JP5814914B2 - バチルス属微生物由来の還元剤及びその用途 - Google Patents
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Description
[1]バチルス属微生物由来のヘム還元酵素を含む還元剤。
[2]前記ヘムがメトミオグロビンのヘムであることを特徴とする、[1]に記載の還元剤。
[3]前記ヘムがメトヘモグロビンのヘムであることを特徴とする、[1]に記載の還元剤。
[4]バチルス属微生物の菌体破砕物からなることを特徴とする、[1]〜[3]のいずれか一項に記載の還元剤。
[5]前記バチルス属微生物がバチルス ズブチリス、バチルス アミロリケファシエンス、納豆菌、バチルス スリンギエンシス及びバチルス ミコイデスからなる群より選択される微生物である、[1]〜[4]のいずれか一項に記載の還元剤。
[6]前記ヘム還元酵素がデヒドロリポイルデヒドロゲナーゼ又はニトロレダクターゼである、[1]に記載の還元剤。
[7]前記ヘム還元酵素として、デヒドロリポイルデヒドロゲナーゼ及びニトロレダクターゼを含む、[1]に記載の還元剤。
[8]前記デヒドロリポイルデヒドロゲナーゼのアミノ酸配列が配列番号3のアミノ酸配列を含み、前記ニトロレダクターゼのアミノ酸配列が配列番号12のアミノ酸配列を含む、[6]又は[7]に記載の還元剤。
[9]前記デヒドロリポイルデヒドロゲナーゼ及び前記ニトロレダクターゼがリコンビナントタンパク質である、[6]〜[8]のいずれか一項に記載の還元剤。
[10][1]〜[9]のいずれか一項に記載の還元剤からなる色調改善剤。
[11][1]〜[9]のいずれか一項に記載の還元剤と、ミオグロビンのヘム基中の鉄を亜鉛に置換する作用を示す物質を組み合わせてなる色調改善剤。
[12]前記物質がフェロケラターゼである、[11]に記載の色調改善剤。
[13]食肉又は食肉加工品の色調の改善用である、[10]〜[12]のいずれか一項に記載の色調改善剤。
[14]デヒドロリポイルデヒドロゲナーゼ及び/又はニトロレダクターゼを含む、食肉又は食肉加工品用の色調改善剤。
[15]発色作用、発色促進作用及び/又は退色防止作用により色調を改善する、[10]〜[14]のいずれか一項に記載の色調改善剤。
[16][1]〜[9]のいずれか一項に記載の還元剤を含むことを特徴とする医薬。
[17]経口投与製剤である、[16]に記載の医薬。
[18]非経口投与製剤である、[16]に記載の医薬。
[19]以下のステップ(1)及び(2)を含む還元剤の製造法:
(1)ヘム還元酵素を産生するバチルス属微生物を、該酵素が産生される条件下で培養するステップ;
(2)培養産物から前記酵素を回収するステップ。
[20]前記ステップ(2)が以下のステップからなる、[19]に記載の製造法:
(2−1)培養産物から菌体を収集するステップ;
(2−2)菌体破砕物を調製するステップ。
[21]前記ヘムがメトミオグロビンのヘムであることを特徴とする、[19]又は[20]に記載の製造法。
[22]前記ヘムがメトヘモグロビンのヘムであることを特徴とする、[19]又は[20]に記載の製造法。
[23]前記バチルス属微生物がバチルス ズブチリス、バチルス アミロリケファシエンス、納豆菌、バチルス スリンギエンシス及びバチルス ミコイデスからなる群より選択される微生物である、[19]〜[22]に記載の製造法。
[24][10]〜[15]のいずれか一項に記載の色調改善剤を食肉又は食肉加工品に作用させることを特徴とする色調改善方法。
[25]バチルス ズブチリス、バチルス アミロリケファシエンス、納豆菌、バチルス スリンギエンシス及びバチルス ミコイデスからなる群より選択されるバチルス属微生物の菌体破砕物を食肉又は食肉加工品に作用させることを特徴とする色調改善方法。
[26][1]〜[9]のいずれか一項に記載の還元剤を用いた、血行障害、低酸素症若しくは血中酸素減少状態、これらの一つ以上の病態ないし症状を伴う疾患、又はこれらの一つ以上の病態ないし症状に起因する疾病の予防または治療方法。
本明細書において「ヘム」とは、鉄原子とポルフィリンから構成される錯体(鉄ポルフィリン錯体)をいう。「ヘム蛋白質」とはヘムを含む蛋白質の総称である。また、「ヘム還元酵素」とは、ヘム中の鉄原子に対して還元活性を示す蛋白質のことをいう。当該活性の強さ(程度)は特に限定されない。典型的には、ヘム還元酵素は、ヘム蛋白質のメト化合物を還元する活性を示す。この活性に注目した場合、ヘム還元酵素をヘム蛋白質還元酵素と呼ぶこともできる。
本発明の第1の局面は還元剤に関する。本発明の還元剤はバチルス属が産生するヘム還元酵素を有効成分とする。後述の実施例に示す通り、本発明者らによる大規模なスクリーニングの結果、バチルス属微生物である、バチルス ズブチリス(Bacillus subtilis)、バチルス アミロリケファシエンス(Bacillus amiloliquefaciens)、納豆菌(Bacillus natto)、バチルス スリンギエンシス(Bacillus thuringiensis)及びバチルス ミコイデス(Bacillus mycoides)が、メトミオグロビン還元活性に優れたポリペプチドを産生することが明らかとなった。この知見に基づき本発明の好ましい一態様では、これらの微生物のいずれかが産生するメトミオグロビン還元酵素が用いられる。尚、これらの微生物は例えば公共の保存機関(NBRC(独立行政法人製品評価技術基盤機構 生物遺伝資源部門)、JCM(理化学研究所バイオリソースセンター)、ATCC(American Type Culture Collection)等)から入手することができる。納豆菌については市販されており、容易に入手可能である。また宮城野納豆菌製造所から入手することも可能である。
本発明の第2の局面は本発明の還元剤の用途に関する。本発明が提供する用途は色調の改善及びその他の用途に大別される。特に前者の用途、即ち色調改善剤としての利用が重要である。その色調の形成に金属ポルフィリン錯体が関与しているものが、本発明による色調改善の対象となる。好ましい対象として食肉及び食肉加工品が挙げられる。食肉の色調は肉中に存在するミオグロビン誘導体の割合を反映する。上記の通り、本発明の還元剤はヘム還元酵素(好ましくはメトミオグロビン還元酵素)を有効成分とする。従って、本発明の還元剤を食肉に作用させると、食肉中のメトミオグロビンが還元され、還元型ミオグロビンが生成する。還元型ミオグロビンは酸素化によって鮮赤色の色調を示すオキシミオグロビンに変換される。本発明の還元剤を作用させると、食肉又は食肉加工品中のメトミオグロビン量が低減し、併せてオキシミオグロビンが生成する結果、色調が改善する。また、還元型ミオグロビンまたはオキシミオグロビンの酸化が防止され、その結果として食肉の退色を防止できるという効果も期待できる。このように、本発明の還元剤によれば、発色のみならず色調維持、つまり退色防止の効果も発揮され得る。退色防止効果が奏される際の作用対象は金属ポルフィリン錯体であり、当該錯体中の金属が酸化されうるものであれば特に制限されない。好ましい金属ポルフィリン錯体は鉄ポルフィリン錯体である。従って、退色防止効果を期待する場合の好ましい対象は、鉄ポルフィリン錯体を含有するヘム蛋白質である。最も好ましい対象は、還元型ミオグロビンまたはオキシミオグロビン、並びにこれらミオグロビン2種(還元型ミオグロビン、オキシミオグロビン)の何れか/もしくは双方を含む食肉又は食肉加工品である。
本発明の更なる局面は本発明の還元剤の製造法を提供する。本発明の製造法ではヘム還元酵素、好ましくはメトミオグロビン還元酵素を産生するバチルス属微生物を、該酵素が産生される条件下で培養するステップ(ステップ(1))及び培養産物から前記酵素を回収するステップ(ステップ(2))が行われる。
表1に示す液体培地10 mLを試験管に分注し、120℃、20分間滅菌した。前培養として前記試験管にバチルス ズブチリス(Bacillus subtilis JCM1465株(=ATCC6051株、IAM12118株、IFO13719株))、バチルス アミロリケファシエンス(Bacillus amyloliquefaciens NBRC15535株(=ATCC23350株))、納豆菌(Bacillus natto)、バチルス スリンゲンシス(Bacillus thuringiensis NBRC13865株(=ATCC13366株))、バチルス ミコイデス(Bacillus mycoides IAM1190株(=IFO3039株))をそれぞれ1エーゼ接種し、30℃、300rpmで一晩振とう培養した。
前記凍結乾燥粉末0.1gを0.5 Mリン酸バッファー(pH 5.5)50μLで溶解した。続いて豚もも肉ミンチ2gに、前述の粉末溶解液、4%(w/v)ミオグロビン50μLを混ぜ合わせ、脱気密封し、4℃で17時間放置した。肉の赤色の変化(発色度)を視覚的に観察した。対照試験として粉末溶解液を加えないものと、粉末溶解液を10分間煮沸処理したものについても同様の試験を行った。その結果を表2に示す。尚、ピキア ファリノサ(Pichia farinose IAM12223株(=IFO0465株、JCM1634株))の凍結乾燥粉末溶解液で処理した場合の結果(未処理のデータのみ)も併せて示す。
前記凍結粉末(バチルス ズブチリスの菌体破砕物)10mgを0.5Mリン酸バッファー(pH 5.5)100μLで溶解した。その溶解液に豚もも肉ミンチ凍乾粉末10mg、4%(w/v)ミオグロビン 30μL、0.2M NADH 30μL、滅菌水400μLを添加して、室温で30分放置した。続いて反応液を15,000rpm、15分、遠心分離し、上清を回収した。得られた上清の波長700nmから400nmの吸収スペクトルを、分光光度計を用いて測定した。対照試験として粉末溶解液を10分間煮沸処理したものについても同様の試験を行った。その結果を図1に示す。結果から明らかなように、未処理サンプルは545nmと580nmに吸収極大を有し、赤色を呈していることが分かる。
3.に示した方法に従って、1.で調製した各凍結乾燥粉末用いて食肉発色試験を行った。コントロールとして粉末溶解液を加えないものについても同様の試験を行った。各サンプルの波長580nmにおける吸光度を図2に示す。試験した全てのサンプルで5日後もコントロールよりも強く発色していることが分かる。
メトミオグロビン還元酵素活性は以下の通り測定した。まず、1.で調製した各凍結乾燥粉末を水で10mg/mLに溶解し、酵素溶液とした。続いて0.1Mリン酸バッファー(pH 5.5) 200μLに0.1%(w/v)ミオグロビン100μLと酵素溶液150μLを添加し、30℃、5分間プレインキュベートした。そして1mM NADH 50μLを添加して、波長406nmにおける吸光度の変化を5分間測定した。活性はユニット(U)で示した。本条件下で1分間に1μM相当のメトミオグロビンを還元させる酵素量を1Uとした。尚、比較のため、ピキア ファリノサ(Pichia farinose IAM12223株(=IFO0465株、JCM1634株))の凍結乾燥粉末についても酵素活性を調べた。
メトミオグロビン還元酵素は以下の通り精製した。1.で培養して得られたバチルス ズブチリス菌体をフレンチプレスにて破砕し遠心後、上清を硫安で塩析した。30%飽和で処理して上清をとり70%飽和で処理して遠心した後、沈殿物を回収した。これを20mM KPB(pH=6.0)溶液に溶解させ透析したものを硫安塩析サンプルとした。
(DEAEクロマトグラフィー条件)
担体:DEAE HP(5mL)
チャージ:硫安塩析サンプル(5mL)
Buf A:20mM KPB(pH6)
Buf B:20mM KPB(pH6),1M NaCl
流速:5mL/分
分画:5mL
プログラム:(1)Buf A洗浄 8cv、(2)Buf B 10% 洗浄 8cv、(3)Buf B勾配 30%/25cv、(4)Buf B 100% 8cv
(ハイドロキシアパタイトクロマトグラフィー条件)
担体:ハイドロキシアパタイト(5mL)
チャージ:DEAE精製Fr.No.61-63
Buf A:5mM KPB,0.3M NaCl(pH6)
Buf B:400mM KPB,0.3M NaCl(pH6)
流速:1mL/分
分画:4mL
プログラム:(1)Buf A洗浄 7cv、(2)Buf B勾配 100%/20cv、(3)Buf B 100% 10cv
(ゲルろ過クロマトグラフィー条件)
担体:Super dex 200(120mL)
チャージ:ハイアパFr.19
Buf A:20mM KPB(pH6)
流速:1mL/min
分画:5mL
図7のSDS-PAGEで得られたシングルバンドについてPDVF膜に転写しポンソー試薬で染色後、切り出しを行い、N末端アミノ酸配列解析をプロテインシークエンサーにて行った。その結果、N末端アミノ酸配列がVVGDFPIETDTLVIG(配列番号1)であることが見出された。さらに、当該アミノ酸配列をもとにBLAST内のバチルス・ズブチリスデータベースから該当遺伝子を検索した。その結果、デヒドロリポイルデヒドロゲナーゼ(Dehydrolipoyl dehydrogenase、以下DLDとする。)をコードするpdhD(配列番号2)と100%の相同性を有することが見出された。尚、DLDのアミノ酸配列を配列番号3に示す。
精製したDLDについて食肉発色試験を行った。精製したDLDの凍結粉末サンプルを使用し、食肉サンプルを以下の通り調製し(表3)、4℃で一晩保存した後、比較した(図9、図10)。
本酵素と高い親和性をもつフェリシアン化カリウムを基質として用い、諸性質を検討した。まずはDLDの基質反応性を確認した。酵素添加量を15μLとし基質濃度(終濃度)を0.025,0.05,0.075,0.1,0.15,0.2,0.3,0.4,0.5,0.6,0.7,0.8,1.0,1.25,1.5,1.75,2.0,2.5(mM)となるように、測定時間30秒間で、レイトアッセイ(Rate assay)を行った(pH=6.0)。フェリシアン化カリウムのモル吸光係数は1.02×103(M-1・cm-1)とし、速度(v)の単位はμM/分を用いた。結果を図11、図12に示す。図11の基質飽和曲線の立ち上がりから[s]/v〜[s]プロットを作成し(図12)、速度パラメーター(Kinetic parameter)を算出した(Km=0.19(mM)、Vmax=26.2(μM/分))。比較として、フェリシアン化カリウムと親和性の高い他起源のDiapholaseのKm値を表4に示す。表4より、バチルス ズブチリスから得られたDLDは、C.kluyveri由来のDLDよりもフェリシアン化カリウムに対して親和性が高いことがわかる。
バチルス ズブチリスよりDLD遺伝子を取得し、大腸菌にて大量発現系を構築すべく検討を行った。
バチルス ズブチリス7417株からのゲノム抽出は次の通り行った。バチルス ズブチリス7417株を0.5%ペプトン、1.0%酵母エキス、1.0%グルコースを含む液体培地(pH6.5)に接種し、30℃、300rpmにて一晩振とう培養した。得られた培養物からQIAquickTM Gel Extraction Test Kit(QIAGEN社製)を用いてゲノムDNAの抽出を行った。
PCRによるDLD遺伝子増幅は次の通り行った。10×バッファー 5μL、dTNP 4μL、バチルス ズブチリスのゲノム 1μL、以下の10μMプライマー(2種)各5μL、EX. Taq(DNA polymerase, タカラバイオ社製) 0.1μLを混合し、これに精製水を加えて50μLとした。なお、プライマーの組み合わせとしては2パターン(パターン1、パターン2)用意した。PCR反応は2ステップで行った。まずステップ1として98℃で30秒間、熱変性させた。続いてステップ2として下記サイクル(熱変性:98℃,10秒間、アニーリング:46℃,30秒間、伸長反応:72℃,90秒間)を25サイクル行い、PCR産物を得た。
(プライマーの配列)
パターン1
DLD-Nde1-FW:GGCGTAATCATATGGTAGTAGGAG(配列番号4)
DLD-BamH1-RV:GATAGGATCCTTATTTTACGATG(配列番号5)
パターン2
DLD-Nde1-FW:GGCGTAATCATATGGTAGTAGGAG(配列番号6)
DLD-BamH1-Histag-RV:GATAGGATCCTTAGTGGTGGTGGTGGTGGTGTTTTACGATG(配列番号7)
続いてDLD遺伝子のTAクローニングを次の通り行った。PCRで得られたPCR産物3μLに、2×Liationバッファー 5μL、pGEM-T easyベクター 1μL、T4 リガーゼ 1μLを添加し4℃で一晩反応させた後、これをコンピテントセルDH5αに全量添加し、42℃で30秒間ヒートショックをかけて2分間氷冷した。これにSOC培地150μLを添加し、37℃で20分間インキュベートした。そして全量をLB/Amp培地プレートで培養し、コロニーを得た。
続いてDLDを次の通りベクターにクローニングした。TAクローニングによって得られた培養物をGenEluteTM plasmid Miniprep Kit(SIGMA社製)を用いてプラスミド抽出を行った。得られたプラスミド抽出物に10×バッファー、Nde Iを添加し37℃で2時間処理した。さらにこれにBamH I 1μLを添加し、37℃で1時間処理したものを挿入遺伝子とした。一方、pET20bベクターについてもBamH I 1μLを添加し、37℃で1時間処理したものを準備した。His-tagの有無によるDLDの酵素活性を確認するために、それぞれ下記の通り試料を調製し(単位はμL)、16℃で30分間インキュベートした。その後、全量をコンピテントセルDH5αに添加し氷上で1時間溶解したものをヒートショックにかけ(42℃、30秒間)、SOC培地を添加し37℃で20分間インキュベートし、LB/amp培地にプレートした。
上記の通り得られた形質転換体の活性測定を次の通り行った。DLD(+)Histag/pET20b/BL21の5コロニーとDLD(-)Histag/pET20b/BL21の4コロニーをとりLB/Amp培地にて30℃で一晩振とう培養した(前培養)。この前培養液60μLを3mLのLB/Amp培地に植菌し37℃で一晩振とう培養した(本培養)。OD600=0.4〜0.5になったら、IPTGを終濃度0.1mMになるよう加え、30℃で4時間振とう培養した。こうして得られた菌体を集菌し、50mM Tris-HCl(pH=7.0)に懸濁させた。これをビーズショッカー(MULTI-BEADS SHOCKER、安井器械社製)にて破砕し遠心した後、上清をサンプルとした。
上記により得られたリコンビナントDLDをビーズ破砕し、以下の条件でNi-Sepharoseカラムにて精製して、20mM KPB(pH6)で透析した。これを凍結乾燥したものをサンプルとして用い食肉発色試験1、食肉発色試験2を行った。
(クロマトグラフィー条件)
担体:Ni Sepharose(25mL)
サンプル:破砕上清 約20mL
Bind Buf:20mM KPB,0.3M NaCl(pH6)
Elute Buf:20mM KPB,0.3M NaCl,0.4Mイミダゾール(pH6)
流速:チャージ:5mL/分,その他:10mL/分
分画:10mL
プログラム:(1)Bind Buf洗浄 6cv、(2)Elute Buf 10%洗浄 10cv、(3)Elute Buf 100%/20cv勾配、(4)Elute Buf洗浄 10cv
バチルス ズブチリス菌体由来の食肉発色酵素のうち、DLD以外の食肉発色酵素について精製を行った。精製工程はDEAEクロマト前半ピーク(図4のDEAE.Fr.No.27-35)を出発材料にして、フェニルクロマトグラフィー、ハイドロキシアパタイトクロマトグラフィー、Cuアフィニティークロマトグラフィーを行った。
(フェニルクロマトグラフィー条件)
担体:Phenyl HP(5mL)
サンプル:DEAE前半Fr.( 100210) UF 10mL
Buf A:20mM KPB,30%飽和硫安(pH6)
Buf B:20mM KPB(pH6)
流速:5mL/分
分画:5mL
プログラム:(1)Buf A洗浄 5cv、(2)Buf B勾配 100%/20cv、(3)Buf B 100% 洗浄 5cv
(ハイドロキシアパタイトクロマトグラフィー条件)
担体:ハイドロキシアパタイト(5mL)
チャージ:フェニル精製Fr.No.26-31
Buf A:5mM KPB,0.3M NaCl(pH6)
Buf B:400mM KPB,0.3M NaCl(pH6)
流速:2mL/分
分画:5mL
プログラム:(1)Buf A洗浄 5cv、(2)Buf B勾配 100%/25cv、(3)Buf B 100% 6cv
(Cuアフィニティークロマトグラフィー条件)
担体:Cu2+ HP(1mL)
チャージ:ハイアパ-Fr. 16
Buf A:20mM KPB,0.3M NaCl(pH6)
Buf B:20mM KPB,0.3M NaCl,0.4M イミダゾール(pH6)
流速:1mL/分
分画:2mL
プログラム:(1)Buf A洗浄 6cv、(2)Buf B勾配 10%/20cv、(3)Buf B洗浄 10cv
バチルス ズブチリスと納豆菌から遺伝子を取得し、MDHとyodCの大量発現系を構築した。バチルス ズブチリスと納豆菌の遺伝子情報からプライマーを作成しPCRにかけて該当遺伝子の切り出しを行った。ベクターにpET20b、宿主にBL21(DE3 pLysS)を用い、各酵素のC末端に6×His-tagを付加して発現させた。発現確認培養は次の通り行った。各酵素(MDH又はyodC)(+)Histag/pET20b/BL21のコロニーをとり、30℃、300rpmで一晩振とう培養した(前培養)。この前培養液の2%当量を10mLのLB/Amp培地に植菌し、ODが約0.5〜0.7になったらIPTGを終濃度0.5mMになるよう加え、37℃,300rpmで4時間振とう培養した(本培養)。こうして得られた菌体を集菌し、50mM Tris-HCl(pH=7.0)に懸濁させた。これをビーズ破砕し遠心した後、上清をサンプルとした。
上述の方法で得られたリコンビナントyodC(バチルス ズブチリス)とMDH(バチルス ズブチリス)を下記条件でNi-Sepharoseカラムにて精製し、20mM KPB(pH6)で透析した。透析したサンプルを凍結乾燥し、リコンビナントyodCとMDHの酵素粉末を得た。
(クロマトグラフィー条件)
担体:Ni Sepharose(25mL)
サンプル:破砕上清 約20mL
Bind Buf:20mM KPB,0.3M NaCl(pH6)
Elute Buf:20mM KPB,0.3M NaCl,0.4M イミダゾール(pH6)
流速:チャージ:5mL/分,その他:10mL/分
分画:10mL
プログラム:(1)Bind Buf洗浄 6cv、(2)Elute Buf 10% 洗浄 10cv、(3)Elute Buf 100%/20cv勾配、(4)Elute Buf洗浄 10cv
yodCの酵素学的性質を検討した。DLDと同様に至適pH(図31)、pH安定性(図32)、至適温度(図33)、熱安定性(図34)、NADPHへの反応性(図35)、金属塩(金属カチオン)が活性に与える影響(図36)を調べた。至適pHについてはDLDと同様にpH6.0付近であるため食肉アプリケーション上支障はないものと思われる。また幅広いpH条件で安定であった。至適温度を考えても、20℃付近という低温条件下でよく作用することから食肉アプリケーション上好ましいといえる。熱安定性試験においても40℃まで活性を維持することを確認できた。補酵素特異性試験においてはNADHを用いた場合よりもNADPHを用いた場合で良好な活性が得られた。金属カチオンについてはMg、Na又はKを加えた場合に酵素活性の向上が見られた。さらに、基質反応性についても検証した。DLDと同条件で、フェリシアン化カリウムへの反応性、さらにはミオグロビンへの反応性について調べた。DLDの結果を併せて各々図37、図38に示す。DLDと比べ、フェリシアン化カリウムに対しては約2.6倍、ミオグロビンに対しては約22倍の反応性を示した。
本明細書の中で明示した論文、公開特許公報、及び特許公報などの内容は、その全ての内容を援用によって引用することとする。
配列番号5:人工配列の説明:プライマーDLD-BamH1-RV
配列番号6:人工配列の説明:プライマーDLD-Nde1-FW
配列番号7:人工配列の説明:プライマーDLD-BamH1-Histag-RV
Claims (12)
- バチルス属微生物由来のヘム還元酵素を含む還元剤からなる色調改善剤であって、
前記バチルス属微生物がバチルス ズブチリス、バチルス アミロリケファシエンス、納豆菌、バチルス スリンギエンシス及びバチルス ミコイデスからなる群より選択される微生物であり、
前記ヘム還元酵素がデヒドロリポイルデヒドロゲナーゼ又はニトロレダクターゼである、色調改善剤。 - バチルス属微生物由来のヘム還元酵素を含む還元剤からなる色調改善剤であって、
前記バチルス属微生物がバチルス ズブチリス、バチルス アミロリケファシエンス、納豆菌、バチルス スリンギエンシス及びバチルス ミコイデスからなる群より選択される微生物であり、
前記ヘム還元酵素として、デヒドロリポイルデヒドロゲナーゼ及びニトロレダクターゼを含む、色調改善剤。 - バチルス属微生物由来のヘム還元酵素を含む還元剤と、ミオグロビンのヘム基中の鉄を亜鉛に置換する作用を示す物質を組み合わせてなる色調改善剤であって、
前記バチルス属微生物がバチルス ズブチリス、バチルス アミロリケファシエンス、納豆菌、バチルス スリンギエンシス及びバチルス ミコイデスからなる群より選択される微生物であり、
前記ヘム還元酵素がデヒドロリポイルデヒドロゲナーゼ又はニトロレダクターゼである、色調改善剤。 - バチルス属微生物由来のヘム還元酵素を含む還元剤と、ミオグロビンのヘム基中の鉄を亜鉛に置換する作用を示す物質を組み合わせてなる色調改善剤であって、
前記バチルス属微生物がバチルス ズブチリス、バチルス アミロリケファシエンス、納豆菌、バチルス スリンギエンシス及びバチルス ミコイデスからなる群より選択される微生物であり、
前記ヘム還元酵素として、デヒドロリポイルデヒドロゲナーゼ及びニトロレダクターゼを含む、色調改善剤。 - 前記物質がフェロケラターゼである、請求項3又は4に記載の色調改善剤。
- 前記ヘムがメトミオグロビンのヘムであることを特徴とする、請求項1〜5のいずれか一項に記載の色調改善剤。
- 前記ヘムがメトヘモグロビンのヘムであることを特徴とする、請求項1〜5のいずれか一項に記載の色調改善剤。
- 前記還元剤が、バチルス属微生物の菌体破砕物からなることを特徴とする、請求項1〜7のいずれか一項に記載の色調改善剤。
- 前記デヒドロリポイルデヒドロゲナーゼのアミノ酸配列が配列番号3のアミノ酸配列を含み、前記ニトロレダクターゼのアミノ酸配列が配列番号12のアミノ酸配列を含む、請求項1〜8のいずれか一項に記載の色調改善剤。
- 前記デヒドロリポイルデヒドロゲナーゼ及び前記ニトロレダクターゼがリコンビナントタンパク質である、請求項1〜9のいずれか一項に記載の色調改善剤。
- 食肉又は食肉加工品の色調の改善用である、請求項1〜10のいずれか一項に記載の色調改善剤。
- 発色作用、発色促進作用及び/又は退色防止作用により色調を改善する、請求項1〜11のいずれか一項に記載の色調改善剤。
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