JP6471176B2 - 遺伝子発現制御のための天然型miRNAおよびその用途 - Google Patents
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Description
尚、本明細書において、「天然型miRNA」とは、天然に存在する成熟miRNAのガイド鎖とパッセンジャー鎖とを含み、かつ該成熟miRNAと同質の活性(即ち、標的遺伝子の発現抑制活性)を有する一本鎖核酸分子を意味し、ガイド鎖およびパッセンジャー鎖以外の部分に人工の構成要素を含むことを妨げない。
X領域とY領域とを有する一本鎖核酸であり、
前記X領域の3’末端と前記Y領域の5’末端とが、非ヌクレオチド構造のリンカー領域を介して連結し、
前記X領域は、成熟miRNAの(a)ガイド鎖配列または(b)パッセンジャー鎖配列を含み、
(a)の場合、前記Y領域は、前記成熟miRNAのパッセンジャー鎖配列を含み、
(b)の場合、前記Y領域は、前記成熟miRNAのガイド鎖配列を含み、
前記ガイド鎖配列と前記パッセンジャー鎖配列とが、二重鎖構造を形成することを特徴とする。
本発明の天然型miRNAは、前述のように、
X領域とY領域とを有する一本鎖核酸であり、
前記X領域の3’末端と前記Y領域の5’末端とが、非ヌクレオチド構造のリンカー領域を介して連結し、
前記X領域は、成熟miRNAの(a)ガイド鎖配列または(b)パッセンジャー鎖配列を含み、
(a)の場合、前記Y領域は、前記成熟miRNAのパッセンジャー鎖配列を含み、
(b)の場合、前記Y領域は、前記成熟miRNAのガイド鎖配列を含み、
前記ガイド鎖配列と前記パッセンジャー鎖配列とが、二重鎖構造を形成することを特徴とする。
前記X領域がガイド配列を含むか(a)、パッセンジャー鎖配列を含むか(b)は、必ずしも制限されないが、好ましくは、ガイド鎖配列とパッセンジャー鎖配列とは、天然に存在するpre−miRNAと同じ方向(即ち、5’→3’方向もしくは3’→5’方向)に配置される。即ち、天然に存在するpre−miRNAが5’方向からガイド鎖−ループ領域−パッセンジャー鎖の順序で配置されている場合、本発明の天然型miRNAは、前記X領域にガイド鎖配列を含むことが好ましく、逆に、天然に存在するpre−miRNAが3’方向からガイド鎖−ループ領域−パッセンジャー鎖の順序で配置されている場合、本発明の天然型miRNAは、前記X領域にパッセンジャー鎖配列を含むことが好ましい。
後述の実施例でいえば、miR−34aやlet−7aは前記X領域にガイド鎖配列を含むことが好ましく、miR−29bは前記X領域にパッセンジャー鎖配列を含むことが好ましい。
また、本発明の天然型miRNAは、ガイド鎖配列とパッセンジャー鎖配列とが、非ヌクレオチド構造のリンカー分子を介して連結されているため、比較的長いヌクレオチドループを有するpre−miRNAをもとにした一本鎖核酸分子に比べ、合成が容易かつ安価に提供でき、薬物動態や細胞内移行性にも優れる。
以下の説明では、前記X領域が前記ガイド鎖配列を含む場合を例にとって詳述するが、当業者であれば、以下の記載から、前記X領域が前記パッセンジャー鎖配列を含む態様における本発明の天然型miRNAの構成を容易に理解することができる。
オーバーハングの長さ(O)=[Y領域の全長の塩基数(Y)]−[X領域の全長の塩基数(X)]
但し、多くの成熟miRNAは、パッセンジャー鎖の3’末端に、ガイド鎖と対形成しないオーバーハングを有しているので、前記Y領域において、前記パッセンジャー鎖の3’末端側に、さらに人工のオーバーハングを付加する必要がない場合が多い。
hsa−miR−34a(配列番号1/配列番号2)
UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGU /CAAUCAGCAAGUAUACUGCCCU
hsa−let−7a(配列番号3/配列番号4)
UGAGGUAGUAGGUUGUAUAGUU /CUAUACAAUCUACUGUCUUUC
hsa−let−7f(配列番号5/配列番号6)
UGAGGUAGUAGAUUGUAUAGUU /CUAUACAAUCUAUUGCCUUCCC
hsa−miR−150(配列番号7/配列番号8)
UCUCCCAACCCUUGUACCAGUG /CUGGUACAGGCCUGGGGGACAG
hsa−miR−29b(配列番号10/配列番号9)
GCUGGUUUCAUAUGGUGGUUUAGA /UAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU
ここで、各ヌクレオチド配列は、ガイド鎖配列/パッセンジャー配列(hsa−miR−29bのみパッセンジャー鎖配列/ガイド鎖配列)の順で、それぞれ5’→3’方向に記載している。
let−7aのガイド鎖は、例えば、HMGA2(high mobility group AT-hook 2)、KRAS、NRAS、HRAS、MYC、TLR4等をターゲットとし、これらの標的遺伝子の発現抑制により、例えば、肺がん、大腸がん、胃がん、肝がん、乳がん等の疾患を予防または治療できる。
let−7fのガイド鎖は、例えば、HMGA2(high mobility group AT-hook 2)、KRAS、NRAS、HRAS、MYC、TLR4等をターゲットとし、これらの標的遺伝子の発現抑制により、例えば、肺がん、大腸がん、胃がん、肝がん、乳がん等の疾患を予防または治療できる。
miR−150のガイド鎖は、例えば、COL1A1、COL4A4、SMAD2、SP1等をターゲットとし、これらの標的遺伝子の発現抑制により、例えば、肺線維症、肝線維症等の疾患を予防または治療できる。
miR−29bのガイド鎖は、例えば、COL1A1、MCL1、DNMT3A、DNMT3B、TCL1A、TGFb3等をターゲットとし、これらの標的遺伝子の発現抑制により、例えば、肺がん、大腸がん、胃がん、肝がん、乳がん、肺線維症、肝線維症等の疾患を予防または治療できる。
Q11およびQ12は、それぞれ独立して、単結合、CH2(メチレン基)、NH(イミノ基)、C=O(カルボニル基)、C=S(チオカルボニル基)、C=NH(イミノメチレン基)、O、またはSであり、
Q1およびQ2は、それぞれ独立して、単結合、CH2(メチレン基)、NH(イミノ基)、C=O(カルボニル基)、C=S(チオカルボニル基)、C=NH(イミノメチレン基)、O、またはSであり、
Y1およびY2は、それぞれ独立して、単結合、CH2、NH、OまたはSであり;
L1は、n個の炭素原子を有するアルキレン鎖であり、アルキレン炭素原子上の水素原子は、OH、ORa、NH2、NHRa、NRaRb、SH、もしくはSRaで置換されても置換されていなくてもよく、または、
L1は、前記アルキレン鎖の一つ以上の炭素原子が、酸素原子で置換されたポリエーテル鎖であり、
ただし、Y1が、NH、OまたはSの場合、Y1に結合するL1の原子は炭素であり、OR1に結合するL1の原子は炭素であり、酸素原子同士は隣接せず;
L2は、m個の炭素原子を有するアルキレン鎖であり、アルキレン炭素原子上の水素原子は、OH、ORc、NH2、NHRc、NRcRd、SHもしくはSRcで置換されても置換されていなくてもよく、または、
L2は、前記アルキレン鎖の一つ以上の炭素原子が、酸素原子で置換されたポリエーテル鎖であり、
ただし、Y2が、NH、OまたはSの場合、Y2に結合するL2の原子は炭素であり、OR2に結合するL2の原子は炭素であり、酸素原子同士は隣接せず;
Ra、Rb、RcおよびRdは、それぞれ独立して、置換基または保護基であり;
mは、0〜30の範囲の整数であり;
nは、0〜30の範囲の整数であり;
前記X領域および前記Y領域は、それぞれ、−OR1−または−OR2−を介して、前記リンカー残基に結合し、
ここで、R1およびR2は、存在しても存在しなくてもよく、存在する場合、R1およびR2は、それぞれ独立して、ヌクレオチド残基または前記構造(I−0)であり、
Aは、任意の原子団である。
条件(1)
前記X領域は、−OR2−を介して、前記Y領域は、−OR1−を介して、前記式(I)の構造と結合する。
条件(2)
前記X領域は、−OR1−を介して、前記Y領域は、−OR2−を介して、前記式(I)の構造と結合する。
R100は、任意の置換基であり、存在しても存在しなくてもよく、存在する場合は、1個でも複数でもよく、複数の場合は、互いに同一でも異なっていてもよい。R100における前記任意の置換基としては、例えば、前記Ra、Rb、RcおよびRdにおいて例示する後述の置換基が挙げられ、より具体的には、例えば、ハロゲン、ヒドロキシ、アルコキシ、アミノ、カルボキシ、スルホ、ニトロ、カルバモイル、スルファモイル、アルキル、アルケニル、アルキニル、ハロアルキル、アリール、アリールアルキル、アルキルアリール、シクロアルキル、シクロアルケニル、シクロアルキルアルキル、シクリルアルキル、ヒドロキシアルキル、アルコキシアルキル、アミノアルキル、シリル、シリルオキシアルキル、ピロールイル、イミダゾリル等があげられる。また、前記化学式(Iα2)の構造が、下記化学式(Iα3)で表されることがさらに好ましい。
R100は、任意の置換基であり、存在しても存在しなくてもよく、存在する場合は、1個でも複数でもよく、複数の場合は、互いに同一でも異なっていてもよい。具体的には、例えば、前記化学式(Iα2)中のR100と同様である。また、前記化学式(Iβ2)の構造が、下記化学式(Iβ3)で表されることがさらに好ましい。
前記microRNAの配列に対する相補的配列は、それぞれ、−OR1−または−OR2−を介して、前記アミノ酸残基に結合し、
ここで、R1およびR2は、存在しても存在しなくてもよく、存在する場合、R1およびR2は、それぞれ独立して、ヌクレオチド残基または前記構造(I)であり、
Aは、任意の原子団であり、ただし、下記化学式(Ia)は、アミノ酸またはペプチドである。
R100は、任意の置換基であり、存在しても存在しなくてもよく、存在する場合は、1個でも複数でもよく、複数の場合は、互いに同一でも異なっていてもよい。R100における前記任意の置換基としては、例えば、前記Ra、Rb、RcおよびRdで例示した置換基が挙げられ、より具体的には、例えば、ハロゲン、ヒドロキシ、アルコキシ、アミノ、カルボキシ、スルホ、ニトロ、カルバモイル、スルファモイル、アルキル、アルケニル、アルキニル、ハロアルキル、アリール、アリールアルキル、アルキルアリール、シクロアルキル、シクロアルケニル、シクロアルキルアルキル、シクリルアルキル、ヒドロキシアルキル、アルコキシアルキル、アミノアルキル、シリル、シリルオキシアルキル、ピロールイル、イミダゾリル等があげられる。また、前記化学式(Ia2)の構造は、例えば、下記化学式(Ia3)であってもよい。
X1およびX2は、それぞれ独立して、H2、O、SまたはNHであり;
Y1およびY2は、それぞれ独立して、単結合、CH2、NH、OまたはSであり;
R3は、環A上のC−3、C−4、C−5またはC−6に結合する水素原子または置換基であり、
L1は、n個の原子からなるアルキレン鎖であり、ここで、アルキレン炭素原子上の水素原子は、OH、ORa、NH2、NHRa、NRaRb、SH、もしくはSRaで置換されても置換されていなくてもよく、または、
L1は、前記アルキレン鎖の一つ以上の炭素原子が、酸素原子で置換されたポリエーテル鎖であり、
ただし、Y1が、NH、OまたはSの場合、Y1に結合するL1の原子は炭素であり、OR1に結合するL1の原子は炭素であり、酸素原子同士は隣接せず;
L2は、m個の原子からなるアルキレン鎖であり、ここで、アルキレン炭素原子上の水素原子は、OH、ORc、NH2、NHRc、NRcRd、SHもしくはSRcで置換されても置換されていなくてもよく、または、
L2は、前記アルキレン鎖の一つ以上の炭素原子が、酸素原子で置換されたポリエーテル鎖であり、
ただし、Y2が、NH、OまたはSの場合、Y2に結合するL2の原子は炭素であり、OR2に結合するL2の原子は炭素であり、酸素原子同士は隣接せず;
Ra、Rb、RcおよびRdは、それぞれ独立して、置換基または保護基であり;
lは、1または2であり;
mは、0〜30の範囲の整数であり;
nは、0〜30の範囲の整数であり;
環Aは、前記環A上のC−2以外の1個の炭素原子が、窒素、酸素、硫黄で置換されてもよく、
前記環A内に、炭素−炭素二重結合または炭素−窒素二重結合を含んでもよく、
前記X領域および前記Y領域は、それぞれ、−OR1−または−OR2−を介して、前記非ヌクレオチド構造に結合し、
ここで、R1およびR2は、存在しても存在しなくてもよく、存在する場合、R1およびR2は、それぞれ独立して、ヌクレオチド残基または前記構造(II)である。
条件(1)
前記X領域は、−OR2−を介して、前記Y領域は、−OR1−を介して、前記式(II)の構造と結合する。
条件(2)
前記X領域は、−OR1−を介して、前記Y領域は、−OR2−を介して、前記式(II)の構造と結合する。
本発明の発現抑制用組成物は、前述のように、標的遺伝子の発現を抑制するための組成物であって、前記本発明の天然型miRNAを含むことを特徴とする。本発明の組成物は、前記本発明の天然型miRNAを含むことが特徴であり、その他の構成は、何ら制限されない。本発明の発現抑制用組成物は、例えば、発現抑制用試薬ということもできる。
本発明の発現抑制方法は、前述のように、標的遺伝子の発現を抑制する方法であって、前記本発明の天然型miRNAを使用することを特徴とする。本発明の発現抑制方法は、前記本発明の天然型miRNAを使用することが特徴であって、その他の工程および条件は、何ら制限されない。
本発明の疾患の治療方法は、前述のように、前記本発明の天然型miRNAを、患者に投与する工程を含み、前記天然型miRNAにおける前記ガイド鎖配列が、前記疾患に関与する遺伝子の発現を抑制する成熟miRNAのガイド鎖配列であることを特徴とする。本発明の治療方法は、前記本発明の天然型miRNAを使用することが特徴であって、その他の工程および条件は、何ら制限されない。
本発明の使用は、前記標的遺伝子の発現抑制のための、前記本発明の天然型miRNAの使用である。
成熟miR−34aのガイド鎖およびパッセンジャー鎖の配列情報(miRBase Accession No. MI0000268)に基づいて、付加配列(スペーサー)の塩基長の異なる種々の本発明の天然型miRNAを合成し、培養細胞に導入して、標的遺伝子であるAXL mRNAの発現抑制効果を調べた。
ポジティブコントロールのmiRNAとして、以下に示すガイド鎖(配列番号1)およびパッセンジャー鎖(配列番号2)からなる、二本鎖のヒト成熟miR−34a(NI−0208)、並びに、前記ガイド鎖と前記パッセンジャー鎖とを、pre−miR−34aのループ領域の配列を介して連結した一本鎖の天然型miR−34a(NM−0004)を合成した。
また、ネガティブコントロールとして、核酸データベース上で登録されているすべての配列に相補性を有さない配列とそれに相補的な配列とからなる二本鎖RNA(NI−0000)を合成した。
NM−0004(配列番号11)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGUUGUGAGCAAUAGUAAGGAAGcaaucagcaaguauacugcccu-3’
NI−0208(配列番号1/配列番号2)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGU-3’/5’-caaucagcaaguauacugcccu-3’
NI−0000(配列番号12/配列番号13)
5’-UACUAUUCGACACGCGAAGTT-3’/5’-CUUCGCGUGUCGAAUAGUATT-3’
PH−0036(配列番号14)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGU-[P]-Acaaucagcaaguauacugcccu-3’
PH−0038(配列番号15)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGUUCC-[P]-GGAAcaaucagcaaguauacugcccu-3’
PH−0066(配列番号16)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGUUCCGG-[P]-CCGGAAcaaucagcaaguauacugcccu-3’
PH−0068(配列番号17)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGUUCCGGCC-[P]-GGCCGGAAcaaucagcaaguauacugcccu-3’
前記各RNAを、2μmol/Lとなるように、注射用蒸留水(大塚製薬)に溶解し、RNA溶液を調製した。
AXL遺伝子用PCRプライマーセット
(配列番号18) 5’-CTCAACCAGGACGACTCCAT-3’
(配列番号19) 5’-AGACCGCTTCACTCAGGAAA-3’
GAPDH遺伝子用プライマーセット
(配列番号20) 5’-ATGGGGAAGGTGAAGGTCG-3’
(配列番号21) 5’-GGGTCATTGATGGCAACAATATC-3’
図2に示すように、実施例の天然型miR−34aは、ポジティブコントロールの成熟miR−34aやpre−miR−34a改変体と同程度に、AXL mRNAの発現を抑制した。また、X領域の付加配列の塩基長を変化させても、AXL mRNAの発現抑制効果は維持された。
次に、実施例1の天然型miR−34a(PH−0036)において、リンカー領域の非ヌクレオチド構造を改変して、同様にAXL mRNAの発現抑制効果を調べた。
以下に示すように、PH−0036のリンカー領域を、
下記式のリシン誘導体の非ヌクレオチド構造に置換した分子(KH−0006)、
KH−0006(配列番号14)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGU-[K]-Acaaucagcaaguauacugcccu-3’
XH−0011(配列番号14)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGU-[Gly]-Acaaucagcaaguauacugcccu-3’
XH−0013(配列番号14)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGU-[GlyGly]-Acaaucagcaaguauacugcccu-3’
XH−0015(配列番号14)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGU-[TP]-Acaaucagcaaguauacugcccu-3’
実施例1と同様に、ポジティブコントロールとして、NM−0004およびNI−0208を、ネガティブコントロールとして、NI−0000を用いた。
実施例1と同様の方法により、前記各RNAでH1299細胞(ATCC)をトランスフェクトし、AXL mRNAの発現量を求めた。
図3に示すように、リンカー領域の非ヌクレオチド構造を改変しても、AXL mRNAの発現抑制効果は維持された。
次に、実施例2で用いた、テレフタル酸誘導体の非ヌクレオチド構造のリンカー領域を有するXH−0015について、X領域に付加配列を導入した場合の効果について調べた。使用した天然型miR−34aの構造および配列を以下に示す。
XH−0015(配列番号14)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGU-[TP]-Acaaucagcaaguauacugcccu-3’
XH−0024(配列番号15)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGUUCC-[TP]-GGAAcaaucagcaaguauacugcccu-3’
その結果、図4に示すように、X領域に付加配列を加えても、AXL mRNAの発現抑制効果は維持された。
成熟let−7aのガイド鎖およびパッセンジャー鎖の配列情報(miRBase Accession No. MI0000060)に基づいて、リンカー領域の非ヌクレオチド構造の異なる種々の本発明の天然型miRNAを合成し、培養細胞に導入して、標的遺伝子であるHMGA2 mRNAの発現抑制効果を調べた。プロリン誘導体の非ヌクレオチド構造を有するリンカーを用いたものについては、X領域に付加配列を導入したものも合成した。
ポジティブコントロールのmiRNAとして、以下に示すガイド鎖(配列番号3)およびパッセンジャー鎖(配列番号4)からなる、二本鎖のヒト成熟let−7a(NI−0205)、並びに、前記ガイド鎖と前記パッセンジャー鎖とを、pre−let−7aのループ領域の配列を介して連結した一本鎖の天然型let−7a(NM−0003)を合成した。
また、ネガティブコントロールとして、前記NI−0000を使用した。
NM−0003(配列番号22)
5’-UGAGGUAGUAGGUUGUAUAGUUUUAGGGUCACACCCACCACUGGGAGAUAAcuauacaaucuacugucuuuc-3’
NI−0205(配列番号3/配列番号4)
5’-UGAGGUAGUAGGUUGUAUAGUU-3’/5’-cuauacaaucuacugucuuuc-3’
PH−0011(配列番号23)
5’-UGAGGUAGUAGGUUGUAUAGUU-[P]-AAcuauacaaucuacugucuuuc-3’
KH−0003(配列番号23)
5’-UGAGGUAGUAGGUUGUAUAGUU-[K]-AAcuauacaaucuacugucuuuc-3’
XH−0002(配列番号23)
5’-UGAGGUAGUAGGUUGUAUAGUU-[Gly]-AAcuauacaaucuacugucuuuc-3’
XH−0004(配列番号23)
5’-UGAGGUAGUAGGUUGUAUAGUU-[GlyGly]-AAcuauacaaucuacugucuuuc-3’
XH−0006(配列番号23)
5’-UGAGGUAGUAGGUUGUAUAGUU-[TP]-AAcuauacaaucuacugucuuuc-3’
PH−0014(配列番号24)
5’-UGAGGUAGUAGGUUGUAUAGUUUCC-[P]-GGAAAcuauacaaucuacugucuuuc-3’
前記各RNAを、0.2μmol/Lとなるように、注射用蒸留水(大塚製薬)に溶解し、RNA溶液を調製した。
HMGA2遺伝子用PCRプライマーセット
(配列番号25) 5’-GAAGCCACTGGAGAAAAACG-3’
(配列番号26) 5’-CTTCGGCAGACTCTTGTGAG-3’
GAPDH遺伝子用プライマーセット
(配列番号20) 5’-ATGGGGAAGGTGAAGGTCG-3’
(配列番号21) 5’-GGGTCATTGATGGCAACAATATC-3’
図5に示すように、実施例の天然型let−7aは、ポジティブコントロールの成熟let−7aやpre−let−7a改変体と同程度に、HMGA2 mRNAの発現を抑制した。また、リンカーの非ヌクレオチド構造を改変したり、X領域に付加配列を導入したりしても、HMGA2 mRNAの発現抑制効果は維持された。
成熟miR−29bのガイド鎖およびパッセンジャー鎖の配列情報(miRBase Accession No. MI0000105)に基づいて、リンカー領域の非ヌクレオチド構造の異なる種々の本発明の天然型miRNAを合成し、培養細胞に導入して、標的遺伝子であるCOL1A1 mRNAの発現抑制効果を調べた。プロリン誘導体の非ヌクレオチド構造を有するリンカーを用いたものについては、X領域に付加配列を導入したものも合成した。
ポジティブコントロールのmiRNAとして、以下に示すガイド鎖(配列番号9)およびパッセンジャー鎖(配列番号10)からなる、二本鎖のヒト成熟miR−29b(NI−0210)、並びに、前記ガイド鎖と前記パッセンジャー鎖とを、pre−miR−29bのループ領域の配列を介して連結した一本鎖の天然型miR−29b(NM−0005)を合成した。
また、ネガティブコントロールとして、前記NI−0000を使用した。
NM−0005(配列番号27)
5’-gcugguuucauauggugguuuagaUUUAAAUAGUGAUUGUCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
NI−0210(配列番号10/配列番号9)
5’-gcugguuucauauggugguuuaga-3’/5’-UAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
PH−0040(配列番号28)
5’-gcugguuucauauggugguuuaga-[P]-UCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
KH−0008(配列番号28)
5’-gcugguuucauauggugguuuaga-[K]-UCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
XH−0017(配列番号28)
5’-gcugguuucauauggugguuuaga-[Gly]-UCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
XH−0019(配列番号28)
5’-gcugguuucauauggugguuuaga-[GlyGly]-UCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
XH−0021(配列番号28)
5’-gcugguuucauauggugguuuaga-[TP]-UCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
PH−0042(配列番号29)
5’-gcugguuucauauggugguuuagaUCC-[P]-GGAUCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
また、ネガティブコントロールとして、実施例1で合成したNI−0000を使用した。
前記各RNAを、2μmol/Lとなるように、注射用蒸留水(大塚製薬)に溶解し、RNA溶液を調製した。
COL1A1遺伝子用PCRプライマーセット
(配列番号30) 5’-CCCAAGGACAAGAGGCATGT-3’
(配列番号31) 5’-CCGCCATACTCGAACTGGAA-3’
GAPDH遺伝子用プライマーセット
(配列番号20) 5’-ATGGGGAAGGTGAAGGTCG-3’
(配列番号21) 5’-GGGTCATTGATGGCAACAATATC-3’
図6に示すように、実施例の天然型miR−29bは、ポジティブコントロールの成熟miR−29bやpre−miR−29b改変体と同程度に、COL1A1 mRNAの発現を抑制した。また、リンカーの非ヌクレオチド構造を改変したり、X領域に付加配列を導入したりしても、COL1A1 mRNAの発現抑制効果は維持された。
成熟miR−34aのガイド鎖およびパッセンジャー鎖の配列情報(miRBase Accession No. MI0000268)に基づいて、リンカー領域の非ヌクレオチド構造およびX領域の付加配列の塩基長が異なる、種々の本発明の天然型miRNAを合成し、培養細胞に導入して、標的遺伝子であるAXL mRNAの発現抑制効果を調べた。
実施例1と同様の方法により、ガイド鎖(配列番号1)と付加配列(0、3、5または7塩基長)とからなるX領域と、パッセンジャー鎖の5’末端に、前記ガイド鎖のオーバーハング部分および前記付加配列に完全相補的な配列を有するY領域とが、プロリン誘導体の非ヌクレオチド構造を介して連結している天然型miR−34a(PH−0036、PH−0038、PH−0066およびPH−0068)を合成した。
KH−0006(配列番号14)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGU-[K]-Acaaucagcaaguauacugcccu-3’
KH−0018(配列番号15)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGUUCC-[K]-GGAAcaaucagcaaguauacugcccu-3’
KH−0019(配列番号16)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGUUCCGG-[K]-CCGGAAcaaucagcaaguauacugcccu-3’
XH−0015(配列番号14)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGU-[TP]-Acaaucagcaaguauacugcccu-3’
XH−0024(配列番号15)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGUUCC-[TP]-GGAAcaaucagcaaguauacugcccu-3’
XH−0042(配列番号16)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGUUCCGG-[TP]-CCGGAAcaaucagcaaguauacugcccu-3’
XH−0011(配列番号14)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGU-[Gly]-Acaaucagcaaguauacugcccu-3’
XH−0043(配列番号15)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGUUCC-[Gly]-GGAAcaaucagcaaguauacugcccu-3’
XH−0044(配列番号16)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGUUCCGG-[Gly]-CCGGAAcaaucagcaaguauacugcccu-3’
XH−0013(配列番号14)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGU-[GlyGly]-Acaaucagcaaguauacugcccu-3’
XH−0045(配列番号15)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGUUCC-[GlyGly]-GGAAcaaucagcaaguauacugcccu-3’
XH−0046(配列番号16)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGUUCCGG-[GlyGly]-CCGGAAcaaucagcaaguauacugcccu-3’
また、ポジティブコントロールとして、実施例1のNI−0208を用いた。
(2)AXL遺伝子の発現量の測定
前記各RNAの最終濃度が2nmol/Lである点以外は、実施例1と同様の方法により、AXL遺伝子の発現量を求めた。
(3)結果
図7に示すように、実施例の天然型miR−34aは、ポジティブコントロールのpre−miR−34a改変体と同程度に、AXL mRNAの発現を抑制した。また、リンカーの非ヌクレオチド構造を改変したり、X領域に付加配列を導入したりしても、AXL mRNAの発現抑制効果は維持された。
成熟let−7aのガイド鎖およびパッセンジャー鎖の配列情報(miRBase Accession No. MI0000060)に基づいて、リンカー領域の非ヌクレオチド構造およびX領域の付加配列の塩基長が異なる、種々の本発明の天然型miRNAを合成し、培養細胞に導入して、標的遺伝子であるHMGA2 mRNAの発現抑制効果を調べた。
実施例4と同様の方法により、ガイド鎖(配列番号3)と付加配列(0、3または5塩基長)とからなるX領域と、パッセンジャー鎖の5’末端に、前記ガイド鎖のオーバーハング部分および前記付加配列に完全相補的な配列を有するY領域とが、プロリン誘導体([P])、リシン誘導体([K])、テレフタル酸誘導体([TP])、グリシン誘導体([Gly])またはグリシルグリシン誘導体([GlyGly])のリンカーを介して連結している種々の天然型let−7aを合成した。前記天然型miRNAの合成において、各非ヌクレオチド構造は、実施例1および2と同様にして導入した。
PH−0011(配列番号23)
5’-UGAGGUAGUAGGUUGUAUAGUU-[P]-AAcuauacaaucuacugucuuuc-3’
PH−0014(配列番号24)
5’-UGAGGUAGUAGGUUGUAUAGUUUCC-[P]-GGAAAcuauacaaucuacugucuuuc-3’
PH−0107(配列番号32)
5’-UGAGGUAGUAGGUUGUAUAGUUUCCGG-[P]-CCGGAAAcuauacaaucuacugucuuuc-3’
KH−0003(配列番号23)
5’-UGAGGUAGUAGGUUGUAUAGUU-[K]-AAcuauacaaucuacugucuuuc-3’
KH−0020(配列番号24)
5’-UGAGGUAGUAGGUUGUAUAGUUUCC-[K]-GGAAAcuauacaaucuacugucuuuc-3’
KH−0021(配列番号32)
5’-UGAGGUAGUAGGUUGUAUAGUUUCCGG-[K]-CCGGAAAcuauacaaucuacugucuuuc-3’
XH−0006(配列番号23)
5’-UGAGGUAGUAGGUUGUAUAGUU-[TP]-AAcuauacaaucuacugucuuuc-3’
XH−0047(配列番号24)
5’-UGAGGUAGUAGGUUGUAUAGUUUCC-[TP]-GGAAAcuauacaaucuacugucuuuc-3’
XH−0048(配列番号32)
5’-UGAGGUAGUAGGUUGUAUAGUUUCCGG-[TP]-CCGGAAAcuauacaaucuacugucuuuc-3’
XH−0002(配列番号23)
5’-UGAGGUAGUAGGUUGUAUAGUU-[Gly]-AAcuauacaaucuacugucuuuc-3’
XH−0049(配列番号24)
5’-UGAGGUAGUAGGUUGUAUAGUUUCC-[Gly]-GGAAAcuauacaaucuacugucuuuc-3’
XH−0050(配列番号32)
5’-UGAGGUAGUAGGUUGUAUAGUUUCCGG-[Gly]-CCGGAAAcuauacaaucuacugucuuuc-3’
XH−0004(配列番号23)
5’-UGAGGUAGUAGGUUGUAUAGUU-[GlyGly]-AAcuauacaaucuacugucuuuc-3’
XH−0051(配列番号24)
5’-UGAGGUAGUAGGUUGUAUAGUUUCC-[GlyGly]-GGAAAcuauacaaucuacugucuuuc-3’
XH−0052(配列番号32)
5’-UGAGGUAGUAGGUUGUAUAGUUUCCGG-[GlyGly]-CCGGAAAcuauacaaucuacugucuuuc-3’
また、ポジティブコントロールとして、実施例4のNI−0205を用いた。
前記各RNAを導入する細胞がHepG2(ATCC)である点、および前記各RNAの最終濃度が0.2nmol/Lである点以外は、実施例4と同様の方法により、HMGA2遺伝子の発現量を求めた。
図8に示すように、実施例の天然型let−7aは、ポジティブコントロールのpre−let−7a改変体と同程度に、HMGA2 mRNAの発現を抑制した。また、リンカーの非ヌクレオチド構造を改変したり、X領域に付加配列を導入したりしても、HMGA2 mRNAの発現抑制効果は維持された。
成熟miR−29bのガイド鎖およびパッセンジャー鎖の配列情報(miRBase Accession No. MI0000105)に基づいて、リンカー領域の非ヌクレオチド構造およびX領域の付加配列の塩基長が異なる、種々の本発明の天然型miRNAを合成し、培養細胞に導入して、標的遺伝子であるCOL1A1 mRNAの発現抑制効果を調べた。
実施例5と同様の方法により、パッセンジャー鎖(配列番号10)と付加配列(0、3または5塩基長)とからなるX領域と、ガイド鎖の5’末端に、前記パッセンジャー鎖のオーバーハング部分および前記付加配列に完全相補的な配列を有するY領域とが、プロリン誘導体([P])、リシン誘導体([K])、テレフタル酸誘導体([TP])、グリシン誘導体([Gly])またはグリシルグリシン誘導体([GlyGly])のリンカーを介して連結している種々の天然型miR−29bを合成した。前記天然型miRNAの合成において、各非ヌクレオチド構造は、実施例1および2と同様にして導入した。
PH−0040(配列番号28)
5’-gcugguuucauauggugguuuaga-[P]-UCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
PH−0042(配列番号29)
5’-gcugguuucauauggugguuuagaUCC-[P]-GGAUCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
PH−0108(配列番号33)
5’-gcugguuucauauggugguuuagaUCCGG-[P]-CCGGAUCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
KH−0008(配列番号28)
5’-gcugguuucauauggugguuuaga-[K]-UCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
KH−0022(配列番号29)
5’-gcugguuucauauggugguuuagaUCC-[K]-GGAUCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
KH−0023(配列番号33)
5’-gcugguuucauauggugguuuagaUCCGG-[K]-CCGGAUCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
XH−0021(配列番号28)
5’-gcugguuucauauggugguuuaga-[TP]-UCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
XH−0053(配列番号29)
5’-gcugguuucauauggugguuuagaUCC-[TP]-GGAUCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
XH−0054(配列番号33)
5’-gcugguuucauauggugguuuagaUCCGG-[TP]-CCGGAUCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
XH−0017(配列番号28)
5’-gcugguuucauauggugguuuaga-[Gly]-UCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
XH−0055(配列番号29)
5’-gcugguuucauauggugguuuagaUCC-[Gly]-GGAUCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
XH−0056(配列番号33)
5’-gcugguuucauauggugguuuagaUCCGG-[Gly]-CCGGAUCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
XH−0019(配列番号28)
5’-gcugguuucauauggugguuuaga-[GlyGly]-UCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
XH−0057(配列番号29)
5’-gcugguuucauauggugguuuagaUCC-[GlyGly]-GGAUCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
XH−0058(配列番号33)
5’-gcugguuucauauggugguuuagaUCCGG-[GlyGly]-CCGGAUCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
また、ポジティブコントロールとして、実施例5のNI−0210を用いた。
前記各RNAの最終濃度が0.5nmol/Lである点以外は、実施例5と同様の方法により、COL1A1遺伝子の発現量を求めた。
図9に示すように、実施例の天然型miR−29bは、ポジティブコントロールのpre−miR−29b改変体と同程度に、COL1A1 mRNAの発現を抑制した。また、リンカーの非ヌクレオチド構造を改変したり、X領域に付加配列を導入したりしても、COL1A1 mRNAの発現抑制効果は維持された。
成熟miR−34aのガイド鎖およびパッセンジャー鎖の配列情報(miRBase Accession No. MI0000268)に基づいて、X領域の付加配列(0、3、5または7塩基長)の塩基配列が異なる種々の本発明の天然型miRNAを合成し、培養細胞に導入して、標的遺伝子であるAXL mRNAの発現抑制効果を調べた。
実施例1と同様の方法により、ガイド鎖(配列番号1)と付加配列(0、3、5または7塩基長)とからなるX領域と、パッセンジャー鎖の5’末端に、前記ガイド鎖のオーバーハング部分および前記付加配列に相補的な配列(完全相補的または部分相補的な配列)を有するY領域とが、プロリン誘導体の非ヌクレオチド構造を介して連結している天然型miR−34aを合成した。
PH−0036(配列番号14)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGU-[P]-Acaaucagcaaguauacugcccu-3’
PH−0038(配列番号15)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGUUCC-[P]-GGAAcaaucagcaaguauacugcccu-3’
PH−0058(配列番号34)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGUUAA-[P]-UUAAcaaucagcaaguauacugcccu-3’
PH−0059(配列番号35)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGUUGG-[P]-UUAAcaaucagcaaguauacugcccu-3’
PH−0060(配列番号36)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGUCGG-[P]-CCGAcaaucagcaaguauacugcccu-3’
PH−0061(配列番号37)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGUCAA-[P]-UUGAcaaucagcaaguauacugcccu-3’
PH−0062(配列番号38)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGUCGG-[P]-UUGAcaaucagcaaguauacugcccu-3’
PH−0063(配列番号39)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGUUGG-[P]-CCGAcaaucagcaaguauacugcccu-3’
PH−0064(配列番号40)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGUUAA-[P]-UUGAcaaucagcaaguauacugcccu-3’
PH−0065(配列番号41)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGUUGG-[P]-UUGAcaaucagcaaguauacugcccu-3’
PH−0066(配列番号16)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGUUCCGG-[P]-CCGGAAcaaucagcaaguauacugcccu-3’
PH−0067(配列番号42)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGUUAAUU-[P]-AAUUAAcaaucagcaaguauacugcccu-3’
PH−0068(配列番号17)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGUUCCGGCC-[P]-GGCCGGAAcaaucagcaaguauacugcccu-3’
PH−0069(配列番号43)
5’-UGGCAGUGUCUUAGCUGGUUGUUAAUUAA-[P]-UUAAUUAAcaaucagcaaguauacugcccu-3’
また、ポジティブコントロールとして、実施例1のNI−0208を用いた。
実施例1と同様の方法により、AXL遺伝子の発現量を求めた。
図10に示すように、実施例の天然型miR−34aは、ポジティブコントロールのpre−miR−34a改変体と同程度に、AXL mRNAの発現を抑制した。また、X領域の付加配列(3、5または7塩基長)の塩基配列が異なる場合も、AXL mRNAの発現抑制効果は維持された。
成熟miR−29bのガイド鎖およびパッセンジャー鎖の配列情報(miRBase Accession No. MI0000105)に基づいて、X領域の付加配列(0、3、5または7塩基長)の塩基配列が異なる種々の本発明の天然型miRNAを合成し、培養細胞に導入して、標的遺伝子であるCOL1A1 mRNAの発現抑制効果を調べた。
実施例5と同様の方法により、パッセンジャー鎖(配列番号10)と付加配列(0、3、5または7塩基長)とからなるX領域と、前記ガイド鎖の5’末端に、前記パッセンジャー鎖のオーバーハング部分および前記付加配列に相補的な配列(完全相補的または部分相補的な配列)を有するY領域とが、プロリン誘導体の非ヌクレオチド構造を介して連結している種々の天然型miR−29bを合成した。
PH−0040(配列番号28)
5’-gcugguuucauauggugguuuaga-[P]-UCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
PH−0042(配列番号29)
5’-gcugguuucauauggugguuuagaUCC-[P]-GGAUCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
PH−0109(配列番号44)
5’-gcugguuucauauggugguuuagaUAA-[P]-UUAUCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
PH−0110(配列番号45)
5’-gcugguuucauauggugguuuagaUGG-[P]-UUAUCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
PH−0111(配列番号46)
5’-gcugguuucauauggugguuuagaCGG-[P]-CCGUCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
PH−0112(配列番号47)
5’-gcugguuucauauggugguuuagaCAA-[P]-UUGUCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
PH−0113(配列番号48)
5’-gcugguuucauauggugguuuagaCGG-[P]-UUGUCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
PH−0114(配列番号49)
5’-gcugguuucauauggugguuuagaUGG-[P]-CCGUCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
PH−0115(配列番号50)
5’-gcugguuucauauggugguuuagaUAA-[P]-UUGUCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
PH−0116(配列番号51)
5’-gcugguuucauauggugguuuagaUGG-[P]-UUGUCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
PH−0108(配列番号33)
5’-gcugguuucauauggugguuuagaUCCGG-[P]-CCGGAUCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
PH−0117(配列番号52)
5’-gcugguuucauauggugguuuagaUAAUU-[P]-AAUUAUCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
PH−0118(配列番号53)
5’-gcugguuucauauggugguuuagaUCCGGCC-[P]-GGCCGGAUCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
PH−0119(配列番号54)
5’-gcugguuucauauggugguuuagaUAAUUAA-[P]-UUAAUUAUCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
また、ポジティブコントロールとして、実施例5のNI−0210を用いた。
前記各RNAの最終濃度が0.5nmol/Lである点以外は、実施例5と同様の方法により、COL1A1遺伝子の発現量を求めた。
図11に示すように、実施例の天然型miR−29bは、ポジティブコントロールのpre−miR−29b改変体と同程度に、COL1A1 mRNAの発現を抑制した。また、X領域の付加配列(3、5または7塩基長)の塩基配列が異なる場合も、COL1A1 mRNAの発現抑制効果は維持された。
成熟miR−29bのガイド鎖およびパッセンジャー鎖の配列情報(miRBase Accession No. MI0000105)に基づいて、リンカー領域の非ヌクレオチド構造およびX領域の付加配列(0、4または5塩基長)の塩基配列が異なる、種々の本発明の天然型miRNAを合成し、培養細胞に導入して、標的遺伝子であるCOL1A1 mRNAの発現抑制効果を調べた。
実施例5と同様の方法により、パッセンジャー鎖(配列番号10)と付加配列(0、4または5塩基長)とからなるX領域と、前記ガイド鎖の5’末端に、前記パッセンジャー鎖のオーバーハング部分および前記付加配列に相補的な配列(完全相補的または部分相補的な配列)を有するY領域とが、プロリン誘導体([P])またはグリシルグリシン誘導体([GlyGly])のリンカーを介して連結している種々の天然型miR−29bを合成した。前記天然型miRNAの合成において、各非ヌクレオチド構造は、実施例1および2と同様にして導入した。
PH−0040(配列番号28)
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PH−0117(配列番号52)
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PH−0120(配列番号55)
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PH−0122(配列番号57)
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PH−0143(配列番号78)
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PH−0145(配列番号80)
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PH−0146(配列番号81)
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XH−0059(配列番号60)
5’-gcugguuucauauggugguuuagaUUUAA-[GlyGly]-UUAAAUCUAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’
また、ポジティブコントロールとして、実施例5のNI−0210を用いた。
前記各RNAの最終濃度が0.5nmol/Lである点以外は、実施例5と同様の方法により、COL1A1遺伝子の発現量を求めた。
図12及び図13に示すように、実施例の天然型miR−29bは、ポジティブコントロールと同程度に、COL1A1 mRNAの発現を抑制した。また、X領域の付加配列(4または5塩基長)の塩基配列が異なる場合も、COL1A1 mRNAの発現抑制効果は維持された。
ここで述べられた特許および特許出願明細書を含む全ての刊行物に記載された内容は、ここに引用されたことによって、その全てが明示されたと同程度に本明細書に組み込まれるものである。
本出願は、日本でされた特願2014-266918(出願日2014年12月27日)及び特願2015-130496(出願日2015年6月29日)を基礎としており、その内容はすべて本明細書に包含されるものとする。
Claims (50)
- X領域とY領域とを有する一本鎖核酸であり、
前記X領域の3’末端と前記Y領域の5’末端とが、非ヌクレオチド構造のリンカー領域を介して連結し、
前記X領域は、成熟miRNAの(a)ガイド鎖配列または(b)パッセンジャー鎖配列を含み、
(a)の場合、前記Y領域は、前記成熟miRNAのパッセンジャー鎖配列を含み、
(b)の場合、前記Y領域は、前記成熟miRNAのガイド鎖配列を含み、
前記X領域は、さらに付加配列を含み、
前記付加配列の長さは、3〜5塩基長であり、
前記ガイド鎖配列と前記パッセンジャー鎖配列とが、二重鎖構造を形成することを特徴とする、天然型miRNA。 - 前記Y領域と前記X領域とをアライメントした際に、前記Y領域が、3’末端にオーバーハングを有する、請求項1記載の天然型miRNA。
- 前記オーバーハングが、0〜4塩基長である、請求項2記載の天然型miRNA。
- 前記X領域が、前記ガイド鎖またはパッセンジャー鎖配列と付加配列とからなり、前記付加配列が、前記ガイド鎖またはパッセンジャー鎖配列の3’末端に連結している、請求項1から3のいずれか一項に記載の天然型miRNA。
- 前記付加配列が、UAA、UGG、UCC、CAA、CGG、UAAU、UUAA、UUGG、UUUU、UAAUU、UCCGG、UUUUU、UUUUA、UUUAU、UUAUU、UAUUU、UUUAA、UUAUA、UAUUA、UUAAU、UAUAU、UUAAA、UAUAA、UAAUA、UAAAU、UAAAA、UUUGG、AUUAA、AUUUU、CUUAA、CUUUU、GUUAAおよびGUUUUからなる群から選択される塩基配列である、請求項1から4のいずれか一項に記載の天然型miRNA。
- 前記X領域の長さが、19〜35塩基長である、請求項1から5のいずれか一項に記載の天然型miRNA。
- 前記Y領域の長さが、21〜37塩基長である、請求項1から6のいずれか一項に記載の天然型miRNA。
- 全長が、40〜68塩基長である、請求項1から7のいずれか一項に記載の天然型miRNA。
- 前記リンカー領域が、アミノ酸残基、ポリアミン残基、およびポリカルボン酸残基からなる群から選択される少なくとも一つを含む請求項1から8のいずれか一項に記載の天然型miRNA。
- 前記リンカー領域が、ポリカルボン酸残基を含む、請求項9に記載の天然型miRNA。
- 前記ポリカルボン酸残基が、テレフタル酸残基である、請求項10に記載の天然型miRNA。
- 前記リンカー領域が、アミノ酸残基を含む、請求項9に記載の天然型miRNA。
- 前記アミノ酸残基が、グリシン残基、テレフタル酸アミド残基、プロリン残基またはリシン残基である、請求項12に記載の天然型miRNA。
- 前記アミノ酸残基が、複数のアミノ酸残基が連結したものである、請求項12または13に記載の天然型miRNA。
- 前記複数のアミノ酸残基が連結したものが、グリシン二量体または三量体の残基である、請求項14に記載の天然型miRNA。
- 前記リンカー残基が、下記化学式(I−0)で表される請求項1から15のいずれか一項に記載の天然型miRNA。
Q11およびQ12は、それぞれ独立して、単結合、CH2(メチレン基)、NH(イミノ基)、C=O(カルボニル基)、C=S(チオカルボニル基)、C=NH(イミノメチレン基)、O、またはSであり、
Q1およびQ2は、それぞれ独立して、単結合、CH2(メチレン基)、NH(イミノ基)、C=O(カルボニル基)、C=S(チオカルボニル基)、C=NH(イミノメチレン基)、O、またはSであり、
Y1およびY2は、それぞれ独立して、単結合、CH2、NH、OまたはSであり;
L1は、単結合、またはn個の炭素原子を有するアルキレン鎖であり、アルキレン炭素原子上の水素原子は、OH、ORa、NH2、NHRa、NRaRb、SH、もしくはSRaで置換されても置換されていなくてもよく、または、
L1は、前記アルキレン鎖の一つ以上の炭素原子が、酸素原子で置換されたポリエーテル鎖であり、
ただし、Y1が、NH、OまたはSの場合、Y1に結合するL1の原子は炭素であり、OR1に結合するL1の原子は炭素であり、酸素原子同士は隣接せず;
L2は、単結合、またはm個の炭素原子を有するアルキレン鎖であり、アルキレン炭素原子上の水素原子は、OH、ORc、NH2、NHRc、NRcRd、SHもしくはSRcで置換されても置換されていなくてもよく、または、
L2は、前記アルキレン鎖の一つ以上の炭素原子が、酸素原子で置換されたポリエーテル鎖であり、
ただし、Y2が、NH、OまたはSの場合、Y2に結合するL2の原子は炭素であり、OR2に結合するL2の原子は炭素であり、酸素原子同士は隣接せず;
Ra、Rb、RcおよびRdは、それぞれ独立して、置換基または保護基であり;
mは、1〜30の範囲の整数であり;
nは、1〜30の範囲の整数であり;
前記X領域および前記Y領域は、それぞれ、−OR1−または−OR2−を介して、前記リンカー残基に結合し、
ここで、R1およびR2は、存在しても存在しなくてもよく、存在する場合、R1およびR2は、それぞれ独立して、ヌクレオチド残基または前記構造(I−0)であり、
Aは、任意の原子団である。 - 前記化学式(I−0)中、Q11およびQ12が、それぞれカルボニル基である請求項16記載の天然型miRNA。
- 前記化学式(I−0)中、Q1およびQ2が、それぞれイミノ基である請求項17記載の天然型miRNA。
- 下記化学式(Iα)の構造が、下記化学式(Iα2)で表される請求項17記載の天然型miRNA。
R100は、任意の置換基であり、存在しても存在しなくてもよく、存在する場合は、1個でも複数でもよく、複数の場合は、互いに同一でも異なっていてもよい。 - 前記化学式(Iα2)の構造が、下記化学式(Iα3)で表される請求項19記載の天然型miRNA。
- 前記化学式(I−0)中、Q11およびQ12が、それぞれイミノ基である請求項16記載の天然型miRNA。
- 前記化学式(I−0)中、Q1およびQ2が、それぞれカルボニル基である請求項21記載の天然型miRNA。
- 前記リンカー領域が、アミノ酸残基を含み、前記アミノ酸残基が、下記化学式(I)で表される請求項1から3および6から10のいずれか一項に記載の天然型miRNA。
X1およびX2は、それぞれ独立して、H2、O、SまたはNHであり;
Y1およびY2は、それぞれ独立して、単結合、CH2、NH、OまたはSであり;
L1は、n個の炭素原子を有するアルキレン鎖であり、アルキレン炭素原子上の水素原子は、OH、ORa、NH2、NHRa、NRaRb、SH、もしくはSRaで置換されても置換されていなくてもよく、または、
L1は、前記アルキレン鎖の一つ以上の炭素原子が、酸素原子で置換されたポリエーテル鎖であり、
ただし、Y1が、NH、OまたはSの場合、Y1に結合するL1の原子は炭素であり、OR1に結合するL1の原子は炭素であり、酸素原子同士は隣接せず;
L2は、m個の炭素原子を有するアルキレン鎖であり、アルキレン炭素原子上の水素原子は、OH、ORc、NH2、NHRc、NRcRd、SHもしくはSRcで置換されても置換されていなくてもよく、または、
L2は、前記アルキレン鎖の一つ以上の炭素原子が、酸素原子で置換されたポリエーテル鎖であり、
ただし、Y2が、NH、OまたはSの場合、Y2に結合するL2の原子は炭素であり、OR2に結合するL2の原子は炭素であり、酸素原子同士は隣接せず;
Ra、Rb、RcおよびRdは、それぞれ独立して、置換基または保護基であり;
mは、0〜30の範囲の整数であり;
nは、0〜30の範囲の整数であり;
前記X領域および前記Y領域は、それぞれ、−OR1−または−OR2−を介して、前記アミノ酸残基に結合し、
ここで、R1およびR2は、存在しても存在しなくてもよく、存在する場合、R1およびR2は、それぞれ独立して、ヌクレオチド残基または前記構造(I)であり、
Aは、任意の原子団であり、ただし、下記化学式(Ia)は、アミノ酸またはペプチドである。
- 前記アミノ酸残基における前記アミノ酸が、天然アミノ酸および人工アミノ酸の少なくとも一方である請求項23に記載の天然型miRNA。
- 前記天然アミノ酸が、タンパク質を構成するアミノ酸である請求項24記載の天然型miRNA。
- 前記アミノ酸残基における前記アミノ酸が、グリシン、α−アラニン、アルギニン、アスパラギン、アスパラギン酸、システイン、シスチン、グルタミン、グルタミン酸、ヒスチジン、イソロイシン、ロイシン、リシン、ヒドロキシリシン、メチオニン、フェニルアラニン、セリン、トレオニン、チロシン、バリン、プロリン、4−ヒドロキシプロリン、トリプトファン、β−アラニン、1−アミノ−2−カルボキシシクロペンタン、アミノ安息香酸、アミノピリジンカルボン酸および下記化学式(Ia2)で表されるアミノ酸からなる群から選択される少なくとも1種類であり、前記アミノ酸は、さらに置換基または保護基を有していても有していなくても良い、請求項23または24に記載の天然型miRNA。
R100は、任意の置換基であり、存在しても存在しなくてもよく、存在する場合は、1個でも複数でもよく、複数の場合は、互いに同一でも異なっていてもよい。 - 前記化学式(Ia2)の構造が、下記化学式(Ia3)で表される請求項26記載の天然型miRNA。
- 前記化学式(I−0)または(I)の構造が、下記化学式(I−1)〜(I−7)であり、下記化学式(I−1)〜(I−7)において、nは、0〜30の整数、mは、0〜30の整数である、請求項16または23記載の天然型miRNA。
- 前記化学式(I−1)において、n=11およびm=12、またはn=5およびm=4である、請求項28記載の天然型miRNA。
- 前記化学式(I−4)において、n=5およびm=4である、請求項28記載の天然型miRNA。
- 前記化学式(I−6)において、n=4およびm=4である、請求項28記載の天然型miRNA。
- 前記化学式(I−7)において、n=5およびm=4である、請求項28記載の天然型miRNA。
- 前記リンカー領域の非ヌクレオチド構造が、ピロリジン骨格およびピペリジン骨格の少なくとも一方を含む、請求項1から9、12および13のいずれか一項に記載の天然型miRNA。
- 前記非ヌクレオチド構造が、下記式(II)で表わされる、請求項1から8のいずれか一項に記載の天然型miRNA。
X1およびX2は、それぞれ独立して、H2、O、SまたはNHであり;
Y1およびY2は、それぞれ独立して、単結合、CH2、NH、OまたはSであり;
R3は、環A上のC−3、C−4、C−5またはC−6に結合する水素原子または置換基であり;
L1は、n個の原子からなるアルキレン鎖であり、ここで、アルキレン炭素原子上の水素原子は、OH、ORa、NH2、NHRa、NRaRb、SH、もしくはSRaで置換されても置換されていなくてもよく、または、
L1は、前記アルキレン鎖の一つ以上の炭素原子が、酸素原子で置換されたポリエーテル鎖であり、
ただし、Y1が、NH、OまたはSの場合、Y1に結合するL1の原子は炭素であり、OR1に結合するL1の原子は炭素であり、酸素原子同士は隣接せず;
L2は、m個の原子からなるアルキレン鎖であり、ここで、アルキレン炭素原子上の水素原子は、OH、ORc、NH2、NHRc、NRcRd、SHもしくはSRcで置換されても置換されていなくてもよく、または、
L2は、前記アルキレン鎖の一つ以上の炭素原子が、酸素原子で置換されたポリエーテル鎖であり、
ただし、Y2が、NH、OまたはSの場合、Y2に結合するL2の原子は炭素であり、OR2に結合するL2の原子は炭素であり、酸素原子同士は隣接せず;
Ra、Rb、RcおよびRdは、それぞれ独立して、置換基または保護基であり;
lは、1または2であり;
mは、0〜30の範囲の整数であり;
nは、0〜30の範囲の整数であり;
環Aは、前記環A上のC−2以外の1個の炭素原子が、窒素、酸素または硫黄で置換されてもよく、
前記環A内に、炭素−炭素二重結合または炭素−窒素二重結合を含んでもよく、
前記X領域および前記Y領域は、それぞれ、−OR1−または−OR2−を介して、前記非ヌクレオチド構造に結合し、
ここで、R1およびR2は、存在しても存在しなくてもよく、存在する場合、R1およびR2は、それぞれ独立して、ヌクレオチド残基または前記構造(I)である。 - 前記X領域は、hsa−miR−34aまたはhsa−let−7aの成熟miRNAのガイド鎖配列を含む、請求項1から34のいずれか一項に記載の天然型miRNA。
- 前記成熟miRNAが、hsa−miR−34aである、請求項35記載の天然型miRNA。
- 請求項1記載の天然型miRNAのヌクレオチド配列が、配列番号14〜17からなる群から選択されるヌクレオチド配列である、請求項36記載の天然型miRNA。
- 請求項1記載の天然型miRNAのヌクレオチド配列が、配列番号34〜43からなる群から選択されるヌクレオチド配列である、請求項36記載の天然型miRNA。
- 前記成熟miRNAが、hsa−let−7aである、請求項35記載の天然型miRNA。
- 請求項1記載の天然型miRNAのヌクレオチド配列が、配列番号23または24のヌクレオチド配列である、請求項39記載の天然型miRNA。
- 請求項1記載の天然型miRNAのヌクレオチド配列が、配列番号32のヌクレオチド配列である、請求項39記載の天然型miRNA。
- 前記X領域は、hsa−miR−29bの成熟miRNAのパッセンジャー鎖配列を含む、請求項1から34のいずれか一項に記載の天然型miRNA。
- 請求項1記載の天然型miRNAのヌクレオチド配列が、配列番号28または29のヌクレオチド配列である、請求項42記載の天然型miRNA。
- 請求項1記載の天然型miRNAのヌクレオチド配列が、配列番号33および44〜81からなる群から選択されるヌクレオチド配列である、請求項42記載の天然型miRNA。
- 標的遺伝子の発現を抑制するための組成物であって、
請求項1から44のいずれか一項に記載の天然型miRNAを含むことを特徴とする、発現抑制用組成物。 - 請求項1から44のいずれか一項に記載の天然型miRNAを含むことを特徴とする、薬学的組成物。
- 標的遺伝子の発現を抑制する方法であって、
請求項1から44のいずれか一項に記載の天然型miRNAをin vitroで使用することを特徴とする、発現抑制方法。 - 前記天然型miRNAを、細胞または組織に投与する工程を含む、請求項47記載の発現抑制方法。
- 請求項1から44のいずれか一項に記載の天然型miRNAを、非ヒト動物に投与することを特徴とする、標的遺伝子の発現を抑制する方法。
- 疾患の治療に使用するための一本鎖核酸であって、
前記一本鎖核酸は、請求項1から44のいずれか一項に記載の天然型miRNAであり、前記天然型miRNAにおける前記ガイド鎖配列が、前記疾患に関与する遺伝子の発現を抑制する成熟miRNAのガイド鎖配列であることを特徴とする、一本鎖核酸。
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