JP2649016B2 - 免疫反応干渉作用の除去方法 - Google Patents
免疫反応干渉作用の除去方法Info
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Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、免疫反応干渉作用の除
去方法に関する。さらに詳しくは、生体試料中のリウマ
チ因子や補体成分などの免疫反応干渉物質の作用を防止
し、生体試料中の微量物質定量を正確に行うことができ
る免疫測定法における免疫反応干渉作用の除去方法に関
する。
去方法に関する。さらに詳しくは、生体試料中のリウマ
チ因子や補体成分などの免疫反応干渉物質の作用を防止
し、生体試料中の微量物質定量を正確に行うことができ
る免疫測定法における免疫反応干渉作用の除去方法に関
する。
【０００２】
【従来の技術】従来、免疫測定法における免疫反応干渉
作用を除去するには、完全体の抗体からＦｃ部分を除い
たＦａｂ、Ｆａｂ′、Ｆ（ａｂ′）２などの抗体フラグ
メントを免疫測定法中の固相化抗体や標識抗体などに使
用していた。具体的には、特開昭５５−１５２４５８号
や特開平４−２２１７６２号に記載の方法が挙げられ
る。
作用を除去するには、完全体の抗体からＦｃ部分を除い
たＦａｂ、Ｆａｂ′、Ｆ（ａｂ′）２などの抗体フラグ
メントを免疫測定法中の固相化抗体や標識抗体などに使
用していた。具体的には、特開昭５５−１５２４５８号
や特開平４−２２１７６２号に記載の方法が挙げられ
る。
【０００３】
【発明が解決しようとする課題】しかしながら、抗体フ
ラグメントを免疫測定法中に使用した免疫反応干渉作用
の除去方法では、血清の個別差など生体試料の種によっ
ては免疫反応干渉作用を完全に除去できない場合があ
り、さらに強力に除去する方法が望まれていた。
ラグメントを免疫測定法中に使用した免疫反応干渉作用
の除去方法では、血清の個別差など生体試料の種によっ
ては免疫反応干渉作用を完全に除去できない場合があ
り、さらに強力に除去する方法が望まれていた。
【０００４】また、完全体の抗体を蛋白質分解酵素で分
解し抗体フラグメントを得るには、例えば、「免疫生化
学研究法（第１版）、東京化学同人、８９〜９６（１９
８６）」に記載のＩｇＧからＦａｂ）の調製には１６時
間以上の作業が必要で、ＩｇＧからＦ（ａｂ′）２の調
製には２０時間以上の作業が必要であった。さらに、抗
体フラグメントに調製することで元の完全抗体よりも抗
体力価が下がることがあった。よって、免疫測定法に使
用する抗体としては抗体フラグメントでなく完全体の抗
体をそのまま使用することが望まれていた。
解し抗体フラグメントを得るには、例えば、「免疫生化
学研究法（第１版）、東京化学同人、８９〜９６（１９
８６）」に記載のＩｇＧからＦａｂ）の調製には１６時
間以上の作業が必要で、ＩｇＧからＦ（ａｂ′）２の調
製には２０時間以上の作業が必要であった。さらに、抗
体フラグメントに調製することで元の完全抗体よりも抗
体力価が下がることがあった。よって、免疫測定法に使
用する抗体としては抗体フラグメントでなく完全体の抗
体をそのまま使用することが望まれていた。
【０００５】
【課題を解決するための手段】本発明者らは上記問題点
を解決するため鋭意検討した結果、完全抗体を使用した
免疫測定法でも免疫反応干渉作用の除去を発現する共存
物質を発見し、本発明に到達した。すなわち本発明は、
抗体または抗原をガラスビーズに物理的または化学的に
吸着させた固相に検体を反応させ結合した抗原または抗
体を標識物質で検出または定量する固相免疫測定法によ
る生体試料中の微量物質定量において、抗体として完全
体の抗体を用い、ヘパリンを共存させて生体試料中に含
まれる免疫反応干渉物質の影響を除去することを特徴と
する免疫反応干渉作用の除去方法である。
を解決するため鋭意検討した結果、完全抗体を使用した
免疫測定法でも免疫反応干渉作用の除去を発現する共存
物質を発見し、本発明に到達した。すなわち本発明は、
抗体または抗原をガラスビーズに物理的または化学的に
吸着させた固相に検体を反応させ結合した抗原または抗
体を標識物質で検出または定量する固相免疫測定法によ
る生体試料中の微量物質定量において、抗体として完全
体の抗体を用い、ヘパリンを共存させて生体試料中に含
まれる免疫反応干渉物質の影響を除去することを特徴と
する免疫反応干渉作用の除去方法である。
【０００６】本発明の方法においで、ヘパリンの濃度と
しては、抗体と生体試料中の測定目的の微量物質が反応
する際に、通常０．００２〜２ｇ／ｌの濃度で共存し、
好ましくは、０．０１〜０．４ｇ／ｌで共存する。
しては、抗体と生体試料中の測定目的の微量物質が反応
する際に、通常０．００２〜２ｇ／ｌの濃度で共存し、
好ましくは、０．０１〜０．４ｇ／ｌで共存する。
【０００７】本発明の方法において免疫反応に使用され
る抗体としては、調製作業が不要で抗体力価の低下もな
い完全体の抗体が使用される。完全体の抗体とは基本構
造を崩していない免疫グロブリン（ＩｇＧ、ＩｇＭ、Ｉ
ｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ）であり、この免疫グロブリンの
うぢ好ましいものは、ＩｇＧである。
る抗体としては、調製作業が不要で抗体力価の低下もな
い完全体の抗体が使用される。完全体の抗体とは基本構
造を崩していない免疫グロブリン（ＩｇＧ、ＩｇＭ、Ｉ
ｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ）であり、この免疫グロブリンの
うぢ好ましいものは、ＩｇＧである。
【０００８】また、抗体の由来は、ウザギなどの哺乳動
物等に抗原を投与し免疫して得られる抗血清を精製した
ポリクローナル杭体あるいは、免疫されたマウス等の脾
臓細胞と骨髄腫細胞から得られた雑種細胞から産生され
るモノクローナル抗体などが挙げられる。
物等に抗原を投与し免疫して得られる抗血清を精製した
ポリクローナル杭体あるいは、免疫されたマウス等の脾
臓細胞と骨髄腫細胞から得られた雑種細胞から産生され
るモノクローナル抗体などが挙げられる。
【０００９】本発明の方法において、標識物質を用いる
固相免疫測定法とは、抗体または抗原を物理的または化
学的に吸着させた固相に検体を反応させ、結合した抗原
または抗体を標識抗体や標識抗原で検出する測定法であ
る。この測定法としては、エンザイムイムノアッセイ
法、ラジオイムノアッセイ法、発光・蛍光イムノアッセ
イ法などが挙げられる。これらのうち好ましいものは、
エンザイムイムノアッセイ法である。
固相免疫測定法とは、抗体または抗原を物理的または化
学的に吸着させた固相に検体を反応させ、結合した抗原
または抗体を標識抗体や標識抗原で検出する測定法であ
る。この測定法としては、エンザイムイムノアッセイ
法、ラジオイムノアッセイ法、発光・蛍光イムノアッセ
イ法などが挙げられる。これらのうち好ましいものは、
エンザイムイムノアッセイ法である。
【００１０】また、本発明の方法において、免疫測定法
で測定される生体試料中の微量物質には、例えば、「検
査と技術、Ｖｏｌ．１６、Ｎｏ．７、６３３（１９８
８）」に記載のＡＦＰ、ＣＥＡ、ＦＥＲ、ＴＳＨなどの
生体試料中にｎｇ／ｍｌレベルの濃度の蛋白成分があ
る。
で測定される生体試料中の微量物質には、例えば、「検
査と技術、Ｖｏｌ．１６、Ｎｏ．７、６３３（１９８
８）」に記載のＡＦＰ、ＣＥＡ、ＦＥＲ、ＴＳＨなどの
生体試料中にｎｇ／ｍｌレベルの濃度の蛋白成分があ
る。
【００１１】
【実施例】以下、実施例により本発明をさらに説明する
が、本発明はこれに限定されるものではない。
が、本発明はこれに限定されるものではない。
【００１２】ムコ多糖含有の免疫反応用緩衝液の調製； ０．０２Ｍのリン酸緩衝液（ｐＨ７．２）に、牛血清ア
ルブミンを１０ｇ／ｌおよび塩化ナトリウムを８．５ｇ
／ｌおよびアジ化ナトリウムを０．５ｇ／ｌの濃度にな
るように添加し、免疫反応用緩衝液（ｂ）を調製した。
調製後、免疫反応用緩衝液に、ムコ多糖としてヘパリ
ン，コンドロイチン硫酸，ヒアルロン酸をそれぞれ０．
１ｇ／ｌの濃度になるように添加し、コンドロイチン硫
酸含有の免疫反応用緩衝液（ｃ１），ヒアルロン酸含有
の免疫反応用緩衝液（ｃ２），ヘパリン含有の免疫反応
用緩衝液（ｃ）を調製した。
ルブミンを１０ｇ／ｌおよび塩化ナトリウムを８．５ｇ
／ｌおよびアジ化ナトリウムを０．５ｇ／ｌの濃度にな
るように添加し、免疫反応用緩衝液（ｂ）を調製した。
調製後、免疫反応用緩衝液に、ムコ多糖としてヘパリ
ン，コンドロイチン硫酸，ヒアルロン酸をそれぞれ０．
１ｇ／ｌの濃度になるように添加し、コンドロイチン硫
酸含有の免疫反応用緩衝液（ｃ１），ヒアルロン酸含有
の免疫反応用緩衝液（ｃ２），ヘパリン含有の免疫反応
用緩衝液（ｃ）を調製した。
【００１３】比較例１ ＴＳＨ免疫測定法１（使用抗体：ＩｇＧ，モノクローナ
ル抗体） （ｂ）の０．３ｍｌと、標準ＴＳＨ液またはＴＳＨ含有
検体０．１ｍｌと、抗ＴＳＨモノクローナル抗体［Ｉｇ
Ｇ］結合ガラスビーズ（以下Ｇ１とする）１個とを試験
管に分注し、試験管中で３７℃，１５分間免疫反応さ
せ、Ｇ１−ＴＳＨ複合体を形成した。反応後、試験管中
の液をアスピレーターで除き、Ｇ１−ＴＳＨ複合体を生
食水３ｍｌで３回洗浄した。
ル抗体） （ｂ）の０．３ｍｌと、標準ＴＳＨ液またはＴＳＨ含有
検体０．１ｍｌと、抗ＴＳＨモノクローナル抗体［Ｉｇ
Ｇ］結合ガラスビーズ（以下Ｇ１とする）１個とを試験
管に分注し、試験管中で３７℃，１５分間免疫反応さ
せ、Ｇ１−ＴＳＨ複合体を形成した。反応後、試験管中
の液をアスピレーターで除き、Ｇ１−ＴＳＨ複合体を生
食水３ｍｌで３回洗浄した。
【００１４】次に、試験管中のＧ１−ＴＳＨ複合体１個
に、牛血清アルブミンを１０ｇ／ｌおよび塩化ナトリウ
ムを８．５ｇ／ｌおよびペルオキシダーゼ標識抗ＴＳＨ
モノクローナル抗体［ＩｇＧ］（以下Ｐ１とする）を
０．１ｍｇ／ｌ含有する０．０２Ｍのリン酸緩衝液（ｐ
Ｈ７．２）の０．３ｍｌを添加し、試験管中で３７℃，
１５分間免疫反応させ、Ｇ１−ＴＳＨ−Ｐ１複合体を形
成した。反応後、試験管中の液をアスピレーターで除
き、Ｃ１−ＴＳＨ−Ｐ１複合体を生食水３ｍｌで３回洗
浄した。
に、牛血清アルブミンを１０ｇ／ｌおよび塩化ナトリウ
ムを８．５ｇ／ｌおよびペルオキシダーゼ標識抗ＴＳＨ
モノクローナル抗体［ＩｇＧ］（以下Ｐ１とする）を
０．１ｍｇ／ｌ含有する０．０２Ｍのリン酸緩衝液（ｐ
Ｈ７．２）の０．３ｍｌを添加し、試験管中で３７℃，
１５分間免疫反応させ、Ｇ１−ＴＳＨ−Ｐ１複合体を形
成した。反応後、試験管中の液をアスピレーターで除
き、Ｃ１−ＴＳＨ−Ｐ１複合体を生食水３ｍｌで３回洗
浄した。
【００１５】さらに、試験管中のＧ１−ＴＳＨ−Ｐ１複
合体１個に、過酸化水素を０．２ｇ／ｌおよびオルト−
フェニレンジアミン３ｇ／ｌを含有するクエン酸−リン
酸緩衝液０．３ｍｌを加え３７℃，１５分間発色反応さ
せ、反応後、１．５規定の硫酸３ｍｌを加えて酵素反応
を停止させ溶液の吸収を分光光度計を用い４９２ｎｍで
測光した。
合体１個に、過酸化水素を０．２ｇ／ｌおよびオルト−
フェニレンジアミン３ｇ／ｌを含有するクエン酸−リン
酸緩衝液０．３ｍｌを加え３７℃，１５分間発色反応さ
せ、反応後、１．５規定の硫酸３ｍｌを加えて酵素反応
を停止させ溶液の吸収を分光光度計を用い４９２ｎｍで
測光した。
【００１６】最後に、各標準ＴＳＨ液の濃度値と測光値
をグラフ用紙にプロットし検量線を作製しその検量線か
ら、ＴＳＨ含有検体の測光値に対する濃度値を算出し
た。この濃度値をＴＳＨ測定値とした。
をグラフ用紙にプロットし検量線を作製しその検量線か
ら、ＴＳＨ含有検体の測光値に対する濃度値を算出し
た。この濃度値をＴＳＨ測定値とした。
【００１７】比較例２，比較例３および実施例１ ＴＳＨ免疫測定法２（使用抗体：ＩｇＧ，モノクローナ
ル抗体） 比較例１の（ｂ）を（ｃ１），（ｃ２），（ｃ）に変更
してそれぞれ比較例２，比較例３および実施例１とし
た。
ル抗体） 比較例１の（ｂ）を（ｃ１），（ｃ２），（ｃ）に変更
してそれぞれ比較例２，比較例３および実施例１とし
た。
【００１８】比較例４ ＡＦＰ免疫測定法１（使用抗体：ＩｇＧ，ポリクローナ
ル抗体） （ｂ）の０．３ｎｌと、標準ＡＦＰ液またはＡＦＰ含有
検体０．０２ｍｌと、抗ΛＦＰポリクローナル抗体［Ｉ
ｇＧ］結合ガラスビーズ（以下Ｇ３とする）１個とを試
験管に分注し、試験管中で３７℃，１５分間免疫反応さ
せ、Ｇ３−ＡＦＰ複合体を形成した。反応後、試験管中
の液をアスピレーターで除き、Ｇ３−ＡＦＰ複合体を生
食水３ｍｌで３回洗浄した。
ル抗体） （ｂ）の０．３ｎｌと、標準ＡＦＰ液またはＡＦＰ含有
検体０．０２ｍｌと、抗ΛＦＰポリクローナル抗体［Ｉ
ｇＧ］結合ガラスビーズ（以下Ｇ３とする）１個とを試
験管に分注し、試験管中で３７℃，１５分間免疫反応さ
せ、Ｇ３−ＡＦＰ複合体を形成した。反応後、試験管中
の液をアスピレーターで除き、Ｇ３−ＡＦＰ複合体を生
食水３ｍｌで３回洗浄した。
【００１９】次に、試験管中のＧ３−ＡＦＰ複合体１個
に、牛血清アルブミンを１０ｇ／ｌおよび塩化ナトリウ
ムを８．５ｇ／ｌおよびペルオキシダーゼ標識抗ＡＦＰ
ポリクローナル抗体［ＩｇＧ］（以下Ｐ３とする）を
０．２ｍｇ／ｌ含有する０．０２Ｍのリン酸緩衝液（ｐ
Ｈ７．２）の０．３ｍｌを添加し、試験管中で３７℃，
１５分間免疫反応させ、Ｇ３−ＡＦＰ−Ｐ３複合体を形
成した。反応後、試験管中の液をアスピレーターで除
き、Ｇ３−ＡＦＰ−Ｐ３複合体を生食水３ｍｌで３回洗
浄した。
に、牛血清アルブミンを１０ｇ／ｌおよび塩化ナトリウ
ムを８．５ｇ／ｌおよびペルオキシダーゼ標識抗ＡＦＰ
ポリクローナル抗体［ＩｇＧ］（以下Ｐ３とする）を
０．２ｍｇ／ｌ含有する０．０２Ｍのリン酸緩衝液（ｐ
Ｈ７．２）の０．３ｍｌを添加し、試験管中で３７℃，
１５分間免疫反応させ、Ｇ３−ＡＦＰ−Ｐ３複合体を形
成した。反応後、試験管中の液をアスピレーターで除
き、Ｇ３−ＡＦＰ−Ｐ３複合体を生食水３ｍｌで３回洗
浄した。
【００２０】さらに、試験管中のＧ３−ＡＦＰ−Ｐ３複
合体１個に、過酸化水素を０．２ｇ／ｌおよびオルト−
フェニレンジアミン３ｇ／ｌを含有するクエン酸−リン
酸緩衝液０．３ｍｌを加え３７℃，１５分間発色反応さ
せ、反応後、１．５規定の硫酸３ｍｌを加えて酵素反応
を停止させ溶液の吸収を分光光度計を用い４９２ｎｍで
測光した。
合体１個に、過酸化水素を０．２ｇ／ｌおよびオルト−
フェニレンジアミン３ｇ／ｌを含有するクエン酸−リン
酸緩衝液０．３ｍｌを加え３７℃，１５分間発色反応さ
せ、反応後、１．５規定の硫酸３ｍｌを加えて酵素反応
を停止させ溶液の吸収を分光光度計を用い４９２ｎｍで
測光した。
【００２１】最後に、各標準ＡＦＰ液の濃度値と測光値
をグラフ用紙にプロットし検量線を作製しその検量線か
ら、ΛＦＰ含有検体の測光値に対する濃度値を算出し
た。この濃度値をＡＦＰ測定値とした。
をグラフ用紙にプロットし検量線を作製しその検量線か
ら、ΛＦＰ含有検体の測光値に対する濃度値を算出し
た。この濃度値をＡＦＰ測定値とした。
【００２２】比較例５，比較例６および実施例２ ＡＦＰ免疫測定法２（使用抗体：ＩｇＧ，ポリクローナ
ル抗体） 比較例４の（ｂ）を（ｃ１），（ｃ２），（ｃ）に変更
してそれぞれ比較例５，比較例６および実施例２とし
た。
ル抗体） 比較例４の（ｂ）を（ｃ１），（ｃ２），（ｃ）に変更
してそれぞれ比較例５，比較例６および実施例２とし
た。
【００２３】評価 免疫反応干渉作用の除去効果を確かめるため、ＲＦ含有
検体の添加回収率を評価した。ＲＦを含む血清（ＲＦ
（＋））の０．９ｍｌおよびＲＦを含まない血清（ＲＦ
（−））の０．９ｍｌに標準ＴＳＨ液の５０μＵ／ｍｌ
を０．１ｍｌずつそれぞれ添加し添加回収率用検体（Ｔ
ＳＨ）とした。この検体を比較例１〜３および実施例１
のＴＳＨ免疫測定法で測定し添加回収率を求めた。その
結果を表１に示す。
検体の添加回収率を評価した。ＲＦを含む血清（ＲＦ
（＋））の０．９ｍｌおよびＲＦを含まない血清（ＲＦ
（−））の０．９ｍｌに標準ＴＳＨ液の５０μＵ／ｍｌ
を０．１ｍｌずつそれぞれ添加し添加回収率用検体（Ｔ
ＳＨ）とした。この検体を比較例１〜３および実施例１
のＴＳＨ免疫測定法で測定し添加回収率を求めた。その
結果を表１に示す。
【００２４】
【表１】
【００２５】また、ＲＦ（＋）の０．９ｍｌおよびＲＦ
（−）の０．９ｍｌに標準ＡＦＰ液の６４０ｎｇ／ｍｌ
を０．１ｍｌずつそれぞれ添加し添加回収率用検体（Ａ
ＦＰ）とした。この検体を比較例４〜６および実施例２
のＡＦＰ免疫測定法で測定し添加回収率を求めた。その
結果を表２に示す。
（−）の０．９ｍｌに標準ＡＦＰ液の６４０ｎｇ／ｍｌ
を０．１ｍｌずつそれぞれ添加し添加回収率用検体（Ａ
ＦＰ）とした。この検体を比較例４〜６および実施例２
のＡＦＰ免疫測定法で測定し添加回収率を求めた。その
結果を表２に示す。
【００２６】
【表２】
【００２７】表１〜表２の添加回収率が実施例において
飛躍的に向上し、本発明の免疫反応干渉作用の除去効果
が優れていることがわかる。
飛躍的に向上し、本発明の免疫反応干渉作用の除去効果
が優れていることがわかる。
【００２８】
【発明の効果】本発明により、完全抗体を使用した免疫
測定法でも免疫反応干渉物質の作用を防止することが可
能となった。また、この免疫反応干渉作用の除去方法
は、免疫測定法中に使用するポリクローナル抗体やモノ
クローナル抗体など、抗体の由来に関係なく除去効果を
発現した。従って、如何なる抗体を使用した免疫測定法
においても、免疫反応干渉作用が除去され、生体試料中
の微量物質定量を正確に行うことが可能となった。
測定法でも免疫反応干渉物質の作用を防止することが可
能となった。また、この免疫反応干渉作用の除去方法
は、免疫測定法中に使用するポリクローナル抗体やモノ
クローナル抗体など、抗体の由来に関係なく除去効果を
発現した。従って、如何なる抗体を使用した免疫測定法
においても、免疫反応干渉作用が除去され、生体試料中
の微量物質定量を正確に行うことが可能となった。
Claims (2)
- 【請求項１】 抗体または抗原をガラスビーズに物理的
または化学的に吸着させた固相に検体を反応させ結合し
た抗原または抗体を標識物質で検出または定量する固相
免疫測定法による生体試料中の微量物質定量において、
抗体として完全体の抗体を用い、ヘパリンを共存させて
生体試料中に含まれる免疫反応干渉物質の影響を除去す
ることを特徴とする免疫反応干渉作用の除去方法。 - 【請求項２】 生体試料中の微量物質がＡＦＰ、ＣＥ
Ａ、ＦＥＲおよびＴＳＨからなる群から選ばれる請求項
１記載の方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP6186566A JP2649016B2 (ja) | 1994-07-15 | 1994-07-15 | 免疫反応干渉作用の除去方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP6186566A JP2649016B2 (ja) | 1994-07-15 | 1994-07-15 | 免疫反応干渉作用の除去方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0829420A JPH0829420A (ja) | 1996-02-02 |
| JP2649016B2 true JP2649016B2 (ja) | 1997-09-03 |
Family
ID=16190776
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP6186566A Expired - Fee Related JP2649016B2 (ja) | 1994-07-15 | 1994-07-15 | 免疫反応干渉作用の除去方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2649016B2 (ja) |
Families Citing this family (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP5238190B2 (ja) * | 2007-05-24 | 2013-07-17 | 株式会社ビーエル | ヒアルロン酸存在下における免疫測定法及びそれに用いられる物 |
| US8617820B2 (en) | 2007-08-28 | 2013-12-31 | Ortho-Clinical Diagnostics, Inc. | Use of glycosaminoglycans to reduce non-specific binding in immunoassays |
| JP2010127827A (ja) * | 2008-11-28 | 2010-06-10 | Abbott Japan Co Ltd | 非特異的相互作用抑制剤及びその診断測定系への応用 |
| CN113671195A (zh) * | 2021-09-13 | 2021-11-19 | 迈克生物股份有限公司 | 抗双链dna抗体检测试剂盒及其应用 |
Family Cites Families (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH02238361A (ja) * | 1989-03-10 | 1990-09-20 | Sekisui Chem Co Ltd | 免疫反応測定法および免疫反応測定用試薬 |
| JPH07104352B2 (ja) * | 1991-06-10 | 1995-11-13 | ベックマン インスツルメンツ インコーポレーテッド | リュウマチ因子検出用の新規緩衝剤及びその方法 |
| JP3102827B2 (ja) * | 1993-11-30 | 2000-10-23 | ダイナボット株式会社 | 特異的結合アッセイ試薬及びそれを使用した測定方法 |
-
1994
- 1994-07-15 JP JP6186566A patent/JP2649016B2/ja not_active Expired - Fee Related
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0829420A (ja) | 1996-02-02 |
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