JP5688798B2 - α−1,3−分枝シクロデキストランの使用方法 - Google Patents
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Description
図1は市販されているシクロデキストラン混合物(株式会社シー・アイ・バイオ 商品名「CIリッチ」 Lot.0907002)(Cimix)のHPAEC−PAD分析によるクロマトグラムである。シクロデキストラン混合物を1mg/mlの濃度で含む水溶液の25μlをCarboPacPA−100カラム(250mm×2mmI.D.、DIONEX)に注入し、下記の条件でHPAEC−PAD分析した。
(分析条件)
装置:Dionex ICS−3000システム
検出方法:PAD
溶離液:100mMNaOH/0−5mMNaOAc(濃度勾配0−60min)
流量:1.0ml/min
温度:35℃
分取カラムクロマトグラフィ及びリサイクリングHPLCシステムを用いて、シクロデキストラン混合物からシクロデキストラン及び分枝シクロデキストランを分取した。前記シクロデキストラン混合物の水溶液を、ODSカラム(DaisopakSP−120−5−ODS−BP、250mm×20mmI.D.、ダイソー(株))に導入し、7容量%メタノール水溶液で溶出させて1〜5番目のピーク画分(Fr1〜Fr4)を分取し、その後8.5容量%メタノール水溶液で溶出させて6〜13番目のピーク画分(Fr5〜11)を分取して、各画分を得た(図2参照。なお、10〜13番目(Fr8〜11)のピークは示されていない。)。
上記で得られた各画分の溶液を凍結乾燥して、シクロデキストラン及び分枝シクロデキストランを得た。TOF−MSにより、得られたシクロデキストラン及び分枝シクロデキストランの質量分析を行い、各シクロデキストランを構成する糖の重合度を算出した。TOF−MS測定は以下の方法で行った。サンプルの少量を50μlのマトリックス溶液(0.1M DHBA/10容量%メタノール)に懸濁し、0.8μlをサンプルスライドに滴下してドライヤーで乾燥させた。このサンプルスライドを、TOF−MS分析装置(DALTONICS autoflex2、Bruker社製)で分析した。図4に、その一例として、Fr2−1から得られた分枝シクロデキストラン(CIb−9)のスペクトルを示す。
分取されたシクロデキストラン及び分枝シクロデキストランをそれぞれD2Oに溶解し(10mg/0.6ml)、400MHz NMR装置(JNM AL−400、JEOL社製)を用いて80℃で1H NMR測定を行った。その結果を図5に示す。なお、図5にはFr6−4、Fr7−3、Fr11画分のチャートは示されていない。各画分には、そのアノメリック領域のメインピークが4.95ppmに観察された。この4.95ppmのピークは→6)−α−Glcp−(1→残基に由来する。また、Fr2−1及びFr3の画分には、4.95ppmのメインピーク以外に、5.29ppmと4.97ppmの小さなピークが観察された。さらに1H−1H二次元NMRスペクトル(COSYスペクトル、HOHAHAスペクトル)と13C−1H二次元NMRスペクトル(HMQCスペクトル、HMBCスペクトル)を用いて1H NMRスペクトルのピークの帰属を行った。また、既報の1H NMR分析(Norman W. H. Cheetham, Gwen J. Walker, Barbara J. Pearce, Eva Fiala-Beer and Catherine Taylor, Structures of water-soluble α- -glucans synthesized from sucrose by glucosyltransferases isolated from Streptococcus sobrinus culture filtrates. Carbohydrate Polymers 14, 3)により、5.29ppmのピークはα−Glcp−(1→残基に由来するピークであり、4.97ppmのピークは→3,6)−α−Glcp−1(→残基に由来するピークであると帰属された。また、図5中H−1〜H−6'はグルコース残基を構成する1位から6位の各炭素原子に結合した水素原子を意味している。
各画分から得られたシクロデキストラン及び分枝シクロデキストランのメチル分析を行った。なお、1H NMR測定の結果、CIb−10は、Fr2−1と同じ結合様式を持つことが明らかとなっているため、メチル化分析には、分枝シクロデキストランを代表してFr2−1を用いた。試料をDMSOに溶解し、水酸化ナトリウムとよう化メチルを加え、100℃で2時間加熱してメチル化した。メチル化物はクロロホルム抽出により回収し、再度メチル化を行った。得られたメチル化物を、Sephadex LH-20(Pharmacia)カラム(溶離液:クロロホルム−メタノール容量比2:1)で分画した。得られたメチル化糖を、90質量%ギ酸(100℃、6時間)、続いて2M TFAを用いて加水分解した(100℃、6時間)。これを水素化ホウ素ナトリウムで還元し、ピリジンと無水酢酸を加えて110℃で2時間反応させてアセチル化した。得られた部分メチル化アルジトールアセテートをクロロホルムに溶解し、DB−225カラム(J&W Scientific, 0.25mm i.d.×30m)とEI検出器を装備したGC−MS装置(GCMS-QP5000、島津製作所)で分析した(キャリアガス:ヘリウム、カラ入口圧:100kPa(全流量34mL/min)、カラム温度:170℃(1min)から210℃まで3℃/minで昇温、気化室温度:230℃、検出器温度:230℃)。その結果、Fr2−2は、2,3,4−tri−O−methyl−glucoseから得られたアルジトールアセテートのみが検出されたのに対し、Fr2−1は、2,3,4,6−tetra−、2,3,4−tri−、2,4−di−O−methyl−glucoseから得られたアルジトールアセテートが検出された。1H NMR測定の結果、各フラクションから得られたシクロデキストラン及び分枝シクロデキストランの結合様式は、α結合であることが分かっているため、メチル化分析の結果から、Fr2−2は、→6)−α−Glcp−(1→残基のみからなることが分かった。また、Fr2−1は、非還元末端のα−Glcp−(1→と、→3,6)−α−Glcp−(1→残基を有することがわかった。
(シクロデキストラン混合物の調製)
4種類の市販デキストラン「Batch No.7527」、「Batch No.3527」、「Batch No.527」(いずれもFison Limited社製)、「T−10加水分解物」(T−10(Pharmacia Fine Chemicals社製)を、0.1N HClで2時間加水分解したサンプル)を原料として環状イソマルトオリゴ糖グルカノトランスフェラーゼ(CITase:特許文献5に記載されたT−3040株由来の組換えCITase)を用いてシクロデキストラン混合物を調製した。10mM CaCl2を含む50mM 酢酸ナトリウム緩衝液(pH5.5)(500μL)にデキストラン10mgをそれぞれ溶解し、CITase6μgを加えて40℃で370分間反応させた。反応後、100℃で10分間加熱して酵素を失活させた。エタノール、続いて精製水を流したSep-Pak C18 カートリッジ(ウォーターズ社製)に反応液をそれぞれ流した後、精製水で洗浄し、次いで20容量%エタノールで生成されたシクロデキストラン混合物を溶出させた。得られた溶出液を減圧下で濃縮した後、濃縮液を凍結乾燥することによりシクロデキストラン混合物を得た。
得られたシクロデキストラン混合物について、実施例1と同様の条件でHPAEC−PAD分析を行い、溶出時間からシクロデキストラン混合物に含まれる成分の同定を行った(図7参照)。すべての反応物で、CI−7,CI−8,CI−9,CI−10に相当するピークが検出された。さらに、CIb−9,CIb−10,CIb−11に相当するピークも検出された。分枝シクロデキストランは、基質により存在比が異なり、T−10加水分解物を基質とした時より、Batch No.7527、Batch No.3527、Batch No.527を基質とした方が、より多くの分枝シクロデキストランを生成した。このことから、基質を変えることにより、分枝シクロデキストランの生成量を調整できることが分かった。
C70フラーレン(Strem Chemicals, Inc.製)の0.6mgを、1mg/mlのサンプルを含む水溶液の0.3mlに懸濁した。その後、実施例2と同様に操作を行い、各サンプルの可能化能を測定した。なお、C70フラーレンの添加量は過剰量であり、遠心分離した後には全ての溶液で沈殿を生じていた。
Leuconostoc mesenteroides由来デキストランスクラーゼ(シグマ・アルドリッチ社製)の0.18units/mlと試験サンプル(0.125mM)を、40mM酢酸緩衝液(pH=5.2)中で、30℃で60分間インキュベートした。同体積の100mg/mlスクロース水溶液を加えて、さらに30℃で20分間インキュベートした。水酸化ナトリウム水溶液を最終濃度が0.2Mとなるように加えて反応を停止した。反応液中の還元糖量を、Park-Johnson法により定量した。スクラーゼ活性は、試験サンプルがない時に生じる還元糖量を100%とし、これに対する相対量で示した。その結果を図8に示す。分枝を有するシクロデキストランは、分枝を有しないシクロデキストランとほぼ同様のデキストランスクラーゼ阻害活性を示した。このように、本発明の分枝シクロデキストランはう蝕の発生を防止する抗う蝕剤として利用し得る。
(乳液の調製)
油相部として(1)ステアリン酸2.0、(2)セチルアルコール1.5、(3)デカメチルペンタシクロシロキサン3.0、(4)ジメチルポリシロキサン(6cs)5.0、(5)イソステアリン酸ポリグリセリル3.0、(6)ワセリン0.5、(7)ポリオキシエチレンモノオレイン酸エステル2.0及び水相部として(8)分枝シクロデキストラン(重合度9)0.001、(9)C60フラーレン0.01、(10)カルボキシビニルポリマー0.2、(11)1,3−ブチレングリコール5.0、(12)グリセリン3.0、(13)水酸化カリウム1.0、(14)適量のメチルパラベン、(15)残部の精製水から乳液100を調製した(各質量部)。(15)に(8)を溶かした溶液に(9)を加えて、超音波を投射してフラーレンの溶液を作製した。この溶液に(10)〜(14)を加え70℃で混合し、これに油相部(1)〜(7)を混合溶解したものを添加して乳化を行い、冷却処理をして乳液を得た。
(ローションの調製)
(1)エタノール10.0、(2)グリセリン1.5、(3)クエン酸ナトリウム0.09、(4)クエン酸0.02、(5)パラオキシ安息香酸メチル0.05、(6)C70フラーレン0.005、(7)分枝シクロデキストラン0.01、(8)適量の香料、(9)残部の精製水から化粧水100を調製した。(9)に(7)を溶かした溶液に(6)を加えて、超音波を投射してフラーレンの溶液を得た。ここに(1)〜(5)(8)を加えて混合溶解して化粧水を得た。
Claims (9)
- フラーレンと、親水系溶媒と、1分子のグルコースがα−1,3−結合で、7分子から10分子のグルコースからなる環状デキストランに結合したα−1,3−分枝シクロデキストランを混合する工程を含むフラーレンが親水系溶媒に溶解した溶液の調製方法。
- フラーレンと、親水系溶媒と、1分子のグルコースがα−1,3−結合で、8分子のグルコースからなる環状デキストランに結合したα−1,3−分枝シクロデキストランを混合する工程を含むフラーレンが親水系溶媒に溶解した溶液の調製方法。
- フラーレンと、親水系溶媒と、1分子のグルコースがα−1,3−結合で、7分子から10分子のグルコースからなる環状デキストランに結合したα−1,3−分枝シクロデキストランα−1,3−分枝シクロデキストランを含むフラーレンが可溶化された溶液。
- フラーレンと、親水系溶媒と、1分子のグルコースがα−1,3−結合で、8分子のグルコースからなる環状デキストランに結合したα−1,3−分枝シクロデキストランを含むフラーレンが可溶化された溶液。
- フラーレンと、1分子のグルコースがα−1,3−結合で、7分子から10分子のグルコースからなる環状デキストランに結合したα−1,3−分枝シクロデキストランを含むシクロデキストランを含まない乳化組成物。
- フラーレンを含む乳化組成物の調整方法であって、
フラーレンと、親水系溶媒と、1分子のグルコースがα−1,3−結合で、7分子から10分子のグルコースからなる環状デキストランに結合したα−1,3−分枝シクロデキストランを混合する工程を含む調整方法。 - フラーレンと、1分子のグルコースがα−1,3−結合で、7分子から10分子のグルコースからなる環状デキストランに結合したα−1,3−分枝シクロデキストランを含む皮膚外用剤。
- フラーレンを含む皮膚外用剤の調整方法であって、
フラーレンと、親水系溶媒と、1分子のグルコースがα−1,3−結合で、7分子から10分子のグルコースからなる環状デキストランに結合したα−1,3−分枝シクロデキストランを混合する工程を含む調整方法。 - 1分子のグルコースがα−1,3−結合で、7分子から10分子のグルコースからなる環状デキストランに結合したα−1,3−分枝シクロデキストランを有効成分とする抗う蝕剤。
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