JP4536484B2 - 光学活性2−ヒドロキシ−5−(4−メトキシフェニル)−ペンタン酸エステルの製造方法 - Google Patents
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1.一般式(1)
で示される光学活性2−ヒドロキシ−5−(4−メトキシフェニル)−ペンタン酸エステルに不斉的に還元する能力を有する、アルスロバクター(Arthrobacter)属、シュードモナス(Pseudomonas)属、ハンセヌラ(Hansenula)属、ヤマダジーマ(Yamadazyma)属、キャンディダ(Candida)属、コリネバクテリウム(Corynebacterium)属、クロエッケラ(Kloeckera)属、ピキア(Pichia)属及びコマガタエラ(Komagataella)属に属する微生物群の中から選ばれた微生物又はその処理物を一般式(1)で示される5−(4−メトキシフェニル)−2−オキソペンタン酸エステルに接触させることを特徴とする光学活性2−ヒドロキシ−5−(4−メトキシフェニル)−ペンタン酸エステルの製造方法(以下、本発明製造方法と記すこともある。);
2.前記微生物が、アルスロバクター・パラフィネウス(Arthrobacter paraffineus )、シュードモナス・ニトロレヂュセンス(Pseudomonas nitroreducens)、シュードモナス・ディミヌタ(Pseudomonas diminuta )、シュードモナス・ピッケッティ(Pseudomonas picketti) 、シュードモナス・オキサラティクス(Pseudomonas oxalaticus) 、シュードモナス・キャリオフィリ(Pseudomonas caryophylli )、ハンセヌラ・ポリモルファ(Hansenula polymorpha)、ヤマダジーマ・ファリノーサ(Yamadazyma farinosa )、キャンディダ・エルノビイ(Candida ernobii)、キャンディダ・リポリティカ(Candida lipolytica)、キャンディダ・メタノリカ(Candida methanolica)、キャンディダ・マグノリエ(Candida magnoliae)、コリネバクテリウム・ヒドロカルボクラスタス(Corynebacterium hydrocarboclastus) 、クロエッケラ・アフリカーナ(Kloeckera africana)、ピキア・メンブラナファシエンス(Pichia membranaefaciens)又はコマガタエラ・パストリス(Komagataella pastoris)であることを特徴とする前項1記載の製造方法;
3.前項1又は2記載の製造方法により製造された光学活性2−ヒドロキシ−5−(4−メトキシフェニル)−ペンタン酸エステルを回収することを特徴とする光学活性2−ヒドロキシ−5−(4−メトキシフェニル)−ペンタン酸エステルの製造方法;
等を提供するものである。
さらに具体的には例えば、アルスロバクター・パラフィネウス(Arthrobacter paraffineus)ATCC19065、シュードモナス・ニトロレヂュセンス(Pseudomonas nitroreducens)JCM2782t、シュードモナス・ディミヌタ(Pseudomonas diminuta)JCM2788t、シュードモナス・ピッケッティ(Pseudomonas picketti)JCM5969t、シュードモナス・オキサラティクス(Pseudomonas oxalaticus)IFO13593t、シュードモナス・キャリオフィリ(Pseudomonas caryophylli)IFO13591、ハンセヌラ・ポリモルファ(Hansenula polymorpha)ATCC26012、ヤマダジーマ・ファリノーサ(Yamadazyma farinosa)IFO193、キャンディダ・エルノビイ(Candida ernobii)ATCC20000、キャンディダ・リポリティカ(Candida lipolytica)IFO1545、キャンディダ・メタノリカ(Candida methanolica)ATCC26175、キャンディダ・マグノリエ(Candida magnoliae)IFO0705、コリネバクテリウム・ヒドロカルボクラスタス(Corynebacterium hydrocarboclastus)ATCC21131、クロエッケラ・アフリカーナ(Kloeckera africana)IFO0869、ピキア・メンブラナファシエンス(Pichia membranaefaciens)IFO0189、及び、コマガタエラ・パストリス(Komagataella pastoris)ATCC76273の菌体又はその処理物が挙げられる。
本微生物は、炭素源、窒素源、有機塩、無機塩等を適宜含有する各種の微生物を培養するための培地を用いて培養すればよい。
培養温度及び培養液のpHは、本微生物が生育する範囲であれば特に限定されるものではないが、例えば、培養温度は約15〜45℃の範囲、培養液のpHは約4〜8の範囲を挙げることができる。培養時間は、培養条件により適宜選択することができるが、通常、約1〜7日間である。
また本発明製造方法は、さらに疎水性有機溶媒を用いて、水と疎水性有機溶媒との存在下で行うこともできる。この場合に用いられる疎水性有機溶媒としては、例えば、ギ酸エチル、酢酸エチル、酢酸プロピル、酢酸ブチル、プロピオン酸エチル、プロピオン酸ブチル等のエステル類、n−ブチルアルコール、n−アミルアルコール、n−オクチルアルコール等のアルコール類、ベンゼン、トルエン、キシレン等の芳香族炭化水素類、ジエチルエーテル、ジイソプロピルエーテル、メチル−t−ブチルエーテル等のエーテル類、クロロホルム、1,2−ジクロロエタン等のハロゲン化炭化水素類及びこれらの混合物が挙げられる。
また本発明製造方法は、さらに親水性有機溶媒を用いて、水と水性媒体との存在下で行うこともできる。この場合に用いられる親水性有機溶媒としては、例えば、メタノール、エタノール等のアルコール類、アセトン等のケトン、ジメトキシエタン、テトラヒドロフラン、ジオキサン等のエーテル類及びこれらの混合物が挙げられる。
NADP+又はNAD+をNADPH又はNADHに変換する能力を有するタンパク質としては、例えば、グルコース脱水素酵素、アルコール脱水素酵素、アルデヒド脱水素酵素、アミノ酸脱水素酵素及び有機脱水素酵素(リンゴ酸脱水素酵素等)等が挙げられる。
NADP+又はNAD+をNADPH又はNADHに変換する能力を有するタンパク質としてのグルコース脱水素酵素はNADP+又はNAD+をNADPH又はNADHに変換する際、基質としてグルコースを要するものであり、グルコースを酸化し、グルコノラクトンに変換する能力を有するタンパク質又はそのタンパク質を発現する微生物又はその処理物であってもよい。
また、NADP+又はNAD+をNADPH又はNADHに変換する能力を有するタンパク質がグルコース脱水素酵素である場合には、反応系内にグルコース等を共存させることにより当該タンパク質の活性が増強される場合もあり、例えば、反応液にこれらを加えてもよい。
また、当該タンパク質は、酵素そのものであってもよいし、また当該酵素をもつ微生物又は当該微生物の処理物の形態で反応系内に共存させてもよい。ここで処理物とは、前述にある「菌体処理物」と同等なものを意味する。
(1)4−メトキシけい皮酸エチルの合成
4−メトキシけい皮酸250g(1400mmol)、エタノール550mL及び濃硫酸78mL(1400mmol)の混合物を10時間還流した。液体クロマトグラフィーにて反応の完了を確認した後、得られた混合物を1000mLの氷水中に注ぎ込んだ。当該混合物をトルエンで2回抽出し(1000mL、500mL)、合一した有機溶媒相を500mLの上水にて2回洗浄した後、これを500mLの5%重曹水でさらに洗浄した。得られた混合物を、硫酸ナトリウムを用いて乾燥した後、これをエバポレータ-にて濃縮し、さらに真空ポンプで乾燥することにより、290.9gの4−メトキシけい皮酸エチルを得た(定量的)。
1H−NMR(CDCl3):δppm:1.33(t、J=7Hz、3H)、3.84(s、3H)、4.25(q、J=7Hz、2H)、6.31(d、J=16Hz、1H)、6.90(dd、J=2.0、6.6Hz、2H)、7.48(dd、J=2.0、6.6Hz、2H)、7.64(d、J=16Hz、1H)
4−メトキシけい皮酸エチル145.5g(700mmol)を含む1164グラムのテトラヒドロフラン溶液を0℃まで冷却した後、これに132gの水素化ホウ素ナトリウム(3500mmol)を発熱、発泡に注意しながら5回に分けて35分間かけて添加した。次いで、当該混合物を62℃まで昇温した後、これにメタノール291グラムを3時間かけて滴下した。得られた混合物を引き続き2時間保温した後、5℃以下まで冷却した。
得られた混合物を、5℃以下に冷却された3N塩酸800mL中に、15℃以下を保ちながらゆっくり加えた。全量を加えた後、さらに3N塩酸にてpHを6.9に調整した。このようにして得られた混合物をトルエンで2回抽出し(1000mL、500mL)、合一した有機溶媒相をエバポレータ-にて濃縮した後、さらに真空下蒸留精製することにより、66.7gの3−(4−メトキシフェニル)−1−プロパノールを得た(105〜110℃/0.2mmHg、57.3%)。
1H−NMR(CDCl3):δppm:1.81−1.91(m、2H)、2.65(t、J=7.7Hz、2H)、3.66(t、J=6.4Hz、2H)、3.79(s、3H)、6.83(dd、J=2.0、6.6Hz、2H)、7.12(dd、J=2.0、6.6Hz、2H)
塩化チオニル48g(400mmol)を65℃まで昇温した後、これに3−(4−メトキシフェニル)−1−プロパノール33.2g(200mmol)を3.5時間かけて滴下した。得られた混合物を引き続き70℃で2時間保温した後、200gの氷水中に注ぎ込んだ。当該混合物をトルエンで2回抽出し(100mL×2回)、合一した有機溶媒相を2回水洗した。得られた水先物をエバポレーターにて濃縮した後、さらに真空下蒸留精製することにより、28.77gの1−クロロ−3−(4−メトキシフェニル)プロパンを得た(91〜95℃/2.8mmHg、77.9%)。
1H−NMR(CDCl3):δppm:2.00−2.10(m、2H)、2.72(t、J=7.3Hz、2H)、3.52(t、J=6.6Hz、2H)、3.79(s、3H)、6.84(dd、J=2.0、6.5Hz、2H)、7.11(dd、J=2.0、6.5Hz、2H)
マグネシウム3.6g(150mmol)とテトラヒドロフラン(50g)との混合物中に、ジブロモエタン100μLを注入することにより、活性化されたマグネシウムを含む混合物を得た。得られた混合物を65℃まで昇温した後、当該混合物(5.2g(136mmol)を1−クロロ−3−(4−メトキシフェニル)プロパンに3時間かけて滴下した。得られた混合物を引き続き80℃で2時間保温した後、室温まで冷却することにより、Grignard剤を調製した。
−70℃以下まで冷却されたシュウ酸ジエチル39.7g(272mmol)のテトラヒドロフラン(100g)溶液に、上記のGrignardを−50℃以下で1時間かけて滴下した後、これを−10℃まで昇温し、さらに−10℃で2.5時間保温した。得られた混合物に、3N塩酸50mLと上水50mLとを加えた。当該混合物をトルエンで2回抽出し(100mL×2回)、合一した有機溶媒相を5%食塩水50mLで洗浄した後、硫酸マグネシウムで乾燥した。得られた乾燥物をエバポレータ-にて濃縮した後、バス温95℃、3mmHgで低沸点成分(主に過剰のシュウ酸ジエチル)を留去し、さらに高真空下蒸留精製することにより、28.75gの5−(4−メトキシフェニル)−2−オキソペンタン酸エチルを得た(128〜133℃/0.1mmHg、84.4%)。
1H−NMR(CDCl3):δppm:1.36(t、J=7.1Hz、3H)、1.90−1.98(m、2H)、2.61(t、J=7.5Hz、2H)、2.84(t、J=7.3Hz、2H)、3.79(s、3H)、4.30(q、J=7.1Hz、2H)、6.83(dd、J=2.0、6.6Hz、2H)、7.09(dd、J=2.0、6.6Hz、2H)
上記と同様の方法で、5−(4−メトキシフェニル)−2−オキソペンタン酸メチルを合成した。
1H−NMR(CDCl3):δppm:1.90−1.99(m、2H)、2.60(t、J=7.5Hz、2H)、2.84(t、J=7.3Hz、2H)、3.79(s、3H)、3.85(s、3H)、6.82(dd、J=2.0、6.6Hz、2H)、7.08(dd、J=2.0、6.6Hz、2H)
バッフルフラスコに滅菌済み培地(1Lの水に、グルコース20g、ポリペプトン5g、酵母エキス3g、肉エキス3g、硫酸アンモニウム0.2g、リン酸2水素カリウム1g及び硫酸マグネシウム7水和物0.5gを加えた後、pHを7.0に調整したもの)100mlを入れ、これに表1で示された各種の菌体を植菌した。これを30℃で好気条件下、振盪培養した。培養終了後、遠心分離(6000×g、10分)により菌体を分離し、0.85%食塩水にて洗浄した後、乾燥させ、乾燥菌体を得た。ねじ口試験管に5−(4−メトキシフェニル)−2−オキソペンタン酸エチル3mg、前記の乾燥菌体10mg、NADPH5mg、NADH5mg、100mMリン酸緩衝液(pH6.5)1.35ml及び酢酸ブチル0.15mlを添加し、30℃で16時間振とうした後、反応液に酢酸エチルを2ml添加した後、遠心分離(1000×g、5分)することにより、有機層を回収した。当該有機層を下記条件で液体クロマトグラフィーによる含量分析及び光学純度分析に供試した。得られた2−ヒドロキシ−5−(4−メトキシフェニル)−ペンタン酸エチルの生成率および光学純度分析の結果を表1に示す。
1H−NMR(CDCl3):δppm:1.28(t、J=7.1Hz、3H)、1.59−1.86(m、4H)、2.51−2.67(m、2H)、2.76(d、J=5.7Hz、1H)、3.78(s、3H)、4.15−4.20(m、1H)、4.23(q、J=7.1Hz、2H)、6.82(dd、J=2.0、6.6Hz、2H)、7.09(dd、J=1.8、6.6Hz、2H)
(含量分析条件)
カラム:SUMIPAX ODS A−212(5μm、6mmΦ×15cm)
移動相:A液 0.1%トリフルオロ酢酸水溶液、B液 0.1%トリフルオロ酢酸アセトニトリル溶液
時間(分) A液(%):B液(%)
0 80:20
20 10:90
30 1:99
30.1 80:20
流量:1.0ml/分
カラム温度:40℃
検出:290nm
カラム:CHIRALPAK AD(ダイセル化学工業社製)
移動相:ヘキサン/2−プロパノール/トリフルオロ酢酸=90/10/0.1
流量:0.5ml/分
カラム温度:40℃
検出:254nm
バッフルフラスコに滅菌済み培地(1Lの水に、グルコース20g、ポリペプトン5g、酵母エキス3g、及び、麦芽エキス3gを加えた後、pHを6.0に調整したもの)100mlを入れ、これに表2で示された各種の菌体を植菌した。これを30℃で好気条件下、振盪培養した。培養終了後、遠心分離(6000×g、10分)により菌体を分離し、0.85%食塩水にて洗浄した後、乾燥させ、乾燥菌体を得た。ねじ口試験管に5−(4−メトキシフェニル)−2−オキソペンタン酸エチル3mg、前記の乾燥菌体10mg、NADPH5mg、NADH5mg、100mMリン酸緩衝液(pH6.5)1.35ml及び酢酸ブチル0.15mlを添加し、30℃で16時間振とうした後、反応液に酢酸エチルを2ml添加した後、遠心分離(1000×g、5分)することにより、有機層を回収した。当該有機層を下記条件で液体クロマトグラフィーによる含量分析及び光学純度分析に供試した。得られた2−ヒドロキシ−5−(4−メトキシフェニル)−ペンタン酸エチルの生成率および光学純度分析の結果を表2に示す。
(含量分析条件)
カラム:SUMIPAX ODS A−212(5μm、6mmΦ×15cm)
移動相:A液 0.1%トリフルオロ酢酸水溶液、B液 0.1%トリフルオロ酢酸アセトニトリル溶液
時間(分) A液(%):B液(%)
0 80:20
20 10:90
30 1:99
30.1 80:20
流量:1.0ml/分
カラム温度:40℃
検出:290nm
カラム:CHIRALPAK AD(ダイセル化学工業社製)
移動相:ヘキサン/2−プロパノール/トリフルオロ酢酸=90/10/0.1
流量:0.5ml/分
カラム温度:40℃
検出:254nm
バッフルフラスコに滅菌済み培地(1Lの水に、グルコース20g、ポリペプトン5g、酵母エキス3g、及び、麦芽エキス3gを加えた後、pHを6.0に調整したもの)100mlを入れたものを2本準備し、それぞれにYamadazyma farinosa IFO193株を植菌した。これを30℃で好気条件下、2日間振盪培養した。培養終了後、遠心分離(6000×g、10分)により菌体を分離し、5.4gの湿菌体を得た。
5−(4−メトキシフェニル)−2−オキソペンタン酸エチル600mg、前記の湿菌体5.4g、NAD+60mg、グルコース900mg、グルコース脱水素酵素(天野製薬製)9mg、100mMリン酸緩衝液(pH7.0)30ml及び酢酸ブチル6mlを混合した。当該混合物を30℃で25時間攪拌した。尚、攪拌中は反応液のpHが6.8〜7.2となるように2M炭酸ナトリウム水溶液を徐々に加えた。攪拌終了後、反応液を遠心分離(1000×g、5分)することにより、有機層を回収した。当該有機層を下記条件で液体クロマトグラフィーによる含量分析及び光学純度分析に供試した。反応に用いた5−(4−メトキシフェニル)−2−オキソペンタン酸エチルの量に対して2−ヒドロキシ−5−(4−メトキシフェニル)−ペンタン酸エチルは86.7%生成していた。また下記条件で当該有機層中の2−ヒドロキシ−5−(4−メトキシフェニル)−ペンタン酸エチルの光学純度を測定した結果、(R)体が98 %e.e.であった。さらに当該有機層を濃縮することにより、粗(R)−2−ヒドロキシ−5−(4−メトキシフェニル)−ペンタン酸エチルを得る。
(含量分析条件)
カラム:SUMIPAX ODS A−212(5μm、6mmΦ×15cm)
移動相:A液 0.1%トリフルオロ酢酸水溶液、B液 0.1%トリフルオロ酢酸アセトニトリル溶液
時間(分) A液(%):B液(%)
0 80:20
20 10:90
30 1:99
30.1 80:20
流量:1.0ml/分
カラム温度:40℃
検出:290nm
カラム:CHIRALPAK AD(ダイセル化学工業社製)
移動相:ヘキサン/2−プロパノール/トリフルオロ酢酸=90/10/0.1
流量:0.5ml/分
カラム温度:40℃
検出:254nm
バッフルフラスコに滅菌済み培地(1Lの水に、グルコース20g、ポリペプトン5g、酵母エキス3g、及び、麦芽エキス3gを加えた後、pHを6.0に調整したもの)100mlを入れ、これにYamadazyma farinosa IFO193株を植菌した。これを30℃で好気条件下、2日間振盪培養した。培養終了後、遠心分離(6000×g、10分)より菌体を分離し、2.8gの湿菌体を得た。
5−(4−メトキシフェニル)−2−オキソペンタン酸メチル2mg、前記の湿菌体0.2g、NADH10mg、100mMリン酸緩衝液(pH7.0)2ml及び酢酸ブチル0.1gを混合した。当該混合物を30℃で8時間攪拌した。攪拌終了後、酢酸ブチルを1.9ml添加した後、反応液を遠心分離(1000×g、5分)することにより、有機層を回収した。当該有機層を下記条件で液体クロマトグラフィーによる含量分析及び光学純度分析に供試した。反応に用いた5−(4−メトキシフェニル)−2−オキソペンタン酸メチルの量に対して2−ヒドロキシ−5−(4−メトキシフェニル)−ペンタン酸メチルは19.6%生成していた。また下記条件で当該有機層中の2−ヒドロキシ−5−(4−メトキシフェニル)−ペンタン酸メチルの光学純度を測定した結果、(R)体が95 %e.e.であった。さらに当該有機層を濃縮することにより、粗(R)−2−ヒドロキシ−5−(4−メトキシフェニル)−ペンタン酸メチルを得る。
1H−NMR(CDCl3):δppm:1.60−1.82(m、4H)、2.56−2.62(m、2H)、2.71(d、J=5.7Hz、1H)、3.78(s、3H)、4.17−4.23(m、1H)、6.82(dd、J=2.0、6.6Hz、2H)、7.10(dd、J=1.8、6.6Hz、2H)
(含量分析条件)
カラム:SUMIPAX ODS A−212(5μm、6mmΦ×15cm)
移動相:A液 0.1%トリフルオロ酢酸水溶液、B液 0.1%トリフルオロ酢酸アセトニトリル溶液
時間(分) A液(%):B液(%)
0 80:20
20 10:90
30 1:99
30.1 80:20
流量:1.0ml/分
カラム温度:40℃
検出:290nm
カラム:CHIRALPAK AD(ダイセル化学工業社製)
移動相:ヘキサン/2−プロパノール/トリフルオロ酢酸=90/10/0.1
流量:0.5ml/分
カラム温度:40℃
検出:254nm
Claims (5)
- 一般式(1)
で示される5−(4−メトキシフェニル)−2−オキソペンタン酸エステルを、一般式(2)
で示される光学活性2−ヒドロキシ−5−(4−メトキシフェニル)−ペンタン酸エステルに不斉的に還元する能力を有する、アルスロバクター(Arthrobacter)属、シュードモナス(Pseudomonas)属、ハンセヌラ(Hansenula)属、ヤマダジーマ(Yamadazyma)属、キャンディダ(Candida)属、コリネバクテリウム(Corynebacterium)属、クロエッケラ(Kloeckera)属、ピキア(Pichia)属及びコマガタエラ(Komagataella)属に属する微生物群の中から選ばれた微生物又はその処理物を一般式(1)で示される5−(4−メトキシフェニル)−2−オキソペンタン酸エステルに接触させることを特徴とする光学活性2−ヒドロキシ−5−(4−メトキシフェニル)−ペンタン酸エステルの製造方法。 - 前記微生物が、ヤマダジーマ(Yamadazyma)属、クロエッケラ(Kloeckera)属及びコマガタエラ(Komagataella)属に属する微生物群の中から選ばれた微生物であり、前記光学活性2−ヒドロキシ−5−(4−メトキシフェニル)−ペンタン酸エステルがR体であることを特徴とする請求項1記載の製造方法。
- 前記微生物が、アルスロバクター・パラフィネウス(Arthrobacter paraffineus )、シュードモナス・ディミヌタ(Pseudomonas diminuta )、シュードモナス・ピッケッティ(Pseudomonas picketti)、シュードモナス・オキサラティクス(Pseudomonas oxalaticus)、シュードモナス・キャリオフィリ(Pseudomonas caryophylli )、コリネバクテリウム・ヒドロカルボクラスタス(Corynebacterium hydrocarboclastus)、又はキャンディダ・マグノリエ(Candida magnoliae)であり、前記光学活性2−ヒドロキシ−5−(4−メトキシフェニル)−ペンタン酸エステルがS体であることを特徴とする請求項1記載の製造方法。
- 前記微生物が、シュードモナス・ニトロレヂュセンス(Pseudomonas nitroreducens)、ハンセヌラ・ポリモルファ(Hansenula polymorpha)、ヤマダジーマ・ファリノーサ(Yamadazyma farinosa)、キャンディダ・エルノビイ(Candida ernobii)、キャンディダ・リポリティカ(Candida lipolytica)、キャンディダ・メタノリカ(Candida methanolica)、クロエッケラ・アフリカーナ(Kloeckera africana)、又はコマガタエラ・パストリス(Komagataella pastoris)であり、前記光学活性2−ヒドロキシ−5−(4−メトキシフェニル)−ペンタン酸エステルがR体であることを特徴とする請求項1記載の製造方法。
- 請求項1〜4のいずれか記載の製造方法により製造された光学活性2−ヒドロキシ−5−(4−メトキシフェニル)−ペンタン酸エステルを回収することを特徴とする光学活性2−ヒドロキシ−5−(4−メトキシフェニル)−ペンタン酸エステルの製造方法。
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