JP4673357B2 - コメ由来またはコメ原料醸造食品由来のタンパク質、脂質代謝改善剤および食品素材 - Google Patents

Description

本発明は、コメ由来またはコメ原料醸造食品由来のタンパク質、脂質代謝改善剤および食品素材に関する。

我が国の食生活は、パン食等の欧米化が進んでおり、これに伴い、動脈硬化症などの心疾患が、日本人の死因の上位に位置するようになってきている。例えば、日本人の死因の第２位と３位を占めているのは、狭心症や心筋梗塞などを含めた心臓病と、脳出血や脳梗塞などの脳卒中であり、これらはどちらも、動脈硬化が原因となって起こる血管の病気である。心臓病と脳卒中を合わせると総死亡の約30％を占めるので、動脈硬化を防ぐことは重要である。中性脂肪やコレステロールが高い高脂血症の人は、高脂血症と適正値の境界の人、つまり潜在患者も入れると、２,２００万人もいる（平成１２年厚生労働省循環器疾患基礎調査）。さらに、国民栄養調査から見ると、男性は３０代から、女性は５０代からほぼ２人に１人が高脂血症の状態にあると考えられる。しかも、自分が高脂血症であることを自覚していない人が多く、自覚している人はわずか３０％（平成１１年国民栄養調査）にすぎない。高脂血症はスタチン系の薬剤を使用して治療するが、その世界での売上は年間３０兆円とも言われており、わが国の医療費の増加に拍車をかける一因である。このような高脂血症を医薬品でなく、毎日摂取しうる食品で予防治療できれば医療費の節減につながることが期待されている。すなわち、動脈硬化症の危険因子となる高脂血症を予防するには、食生活の改善、運動療法等が必要となる。特に、食事は、高脂血症の直接の原因となるため、健康の観点から、米飯を中心とした和食が、再評価されつつある。しかし、食事は、個人の嗜好に大きく影響されるため、食事だけで高脂血症を防止することは、困難である。そこで、高脂血症を予防するための健康食品が開発されている。

このような健康食品として、例えば、発芽処理した玄米を含む健康食品がある（特許文献１）。また、酒粕および米麹のみを含有する健康食品がある（特許文献２）。一方、清酒の製造の際に生成する酒粕は、従来から、粕汁や粕漬けなどの食品に利用されてきた。最近では、清酒の製造の効率化のために、原料米を耐熱性αアミラーゼを用いて液化してアルコール発酵させる液化法が開発されて、実用化されている（特許文献３など）。液化法で生成する粕（以下、「液化酒粕」という）は、一般の酒粕に比較して、タンパク質含量が約２倍であり、また、アンギオテンシン変換酵素阻害ペプチドや、プロリエルエンドペプチダーゼ阻害ペプチド等の有用成分が含まれている。また、液化酒粕は、ラットにおいて、血清および肝臓のコレステロールの上昇を抑制し、胆汁酸およびコレステロールの排泄量を増加させる傾向が見られ、脂質の排泄量が増加することが知られている（非特許文献１）。食品成分の機能性評価は、一般的に、ラット等を用いた動物実験による評価にとどまるものが少なくない。しかし、例えば、非特許文献２に記載されているように、実験動物とヒトとの種差の問題は大きく、実際の食生活でどれだけの機能性物質をどのように利用すると効果が得られるのかは、最終的にヒトで評価しないとわからないことが課題であった。
特開２００３−９８１０号公報 特開２００４−２６１１１９号公報 特開昭５９−６６８７５号公報 日本農芸化学会誌、第７１巻第２号、頁１３７−１４３、１９９７年 日本栄養・食糧学会誌、２００６年、第５９巻、第５号、ｐ．２７７−２８２

従来の健康食品は、脂質代謝の改善効果などがあるものの、食品に適用可能な、さらに優れた脂質代謝改善剤などの開発が求められている。また、液化酒粕等のコメ由来醸造食品の有効利用の観点から、コメまたはコメを原料とした醸造食品を用いた機能性食品素材の開発が求められている。

そこで、本発明は、脂質代謝改善効果に優れたコメ由来またはコメ原料醸造食品由来のタンパク質、それを用いた脂質代謝改善剤および食品素材の提供を目的とする。

本発明のタンパク質は、コメ由来またはコメ原料醸造食品由来のタンパク質であって、下記の（ａ）から（ｃ）の理化学的性質を有することを特徴とする。
（ａ）水、有機溶媒、塩水溶液およびアルカリ溶液に不溶性もしくは難溶性である。
（ｂ）セルラーゼ、ヘミセルラーゼ、マンナナーゼおよびプロテアーゼに対して難加水分解性であり、かつペプシンおよびパンクレアチンに対して難消化性である。
（ｃ）分子量が８ｋＤａから１５ｋＤａの範囲である。

本発明の脂質代謝改善剤は、本発明のタンパク質を含むことを特徴とする。

本発明の食品素材は、本発明の脂質代謝改善剤を含むことを特徴とする。

本発明者等は、脂質代謝改善の観点から、コメおよびコメ原料醸造食品の成分について、一連の研究を重ねた。その結果、前記各種溶媒に不溶性もしくは難溶性であり、前記各種分解酵素に対し、難加水分解性であり、前記消化酵素に対し難消化性であり、かつ前記所定の範囲の分子量を有する新規タンパク質を発見した。このタンパク質についてさらに研究を重ねたところ、前記タンパク質が、優れた胆汁酸吸着能およびリパーゼ吸着能を有することを見出し、本発明を完成した。コレステロールは、胆汁酸に代謝されて、小腸へ排出されるが、その多くは再吸収される。本発明のタンパク質は、胆汁酸に吸着するため、便となって胆汁酸が排出されて再吸収が抑制される。再吸収される胆汁酸の量が減ると、コレステロールから胆汁酸への代謝が増加し、細胞のコレステロールが減少する。この結果、細胞外からコレステロールを取り込む反応が活発になり、血中のコレステロールが下がることとなる。一方、脂質分解酵素であるリパーゼに本発明の前記タンパク質が吸着すると、リパーゼが不活性となり、脂質の分解吸収が抑制される。これらの効果は、ヒトにおいても確認され、本発明のタンパク質の摂取により、血中の総コレステロール・ＬＤＬ(低密度リポタンパク質）コレステロール・中性脂肪量が減少し、摂取終了後も前記成分の低減が維持された。食品成分の機能性評価は、一般的に、ラット等を用いた動物実験による評価にとどまるものが少なくない。しかし、例えば、前記非特許文献２に記載されているように、実験動物とヒトとの種差の問題は大きく、実際の食生活でどれだけの機能性物質をどのように利用すると効果が得られるのかは、最終的にヒトで評価しないとわからない。したがって、本発明のタンパク質は、実際にヒトにおける有効性が確認された、優れた脂質代謝改善効果を有するタンパク質であるといえる。なお、これまで、コメもしくはコメ由来食品で脂質代謝改善効果が報告されてきたが、有効成分は不明であった。本発明は、有効成分を分子レベルで同定し、有効成分を増強してさらに脂質代謝改善効果の増大を図ることを可能にした点で、その意義が大きい。

本発明のタンパク質は、下記（Ａ），（Ｂ）および（Ｃ）の少なくとも一つのタンパク質を含むことが好ましい。
（Ａ）分子量８ｋＤａから９ｋＤａのタンパク質であって、Ｎ末端アミノ酸配列が下記配列番号１の配列であるタンパク質。
配列番号１：Ｉｌｅ−Ｔｈｒ−Ｔｈｒ−Ｍｅｔ−Ｇｌｎ−Ｔｙｒ−Ｐｈｅ−Ｐｒｏ
（Ｂ）分子量１３．５ｋＤａから１４．５ｋＤａのタンパク質であって、Ｎ末端アミノ酸配列が下記配列番号２または下記配列番号３の配列であるタンパク質。
配列番号２：Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｐ−Ａｌａ−Ｌｅｕ
配列番号３：Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｐ−Ｐｒｏ−Ｌｅｕ
（Ｃ）分子量１４．５ｋＤａから１５．５ｋＤａのタンパク質であって、Ｎ末端アミノ酸配列が下記配列番号４または下記配列番号５の配列であるタンパク質。
配列番号４：Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｐ−Ａｌａ−Ｌｅｕ
配列番号５：Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｐ−Ｐｒｏ−Ｌｅｕ

本発明の前記タンパク質は、前記（Ａ），（Ｂ）および（Ｃ）の三種類のタンパク質の複合タンパク質であるという形態であってもよい。

本発明において、前記醸造食品は、例えば、清酒醸造過程において生じる副産物であってもよい。前記副産物は、例えば、一般の酒粕であってもよいし、液化酒粕であってもよい。前記液化酒粕は、液化酵素により液化された原料米をアルコール発酵させることにより製造される清酒の製造において生成する液化酒粕である。

本発明のタンパク質は、前述のように、胆汁酸吸着能およびリパーゼ吸着能を有する。

本発明の脂質代謝改善剤は、前記タンパク質が、１日あたり０．０６〜６４０ｍｇ/ｋｇ体重の量にて経口摂取されることが好ましい。

本発明の脂質代謝改善剤は、例えば、血液中の総コレステロール量、ＬＤＬ(低密度リポタンパク質）コレステロール量、中性脂肪量の少なくとも一つを低減させる効果を有していてもよい。

本発明の製造方法は、前記本発明の食品素材の製造方法であって、前記脂質代謝改善剤が、液化酵素により液化された原料米をアルコール発酵させることにより製造される清酒の製造において生成する液化酒粕を含み、前記液化酒粕を溶媒で洗浄する洗浄工程を含む製造方法である。本発明の製造方法において、前記洗浄工程で使用する溶媒が、水、アルカリ性水溶液、塩水溶液および有機溶媒からなる群から選択される少なくとも一つであることが好ましい。

つぎに、本発明について、例を挙げて詳細に説明する。

本発明の前記タンパク質は、前述のように、前記各種溶媒に不溶性もしくは難溶性であり、前記各種分解酵素に対し、加水分解を受け難く（難加水分解性）、各種消化酵素に対し難消化性であり、前記所定の範囲の分子量を有する。

本発明の前記（ａ）において、水、有機溶媒、塩水溶液およびアルカリ溶液に不溶性もしくは難溶性のタンパク質とは、例えば、試料３ｇに、下記（１）から（５）の各溶媒を３０ｍＬ加え、室温で１時間攪拌し、遠心分離した場合における沈殿物中のタンパク質をいう。なお、前記攪拌条件は、特に制限されず、例えば、スターラーとバーを用いて、適度な速度で回転させればよい。また、前記遠心分離の条件は、例えば、９０００Ｇ（９０００×９．８ｍ／ｓ^２）で１０分間の条件である。

（溶媒）
（１） 蒸留水
（２） ３重量％ＮａＣｌ水溶液
（３） ７５重量％エタノール
（４） ０．０２５Ｍ ＮａＯＨ水溶液
（５） ５５重量％プロパノール

本発明において、前記（ａ）の有機溶媒に不溶性もしくは難溶性のタンパク質とは、例えば、試料に対しジエチルエーテルを用いたソックスレー脂肪抽出法により脂質の抽出を行った場合の残渣中のタンパク質をいう。

本発明において、前記（ｂ）のセルラーゼ、ヘミセルラーゼ、マンナナーゼおよびプロテアーゼに対して難加水分解性であるとは、例えば、下記の加水分解酵素処理をした後の沈殿残渣に含まれるタンパク質をいう。また、本発明において、前記（ｂ）のペプシンおよびパンクレアチンに対して難消化性であるとは、例えば、下記の人工消化処理をした後の沈殿残渣に含まれるタンパク質をいう。さらに、本発明において、前記（ａ）および（ｂ）のタンパク質が胆汁酸吸着能を有するといえば、例えば、胆汁酸吸着率が、未処理の場合に対し、８０％以上であることをいう。前記胆汁酸吸着率は、例えば、下記の方法により測定できる。

（加水分解酵素処理）
試料２ｇ、蒸留水２０ｍＬに対し、下記各酵素粉末を１０ｍｇ添加し、ｐＨと温度を下記のように設定し、三角フラスコに入れ恒温水槽にて１２０ｒｐｍで６時間反応させた後、１０分間沸騰水中で湯煎し、酵素を失活させる。それぞれの反応溶液をすべて回収し、凍結乾燥後、胆汁酸吸着率の測定に供する。
（１）セルラーゼ＋ヘミセルラーゼ ｐＨ４．５、５０℃
（２）マンナナーゼ ｐＨ４．０、６０℃
（３）プロテアーゼ ｐＨ１０、６０℃

（人工消化処理）
試料１ｇに対し、蒸留水２０ｍＬを加え、１Ｎ（１ｍｏｌ／Ｌ）のＨＣｌでｐＨ２．０に調整し、ペプシン５ｍｇを添加し、３７℃で６０分間、１２０ｒｐｍで攪拌して反応させた後、０．９Ｎ（０．９ｍｏｌ／Ｌ）のＮａＨＣＯ_３で中和しさらに１Ｎ（１ｍｏｌ／Ｌ）のＮａＯＨでｐＨ７．５に調整する。そこにパンクレアチン５ｍｇを添加し、３７℃で１２０分間、１２０ｒｐｍで攪拌して反応させた後、１０分間１００℃で加熱し反応を止める。遠心分離後、沈殿を２回蒸留水で洗浄した後、残渣を凍結乾燥し、胆汁酸吸着試率の測定に供する。

（胆汁酸吸着率）
胆汁酸（タウロコール酸およびグリココール酸の少なくとも一方を含む）の２．５ｍＭ溶液（Ｎａ／Ｓｏｒｅｎｓｅｎリン酸緩衝液ｐＨ８．０）１０ｍＬに、試料０．２８６ｇを添加後、Ｌ型試験管中で３７℃、１６時間振とう（１２０ストローク／分）させ、遠心分離により上清を得る。得られた上清を０．４５μｍフィルターによりろ過し、ろ液の液量を測定後、胆汁酸濃度を測定する。経口摂取後の生体内での状態を考慮し、試験管内の試料に含まれる繊維間隙に存在する胆汁酸は、ゆるい結合をして吸着されているとみなし、吸着反応後の液量変化を考慮した下記の式で胆汁酸の吸着率（％）を求める。

胆汁酸吸着率（％）＝１００−［（Ａ×Ｂ）／（Ｃ×１０）］×１００
Ａ：上清胆汁酸濃度
Ｂ：上清液量
Ｃ：吸着前の胆汁酸濃度

本発明において、前記（ｃ）に示すタンパク質の分子量は、例えば、Ａｇｉｌｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製の商品名２１００ Ｂｉｏａｎａｌｙｚｅｒ（Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｃｈｉｐ ８０使用）により測定できる。

本発明において、コメとしては、コメ自体だけでなく、コメの加工食品も含む。コメ加工食品としては、例えば、もち、しん粉、白玉粉、みじん粉、道明寺粉、ビーフン、米麹、α米、これらを加工したせんべい・ポン菓子などの米菓などがあげられる。コメを原料とした醸造食品としては、例えば、一般の酒粕および前記液化酒粕がある。一般の酒粕は、通常の清酒の製造工程で副産物として生成するものである。前記液化酒粕は、従来の方法（例えば、前記特許文献３）により得ることができる。例えば、原料米を水に浸漬した状態で粉砕してゾル状にし、このゾル状の原料米に耐熱性α−アミラーゼを作用させて液化し、これを常法によりアルコール発酵させて清酒を製造する。前記清酒を圧搾する際に生成するのが液化酒粕である。液化酒粕の成分組成の一例（前記非特許文献１）を下記に示す。また、酒粕以外のコメを原料とした醸造食品としては、例えば、甘酒、にごり酒、粕汁のもとなどがあげられる。そのほかに、酒粕以外のコメを原料とした醸造食品としては、例えば、米焼酎、米酢、米アルコールまたは米を原料とした水あめなど製造時の副産物などがあげられる。

（液化酒粕の成分組成）
粗タンパク質：７２．１％
粗脂質：５．７％
灰分：１．５％
その他成分：２０．７％

本発明において、前記タンパク質、前記脂質代謝改善剤および前記食品素材の形態は、特に制限されず、固形状、粉末状、または溶媒に分散させた状態であってもよい。また、前記タンパク質、前記脂質代謝改善剤および前記食品素材は、前記タンパク質の精製品単独であってもよいし、その他の成分を含んでいてもよく、例えば、前記液化酒粕自体であってもよい。本発明の前記脂質代謝改善剤および前記食品素材における前記タンパク質の割合は、特に制限されず、例えば、５〜１００重量％の範囲であり、好ましくは、２５〜１００重量％の範囲であり、より好ましくは５０〜１００重量％の範囲であり、含有割合は多い方が好ましい。なお、本発明において、食品は、飲料を含む。本発明の前記タンパク質の前記胆汁酸吸着率は、例えば、３５％以上であり、好ましくは４０％以上であり、より好ましくは４５％以上である。

また、本発明の前記タンパク質、前記脂質代謝改善剤および前記食品素材は、濃縮、ペースト化、乾燥、ゼリー状に固めるなどの加工を施してもよく、その他、錠剤、カプセル剤、ドリンク剤等サプリメントの剤型に製剤化してもよい。本発明の前記タンパク質、前記脂質代謝改善剤および前記食品素材には、必要に応じて、本発明以外の脂質代謝改善剤などの機能を有する食品成分、医薬成分等を添加してもよい。

本発明の前記タンパク質、前記脂質代謝改善剤は、直接食用できるが、前述のように、食品素材として食品に添加してもよい。本発明の前記タンパク質、前記脂質代謝改善剤および前記食品素材の摂取量は、特に制限されず、例えば、液化酒粕の摂取量を指標にして決定できる。

また、本発明の前記タンパク質、前記脂代謝改善剤および前記食品素材は、摂取させる動物種に特に限定はなく、例えば、ヒトに摂取させてもよい。その場合、１日あたりの前記タンパク質の摂取量は、例えば、０．０６〜６４０ｍｇ／ｋｇであり、好ましくは、０．６〜３２０ｍｇ／ｋｇであり、より好ましくは、６〜１６０ｍｇ／ｋｇである。したがって、例えば、前記タンパク質を６４％含有する前記脂質代謝改善剤または前記食品素材の摂取量は、好ましくは、０．１〜１０００ｍｇ／ｋｇであり、より好ましくは、１〜５００ｍｇ／ｋｇであり、さらに好ましくは、１０〜２５０ｍｇ／ｋｇである。本発明の前記タンパク質、前記脂代謝改善剤および前記食品素材をヒトに摂取させる場合には、例えば、１日あたり３ｇ摂取させてもよい。また、本発明の前記タンパク質、前記脂質代謝改善剤および前記食品素材の摂取方法は、特に制限されず、例えば、任意のタイミングや回数で摂取することができる。

本発明の前記タンパク質および前記脂質代謝改善剤は、食用の用途の他、医薬品の用途にも適用できる。

本発明の前記タンパク質および前記脂質代謝改善剤の医薬品の用途は、例えば、高コレステロール血症、高ＬＤＬ（低密度リポタンパク質）コレステロール血症、高トリグリセリド血症等の高脂血症改善用、リパーゼ活性阻害用等が挙げられる。したがって、本発明の前記タンパク質および前記脂質代謝改善剤は、例えば、高コレステロール血症改善剤、高ＬＤＬコレステロール血症改善剤、高トリグリセリド血症改善剤等の高脂血症改善剤、リパーゼ活性阻害剤等として用いることができる。

本発明の前記タンパク質および前記脂質代謝改善剤を摂取することにより、例えば、血液中の総コレステロール量、ＬＤＬコレステロール量、中性脂肪量等を低減することができる。また、本発明の前記タンパク質および前記脂質代謝改善剤は、その摂取により前記血液中の総コレステロール量、ＬＤＬコレステロール量、中性脂肪量等が低減した場合には、継続的に摂取しなくても、その低減を維持することができる。

本発明において、前記血液中の総コレステロール量、ＬＤＬ(低密度リポタンパク質）コレステロール量、中性脂肪量とは、その対象動物に特に限定はなく、例えば、ヒトの血液中の総コレステロール量、ＬＤＬコレステロール量、中性脂肪量であってもよい。前記ヒトの血液中における前記成分の測定方法は、特に制限されず、例えば、被験者（ヒト）の血液から分離した血清を用いてコレステロール測定機器等により測定してもよい。

前述のように、本発明の食品素材において使用する前記液化酒粕は、溶媒で洗浄した洗浄液化酒粕であることが好ましい。前記溶媒としては、例えば、水、アルカリ性水溶液、塩水溶液および有機溶媒などを使用することが好ましい。前記洗浄液化酒粕は、未洗浄の液化酒粕に比べて、独特の風味が減じており、食品素材として好ましく使用できる。前記洗浄に用いる洗浄溶媒の例は、下記のとおりである。これらのなかで、好ましい洗浄溶媒は、ＫＯＨ水溶液である。

（洗浄溶媒）
水：蒸留水、イオン交換水、天然水、水道水、地下水
アルカリ性水溶液：ＮａＯＨ水溶液、ＫＯＨ水溶液、Ｃａ（ＯＨ）_２水溶液、Ｍｇ（ＯＨ）_２水溶液、アンモニア水
塩水溶液：ＮａＣｌ水溶液、ＫＣｌ水溶液、ＣａＣｌ_２水溶液、ＭｇＣｌ_２水溶液
有機溶媒：メタノール、エタノール、プロパノール、ブタノール、イソアミルアルコール、ヘキサン、アセトン、酢酸エチル

前記液化酒粕の洗浄方法は、特に制限されず、例えば、液化酒粕を各種洗浄溶媒に分散混合し、遠心分離、ろ過等で前記洗浄溶媒から前記液化酒粕を分離すればよい。洗浄液化酒粕は、使用しやすいように、凍結乾燥後、ブレンダー等で粉砕して粉末化することが好ましい。

つぎに、本発明の実施例について比較例と併せて説明する。ただし、本発明は、下記の実施例および比較例によってなんら制限ないし限定されない。

（実施例１）
本実施例では、液化酒粕の胆汁酸吸着能を調べた。タウロコール酸およびグリココール酸の２種類の抱合胆汁酸の２．５ｍＭ溶液（Ｎａ／Ｓｏｒｅｎｓｅｎリン酸緩衝液ｐＨ８．０）１０ｍＬに、液化酒粕の凍結乾燥粉末０．２８６ｇを添加後、Ｌ型試験管中で３７℃、１６時間振とう（１２０ストローク／分）させ、遠心分離により上清を得た。上清を０．４５μｍフィルターによりろ過し、ろ液の液量を測定後、胆汁酸濃度を測定した。胆汁酸濃度の測定は総胆汁酸テストワコー（商品名、和光純薬社製）を用いた。前記測定結果から、前述の式により、胆汁酸吸着率（％）を求めた。その結果、液化酒粕のタウロコール酸吸着率は、５０％であり、液化酒粕のグリココール酸の吸着率は、３７％であった。

（比較例１）
胆汁酸としてタウロコール酸のみを用いた以外は、実施例１と同様にして、赤糠（コメ（日本晴）の精白で生じた赤糠部分）、ひえ（ムソー株式会社製）、ビール酵母（商品名：ビール酵母食品、アサヒフードアンドヘルスケア株式会社製）、セルロース（粉末、ナカライテスク株式会社製）、キチン（粉末、半井化学薬品株式会社製）、キトサン（東京化学工業株式会社製）について、胆汁酸吸着能を測定した。これらの結果を、実施例１の結果と併せて図１のグラフに示す。図示のように、液化酒粕は、他の食品もしくは食品素材と比較して、胆汁酸吸着率が高かった。

（比較例２）
カゼイン（和光純薬工業株式会社製）および大豆タンパク質（商品名：たん白粉末、和光純薬株式会社製）の胆汁酸吸着能を、実施例１と同様にして測定した。その結果を、下記の表１に示す。下記表１に示すように、カゼインおよび大豆タンパク質は、胆汁酸を吸着しなかった。

（表１）
胆汁酸濃度（μｍｏｌ／Ｌ） タウロコール酸 グリココール酸
反応前 ８６１．４ ８６１．４
反応後 カゼイン １４１５．８ １４８０．２
反応後 大豆タンパク質 ８８１．２ ９９５．０

（実施例２）
液化酒粕の凍結乾燥粉末３ｇに、下記の各溶媒（１）〜（５）を３０ｍＬ加え、室温で１時間攪拌し、遠心分離後、蒸留水洗浄して得られた沈殿残渣を凍結乾燥し細かく粉砕し、これを試料（抽出残渣）とした。なお、ジエチルエーテルによる脱脂は、ソックスレー脂肪抽出法により一昼夜行った。これらの試料について、胆汁酸としてタウロコール酸のみを用いた以外は、実施例１と同様にして、胆汁酸吸着試験を実施し、胆汁酸吸着率（％）を求めた。また、対照として、各種溶媒による抽出処理をしていない液化酒粕についても、胆汁酸吸着試験を実施し、胆汁酸吸着率（％）を求めた。これらの結果を、図２のグラフに示す。図示のように、各抽出残渣は、対照（液化酒粕）と同等若しくはそれ以上の胆汁酸吸着率を示した。

（溶媒）
（１） 蒸留水
（２） ３重量％ＮａＣｌ水溶液
（３） ７５重量％エタノール
（４） ０．０２５Ｍ ＮａＯＨ水溶液
（５） ５５重量％プロパノール

（実施例３）
本実施例は、下記加水分解酵素処理および人工消化試験をした液化酒粕の胆汁酸吸着率を求めた例である。なお、対照として、下記消化酵素処理および人工消化試験をしない液化酒粕についても、同様に胆汁酸吸着率を求めた。これらの結果を、図３のグラフに示す。図示のように、消化酵素処理および人工消化試験をした液化酒粕は、対照の液化酒粕に比べ、胆汁酸吸着率はあまり低下せず、３５％以上の胆汁酸吸着率を示した。

（加水分解酵素処理）
液化酒粕凍結乾燥粉末２ｇ、蒸留水２０ｍＬに対し、下記各酵素粉末を１０ｍｇ添加し、ｐＨと温度を下記のように設定し、三角フラスコに入れ恒温水槽にて１２０ｒｐｍで６時間反応させた後、１０分間沸騰水中で湯煎し、酵素を失活させた。それぞれの反応溶液をすべて回収し、凍結乾燥後、実施例１と同様の胆汁酸吸着試験（胆汁酸はタウロコール酸のみ）に供した。
（１）セルラーゼ（商品名：セルラーゼＡ「アマノ」３、天野エンザイム株式会社製）＋ヘミセルラーゼ（商品名：ヘミセルラーゼ「アマノ」９０、天野エンザイム株式会社製）
ｐＨ４．５、５０℃
（２）マンナナーゼ（商品名：スミチームＡＣＨ、新日本化学工業株式会社製）
ｐＨ４．０、６０℃
（３）プロテアーゼ（商品名：プロレザーＦＧ−Ｆ、天野エンザイム社製）
ｐＨ１０、６０℃

（人工消化処理）
液化酒粕凍結乾燥品１ｇに対し、蒸留水２０ｍＬを加え、１Ｎ（１ｍｏｌ／Ｌ）のＨＣｌでｐＨ２．０に調整し、ペプシン（商品名：ペプシン １：６００００、 和光純薬工業株式会社製）５ｍｇを添加し、３７℃で６０分間、１２０ｒｐｍで攪拌して反応させた後、０．９Ｎ（０．９ｍｏｌ／Ｌ）のＮａＨＣＯ_３で中和しさらに１Ｎ（１ｍｏｌ／Ｌ）のＮａＯＨでｐＨ７．５に調整した。そこにパンクレアチン（商品名 Ｐａｎｃｒｅａｔｉｎ， Ｆｒｏｍ ｐｏｒｃｉｎｅ Ｐａｎｃｒｅａｓ、ＳＩＧＭＡ−ＡＬＤＲＩＣＨ社製）５ｍｇを添加し、３７℃で１２０分間、１２０ｒｐｍで攪拌して反応させた後、１０分間１００℃で加熱し反応を止めた。遠心分離後、沈殿を２回蒸留水で洗浄した後、残渣を凍結乾燥し、実施例１と同様の胆汁酸吸着試験（胆汁酸はタウロコール酸のみ）に供した。

（実施例４）
液化酒粕凍結粉末および実施例３の人工消化試験の消化残渣粉末について、電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）により、本発明の液化酒粕由来タンパク質を確認した。すなわち、まず、各粉末を５ｍｇ／ｍＬとなるように２×ＳＤＳサンプルバッファーに溶解し、５分間煮沸後、遠心分離し、遠心上清５〜１５μＬを泳動用試料とした。また、対照として、飯米の凍結乾燥粉末を、５０ｍｇ／ｍＬになるように前記サンプルバッファーに溶解し、上記と同様に調製した遠心上清１５μＬを、泳動用試料とした。使用したゲルは商品名マルチゲルII１５／２５、ＭａｒｋｅｒはタンパクマーカーIII（Ｍ）・ペプチドマーカー（ＰＭ）、泳動バッファーは、通常のトリス−グリシンバッファーよりも低分子領域の解析が可能な５０ｍＭのトリス−トリシンバッファーを使用した（いずれも、第一化学薬品社製）。電気泳動条件は、３０ｍＡで、７０分間泳動を行った。これらの結果を、図４の電気泳動の写真に示す。同図において、（１）は飯米、（２）液化酒粕凍結乾燥粉末、（３）は液化酒粕の人工消化試験の消化残渣粉末である。図示のように、液化酒粕の人工消化試験の消化残渣粉末において、分子量１０ｋＤａから１５ｋＤａの範囲に、三つの本発明の前記タンパク質のバンドを確認した。

つぎに、前記三つの本発明の前記タンパク質の分子量および量比を定量するために、Ａｇｉｌｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製の商品名２１００ Ｂｉｏａｎａｌｙｚｅｒ（Ｐｒｏｔｅｉｎ ｃｈｉｐ ８０を使用）で解析を行った。人工消化残渣粉末を５ｍｇ／ｍＬになるようにＳＤＳ−ＰＡＧＥ用サンプルバッファーに懸濁し、１０分間煮沸した後、不溶解物を取り除くために遠心し、その上清を試料とした。その結果を、図５に示す。同図において、左側のチャートは、キャピラリー電気泳動のチャートであり、右側の写真は、電気泳動の写真である。前記解析の結果を、下記表２に示す。

（表２）
Ｐｅａｋ 分子量（ｋＤａ） 組成率（％）
１ｓｔ ８．３２ ３０．４１
２ｎｄ １４．３７ ３１．６０
３ｒｄ（ｓｐｌｉｔ） １４．９７ ３７．８３
その他のピーク − ０．１６

前記表２に示すように、本発明の下記（Ａ）〜（Ｃ）のタンパク質が確認された。
（Ａ）分子量８．３２ｋＤａのタンパク質
（Ｂ）分子量１４．３７ｋＤａのタンパク質
（Ｃ）分子量１４．９７ｋＤａのタンパク質

つぎに、前記（Ａ）〜（Ｃ）の各タンパク質について、常法により、Ｎ末端のアミノ酸配列を調べた。その結果を、下記表３に示す。また、これらのアミノ酸配列の結果から、ゲノムデータベースでタンパク質の種類を相同性検索で調べたところ、すべてコメ由来のタンパク質であることが確認された。また、これらのＮ末端シーケンスに相当するコメ由来のタンパク質の配列はデータベース上に複数のクローンとして存在した。これを下記表４に示した。ここに示した番号をもとに、ＮＣＢＩのタンパク質データベース(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=Protein&itool=toolbar)に照会することで、タンパク質の配列を得ることができる。

（表３）
タンパク質種類 Ｎ末端アミノ酸配列
Ａ Ｉｌｅ−Ｔｈｒ−Ｔｈｒ−Ｍｅｔ−Ｇｌｎ−Ｔｙｒ−Ｐｈｅ−Ｐｒｏ
（配列番号１）
Ｂ Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｐ−Ａｌａ−Ｌｅｕ（配列番号２)または
Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｐ−Ｐｒｏ−Ｌｅｕ（配列番号３)
Ｃ Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｐ−Ａｌａ−Ｌｅｕ（配列番号４）または
Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｐ−Ｐｒｏ−Ｌｅｕ（配列番号５)

（表４）
配列番号１に対応するクローン
gi|125588032|gb|EAZ28696.1
gi|671591|emb|CAA59142.1
gi|115455559|ref|NP_001051380.1
gi|130946|sp|P15839
gi|15127777|gb|AAK84296.1|AF294580_1
gi|20296|emb|CAA34926.1
gi|20308|emb|CAA33301.1
gi|551659|emb|CAA57495.1
gi|556405|gb|AAA50318.1
gi|556407|gb|AAA50319.1
gi|113549851|dbj|BAF13294.1
gi|119394826|gb|ABL74525.1
gi|226932|prf||1611458A
gi|4379329|emb|CAA35862.1
gi|1345554|emb|CAA35857.1
gi|1345553|emb|CAA35856.1
gi|559922|emb|CAA35861.1
gi|1345555|emb|CAA35858.1
gi|1345552|emb|CAA35854.1
gi|1345557|emb|CAA35860.1
gi|1345556|emb|CAA35859.1
gi|4379327|emb|CAA35855.1
gi|115485761|ref|NP_001068024.1
gi|77551280|gb|ABA94077.1
gi|113645246|dbj|BAF28387.1
gi|119394846|gb|ABL74535.1
gi|125534640|gb|EAY81188.1
gi|125577384|gb|EAZ18606.1

配列番号２と配列番号４に対応するクローン
gi|115471105|ref|NP_001059151.1
gi|6174927|sp|P17048
gi|296129|emb|CAA46197.1
gi|971122|dbj|BAA09940.1
gi|34393306|dbj|BAC83235.1
gi|113610687|dbj|BAF21065.1
gi|119394844|gb|ABL74534.1
gi|2130063|pir||JC4599
gi|20292|emb|CAA32565.1
gi|1587669|prf||2207199A
gi|115471107|ref|NP_001059152.1
gi|8237371|gb|AAF73991.1|AF156714_1
gi|4126691|dbj|BAA36697.1
gi|34393307|dbj|BAC83236.1
gi|113610688|dbj|BAF21066.1
gi|119394850|gb|ABL74537.1
gi|20306|emb|CAA43295.1

配列番号３と配列番号５に対応するクローン
gi|115471107|ref|NP_001059152.1
gi|8237371|gb|AAF73991.1|AF156714_1
gi|4126691|dbj|BAA36697.1
gi|34393307|dbj|BAC83236.1
gi|113610688|dbj|BAF21066.1
gi|119394850|gb|ABL74537.1
gi|20306|emb|CAA43295.1

（実施例５）
圧搾直後から約１ヶ月間４℃で保存していた液化酒粕をブレンダーで粉砕したもの５０ｇ（水分４７％）に対し、（１）蒸留水、（２）０．５重量％ＮａＣｌ水溶液、（３）２５ｍＭのＫＯＨ水溶液を、それぞれ１５０ｍＬ加え、室温にて９０分間攪拌した。その後、沸騰水中で３０分間湯煎し、室温まで冷却後、遠心分離して得られた沈殿を凍結乾燥し、得られた乾燥酒粕をブレンダーで粉砕し、得られた粉末を、下記のモニター試食に供した。

（モニター試食）
各溶媒で１回洗浄した上記３種類の粉末液化酒粕サンプルに加え、洗浄前の未処理液化酒粕の凍結乾燥粉末サンプルを用意し、計４種類の液化酒粕粉末のブラインド試食を、モニター１０名で実施した。採点は「食品素材としての好ましさ」に関して１を最良とし５までの五段階評価で行い、フリーコメントも記入してもらった。この結果を、下記の表５に示す。

前記表５に示すように、各種溶媒で洗浄したものは、未処理のものより評価が高かった。特に、ＫＯＨ水溶液で洗浄した液化酒粕は、それ自身の強い風味が低減され、他の食材の風味を損なうことなく添加できることから、食品素材として最適であった。

（実施例６）
本実施例では、下記サンプル（１）〜（４）について、リパーゼ阻害活性を確認した。また、比較例として、下記サンプル（５）〜（７）について、リパーゼ阻害活性を測定した。

（１） 液化酒粕
液化酒粕は、その凍結乾燥粉末を使用した。

（２） 液化酒粕ペプシン分解物
液化酒粕凍結乾燥品５０ｇに対し、１Ｎ（１ｍｏｌ／Ｌ）のＨＣｌ ２００ｍＬとペプシン（商品名：ペプシン １：６００００、 和光純薬工業株式会社製）２５０ｍｇを添加し、ｐＨ２．０、３７℃で６０分間、１２０ｒｐｍで攪拌して反応させた後、０．９Ｎ（０．９ｍｏｌ／Ｌ）のＮａＨＣＯ_３で中和し、さらに１Ｎ（１ｍｏｌ／Ｌ）のＮａＯＨでｐＨ７．５に調整して反応を止めた。反応物を遠心分離後、沈殿を２回蒸留水で洗浄した後、残渣を凍結乾燥し、前記凍結乾燥粉末を液化酒粕ペプシン分解物とした。

（３） 液化酒粕ペプシン・パンクレアチン分解物
液化酒粕凍結乾燥品５０ｇに対し、１Ｎ（１ｍｏｌ／Ｌ）のＨＣｌ ２００ｍＬとペプシン（商品名：ペプシン １：６００００、 和光純薬工業株式会社製）２５０ｍｇを添加し、ｐＨ２．０、３７℃で６０分間、１２０ｒｐｍで攪拌して反応させ、０．９Ｎ（０．９ｍｏｌ／Ｌ）のＮａＨＣＯ_３で中和し、さらに１Ｎ（１ｍｏｌ／Ｌ）のＮａＯＨでｐＨ７．５に調整して反応を止めた。続いて、この反応物に対し、パンクレアチン（商品名 Ｐａｎｃｒｅａｔｉｎ， Ｆｒｏｍ ｐｏｒｃｉｎｅ Ｐａｎｃｒｅａｓ、ＳＩＧＭＡ−ＡＬＤＲＩＣＨ社製）２５０ｍｇを添加し、３７℃で１２０分間、１２０ｒｐｍで攪拌して反応させた後、１０分間１００℃で加熱し反応を止めた。遠心分離後、沈殿を２回蒸留水で洗浄した後、残渣を凍結乾燥し、前記凍結乾燥粉末を、液化酒粕ペプシン・パンクレアチン分解物とした。

（４） 液化酒粕アルカリ不溶画分、（５） 液化酒粕アルカリ可溶画分
凍結乾燥品５０ｇに対し、３％ＮａＣｌ水溶液２００ｍＬ加え、室温で１時間攪拌し、遠心分離後、得られた沈殿残渣に対し、さらに０．１Ｎ（０．１ｍｏｌ／Ｌ）のＮａＯＨを２００ｍＬ加え、室温で１時間攪拌した。遠心分離して得られた上清をアルカリ可溶画分とし、酸沈後凍結乾燥して粉末を得た。一方、前記遠心分離で得られた沈殿をアルカリ不溶画分とし、残渣を凍結乾燥して粉末を得た。

（６） ビール酵母
ビール酵母として、ビール酵母食品（商品名：エビオス錠、アサヒフードアンドヘルスケア株式会社製）を粉砕した粉末を使用した。

（７） カゼイン
カゼインとして、カゼイン粉末（和光純薬工業株式会社製）を使用した。

（リパーゼ阻害活性測定）
前記（１）〜（７）の各サンプル０．１ｇに対し、５００Ｕ／Ｌのリパーゼ溶液（リパーゼ、和光純薬工業株式会社製）６ｍＬを加え、３７℃１０分間反応後、遠心して得られた上清、およびブランクとしてサンプルを加えないリパーゼ溶液のリパーゼ活性を、リパーゼ測定用試薬（商品名：「ＢＭＹ」モノテスト、ベーリンガー・マンハイム株式会社製）を用いて測定した。前記ブランクのリパーゼ活性１００に対する各サンプルのリパーゼ活性の阻害率を求めた。この結果を、図６のグラフに示す。

図示のように、（１）液化酒粕、（２）液化酒粕ペプシン分解物、（３）液化酒粕ペプシン・パンクレアチン分解物および（４）液化酒粕アルカリ不溶画分は、リパーゼ活性を阻害した。中でも、（４）アルカリ不溶画分が最も強いリパーゼ阻害活性を示した。一方、（５）アルカリ可溶画分、（６）ビール酵母および（７）カゼインには、リパーゼ阻害活性がまったく認められなかった。

さらに、前記（１）〜（７）の各サンプルの溶出液のリパーゼ活性阻害率を確認した。すなわち、まず、前記（１）〜（７）の各サンプル０．１ｇに対し５０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．７）６ｍＬを加え、３７℃１０分間攪拌後、遠心して得られた上清をサンプルからの溶出液とした。各溶出液または緩衝液のみを用いて５００Ｕ／Ｌのリパーゼ溶液を作成し、リパーゼ活性を測定した。緩衝液のみのリパーゼ活性を１００とし、各サンプルからの溶出液によるリパーゼ活性の阻害率を求めた。その結果、前記（１）〜（７）の全てのサンプルからの溶出液には、リパーゼ活性の阻害は認められなかった。

（実施例７）
本実施例では、実施例５のサンプル（３）について、ヒトにおける脂質代謝改善効果を確認した。

（ヒトにおける脂質代謝改善効果の測定）
本実施例では、血液中の総コレステロール量が２２０ｍｇ／ｄＬ以上の高脂血症男性５名（平均年齢４０．６±１．１歳、平均体重６２．８±８．４ｋｇ）を被験者とした。前記被験者選定基準（総コレステロール量が２２０ｍｇ／ｄＬ以上）は、日本動脈硬化学会による高脂血症の診断基準に基づき設定した。前記被験者に、１日あたり前記粉末液化酒粕サンプル３ｇを、２ヶ月間毎日摂取させた。なお、前記粉末液化酒粕サンプルに含まれる本発明のタンパク質含有率は、約６４％であった。前記サンプルの摂取条件は、１日の摂取量のみを限定し、摂取する時刻および回数は自由とした。また、前記サンプルは、他の飲食物と同時に摂取しても構わないものとした。前記被験者から、摂取開始前、摂取開始１ヶ月後、摂取開始２ヶ月後および試験終了１ヶ月後の計４回採血した。そして、前記採血した血液から、常法により血清を得た。前記血清について、血清中中性脂肪測定用「ネスコートＶＬＩＩ ＴＧ（商品名）」、血清中総コレステロール測定用「ネスコートＶＬＩＩ ＴＣ（商品名）」（ともに、アルフレッサ ファーマ株式会社製）を用いて、血清中の中性脂肪、総コレステロールおよびＨＤＬコレステロール量を測定した。また、ＬＤＬコレステロール量は、以下の式（フリードワルドの公式）により算出可能であった４名について算出した。

（式１）
ＬＤＬコレステロール＝総コレステロール−ＨＤＬコレステロール−中性脂肪×０．２

図７は、被験者５名の前記総コレステロール量の平均値の推移を示すグラフである。縦軸は、総コレステロール量（ｍｇ／ｄＬ）であり、横軸は、各測定時である。図示のように、前記総コレステロール量は、摂取開始２ヶ月後まで減少傾向が続き、摂取終了１ヶ月後においても、減少傾向が維持された。また、図示しないが、前記ＨＤＬコレステロール量は、摂取開始前から摂取終了１ヶ月後まで、ほぼ変動しなかった。

図８は、前記式１を用いて算出した前記ＬＤＬコレステロール量の平均値の推移を示すグラフである。縦軸は、ＬＤＬコレステロール量（ｍｇ／ｄＬ）であり、横軸は、各測定時である。同図に示すように、前記ＬＤＬコレステロール量は、前記総コレステロール量と同様に、摂取開始２ヶ月後まで減少傾向が続き、摂取終了１ヶ月後においても、減少傾向が維持された。したがって、高コレステロール高脂血症者が、本実施例のサンプルを摂取すれば、前記ＨＤＬコレステロール量は維持したままで、前記総コレステロール量および前記ＬＤＬコレステロール量を低減できることが示された。

図９は、血中中性脂肪量の多い被験者２名について、前記中性脂肪量の推移を示すグラフである。縦軸は、中性脂肪量（ｍｇ／ｄＬ）であり、横軸は、各測定時である。前記２名は、摂取開始２ヶ月目まで、前記中性脂肪量の減少傾向が続いた。したがって、本実施例のサンプルは、高中性脂肪高脂血症者の前記中性脂肪量を低減することも示された。

下記表６は、本実施例における前記中性脂肪量の変化を、被験者別に示した表である。同表中の変化量および増減率は、下記式２および３を用いて算出した。

（式２）変化量（ｍｇ／ｄＬ）＝（摂取開始２ヶ月後の前記中性脂肪量）−（摂取前の前記中性脂肪量）
（式３）増減率（％）＝（変化量）÷（摂取前の前記中性脂肪量）×１００

（表６）
モニター 中性脂肪（ｍｇ／ｄＬ） 変化量 増減率
摂取前 摂取開始２ヶ月後 （ｍｇ／ｄＬ） （％）
Ａ ４３２ ３８５ −４７ −１０．９
Ｂ １４４ １０９ −３５ −２４．３
Ｃ ８０ ６３ −１７ −２１．３
Ｄ ５５ ８１ ２６ ４７．３
Ｅ ４８ ６２ １４ ２９．２

表６に示すように、前記中性脂肪量の多い高脂血症者と異なり、前記中性脂肪量が正常範囲である２名は、前記中性脂肪量が低減しなかった。したがって、本実施例のサンプルは、高中性脂肪高脂血症者に対しては前記中性脂肪量を大幅に低減させ、中性脂肪量の正常な高脂血症者に対しては前記中性脂肪量に影響を与えない、副作用の少ない安全な食品素材であることが示された。

以上のように、本発明の前記タンパク質は、優れた胆汁酸吸着能およびリパーゼ吸着能を有し、脂質代謝改善効果に優れる。したがって、本発明の前記タンパク質は、例えば、胆汁酸再吸収抑制剤、脂質吸収抑制剤、脂質代謝改善剤、医薬、食品素材および食品など様々なものに適用でき、その用途は制限されず広い。

図１は、本発明の実施例１および比較例１における胆汁酸吸着率を示すグラフである。 図２は、本発明の実施例２における胆汁酸吸着率を示すグラフである。 図３は、本発明の実施例３における胆汁酸吸着率を示すグラフである。 図４は、本発明の実施例４における電気泳動の写真である。 図５は、本発明の実施例４におけるキャピラリー電気泳動のチャートと電気泳動の写真である。 図６は、本発明の実施例６におけるリパーゼ活性阻害率を示すグラフである。 図７は、本発明の実施例７における血清中総コレステロール量の平均値の推移を示すグラフである。 図８は、本発明の実施例７における血清中ＬＤＬコレステロール量の平均値の推移を示すグラフである。 図９は、本発明の実施例７における血清中中性脂肪量の推移を示すグラフである。

Claims (4)

1. コメ由来またはコメ原料醸造食品由来のタンパク質であって、下記の（ａ）および（ｂ）の理化学的性質を有する、下記（Ａ）、（Ｂ）および（Ｃ）からなる複合タンパク質。
   （ａ）水、有機溶媒、塩水溶液およびアルカリ溶液に不溶性もしくは難溶性である。
   （ｂ）セルラーゼ、ヘミセルラーゼ、マンナナーゼおよびプロテアーゼに対して難加水分解性であり、かつペプシンおよびパンクレアチンに対して難消化性である。
   （Ａ）分子量８．３２ｋＤａのタンパク質であって、Ｎ末端アミノ酸配列が下記配列番号１の配列であるタンパク質。
   配列番号１：Ｉｌｅ−Ｔｈｒ−Ｔｈｒ−Ｍｅｔ−Ｇｌｎ−Ｔｙｒ−Ｐｈｅ−Ｐｒｏ
   （Ｂ）分子量１４．３７ｋＤａのタンパク質であって、Ｎ末端アミノ酸配列が下記配列番号２または下記配列番号３の配列であるタンパク質。
   配列番号２：Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｐ−Ａｌａ−Ｌｅｕ
   配列番号３：Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｐ−Ｐｒｏ−Ｌｅｕ
   （Ｃ）分子量１４．９７ｋＤａのタンパク質であって、Ｎ末端アミノ酸配列が下記配列番号４または下記配列番号５の配列であるタンパク質。
   配列番号４：Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｐ−Ａｌａ−Ｌｅｕ
   配列番号５：Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｐ−Ｐｒｏ−Ｌｅｕ
2. 前記醸造食品が、清酒醸造過程において生じる副産物である請求項１記載の複合タンパク質。
3. 前記副産物が、液化酵素により液化された原料米をアルコール発酵させることにより製造される清酒の製造において生成する液化酒粕である請求項２記載の複合タンパク質。
4. 胆汁酸吸着能を有する請求項１から３のいずれか一項に記載の複合タンパク質。

Images