JP3210666B2 - サイトケラチン断片の精製 - Google Patents
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- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/68—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving proteins, peptides or amino acids
- G01N33/6887—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving proteins, peptides or amino acids from muscle, cartilage or connective tissue
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N2333/00—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
- G01N2333/435—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans
- G01N2333/46—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans from vertebrates
- G01N2333/47—Assays involving proteins of known structure or function as defined in the subgroups
- G01N2333/4701—Details
- G01N2333/4742—Keratin; Cytokeratin
Description
【発明の詳細な説明】 本発明は、上皮起源の腫瘍細胞の腫瘍マーカー、さら
に詳しくはサイトケラチン（cytokeratins）に関する。
本発明において細胞株抗原／免疫原の再現性のある産生
方法が与えられる。
に詳しくはサイトケラチン（cytokeratins）に関する。
本発明において細胞株抗原／免疫原の再現性のある産生
方法が与えられる。
患者が手術不可能な腫瘍または転位に移行する前に、
腫瘍を初期に検出し診断できることに対する大きなニー
ズが存在する。さらに局所的治療または手術の前に腫瘍
を局所的に食い止めることができることは好ましい。
腫瘍を初期に検出し診断できることに対する大きなニー
ズが存在する。さらに局所的治療または手術の前に腫瘍
を局所的に食い止めることができることは好ましい。
局所的腫瘍治療の例では、公知の方法によりサイトト
キシン（cytotoxin）または放射性アイソトープに結合
した抗体で腫瘍が死滅させられる。腫瘍を標的とするこ
れらの物質は腫瘍細胞を死滅させる力が強く、また腫瘍
でのサイトトキシン濃度が高く、従って通常の細胞増殖
抑制性の治療の副作用を軽減する。
キシン（cytotoxin）または放射性アイソトープに結合
した抗体で腫瘍が死滅させられる。腫瘍を標的とするこ
れらの物質は腫瘍細胞を死滅させる力が強く、また腫瘍
でのサイトトキシン濃度が高く、従って通常の細胞増殖
抑制性の治療の副作用を軽減する。
免疫組織学的および免疫細胞学的試験から、ある種の
腫瘍（すなわち上皮起源の腫瘍組織）は、異なる種類の
サイトケラチンの形で腫瘍マーカーを含有することが知
られている。19個の異なるサイトケラチンが性状解析さ
れており、すべて蛋白でできている。これらのサイトケ
ラチンは、細胞内でいわゆる中間体繊維を形成する。サ
イトケラチン対の８と18は単純な上皮細胞中にしばしば
見られる。
腫瘍（すなわち上皮起源の腫瘍組織）は、異なる種類の
サイトケラチンの形で腫瘍マーカーを含有することが知
られている。19個の異なるサイトケラチンが性状解析さ
れており、すべて蛋白でできている。これらのサイトケ
ラチンは、細胞内でいわゆる中間体繊維を形成する。サ
イトケラチン対の８と18は単純な上皮細胞中にしばしば
見られる。
本発明は、腫瘍組織内で不溶性の細胞内サイトケラチ
ンが放出され、断片化されることにより、多くのサイト
ケラチン断片が可溶性となるという発見に基づく。可溶
性サイトケラチン断片は、回りの体液（例えば血液、
尿、腹水および胸水）に漏れ出る。
ンが放出され、断片化されることにより、多くのサイト
ケラチン断片が可溶性となるという発見に基づく。可溶
性サイトケラチン断片は、回りの体液（例えば血液、
尿、腹水および胸水）に漏れ出る。
米国特許4774620では、MCF−７腫瘍細胞の組織培養培
地中に放出されるサイトケラチン断片が、モノクローナ
ル抗体を産生させるのに使用される。しかし実際の腫瘍
マーカーが正確にわかっていないため、この方法は再現
性がなく特異性が低い。また特定されていない細胞物質
が検査の標準物質として用いられているため、この試験
は定量性と特異性において信頼性が低い。
地中に放出されるサイトケラチン断片が、モノクローナ
ル抗体を産生させるのに使用される。しかし実際の腫瘍
マーカーが正確にわかっていないため、この方法は再現
性がなく特異性が低い。また特定されていない細胞物質
が検査の標準物質として用いられているため、この試験
は定量性と特異性において信頼性が低い。
ヨーロッパ特許出願公開公報（Al）337057ではサイト
ケラチンがクロマトグラフィーで精製され、酵素で消化
されて「そのアルファらせん中心部分」が得られ、これ
が次にクロマトグラフィーで精製されて、免疫試験およ
びモノクローナル抗体産生の抗原として使用される。こ
こでは抗原／免疫原は再現性のある方法で得られる。こ
れらの公知の方法は体液中のサイトケラチン断片を検出
し、腫瘍が属する細胞カテゴリー／型を性状解析するの
に充分である。しかしヨーロッパ特許出願公開公報（A
l）337057で得られるモノクローナル抗体は、試験すべ
き試料をまず可溶化する必要がある。
ケラチンがクロマトグラフィーで精製され、酵素で消化
されて「そのアルファらせん中心部分」が得られ、これ
が次にクロマトグラフィーで精製されて、免疫試験およ
びモノクローナル抗体産生の抗原として使用される。こ
こでは抗原／免疫原は再現性のある方法で得られる。こ
れらの公知の方法は体液中のサイトケラチン断片を検出
し、腫瘍が属する細胞カテゴリー／型を性状解析するの
に充分である。しかしヨーロッパ特許出願公開公報（A
l）337057で得られるモノクローナル抗体は、試験すべ
き試料をまず可溶化する必要がある。
従ってインビボで腫瘍を検出して局在化し、モノクロ
ーナル抗体療法で腫瘍を治療することに対するニーズが
いまだに存在する。また腫瘍が進行性であるか否か、ま
たは治療を評価するためにモノクローナル抗体療法を続
けるか否かを決めるために、先行技術よりも簡便で高感
度な検査に対するニーズが存在する。本発明はこのよう
なニーズを満たすものである。
ーナル抗体療法で腫瘍を治療することに対するニーズが
いまだに存在する。また腫瘍が進行性であるか否か、ま
たは治療を評価するためにモノクローナル抗体療法を続
けるか否かを決めるために、先行技術よりも簡便で高感
度な検査に対するニーズが存在する。本発明はこのよう
なニーズを満たすものである。
本発明により産生されるサイトケラチン断片は、動物
に注射された時先行技術よりも強い免疫応答を引き起こ
す。本発明はまた、特異性を維持しているいくつかの異
なるサイズのサイトケラチン断片により、さらに適切な
反応を与える。
に注射された時先行技術よりも強い免疫応答を引き起こ
す。本発明はまた、特異性を維持しているいくつかの異
なるサイズのサイトケラチン断片により、さらに適切な
反応を与える。
以下に非限定的な方法で本発明を記載する。使用した
略語は本分の後に記載されている。
略語は本分の後に記載されている。
サイトケラチン（CYK）８、18および19の産生 胸水からのヒトの乳ガンの腺癌細胞株である、腫瘍細
胞株MCF−７（ATCC、no.HTB22）を、公知の方法で調製
した（ゲイスラー、ウェーバー（Geisler N.、Weber
K.）、Eur.J.Biochem.,111巻、425−433頁、1980年）。
上皮起源の他の腫瘍細胞株も使用することができる（例
えば、DU145（ATCC、no.HTB81）、HeLa（ATCC、no.CCL
2）など）。
胞株MCF−７（ATCC、no.HTB22）を、公知の方法で調製
した（ゲイスラー、ウェーバー（Geisler N.、Weber
K.）、Eur.J.Biochem.,111巻、425−433頁、1980年）。
上皮起源の他の腫瘍細胞株も使用することができる（例
えば、DU145（ATCC、no.HTB81）、HeLa（ATCC、no.CCL
2）など）。
この物質はSDS−PAGEで精製され、サイトケラチン
８、18および19の分子量は分子量標準物質に対してそれ
ぞれ53、45および41Kdであった。これらのサイトケラチ
ンについてこのパターンはすでに報告されている（モ
ル、フランケ、シラー（Moll R.,Franke WW.,Schiller
DL.）ら、Cell、31巻、11−24頁、1982年）。
８、18および19の分子量は分子量標準物質に対してそれ
ぞれ53、45および41Kdであった。これらのサイトケラチ
ンについてこのパターンはすでに報告されている（モ
ル、フランケ、シラー（Moll R.,Franke WW.,Schiller
DL.）ら、Cell、31巻、11−24頁、1982年）。
サイトケラチン８、18および19に対応するバンドがゲ
ルから切断され、従来技術により0.1％SDS、PBS pH7.5
で抽出された。この試料を分析SDS−PAGEにかけて純度
を証明した：結果はサイトケラチン８、18および19のそ
れぞれについて、最初の物質の３つのバンドと同じ移動
度を示す単一のバンドであった。これはサイトケラチン
８、18および19が精製され、そのサイズが維持されてい
ることを示している。
ルから切断され、従来技術により0.1％SDS、PBS pH7.5
で抽出された。この試料を分析SDS−PAGEにかけて純度
を証明した：結果はサイトケラチン８、18および19のそ
れぞれについて、最初の物質の３つのバンドと同じ移動
度を示す単一のバンドであった。これはサイトケラチン
８、18および19が精製され、そのサイズが維持されてい
ることを示している。
精製されたサイトケラチン８、18および19の断片化 本発明においては、サイトケラチン断片の分子量が約
10から約50Kdの範囲で再現性のあるパターンが得られる
のであれば、サイトケラチンの断片化は酵素的にまたは
化学的に行ってもよい（例えばキモトリプシン、V8プロ
テアーゼ、ペプシン、TPCKトリプシン、BrCN、部分的加
水分解、BNPSサクトール（Saktole）など）。本発明に
おいては、使用した精製法のため断片が凝集せずモノマ
ー型で維持される。凝集物はエピトープをマスクしてし
まうため、断片が抗体産生に使用される場合、これは重
要である。
10から約50Kdの範囲で再現性のあるパターンが得られる
のであれば、サイトケラチンの断片化は酵素的にまたは
化学的に行ってもよい（例えばキモトリプシン、V8プロ
テアーゼ、ペプシン、TPCKトリプシン、BrCN、部分的加
水分解、BNPSサクトール（Saktole）など）。本発明に
おいては、使用した精製法のため断片が凝集せずモノマ
ー型で維持される。凝集物はエピトープをマスクしてし
まうため、断片が抗体産生に使用される場合、これは重
要である。
本発明の好適な実施態様において、精製されたサイト
ケラチン８、18および19はそれぞれ調節可能な方法で、
キモトリプシンとサイトケラチンの重量比約1:50−1:10
00でキモトリプシンにより断片化されるが、好適な重量
比は1:400（CYK8）、1:100（CYK18）および1:75（CYK1
9）である。酵素の活性は蛋白1mg当り40−60単位であ
る。サイトケラチンの濃度は0.2mg/mlである。サイトケ
ラチン溶液と酵素溶液はそれぞれ、別々に37℃の水浴中
で５分プレインキュベートされる。次に酵素溶液がサイ
トケラチン溶液に加えられ、混合物は37℃の水浴中でさ
らに５分インキュベートされる。20％のSDSを少量加
え、95℃の湯浴中で最後に５分インキュベートして消化
を停止させる。最終のSDS濃度は２％になるであろう。
ケラチン８、18および19はそれぞれ調節可能な方法で、
キモトリプシンとサイトケラチンの重量比約1:50−1:10
00でキモトリプシンにより断片化されるが、好適な重量
比は1:400（CYK8）、1:100（CYK18）および1:75（CYK1
9）である。酵素の活性は蛋白1mg当り40−60単位であ
る。サイトケラチンの濃度は0.2mg/mlである。サイトケ
ラチン溶液と酵素溶液はそれぞれ、別々に37℃の水浴中
で５分プレインキュベートされる。次に酵素溶液がサイ
トケラチン溶液に加えられ、混合物は37℃の水浴中でさ
らに５分インキュベートされる。20％のSDSを少量加
え、95℃の湯浴中で最後に５分インキュベートして消化
を停止させる。最終のSDS濃度は２％になるであろう。
消化後断片の最適な精製が行われる。断片を調製SDS
−PAGEで精製し、電気泳動の後ゲルのストリップをゲル
から切取り、クマシーブルー（Coomassie Blue）溶液中
で短時間染色する。脱色の後異なる断片の位置を決め、
残りのゲルのこれらの部分をゲルから切取り、リン酸緩
衝液、pH7.5中の0.1％SDSで抽出される。分析SDS−PAGE
を繰り返すことにより純度が確認される。
−PAGEで精製し、電気泳動の後ゲルのストリップをゲル
から切取り、クマシーブルー（Coomassie Blue）溶液中
で短時間染色する。脱色の後異なる断片の位置を決め、
残りのゲルのこれらの部分をゲルから切取り、リン酸緩
衝液、pH7.5中の0.1％SDSで抽出される。分析SDS−PAGE
を繰り返すことにより純度が確認される。
10−50Kdの範囲のサイズの断片は上記のように精製さ
れる。また断片のこの最適なSDS−PAGEにより、特異的
断片が選択される。この考えられる応用は、わずか１つ
または数個のサイトケラチン断片で哺乳動物を免疫する
ことである。これらを注射した動物からの特に反応性の
抗体の配列を決定する。この配列に基づき、合成ヌクレ
オチド配列が作成され、これはベクター（例えばプラス
ミッド）に挿入されて、目的の断片の大規模な産生のた
めに例えば細菌中でクローン化される。
れる。また断片のこの最適なSDS−PAGEにより、特異的
断片が選択される。この考えられる応用は、わずか１つ
または数個のサイトケラチン断片で哺乳動物を免疫する
ことである。これらを注射した動物からの特に反応性の
抗体の配列を決定する。この配列に基づき、合成ヌクレ
オチド配列が作成され、これはベクター（例えばプラス
ミッド）に挿入されて、目的の断片の大規模な産生のた
めに例えば細菌中でクローン化される。
断片化サイトケラチン８、18および19に対するモノクロ
ーナル抗体の産生 CYK8、18および19からの10−50Kdのサイズのサイトケ
ラチン断片は、PB中の0.1％SDSに対して透析され、次に
標準的方法（FCAのマウス１匹当り10μｇの断片（s.
c.）、FIAのマウス１匹当り10μｇ、次にFIA中のマウス
１匹当り１μｇで２回で、これらはすべて１週間の間隔
で行われる）に従いBalb/cマウス中で免疫される。融合
までの日にマウスに３回追加免疫をする。
ーナル抗体の産生 CYK8、18および19からの10−50Kdのサイズのサイトケ
ラチン断片は、PB中の0.1％SDSに対して透析され、次に
標準的方法（FCAのマウス１匹当り10μｇの断片（s.
c.）、FIAのマウス１匹当り10μｇ、次にFIA中のマウス
１匹当り１μｇで２回で、これらはすべて１週間の間隔
で行われる）に従いBalb/cマウス中で免疫される。融合
までの日にマウスに３回追加免疫をする。
最後の追加免疫の72時間後、マウスの脾臓のリンパ球
を集め、1:1の比率でSp2/0ミエローマ細胞で融合する。
もちろん他のマウス種やミエローマ細胞を使用すること
も可能である。ハイブリドーマ細胞を増殖させ、公知の
方法により希釈法を用いて２回クローン化した。顕微鏡
下にマイクロタイタープレートを調べて、１ウェル当り
細胞１つにした、ハイブリドーマ細胞を増殖させ、安定
化し確立した。以下の特異性と反応性を有するモノクロ
ーナル抗体を産生する15個のクローンのすべてを確立し
た。
を集め、1:1の比率でSp2/0ミエローマ細胞で融合する。
もちろん他のマウス種やミエローマ細胞を使用すること
も可能である。ハイブリドーマ細胞を増殖させ、公知の
方法により希釈法を用いて２回クローン化した。顕微鏡
下にマイクロタイタープレートを調べて、１ウェル当り
細胞１つにした、ハイブリドーマ細胞を増殖させ、安定
化し確立した。以下の特異性と反応性を有するモノクロ
ーナル抗体を産生する15個のクローンのすべてを確立し
た。
得られたモノクローナル抗体の特異性と反応性の試験 A.全サイトケラチン８、18および19を抗原として用いて
ELISA試験 pH9.0で吸着によりマイクロタイタープレートに係合
した、精製したサイトケラチン８、18および19に対する
得られたモノクローナル抗体をELISAで試験する時、あ
るモノクローナル抗体は１つ、２つまたは３つのサイト
ケラチンに対して特異性を有するようであるが、反応性
は異なる。
ELISA試験 pH9.0で吸着によりマイクロタイタープレートに係合
した、精製したサイトケラチン８、18および19に対する
得られたモノクローナル抗体をELISAで試験する時、あ
るモノクローナル抗体は１つ、２つまたは３つのサイト
ケラチンに対して特異性を有するようであるが、反応性
は異なる。
モノクローナル抗体の濃度10ng/mlで上記15個の得ら
れたクローンを試験した結果は図１と２に示してあり、
反応性はＹ軸上で吸光度（490nm）で表してある。図１
はサイトケラチン８（左の棒）、および18（右の棒）に
対する、ELISAでの15個の異なるモノクローナル抗体の
特異性と反応性を示す棒グラフである。
れたクローンを試験した結果は図１と２に示してあり、
反応性はＹ軸上で吸光度（490nm）で表してある。図１
はサイトケラチン８（左の棒）、および18（右の棒）に
対する、ELISAでの15個の異なるモノクローナル抗体の
特異性と反応性を示す棒グラフである。
プレートに結合した抗原（すなわちサイトケラチン
８、18および19）の濃度はそれぞれ0.3μg/mlであっ
た。モノクローナル抗体との最初のインキュベートは室
温でわずか１時間であった。従って反応性の最も高いモ
ノクローナル抗体のみが選択された。２次抗体はHRPに
結合した抗マウスIgG抗体（すなわちダコパッツコード
（Dakopatts Code）P260）（1:1000希釈）であり、室温
でさらに２時間インキュベートし、基質ｏ−フェニレン
ジアミンを加えた後、通常のELISA法により490nmでの吸
光度を読んだ。図１から明らかなように、８個のクロー
ンはサイトケラチン８に対して最も強い反応性を有して
いたが、他の７つはサイトケラチン18に対して強い反応
性を有していた。
８、18および19）の濃度はそれぞれ0.3μg/mlであっ
た。モノクローナル抗体との最初のインキュベートは室
温でわずか１時間であった。従って反応性の最も高いモ
ノクローナル抗体のみが選択された。２次抗体はHRPに
結合した抗マウスIgG抗体（すなわちダコパッツコード
（Dakopatts Code）P260）（1:1000希釈）であり、室温
でさらに２時間インキュベートし、基質ｏ−フェニレン
ジアミンを加えた後、通常のELISA法により490nmでの吸
光度を読んだ。図１から明らかなように、８個のクロー
ンはサイトケラチン８に対して最も強い反応性を有して
いたが、他の７つはサイトケラチン18に対して強い反応
性を有していた。
図２の棒グラフはELISA（前述）でのサイトケラチン1
9に対して５個のモノクローナル抗体の特異性と反応性
を示す。５個のクローンはサイトケラチン19に対して反
応性であると考えられた。
9に対して５個のモノクローナル抗体の特異性と反応性
を示す。５個のクローンはサイトケラチン19に対して反
応性であると考えられた。
図から明らかなように、異なるサイトケラチンの間に
交差反応性があり、これはおそらくサイトケラチン８、
18および19間に存在する大きなアミノ酸の相同性による
ものであろう（リューベ、ボッシュ、ロマノ（Leube R
E.,Bosch FX.,Romano V.）ら、Differentiation、33
巻、69−85頁、1986年；ロマノ、ハッツフェルト、マギ
ン（Romano V.,Hatzfeld M.,Magin TM.）ら、Different
iation,30巻、244−253頁、1986年；バデル、マギン、
ハッツフェルト、フランケ（Bader BL.,Magin TM.,Hatz
feld M.,Franke WW.）、EMBO J.、５巻、1865−1875
頁、1986年）。
交差反応性があり、これはおそらくサイトケラチン８、
18および19間に存在する大きなアミノ酸の相同性による
ものであろう（リューベ、ボッシュ、ロマノ（Leube R
E.,Bosch FX.,Romano V.）ら、Differentiation、33
巻、69−85頁、1986年；ロマノ、ハッツフェルト、マギ
ン（Romano V.,Hatzfeld M.,Magin TM.）ら、Different
iation,30巻、244−253頁、1986年；バデル、マギン、
ハッツフェルト、フランケ（Bader BL.,Magin TM.,Hatz
feld M.,Franke WW.）、EMBO J.、５巻、1865−1875
頁、1986年）。
B.断片化サイトケラチン８、18および19を抗原として用
いるウェスタンブロット サイトケラチン断片のウェスタンブロットを以下のよ
うにして行った。すなわち上記のように酵素消化したサ
イトケラチンをSDS−PAGEにかけ、次に公知の方法によ
りニトロセルロースフィルターにブロットした。こうし
て各サイトケラチンのサイトケラチン断片の大多数がモ
ノクローナル抗体により同定された。
いるウェスタンブロット サイトケラチン断片のウェスタンブロットを以下のよ
うにして行った。すなわち上記のように酵素消化したサ
イトケラチンをSDS−PAGEにかけ、次に公知の方法によ
りニトロセルロースフィルターにブロットした。こうし
て各サイトケラチンのサイトケラチン断片の大多数がモ
ノクローナル抗体により同定された。
図３は、本発明の方法によりキモトリプシンで断片化
された精製されたサイトケラチン８のSDS−PAGEの後の
ニトロセルロースフィルター上のウェスタンブロットを
示す。ニトロセルロースの各ストリップは、上記のよう
に産生された異なるモノクローナル抗体と反応させた。
次に２次抗体（HRPと結合したウサギ抗マウスIgG）を加
え、モノクローナル抗体の反応を、公知の方法に従い基
質DAB（シグマ（Sigma）Ｄ−5905）で可視化した。この
結果はいくつかのモノクローナル抗体は、サイズ範囲が
約10−50Kdのいくつかのサイトケラチン８断片と反応す
ることを示している。
された精製されたサイトケラチン８のSDS−PAGEの後の
ニトロセルロースフィルター上のウェスタンブロットを
示す。ニトロセルロースの各ストリップは、上記のよう
に産生された異なるモノクローナル抗体と反応させた。
次に２次抗体（HRPと結合したウサギ抗マウスIgG）を加
え、モノクローナル抗体の反応を、公知の方法に従い基
質DAB（シグマ（Sigma）Ｄ−5905）で可視化した。この
結果はいくつかのモノクローナル抗体は、サイズ範囲が
約10−50Kdのいくつかのサイトケラチン８断片と反応す
ることを示している。
図４は、キモトリプシンで断片化した精製サイトケラ
チン18のSDS−PAGE後のニトロセルロース上のウェスタ
ンブロットを示す。ニトロセルロースの各ストリップ
は、上記のように産生された異なるモノクローナル抗体
と反応させた。次に２次抗体（HRPに結合したウサギ抗
マウスIgG）加え、モノクローナル抗体の反応を、公知
の方法に従い基質DAB（シグマ（Sigma）Ｄ−5905）で可
視化した。この結果はいくつかのモノクローナル抗体
は、サイズ範囲が約10−44Kdのいくつかのサイトケラチ
ン18断片と反応することを示している。
チン18のSDS−PAGE後のニトロセルロース上のウェスタ
ンブロットを示す。ニトロセルロースの各ストリップ
は、上記のように産生された異なるモノクローナル抗体
と反応させた。次に２次抗体（HRPに結合したウサギ抗
マウスIgG）加え、モノクローナル抗体の反応を、公知
の方法に従い基質DAB（シグマ（Sigma）Ｄ−5905）で可
視化した。この結果はいくつかのモノクローナル抗体
は、サイズ範囲が約10−44Kdのいくつかのサイトケラチ
ン18断片と反応することを示している。
図５は、キモトリプシンで断片化した精製サイトケラ
チン19のSDS−PAGE後のニトロセルロース上のウェスタ
ンブロットを示す。ニトロセルロースの各ストリップ
は、上記のように産生された異なるモノクローナル抗体
と反応させた。次に２次抗体（HRPに結合したウサギ抗
マウスIgG）を加え、モノクローナル抗体の反応を、公
知の方法に従い基質DAB（シグマ（Sigma）Ｄ−5905）で
可視化した。この結果をいくつかのモノクローナル抗体
は、サイズ範囲が約10−38Kdのいくつかのサイトケラチ
ン19断片と反応することを示している。
チン19のSDS−PAGE後のニトロセルロース上のウェスタ
ンブロットを示す。ニトロセルロースの各ストリップ
は、上記のように産生された異なるモノクローナル抗体
と反応させた。次に２次抗体（HRPに結合したウサギ抗
マウスIgG）を加え、モノクローナル抗体の反応を、公
知の方法に従い基質DAB（シグマ（Sigma）Ｄ−5905）で
可視化した。この結果をいくつかのモノクローナル抗体
は、サイズ範囲が約10−38Kdのいくつかのサイトケラチ
ン19断片と反応することを示している。
すべてをまとめるとこれらのモノクローナル抗体は、
７クローンについてはサイトケラチン８からの大多数の
断片に、７クローンについてはサイトケラチン18からの
大多数の断片に、そして５クローンについてサイトケラ
チン19からの大多数の断片にい対して良好な反応性と特
異性を示す。これは全サイトケラチンに対する15個のク
ローンの特異性と一致する（図１−２を参照）。
７クローンについてはサイトケラチン８からの大多数の
断片に、７クローンについてはサイトケラチン18からの
大多数の断片に、そして５クローンについてサイトケラ
チン19からの大多数の断片にい対して良好な反応性と特
異性を示す。これは全サイトケラチンに対する15個のク
ローンの特異性と一致する（図１−２を参照）。
抗体の上記試験および抗体は他のヒト蛋白と反応しな
いという試験により、モノクローナル抗体は選択され
る。
いという試験により、モノクローナル抗体は選択され
る。
本発明の抗体のインビトロでの応用 腫瘍患者と健常人の血清試料中のサイトケラチンの試験 本発明のモノクローナル抗体が固相（プラスチックチ
ューブ）に結合しており、ポリクローナル抗体またはモ
ノクローナル抗体はヨード−125またはHRPで標識されて
いるIRMAまたはELISAで、見かけ上健常人（血液ドナ
ー）の血清と腫瘍患者の血清を試験した。標準物質とし
て、緩衝液中の本発明の可溶性サイトケラチン断片とヒ
ト血清を使用した。異なる群のレベルはサイトケラチン
断片の異なる量（ng/ml）を明確に示した。
ューブ）に結合しており、ポリクローナル抗体またはモ
ノクローナル抗体はヨード−125またはHRPで標識されて
いるIRMAまたはELISAで、見かけ上健常人（血液ドナ
ー）の血清と腫瘍患者の血清を試験した。標準物質とし
て、緩衝液中の本発明の可溶性サイトケラチン断片とヒ
ト血清を使用した。異なる群のレベルはサイトケラチン
断片の異なる量（ng/ml）を明確に示した。
図６の結果は、見かけ上健常人の血清は、試験では応
答性が低く、広がりも小さかった。この集団の大多数
（95％）は0.9ng/ml以下に入る。腫瘍患者の大多数（54
％）の血清は、有意に高値であった。
答性が低く、広がりも小さかった。この集団の大多数
（95％）は0.9ng/ml以下に入る。腫瘍患者の大多数（54
％）の血清は、有意に高値であった。
上記の結果は、本発明は前処理をすることなく腫瘍患
者の腫瘍から分散した血清中のサイトケラチンを、本出
願で記載された抗体と試薬を用いて検出できることを示
している。本発明の抗体は、ヒトの体液中の上記のサイ
トケラチンからの最も代表的な断片と反応することがで
きる。
者の腫瘍から分散した血清中のサイトケラチンを、本出
願で記載された抗体と試薬を用いて検出できることを示
している。本発明の抗体は、ヒトの体液中の上記のサイ
トケラチンからの最も代表的な断片と反応することがで
きる。
さらに本発明の抗体は、インタクトの細胞や組織試料
と反応することができる。図７は、メタノールで固定
し、次に本発明のモノクローナル抗体の１つ（M1）でイ
ンキュベートし、そしてFITC結合２次抗体でインキュベ
ートした、培養した腫瘍細胞（MCF−７）を示す。紫外
線顕微鏡で光を当てると、細胞のいくつかで細胞内に細
胞骨格の典型的パターンが見られる。
と反応することができる。図７は、メタノールで固定
し、次に本発明のモノクローナル抗体の１つ（M1）でイ
ンキュベートし、そしてFITC結合２次抗体でインキュベ
ートした、培養した腫瘍細胞（MCF−７）を示す。紫外
線顕微鏡で光を当てると、細胞のいくつかで細胞内に細
胞骨格の典型的パターンが見られる。
さらに本発明の抗体は、面倒な前処理をせずに組織切
片の免疫組織学、および例えば子宮頸部の免疫細胞学試
験を可能にする。図８は、大腸の腺癌の免疫組織切片を
示す。この切片は標準的方法で調製され、試料中のサイ
トケラチンは、ペルオキシダーゼ染色により現れる。単
純な上皮と腫瘍細胞が示されている。
片の免疫組織学、および例えば子宮頸部の免疫細胞学試
験を可能にする。図８は、大腸の腺癌の免疫組織切片を
示す。この切片は標準的方法で調製され、試料中のサイ
トケラチンは、ペルオキシダーゼ染色により現れる。単
純な上皮と腫瘍細胞が示されている。
図９は、DU145細胞を接種されたが、腫瘍を発症して
いないマウスを示す。この実験の目的は、放射能標識モ
ノクローナル抗体は、マウスで移植されたDU145腫瘍は
局在化することができることを示している。細胞株DU14
5はサイトケラチン８と18よりなることは証明されてい
る（シャーウッド、バーグ、メッチェル（Sherwood E.
R.、Berg L.A.、Mitchell N.J.;The Journal of Urolog
y,143巻、1990,167−171頁）。
いないマウスを示す。この実験の目的は、放射能標識モ
ノクローナル抗体は、マウスで移植されたDU145腫瘍は
局在化することができることを示している。細胞株DU14
5はサイトケラチン８と18よりなることは証明されてい
る（シャーウッド、バーグ、メッチェル（Sherwood E.
R.、Berg L.A.、Mitchell N.J.;The Journal of Urolog
y,143巻、1990,167−171頁）。
SDS−PAGEのブロットで、試験した抗体は以下のサイ
トケラチンやその断片に結合することは証明されてい
る。
トケラチンやその断片に結合することは証明されてい
る。
ボムフルツ（Bomhults）農場（デンマーク）から得ら
れた平均体重約25gのNMR I型の12匹のマウスの皮下に、
10％FCSを含むRPM I1640中の1000万個のDU145細胞を接
種した。DU145細胞はアカデミスカ（Akademisda）病院
研究所（スエーデン、ウプサラ（UPPSALA））から得ら
れた。
れた平均体重約25gのNMR I型の12匹のマウスの皮下に、
10％FCSを含むRPM I1640中の1000万個のDU145細胞を接
種した。DU145細胞はアカデミスカ（Akademisda）病院
研究所（スエーデン、ウプサラ（UPPSALA））から得ら
れた。
腫瘍細胞を14日間増殖させ、次にマウスをランダムに
３匹ずつの４群に分けた。
３匹ずつの４群に分けた。
従来法によりクロラミンＴを用いて、モノクローナル
抗体や正常マウスIgG（対照として）を125Iで標識し
た。
抗体や正常マウスIgG（対照として）を125Iで標識し
た。
各群に以下の放射能標識抗体を、マウス１匹当り0.3m
lずつ与えた。
lずつ与えた。
抱水クロラールで約20分間麻酔したマウスのシンチグ
ラフィーを、３、５および９日後に行った。９日後にマ
ウスを殺し、異なる臓器の重量と放射能を測定した。
ラフィーを、３、５および９日後に行った。９日後にマ
ウスを殺し、異なる臓器の重量と放射能を測定した。
シンチグラムを評価して以下の結果を得た： 図10は図９のマウスのシンチグラフィーを示し、腫瘍
のインビボでの局在化を示す。
のインビボでの局在化を示す。
図11はヒトの免疫シンチグラフィーを示す。抗体6D7
は精製され、薬剤の要求に対応する性質に調整される。
次に放射性同位元素J131で標識される。さらに精製した
後、腫瘍が局在化していることがわかっている患者に注
射される。次に患者は、放射能を測定する装置中で測定
され、色のスケールが放射能の量を示す：明るい色は放
射能が多いことを意味し、暗い色は放射能がないことを
意味する。注射の24時間後（24HP I）、腫瘍が局在化し
たすべての例で放射能が増加しており、胸の上部に対応
する像からほんのわずかのサイズの範囲が1cmの小さな
転移もこの放射標識抗体6D7で検出されることは明らか
なようである。像の大きな明るい部分は、血液を含む心
臓に対応する。24時間後においても血液はいくらかの標
識抗体を有する。放射性J131は抗体から離れ、尿中に分
泌され、抗体は身体により時間とともにアミノ酸に分解
される。
は精製され、薬剤の要求に対応する性質に調整される。
次に放射性同位元素J131で標識される。さらに精製した
後、腫瘍が局在化していることがわかっている患者に注
射される。次に患者は、放射能を測定する装置中で測定
され、色のスケールが放射能の量を示す：明るい色は放
射能が多いことを意味し、暗い色は放射能がないことを
意味する。注射の24時間後（24HP I）、腫瘍が局在化し
たすべての例で放射能が増加しており、胸の上部に対応
する像からほんのわずかのサイズの範囲が1cmの小さな
転移もこの放射標識抗体6D7で検出されることは明らか
なようである。像の大きな明るい部分は、血液を含む心
臓に対応する。24時間後においても血液はいくらかの標
識抗体を有する。放射性J131は抗体から離れ、尿中に分
泌され、抗体は身体により時間とともにアミノ酸に分解
される。
本発明のモノクローナル抗体は、抗体が腫瘍内に局在
化している時腫瘍細胞を死滅させるために、サイトトキ
シンまたは放射性アイソトープに結合することによりイ
ンビボでの腫瘍治療に使用することもできる。
化している時腫瘍細胞を死滅させるために、サイトトキ
シンまたは放射性アイソトープに結合することによりイ
ンビボでの腫瘍治療に使用することもできる。
本発明のCYK断片の応用 本発明のサイトケラチン断片は抗体の産生用に使用さ
れる以外に： −それ自身または他の治療法と組合せて、腫瘍患者のワ
クチン接種用に、 −免疫化学的試験（例えばELISA、EIA、IRMA、LIA）の
実施のためのキットに使用することができる。
れる以外に： −それ自身または他の治療法と組合せて、腫瘍患者のワ
クチン接種用に、 −免疫化学的試験（例えばELISA、EIA、IRMA、LIA）の
実施のためのキットに使用することができる。
本断片がワクチン、免疫学的試験の抗原／標準物質と
して使用されるなら、随時上記のSDS−PAGEが実施さ
れ、断片溶液を血清または、好ましくは（特にワクチ
ン）アルブミン溶液で希釈することにより、SDSの好ま
しくない影響を避けることができる。蛋白の添加によっ
ても断片の凝集が避けられ、不活性の蛋白にエピトープ
上で「分散」効果を与える。ワクチンとして断片の精製
と使用は、各国の申請方法の特別な純度の要求を満たさ
なければならないであろう。
して使用されるなら、随時上記のSDS−PAGEが実施さ
れ、断片溶液を血清または、好ましくは（特にワクチ
ン）アルブミン溶液で希釈することにより、SDSの好ま
しくない影響を避けることができる。蛋白の添加によっ
ても断片の凝集が避けられ、不活性の蛋白にエピトープ
上で「分散」効果を与える。ワクチンとして断片の精製
と使用は、各国の申請方法の特別な純度の要求を満たさ
なければならないであろう。
「サンドイッチ」測定法すなわち「２部位測定法」で
は、サイトケラチン断片は標準物質として使用され、標
準物質および抗体は固相（例えばマイクロタイタープレ
ート）に結合した補足抗体、または被分析物（すなわち
サイトケラチン断片）を検出するための適当な方法で標
識された微量抗体として使用される。「１部位測定法」
では、サイトケラチン断片は固相に結合され、抗体は目
的の物質（すなわちサイトケラチン断片に対するヒト抗
体）を検出するために使用される。
は、サイトケラチン断片は標準物質として使用され、標
準物質および抗体は固相（例えばマイクロタイタープレ
ート）に結合した補足抗体、または被分析物（すなわち
サイトケラチン断片）を検出するための適当な方法で標
識された微量抗体として使用される。「１部位測定法」
では、サイトケラチン断片は固相に結合され、抗体は目
的の物質（すなわちサイトケラチン断片に対するヒト抗
体）を検出するために使用される。
本発明の断片で行われる免疫学的試験の感度は図12と
図13に示されている。
図13に示されている。
図12は投与量−応答曲線と、標準物質として本発明の
断片とマイクロタイタープレートにコーティングされた
モノクローナル抗体を使用するELISA試験の感度プロフ
ィールを示す。感度（平均値＋2SDとして計算）は0.1ng
/mlという低濃度であり、これは非常に高感度であるこ
とを示している。
断片とマイクロタイタープレートにコーティングされた
モノクローナル抗体を使用するELISA試験の感度プロフ
ィールを示す。感度（平均値＋2SDとして計算）は0.1ng
/mlという低濃度であり、これは非常に高感度であるこ
とを示している。
同様の優れた結果がIRMA試験で得られており、これは
図13に示されている。
図13に示されている。
これらの感度試験は、上皮腫瘍患者の体液中の増殖速
度を調べ、モノクローナル抗体療法の効果を評価するの
に、大きな応用性がある。
度を調べ、モノクローナル抗体療法の効果を評価するの
に、大きな応用性がある。
略語： ATCC:アメリカンタイプカルチャーコレクション cpm:カウント／分 CYKまたはCK:サイトケラチン DAB:3、３′−ジアミノベンジジン−テトラ−ヒドロク
ロリド FIA:フロイントの不完全アジュバンド FCA:フロイントの完全アジュバンド FCS:胎児牛血清 IRMA:イムノラジオメトリックアッセイ ELISA:酵素結合免疫吸着測定法 LIA:ルミネセンス免疫測定法 Kd:キロダルトン HRP:西洋ワサビペルオキシダーゼ FITC:フルオレセインイソチオシアネート PBS−EDTA:リン酸緩衝化生理食塩水−エチレンジアミン
四酢酸 RIA:ラジオイムノアッセイ RT:室温 SDS−PAGE:ドデシル硫酸ナトリウム−ポリアクリルアミ
ドゲル電気泳動
ロリド FIA:フロイントの不完全アジュバンド FCA:フロイントの完全アジュバンド FCS:胎児牛血清 IRMA:イムノラジオメトリックアッセイ ELISA:酵素結合免疫吸着測定法 LIA:ルミネセンス免疫測定法 Kd:キロダルトン HRP:西洋ワサビペルオキシダーゼ FITC:フルオレセインイソチオシアネート PBS−EDTA:リン酸緩衝化生理食塩水−エチレンジアミン
四酢酸 RIA:ラジオイムノアッセイ RT:室温 SDS−PAGE:ドデシル硫酸ナトリウム−ポリアクリルアミ
ドゲル電気泳動
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 ＦＩ Ｇ０１Ｎ 33/574 Ｇ０１Ｎ 33/574 Ａ (56)参考文献 特開 平２−6756（ＪＰ，Ａ) 特表 昭61−501048（ＪＰ，Ａ) 特表 平６−501924（ＪＰ，Ａ) Ｊ．Ｈｉｓｔｏｃｈｅｍ．Ｃｙｔｏｃ ｈｅｍ．，Ｖｏｌ．37，Ｎｏ．12 （1989）ｐ．1845−1854 Ｊ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．，Ｖｏｌ. 111，Ｎｏ．２（1990．Ａｕｇ）ｐ．567 −580 Ｖｉｒｃｈｏｗｓ Ａｒｃｈｉｖ. Ａ，Ｐａｔｈｏｌ．Ａｎａｌ．，Ｖｏ ｌ．413，Ｎｏ．１（1988）ｐ．39−51 (58)調査した分野(Int.Cl.7，ＤＢ名) C07K 1/26 - 16/18 C12P 21/08 G01N 33/53 - 33/574 ＢＩＯＳＩＳ（ＤＩＡＬＯＧ) ＭＥＤＬＩＮＥ（ＳＴＮ) ＷＰＩ（ＤＩＡＬＯＧ)
Claims (11)
- 【請求項１】調製用SDS−PAGEにより上皮腫瘍細胞から
サイトケラチンを精製し、サイトケラチン８、18及び19
に対応するバンドをゲルから溶出することを含む、サイ
トケラチン抗原／免疫原の再現性のある産生方法であっ
て、サイトケラチンを別々に消化して10−50Kdのサイズ
範囲のサイトケラチン８、18及び19からの断片の混合物
を産生することを特徴とする、上記方法。 - 【請求項２】消化は酵素的に行われることを特徴とす
る、請求項１に記載の方法。 - 【請求項３】消化は、キモトリプシン、V8プロテアー
ゼ、ペプシンおよびTPCKトリプシンからなる群から選択
される酵素により行われることを特徴とする、請求項２
に記載の方法。 - 【請求項４】サイトケラチンはキモトリプシン（40−60
U/mg蛋白）で、酵素：サイトケラチンの重量比が1:50か
ら1:1000で酵素消化されることを特徴とする、請求項３
に記載の方法。 - 【請求項５】酵素消化の酵素：サイトケラチンの重量比
は、サイトケラチン８については1:400、サイトケラチ
ン18については1:1000、そしてサイトケラチン19につい
ては1:75であることを特徴とする、請求項４に記載の方
法。 - 【請求項６】消化は、BrCN、加水分解またはBNPS−スカ
トールで、化学的に行われることを特徴とする、請求項
１に記載の方法。 - 【請求項７】産生された断片は第２の調製用SDS−PAGE
で精製され、サイトケラチン８、18又は19からの特定の
断片はゲルから溶出されることを特徴とする、請求項１
−６のいずれか一項に記載の方法。 - 【請求項８】10−50Kdのサイズ範囲の、サイトケラチン
８、18及び19からの断片を含む、請求項１から７のいず
れか一項に記載の方法により得られうる、サイトケラチ
ン断片混合物。 - 【請求項９】動物を請求項８に記載のサイトケラチン
８、18及び19からの断片の混合物を含む溶液で免疫し、
該動物から該断片に対する抗体を回収し、該サイトケラ
チン断片の大多数を認識する抗体を選択することを特徴
とする、サイトケラチン断片に対する抗体を産生する方
法。 - 【請求項１０】マウスを請求項８に記載のサイトケラチ
ン８、18及び19からの断片の混合物を含む溶液で免疫
し、該マウスの脾臓からリンパ球を回収し、該リンパ球
をミエローマ細胞と融合させ、ハイブリドーマ細胞をク
ローン化し増殖させ、単一クローンを安定化し確立し、
該クローンからモノクローナル抗体を回収し、該サイト
ケラチン断片の大多数を認識する抗体を選択することを
特徴とする、サイトケラチン断片に対するモノクローナ
ル抗体の産生方法。 - 【請求項１１】癌患者からの体液をテストすることによ
り上皮起源の腫瘍を検出する免疫化学的試験キットであ
って、請求項８に記載のサイトケラチン断片の混合物
と、請求項10の方法により産生される断片に対するモノ
クローナル抗体とを含むことを特徴とする、上記キッ
ト。
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| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| SE9003025A SE470273B (sv) | 1990-09-24 | 1990-09-24 | Cytokeratinfragment, deras framställning och användning, framställning av monoklonala antikroppar och testkit för epitelialcancer |
| SE9003025-5 | 1990-09-24 | ||
| PCT/SE1991/000638 WO1992005197A1 (en) | 1990-09-24 | 1991-09-24 | Purification of cytokeratin fragments |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH06501469A JPH06501469A (ja) | 1994-02-17 |
| JP3210666B2 true JP3210666B2 (ja) | 2001-09-17 |
Family
ID=20380430
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP51612591A Expired - Fee Related JP3210666B2 (ja) | 1990-09-24 | 1991-09-24 | サイトケラチン断片の精製 |
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|---|---|
| US (2) | US5728537A (ja) |
| EP (1) | EP0550561B1 (ja) |
| JP (1) | JP3210666B2 (ja) |
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| AU (1) | AU8546391A (ja) |
| DE (1) | DE69132122T2 (ja) |
| SE (1) | SE470273B (ja) |
| WO (1) | WO1992005197A1 (ja) |
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| ES2116906B1 (es) * | 1996-03-28 | 1999-03-01 | Consejo Superior Investigacion | Anticuerpo monocional pc2.27 asociado a tumores. |
| US6890311B2 (en) | 1997-09-16 | 2005-05-10 | The Regents Of The University Of California | Methods for performing medical procedures within a breast duct |
| US6168779B1 (en) * | 1997-09-16 | 2001-01-02 | The Regents Of The University Of California | Methods and kits for identifying ductal orifices |
| CA2305681C (en) | 1997-09-30 | 2013-01-08 | Peviva Ab | Apoptosis-related compounds and their use |
| DE50015293D1 (de) * | 1999-04-13 | 2008-09-11 | Wilex Ag | Diagnostischer und therapeutischer Einsatz von Antikörpern gegen den Urokinase-Rezeptor |
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| DE10130985B4 (de) * | 2001-06-27 | 2004-03-18 | B.R.A.H.M.S Ag | Verfahren zur Diagnose von Sepsis und schweren Infektionen unter Bestimmung löslicher Cytokeratin-1-Fragmente |
| US20030138425A1 (en) * | 2001-09-21 | 2003-07-24 | Mather Jennie Powell | Antibodies that bind to cancer-associated antigen cytokeratin 8 and methods of use thereof |
| US8986944B2 (en) | 2001-10-11 | 2015-03-24 | Aviva Biosciences Corporation | Methods and compositions for separating rare cells from fluid samples |
| US8980568B2 (en) * | 2001-10-11 | 2015-03-17 | Aviva Biosciences Corporation | Methods and compositions for detecting non-hematopoietic cells from a blood sample |
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| CN1639185A (zh) * | 2002-01-03 | 2005-07-13 | 斯克里普斯研究学院 | 癌相关表位 |
| JPWO2005043166A1 (ja) * | 2003-10-30 | 2007-11-29 | シスメックス株式会社 | 子宮腺癌の診断薬及び腺癌細胞の検出方法 |
| CN101583722A (zh) * | 2006-07-14 | 2009-11-18 | 阿维瓦生物科学股份有限公司 | 从生物学样品检测稀有细胞的方法和组合物 |
| KR101292163B1 (ko) | 2010-11-23 | 2013-08-12 | 한양대학교 산학협력단 | Ｋｒｔ１９ 항체를 포함하는 항암용 조성물 |
| SE538211C2 (sv) * | 2013-04-05 | 2016-04-05 | Idl Biotech Ab | Metod för detektering av cytokeratin 8, 18 och/eller 19 och/eller lösliga fragment därav |
Family Cites Families (7)
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|---|---|---|---|---|
| WO1985003132A1 (en) * | 1984-01-06 | 1985-07-18 | The Regents Of The University Of California | Cytokeratin tumor markers and assays for their detection |
| US4727021A (en) * | 1984-06-01 | 1988-02-23 | Sloan-Kettering Institute For Cancer Research | Human monoclonal antibodies to cytokeratin |
| US4722895A (en) * | 1984-09-25 | 1988-02-02 | The United States Of America As Represented By The Secretary, Dept. Of Health & Human Services | Synthetic peptides for the production of specific keratin protein antibodies |
| DE3815932A1 (de) * | 1988-01-26 | 1989-08-03 | Progen Biotechnik Gmbh | Verfahren zur identifizierung des ursprungs einer zellgewebsprobe |
| LU86654A1 (de) * | 1986-11-10 | 1988-06-13 | Progen Biotechnik Gmbh | Verfahren und vorrichtung zum auffinden von zellaesionen |
| EP0267355B1 (de) * | 1986-11-10 | 1991-09-18 | PROGEN Biotechnik GmbH | Verfahren zum Identifizieren gewebstypischer, unlöslicher Cytoskelettproteine |
| ATE239506T1 (de) * | 1992-03-05 | 2003-05-15 | Univ Texas | Verwendung von immunokonjugate zur diagnose und/oder therapie der vaskularisierten tumoren |
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-
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- 1996-06-19 US US08/666,835 patent/US5780032A/en not_active Expired - Lifetime
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Also Published As
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