JP5713887B2 - 筋変性疾患の検出方法、及び治療効果判定方法 - Google Patents
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Description
1)正常動物に比較して、尿中PGD2代謝物であるTetranor-PGDMが、筋ジストロフィーモデル動物において増加していた。
2)筋ジストロフィーモデル動物に、公知のPGD2合成酵素阻害剤を投与することにより、Tetranor-PGDMの尿中排泄量が減少した。
項1. 被験体から分離した検体中のTetranor-PGDM含量を測定する工程を含む、筋変性疾患の検出方法。
項2. 筋変性疾患の患者から分離した検体中のTetranor-PGDM含量を測定する工程を含む、筋変性疾患に対する治療薬及び/又は治療方法の効果判定方法。
項3. 前記検体が尿である、項1又は2に記載の方法。
項4. Tetranor-PGDMの測定が、高速液体クロマトグラフィー−タンデムマススペクトロメトリー法(HPLC-MS/MS)、酵素免疫測定法(EIA)、放射性免疫測定法(RIA)、蛍光免疫測定法(FIA)、エライザ法(ELISA)または酵素法により行われる、項1〜3のいずれかに記載の方法。
項5. 筋変性疾患が進行性筋ジストロフィー症、先天性筋ジストロフィー症、肢帯型筋ジストロフィー症、顔面肩甲上腕型筋ジストロフィー症、筋強直性筋ジストロフィー症、筋萎縮性側索硬化症またはミオパチーである、項1又は2に記載の方法。
項6. Tetranor-PGDMに対する抗体を含むことを特徴とする筋変性疾患の診断測定用キット。
項7. Tetranor-PGDMに対する抗体を含むことを特徴とする筋変性疾患の治療薬及び/又は治療方法の効果予測及び/又は判定用キット。
項8. Tetranor-PGDMに対する抗体、標識されたTetranor-PGDM、必要に応じてさらに抗イムノグロブリン抗体、検体希釈液、抗体ないし標識Tetranor-PGDMの希釈液、既知濃度の標準Tetranor-PGDM、EIA用の基質、EIA用の停止液からなる群から選ばれる少なくとも1種を含む項6又は7に記載のキット。
本発明における被験体から分離した検体とは、好ましくは尿、糞便、血液、血漿、血清であり、より好ましくは尿である。
実施例1
1.材料及び方法
(1)材料および検体
筋ジストロフィーモデル動物として、以下の動物を使用した。
筋ジストロフィーマウス:mdx (C57Bl/10 ScSn、入手先:JAX Laboratories)
筋ジストロフィー犬 :CXMDJ(CXMDJ、入手先:国立精神・神経センター)
また、比較対照動物として同系統の動物を使用した。
Wild-type マウス(C57BL/10 ScSn、入手先:JAX Laboratories)
正常ビーグル犬(入手先:国立精神・神経センター)
被験化合物として、公知の造血器型プロスタグランジンD合成酵素(HPGDS)阻害剤として入手可能な、被験化合物1;4-ベンズヒドリルオキシ-1-{3-(1H-テトラゾール-5-イル)-プロピル}ピペリジン(Jpn. J. Pharmacol., 78, 1-10 (1998))、被験化合物2;N-メトキシ-N-メチル-4-(5-ベンゾイルベンゾイミダゾール-2-イル-3,5-ジメチルピロール-2-カルボキサミド(国際公開WO2007007778号公報)を用いた。
4週齢のmdxマウスを用いて、溶媒(0.5% メチルセルロース溶液)あるいは被験化合物1を30mg/kgの用量で5日間経口投与した。被験化合物1の投与開始前および投与5日後の尿は、マウス用代謝ケージを用いて約12時間採取した。また、比較対照として同週齢の同系統wild-typeマウスから尿を採取した。尿中クレアチニン濃度は測定キット(Lタイプワコー CRE・M、和光純薬)を用いて行った。
CXMDJに溶媒(0.5% メチルセルロース溶液)あるいは被験化合物2を約1年間経口投与した後、溶媒投与犬には被験化合物2を、また被験化合物2投与犬には溶媒投与を開始した。溶媒投与から被験化合物2投与への切り替え前に、被験化合物2投与から溶媒投与への切り替え前にそれぞれ尿を採取した。また、投与液を切り替え後は経時的に尿を採取した。また、比較対照として正常ビーグル犬から尿を採取した。
採取したマウスあるいは犬の尿200μLに、内部標準としてTetranor-PGDMの重水素標識体であるTetranor-PGDM-d6(Cayman Chemical社)5ngを混合した。精製水で容量を2mLとし、pHを3に調整した。あらかじめアセトニトリル5mLおよび精製水5mLで平衡化したSep-Pak Vac C18カートリッジ(Waters)に尿を注入した。精製水で調製した10%アセトニトリル溶液5mLおよびヘキサン10mLで洗浄後、酢酸エチル5mLで溶出させ、窒素気流下で乾固した。残渣を精製水で調製した10%アセトニトリル溶液100μLに溶解し、測定サンプルとした。
前処理後の尿サンプルを用いて、Tetranor-PGDM量を測定した。測定には高速液体クロマトグラフィー−タンデムマススペクトロメトリー(HPLC-MS/MS)装置を使用した。HPLC装置として、Prominence system(システムコントローラ―CBM-20A、送液ユニットLC-20AD2台、オンライン脱気装置DGU-20A3、カラムオーブンCTO-20A、冷却機能付きオートサンプラーSIL-20AC、島津製作所製)、ガードカラムとしてInertsilODS3、内径2.1mm×長さ50mm(GLサイエンス社製)を、分離カラムにはInertsilODS3、内径2.1mm×長さ250mm(GLサイエンス社製)を使用し、移動相は0.01%〜0.2%蟻酸あるいは0.01%〜0.2%酢酸と、アセトニトリルあるいはアセトニトリル/メタノール(90:10)の濃度勾配で流速は0.2mL/minとした。カラムオーブンは37℃、オートサンプラーは4℃に設定した。MS/MS部はエレクトロスプレーイオン化をイオン源とする3連四重極型質量分析装置(4000 Q TRAP LC/MS/MS system、アプライドバイオシステムズ社製)を用いた。定量法としてはMRM (Multiple Reaction Monitoring)法を用いた。本法は、親イオン(プレカーサーイオン)とCID(衝突誘起解離)により生じたフラグメントイオンの質量から、真の親イオンのみを特異的に選択し、その面積から親イオンを正確に定量する方法であり、すなわちエレクトロスプレーイオン化法により目的分子の親イオンを生成し、1番目の質量分析器(Q1)で当該親イオンを分離し、衝突部(Q2)ではCID(衝突誘起解離)により当該親イオンに特徴的なフラグメントイオンを生成し、さらに2番目の質量分析器(Q3)では当該フラグメントイオンを分離し、その下流の検出部で当該フラグメントイオンを検出する。Tetranor-PGDM(質量数328)の検出は生成したm/z(質量数÷電荷)327のイオンをさらにCID(衝突誘起解離)によって分解し、生成するプロダクトイオンm/z155、143、109のいずれかを用いて行った。内部標準Tetranor-PGDM-d6(質量数334)の検出は生成したm/z(質量数÷電荷)333のイオンをさらにCID(衝突誘起解離)によって分解し、生成するプロダクトイオンm/z161、149、109のいずれかを用いて行った。データ解析はMS/MSに付属するソフトウェアAnalyst Version 1.4.1を用いて行った。作成されたマスクロマトグラムから、Tetranor-PGDM由来のピークについて面積計算を行い、標準試料を用いて作成した検量線より各ピークの定量を行った。定量の際には、分析毎の抽出効率およびイオン化効率を補正するために内部標準として導入したTetranor-PGDM-d6由来ピークの面積値を用いて補正を行った。
mdxマウスでの症状評価として、マウス用握力測定装置(トラクションメーター、ブレインサイエンスイデア製)を用いて前肢の握力を測定した。1回の測定を2分以内に行い、5回の試行における平均値を算出した。
(1)mdxマウスで尿中Tetranor-PGDM濃度は高値を示す
尿中クレアチニン濃度で補正したTetranor-PGDM濃度はwild-typeマウスにおいて6.8±1.0ng/mg Cre(平均値±標準誤差)であったが、mdxマウスでは17.8±0.8ng/mg Cre(平均値±標準誤差、p<0.0003)であり、約3倍の高値を示した。この結果は、尿中Tetranor-PGDM濃度が筋ジストロフィー症状発現に伴う尿中マーカーとなることを示している。
次に、mdxマウスの症状に対するHPGDS阻害剤の作用を評価した。溶媒投与群では前肢握力の有意な変化はなかったが、被験化合物1を反復経口投与することでmdxマウスの前肢握力は有意に増加した(図1右)。同じmdxマウスでの尿中Tetranor-PGDM濃度を測定した結果、被験化合物1投与群では尿中Tetranor-PGDM濃度が有意に低下した(図1左)。この結果はmdxマウスでの症状改善と尿中Tetranor-PGDM濃度の変動が相関することを示している。
正常犬に比べて、筋ジストロフィーモデル犬であるCXMDJでは尿中Tetranor-PGDM濃度は高値を示し、被験化合物2を投与したCXMDJでは尿中Tetranor-PGDM濃度が減少した(表1)。この結果は、尿中Tetranor-PGDM濃度が筋ジストロフィー症状発現に伴う尿中マーカーとなることを示している。
約1年間にわたり被験化合物2を経口投与した後に、溶媒投与に切り替えたCXMDJでは尿中Tetranor-PGDM濃度が増加し(図2左)、症状スコアが増悪していた。一方、約1年間にわたり溶媒を経口投与した後に、阻害剤投与に切り替えたCXMDJでは尿中Tetranor-PGDM濃度が低下し(図2右)、症状スコアが軽減していた。この結果は、尿中Tetranor-PGDM濃度の変動が筋ジストロフィー治療薬投与による効果判定マーカー、又は予測マーカーになりうることを示している。
Claims (7)
- 筋変性疾患の検出方法であって、被験体から分離した検体中のTetranor-PGDM含量を測定する工程を含み、前記検体が尿であり、筋変性疾患が進行性筋ジストロフィー症、先天性筋ジストロフィー症、肢帯型筋ジストロフィー症、顔面肩甲上腕型筋ジストロフィー症、筋強直性筋ジストロフィー症、筋萎縮性側索硬化症またはミオパチーである、筋変性疾患の検出方法。
- 筋変性疾患に対する治療薬及び/又は治療方法の効果判定方法であって、筋変性疾患の患者から分離した検体中のTetranor-PGDM含量を測定する工程を含み、前記検体が尿であり、筋変性疾患が進行性筋ジストロフィー症、先天性筋ジストロフィー症、肢帯型筋ジストロフィー症、顔面肩甲上腕型筋ジストロフィー症、筋強直性筋ジストロフィー症、筋萎縮性側索硬化症またはミオパチーである、筋変性疾患に対する治療薬及び/又は治療方法の効果判定方法。
- Tetranor-PGDMの測定による治療効果の判定方法は、治療薬投与を伴う治療管理下において、治療薬投与前の患者の尿中に含まれるTetranor-PGDM濃度の値を所定値とし、尿中のTetranor-PGDM濃度の値がこの所定値よりも有意または有意傾向をもって低下する場合には治療薬ないし治療方法が有効であると判定され、尿中のTetranor-PGDM濃度の値が有意または有意傾向をもって低下しない場合には治療方法ないし治療薬は有効ではないと判断する、請求項2に記載の筋変性疾患に対する治療薬及び/又は治療方法の効果判定方法。
- Tetranor-PGDMの測定が、高速液体クロマトグラフィー−タンデムマススペクトロメトリー法(HPLC-MS/MS)、酵素免疫測定法(EIA)、放射性免疫測定法(RIA)、蛍光免疫測定法(FIA)、エライザ法(ELISA)または酵素法により行われる、請求項1又は2に記載の方法。
- 筋変性疾患の診断測定用キットであって、Tetranor-PGDMに対する抗体を含み、筋変性疾患が進行性筋ジストロフィー症、先天性筋ジストロフィー症、肢帯型筋ジストロフィー症、顔面肩甲上腕型筋ジストロフィー症、筋強直性筋ジストロフィー症、筋萎縮性側索硬化症またはミオパチーであることを特徴とする筋変性疾患の診断測定用キット。
- 筋変性疾患の治療薬及び/又は治療方法の効果予測及び/又は判定用キットであって、Tetranor-PGDMに対する抗体を含み、筋変性疾患が進行性筋ジストロフィー症、先天性筋ジストロフィー症、肢帯型筋ジストロフィー症、顔面肩甲上腕型筋ジストロフィー症、筋強直性筋ジストロフィー症、筋萎縮性側索硬化症またはミオパチーであることを特徴とする筋変性疾患の治療薬及び/又は治療方法の効果予測及び/又は判定用キット。
- Tetranor-PGDMに対する抗体、標識されたTetranor-PGDM、必要に応じてさらに抗イムノグロブリン抗体、検体希釈液、抗体ないし標識Tetranor-PGDMの希釈液、既知濃度の標準Tetranor-PGDM、EIA用の基質、EIA用の停止液からなる群から選ばれる少なくとも1種を含む請求項5又は6に記載のキット。
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