム（ｐＨ６）に見出されるものと匹敵する環境ｐＨが抗体結合に対して何らかの効果を有するかどうかを決定するために中性及び酸性緩衝液の両方で分析を実施した。
図３は、ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’（図３Ａ）及びＦａｂ’ＰＥＧ（図３Ｂ）についての代表的な結合曲線を示す。平均ＫＤ値（ｎ＝２又は３）は、それぞれ、中性緩衝液中で１．６６ｎＭ及び６．５ｎＭ並びに酸性緩衝液中で１．５９ｎＭ及び５．４２ｎＭであった（表４を参照のこと）。
図３は、酸性及び中性ｐＨにおいてＭＤＣＫ ＩＩクローン３４細胞上で結合するＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’（Ａ）及びＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧ（Ｂ）を示す。
ＭＤＣＫ ＩＩクローン３４細胞を、ｐＨ７．４又はｐＨ６のいずれかで、Ａｌｅｘａ−ｆｌｕｏｒ４８８により標識したＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’を添加する前にＦａｃｓ緩衝液（０．２％ｗ／ｖＢＳＡ、０．０９％ｗ／ｖＮａＮ３を含むＰＢＳ）中で３０分間、又はＦａｂ’ＰＥＧを添加する前にＦａｃｓ緩衝液中で１時間、インキュベートした。最終抗体濃度は９３１ｎＭ〜０．００２ｎＭの範囲であった。細胞を氷冷Ｆａｃｓ緩衝液中で洗浄し、次いでＧｕａｖａフローサイトメトリー（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ、ＵＫ）を使用してフローサイトメトリーによって分析した。滴定データセットもまた、非特異的結合を決定するために各抗体フォーマットについてのアイソタイプ対照抗体のために作った。異なる量の蛍光色素を含むビーズから生成した標準曲線から補間値を使用して結合抗体のモル数を計算した。幾何平均蛍光値を細胞及びビーズのフローサイトメトリー分析において決定した。非特異的結合は抗ＦｃＲｎ抗体値から差し引き、生成した特異的結合曲線を、１部位結合方程式（Ｇｒａｐｈｐａｄ Ｐｒｉｓｍ（登録商標））を使用して非線形回帰によって分析してＫＤを決定した。データは２又は３回の実験の代表である。ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧは酸性及び中性の両方のｐＨにおいて細胞で発現したヒトＦｃＲｎに結合でき、決定したＫＤ値は当量のＦａｂ’分子の約３．５〜４倍低い。
（例５）機能的細胞ベースのアッセイ
ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧはヒトＩｇＧの再利用を阻害する
ＦｃＲｎ発現は主に細胞内であり（Ｂｏｒｖａｋ Ｊら １９９８、Ｉｎｔ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１０（９）１２８９−９８及びＣａｕｚａ Ｋら ２００５、Ｊ．Ｉｎｖｅｓｔ．Ｄｅｒｍａｔｏｌ．、１２４（１）、１３２−１３９）、エンドソーム及びリソソーム膜に関連している。ＩｇＧのＦｃ部分は酸性ｐＨ（＜６．５）においてＦｃＲｎに結合するが、中性生理的ｐＨ（７．４）においては結合せず（Ｒｈａｇａｖａｎ Ｍら １９９５）、このｐＨ依存性はＩｇＧの再利用を促進する。
一旦、そのＩｇＧが飲作用により吸収され、酸性エンドソームに入ると、ＦｃＲｎに結合したＩｇＧは細胞表面までＦｃＲｎと共に再利用されるのに対して、生理的に中性のｐＨにおいてＩｇＧは放出される（Ｏｂｅｒ ＲＪら ２００４、Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、１７２、２０２１−２０２９）。あらゆるＦｃＲｎに結合していないＩｇＧはリソソーム分解経路に入る。
インビトロアッセイは、ＦｃＲｎのＩｇＧ再利用能力を阻害するＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧ又はＦａｂ’の能力を検査するために確立された。手短に述べると、ＭＤＣＫ ＩＩクローン３４細胞を、ＦｃＲｎへの結合を可能にするために、酸性緩衝液（ｐＨ５．９）中のビオチン化ヒトＩｇＧを添加する前に、ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’又はＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７Ｆａｂ’ＰＥＧの存在又は非存在下でインキュベートした。全ての過剰な抗体を除去し、表面が露出した結合ＩｇＧの上清内への放出を可能にする中性ｐＨ緩衝液（ｐＨ７．２）中で細胞をインキュベートした。再利用され、それにより上清内に放出されたＩｇＧの量を検出するためにＭＳＤアッセイを使用してＦｃＲｎの阻害を追跡した。
図４は、ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７がＭＤＣＫ ＩＩクローン３４細胞内でＩｇＧ再利用を阻害することを示す。ＭＤＣＫ ＩＩクローン３４細胞を、９６ウェルプレート中に２５，０００個の細胞／ウェルで播種し、３７℃、５％ＣＯ２にて一晩インキュベートした。細胞を、５００ｎｇ／ｍｌのビオチン化ヒトＩｇＧ（Ｊａｃｋｓｏｎ）を添加する前に、３７℃、５％ＣＯ２にて１時間、ＨＢＳＳ＋（Ｃａ／Ｍｇ）ｐＨ５．９＋１％ＢＳＡ中のＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’又はＦａｂ’ＰＥＧとインキュベートし、更に１時間インキュベートした。細胞をＨＢＳＳ＋ｐＨ５．９で洗浄し、次いで３７℃、５％ＣＯ２にて、ＨＢＳＳ＋ｐＨ７．２中で２時間、インキュベートした。上清を細胞から除去し、ＭＳＤアッセイ（抗ヒトＩｇＧ捕捉抗体（Ｊａｃｋｓｏｎ）及びストレプトアビジン−スルホタグ露出抗体（ＭＳＤ）を使用した）を使用して全ＩｇＧについて分析した。阻害曲線を非線形回帰（Ｇｒａｐｈｐａｄ Ｐｒｉｓｍ（登録商標））によって分析してＥＣ５０を決定した。グラフは６又は７回の実験から合わせたデータを表す。図４に示したように、ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’及びＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧは、それぞれ、１．９３７ｎＭ及び６．０３４ｎＭの平均ＥＣ５０値（ｎ＝６又は７）を有して濃度依存的にＩｇＧ再利用を阻害する。従って、ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧは、ＩｇＧ再利用の阻害においてＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’より約３倍低い有効性である。
ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧはヒトＩｇＧの経細胞輸送を阻害する
ＦｃＲｎは、頂部から基底外側及び基底外側から頂部の方向の両方において極性上皮細胞層を横切ってＩｇＧを輸送できるので、粘膜関門において循環と管腔との間でＩｇＧを移動させ得るのに重要な役割を果たす（Ｃｌａｙｐｏｏｌら ２００４ Ｍｏｌ Ｂｉｏｌ Ｃｅｌｌ １５（４）：１７４６−５９）。
インビトロアッセイは、ＦｃＲｎ依存性ＩｇＧ経細胞輸送を阻害するＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧの能力を検査するために確立された。手短に述べると、ＭＤＣＫ ＩＩクローン３４細胞を２４ウェルトランスウェルプレート中に播種し、３日間にわたって単層を形成させた。次いで細胞を、ＦｃＲｎへの結合を促進する酸性緩衝液中のビオチン化ヒトＩｇＧを添加する前に頂端面上でＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧとプレインキュベートした。ヒトＩｇＧは頂部から基底外側まで細胞を介して経細胞輸送し、下方チャンバにおいて中性緩衝液中に放出する。次いで基底外側におけるＩｇＧのレベルを、ＭＳＤアッセイを使用して測定した。
図５は、ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧが、ＭＤＣＫ ＩＩクローン３４細胞において頂部から基底外側までのＩｇＧ経細胞輸送を阻害することを示す。
ＭＤＣＫ ＩＩクローン３４細胞を、２４ウェルトランスウェルプレートの５００，０００個の細胞／ウェルにて播種し、単層が形成するまで、３７℃、５％ＣＯ２にて３日間、インキュベートした。ＨＢＳＳ＋（Ｃａ／Ｍｇ）緩衝液＋１％ＢＳＡ中で頂部区画のｐＨを５．９に調整し、基底外側を７．２に調整した。頂部区画上の細胞を、３７℃、５％ＣＯ２にて４時間、示した濃度にて、２．５μｇ／ｍｌのビオチン化ヒトＩｇＧ（Ｊａｃｋｓｏｎ）を添加する前に１時間、ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧとプレインキュベートした。次いで基底外側培地を集め、全ＩｇＧをＭＳＤアッセイ（抗ヒトＩｇＧ捕捉抗体（Ｊａｃｋｓｏｎ）及びストレプトアビジン−スルホタグ露出抗体（ＭＳＤ）を使用した）によって測定した。阻害曲線を非線形回帰（Ｇｒａｐｈｐａｄ Ｐｒｉｓｍ（登録商標））によって分析してＥＣ５０を決定した。グラフは３回の実験から合わせたデータを表す。
要約すると、図５は、ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧが、２５．５ｎＭ（ｎ＝３）のＥＣ５０値で濃度依存的にヒトＩｇＧの頂部から基底外側までの経細胞輸送を阻害し得ることを示す。
ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧのインビトロ効果の要約
ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧは、ＩｇＧ再利用及び経細胞輸送の両方を阻害する。ＩｇＧ再利用アッセイにおいて達成した６ｎＭのＥＣ５０は、中性緩衝液中の６．５ｎＭ及び酸性緩衝液中の５．４２ｎＭのＫＤ値が得られた、細胞親和性結合データに匹敵する。ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧは、Ｆａｂ’のみと比較して有効性のわずかな減少を示すが、評価した多くの他の候補分子と比較して、２つのフォーマット（上記参照）の間で有効性の最も低い低下を示した。ＩｇＧ経細胞輸送アッセイにおいて、２５．５ｎＭのＥＣ５０が得られた。この部分におけるデータにより、ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧがヒトＦｃＲｎ機能を阻害できることが明らかに示された。
（例６）非ヒト霊長類ＦｃＲｎとのＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧの公差反応
非ヒト霊長類ＰＫ／ＰＤ研究及び前臨床毒物学におけるＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧの使用を検証するために、カニクイザルマカクＦｃＲｎを用いてその相対的親和性及び機能的能力を検査した。ＭＤＣＫ ＩＩ細胞をカニクイザルマカクＦｃＲｎで安定にトランスフェクトし、Ｂ２Ｍ（ＭＤＣＫ ＩＩ（ｃｍ））を、ヒトＦｃＲｎ及びＢ２Ｍ（ＭＤＣＫ ＩＩクローン３４）で安定にトランスフェクトした以前に記載されたＭＤＣＫ ＩＩ細胞と共に以下の研究に使用した。
カニクイザルＦｃＲｎに対するＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧの細胞ベースの親和性
カニクイザルＦｃＲｎに対するＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧの細胞ベースの結合親和性を決定するために、ＭＤＣＫ ＩＩ（ｃｍ）細胞及びＡｌｅｘａＦｌｕｏｒ ４８８により標識したＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’又はＦａｂ’ＰＥＧを使用して定量的フローサイトメトリー実験を実施した。様々な抗体濃度にわたるカニクイザルマカクＦｃＲｎへの抗体の特異的結合を使用してＫＤを決定した。中性及び酸性ｐＨの両方において抗体結合を実施して、中性血漿又は酸性エンドソーム中でＦｃＲｎを結合する効果を決定し、それにより、カニクイザルマカクＦｃＲｎに対するＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７結合に対していくらかの効果的なｐＨが存在したことを決定した。
図６は、酸性及び中性ｐＨにおいてＭＤＣＫ ＩＩ（ｃｍ）細胞上で結合するＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’（Ａ）及びＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧ（Ｂ）示す。
ＭＤＣＫ ＩＩ（ｃｍ）細胞を、ｐＨ７．４又はｐＨ６のいずれかで、Ａｌｅｘａ−ｆｌｕｏｒ ４８８により標識したＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’を添加する前に３０分間、Ｆａｃｓ緩衝液（０．２％ｗ／ｖＢＳＡ、０．０９％ｗ／ｖＮａＮ３を含むＰＢＳ）中で、又はＦａｂ’ＰＥＧを添加する前に１時間、Ｆａｃｓ緩衝液中でインキュベートした。最終抗体濃度は９３１ｎＭ〜０．００２ｎＭの範囲であった。細胞を氷冷Ｆａｃｓ緩衝液中で洗浄し、次いでＧｕａｖａフローサイトメトリー（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ、ＵＫ）を使用してフローサイトメトリーによって分析した。滴定データセットもまた、非特異的結合を決定するために各抗体フォーマットについてのアイソタイプ対照抗体のために作った。種々の量の蛍光色素を有するビーズから生成した標準曲線から補間値を使用することによって結合した抗体のモル数を計算した。細胞及びビーズのフローサイトメトリー分析においてゲノム平均蛍光値を決定した。非特異的結合は抗ＦｃＲｎ抗体値から差し引き、生成した特異的結合曲線を１部位結合方程式（Ｇｒａｐｈｐａｄ Ｐｒｉｓｍ（登録商標））を使用した非線形回帰によって分析してＫＤを決定した。データは２から３回の間の実験の代表である。
図６は、カニクイザルマカクＦｃＲｎに結合するＣＡ１７００１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’（図６Ａ）及びＦａｂ’ＰＥＧ（図６Ｂ）についての代表的な結合曲線を示す。ＣＡ１７００１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’及びＦａｂ’ＰＥＧについて得られた平均ＫＤ値を表５に示す。これらの値は、ヒトＦｃＲｎに結合するＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’及びＦａｂ’ＰＥＧについて得られたＫＤ値に匹敵する（表４を参照のこと）。
ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧはカニクイザルＩｇＧの再利用を阻害する
ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧが、カニクイザルＦｃＲｎを遮断するのに機能的に活性であるかどうかを決定するために、ＭＤＣＫ ＩＩ（ｃｍ）細胞を使用して、ヒトＦｃＲｎアッセイについて以前に記載されているようにカニクイザルマカクＩｇＧの再利用を阻害するＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧの能力を検査した。このアッセイは２つの間の比較を可能にするために代表的なヒトアッセイと共に実施した。
手短に述べると、ＭＤＣＫ ＩＩ細胞（クローン３４又はｃｍ）を、ＦｃＲｎへの結合を可能にするために酸性緩衝液中にビオチン化ヒト（ｈ）又はカニクイザルマカク（ｃ）ＩｇＧを添加する前にＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧとプレインキュベートした。全ての過剰なＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧ及びビオチン化ＩｇＧを除去し、ＩｇＧの上清への放出を可能にするために細胞を中性ｐＨ緩衝液中でインキュベートした。ＦｃＲｎの阻害を、ＭＳＤアッセイによって上清に存在したＩｇＧの量を検出することによって評価し、阻害パーセントを計算した。
図７に示すように、ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧは濃度依存的にヒト及びカニクイザルマカクＩｇＧ再利用の両方を阻害でき、それぞれ８．４４８ｎＭ及び５．９８８ｎＭのＥＣ５０値を有する。ヒト及びカニクイザルマカクアッセイにおいてＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧによるＦｃＲｎの阻害は同等であるが、ヒトがカニクイザルＦｃＲｎよりわずかに有効であるように見える。
図７は、ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７がＭＤＣＫ ＩＩクローン３４細胞及びＭＤＣＫ ＩＩ（ｃｍ）細胞においてＩｇＧ再利用を阻害することを示す。
ＭＤＣＫ ＩＩクローン３４及びＭＤＣＫ ＩＩ（ｃｍ）細胞を９６ウェルプレート中で２５，０００個の細胞／ウェルにて播種し、３７℃、５％ＣＯ２にて一晩インキュベートした。細胞を、５００ｎｇ／ｍｌのビオチン化ヒト又はカニクイザルＩｇＧを添加する前に、３７℃、５％ＣＯ２にて１時間、ＨＢＳＳ＋（Ｃａ／Ｍｇ）ｐＨ５．９＋１％ＢＳＡ中のＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’又はＦａｂ’ＰＥＧとプレインキュベートし、更に１時間インキュベートした。次いで細胞をＨＢＳＳ＋ ｐＨ５．９で洗浄し、３７℃、ＨＢＳＳ＋ ｐＨ７．２中で５％ＣＯ２にて２時間インキュベートした。上清を細胞から除去し、ＭＳＤアッセイ（抗ヒトＩｇＧ捕捉抗体（Ｊａｃｋｓｏｎ）及びストレプトアビジン−スルホタグ露出抗体（ＭＳＤ）を使用した）を使用して全ＩｇＧについて分析した。阻害曲線を非線形回帰（Ｇｒａｐｈｐａｄ Ｐｒｉｓｍ（登録商標））により分析してＥＣ５０を決定した。グラフは２回の実験から合わせたデータを表す。
（例７）カニクイザルにおける０５１９ｇ Ｆａｂ ＰＥＧの効果
これは、単一、間欠又は反復投与レジメンにおける、カニクイザルにおける０５１９ｇ Ｆａｂ ＰＥＧの投与の効果の研究であった。単回投与として又は反復投与において、表７に示した４匹のカニクイザルの群に静脈内注入によって０５１９ｇ Ｆａｂ ＰＥＧを投与した。血漿ＩｇＧ及び０１５１９ｇ Ｆａｂ ＰＥＧの薬物動態を、イムノアッセイ（イムノアッセイ法について表７Ａを参照のこと）及びＬＣ−ＭＳ／ＭＳによってモニターした。血漿アルブミンのアッセイはＣｏｖａｎｃｅにて行った。

血漿ＩｇＧ濃度に対する効果
イムノアッセイ及びＬＣ−ＭＳ／ＭＳ血漿ＩｇＧデータは十分に一致した。血漿ＩｇＧはＦａｂ ＰＥＧの投与によって減少した（図１２及び図１４を参照のこと）。Ｉ相投与群の両方に関して、Ｆａｂ ＰＥＧの単回投与は血漿ＩｇＧを約７０〜８０％減少させ、ほぼ７日で最低に達し、６３日で投与前のレベルに戻った。６７日における再投与は同様の結果を達成した。
ＩＩ相投与群の両方に関して、Ｆａｂ ＰＥＧの週に４回の投与は血漿ＩｇＧを約７０〜８０％減少させ、最初の投与のほぼ７日後に再び最低に達した。この結果を図１３に示す。
（例８）カニクイザルにおけるＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧ及びＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ ＩｇＧ４Ｐの効果
内因性血漿ＩｇＧに対するＣＡ１７０＿０１５１９ｇ．５７ Ｆａｂ’ＰＥＧ及びＣＡ１７０＿０１５１９ｇ．５７ ＩｇＧ４Ｐの効果をカニクイザルにおいて決定した。４匹の動物／処置群で、表８に示したように動物に投与した。血漿ＩｇＧ及び抗ＦｃＲｎ実体の薬物動態を、イムノアッセイ（イムノアッセイ法について表８Ａを参照のこと）及びＬＣ−ＭＳ／ＭＳによってモニターした。

血漿ＩｇＧ濃度に対する効果
イムノアッセイ及びＬＣ−ＭＳ／ＭＳ血漿ＩｇＧデータは十分に一致した。血漿ＩｇＧは抗ＦｃＲｎ Ｆａｂ’ＰＥＧ又は抗ＦｃＲｎ ＩｇＧ４Ｐの投与によって減少した（図１５及び１６並びに図１７及び１８のそれぞれを参照のこと；対照について図１９を参照のこと）。抗ＦｃＲｎ実体の両方に関して、単回投与は、血漿ＩｇＧを約７０〜８０％減少させ、ほぼ７日で最低に達し、６２日で投与前のレベルに戻った。記載されているように、６３日又は６５日における再投与は同様の結果を達成した。
抗ＦｃＲｎ Ｆａｂ’ＰＥＧ又はＩｇＧ４Ｐの反復投与は、血漿ＩｇＧを約６０〜８０％減少させ、投与期間の間、ＩｇＧのレベルを維持した。再び、最初の投与のほぼ７日後に最低に達した。この結果を図１６及び１８に示す。
（例９）ｈＦｃＲｎトランスジェニックマウスにおけるＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧ、ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ ＩｇＧ１、ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ ＩｇＧ４Ｐ、ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＨＳＡ、ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ ＦａｂＦｖ及びＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂの効果
ヒトＩＶＩＧのクリアランスに対する抗体ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７の様々な異なるフォーマットの効果をヒトＦｃＲｎトランスジェニックマウスにおいて決定した。試験したフォーマットは、ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧ、ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ ＩｇＧ１、ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ ＩｇＧ４Ｐ、ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＨＳＡ、ＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ ＦａｂＦｖ及びＣＡ１７０＿０１５１９．ｇ５７ Ｆａｂであり、この結果をそれぞれ図２０、２１、２２、２３及び２４に示す。活性化合物の単回投与は図に示した通りであった。ヒトＩｇＧ（ＩＶＩＧ）のクリアランスに対するそれらの効果を検出するために、マウスに５００ｍｇ／ｋｇのヒトＩＶＩＧを注射し、そのヒトＩＶＩＧを、間隔をあけてマウスの尾から取り出した一連の血漿試料中でＬＣＭＳＭＳによって定量した。試験した異なる抗体フォーマットの各々によるｈＦｃＲｎの遮断の結果、ｈＩＶＩＧの促進したクリアランスが生じ、対照マウスと比較して低濃度の全ＩｇＧが観察された。
抗ＦｃＲｎ処置はｈＦｃＲｎトランスジェニックマウスにおいてｈＩｇＧのクリアランスを向上させる
ヒト化したＦｃＲｎトランスジェニックマウス（Ｂ６．Ｃｇ−Ｆｃｇｒｔｔｍ１ＤｃｒＴｇ（ＦＣＧＲＴ）３２Ｄｃｒ／ＤｃｒＪ、ＪＡＸマウス）に、５００ｍｇ／ｋｇのヒトＩｇＧ（Ｈｕｍａｎ ＩｇＩ １０％Ｇａｍｕｎｅｘ−ｃ、Ｔａｌｅｃｒｉｓ Ｂｉｏｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ）を静脈内注入した。２４時間後、動物にビヒクル対照（ＰＢＳ）又は抗ＦｃＲｎを単回投与として静脈内に投与した。尾端血液試料を、抗ＦｃＲｎ処置に対して−２４、８、２４、４８、７２、１４４及び１９２時間に採った。ｈＦｃＲｎマウスにおけるヒトＩｇＧの血清レベル及びＦｃＲｎ阻害剤の薬物動態をＬＣ−ＭＳ／ＭＳによって決定した。図２０〜２４に提示したデータは３〜６匹／処置群での平均±ＳＥＭである。
ＬＣ−ＭＳ／ＭＳによるヒトＩｇＧ、内因性カニクイザルＩｇＧ及びＦｃＲｎ阻害剤の定量化
トリプシン消化後、液体クロマトグラフィータンデム質量分析（ＬＣ−ＭＳ／ＭＳ）法を使用してヒトＩｇＧ、カニクイザルＩｇＧ及びＦｃＲｎ阻害剤（１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＰＥＧ、１５１９．ｇ５７ ＩｇＧ４Ｐ、１５１９．ｇ５７ ＩｇＧ１、１５１９．ｇ５７ ＦａｖＦｖ、１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ及び１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’ＨＡＳ）を定量した。
内部標準として使用したスパイクしたウマミオグロブリンを用いて、ブランクマトリクス内に既知の濃度にてスパイクした真の標準材料との比較によって定量を行った。調査した対象の全ての検体に固有の（「プロテオティピック（ｐｒｏｔｅｏｔｙｐｉｃ）」）ペプチドを選択し、試料及び校正試料の両方を以下に概説するようにトリプシンにより消化した。
手短に述べると、アセトニトリル／トリス（２−カルボキシエチル）ホスフィン及びヨードアセトアミドでのカルバミド−メチル化（全てＳｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ製、Ｐｏｏｌｅ、ＵＫ）による変性後、シークエンシンググレード修飾トリプシン（Ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ Ｇｒａｄｅ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｔｒｙｐｓｉｎ）（Ｐｒｏｍｅｇａ、Ｓｏｕｔｈａｍｐｔｏｎ、ＵＫ）を使用して５μｌの血清試料のトリプシン消化を一晩実施した。
１．５ｍＬ／分にて６分にわたって送達した２〜９５％（ｖ／ｖ）水／アセトニトリル（０．１％ギ酸）の勾配を用いて、Ｏｎｙｘ Ｍｏｎｏｌｉｔｈｉｃ Ｃ１８カラム（１００×４．６ｍｍ、Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ、Ｍａｃｃｌｅｓｆｉｅｌｄ、ＵＫ）を使用して検体を分離した。
注入量は１０μＬであり、溶出液の全てを質量分析計ソース内に導入した。
質量分析計のソース温度は６００℃に維持し、他のソースパラメータ（例えば、衝突エネルギー、デクラスタリング電位、カーテンガス圧力など）を最適化して、対象の各ペプチドの感度の最大化を達成した。対象の各々のプロテオティピックペプチドのための選択的遷移をモニターした。
（例１０）結晶学及び結合エピトープ
結晶化を容易にするためにＦｃＲｎオリゴ糖（ｏｌｉｇｓａｃｃｈａｒｉｄｅ）は排除して、１５１９ｇ５７ Ｆａｂ’の結晶構造及び脱グリコシル化したヒトＦｃＲｎ細胞外ドメイン（ベータ２ミクログロブリン配列番号９５と会合するアルファ鎖細胞外ドメイン（配列番号１０５））を決定した。１５１９．ｇ５７ Ｆａｂ’を１０倍モル過剰のＮ−エチルマレイミドと反応させて、ｄｉＦａｂ’の形成を防ぎ、いくらかの既存のｄｉＦａｂ’をＳＥＣ（Ａｋｔａ ＦＰＬＣによるＳ２００）によって除去した。ヒトＦｃＲｎ細胞外ドメインをＰＮＧａｓｅＦによって処置して、Ｎ結合糖を除去した。このために、ＰＢＳ（ｐＨ７．４）を使用してＦｃＲｎ試料濃度を５ｍｇ／ｍｌ及び全量１ｍｌに調整した。２００単位のＰＮＧａｓｅＦ（Ｒｏｃｈｅ）をヒトＦｃＲｎのこの溶液に添加した。これを３７℃にて約１８時間インキュベートし、その後、ＳＤＳ ＰＡＧＥを使用して脱グリコシル化の程度を調べた。反応の完了時に、脱グリコシル化したＦｃＲｎは、５０ｍＭの酢酸ナトリウム、１２５ｍＭのＮａＣｌ、ｐＨ６．０に交換した緩衝液であった。
室温にて６０分間、試薬の混合物（Ｆａｂ’：ＦｃＲｎ：：１．２：１、ｗ／ｗ）のインキュベーションによって複合体を形成させ、次いで、ＳＥＣ（Ａｋｔａ ＦＰＬＣを使用したＳ２００）を使用して精製した。Ｑｉａｇｅｎから入手可能である様々な条件（約２０００の条件）を使用してスクリーニングを実施した。Ｆｏｒｍｕｌａｔｒｉｘ Ｒｏｃｋ Ｉｍａｇｅｒ １０００によってインキュベーション及び画像化を実施した（合計２１日間のインキュベーション）。スクリーニングの結果を表９、１０及び１１に示す。


１５１９ｇ５７ Ｆａｂ’の結合時に、（公開された構造のＦｃＲｎとのこの複合体と比較して）ＦｃＲｎ構造の明らかな変化は存在しなかった。結晶構造から、二次構造含有量はα−ヘリックス９．４％；β−シート４５．２％；３〜１０ターン２．５％であると計算した。
１５１９ｇ５７ Ｆａｂ’と相互作用する残基は、全てＦｃＲｎ α鎖（β２Ｍではない）内にあり、以下に太字で示す。関連のある残基は全てを含むが、残基の１つがＦｃを結合するのに重要である。１５１９ｇ５７はＦｃ結合領域と重複する領域で結合し、１５１９ｇ５７ Ｆａｂ’によるＦｃＲｎの遮断は単に競合によりものであり、抗ＦｃＲｎがその優れた親和性のために効果的であることが示唆される。
１５１９ｇ５７ Ｆａｂ’との相互作用に関与する残基（太字）及びＩｇＧのＦｃとの相互作用に重要な残基（下線）を示す、ＦｃＲｎα鎖配列。後者の１つ以外は全て前者に含まれる。

Claims (22)

  1. 配列番号２９に示される配列を含む重鎖及び配列番号１５に示される配列を含む軽鎖を有する、抗ＦｃＲｎ抗体又はその結合フラグメント。
  2. 抗体がｓｃＦｖ、Ｆｖ、Ｆａｂ又はＦａｂ’フラグメントである、請求項１に記載の抗ＦｃＲｎ抗体又はその結合フラグメント。
  3. 配列番号３６に示される配列を含む重鎖及び配列番号２２に示される配列を含む軽鎖を有する、請求項２に記載の抗ＦｃＲｎ抗体Ｆａｂ’フラグメント。
  4. 抗体又はその結合フラグメントが、デンプン、アルブミン及びポリエチレングリコールから選択されるポリマーにコンジュゲートされている、請求項１から３までのいずれか一項に記載の抗ＦｃＲｎ抗体又はその結合フラグメント。
  5. ポリマーが、例えば５〜５０ｋＤａまでの範囲の分子量を有する、ＰＥＧである、請求項４に記載の抗ＦｃＲｎ抗体又はその結合フラグメント。
  6. 抗体が完全長抗体である、請求項１に記載の抗ＦｃＲｎ抗体。
  7. 完全長抗体がＩｇＧ１、ＩｇＧ４及びＩｇＧ４Ｐからなる群から選択される、請求項６に記載の抗ＦｃＲｎ抗体。
  8. 配列番号７２又は配列番号９１又は配列番号４３に示される配列を含む重鎖及び配列番号２２に示される配列を含む軽鎖を有する、請求項６又は請求項７に記載の抗ＦｃＲｎ抗体。
  9. 抗体又はその結合フラグメントが、配列番号５０に示される配列を含む重鎖及び配列番号４６又は配列番号７８に示される配列を含む軽鎖を有するＦａｂ−ｄｓＦｖである、請求項１に記載の抗ＦｃＲｎ抗体又はその結合フラグメント。
  10. １００ｐＭ以下のヒトＦｃＲｎに対する結合親和性を有する請求項１〜９のいずれか一項に記載の抗ＦｃＲｎ抗体又はその結合フラグメント。
  11. ｐＨ６及びｐＨ７．４にて測定した場合、ヒトＦｃＲｎに対する結合親和性が１００ｐＭ以下である、請求項１０に記載の抗ＦｃＲｎ抗体又はその結合フラグメント。
  12. ヒトＩｇＧのヒトＦｃＲｎへの結合を遮断する、請求項１から１１までのいずれか一項に記載の抗ＦｃＲｎ抗体又はその結合フラグメント。
  13. β２ミクログロブリンに結合しない、請求項１から１２までのいずれか一項に記載の抗ＦｃＲｎ抗体又はその結合フラグメント。
  14. 請求項１から１３までのいずれか一項に記載の抗体の重鎖及び／又は軽鎖（単数又は複数）をコードする単離されたＤＮＡ。
  15. 請求項１４に記載の１つ又は複数のＤＮＡ配列を含むクローニング又は発現ベクター。
  16. ベクターが、（ｉ）配列番号３７に示される配列及び配列番号２３に示される配列又は（ｉｉ）配列番号８２に示される配列及び配列番号７９に示される配列又は（ｉｉｉ）配列番号１０３に示される配列及び配列番号９４に示される配列を含む、請求項１５に記載のベクター。
  17. 請求項１５又は請求項１６に記載の１つ又は複数のクローニング又は発現ベクターを含む宿主細胞。
  18. 薬学的に許容される賦形剤、希釈剤又は担体の１つ又は複数と組み合わされた請求項１から１３までのいずれか一項に記載の抗ＦｃＲｎ抗体又はその結合フラグメントを含む、医薬組成物。
  19. 他の活性成分を更に含む、請求項１８に記載の医薬組成物。
  20. 治療に使用するための、請求項１から１３までのいずれか一項に記載の抗体若しくはその結合フラグメント又は請求項１８若しくは１９に記載の組成物。
  21. 自己免疫疾患の治療に使用するための、請求項１から１３までのいずれか一項に記載の抗体若しくはその結合フラグメント又は請求項１８若しくは１９に記載の組成物。
  22. 自己免疫疾患は、重症筋無力症、視神経脊髄炎、ＣＩＤＰ、ギランバレー症候群、パラプロテイン血症多発性神経炎、難治性てんかん、ＩＴＰ／ＴＴＰ、溶血性貧血、グッドパスチャー症候群、ＡＢＯ不適合、ループス腎炎、腎血管炎、強皮症、線維化性肺胞炎、拡張型心筋症、グレーブス病、１型糖尿病、自己免疫性糖尿病、天疱瘡、尋常性天疱瘡、ＡＮＣＡ関連血管炎、皮膚筋炎、シェーグレン病および関節リウマチから選択される、自己免疫疾患の治療のための医薬の製造における請求項１〜１３のいずれかに記載の抗ＦｃＲｎ抗体又はその結合フラグメントの使用。
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