JP5440976B2 - 血小板凝集抑制剤 - Google Patents
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Description
他方、動脈硬化性疾患部位における血管壁障害が血小板凝集を引き起こして血栓の生成を誘発し、血栓症の原因となる。血栓症は、血栓形成箇所において血流の一部または全部を閉塞したり、形成箇所から剥がれた血栓が血管内を移動し他の部位において血流の一部または全部を閉塞したりすることにより起こる病態である。特に脳血管で起こる脳梗塞、脳卒中や、心臓血管で起こる心筋梗塞等は生死に関わる深刻な症状を引き起こす。
また、最近、ヤマブシタケの抽出物に、他のキノコ類には見られない強い抗血小板作用(血小板凝集抑制作用)が確認され、ヤマブシタケ株およびヤマブシタケを有効成分とする血小板凝集抑制剤が提案されている(特許文献1参照)。
このため、特許文献1に記載の血小板凝集抑制剤では、抗血小板作用を発現する物質を効率的に摂取することはできず、結果的に十分な血小板凝集抑制効果を奏することができないという問題がある。
すなわち、本発明は、ヘリセノンBの新規な生理学的性質(抗血小板作用)を発見したことに基いてなされたものである。
本発明の血小板凝集抑制剤は、下記の化学式で示されるヘリセノンBである。
本発明の血小板凝集抑制剤は、ヘリセノンBのみからなるものであってもよいが、薬学的に通常許容されている添加物、例えば、賦形剤、結合剤、崩壊剤、安定化剤、緩衝剤、矯味剤、矯臭剤、滑沢剤を加えて、定法により製造される、錠剤、カプセル剤、顆粒剤、散剤、内服液剤、シロップ剤、注射剤等の形態であってもよい。
へリセノンBが添加された一般加工食品としては、特に限定されるものではなく、パン類、ドーナツ、ケーキ、饅頭、ビスケット、クッキー、キャンデイ、キャラメル、ガム、あられ、せんべい、ポテトやコーンパウダーを原料として作られるスナック菓子類、ジュース、清涼飲料、ジャム、ゼリー、寒天、ヨーグルト、醤油、ソース、ケチャップ、豆腐、野菜や果実のピユーレー、パスタ、うどん、そば、ラーメン等の麺類、スープ、味噌汁、麺類のスープ、カレー、シチュー、ふりかけ、レトルトパウチ食品全般などを例示することができる。
(1)血小板擬集抑制活性スクリーニング:
5種の食用きのこ(エリンギ、マイタケ、ブナシメジ、アガリクス、ヤマブシタケ)のエタノール抽出物について、血小板擬集抑制活性スクリーニングを行ったところ、ヤマブシタケのみに強い抗血小板作用が見出された。
具体的には、各きのこの凍結乾燥粉末1gあたり30mlのエタノールを加えて室温で
1.5時間抽出し、溶媒を減圧下で溜去して抽出物を得た。各きのこ抽出物は、ジメチルスルホキシドに10mg/mlになるよう溶解し、ウサギ洗浄血小板を用いた血小板凝集試験において終濃度100μg/mlの血小板凝集抑制活性をアグリゴメーターで測定した。
ヤマブシタケ子実体8.0kgを凍結乾燥後、エタノール1500mLを用いて室温で2日間抽出した。抽出残渣には新たなエタノール1500mLを加えて、さらに室温で2日間抽出した。2回の抽出液を混合し、溶媒(エタノール)を減圧下で溜去することにより、ヤマブシタケ子実体のエタノール抽出物52.0gを得た。
エタノール抽出物52.0gを酢酸エチルと水で分配し、酢酸エチル抽出物20.5gを得た。
得られた酢酸エチル抽出物20.5gを、n−ヘキサン−酢酸エチルを溶出溶媒に用いたシリカゲルカラムクロマトグラフィーによって分画した。
得られた分画物のうち、血小板凝集実験により血小板凝集抑制活性が認められた、n−ヘキサン−酢酸エチル(1:3)溶出画分485mgを、クロロホルム−メタノールを溶出溶媒に用いたシリカゲルカラムクロマトグラフィーによりさらに分画した。
得られた分画物のうち、血小板凝集実験により血小板凝集抑制活性が認められた、クロロホルム−メタノール(99:1)溶出画分45.6mgを、へキサン−クロロホルムを溶出溶媒に用いたシリカゲルカラムクロマトグラフィーによりさらに分画した。
得られた分画物のうち、血小板凝集実験により血小板凝集抑制活性が認められた、へキサン−クロロホルム(1:2)溶出画分15.2mgを、ODSカラムクロマトグラフィーに供し、水−メタノールで溶出した。
その結果、水−メタノール(1:2)溶出画分として、血小板凝集抑制活性を有する化合物9.0mgを単離した。
得られた化合物は、IR、 1H−NMR、13C−NMR分析により、上記化学式で示されるへリセノンBと同定された。
溶出画分の活性確認は、各溶出画分をジメチルスルホキシドに1−10mg/mlになるよう溶解し、ウサギ洗浄血小板を用いた血小板凝集試験において終濃度10−100μg/mlの血小板凝集抑制活性をアグリゴメーターで測定して行った。
上述の例では、乾燥させた子実体から抽出しているが、この他生の子実体でも良い。また、抽出溶媒としてエタノール以外の有機溶媒、例えば、メタノール、アセトン、クロロホルム、酢酸エチルなどを用いることも出来る。また抽出物の分画には、シリカゲル、ODS 以外の順相又は逆相カラムを用いることも可能であり、溶出溶媒には実施例以外の種々の溶媒、例えば、n−ヘキサン、トルエン、酢酸エチル、クロロホルム、アセトン、アセトニトリル、エタノール、メタノールなどを用いてもよい。
ウサギ(日本白色ウサギ、雄、2.5−3.5kg)の耳介動脈から採血を行い、この血液を、当該血液の6分の1量のクエン酸−ブドウ糖溶液(クエン酸:65mM、クエン酸三ナトリウム:85mM、ブドウ糖:2%)が収容されているプラスチックチューブに回収した。
採取した血液を250×gで12分間遠心分離を行い、PRP(多血小板血漿)を得た。得られたPRP(多血小板血漿)について、さらに90×gで5分間遠心分離を行い、赤血球および白血球を完全に取り除いた。
さらに、450×gで15分間遠心分離を行って血小板を沈殿させた。
この血小板に、Tyrode/Hepes溶液(NaCl:138.3mM,KCl:2.68mM,MgCl2 ・6H2 O:1.0mM,NaHCO3 :4.0mM,HEPES:10mM,NaH2 PO4 ・H2 O:0.42mM,グルコース:0.1%,ウシ血清アルブミン(BSA):0.35%,pH=6.35)を加えて洗浄を2回行った。
洗浄血小板は、3×108 /mLとなるようにTyrode/Hepes溶液(pH=7.35)に懸濁した。
血小板凝集試験は、アグリゴメーター(理化電機社製)を用いて、下記のようにして行った。
上記(2)で得られたへリセノンBをジメチルスルホキシドに溶解して、濃度の異なる(100μM、300μM、1000μM、3000μM)4種類の被験薬溶液(本発明の血小板凝集抑制剤)を調製した。
上記(3)で得られた洗浄血小板の懸濁液を300μLずつキュベットヘ入れてアグリゴメーターにセットし、2分後に塩化カルシウムを加えた(最終的な塩化カルシウム濃度:1mM)。さらに2分後、被験薬溶液の各々を3μL添加し5分間インキュべートした。その後(被験薬溶液を添加してから5分経過後)、コラーゲンを加えて凝集刺激を行った(最終的なコラーゲン濃度:3μg/mL)。
一方、対照(コントロール)として、洗浄血小板の懸濁液を300μLキュベットヘ入れてアグリゴメーターにセットし、2分後に塩化カルシウムを加え、さらに2分後、ジメチルスルホキシド3μLを加えて5分間インキュべートし、その後、コラーゲンを加えて凝集刺激を行った。
対照(コントロール)の最大凝集を(A0 )、被験薬溶液の各々を添加したときの最大凝集を(A)とし、下記式により凝集抑制率を測定した。結果を下記表1および図1に示す。
アグリゴメーター(理化電機社製)を用いて、下記のようにして血小板凝集試験を行った。
実施例1の(2)と同様にして得られたへリセノンBをジメチルスルホキシドに溶解して、濃度10mMの被験薬溶液(本発明の血小板凝集抑制剤)を調製した。
実施例1の(3)と同様にして得られた洗浄血小板の懸濁液300μLをキュベットヘ入れてアグリゴメーターにセットし、2分後に塩化カルシウムを加えた(最終的な塩化カルシウム濃度:1mM)。さらに2分後、被験薬溶液を3μL添加し(最終的なへリセノンBの濃度:100μM)5分間インキュべートした。その後(被験薬溶液を添加してから5分経過後)、コラーゲンを加えて凝集刺激を行った(最終的なコラーゲン濃度:3μg/mL)。
一方、対照(コントロール)として、洗浄血小板の懸濁液を300μLキュベットヘ入れてアグリゴメーターにセットし、2分後に塩化カルシウムを加え、さらに2分後、ジメチルスルホキシド3μLを加えて5分間インキュべートし、その後、コラーゲンを加えて凝集刺激を行った(最終的なコラーゲン濃度:3μg/mL)。
対照の血小板凝集を100%とし、ヘリセノンBを加えたときの血小板凝集率を求め、このような試験を3回行った。結果を表2(3回の平均値)および図2(平均値±標準誤差)に示す。
アグリゴメーター(理化電機社製)を用いて、下記のようにして血小板凝集試験を行った。
ヤマブシタケ抽出物より単離したへリセノンC、D、Eの各々をジメチルスルホキシドに溶解して、濃度10mMの被験薬溶液を調製した。
実施例1の(3)と同様にして得られた洗浄血小板の懸濁液を300μLずつキュベットヘ入れてアグリゴメーターにセットし、2分後に塩化カルシウムを加えた(最終的な塩化カルシウム濃度:1mM)。さらに2分後、被験薬溶液の各々を3μL添加し(最終的なへリセノン濃度:100μM)5分間インキュべートした。その後(被験薬溶液を添加してから5分経過後)、コラーゲンを加えて凝集刺激を行った(最終的なコラーゲン濃度:3μg/mL)。
実施例2における対照の血小板凝集を100%とし、ヘリセノンC、DおよびEの各々を加えたときの血小板凝集率を求め、このような試験を3回ずつ行った。結果を、実施例2の結果と併せて表2(3回の平均値)および図2(平均値±標準誤差)に示す。
なお、へリセノンC、D、Eと同様に脂肪酸エステルを有するへリセノンF、G、Hにおいても活性がないと推測され、血小板凝集抑制作用は、へリセノン類の中でも、へリセノンBが特異的に有する活性であると考えられる。
アグリゴメーター(理化電機社製)を用いて、下記のようにして血小板凝集試験を行った。
実施例1の(2)と同様にして得られたへリセノンBをジメチルスルホキシドに溶解して、濃度の異なる6種類の被験薬溶液(本発明の血小板凝集抑制剤)を調製した。
実施例1の(3)と同様にして得られた洗浄血小板の懸濁液を300μLずつキュベットヘ入れてアグリゴメーターにセットし、2分後に塩化カルシウムを加えた(最終的な塩化カルシウム濃度:1mM)。さらに2分後、被験薬溶液の各々を3μL添加し(最終的なへリセノンBの濃度:0.3μM、1μM、3μM、10μM、30μM、100μM)5分間インキュべートした。その後(被験薬溶液を添加してから5分経過後)、コラーゲンを加えて凝集刺激を行った(最終的なコラーゲン濃度:3μg/mL)。
一方、対照(コントロール)として、洗浄血小板の懸濁液を300μLキュベットヘ入れてアグリゴメーターにセットし、2分後に塩化カルシウムを加え、さらに2分後、ジメチルスルホキシド3μLを加えて5分間インキュべートし、その後、コラーゲンを加えて凝集刺激を行った(最終的なコラーゲン濃度:3μg/mL)。
対照の血小板凝集を100%とし、ヘリセノンBを加えたときの血小板凝集率を求め、このような試験を3回行った。結果を表3(3回の平均値)および図3(平均値±標準誤差)に示す。
被験薬溶液を添加した懸濁液および対照の懸濁液の各々に、凝集刺激薬として、コラーゲンに代えてU46619〔トロンボキサンA2(TXA2 )アナログ〕を加えて凝集刺激を行った(最終的なU46619(TXA2アナログ)濃度:3μM)こと以外は実施例3と同様にして血小板凝集試験を行い、対照の血小板凝集を100%とし、ヘリセノンBを加えたときの血小板凝集率を求め、このような試験を3回行った。結果を表3(3回の平均値)および図3(平均値±標準誤差)に示す。
被験薬溶液を添加した懸濁液および対照の懸濁液の各々に、凝集刺激薬として、コラーゲンに代えてトロンビンを加えて凝集刺激を行った(最終的なトロンビン濃度:0.01U/mL)こと以外は実施例3と同様にして血小板凝集試験を行い、対照の血小板凝集を100%とし、ヘリセノンBを加えたときの血小板凝集率を求め、このような試験を3回行った。結果を表3(3回の平均値)および図3(平均値±標準誤差)に示す。
被験薬溶液を添加した懸濁液および対照の懸濁液の各々に、凝集刺激薬として、コラーゲンに代えてアデノシン二リン酸(ADP)を加えて凝集刺激を行った(最終的なADP濃度:100μM)こと以外は実施例3と同様にして血小板凝集試験を行い、対照の血小板凝集を100%とし、ヘリセノンBを加えたときの血小板凝集率を求め、このような試験を3回行った。結果を表3(3回の平均値)および図3(平均値±標準誤差)に示す。
被験薬溶液を添加した懸濁液および対照の懸濁液の各々に、凝集刺激薬として、コラーゲンに代えて、アドレナリンおよびADPを加えて凝集刺激を行った(最終的なアドレナリン濃度:10μM、最終的なADP濃度:10μM)こと以外は実施例3と同様にして血小板凝集試験を行い、対照の血小板凝集を100%とし、ヘリセノンBを加えたときの血小板凝集率を求め、このような試験を3回行った。結果を表3(3回の平均値)および図3(平均値±標準誤差)に示す。
ヒトの腕部静脈より採血を行ったこと以外は実施例1の(3)と同様にして洗浄血小板の懸濁液を調製し、得られた懸濁液を用いたこと以外は実施例1の(4)と同様にして凝集抑制率を測定した。結果を下記表4(3回の平均値)および図4(平均値±標準誤差)に示す。
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